RO126409A2 - Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium - Google Patents

Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium Download PDF

Info

Publication number
RO126409A2
RO126409A2 ROA200901074A RO200901074A RO126409A2 RO 126409 A2 RO126409 A2 RO 126409A2 RO A200901074 A ROA200901074 A RO A200901074A RO 200901074 A RO200901074 A RO 200901074A RO 126409 A2 RO126409 A2 RO 126409A2
Authority
RO
Romania
Prior art keywords
parts
differentiation
fusarium
fungi
toxicogenic
Prior art date
Application number
ROA200901074A
Other languages
English (en)
Other versions
RO126409B1 (ro
Inventor
Florin Oancea
Aurora Liliana Ştefan
Carmen Lupu
Original Assignee
Institutul De Cercetare Dezvoltare Pentru Protecţia Plantelor
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Institutul De Cercetare Dezvoltare Pentru Protecţia Plantelor filed Critical Institutul De Cercetare Dezvoltare Pentru Protecţia Plantelor
Priority to ROA200901074A priority Critical patent/RO126409B1/ro
Publication of RO126409A2 publication Critical patent/RO126409A2/ro
Publication of RO126409B1 publication Critical patent/RO126409B1/ro

Links

Landscapes

  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Prezenta invenţie se referă la o compoziţie de mediu selectiv de cultură, pentru diferenţierea ciupercilor toxigene din genul Fusarium, alcătuit din 32...34 părţi ulei de măsline extravirgin, 0,095...1,05 părţi fosfat diacid de potasiu, 0,095...1,05 părţi azotat de potasiu, 0,095...1,05 părţi sulfat de streptomicină, 0,740...0,760 părţi pentaclornitrobenzen, 0,47...0,52 părţi MgSO.7HO, 0,47...0,52 părţi KCl, 0,340...0,360 părţi sulfat de neomicină, 0,240...0,270 părţi polietilenglicol sorbitan monooleat, 0,19...0,21 părţi Rodamină B, 19...21 părţi agar şi până la 1000 părţi apă, părţile fiind exprimate în greutate.

Description

Prezenta invenție se referă la un mediu pentru diferențierea ciupercilor toxigene din genul Fusarium destinat estimării riscului de infecție a boabelor de grâu în curs de formare cu ciuperci toxigene și de contaminare ulterioară cu micotoxine.
Sunt cunoscute o serie de medii și de procedee prin care sunt determinate fitopatogenitatea și/sau toxigenitatea unor populații / izolate de ciuperci din genul Fusarium.
Brevetul MD 4540 descrie o metodă de identificare a fitopatogenității unor izolate de ciuperci din genul Fusarium. Metoda propusă implică cultivarea izolatelor de ciuperci toxigene pe mediu nutritiv Czapek și determinarea activității β-glucuronidazice în filtratele culturii de 5 zile. Se consideră ca fiind fitopatogene acele izolate la care activitatea β-glucuronidazică este cuprinsă între 0,652 ... 1,183 U/ml. Metoda descrisă nu oferă soluții pentru diferențierea și/sau izolarea rapidă a tulpinilor de ciuperci fitopatogene din genul Fusarium, și în special a celor care sunt și toxigene.
Schamele ș/ colab. (2006, Genetic structure of atmospheric populations of Gibberella zeae, Phytopathology 96, 1021-1026). descriu un mediu pentru diferențierea și identificarea rapidă a sporilor atmosferici de Fusarium graminearum / Gibberella zeae depuși gravimetric pe suprafața plăcilor petri deschise și expuse peste noapte. Această soluție tehnică permite izolarea rapidă a ciupercilor din genul Fusarium, dar nu permite diferențierea celor fitopatogene și/sau toxigene.
Problema tehnică pe care o rezolvă invenția este de a realiza o compoziție de mediu prin care să se realizeze izolarea din mediu și diferențierea rapidă a ciupercilor fitopatogene toxigene din genul Fusarium.
Compoziția de mediu selectiv pentru fusariile toxigene conform invenției este alcătuită din: 32 .. 34 părți de ulei de măsline extravirgin, 0,095 ... 1,05 părți de fosfat monopotasic KH2PO4; 0,095 ... 1,05 părți azotat de potasiu KNO3; 0,095 ... 1,05 părți sulfat de streptomicină; 0,740 ... 0,760 părți de pentacloronitrobenzen; 0,47 ... 0,52 părți de MgSO4.7H2O; 0,47 ... 0,52 părți de clorură de potasiu KCI; 0,340 ... 0,360 părți de sulfat de neomicină; 0,240 ...0,270 părți de polietilen glicol sorbitan monooleat; 0,019 ... 0,021 părți de Rodamină B, agar 19 ... 21 părți, apă până la 1000 de părți, părțile fiind exprimate în greutate.
Mediul realizat conform invenției prezintă următoarele avantaje:
<-2 Ο Ο 9 - Ο * Ο 7 / 2 2 -’2· 2009 ί
• selectivitate ridicată datorită biocidele incluse în mediu, streptomicină, neomicină, pentacloronitrobenzen care limitează dezvoltarea bacteriilor și a ciupercilor microscopice care nu aparțin genului Fusarium', • capacitate ridicată de a diferenția fusariile producătoare de lipaze extracelulare, care sunt fitopatogene și toxigene pentru că lipazele secretate reprezintă pentru ciupercile din genul Fusarium atât un factor de virulență cât și un factor implicat în biosinteza micotoxinelor.
• realizarea testelor de diferențiere ușor, fără a fi necesară aparatură complexă, reactivi costisitori și/sau personal cu înaltă calificare;
• realizarea testelor de identificare a hazardului microbiologic care generează riscul de contaminare a alimentelor cu fusariotoxine
Se dă în continuare un exemplu de realizare a invenției:
Exemplu. într-un flacon erlenmayer de 500ml gradat se introduc pe rând 0,1g KH2PO4, 0,1 g KNO3, 0,05g MgSO4, 0,05 g KCI. Se adaugă 90ml apă distilată. Se încălzește la fierbere până la dizolvarea completă a tuturor ingredientelor și apoi se menține pe baie de apă la 50 ... 55°C. Peste soluția menținută la 55°C se adaugă 0,075 mg pentacloronitrobenzen. Se verifică pH-ul care trebuie să fie de 7.0±0,1. Se corectează dacă este nevoie cu soluții de KOH 1N sau H2SO4 1N. Se aduce volumul final la 100ml, se astupă paharul erlenmayer cu dop de vată, și apoi se autoclavează la 121°C, timp de 20min. Mediul autoclavat se răcește la 60°C, după care se adaugă 10 ml emulsie lipidică sterilă cu rodamină B. Se omogenizează în condiții aseptice pe baie de apă termostatată la 60°C și se menține apoi aprox. 10 min la 60... 62°C pentru eliminarea spumei formate. Mediul se răcește apoi la circa 55°C, și se adăugă câte 1 ml de soluiii de antibiotice sterilizate prin filtrare, respectiv 1 ml soluție de sulfat de streptomicină 0,1 g /ml și 1 ml soluție de sulfat de neomicină 0,035g/ml.
Prepararea emulsiei lipidice sterile se realizează după cum urmează: întrun erlenmeyer de 250 ml se aduc: 250μΙ de Tween 80 (polietilen glicol sorbitan monooleat), 30 ml de ulei de măsline extravirgin și 50 ml de apă distilată. Se omogenizează emulsia la waririg blender, se lasă să se disperseze spuma, se corectează pH-ul la 7.0, se acoperă cu dop de vată fixat cu folie și apoi se sterilizează la 121°C timp de 30 min. Se răcește la circa 60°C, se trece pe baie de apă termostatată la 60 ... 62°C și se adăugă 20 ml soluție de rodamină B 1mg/ml sterilizată prin ultrafiltrare
Selectivitatea mediului realizat conform invenției a fost analizată cu cea a mediilor de mai jos.
Czapek-Dox-Iprodione-Dicloran Agar (CZID) (Abildgren et al., 1987), obținut din Czapek Dox agar (Merck) 35 g; CuSO4.5H2O 0,005 g; ZnSO4.7H2O 2
<V 2 Ο Ο 9 - 0 1 Ο 7 4 - 2 2 -12- 2009 y
0,001 g cloramfenicol 0,05 g; dicloran 0,002 g; apă până la 1000 ml. Mediul s-a autoclavat la 121°C, timp de 30 min. Când mediul s-a răcit la circa 55°C s-a adăugat câte 1 ml din soluții sterile care conțineau: penicilină 50 mg /ml; sulfat de streptomicină 50 mg /ml; Rovral (iprodione) 6 mg/ml;
Spezieller Nahrstoffarmer Agar (SNA) (Nirenberg, 1981); KH2PO4 1 g; KNO31 g; MgSO4.7H2O 0,5 g; KCI 0,5 g; glucoză 0,2 g; zaharoza 0,2 g; agar 20 g Malachit Green Agar (MGA) (Castello et al., 1997) Peptonă 15 g; KH2PO4 1 g ; MgSO4.7H2O 0,5 g; Malachite Green sare oxalat,10 ml soluție 25 mg% (2,5 mg); ampicilină 0,5 g. Mediul s-a autoclavat la 121°C, timp de 30 min. Când mediul s-a răcit la circa 55°C s-a adăugat 2 ml dintr-o soluție stoc rifampicină, rezultată prin dizolvarea a 0,5g în 100 ml 95% etanol.
Mediu Fusarium selectiv (FS) (Nash și Snyder, 1962) cu următoarea compoziție: bactopeptonă 15 g, mediu pulbere cartof glucoză agar (Difco) 39 g; KH2PO4 1 g; MgSO47H2O 0,5 g, pentacloronitrobenzen 0,2 g, agar 15 g. Mediul s-a autoclavat la 121°C, timp de 30 min. Când mediul s-a răcit la circa 55°C s-a adăugat câte 1 ml din soluții sterile care conțineau: sulfat de streptomicină 300 mg /ml, ampicilină 100 mg/ml
Mediu Fusarium selectiv modificat (FSM) (Schmale et al. 2006), cu următoarea compoziție: 15 g bactopeptonă, KH2PO4 1 g; MgSO4-7H2O 0,5 g, pentacloronitrobenzen 0,750 g, agar 15 g. S-a răcit la 55°C, după care s-au adăugat câte 10 ml de solunii de antibiotice sterilizate prin filtrare, 10 ml soluție de sulfat de streptomicină 0,1 g /ml și 10 ml soluție de sulfat de neomicină 0,035g/ml.
Tab. 2. Selectivitatea mediilor de cultură testate pentru fusariile toxigene.
Mediu Aprecierea selectivită Ί ii
Fusarium / Asperg. Fusarium/Drechslera Fusariu /Mucor Fusarium/Penidllium Fusarium/Rhisopus
CZID 5 5 3 5 4
SNA 4 4 5 3 5
FS 3 3 4 4 3
FSM 1 2 2 1 2
cf. ex. 2 1 1 2 2
a - Note pe o scara de la 1 la 5, prin compararea creșterii între diferitele specii de ciuperci microscopice pe fiecare dintre medii.
Selectivitatea mediilor a fost testată prin inocularea plăcilor petri 67x15 mm cu amestecuri de suspensii de spori de Fusarium graminearum în combinație cu
Ο (X- 2 Ο Ο 9 - Ο 1 Ο 7 4 2 2 -12“ 2009
Aspergillus flavus, Sclerotinia sclerotiorum, Drechslera turcica, Botrytis cinerea, Mucor mucedo, Penicillium expansum. S-a incubat timp de 7 zile și a fost comparată creșterea diferitele specii de ciuperci microscopice pe fiecare dintre medii. Notele acordate diferitelor medii testate în cadrul acestei etape în privința selectivității pentru ciupercile fitopatogene din grupul Fusarium graminearum sunt prezentate în tabelul 1. Se remarcă faptul că selectivitatea mediilor FS, FSM și cf. ex.(conform exemplu) este apropiată, In toate cazurile factorul major de selectivitate este pentacloronitrobenzen, un fungicid care este inactiv față de ciupercile microscopic din genul Fusarium. Mediul conform invenției mai este selectiv și prin compoziția sa minimală.
Capacitatea mediilor de a permite diferențierea rapidă a sporilor atmosferici de fusarii toxigene a fost testată prin expunerea în aer liber a mediile comparate, fiecare dispus într-o serie de 5 plăci petri deschise (90 mm în diametru; suprafața = 283 mm2). Plăcile au fost amplasate pe un suport în formă de T, la nivelul inflorescențelor de grâu și porumb (fig. 1, a, b) și lăsate peste noapte. Apoi s-au închis, s-au preluat din câmp în laborator și s-au incubat timp de 24 ore, la 25°C și la întuneric. Numărul de colonii puse în evidență rapid pentru diferitelor medii sunt prezentate în tab. 2.
Tab. 2. Capacitatea mediilor de cultură testate pentru diferențierea rapidă a sporilor atmosferici prelevați după expunere în aer liber.
Mediu Număr total de colonii Colonii identificate ca Fusarium
CZID 128+20 44±4
SNA 108±24 42+8
FS 84±16 36±8
FSM 64±20 48+4
MSF 56±12 48±8
Datele prezentate în tab. 1 și 2 demonstrează o selectivitate ridicată a mediului MSF, realizat în cadrul acestei etape, în a izola specific din aer sporii de F. graminearum / Gibberella zeae. In plus acest mediu are caracteristica de a izola exclusiv ciuperci microscopice din genul Fusarium care produc o lipază extracelulară, deci care au un potențial toxigenic ridicat. Ciupercile care produc lipază se evidențiază printr-un halou produs pe mediul (care este opalescent și ușor rozaliu datorită complexului ulei de măsline - rodamină B). Acest halou este fluorescent la iluminare cu lumina ultravioletă.

Claims (1)

  1. Revendicare
    1. Compoziție de mediu selectiv pentru fusariile toxigene caracterizată prin aceea că este alcătuită din: 32 .. 34 părți de ulei de măsline extravirgin, 0,095 ... 1,05 părți de fosfat monopotasic KH2PO4; 0,095 ... 1,05 părți azotat de potasiu KNO3; 0,095 ... 1,05 părți sulfat de streptomicină; 0,740 ... 0,760 părți de pentacloronitrobenzen; 0,47 ... 0,52 părți de MgSO4.7H2O; 0,47 ... 0,52 părți de clorură de potasiu KCI; 0,340 ... 0,360 părți de sulfat de neomicină; 0,240 ...0,270 părți de polietilen glicol sorbitan monooleat; 0,019 ... 0,021 părți de Rodamină B, agar 19 ... 21 părți, apă până la 1000 de părți, părțile fiind exprimate în greutate.
ROA200901074A 2009-12-22 2009-12-22 Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium RO126409B1 (ro)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ROA200901074A RO126409B1 (ro) 2009-12-22 2009-12-22 Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ROA200901074A RO126409B1 (ro) 2009-12-22 2009-12-22 Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RO126409A2 true RO126409A2 (ro) 2011-06-30
RO126409B1 RO126409B1 (ro) 2012-12-28

Family

ID=44502369

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ROA200901074A RO126409B1 (ro) 2009-12-22 2009-12-22 Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium

Country Status (1)

Country Link
RO (1) RO126409B1 (ro)

Also Published As

Publication number Publication date
RO126409B1 (ro) 2012-12-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Weaver et al. Potential for preventing spread of fungi in air‐conditioning systems constructed using copper instead of aluminium
Pandey et al. Extracellular hydrolytic enzyme activities of the different Candida spp. isolated from the blood of the Intensive Care Unit-admitted patients
Gião et al. Listeria monocytogenes can form biofilms in tap water and enter into the viable but non-cultivable state
Zhang et al. The autophagy gene BbATG5, involved in the formation of the autophagosome, contributes to cell differentiation and growth but is dispensable for pathogenesis in the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana
Kindo et al. Identification of Malassezia species
Pitt et al. Methods for isolation, enumeration and identification
Jasim Antifungal activity of Zinc oxide nanoparticles on Aspergillus fumigatus fungus & Candida albicans yeast
Vyzantiadis et al. From the patient to the clinical mycology laboratory: how can we optimise microscopy and culture methods for mould identification?
Kemp et al. Survival and growth of micro-organisms on air filtration media during initial loading
Chatterjee et al. Developmental stages of biofilm and characterization of extracellular matrix of manglicolous fungus Aspergillus niger BSC‐1
Noman et al. Assessment of relevant fungal species in clinical solid wastes
Gomoiu et al. Fungal spores viability on the International Space Station
Mello et al. Conidial germination in Scedosporium apiospermum, S. aurantiacum, S. minutisporum and Lomentospora prolificans: influence of growth conditions and antifungal susceptibility profiles
Devi et al. Screening of suitable culture media for growth, cultural and morphological characters of Pycnidia forming fungi
Louw et al. Postharvest decay of nectarine and plum caused by Penicillium spp.
Guegan et al. Deciphering the Role of PIG1 and DHN-Melanin in Scedosporium apiospermum Conidia
Le Montagner et al. High intraspecific variation of the cell surface physico-chemical and bioadhesion properties in Brettanomyces bruxellensis
Yuan et al. Whole RNA-sequencing and gene expression analysis of Trichoderma harzianum Tr-92 under chlamydospore-producing condition
de Souza et al. Changes in adhesion of Candida tropicalis clinical isolates exhibiting switch phenotypes to polystyrene and HeLa cells
RO126409A2 (ro) Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium
Ramírez-Granillo et al. Microbial warfare on three fronts: mixed biofilm of Aspergillus fumigatus and Staphylococcus aureus on primary cultures of human limbo-corneal fibroblasts
Hobson The effects of diffusates from the spores of Aspergillus fumigatus and A. terreus on human neutrophils, Naegleria gruberi and Acanthamoeba castellanii
Lewis Ivey et al. Use of the vital stain FUN-1 indicates viability of Phytophthora capsici propagules and can be used to predict maximum zoospore production
Arroyo et al. Wide diversity of fungal species found in wellwater for human consumption: an analytical cross-sectional study
O'Connor et al. FISHing in fungi: visualisation of mushroom virus X in the mycelium of Agaricus bisporus by fluorescence in situ hybridisation