PL97491B1 - Sposob wytwarzania antybiotykow,zwlaszcza erytromycyny - Google Patents

Sposob wytwarzania antybiotykow,zwlaszcza erytromycyny Download PDF

Info

Publication number
PL97491B1
PL97491B1 PL18151075A PL18151075A PL97491B1 PL 97491 B1 PL97491 B1 PL 97491B1 PL 18151075 A PL18151075 A PL 18151075A PL 18151075 A PL18151075 A PL 18151075A PL 97491 B1 PL97491 B1 PL 97491B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
mycelium
flour
homogenate
erythreus
suspension
Prior art date
Application number
PL18151075A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Priority to PL18151075A priority Critical patent/PL97491B1/pl
Publication of PL97491B1 publication Critical patent/PL97491B1/pl

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia antybiotyków, zwlaszcza erytromycyny, przy wykorzystaniu odpadowej grzybni promieniowców jako skladnika pozywek do hodowli szczepów.Znane jest stosowanie jako skladników podloza w hodowli drobnoustrojów komórek drozdzy oraz nienaruszonych grzybni promieniowców,, które do¬ dawane sa jako zródlo azotu, wegla i witamin. W opisie patentowym brytyjskim nr 1 139 589 podany jest sposób otrzymywania moenomycyny na podlo¬ zu fermentacyjnym zawierajacym odpadowe grzyb¬ nie promieniowców, Penicillium, Aspergillus, Rhi- zopus i drozdzy.W metodzie wedlug opisu patentowego czeskiego nr 142797 odpadowe grzybnie Penicillium i Strep- tomyces aureofaciens stosuje sie w podlozach do hodowli szczepów, wytwarzajacych L-lizyne. Inne opisy patentowe czeskie nr 131616 i nr 131617 po¬ daja sposób otrzymywania L-lizyny z hodowli drob¬ noustrojów, rozwijajacych sie na podlozu z dodat¬ kiem maki arachidowej poddanej dzialaniu proteaz, zawartych w nienaruszonej grzybni Penicillium.W opisie patentowym polskim nr 64127 podany jest sposób wytwarzania nowych pozywek, zawie¬ rajacych drozdze, stanowiace produkt uboczny przy mikrobiologicznym odparafinowaniu frakcji ropy naftowej.W opisanych dotychczas metodach jako dodatek do podloza stosuje sie nienaruszone komórki drob- so noustrojów, nie poddawane zadnej obróbce wstep¬ nej, co utrudnia ich pelne wykorzystanie.Sposób wedlug wynalazku eliminuje powyzsze wady i rózni sie od uprzednio opisanych tym, ze z grzybni promieniowców uwalniane sa zawarte w komórkach enzymy hydrolityczne, a w szczegól¬ nosci proteolityczne i amylolityczne, które dziala¬ jac na bialka i weglowodany zawarte w tej grzy¬ bni, powoduja ich hydrolize do latwo przyswajal¬ nych przez drobnoustroje peptydów oraz/lub wol¬ nych aminokwasów i cukrów prostych.Wedlug wynalazku zawiesine wodna odpadowej grzybni promieniowców, w szczególnosci grzybni szczepu Streptomyces erythreus, otrzymanej np. z biosyntezy erytromycyny, poddaje sie rozbiciu komórek, korzystnie za pomoca dezintegratora ul¬ tradzwieków oraz/lub homogenizatora, otrzymany homogenat inkubuje sie w temperaturze 20—50°C korzystnie w temperaturze 30—35°C, przy wartosci pH = 7—11, korzystnie przy wartosci pH okolo 10, a otrzymany plynny autolizat ewentualnie pozba¬ wia sie reszty antybiotyku i ewentualnie suszy; lub z otrzjrmanego homogenatu po ewentualnym od¬ dzieleniu czesci stalych wysala sie enzymy, surowy preparat enzymatyczny wyodrebnia sie i ewentu¬ alnie suszy, dodaje sie do zawiesiny wodnej maki sojowej, rzepakowej lub innej, mieszanine inkubu¬ je sie w podanych wyzej warunkach temperatury i wartosci pH, a otrzymana trawiona make pozba¬ wia sie reszty antybiotyku oraz/lub suszy; albo tez 97 49197 491 3 4 homogenat bezposrednio dodaje sie do maki, mie¬ szanine ikubuje sie w podanych wyzej warunkach temperatury i wartosci pH, a otrzymana trawiona make pozbawia sie reszty antybiotyku oraz/lub su¬ szy; po czym otrzymany w ten sposób autolizat lub trawiona make dodaje sie do podloza do hodo¬ wli drobnoustrojów, zastepujac w czesci lub calko¬ wicie make sojowa, rzepakowa lub inna make, sto¬ sowana zwykle jako skladnik pozywek oraz pro¬ wadzi sie proces biosyntezy w warunkach konwen¬ cjonalnych.Przed zhomogenizowaniem odpadowa grzybnie zawiesza sie w wodzie w stosunku wagowym 1—5 czesci wody na 1 czesc wilgotnej grzybni.Wysolenie enzymów z homogenatu ewentualnie fJUzLJa" WUJJWjflft!''pScJ stalych prowadzi sie korzyst- lire yrWz^aoaa^aTLijp stalego siarczanu amonowego bo stezenia okolo 6|%.I "^-LbM^" ljjftwifi4nv maki w wodzie, korzystnie lkoto .'Ln(^TLffHTTrjlM^jr maki w wodzie, dodaje sie Itn^Wy^^repa^aT^enzymatyczny w ilosci 10—1000 j proteazy, korzystnie 100—500 j proteazy, na 1 ml zawiesiny. Make dodaje sie do homogenatu w ta¬ kiej ilosci, aby otrzymac 1—20% zawiesine, korzyst¬ nie okolo 10% zawiesine maki w homogenacie.Stosujac wedlug wynalazku w/w preparaty w podlozach do hodowli szczepu wytwarzajacego ery¬ tromycyne, uzyskuje sie zwiekszenie wydajnosci antybiotyku o okolo 20% w stosunku do wydaj¬ nosci, uzyskiwanych w hodowli na standardowym podlozu opisanym w opisie patentowym nr 59792.Grzybnia promieniowców jest bogatym zródlem wegla, azotu, substancji wzrostowych i enzymów.Wsród enzymów znaczna ilosc stanowia enzymy hydrolityczne, a w szczególnosci enzymy o aktyw¬ nosci proteolitycznej czyli proteazy. Dla przykladu podano w tablicy 1 aktywnosc proteaz i amylaz w grzybni rozbitej przy uzyciu dezintegratora ultra¬ dzwieków firmy MSE 100 W lub laboratoryjnego homogenizatora mechanicznego firmy Eppenbach Inc. Long Tsland, N.Y. USA.Tablica 1 Rodzaj grzybni S. erythreus S. linconensis S. vinaceus S. griseus Proteazy w j/ml homo- genizator 725 82 50 85 ultra¬ dzwieki 740 88 52 45 a-amylazy w mg maltozy (10') ml homo- geni- zator 3,0 1,4 0 0 ultra¬ dzwie¬ ki i 3,4 1,2 0 0 Optimum dzialania enzymów proteolitycznych S. erythreus z grzybni znajduje sie przy wartosci pH okolo 10 i jest identyczne z optimum wartosci pH proteazy S. erythreus, wydzielanej do podloza.Proteazy te wykazuja równiez znaczna stabilnosc w temperaturach do 50°C w czasie ich izolowani* (Acta MiCrobiol. Pol., Ser. B. 1973,5, 21—27), co umozliwia ich praktyczne wykorzystanie. W przy-. gotowaniu homogenatów grzybni promieniowców sposobem wedlug wynalazku szczególnie przydatna jest grzybnia szczepu S. erythreus, wytwarzajacego erytromycyne, z uwagi na duza aktywnosc zawar- tych w nich proteaz. Enzymy proteolityczne hydro- lizuja zawarte w grzybni bialka do peptydów i wolnych aminokwasów. Tak uzyskany autolizat stosuje sie jako skladnik pozywki, zastepujacy inne substancje bialkowe (jak np. make sojowa) w ho¬ dowli szczepów wytwarzajacych antybiotyki, Auto¬ lizat dodaje sie w postaci plynnej zawiesiny, badz po wysuszeniu w postaci sproszkowanej. W tym celu grzybnie odpadowa zawiesza sie w takiej ilos¬ ci wody, aby uzyskac plynna mase, korzystnie w stosunku 100 g grzybni w 200 ml wody, po czyro pH doprowadza sie do wartosci 7—11, korzystnie okolo 10, przy uzyciu np. roztworu wodorotlenku sodowego.Zawisine grzybni poddaje sie rozbiciu ultra¬ dzwiekami badz w homogenizatorze mechanicznym w celu uwolnienia zawartych w grzybni bialek, aminokwasów i enzymów hydrolitycznych. Rozbi¬ cie duzych ilosci grzybni w skali technicznej mo¬ zna przeprowadzic przy uzyciu homogenizatora me¬ chanicznego pracujacego w sposób ciagly, np. za pomoca homogenizatora Dyno-Muhle KD5 firmy Willy A. Bachofen, Bazylea, Szwajcaria, lub cisnie¬ niowego, np. za pomoca homogenizatora firmy Manton-Gaulin 15 M 8TBA.Zhomogenizowana zawiesine rozbitej grzybni po¬ zostawia sie w temperaturze 20—50°C, korzystnie w temperaturze 30—35°C, przy umiarkowanym mieszaniu na okres 3—20 godzin w celu przepro- Vvradzenia enzymatycznej hydrolizy zawartych w homogenacie bialek do zwiazków prostszych.W tablicy 2 przedstawiono przyrost stezenia aminokwasów w czasie autolizy rozbitych grzybni róznych szczepów promieniowców.Tablica 2 Szczep S. erythreus S. linkonensis S. vinaceus S. griseus Aminokwasy w mg/ml grzybnia przed autoliza 3,04 3,00 2,35 0,17 ,00 grzybnia po autolizie 6,70 29,2 2,r5 2,46 ,70 Autolizat grzybni po inkubacji moze byc prze¬ chowywany w postaci plynnej z dodatkiem srodka konserwujacego, badz tez moze byc wysuszony w suszarce rozpylowej.Autolizaty stosuje sie do przygotowania podlóz do hodowli szczepów wytwarzajacych antybiotyki, zastepujac nimi czesciowo lub calkowicie takie skladniki, jak maka sojowa, maka arachidowa i inne. Homogenaty przygotowane z grzybni sa¬ czonych z uzyciem ziemi okrzemkowej sa w pelni przydatne jako dodatki do podlóz.Enzymy proteolityczne zawarte w rozbitej grzy¬ bni w postaci homogenatu stosuje sie równiez do 40 45 50 55 605 97 491 6 trawienia innych bialek, np. zawartych w mace sojowej, mace arachidowej, mace rzepakowej, ma¬ ce grochowej i innych. W róznego rodzaju makach poddanych trawieniu, wskutek dzialania enzymów proteolitycznych uwalniaja sie peptydy i wolne aminokwasy, jak równiez wskutek dzialania enzy¬ mów amylolitycznych wzrasta ilosc wolnych cu- krów, zwiekszajac w ten sposób przyswajalnosc podlóz przez rózne drobnoustroje. Wsród wolnych aminokwasów uwalniajacych sie z maki pod wply¬ wem enzymów proteolitycznych stwierdzono wy¬ stepowanie znacznej ilosci metioniny. Aminokwas ten odgrywa duza role zarówno przy biosyntezie erytromycyny, gdzie dostarcza grup metylowjich w reakcji przeksztalcania erytromycyny C do ery¬ tromycyny A, jak równiez w biosyntezie L-lizyny, gdzie odgrywa duza role regulatora procesu.W tablicy 3 przedstawiono przyrost wolnych aminokwasów, w szczególnosci metioniny, oraz prostych cukrów, uwalniajacych^ sie pod wplywem dzialania enzymów proteolitycznych i amylolitycz¬ nych, zawartych w homogenacie rozbitej grzybni Streptomyces erythreus, na poszczególne rodzaje mak trawionych.Tablica 3 Rodzaj maki Maka sojowa Maka rzepakowa Maka owsiana Maka arachidowa j Maka grochowa Aminokwasy w mg/ml maka nie- trawiona 0,88 0,60 0,0 0,59 0,94 maka po autolizie 21,0. 24,0 9,1 19,8 16,0 Metionina maka nie- trawiona 2 — — 46 — w mg/ml maka po autolizie . 150 - — 92 — Cukry w mg/ml | maka nie- trawiona 4,4 2,9 2,3 2,3 ,5 maka po autolizie 8,6 9,6 7,9 | ,6 9,6 Do proteolizy maki moga byc uzyte proteazy, zawarte w róznych gatunkach promieniowców, jak równiez proteazy z Bacillus subtilis, które znajdu¬ ja sie w handlu pod róznymi nazwami, jak np. maksatasa, subtilizyna. Jednakze najlepsze wyniki proteolizy uzyskuje sie stosujac rozbita grzybnie S. erythreus, co ilustruja wyniki przedstawione w tablicy 4.Tablica 4 Preparat enzymatyczny Homogenat grzybni S. erythreus Homogenat grzybni S. linkolnensis Homogenat grzybni S. vinaceus Homogenat grzybni • S. griseus Proteaza izolowana z B. subtilis 1000 j/ml Aminokwasy ogólem w mg/ml maka nie- trawiona 0,88 0,88 0,88 0,88 0,88 maka po proteolizie 21,00 12,50 8,92 ¦ 7,30 ¦ 6,85 Hydrolize maki przy uzyciu enzymów proteoli¬ tycznych, zawartych w rozbitej grzybni, przepro¬ wadza sie w ten sposób, ze sporzadza sie 10% za¬ wiesine odpowiedniej maki w swiezo przygotowa¬ nym homogenacie z grzybni promieniowca, np. S. erythreus, dodaje sie srodka konserwujacego, np. toluen w ilosci 0,1—0,5%, i inkubuje w tempera¬ turze 32°C w ciagu 3—20 godzin mieszajac.Poniewaz homogenat rozbitej grzybni zawiera antybiotyk pozostaly w grzybni, po dodaniu do pod- 40 45 loza moze on hamowac rozwój drobnoustroju, gdy hodowle prowadzi sie z uzyciem szczepu wrazli¬ wego na dany antybiotyk. W tym przypadku anty- biotyk, zawarty w autolizacie, neutralizuje sie zna¬ nymi metodami, np. erytromycyne rozklada sie przez hydrolize kwasna, dodajac do mieszaniny po zakonczeniu inkubacji kwas solny dó stezenia IN i ogrzewajac w temperaturze wrzenia w ciagu 1 godziny pod chlodnica zwrotna, a nastepnie mie¬ szanine oziebia i neutralizuje np. wodorotlenkiem sodowym, potasowym lub amonowym.Obecnosc antybiotyku w autolizacie moze nie wywierac efektu hamujacego, gdy w hodowli sto¬ suje sie szczep niewrazliwy na dzialanie okreslone¬ go antybiotyku, badz moze byc korzystna z uwagi na ochronne dzialanie antybiotyku, zapobiegajace zakazeniu obcymi drobnoustrojami. W przypadku hodowli szczepu S. erythreus na podlozu, zawiera¬ jacym autolizat, obecnosc antybiotyku nie przesz¬ kadza w rozwoju drobnoustroju wytwarzajacego erytromycyne.W podobny sposób przeprowadza sie hydrolize maki przy uzyciu surowego preparatu enzymatycz- 50 nego, wydzielonego z homogenatu grzybni. Prepa¬ rat ten otrzymuje sie w ten sposób, ze odmyta grzybnie promieniowca np. S. erythreus, rozbija sie wedlug metody, stosowanej do sporzadzenia homogenatu. Otrzymany homogenat odwirowuje 55 sie przy sile wirowania 23 000 X g i czesci stale odrzuca. Do roztworu po odwirowaniu dodaje sie techniczny siarczan amonowy dó'-stezenia 60%, po¬ zostawia na kilka godzin i wydzielony osad odwi¬ rowuje. Osad ten wysuszony w suszarce próznio¬ wo wej w temperaturze 40—50°C lub w suszarce roz- pylowej stanowi surowy preparat enzymatyczny.W celu przeprowadzenia hydrolizy enzymatycznej sporzadza sie 1 do 20%, korzystnie okolo 10%,'za¬ wiesiny maki w wodzie i dodaje sie preparat enzy- 65 matyczny w takiej ilosci, aby uzyskac aktywnosc£7 491 s proteazowa od 10 do 1000 j/ml, korzystnie 100 do 500 j/ml. Nastepnie mieszanine inkubuje sie w tem¬ peraturze 30—40°C w sposób podany powyzej. Za jednostke przyjeto te ilosc enzymu, która powo¬ duje zmiane ekstynkcji równa 0,01 w okreslonych warunkach reakcji (enzyn inkubowany z 2°/o roz¬ tworu kazeiny przy wartosci pH = 11, w tempera¬ turze 40°C w ciagu 40 minut, odczyt: ekstynkcji przy 280nm).W tablicy 5 przedstawione sa wyniki hydrolizy maki sojowej przy uzyciu surowego preparatu enzymatycznego S. erythreus w zaleznosci od cza¬ su inkubacji.Tablica 5 Preparat" enzymatyczny Homogenat grzybni S. erythreus roztwór surowe¬ go preparatu enzymatycznego J z grzybni S. erythreus Stezenie proteazy w j/ml 400 8,3 33,0 66,0 Zawartosc amino- \ i kwasów w mg/ml przy czasie inku¬ bacji godziny 3 godziny 120 godzin| 18,0 1,0 3,64 ,88 29,3 0,94 2,24 1 ,00 1 Wyniki, przedstawione w tablicy 5, wskazuja na mozliwosc skrócenia czasu inkubacji w przypadku trawienia maki surowym preparatem enzymatycz¬ nym.Sposób wedlug wynalazku wyjasniaja nastepu¬ jace^przyklady: Przyklad I. Przygotowanie autolizatu grzy¬ bni S. erythreus oraz zawiesiny trawionej ' maki sojowej.Do 250 g odpadowej grzybni pofermentacyjnej S. erythreus dodano 500 ml wody, doprowadzono pH do wartosci 10,5 przy uzyciu 1 N NaOH i za¬ wiesine homogenizowano w homogenizatorze labo¬ ratoryjnym w ciagu 20 minut. Efektywnosc rozbi¬ cia obserwowano w mikroskopie, przy czym po¬ winny byc widoczne ziarnistosci z rozbitej grzybni Homogenat grzybni zawieral 465 j proteazy/ml.Homogenat stosowano do przygotowania autoliza¬ tu z grzybni, to jest preparatu, zawierajacego glównie peptydy i aminokwasy, uwolnione z bia¬ lek grzybni, oraz do przygotowania trawionej ma¬ ki sojowej, to jest preparatu, zawierajacego glów¬ nie peptydy i aminokwasy, uwolnione zarówno z bialek grzybni, jak i z bialek maki. a. Przygotowanie autolizatu grzybni Homogenat rozlano w ilosci 200 ml do kolb Erlen- mayera o pojemnosci 500 ml i inkubowano w temperaturze 32°C w ciagu 20 godzin lekko mie¬ szajac. Ilosc aminokwasów wzrasta w czasie inku¬ bacji z 3,04 mg/ml do 6,70 mg/ml, a ilosc wolnej metioniny z 21 mcg/ral do 64 mcg/ml. Autolizat poddano wysuszeniu w suszarce rozpylowej, lub pozostawiono w postaci zawiesiny plynnej. b. Przygotowanie trawionej maki sojowej Sporzadzono zawiesine maki sojowej w homoge- s nacie w ilosci 5 g maki w 100 ml homogenatu oraz inkubowano ja w warunkach podanych w pkt. a Po inkubacji ilosc aminokwasów wzrasta z 3,92 mg/ml do 21 mg/ml, a ilosc metioniny z 94 mcg/ml do 150 mcg/ml. Zawiesine trawionej maki sojowej io poddano ewentualnie wysuszeniu w suszarce roz¬ pylowej.Przyklad II. Przygotowanie preparatu tra- wionej maki sojowej przy uzyciu homogenatu grzy¬ bni S. erythreus Homogenat z grzybni S. erythreus, uzyskany we¬ dlug przykladu I, zawierajacy 337 j proteazy/ml, stosowano da przygotowania preparatu trawionej ma.ki sojowej, Zawiesine maki-w homogenacie w proporcji 10 g maki na 100 ml homogenatu inku- bowano, jak w przykladzie I. W celu usuniecia antybiotyku, pozostalego w grzybni S. erythreus, do zawiesiny do inkubacji dodano 4 N HC1 w ilosci °/o objetosciowych w stosunku do homogenatu i ogrzewano pod chlodnica zwrotna w ciagu 1 go- dziny. Oziebiona zawiesine zobojetniono przy po¬ mocy stalego NaOH, a nastepnie wysuszono w su¬ szarce rozpylowej. Z 1 g maki sojowej uzyskano 1,2 g preparatu trawionego. Porównanie ilosci ami¬ nokwasów w preparacie trawionym i nietrawio- nym podano w tablicy 6.Tablica 6 Preparat Maka sojowa nietrawiona Maka sojowa trawiona Aminokwasy ogólem w mg/g 8,0 91,5 W tym metio¬ nina w mg/g 0,08 1,47 Przyklad III. Przygotowanie preparatu tra¬ wionej maki rzepakowej przy uzyciu homogenatu grzybni S. erythreus Homogenat z grzybni S. erythreus, uzyskany spo¬ sobem, opisan37m w przykladzie I, zawierajacy 548 j proteazy/ml stosowano do przygotowania pre¬ paratu trawionej maki rzepakowej. Zawiesine 10°/o maki w homogenacie inkubowano w ciagu 20 go¬ dzin w warunkach, opisanych w przykladzie I.Antybiotyk pozostaly w grzybni usunieto sposo¬ bem, opisanym w przykladzie II. Preparat wysu¬ szono w suszarce rozpylowej. Z 1 g maki rzepako¬ wej uzyskano 1,2 g preparatu trawionego. Porów¬ nanie ilosci aminokwasów w preparacie trawio¬ nym i nietrawionym podano w tablicy 7.Tablica 7 Preparat Maka rzepakowa nietrawiona Maka rzepakowa trawiona Aminokwasy ogólem w mg/g ,6 72,0 W tym metio¬ nina w mg/g 0,81 1,109 97 491 Przyklad IV. Otrzymywanie surowego prepa¬ ratu enzymatycznego z homogenatu S. erythreus Homogenat grzybni S. erythreus, uzyskany spo¬ sobem wedlug przykladu I, wirowano przy sile wirowania 23000 X g w ciagu 30 minut, czesci stale odrzucono, a z supernatantu wysolono enzy¬ my przez wysycenie siarczanem amonowym do stezenia 60%. Wytracony surowy enzym odwiro¬ wano po 18 godzinach przy 23000 X g w ciagu 30 minut i wysuszono w suszarce w temperaturze okolo 50°C. Preparat zawiera 28000 j proteaz wig Przyklad V. Przygotowanie preparatu tra¬ wionej maki sojowej przy uzyciu surowego prepa¬ ratu enzymatycznego z grzybni S. erythreus.Preparat enzymatyczny, otrzymany sposobem we¬ dlug przykladu IV, stosowano do otrzymania pre¬ paratu trawionej maki sojowej, dodajac go w ilosci 100 j proteazy na 1 ml 10°/o zawiesiny maki sojo¬ wej w wodzie, oraz doprowadzajac pH do wartosci ,5 przy uzyciu IN NaOH. Zawiesine inkubowano w ciagu 3 godzin w warunkach, podanych w przy¬ kladzie I, a nastepnie wysuszono w suszarce rozpy- lowej.Porównanie ilosci aminokwasów w preparacie maki trawionej i nierawionej podano w tablicy 8 Tablica 8 Preparat Maka sojowa Maka sojowa trawiona Aminokwasy ogólem w mg/g | 8,0 58,8 Przyklad VI. Przyrost suchej masy S. eryth¬ reus i biosynteza antybiotyku na podlozu rozpusz¬ czalnym z dodatkiem autolizatu z grzybni S. eryth¬ reus.Do rozpuszczalnego plynnego podloza, zawiera¬ jacego ekstrakt z maki sojowej, o skladzie: 3% wyciagu z maki sojowej; 5% glukozy; 0,3% (NH4)2S04; 0,5% NaCl, 0,6% CaCOs; 1% propanolu, i wody wodociagowej do 100% dodano w postaci plynnej autolizat, otrzymany wedlug przykladu I w ilosciach 7,5%, 15% lub 30% w stosunku do objetosci pozywki, a nastepnie zaszczepiono po¬ dloze hodowla S. erythreus. W 120 godzinie ho¬ dowli zaobserwowano zwiekszenie suchej masy grzybni i zwiekszenie biosyntezy antybiotyku w porównaniu z podlozem kontrolnym nie zawiera¬ jacym autolizatu, co wynika z tablicy 9.T ablica 9 Po 120 godzinach hodowli bez dodatku autolizatu po dodaniu autolizatu w ilosci: 7,5% % % Przyrost suchej masy grzybni w mg/ml 9,93 11.73 12,94 Stezenie ery¬ tromycyny w brzeczce fermentacyjnej 1540 j/ml 2040 j/ml 2180 j/ml 2560 j/ml Przyklad' VII. Zastosowanie preparatów* enzymatycznych grzybni S. erythreus w podlozu do biosyntezy erytromycyny.W standardowej plynnej pozywce dla produkcji erytromycyny, opisanej w opisie patentowym nr 59792 o skladzie: 3% maki sojowej, 2% skrobi, 4% glukozy, 0,5% NaCl, 0,0% CaC03, 0,9% alkoholu n-propylowego i wody wodociagowej do 100%: a) zastapiono 25% maki sojowej wysuszonym auto- lizatem grzybni E. erythreus, przygotowanym wedlug przykladu I, b) zastapiono calkowicie make sojowa suszonym preparatem trawionej maki sojowej przygoto- wanej wedlug przykladu I; c) uzupelniono standardowa pozywke plynnym autolizatem grzybni, uzyskanym . wedlug przy¬ kladu I, dodajac go w ilosci 20% w stosunku objetosciowym do ilosci pozywki na poczatku i w 48 h hodowli..We wszystkich wymienionych przypadkach tak wzbogaconego podloza zaszczepiono je hodowla S. erythreus, oznaczajac w brzeczce zawartosc ery¬ tromycyny po 144 godzinach fermentacji. Wyniki porównano z fermentacja prowadzona na podlozu, nie zawierajacym w/w preparatów w tym samym czasie.Wyniki przedstawiono w tablicy 10: Tablica 10 Wprowadzona zmiana podloza a) Zastapienie 25% maki sojowej wysu- soszynym autoliza¬ tem grzybni S. erythreus b) Zastapienie calko¬ wite maki sojowej preparatem maki trawionej z grzybni S. erythreus c) Uzupelnienie podlo¬ za plynnym autoli¬ zatem grzybni S. erythreus w O h fermentacji w 48 h fermentacji Wydajnosc biosyntezy erytromycyny w mcg/ml brzeczki podloze kontrolne 3730 3600 2640 3800 podloze wzbogacone 4050 4400 3730 4360 55 PL

Claims (6)

  1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania antybiotyków, zwlaszcza erytromycyny, przez wykorzystanie odpadowej 60 grzybni promieniowców do hodowli drobnoustro¬ jów i fermentacje w warunkach konwencjonalnych, znamienny tym, ze jako skladnik pozywki stosuje sie produkt, otrzymany z zawiesiny wodnej odpa¬ dowej grzybni promieniowców, w szczególnosci 65 grzybni Streptomyces erythreus z biosyntezy ery-11 97 491 12 tromycyny, w stosunku wagowym 1—5 czesci wo¬ dy na 1 czesc grzybni, przez rozbicie komórek, ko¬ rzystnie za pomoca dezintegratora ultradzwieków oraz/lub homogenizatora, inkubacje otrzymanego homogenatu w temperaturze 20—50°C, korzystnie w temperaturze 30—35CC, przy wartosci pH = 7—11, korzystnie przy wartosci pH okolo 10, i nastepne pozbawienie otrzymanego autolizatu reszty anty¬ biotyku oraz/lub suszenie, który to produkt doda¬ je do podloza do hodowli drobnoustrojów, zaste¬ pujac w czesci lub calkowicie make sojowa, rze¬ pakowa lub inna, stosowana zwykle jako skladnik pozywek w stosunku wagowym 5—100% w przeli¬ czeniu na sucha mase.
  2. 2. Sposób wytwarzania antybiotyków, zwlaszcza erytromycyny, przez wykorzystanie odpadowej grzybni promieniowców do hodowli drobnoustro¬ jów i fermentacji w warunkach konwencjonalnych, znamienny tym, ze jako skladnik pozywki stosuje sie produkt, otrzymany z zawiesiny wodnej odpa¬ dowej grzybni promieniowców, w szczególnosci grzybni Stroptomyces erythreus z biosyntezy ery¬ tromycyny, w stosunku wagowym 1—5 czesci wo¬ dy na 1 czesc grzybni, przez rozbicie komórek, ko¬ rzystnie za pomoca dezintegratora ultradzwieków oraz/lub homogenizatora, oddzielenie z otrzyma¬ nego homogenizatu czesci stalych, wysolenie enzy¬ mów i wyodrebnienie surowego preparatu "enzy¬ matycznego, ewentualne wysuszenie go, dodanie do zawiesiny wodnej maki sojowej, rzepakowej lub innej stosowanej zwykle jako skladnik pozywki, inkubacje mieszaniny w temperaturze 20—50°C, korzystnie w temperaturze 30—35°C, przy war¬ tosci pH 7—11, korzystnie przy wartosci pH okolo 10, nastepne pozbawienie otrzymanej trawionej ma¬ ki reszty antybiotyku oraz/lub suszenie, który to produkt dodaje sie do podloza do hodowli dro¬ bnoustrojów, zastepujac w czesci lub calkowicie make sojowa, rzepakowa lub inna w stosunku wa¬ gowym 5—100% w przeliczeniu na sucha mase.
  3. 3. Sposób wedlug zastrz. 2, znamienny tym, ze wysolenie enzymów prowadzi sie korzystnie przez 5 dodawanie stalego siarczanu amonowego do steze¬ nia okolo 60%.
  4. 4. Sposób wedlug zastrz. 2, znamienny tym, ze stosuje sie preparat enzymatyczny w ilosci 10—1000 j proteazy, korzystnie 100—500 j proteazy, na 1 ml 1—20% zawiesiny maki w wodzie, korzystnie oko¬ lo 10% zawiesiny maki w wodzie.
  5. 5. Sposób wytwarzania antybiotyków, zwlaszcza erytromycyny, przez wykorzystanie odpadowej grzybni promieniowców do hodowli drobnoustro¬ jów i fermentacje w warunkach konwencjonalnych, znamienny tym, ze jako skladnik pozywki stosuje sie produkt, otrzymany z zawiesiny wodnej odpa¬ dowej grzybni promieniowców, w szczególnosci grzybni Streptomyces erythreus z biosyntezy ery¬ tromycyny, w stosunku wagowym 1—5 czesci wo¬ dy na 1 czesc grzybni, przez rozbicie komórek, ko¬ rzystnie za pomoca dezintegratora ultradzwieków oraz/lub homogenizatora, dodanie otrzymanego ho¬ mogenatu do maki sojowej, rzepakowej lub innej, stosowanej zwykle jako skladnik pozywki, inku¬ bacje mieszaniny w temperaturze 20—50°C, korzyst¬ nie w temperaturze 30—35°C, przy wartosci pH = 7—11, korzystnie przy wartosci pH okolo 10, nastepne pozbawienie otrzymanej trawionej maki reszty antybiotyku oraz/lub suszenie, który to pro¬ dukt dodaje sie do podloza do hodowli drobno¬ ustrojów, zastepujac w czesci lub calkowicie make sojowa, rzepakowa lub inna w stosunku wagowym 5—100% w przeliczeniu na sucha mase.
  6. 6. Sposób wedlug zastrz. 5, znamienny tym, ze stosuje sie 1—20% zawiesine maki w homogenacie; korzystnie okolo 10% zawiesine maki w homoge- nacle. 25 30 OZGraf. Zam. 828 naklad 110+17 egz. Cena 45 zl PL
PL18151075A 1975-06-23 1975-06-23 Sposob wytwarzania antybiotykow,zwlaszcza erytromycyny PL97491B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL18151075A PL97491B1 (pl) 1975-06-23 1975-06-23 Sposob wytwarzania antybiotykow,zwlaszcza erytromycyny

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL18151075A PL97491B1 (pl) 1975-06-23 1975-06-23 Sposob wytwarzania antybiotykow,zwlaszcza erytromycyny

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL97491B1 true PL97491B1 (pl) 1978-02-28

Family

ID=19972680

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL18151075A PL97491B1 (pl) 1975-06-23 1975-06-23 Sposob wytwarzania antybiotykow,zwlaszcza erytromycyny

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL97491B1 (pl)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Letourneau et al. Keratinolytic activity of Streptomyces sp. S. K1–02: a new isolated strain
Naidu et al. Optimization of thermostable alkaline protease production from species of Bacillus using rice bran
Sandhya et al. Comparative evaluation of neutral protease production by Aspergillus oryzae in submerged and solid-state fermentation
Varalakshmi et al. Production and Characterization of a-Amylase from Aspergillus niger JGI 24 Isolated in Bangalore
Sangali et al. Isolation and characterization of a novel feather-degrading bacterial strain
Kim et al. Feather-degrading Bacillus species from poultry waste
Gote et al. Thermostable α-galactosidase from Bacillus stearothermophilus (NCIM 5146) and its application in the removal of flatulence causing factors from soymilk
De Azeredo et al. A low-cost fermentation medium for thermophilic protease production by Streptomyces sp. 594 using feather meal and corn steep liquor
Kotwal et al. Production of α-galactosidase by thermophilic fungus Humicola sp. in solid-state fermentation and its application in soyamilk hydrolysis
JPH01502079A (ja) 新規プロテアーゼ
Murao et al. Isolation of amylase inhibitor-producing microorganism
Lakshmi et al. Media optimization of protease production by Bacillus licheniformis and partial characterization of Alkaline protease
Korkmaz et al. Characterization of alkaline keratinase of Bacillus licheniformis strain HK-1 from poultry waste
Ionata et al. A novel keratinase from Clostridium sporogenes bv. pennavorans bv. nov., a thermotolerant organism isolated from solfataric muds
SU1190992A3 (ru) Способ получени 2,5-дикето- @ -глюконовой кислоты
Suzuki et al. Studies on the decomposition of raffinose by α-galactosidase of mold: Part I. α-galactosidase formation and hydrolysis of raffinose by the enzyme preparation
CH639695A5 (it) Procedimento enzimatico-microbiologico per la produzione di amminoacidi otticamente attivi a partire da idantoine e/o carbamil-derivati racemi.
Elgammal et al. Enhanced production, partial purification, and characterization of alkaline thermophilic protease from the endophytic fungus BT21
Sindhu et al. Optimization of process parameters for the production of alkaline protease from Penicillium godlewskii SBSS 25 and its application in detergent industry
Bhosale et al. Optimization of lipase production by thermo-alkalophilic Bacillus sp. 8C
Hashimoto et al. Thermostable acid protease produced by Penicillium duponti K1014, a true thermophilic fungus newly isolated from compost
Singh Characterization of an extracellular keratinase of Trichophyton simii and its role in keratin degradation
Bhushan et al. Lipase production from an alkalophilic yeast sp. by solid state fermentation
Basu et al. Production and characterization of extracellular protease of mutant Aspergillus niger AB100 grown on fish scale
Anisha et al. Production and characterization of partially purified thermostable α-galactosidases from Streptomyces griseoloalbus for food industrial applications