PL88864B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL88864B1
PL88864B1 PL1968130094A PL13009468A PL88864B1 PL 88864 B1 PL88864 B1 PL 88864B1 PL 1968130094 A PL1968130094 A PL 1968130094A PL 13009468 A PL13009468 A PL 13009468A PL 88864 B1 PL88864 B1 PL 88864B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
cells
virus
live
suspension
spleen
Prior art date
Application number
PL1968130094A
Other languages
English (en)
Original Assignee
Farbenfabriken Bayer A G
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Farbenfabriken Bayer A G filed Critical Farbenfabriken Bayer A G
Publication of PL88864B1 publication Critical patent/PL88864B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/187Hog cholera virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5254Virus avirulent or attenuated
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/55Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the host/recipient, e.g. newborn with maternal antibodies
    • A61K2039/552Veterinary vaccine
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/24011Flaviviridae
    • C12N2770/24311Pestivirus, e.g. bovine viral diarrhea virus
    • C12N2770/24334Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia szczepionki przeciwko pomorowi swin, zawie¬ rajacej zywy wirus.Stosowanie srodków immunizujacych przeciwko pomorowi swin na bazie zywego wirusa, oslabio¬ nego pasazami przez króliki, znane jest z publi¬ kacji W. H. Hagen i D. W. Brunner „The In- fectious Diseases otf Domestic Aininnals", III Wy¬ danie (1957) strona 829, Comstock Publ. Ass, Ithaca N.Y. Znane srodki immunizujace skladaja sie z krwi i wyciagów z narzadów królików, zakazonych wirusem pomoru swin, przy czym wirus w za¬ leznosci od szczepu poddaje sie zmiennej ilosci pa¬ sazy. Od roku 1947, kiedy J. A. Baker, Jour. Am.Vet. Med. Ass. (1947) 3, strona 503 uzyskal przy¬ stosowanie wirusa do królików, wytworzono sze¬ reg szczepionek tego typu. Chociaz wirus, osla¬ biony pasazowaniem przez króliki, nie jest pato- genny w stosunku do mlodych i doroslych swin, J. H. Sauter, G. A. Young, A. J. Luedke i R. L.Kitchell, Proc. 90th Ann. Meeting, Am. Vet. Med.Ass. (1953), strona 147, podali, ze moze on infeko¬ wac plód, co wywoluje obrzek, puchline brzuszna i wrodzone znieksztalcenie. Zmiany te zostaly opi¬ sane takze przez autorów hiszpanskich (M. Coride- ro i A. Sanches Franco, Anales de la Facultad de VetaTinaria de Leon, strony 183—194 (1956); M. Cordero, Memoria de la Estación Pecuaria Re- gional de Leon (1956). Fakty te oraz trudnosci z uzyskaniem krwi królików zwrócily uwage przy wytwarzaniu szczepionek przeciwko pomorowi 39 swin na nowoczesne metody kultury komórkowej.W zwiazku ze scislym powinowactwem wirusa pomoru swin do swin i spokrewnionych gatunków pierwsze kultury komórkowe, zastosowane do pro¬ dukcji szczepionek przeciwko tej chorobie, byly kulturami komórkowymi rozmaitych narzadów swin (W. A. Hagen i D. W. Brunner „The Infec- tious Diseases of Domestic Animals, III-cie wy¬ danie (1057), strony 829—830, Comstock Publ. Ass.Ithaca N.Y.).W ostatnim czasie, jak podano przez R. Lang, E. Lefteriotis, E. i C. Mackowiak, C.R.hebd.Seanc.Acad. Sci. Paryz, 253 (1960) strona 1593, udalo sie wyhodowac zmodyfikowany wirus pomoru swin w kulturach komórek nerkowych królika w ilosci, wystarczajacej do produkcji szczepionek. Szcze¬ pionki, otrzymane zarówno na kulturach komórko¬ wych swin, jak tez na kulturach komórkowych królika, maja rózne wady. Moga one przenosic in¬ ne choroby swin, wywolane wirusem, rózne od pomoru swin, np. afrykanski pomór itd., lub wy¬ kazuja takie same wady, jak szczepionki, uzyska¬ ne przez pasazowanie.Szczepionka wedlug wynalazku nie wykazuje wyzej podanych wad, odznaczajac sie zaletami do¬ skonalej szczepionki. Jest ona wytwarzana przy stosowaniu komórek zwierzat przezuwajacych, co zapobiega przenoszeniu jakiegokolwiek specyficz¬ nego wirusa swini. Podatnosc komórek zwierzat przezuwajacych na zmodyfikowany wirus pomoru swin jest wystarczajaca, aby uzyskac stezenie wi- 88 8643 rusa, potrzebne do otrzymania szczepionki o wyz¬ szej zdolnosci immunizacyjnej, niz wiekszosc sto¬ sowanych dotychczas szczepionek.Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia szczepionki do uodporniania swin przeciwko pomorowi swin, w którym inokulum szczepu spe¬ cjalnie modyfikowanego i adoptowanego wirusa klasycznej dzumy swinskiej wprowadza sie do za¬ wiesiny zywych komórek w srodowisku odzyw¬ czym, nastepnie zaszczepiona kulture komórek, rozmnaza sie w temperaturze 35—37,5°C do uzy¬ skania ustalonej pozadanej liczby obumarlych ko¬ mórek {to jest do okolo 90%, moment ten ustala si£ %przez( zabarwienie barwnikami witalnymi) po czyni naczynia szklane, zawierajace hodowle wyj- irfuje sie z cieplarki i zawartosc zamraza do tem¬ peratury.*^40°£? potem odmraza i miesza z roz¬ tworem* stabilizatora,; standaryzuje, liofilizuje i do¬ prowadza" do uzycia', polegajacy na tym, ze jako zywe komórki stosuje sie zywe komórki przezu¬ waczy.W sposobie tym jako zywe komórki przezuwa¬ czy stosuje sie komórki sledziony koziej, komórki kostne owcy lub komórki sledziony plodu bydle¬ cego. Skutecznosc szarzy produkcyjnej na szeregu swin zdrowych i podatnych na pomór, ustala sie na próbce hodowli. Badanie na skutecznosc pole¬ ga na oznaczeniu zawartosci ogólnej antygenów lub ustaleniu dawki smiertelnej (LD50). W pierw¬ szej próbie przyjmuje sie jako jednostke miary minimalna dawke ochronna (UMP). Minimalna dawke ochronna (UMP) stanowi najmniejsza ilosc wirusa szczepionki, która chroni wszystkie szcze¬ pione nia swinie przeciw zakazeniu próbnemu 100 000 jednostkami minimalnej dawki smiertelnej wiruletnego wirusa pomoru swin. Tym sposobem oznacza sie stezenie wirusa w kazdej szarzy pro¬ dukcyjnej. Po tym badaniu ciecz zawierajaca wi¬ rus odtaja sie i saczy w celu usuniecia resztek komórek. Na podstawie oznaczenia ogólnej zawar¬ tosci antygenu zestawia sie partie szczepionki przez zmieszanie zawiesiny wirusa z roztworem stabilizatora, otrzymujac mieszanine o jednako¬ wym zawsze stezeniu wirusa.Stwierdzono, ze idealna dawka jednostkowa do szczepien jest dawka, zawierajaca 800 U.M.P. Tak wytworzona mieszanina, to jest roztwór kultury komórkowej, zawierajacej wirus, zmieszany w od¬ powiednim stosunku ilosciowym z roztworem sta¬ bilizatora, stanowi po liofilizacji nowa szczepionke przeciwko pomorowi swin.Przyklad I. Wirus klasycznej dzumy swin¬ skiej (KSP), wysuszony w znany sposób (J. A. Ba¬ ker. J. Am. Vet. Med. Ass. 3.503 <1i947), wprowadza sie w postaci wyciagu sledzion i chlonek zwojów nerwowych zakazonych królików w stosunku obje¬ tosciowym 1 zawiesiny wirusowej do 20 objetosci zawiesimy komórkowej komórek sledziony kozy, miesza sie i wylega w temperaturze 37°C. Codzien¬ nie bada sie ilosc przezycia komórek w próbach poprzez zabarwienie barwnikiem zywotnym, a po obumarciu ©0% komórek, przewaznie w 5-tym dniu, przerywa sie rozmnazanie i zawiesine zamraza sie w temperaturze —40°C. 864 4 Zawiesine komórkowa wytwarza sie poprzez wy¬ jecie w warunkach sterylnych sledziony swiezo ubitej kozy, rozdrabnia sie ten organ poprzez po¬ ciecie na male kawaleczki o srednicy mniej wie- cej 2—3 mm i przez wylugowywanie na cieplo tych kawaleczków w roztworze 0,2% trypsyny w temperaturze 37°C, przy tym komórki z tych ka¬ waleczków zostaja wprowadzone do zawiesiny. Po zakonczeniu traktowania trypsyna oddziela sie ko- 0 morki na drodze odwirowywania od roztworu trypsyny i zawiesza sie je tak w roztworze po¬ zywkowym Parkera 199, zawierajacym 5% suro¬ wicy konskiej, ze 1 ml zawiesiny zawiera 3,108 komórek. W odmrozonej próbce okresla sie za- wartosc antygenów. Otrzymuje sie 2.106 U.MJP. na ml roztworu. Rozmrozony roztwór wirusowy roz¬ ciencza sie roztworem stabilizatora, zawierajacym 2% cukru trzcinowego, w taki sposób, ze w 3 ml roztworu (odpowiadajacym 25 dawkom szczepie- 0 nia) zawartych jest 20.000 U.M.P. Mieszanina na¬ pelnia sie buteleczki, kazda po 3 ml, zamraza sie natychmiast i liofilizuje. Butelki zamyka sie w prózni. Tak otrzymana szczepionke rozpuszcza sie przed uzyciem w 50 ml wody sterylnej i szczepi £ sie nia po 2 ml na 1 swinie.Przyklad II. Ze swiezo ubitej owcy wyjmu¬ je sie w warunkach sterylnych dlugie kosci, jak np. kosc lydkowa, kosc udowa i piszczel, rozlu¬ puje sie je, wydrapuje sie bialy szpik kostny i } zawiesza sie go w zawiesinie pozywkowej Parke¬ ra 199 w 10% surowicy konskiej tak, ze w 1 ml zawiesiny zawartych jest 1.108 komórek. Zawie¬ sine rozlewa sie do naczyn kultury komórkowej i wylega sie w temperaturze 37°C, az komórki zakleszcza sie na powierzchni szklanej i poprzez przemycie utworza calkowita lake komórkowa, co ma miejsce po 6 dniach. Nastepnie zastepuje sie srodowisko pozywkowe srodowiskiem, zawieraja¬ cym pozywke Parkera 199 z 5% surowicy kon- 0 skiej. Dodaje sie do tego 5% objetosci zawiesiny wirusowej (patrz przyklad I). Kultury wylega sie w ciagu dalszych 5 dni w temperaturze 37°C, przy czym wirus rozmnaza sie w komórkach, po czym zostaje zamrozony w temperaturze —40°C i ustala sie w rozmrozonej próbce zawartosc U.M.P. Znajduje sie go do 1.2.108 U.M.P. na 1 ml.Dalsza przeróbke prowadzi sie tak samo, jak w przykladzie I. 0 Przyklad III. 5-letni plód, uzyskany przy ubiciu ciezarnej krowy, zostaje w warunkach ste¬ rylnych otwarty i wyjmuje sie zen nerki i sle¬ dzione. Organy rozdrabnia sie tak, jak opisano w przekladzie I i uzyskuje sie z nich przez trakCo- . wanie trypsyna zawiesine komórkowa, która roz¬ ciencza sie w srodowisku Parkera 199 z dodaniem % surowicy konskiej w taki sposób, ze 1 ml zawiesiny zawiera 1.106 komórek. Zawiesine roz¬ dziela sie do naczyn kultury komórkowej i wylega , sie w temperaturze 37°C, az utworzy sie po 6 dniach zamknieta laka komórkowa. Dalsze trak¬ towanie w sposób, jak opisano w przykladzie II.Otrzymuje sie roztwór' wirusowy, który zawiera ly8.106 U.M.P. na 1 ml i który przerabia sie dalej . analogicznie, jak opisano w przykladzie I,5 8IM4 6 PL PL PL PL PL PL PL

Claims (2)

1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania szczepionki przeciwko pomorowi swin, zawierajacej zywy wirus, pole¬ gajacy na wprowadzeniu inokulum oslabionego wirusa klasycznej dzumy swinskiej do zawiesiny zywych komórek w srodowisku odzywczym, roz¬ mnazaniu w temperaturze 35—37,5°C prowadzo¬ nym tak dlugo, az obumrze do okolo 90% zywych komórek, nastepnie zamrozeniu otrzymanej za¬ wiesiny wirusowej w temperaturze —40°C, jej odmrozeniu i zmieszaniu z roztworem stabilizato¬ ra, standaryzowaniu, liofilizowaniu i doprowadze¬ niu do uzycia, znamienny tym, ze jako zywe ko- i morki stosuje sie zywe komórki przezuwaczy.
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako zywe komórki przezuwaczy stosuje sie ko¬ mórki sledziony koziej, komórki kostne owcy lub komórki sledziony plodu bydlecego. PL PL PL PL PL PL PL
PL1968130094A 1967-11-17 1968-11-16 PL88864B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ES347294A ES347294A1 (es) 1967-11-17 1967-11-17 Procedimiento de produccion de una vacuna atenuada para in-munizar cerdos contra la peste porcina clasica.

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL88864B1 true PL88864B1 (pl) 1976-10-30

Family

ID=8446907

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1968130094A PL88864B1 (pl) 1967-11-17 1968-11-16

Country Status (6)

Country Link
BE (1) BE723868A (pl)
DE (1) DE1807448B2 (pl)
ES (1) ES347294A1 (pl)
FR (1) FR1593199A (pl)
NL (1) NL6816343A (pl)
PL (1) PL88864B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
FR1593199A (pl) 1970-05-25
BE723868A (pl) 1969-05-14
DE1807448B2 (de) 1980-03-06
ES347294A1 (es) 1968-01-16
NL6816343A (pl) 1969-05-20
DE1807448A1 (de) 1969-07-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Cole et al. Transmissibility and abortogenic effect of equine viral arteritis in mares
Williams et al. Kaeng Khoi virus from naturally infected bedbugs (cimicidae) and immature free-tailed bats
Rendel Further studies on some antigenic characters of sheep blood determined by epistatic action of genes
Rodriguez-Dorta et al. Effect of coculture with oviduct epithelial cells on viability after transfer of vitrified in vitro produced goat embryos
Rous et al. The fixation and protection of viruses by the cells of susceptible animals
McKercher et al. Serologic evidence of an etiologic role for bluetongue virus in hydranencephaly of calves
SU971108A3 (ru) Способ получени вакцины
Habel et al. Transplantation of polyoma virus induced tumor in the hamster
Slotved et al. Comparison of two methods for recovering migrating Ascaris suum larvae from the liver and lungs of pigs
Hare et al. Embryo transfer in relation to bovine leukemia virus control and eradication
Estepa et al. Infection of mitogen‐stimulated trout leucocytes with salmonid viruses
Thomas et al. Bluetongue virus:(1) in pregnant white-tailed deer (2) a plaque reduction neutralization test
Parsonson et al. The effects of bovine viral diarrhoea-mucosal disease (BVD) virus on the ovine foetus
US3479430A (en) Indirect passive immunization against transmissible gastroenteritis virus in nursing piglets at birth by active immunization of sows prior to farrowing with transmissible gastroenteritis vaccine and method of producing the same
Chung et al. Transplacental or congenital infection of leptospirosis: clinical and experimental observations
Cabasso et al. A bivalent live virus vaccine against canine distemper (CD) and infectious canine hepatitis (ICH).
PL88864B1 (pl)
Tsuboi et al. Noncytopathogenic and cytopathogenic bovine viral diarrhea-mucosal disease viruses do not affect in vitro embryonic development into the blastocyst stage
Foster et al. Bluetongue virus transmission with Culicoides variipennis via embryonating chicken eggs
Parsonson et al. Experimental infection of bulls and cows with bluetongue virus serotype 20
Stewart et al. Mouse metrial gland cells do not kill Yac-1 myeloma cells
US3470294A (en) Vaccine for immunization of dogs and foxes against distemper,hepatitis contagiosa and leptospirosis and process for preparing it
Moreno‐López Cell‐Mediated Immunity to Parainfluenza‐3 (PIV‐3) in Cattle Evaluation of in vivo and in vitro tests
Roberts et al. Animal and animal product importation and the assessment of risk from bluetongue and other ruminant orbiviruses
US3098011A (en) Process of producing a vaccine against distemper