PL81994B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL81994B1
PL81994B1 PL15578472A PL15578472A PL81994B1 PL 81994 B1 PL81994 B1 PL 81994B1 PL 15578472 A PL15578472 A PL 15578472A PL 15578472 A PL15578472 A PL 15578472A PL 81994 B1 PL81994 B1 PL 81994B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
culture
microorganism
suspension
carried out
final product
Prior art date
Application number
PL15578472A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Priority to PL15578472A priority Critical patent/PL81994B1/pl
Publication of PL81994B1 publication Critical patent/PL81994B1/pl

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Uprawniony z patentu: Vsesojuzny Ordena Lenina Institut Experimentalnoi Veterinarii, Moskwa (Zwiazek Socjalistycznych Republik Radzieckich) Sposób wytwarzania srodka do profilaktyki trychofitozy roslego bydla rogatego Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia nowego srodka stosowanego do profilaktyki trychofitozy roslego bydla rogatego.Trychofitoza roslego bydla rogatego prowadzi do ogromnych strat ekonomicznych w wiekszosci kra¬ jów o rozwinietej przemyslowej hodowli bydla.Masowa infekcja mlodego roslego bydla rogatego prowadzi do dlugotrwalej choroby, do konieczno¬ sci zastosowania drogich, silnie dzialajacych srod¬ ków leczniczych, do zahamowania rozwoju mlo¬ dych, i do obnizenia przyrostu wagi. Zaklócone zostaja terminy sprzedazy przez gospodarstwa (fer¬ my) zwierzat rasowych, gwaltownie zmniejsza sie jakosc surowca garbarskiego. Ludnosc wiejska za¬ raza sie od chorych zwierzat.W literaturze brak jest danych o srodkach, za¬ pobiegajacych skutecznie tej chorobie.Sposób wytwarzania srodka do profilaktyki try¬ chofitozy roslego bydla rogatego wedlug wynalazku polega na tym, ze immunogenna kulture Trichp- hyton faviforme hoduje sie na stalej lub cieklej pozywce w temperaturze 26—28°C w ciagu 12—15 dni, az do optymalnego nagromadzenia mikroko- nidii wyzej wymienionej kultury, po czym biomase oddziela sie, homogenizuje az do uzyskania oddziel¬ nych komórek mikroorganizmu, a nastepnie wy¬ dziela produkt koncowy. Wydzielenie produktu kon¬ cowego prowadzi sie na drodze rozcienczenia otrzy¬ manej zawiesiny oddzielnych komórek mikroorga¬ nizmu za pomoca sterylnego roztworu fizjologiczne- 2 go do stezenia 6—9 milionów w 1 mililitrze. Ewen¬ tualnie wydzielenie produktu koncowego prowadzi sie na drodze liofilowego suszenia zawiesiny od¬ dzielnych komórek mikroorganizmu. 5 W sposobie wedlug wynalazku, dla zahamowa¬ nia wzrostu ubocznej mikroflory, do roztworu fi¬ zjologicznego dodaje sie penicyline i streptomycyne w ilosci 100 jednostek kazdego z antybiotyków na 1 ml roztworu. io Srodek, otrzymywany sposobem wedlug wynalaz¬ ku, stanowi ciecz koloru bialego lekko opalizuja¬ cego. Podczas przechowywania srodka powstaje osad, który latwo rozbija sie przy wstrzasaniu. Fla¬ kony, zawierajace nierozbijajacy sie osad, majace 15 uszkodzone zamkniecie, jak równiez odkryte, a nie wykorzystane w pelni w dniu immunizacji, nie nadaja sie do zastosowania i podlegaja unieszkod¬ liwieniu przez poddanie wrzeniu w ciagu jednej godziny. 20 Srodek przechowuje sie w temperaturze 4—8°C.Stosuje sie go profilaktycznie do immunizacji mlo¬ dych osobników roslego bydla rogatego i doroslych zwierzat w celu wytworzenia u nich niewrazli- wosci na zarazenie sie trychofitoza (grzybica strzy- 25 gaca).Srodek ten jest nieszkodliwy w zastosowaniu i nie powoduje jakichkolwiek ubocznych reakcji.Pod koniec miesiaca od momentu immunizacji u zaszczepionych zwierzat tworzy sie kierunkowa 30 odpornosc na rzeczywiste i doswiadczalne zaraze- 8199481994 5 tf Fermy tego rejonu zostaly uwolnione w pelni od grzybicy strzygacej. Nastepnie stosowano srodek w warunkach gospodarstw jednego okregu jedno¬ stki administracyjnej, gdzie corocznie rodzilo sie do 400 tysiecy sztuk cielat, a ilosc chorujacych na trychofitoze kazdego roku siegala 25—30 tysiecy sztuk cielat. Wydzielono okolo 5000 litrów srodka gospodarstwom tego okregu i z poczatkiem roku 1970 przystapiono do kolejnej immunizacji cielat jednomiesiecznych. Srodek wprowadzono domie¬ sniowo po 5 ml srodka dla kazdego cielecia dwu¬ krotnie z przerwa 10—14 dniowa. Pod koniec 1970 r. wszystkie fermy, posród których bylo wie¬ cej niz 660 zakazonych grzybica strzygaca, zostaly uwolnione od tej infekcji i z gospodarstw zostaly zdjete ograniczenia sprzedazy zarodowej, a wydat¬ ki na leczenie chorych na trychofitoze zostaly wy¬ eliminowane.Nizej podane przyklady ilustruja przedmiot wy¬ nalazku.Przyklad I. Przygotowanie 3—4 tysiecy dawek koncowego produktu. Posiew kultury, wytwarzanie i rozlew srodka prowadzi sie w boksach, z za¬ chowaniem regul scislej sterylnosci. Jako pozywke dla hodowania kultury grzyba Trichophyton favi- forme stosowano agar brzeczkowy (pH=6,4—6,8).W celu otrzymania materialu posiewowego 12—15 dniowa kulture grzyba, hodowana na aga¬ rze brzeczkowym w butlach Roux o objetosci 1,3—1,5 litra, przemywa sie 200 ml roztworu fizjo¬ logicznego. Otrzymana zawiesine posiewa sie w no¬ wych butlach Roux (po 5—7 ml). Po 4—5 dniach zauwaza sie wzrokowo wzrost kultury na agarze brzeczkowym. Z kazdej z 4 butli Roux zdejmuje sie mase grzybowa i umieszcza sie ja na wystery- lizowanych plytkach Petriego. Z plytek kulture przenosi sie za pomoca lopatki do homogenizatora o objetosci 1,5—2 litrów, zalewa sie 500—700 ml roztworu fizjologicznego, zakrywa sie korkiem i ho¬ mogenizuje w ciagu 15—20 minut. Po homogeni¬ zacji zawiesine kultury zlewa sie do kolby. Do 15 litrowej sterylnej toutli wlewa sie, przez dwu¬ warstwowy filtr z gazy, 5 litrów sterylnego roz¬ tworu fizjologicznego. Nastepnie przez sterylny trójwarstwowy filtr przesacza sie do tej samej butli zawiesine kulturowa, okresowo rozcienczajac ja roztworem fizjologicznym. W celu zapobiezenia za¬ nieczyszczen bakteryjnych dodaje sie antybiotyki takie, jak penicyline i streptomycyne w ilosci 100 jednostek kazdego antybiotyku na 1 ml srodka.Okreslenie gestosci masy grzybowej prowadzi sie wedlug optycznego wzorca zmetnienia. Zawiesine rozciencza sie roztworem fizjologicznym wedlug optycznego Wzorca zmetnienia az do stezenia 1—1,5 miliardów komórek na 1 ml sterylnego roztworu fizjologicznego, co odpowiada przy odczycie w ka¬ merze pomiarowej 6—9 milionów komórek w 1 ml zawiesiny. Srodek rozlewa sie do butelek i zakry¬ wa kolpaczkami. Z czterech butli Roux otrzymuje sie 3-^4 tysiace jednorazowych dawek (5 ml). Ba¬ danie na stwierdzenie braku utworzonej mikroflo¬ ry prowadzi sie na drotize wysiewu na pozywki z butli i wybiórczo z butelek.W celu wykrycia ubocznej flory bakteryjnej jako piozywki stosuje sie agar miesno-peptonowy, bulion miesno-peptonowy, pozywke Kitt-Tarozziego, a w celu wykrycia ubocznych plesniaków stosuje sie probówki z pozywka Capka i agarem brzeczko¬ wym. Okres badania wynosi 10 dni.Nieszkodliwosc srodka bada sie na drodze do¬ miesniowego wprowadzenia trzem królikom w da¬ wce 3 ml kazdemu (ciezar królika 2,5—3 kg). Srod¬ ki, w których stwierdzono zanieczyszczenia ubocz¬ na mikroflora odrzuca sie jako braki. Srodki, które powoduja zdechniecie jednego z trzech królików lub powiklania w miejscu wprowadzenia (wrzód), bada sie powtórnie na nieszkodliwosc, biorac do badania podwójna ilosc zwierzat i wysiewów na pozywkach. W przypadku zdechniecia jednego z królików lub stwierdzenia obecnosci ubocznej mikroflory, uwaza sie dany srodek za nie nadajacy sie do immunizacji. Równoczesnie z wprowadze¬ niem srodka królikom przeprowadza sie badanie aktywnosci. Jako kryterium oceny aktywnosci srod¬ ka przyjmuje sie tworzenie u królików w miejscu wprowadzenia srodka po 7—14 dniach ograniczo¬ nego gruzolka (6X6 mm), z nastepnym luszczeniem i szybkim gojeniem sie utworzonego ogniska.Przyklad II. Przygotowanie srodka liofilizo¬ wanego. Jako pozywke stosuje sie agar brzeczko- wy. Agar brzeczkowy sporzadza sie z nie- ochmielonej, uprzednio wysterylizowanej brzeczki piwnej, rozcienczajac ja czysta woda wodociago¬ wa do zawartosci 7% wagowych weglowoda¬ nów wedlug Balinga i doprowadzajac przy tym jej pH do 6,8—7,0, a nastepnie dodajac do niej 2% wagowych agar — agaru. Roztwór podgrzewa sie do rozpuszczenia agar — agaru, rozlewa sie po 300 ml w butle Roux (1,3—1,5) i sterylizuje sie w ciagu 30 minut pod cisnieniem 0,5 atm. Po ste¬ rylizacji pH agaru brzeczkowego wynosi 6,4—6,8.Otrzymywanie materialu posiewowego i wyjscio¬ wej kultury w butlach Roux prowadzi sie sposo¬ bem, opisanym w przykladzie I.W celu przygotowania 10 tysiecy dawek srodka liofilizowanego bierze sie 20—22 butli Roux z wy¬ hodowana immunogeniczna kultura. Wszystkie ope¬ racje przeprowadza sie w boksie w warunkach pelnej sterylnosci. Butle Roux z kultura odkrywa sie nad plonacymi palnikami spirytusowymi. Z po¬ wierzchni pozywki zdejmuje sie biomase i umiesz¬ cza na sterylnych plytkach Petriego. Nastepnie wprowadza sie do wysterylizowanego homogeniza¬ tora o pojemnosci 1,5 litra, biomase zebrana z Czte¬ rech butli Roux i tam równiez wlewa sie 500 ml sterylnego roztworu wodnego, zawierajacego 10% wagowych sacharozy i 2% wagowych zelatyny. Ho- mogenizator zakrywa sie pokrywka i sterylna bi¬ bula pergaminowa. W celu unikniecia zanieczysz¬ czenia (skazenia) caly proces zbierania biomasy i umieszczenia jej w homogenizatorze prowadzi sie przy zapalonym palniku spirytusowym. Homogeni- zator wlacza sie na 15—20 minut, w celu otrzy¬ mania zawiesiny odrebnych komórek mikroorga¬ nizmu. Shomogenizowana biomase grzybowa zlewa sie do kolby, doprowadzajac stezenie komórek roz¬ tworem sacharozo-zelatynowym do 120—140 milio¬ nów mikrokonidii w 1 ml, przy czym antybioty¬ ków nie dodaje sie.Przygotowana zawiesine rozlewa sie do . steryl- 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 6081 994 9 10 ze tkanki), prowadzi sie powtórne badanie na pod¬ wojonej liczbie zwierzat i próbe na obecnosc ubocz¬ nej mikroflory na drodze wysiewu z 5% butelek wypuszczonej serii. W przypadku zdechniecia jed¬ nego z królików lub stwierdzenia obecnosci ubocz¬ nej mikroflory, dana serie uwaza sie za nieprzy¬ datna do immunizacji. Przeznaczony do stosowania srodek przechowuje sie w chlodni w temperaturze +4°C h8°C. PL PL

Claims (4)

1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania srodka do profilaktyki trychofitozy roslego bydla rogatego, znamienny tym, ze immuinogenna kulture Trichophytan favifor- me hoduje sie na stalej lub cieklej pozywce w temperaturze 26—28°C w ciagu 12—15 dni, az do optymalnego nagromadzenia sie mikrokonidii wy¬ mienionej powyzej kultury, po czym biomase od¬ dziela sie i homogenizuje az do uzyskania oddziel¬ nych komórek mikroorganizmu, a nastepnie wy¬ dziela sie produkt koncowy. 5
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze wydzielenie koncowego produktu prowadzi sie na drodze rozcienczenia zawiesiny oddzielnych komó¬ rek mikroorganizmu sterylnym roztworem fizjolo¬ gicznym do stezenia 6—9 milionów w 1 ml.
3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze wydzielenie koncowego produktu prowadzi sie na drodze liofilowego suszenia zawiesiny oddzielnych komórek mikroorganizmu.
4. Sposób wedlug zastrz. 1 i 2, znamienny tym, ze dla zahamowania wzrostu ubocznej mikroflory do roztworu fizjologicznego dodaje sie penicyline i streptomycyne w ilosci 100 jednostek kazdego z antybiotyków na 1 ml roztworu. 10 15 PL PL
PL15578472A 1972-06-03 1972-06-03 PL81994B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL15578472A PL81994B1 (pl) 1972-06-03 1972-06-03

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL15578472A PL81994B1 (pl) 1972-06-03 1972-06-03

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL81994B1 true PL81994B1 (pl) 1975-10-31

Family

ID=19958812

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL15578472A PL81994B1 (pl) 1972-06-03 1972-06-03

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL81994B1 (pl)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hungate Studies on cellulose fermentation: III. The culture and isolation for cellulose-decomposing bacteria from the rumen of cattle
Kahn A developmental cycle of the tubercle bacillus as revealed by single-cell studies
Knaysi The endospore of bacteria
Carrel Tissue culture and cell physiology
Banks et al. Plaque formation by Chlamydia in L cells
CN101991611B (zh) 活性生物抗菌物及其生产方法
Muir Manual of bacteriology
McCraw Furunculosis of fish
CH504532A (de) Verfahren zur Züchtung pathogener Viren, Zellstamm zur Ausführung des Verfahrens und Anwendung des Verfahrens
Sawyer Jr Studies on the morphology and development of an insect-destroying fungus, Entomophthora sphaerosperma
Keller et al. Life cycle of a new annulate-spored species of Didymium
Dulaney et al. A Study of B. coli mutabile from an Outbreak of Diarrhea in the New-born
Baldwin et al. Tuberculosis, Bacteriology, Pathology and Laboratory Diagnosis: With Sections on Immunology, Epidemiology, Prophylaxis and Experimental Therapy
Rose et al. Resistance to American foulbrood in honey bees IX. Effects of honey-bee larval food on the growth and viability of Bacillus larvae
Warren Surgical pathology and therapeutics
Sternberg A text-book of bacteriology
PL81994B1 (pl)
Abbott The Principles of bacteriology
Wellings Pathogenic Naegleria: distribution in nature
Péros et al. In vitro culture of sugarcane infected with maize streak virus (MSV)
US3534136A (en) M.g. inoculum for poultry
Harrison Jr et al. Studies on the pathogenesis of infectious enterohepatitis (blackhead) of turkeys
Hewlett A Manual of bacteriology
Pringle et al. Notes on the morphology, susceptibility to Schistosoma haematobium and genetic relationships of Bulinus (Physopsis) globosus globosus and B.(P.) nasutus nasutus from north-eastern Tanzania
Glaser A bacterial disease of silkworms