PL68367B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL68367B1
PL68367B1 PL12533768A PL12533768A PL68367B1 PL 68367 B1 PL68367 B1 PL 68367B1 PL 12533768 A PL12533768 A PL 12533768A PL 12533768 A PL12533768 A PL 12533768A PL 68367 B1 PL68367 B1 PL 68367B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
leucine
leucinaminopeptidase
determined
determination
hydrazide
Prior art date
Application number
PL12533768A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Priority to PL12533768A priority Critical patent/PL68367B1/pl
Publication of PL68367B1 publication Critical patent/PL68367B1/pl

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Pierwszenstwo: 27.11.1967_JJiemiecka Republika Demokratyczna Opublikowano: 10.VI. 1973 68367 KI. 421,3/54 MKP GOln 33/16 [CZYTELNIA I UKD 1 Urzeck Palentcw«wo | Pfllskilj Il**" Wspóltwórcy wynalazku: Reinhard Haschen, Wolfgang Farr, Dieter Reichelt Wlasciciel patentu: VEB Arzneimittelwerk Dresden, Radebeul (Niemiecka Republika Demokratyczna) Sposób oznaczania enzymów 1 Wynalazek dotyczy nietody oznaczania enzymów zwla¬ szcza do ilosciowego, kolorymetrycznego oznaczania leucy¬ noaminopeptydazy w plazmie i surowicy krwi.Znane sa metody ilosciowego oznaczania aktywnosci en¬ zymatycznej leucynoaminopeptydazy. W metodach tych jako reagent charakterystyczny stosowany jest amid leucyny.Wolna leucyna, wywiazujac sie z amidu leucyny pod dziala¬ niem leucynoaminopeptydazy, moze byc ilosciowo ozna¬ czona poprzez ilosciowe oznaczenie grup karboksylowych wzglednie zasadowych na drodze miareczkowania.Wywiazujaca sie pod dzialaniem enzymu wolna leucyna moze równiez zostac oddzielona od amidu leucyny za pomoca chromatografii bibulowej i oznaczona droga bezpo¬ srednia, poprzez kolorymetryczne oznaczenie barwnika, two¬ rzacego sie w czasie reakcji leucyny z ninhydryna i po usta¬ bilizowaniu go jonami Cu++. Wywiazujacy sie z leucyno- amidu, pod dzialaniem enzymu, wolny amoniak moze zostac chemicznie zwiazany z kwasem ortoborowym i oznaczony poprzez miareczkowanie kwasem. Okreslony enzymem przyrost azotu amonowego mozna mierzyc za pomoca me¬ tody ninhydrynowej.Oprócz wymienionych metod istnieje wiele metod ozna¬ czania leucynoaminopeptydazy za pomoca reagentów chro- mogenowych. Wolna p-nitroanilina, wywiazujaca sie z p-ni- troanilidu leucyny pod dzialaniem leucynoaminopeptydazy, moze byc oznaczona bezposrednio fotometrycznie dzieki zóltemu zabarwieniu. Wolna 0-naftyloamina, wywiazujaca sie z 0-naftyloamidu leucyny pod dzialaniom leucynoaminopep¬ tydazy, moze byc oznaczona poprzez kolorymetryczne ozna¬ czenie barwnika, powstajacego w czasie reakcji 0-naftylo- aminy z sola dwuazoniowa.Te znane metody wykazuja jednak wiele wad. Obok dro¬ biazgowego i pracochlonnego toku postepowania jak i nie¬ dostatecznej czulosci, przykladowo w metodzie w której sto¬ sowany jest amid leucyny, metody te sa nieprzydatne do stosowania w systemie ciaglym. Ponadto metody wykry¬ wania, poslugujace sie reagentami chromogenowymi, wyka¬ zuja niedostateczna czulosc, poniewaz p-nitroanilid i 0-nafty- loamid, przewaznie albo wylacznie, hydrolizowane sa po¬ przez aryloamidaze kwasu aminokarboksylowego.Celem wynalazku jest opracowanie sposobu oznaczania leucynoaminopeptydazy, który z uwagi na czulosc wykry¬ wania jest przydatny w systemie ciaglym klinicznej diagno¬ styki marskosci watroby.Podstawowym zadaniem wynalazku jest znalezienie substratu, który bylby charakterystyczny dla leucynoaminopeptydazy i którego produkty rozkladu mozna by oznaczac w sposób latwy i szybki, przy zachowaniu duzej czulosci metody wykrywania.Stwierdzono, ze leucynoaminopeptydaza posiada zdol¬ nosc hydrolitycznego rozkladu hydrazydu L-leucyny na L-leucyne i hydrazyne równa, tak pod wzgledem sily jak i warunków, zdolnosci amidu L-leucyny bedacego znanym odczynnikiem charakterystycznym dla leucynoaminopep¬ tydazy.Sposób wedlug wynalazku polega na tym, ze badany ma¬ terial, w którym ma byc oznaczona leucynoaminopeptydaza, traktuje sie hydrazydem DL-leucyny, a odszczepiona na sku¬ tek hydrolitycznego dzialania leucynoaminopeptydazy hydrazyne kondensuje sie z aromatycznym aldehydem, 683673 68367 4 przede wszystkim p-dwumetyloaminobenzaldehydem, uzys¬ kujac zólty barwnik. Hydrolize hydrazydu DL-leucyny pod dzialaniem leucynoaminopeptydazy prowadzi sie, w zalez¬ nosci od warunków procesu inkubacji, w zakresie pH = 9,0-10,2. Równoczesnie ze sprzeganiem wolnej hydra¬ zyny, tworzacej sie z hydrazydu DL-leucyny pod dzialaniem leucynoaminopeptydazy, przykladowo z p-dwumetyloami¬ nobenzaldehydem, roztwór nastawia sie na pH ponizej 7 tak, ze z powstalego, na skutek kondensacji, zóltego barwnika tworzy sie pomaranczowozólta sól. Sól ta charakteryzuje sie wysokim molarnym wspólczynnikiem absorpcji tak, ze czu¬ losc wykrywania leucynoaminopeptydazy, w porównaniu z innymi znanymi metodami, jest znacznie wyzsza. Równo¬ czesnie z zakwaszeniem roztworu reakcja enzymatyczna zos¬ taje przerwana. Ekstynkcje leucynoaminopeptydazy, odpo¬ wiadajaca proporcjonalnym ilosciom barwnej soli, mierzy sie przy maksimum absorpcji odpowiadajacemu 455 milimi- kronom.Sposób wedlug wynalazku umozliwia szybkie ilosciowe oznaczenie zawartosci leucynoaminopeptydazy w surowicy i plazmie krwi. Ponadto sposób wedlug wynalazku ma w sto¬ sunku do innych znanych metod te zalete, ze jest bardzo charakterystyczny i wykazuje bardzo wysoka czulosc.Wynalazek wyjasniony jest blizej dwoma przykladami.Przyklad I. Metoda bez dodatkowej aktywacji. 0,5 ml buforowego roztworu substratu, skladajacego sie z 4 czesci 0,2 molarnego buforu monoetanoloaminy opH = 10,15 i 1 czesci 112 milimolarnego wodnego roz¬ tworu hydrazydu leucyny, termostatuje sie do temperatury 25°C i poddaje przez okreslony czas inkubacji za pomoca 0,2 ml surowicy lub roztworu enzymu (dla surowicy okres inkubacji wynosi 60 minut). Nastepnie dodaje sie 5 ml odczynnika wywolujacego zabarwienie, skladajacego sie z 1 czesci roztworu zawierajacego w 100 ml 96% etanolu lub metanolu 4 g p-N-N-dwumetyloaminobenzaldehydu i 17 cze¬ sci 0,1 normalnego kwasu solnego i po uplywie 30 minut, w czasie których wytwarza sie zabarwienie, oznacza sie eks¬ tynkcje osadów przy dlugosci fali wynoszacej 455 milimi- kronów w stosunku do odczynnika wywolujacego zabarwie¬ nie. Slepa próbe wykonuje sie w sposób analogiczny z ta tylko róznica, ze stosowany roztwór enzymu dodaje sie do- s piero po uprzednim dodaniu reagenta.Przyklad IL Metoda z aktywacja jonami Mg2+. 0,3 ml buforowego roztworu aktywatora, skladajacego sie z 5 czesci 0,25 molarnego buforu monoetanoloaminy opH = 9,25 ii czesci 40milimolarnego roztworu MgCla, io poddaje sie inkubacji wstepnej w temperaturze 25°C przez okres 2 godzin za pomoca 0,1 ml surowicy lub roztworu en¬ zymu. Nastepnie dodaje sie 0,1 ml 80 milimolarnego wod¬ nego roztworu hydrazydu leucyny i poddaje inkubacji przez okres 30 minut w temperaturze 25°C. Po dodaniu 4,5 ml i5 odczynnika powstaje zabarwienie. Pomiar wykonuje sie w analogiczny sposób jak to opisano w przykladzie I. Slepa próbe wykonuje sie analogicznie z ta tylko róznica, ze roz¬ twór enzymu dodaje sie po uprzednim dodaniu odczynnika wywolujacego zabarwienie. 20 PL PL

Claims (1)

1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób oznaczania enzymów, w szczególnosci iloscio¬ wego, kolorymetrycznego oznaczania leucynopminopepty- 25 dazy, znamienny tym, ze hydrazyd L-leucyny rozklada sie pod dzialaniem leucynoaminopeptydazy na L-leucyne i hyd¬ razyne i nastepnie kondensuje sie hydrazyne z aldehydem aromatycznym, a otrzymany barwnik oznacza sie kolory¬ metrycznie. 30 2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, zejako alde¬ hyd aromatyczny stosuje sie p-N-N-dwumetyloaminoben- zaldehyd. 3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze hydrolize hydrazydu leucyny przez leucynoaminopeptydaze prowadzi 35 sie scisle przy pH = 9,0-10,2. 4. Sposób wedlug zastrz. 1-3, znamienny tym, ze barw¬ nik oznacza sie kolorymetrycznie przy pH ponizej 7. Prac. Repr. UP PRL. W-wa, zam 131/73 naklad 125+18 Cena 10 zl PL PL
PL12533768A 1968-02-19 1968-02-19 PL68367B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL12533768A PL68367B1 (pl) 1968-02-19 1968-02-19

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL12533768A PL68367B1 (pl) 1968-02-19 1968-02-19

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL68367B1 true PL68367B1 (pl) 1973-02-28

Family

ID=19949883

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL12533768A PL68367B1 (pl) 1968-02-19 1968-02-19

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL68367B1 (pl)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Church et al. An o-phthalaldehyde spectrophotometric assay for proteinases
US4588836A (en) Novel synthetic substrate and assay method using the same
LV11068B (en) Determination of ions in fluids
US4598043A (en) Method for quantitatively assaying blood coagulation factor XII in human plasma
US3769173A (en) Determination of gamma-glutamyl transpeptidase in biological fluids
Qian et al. A dual-mode strategy based on β-galactosidase and target-induced DNA polymerase protection for transcription factor detection using colorimetry and a glucose meter
Forgac Characterization of a Mg2+-stabilized state of the (Na+ and K+)–stimulated adenosine triphosphatase using a fluorescent reporter group.
JP2001057897A (ja) フルクトシルバリンの生産方法
Schroeder et al. Biosynthesis of the Purines: XXXII. EFFECT OF ALBIZZIIN AND OTHER REAGENTS ON THE ACTIVITY OF FORMYLGLYCINAMIDE RIBONUCLEOTIDE AMIDOTRANSFERASE
Carmel et al. A fluorimetric assay for angiotensin-I converting enzyme in human serum
JPH0332360B2 (pl)
US7270976B2 (en) Methods for measuring ADAMTS13 activity and protein on platelets and in plasma
PL68367B1 (pl)
DK164512B (da) Fremgangsmaade til simultan bestemmelse af prokallikrein og den partielle thromboplastintid
Guilbault et al. Fluorometric determination of hyaluronidase and of Cu (II), Fe (II), and cyanide ion inhibitors
US4481291A (en) Process for determining streptococcal desoxyribonuclease B according to the toluidine blue O method
Smith et al. Detection of transcription and translation in situ with biotinylated molecular probes in cells transfected with recombinant DNA plasmids
US3536588A (en) Method of enzyme determination
Nakagami et al. Preparation of enzyme-conjugated DNA probe and application to the universal probe system
USRE27524E (en) Enzymatic determination of nitrogen- containing compounds and enzymes reactive therewith
JP3428073B2 (ja) 1,5−アンヒドログルシトールの定量法
JPH0698034B2 (ja) テオフィリンの測定用乾式分析要素及び測定方法
JP2000253898A (ja) 物質または酵素の定量方法および定量試薬
Szewczuk et al. Colorimetric method for assay of serum γ-glutamyltransferase activity with some l-γ-glutamyl-carboxyanilides
US7348160B2 (en) Phosphoamidase assay