PL60826B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL60826B1
PL60826B1 PL122157A PL12215767A PL60826B1 PL 60826 B1 PL60826 B1 PL 60826B1 PL 122157 A PL122157 A PL 122157A PL 12215767 A PL12215767 A PL 12215767A PL 60826 B1 PL60826 B1 PL 60826B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
virus
tissue culture
culture
chicken embryo
temperature
Prior art date
Application number
PL122157A
Other languages
English (en)
Inventor
B. Buynak Eugene
R. Hilleman Maurice
Original Assignee
Merck And Co
Filing date
Publication date
Application filed by Merck And Co filed Critical Merck And Co
Publication of PL60826B1 publication Critical patent/PL60826B1/pl

Links

Description

Przedmiotem niniejszego wynalazku jest sposób wytwarzania szczepionki z oslabionego zywego wi¬ rusa rózyczki, w drodze pasazowania wirusa w ho¬ dowli tkankowej zarodka kurzego, przy czym ogól¬ nie wirus rózyczki izoluje sie z materialu klinicz¬ nego przez zaszczepienie go badz w hodowli tkan¬ kowej zarodka kurzego, badz tez hodowli tkanko¬ wej malpy „Cercopitheaus aethiops" i poddanie tej hodowli inkubacji w temperaturze 30—38°, a na¬ stepnie sukcesywnie pasazuje sie wirus w srodowi¬ skach hodowlanych dostateczna ilosc razy w celu oslabienia wirusa, przy czym co najmniej dziesiec z wymienionych pasazy dokonuje sie w srodowisku dziesiecio — do — jedenastodniowego embrionu kur¬ czecia w srodowisku wzrostu komórki w tempera¬ turze 30—38°C.Po kazdym pasazu dokonuje, sie oznaczenia zdol¬ nosci na zbiorach pobranych w odstepach 2—14 dni 6082660826 zamrozonych do chwili przeprowadzania pomiarów.O ile pomiary wykazuja zbyt duzy stopien wiru- lentnosci wirusa, poddaje sie go ponownemu pasa- zowaniu w srodowisku hodowlanym. Ten sposób wytwarzania szczepionki polega na przeprowadze¬ niu nastepujacych etapów: A — wyizolowaniu wi¬ rusa zlosliwego w jednej z odmian komórek w ho¬ dowli i jego adaptacje do hodowli komórek em¬ brionu kurzego, B — wytworzeniu oslabionego zy¬ wego wirusa w drodze seryjnych pasazy w tkance embrionu kurzego; C — przygotowaniu tego osla¬ bionego zywego wirusa do uzytku.A — wyodrebnianie i adaptacja wirusa rózyczki moga byc wykonane w hodowli tkankowej embrio¬ nu kurzego przy uzyciu materialu klinicznego lub wirusa uprzednio rozmnozonego w innym rodzaju hodowli tkankowej, jak nerki malpy lub embrionu kaczki. Inkubacji zakazonych hodowli dokonuje sie w temperaturze 30-34°C (optymalnie 32°C) lub 35- 38°C (optymalnie 36°C). Przykladowo procedury wy¬ odrebniania wirusa sa nastepujace: Procedura 1. Wirus rózyczki izoluje sie w ho- , dowli tkankowej nerki malpy „Cercopithecus ae- thiops" i nastepnych pasazach na zarodkowych ja¬ jach kurzych hodowli tkankowej nerki malpiej, ho¬ dowlach tkankowych embrionu kaczego i embrionu kurzego.Procedura 2. Wirus rózyczki izoluje sie w ho¬ dowli tkankowej nerki malpy „Cercopothecus ae- thiops" oraz pasazach hodowli tkankowych nerki malpiej i hodowli tkankowej embrionu kurzego.Procedura 3. Wirus rózyczki wyodrebnia sie z materialu klinicznego w hodowli tkankowej em¬ brionu kaczego i hodowli tkankowej embrionu kacz¬ ki i hodowli tkankowej embrionu kurzego w naste¬ pnych pasazach.B. Wytwarzanie szczepionki z oslabionego zywego wirusa rózyczki polega na tym, ze rozpoznany w etapie A jako wirus rózyczki wprowadza sie do bu¬ telek szklanych, zawierajacych hodowle tkankowa embrionu kurzego, przygotowana z posiekanych in- strypsynowanych dziesieciodniowych embrionów kurzych. Srodowiskiem hodowli moze byc kazde srodowisko sprzyjajace rozwojowi komórek, na przyklad znane srodowisko 199, do którego dodano surowice cieleca. Sklad srodowiska 199 zostal opi¬ sany w np. publikacji Diagnostic Procedures for Rickettsial Diseases, 1964, str. 158—163.Po Wprowadzeniu wirusa, zakazone hodowle ko¬ mórkowe poddaje sie inkubacji w kolejnych pasa¬ zach w temperaturze 30—38°C korzystnie 30—34°C (optymalnie 32°C) oraz 35-38°C (optymalnie 36°C) znanym sposobem na przyklad wstrzasajac lub sta¬ cjonarnie w zmiennych okresach czasu, w których wirus rozmnaza sie w znacznych ilosciach, a jedno¬ czesnie oslabia sie.Powyzsze seryjne pasaze byly dokonywane przy uzyciu rozcienczonego lub nierozcienczonego mater¬ ialu zakaznego do szczepienia (inoculum), przy czym uzyskano wielokrotne zbiory w róznych okresach I czasu. Oznaczenie miana dokonywane bylo w hodo¬ wlach tkankowych malpy „Cercopithecus aethiops".W odpowiednich okresach czasu hodowle byly traktowane przy uzyciu 1000 TDIDso wirusa prowo¬ kujacego, wykazujacego wlasnosci oddzialywania 30 (Buyamwera). Hodowle nie wykazujace objawów cytopatologicznych prowokujacego Wirusa w ciagu 3—4 dni po traktowaniu, uwazane byly za zakazone wirusem rózyczki. 5 Wirus nastepnie zabierano i przechowywano w stanie zamrozonym lub w niskiej temperaturze, w celu utrzymania jego zakaznosci.C. Przygotowanie do uzytku wirusa rózyczki, polega na tym, ze wirus zebrany po tym powtarzal- 10 nym pasazu stabilizuje sie-przy uzyciu odpowied¬ niego stabilizatora, jak cukru trzcinowego, bialka ludzkiego, glutaminy, fosforanu lub mieszaniny tych substancji. Po oznaczeniu miana w celu ustalenia jego mocy, material wirusowy dzieli sie i wlewa do 15 ampulek, do bezposredniego uzytku.Produkt nalezy przechowywac i rozprowadzac w stanie zamrozenia lub w postaci liofilizowanej. Na¬ lezy przechowywac go bez dostepu wilgoci.Poniewaz stwierdzono, ze produkt nie jest cho- 20 robotwórczy dla malpy i gryzoni, celowe jest jego wypróbowanie na czlowieku, w celu ustalenia wlas¬ nosci immunizacyjnych. Wynalazek jest blizej wy¬ jasniony w nastepujacych przykladach: Przyklad I. Jako wyjsciowe inoculum stosuje sie material otrzymany w procedurze 1. Dziewie- cio- do jedenastodniowe embriony kurze po usunie¬ ciu glów i konczyn, sieka sie w warunkach asep- tycznych, a rozdrobniona tkanke przemywa sie kil¬ kakrotnie w plynie Hanksa BSS. Przemyta tkanke trypsynuje sie w temperaturze 36°C przy uzyciu trypsyny 0,25'Vo (firmy Difco 1 :250) w zbuforowa- nym roztworze solnym trzech soli w ciagu dwóch do trzech godzin.Sklad mieszaniny trzech soli jest nastepujacy: 35 Sole — mieszanina 1 litr roztworu NaCL 8,00 g: KCL 0,38 g Na2HP04 0,10 g dekstroza % 1,00 g 40 trójhydroksymetyloaminometan 3,00 g: trypsyna 2,50 g wartosc pH 4= nastawia sie na 7,4 przed dodaniem . trypsyny.Zawiesine komórki trypsynowej zbiera sie za po- 45 moca dwóch warstw gazy jalowej i odwirowuje sie przy 1500 obr/min w ciagu 5 min. Komórki przepro¬ wadza sie ponownie w zawiesine w srodowisku ho¬ dowli w celu ich przeliczenia. Srodowisko hodowli sklada sie ze srodowiska 199 (Morgan, J. F., Mor- 50 ton, H. J. i Parker, R. C. Proc. Soc. Exp. Biol. and Med., 73: 1—8, 1950), zawierajacego 2°/o surowicy cielecej agamma ogrzanej do temperatury 50°C w ciagu 30 minut i 50 mcg/ml neomycyny. Surowica agamma jest to surowica, z której usunieto gamma 55 globuline w procesie frakcjonowania.Hodowle butelkowe posiewa sie tak, aby uzyskac stezenie 350.000 zywych komórek na ml. Po inku¬ bacji w temperaturze 36°C w ciagu 48—96 godzin,, hodowle butelkowe. moga byc uzyte do seryjnego 60 pasazowania lub przygotowania szczepionki.Hodowle tkankowe embrionu kurzego przygoto¬ wuje sie w butelkach szklanych, przy zastosowaniu srodowiska 199, zawierajacego 2°/o inaktywowanej agamma surowicy cielecej, jako pozywki wzrosto* €5 WeJ'80826 6 Po trzech lub czterech dniach od rozpoczecia ho¬ dowli, wybiera sie pozywke wzrostowa w warun¬ kach aseptycznych, a hodowle butlekowe przemywa sie cztery razy plynem Hanksa BSS, 100 ml na je¬ dno przemycie i nastepnie zaszczepia 2—3 ml wyzej wymienionego posiewu wirusa rózyczki, na jedna butelke.Siedemdziesiat do stu ml pozywki 199, zawieraja¬ cej 10Vo odpowiedniego stabilizatora zakaznosci na przyklad sorbitolu lub albumisolu-na fiolke dodaje sie do kazdej hodowli butelkowej a butelki podda¬ je sie inkubacji w temperaturze 30—34°C. Do po¬ zywki wzrostowej i utrzymujacej dodaje sie neomy¬ cyne w stezeniu 50 mcg/1.Wielokrotne zbiory dokonuje sie w odpowiednich odstepach czasu, od 2 do 4 dni, a hodowle butelko¬ we ponownie zasila sie swieza pozywka, zawieraja¬ ca wyzej wymieniony stabilizator.Oznaczenia wskaznika zakazenia kazdego zbioru wykonywane sa w hodowlach tkankowych nerki malpy „Cercopithecus aethiops". Kazdy zbiór doko¬ nywany jest w warunkach aseptycznych i umiesz¬ czany w wyjalowionych naczyniach, próbki pobiera sie do wyjalowienia a reszte zamraza sie w kapieli alkoholowej przy uzyciu suchego lodu.Plyny zawierajace wirusy przechowuje sie w tem¬ peraturze —70°C w elektrycznych chlodziarkach, do czasu wybrania zbioru lub zbiorów do przygoto¬ wania szczepionki. Odpowiedni zbiór lub zbiory wybiera sie po oznaczeniu zdolnosci zakazenia.Wybrany material usuwa sie z chlodziarki i od¬ mraza sie. Nastepnie pobiera sie próbke w celu kon¬ troli. Do pozostalego plynu dodaje sie dodatkowo odpowiedni wspomniany stabilizator. Material na¬ stepnie oczyszcza sie, po czym pobiera sie próbke do próbnego zaszczepienia malpy. Po osuszeniu, fiol¬ ki kapsluje sie, lakuje i przechowuje sie az do chwi¬ li uzycia szczepionki po dodaniu wody sterylizowa¬ nej.Moc produktu ocenia sie na podstawie zdolnosci infekcyjnej hodowli komórkowych.Przyklad II. Przeprowadza sie procedure jak w przykladzie I, lecz inkubacja wirusa rózyczki od¬ bywa sie w temperaturze 35—38°C, najkorzystniej okolo 36°C.Mozna wykonac ponad dziesiec pasazy wirusa na hodowli tkankowej embrionu kurzego, w celu dal¬ szego oslabienia wirusa. Seryjne pasaze moga obej¬ mowac równiez inkubacje hodowli nerki malpy „Cercopithecus aethiops" lub zarodkowych jaj ku¬ rzych, co wyjasnione jest na nastepujacych przykla¬ dach: GMK — oznacza hodowle malpy „Cercopithecus aethiops".EAM — oznacza zarodkowe jaja kurze.CEF — oznacza hodowle tkankowa embrionu ku¬ rzego.DEF — oznacza hodowle tkankowa embrionu kacz¬ ki.Przyklad III. 2 GMK — i EAM — 9 GMK — 5 DEF (36°C) - 26 DEF (32°C) - CEF (32°C).Przyklad IV. GMK - CEF (32°C; 36°C).Przyklad V. 77 GMK - 3 DEF - CEF (32°C) Przyklad VI. Material kliniczny (wypluczyny z gardla) - DET - CEF (32°C).Przyklad VII. 5 GMK - 1 CEF - 2 DEF - CEF (32°C). io Wynalazek zostal opisany ze szczególnym uwzgle¬ dnieniem dziesieciu seryjnych pasazy przez hodowle tkankowa embrionu kurzego w celu oslabienia wi¬ rusa, jednak wystarczajaca jest mniejsza ilosc ope¬ racji. 15 Tak wiec, wynalazek przewiduje pojedyncza in¬ kubacje w hodowli tkankowej embrionu kurzego, w celu otrzymania wirusa wywolujacego reakcje przeciwciala wirusa u czlowieka, przy zmniejszeniu powaznych objawów choroby wystepujacych w nor- 20 malnych jej przebiegu.Nastepne procesy po pierwszym wzroscie w ho¬ dowli tkankowej embrionu kurzego, moga przyczy¬ nic sie do dalszego oslabienia wirusa. 25 55 PL PL PL PL

Claims (4)

1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób otrzymywania szczepionki rózyczki, znamienny tym, ze wirus rózyczki izoluje sie z ma- 30 terialu klinicznego przez zaszczepienie go w hodowli tkankowej embrionu kurzego lub w hodowli tkan¬ kowej malpy „Cercopithecus aethiops" i inkubacje wymienionej hodowli w temperaturze 30—38°C, na¬ stepnie sukcesywnie pasazuje sie wymieniony wi- 35 rus w srodowiskach hodowlanych w celu oslabie¬ nia wirusa, przy czym co najmniej dziesiec z wy¬ mienionych pasazy dokonuje sie w srodowisku za¬ wierajacym hodowle dziesiecio-. do jedenastodnio- wego embrionu kurczecia, pozbawionego glowy 40 i konczyn, posiekanego i strypsynowanego, w sro¬ dowisku wzrostu komórki w temperaturze 30—38°C, a jednoczesnie po kazdym pasazu dokonuje sie ozna¬ czenia , zdolnosci zakazania na zbiorach próbnych, pobranych w odstepach 2—14 dni, przy czym zbiory 45 te zamraza sie do momentu dokonywania pomiaru, zas jezeli wirusy wykazuja zbyt duzy stopien wiru- lentnosci, poddaje sie je ponownemu pasazowaniu w srodowisku hodowlanym.
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze 50 stosuje sie dziesieciodniowy embrion kurzy.
3. Sposób wedlug zastrz. 1 lub 2, znamienny tym, ze inkubacje wirusa zarówno w etapie izolacji jak „ i pasazowania prowadzi sie w temperaturze 30— 34°C.
4. Sposób wedlug zastrz. 1 lub 2, znamienny tym, ze inkubacje wirusa zarówno w etapie izolacji jak i pasiazowania prowadzi sie w temperaturze 34— 38°C. PL PL PL PL
PL122157A 1967-08-11 PL60826B1 (pl)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL60826B1 true PL60826B1 (pl) 1970-06-25

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Habel Cultivation of mumps virus in the developing chick embryo and its application to studies of immunity to mumps in man
Koprowski et al. Studies on chick embryo adapted rabies virus: I. Culture characteristics and pathogenicity
Yamaguchi et al. Characterization of a picornavirus isolated from broiler chicks
US4224412A (en) Living virus culture vaccine against canine distemper and method of preparing same
US4622222A (en) Process for the preparation of a lyophilized vaccine against duck virus hepatitis
CA1109393A (en) Vaccine and its preparation
Alexander The propagation of blue-tongue virus in the developing chick embryo with particular reference to the temperature of incubation
KR100221710B1 (ko) 닭 빈혈증 병원체 백신
US4324861A (en) Preparation of live attenuated mumps virus for a vaccine
Brown et al. In vitro measurement of the potency of inactivated foot-and-mouth disease virus vaccines
CN104056265B (zh) 猪圆环病毒2型、猪繁殖与呼吸综合征二联疫苗及其制备方法
US4215107A (en) Parainfluenza virus vaccine and its preparation
PL60826B1 (pl)
US2965544A (en) Tissue culture propagated canine distemper virus and vaccine thereof
Chomiak et al. Tissue culture and chicken embryo techniques for infectious laryngotracheitis virus studies
Williamson et al. Factors influencing the production of developmental defects in the chick embryo following infection with Newcastle disease virus
US3143474A (en) Preparation of duck-embryo modified infectious canine hepatitis virus vaccine
US3098011A (en) Process of producing a vaccine against distemper
US3401084A (en) Rubella vaccine and its preparation
EP0000677B1 (en) Parainfluenza virus vaccine and its preparation
US3318775A (en) Production of viral antigens with n-acetyl-ethyleneimine
GB1560185A (en) Respiratory syncytical virus vaccine
KR820001230B1 (ko) 2와 3형 파라인플루엔자 바이러스 왁찐의 제조방법
CA1122898A (en) Parainfluenza virus vaccine and its preparation
Levine et al. Attenuation of Borrelia anserina by serial passage in liquid medium