PL60449B1 - - Google Patents
Download PDFInfo
- Publication number
- PL60449B1 PL60449B1 PL121543A PL12154367A PL60449B1 PL 60449 B1 PL60449 B1 PL 60449B1 PL 121543 A PL121543 A PL 121543A PL 12154367 A PL12154367 A PL 12154367A PL 60449 B1 PL60449 B1 PL 60449B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- virus
- environment
- carried out
- incubation
- rubella
- Prior art date
Links
- 241000700605 Viruses Species 0.000 claims description 29
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 19
- 241000272525 Anas platyrhynchos Species 0.000 claims description 14
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 claims description 14
- 241000710799 Rubella virus Species 0.000 claims description 13
- 241000282693 Cercopithecidae Species 0.000 claims description 10
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 7
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 claims description 6
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 claims description 6
- 238000003306 harvesting Methods 0.000 claims description 6
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 claims description 6
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 claims description 6
- 210000003734 kidney Anatomy 0.000 claims description 5
- 239000012568 clinical material Substances 0.000 claims description 4
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 claims description 3
- 229960003131 rubella vaccine Drugs 0.000 claims description 3
- 238000009395 breeding Methods 0.000 claims description 2
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 claims description 2
- 238000005259 measurement Methods 0.000 claims description 2
- 230000000384 rearing effect Effects 0.000 claims 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 14
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 description 11
- 244000309466 calf Species 0.000 description 5
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 5
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 4
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 4
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 4
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 4
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 4
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 4
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 4
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 4
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 description 4
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 3
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 description 3
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 3
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 3
- 230000003472 neutralizing effect Effects 0.000 description 3
- 210000005084 renal tissue Anatomy 0.000 description 3
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 3
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 3
- 229930193140 Neomycin Natural products 0.000 description 2
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 2
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 2
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 2
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 2
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 2
- 230000003211 malignant effect Effects 0.000 description 2
- 229960004927 neomycin Drugs 0.000 description 2
- 230000035935 pregnancy Effects 0.000 description 2
- 201000005404 rubella Diseases 0.000 description 2
- 238000011076 safety test Methods 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 2
- 101100283604 Caenorhabditis elegans pigk-1 gene Proteins 0.000 description 1
- 241000366305 Cephaloziella rubella Species 0.000 description 1
- FBPFZTCFMRRESA-FSIIMWSLSA-N D-Glucitol Natural products OC[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-FSIIMWSLSA-N 0.000 description 1
- 206010011878 Deafness Diseases 0.000 description 1
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000010201 Exanthema Diseases 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 1
- 102000008100 Human Serum Albumin Human genes 0.000 description 1
- 108091006905 Human Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N L-glutamine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N 0.000 description 1
- 201000005505 Measles Diseases 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- 206010029240 Neuritis Diseases 0.000 description 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 1
- 208000034712 Rickettsia Infections Diseases 0.000 description 1
- 241000283984 Rodentia Species 0.000 description 1
- 229940124968 Rubella virus vaccine Drugs 0.000 description 1
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 1
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 1
- 208000036142 Viral infection Diseases 0.000 description 1
- 230000002159 abnormal effect Effects 0.000 description 1
- 230000002917 arthritic effect Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 235000019658 bitter taste Nutrition 0.000 description 1
- 239000000337 buffer salt Substances 0.000 description 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 230000000120 cytopathologic effect Effects 0.000 description 1
- 231100000895 deafness Toxicity 0.000 description 1
- 230000001934 delay Effects 0.000 description 1
- 239000008121 dextrose Substances 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 1
- 206010014599 encephalitis Diseases 0.000 description 1
- 201000005884 exanthem Diseases 0.000 description 1
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 description 1
- 210000003754 fetus Anatomy 0.000 description 1
- 238000005194 fractionation Methods 0.000 description 1
- 239000012737 fresh medium Substances 0.000 description 1
- 108010074605 gamma-Globulins Proteins 0.000 description 1
- ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N glutamine Natural products OC(=O)C(N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000016354 hearing loss disease Diseases 0.000 description 1
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 1
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 230000035800 maturation Effects 0.000 description 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 1
- FYFFGSSZFBZTAH-UHFFFAOYSA-N methylaminomethanetriol Chemical compound CNC(O)(O)O FYFFGSSZFBZTAH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 208000004141 microcephaly Diseases 0.000 description 1
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 1
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 1
- 208000020016 psychiatric disease Diseases 0.000 description 1
- 206010037844 rash Diseases 0.000 description 1
- 238000005057 refrigeration Methods 0.000 description 1
- 239000011833 salt mixture Substances 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 1
- 239000000600 sorbitol Substances 0.000 description 1
- 230000000087 stabilizing effect Effects 0.000 description 1
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 1
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 1
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 1
- 230000001052 transient effect Effects 0.000 description 1
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 1
- 230000009385 viral infection Effects 0.000 description 1
- 230000001018 virulence Effects 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000003313 weakening effect Effects 0.000 description 1
Description
Opublikowano: 10.VII.1970 60449 KI. 30 h, 6 MKP C 12 k, 5/00 UKD Wlasciciel patentu: Merck and Co., Inc., Rahway (Stany Zjednoczone Ameryki) Sposób otrzymywania szczepionki rózyczki Wynalazek dotyczy otrzymywania szczepionki rózyczki zawierajacej oslabiony zywy wirus ró¬ zyczki.Dzieki temu, ze szczepionka zawiera wirus' w oslabionej formie, powoduje ona niewielka go¬ raczke i nieznaczne kliniczne reakcje organizmu.Wytwarza ona natomiast dostateczna ilosc prze¬ ciwcial w organizmie czlowieka i zwierzecia, wy¬ starczajaca do zabezpieczenia organizmu przed in¬ fekcja wirusowa. Rózyczka jest zwykle lagodnie przebiegajaca choroba u dzieci, chociaz moze po¬ wodowac komplikacje artretyczne, zapalenie ner¬ wów, zapalenie mózgu. Choroby umyslowe zdarza¬ ja sie rzadziej niz w przypadku odry. Infekcja kobiety w pierwszych trzech miesiacach ciazy, mo¬ ze spowodowac opóznienia w okresie dojrzewania plodu. Wirus atakuje zarodek powodujac nie¬ wlasciwy rozwój embrionu, co w efekcie powo¬ duje takie defekty jak: mikrocefal, gluchote, de¬ fekty oczu, nieprawidlowy rozwój serca i ukladu zebowego. Niebezpieczenstwo wirusa rózyczki dla plodu w pierwszych dwóch lub trzech miesiacach ciazy jest tak wielkie, ze mlode dziewczeta po¬ winny byc zaszczepione przed uzyskaniem doj¬ rzalosci plciowej. Szczepionka oslabionego wirusa zgodnie z niniejszym wynalazkiem moze uodpor¬ nic organizm.Celem wynalazku jest wynalezienie sposobu otrzymywania szczepionki wywolujacej powsta¬ wanie przeciwcial zwalczajacych wirus rózyczki. 15 20 30 Cel ten osiagnieto dzieki temu, ze wirus rózycz¬ ki izoluje sie z materialu klinicznego przez za¬ szczepienie hodowli tkankowej embrionu kaczki lub hodowli tkankowej nerki malpy i inkubacje tej hodowli w temperaturze 30—38°C, nastepnie sukcesywnie pasazuje sie wymieniony wirus do¬ stateczna ilosc razy w osrodku hodowlanym w celu oslabienia wirusa, przy czym przynajmniej dziesiec z wymienionych pasazy dokonuje sie w srodowiskach zawierajacych hodowle pokrajane¬ go i potraktowanego trypsyna dziesiecio- lub je- denastodniowego, pozbawionego glowy i konczyn embrionu kaczki, w srodowisku wzrostu komórek w temperaturze 30-=-38°C, a jednoczesnie po kaz¬ dym wspomnianym pasazu przeprowadza sie oznaczenie zdolnosci zakazenia na zbiorach prób¬ nych w odstepach dwu do czternastu dni, które to zbiory zamraza sie do momentu dokonywania pomiaru, przy czym w przypadku jezeli wirusy wykazuja zbyt duzy stopien wirulentnosci, pod¬ daje sie go ponownemu pasazowaniu w srodowis¬ ku hodowlanym.Sposób wedlug wynalazku obejmuje nastepu¬ jace etapy: A, izolacji zlosliwego wirusa w jakiej¬ kolwiek odmianie komórek w hodowli, jego ada¬ ptacji do hodowli komórkowej embrionu kaczki; B, rozwoju oslabionego zywego wirusa poprzez szereg etapów rozwoju w tkance kaczego embrio¬ nu i C, przygotowanie szczepionki opartej na wy- 60 4493 zej wspomnianym wirusie. Etapy te sa ponizej oddzielnie opisane.A. Izolacja i adaptacja zlosliwego wirusa.Mozna dokonac izolacji i adaptacji wirusa ró¬ zyczki w hodowli tkankowej embrionu kaczki, u- zywajac materialu klinicznego (na przyklad tam¬ ponu za pomoca którego pobiera sie wymaz z gardla) lub za posrednictwem uprzednio rozprze¬ strzenionego wirusa w innym typie hodowli ko¬ mórkowej, takiej jak nerka malpy lub zaplod¬ nione jajka. Mozna przeprowadzac inkubacje zain¬ fekowanych hodowli w temperaturze pomiedzy 30°C a 38°C, najlepiej w.30—34°C (optymalna 32°C) lub w temperaturze 35--380C (optymalna 36°C). 15 Ponizej podano typowe procedury etapu A Procedura 1. Wirus rózyczki izoluje sie w hodo¬ wli tkankowej embriona kaczki z materialu kii- 20 nicznego, na przyklad z gardla osoby zarazonej rózyczka. * Procedura 2. Wirus rózyczki z klinicznego ma¬ terialu jest wyizolowany w hodowli tkankowej ?.s nerki malpy.B. Rozwój szczepionki oslabionego zywego wi¬ rusa rózyczki 3C Wirus,' po jego zidentyfikowaniu w etapie A, dodaje sie do szklanych butelek zawierajacych hodowle tkankowa embrionu kaczki! przygotowana z rozdrobnionego i potraktowanego trypsyna dziesieciodniowego embrionu kaczki. Srodowisko 35 hodowlane moze byc jednym z jakichkolwiek sro¬ dowisk podtrzymujacych wzrost komórki. Moze to byc na przyklad srodowisko 199, do którego zo¬ stala dodana surowica cieleca. Sklad tego srodo¬ wiska opisany zostal ,np. w publikacji Dilagnostic 40 Procedures for Viral and Rickettsial Diseases, 1964, str. 158—163. Po dodaniu wirusa, zainfeko¬ wane hodowle komórkowe poddaje sie inkuba¬ cji w sukcesywnych etapach, w temperaturze po¬ miedzy 30°C a 38°C (optymalna 36°C). Podczas 45 powyzszego procesu, wirus rozmnaza sie w wiel¬ kich ilosciach i zostaje oslabiony. Powyzsze suk¬ cesywne etapy zostaly przeprowadzone przy za¬ stosowaniu rozcienczonej lub nierozcienczonej szczepionki (inoculum). Pobierano w róznorodnych 50 odstepach czasu rózne próbki. Przeprowadzono na¬ stepnie, miareczkowanie w hodowlach tkankowych nerki malpy. W odpowiednich okresach czasu, hodowle byly traktowane okolo 1000 TDID50 wi¬ rusa prowokujacego, majacego wlasciwosci od- 55 dzialywania (ECHOn, Bunyamwera, itd.). Hodo¬ wle w probówkach nie wykazujace objawów cy- topatologicznych prowokujacego wirusa — w cia¬ gu 3—4 dni po potraktowaniu, uwazane byly za zakazone wirusem rózyczki. Wirus zbiera sie na- 6& stepnie i przechowuje w niskiej temperaturze, aby utrzymac jego zakaznosc.C. Stwierdzono, ze wirus rózyczki otrzymany po szeregu etapach rozwoju byl ntepatogeniczny dla 65 449 4 - malp i gryzoni, i powodowal lekka chorobe u lu¬ dzi oraz powstawanie pozadanej ilosci neutrali¬ zujacych przeciwcial. Zdolnosc infekcyjna wirusa stabilizuje sie za pomoca odpowiedniego stabili¬ zatora takiego jak sacharoza, ludzka albumina, glutamina lub fosforan lub ich mieszanina. Po operacji miareczkowania ustalajacego jego moc, mase wirusa dzieli sie i napelnia nia ampulki przeznaczone do pózniejszego uzycia. Produkt mozna przechowywac w stanie zamrozonym w suchym otoczeniu pozbawionym wilgoci.Ponizsze przyklady wyjasniaja blizej sposób wedlug wynalazku.Przyklad I. Jako wyjsciowe inoculum sto¬ suje sie material Otrzymany w sposób opisany w procedurze 1. Embriony kacze 9-11-dniowe, po od¬ laczeniu glcwy i czesci wystajacych (odnóza) do¬ kladnie sie rozdrabnia w warunkach aseptj^cz- nych, a rozdrobniona tkanke przemywa szereg ra¬ zy w swiezym plynie Hanksa BBS. Wymyta tkan¬ ke nastepnie traktuje sie 0,25% trypsyna w tem¬ peraturze 26°0 \(Difco 1 : 259) w mieszaninie trzech soli buforowych (sól trypsynowa), w tym przypad¬ ku w ciagu dwóch i pól-godzin.Sklad mieszaniny soli: 1,0 litr roztworu NaCI 8,00 g KC1 0,38 g Na2HP04 0,10 g dekstroza 1,00 g trójhydroksymetyloaminometan 3,00 g trypsyna 2,50 g Wartosc pH nastawia sie na 7,4 przed dodaniem trypsyny. Nastepnie, zawiesine komórek potrakto¬ wanych trypsyna odsiewa sie poprzez dwie gru¬ bosci wysterylizowanej gazy. i odwirowuje przy 1500 obr/min w ciagu 5 minut. Upakowane ko¬ mórki umieszcza sie w osrodku wzrostowym w celu policzenia. Srodowisko wzrostowe sklada sie ze srodowiska 199 (Morgan, J. F. Morton. H. J. and Parker, R. C. Proc. Soc. Exp. Biol. and Med., •73:1-8, 1950) zawierajacego 2% surowicy cielecej agamma (Surowica cieleca agamma oznacza su¬ rowice cieleca, z której usunieto globuline gam¬ ma w procesie frakcjonowania) ogrzewanej w temperaturze 56°C w ciagu 30 minut i 50 mcg/ml neomycyny. Hodowle w butelkach posiewa sie w celu otrzymania stezenia 350 000 zdolnych do zycia komórek na ml. Po operacji inkubacji w tempe¬ raturze 36°C w ciagu 36—48 godzin, hodowle bu¬ telkowe mozna zastosowac w seryjnym etapie roz¬ woju lub do przygotowania szczepionki.Hodowle tkankowe embrionu kaczki przygoto¬ wuje sie w szklanych butelkach przy zastosowa¬ niu srodowiska 199, zawierajacego 2% dezaktywo- wanej cielecej surowicy jako srodowiska wzrosto¬ wego. Trzy do czterech dni po posianiu, odciaga sie w' aseptycznych warunkach srodowisko wzro¬ stowe, a hodowle butelkowe przemywa cztery ra¬ zy BBS Hanksa, 100 ml na jedno przemycie, a nastepnie zaszczepia 2,5 milimetrami wyzej wspom-60 449 6 nianego nierozcienczonego wirusa rózyczki na bu¬ telke. Szescdziesiat ml srodowiska 199, zawiera¬ jacego 10% sorbitolu w charakterze stabilizatora zakaznosci, dodaje sie do kazdej hodowli butelko¬ wej, a nastepnie butelki poddaje sie inkubacji w temperaturze 30—34°C. Neomycyne o stezeniu 50 mcg/ml wlacza sie do srodowiska wzrostowego.Przeprowadza sie szereg zbiorów w odstepach cza¬ su 2—4 dni, przy czym butelki z hodowla sa po¬ wtórnie wypelniane swiezym srodowiskiem, za¬ wierajacym wyzej wspomniany czynnik stabili¬ zujacy. Kolejne etapy rozwoju odbywaja sie w temperaturze 32°C. Przeprowadza sie miareczko¬ wanie zdolnosci infekcyjnej kazdego zbioru* w ho¬ dowlach tkankowych nerki malpy. Kazdy zbiór gromadzi sie w warunkach aseptycznych w wy- sterylizowanym pojemniku. Zostaja pobrane prób¬ ki do mikrobiologicznych badan wysterylizowania, pozostalosc tworzy zamarznieta warstwa w suchej kapieli zamarznietego alkoholu.Plyny zawierajace wirus sa magazynowane w temperaturze —70°C w elektrycznym urzadzeniu chlodniczym, przed selekcja odsiewu lub odsie¬ wów po dokonaniu kompletnych operacji miarecz¬ kowania majacych na celu okreslenie stopnia za¬ kazenia. Wybrany material nastepnie usuwa sie z urzadzenia chlodniczego i rozmraza. Przeprowadza sie kontrole i próby bezpieczenstwa próbki. Po¬ zostala ciecz oczyszcza nastepnie, a próbke pod¬ daje sie próbom bezpieczenstwa na malpach. Do pozostalej cieczy dodaje sie dodatkowo odpowiedni czynnik stabilizujacy. Ciecze rozprowadza sie do poszczególnych ampulek, a nastepnie suszy. Po procesie osuszenia, ampulki kapsluje sie i zatapia z mozliwoscia uzyskania szczepionki po dodaniu wyjalowionej wody. Moc produktu ocenia sie na podstawie zdolnosci infekcyjnej hodowli komór¬ kowych. Dodatkowo oslabiona szczepionka, zaszcze¬ piona malpom pozajelitowo w sposób regularny, powoduje powstawanie duzej ilosci specyficznych neutralizujacych przeciwcial, które zostaja w or¬ ganizmie w niezmienionej ilosci przez przynaj¬ mniej rok.Doswiadczenia z ludzmi. Siedmiorgu dzieciom nie zakazonym uprzednio wirusem rózyczki podano pozajelitowo szczepionke oslabionego wirusa ró¬ zyczki. W organizmie wszystkich powstala duza ilosc neutralizujacych przeciwcial (1:16 — 1:64) w okresie jednego miesiaca po szczepieniu. Ilosc tych przeciwcial równa sie z grubsza ilosci, która jest wytwarzana przy rozwoju choroby naturalnej.Niektóre dzieci mialy goraczke niewielka, nie¬ wielka i przemijajaca wysypke i klinicznie slabo zaznaczona limfodemopatiie.Przyklad II. Postepuje sie jak w przy¬ kladzie I, z tym, ze inkubacja wirusa rózyczki odbywa sie w temperaturze okolo 36°C.Przyklad III. Postepuje sie jak w przy¬ kladzie II, z tym, ze trzy seryjne inkubacje wiru¬ sa przeprowadza sie w temperaturze 36°C, a na¬ stepnie siedem w temperaturze 32°C. Aby dodat¬ kowo oslabic wirus, mozna przeprowadzac wiecej niz dziesiec sukcesywnych etapów rozwoju wiru¬ sa w hodowli 'tlenkowej amibriotnu kaczki. Etapy te 30 35 moga obejmowac inklinacje w hodowlach w ner¬ kach malpy lub w zaplodnionych jajach kurzych.Jest to zilustrowane w nastepujacych przykla¬ dach w których: GMK oznacza hodowle nerki malpy EAM oznacza zaplodnione jaja kurze DEF oznacza hodowle tkankowa embrionu kaczki Przyklad IV. 2 GMiK -^ [1 EAM -^9 GMK -J- -^5 DEF (36aC) -^ 5 DEF <32°C) Przyklad V. 2 GMK -r- 1 EAIM -*- 13 GMK r2 DEF <36°C) -f- 8 DEF (32°C) Przyklad VI. 2 GMK -^ 1 EAM +• 17 GiMK -7-10 DEF (32°C) Przyklad VII. 21 GMK -r- 3 DEF 36°C) -r- -h 7 DEF (32°C) W wyniku postepowania opisanego w przykla¬ dach IV, V, VI d VII otrzymuje sile szczepionki których moc przedstawiono w ponizszym zestawie¬ niu. Moc szczepionki wyrazona jest w postaci miana zakaznosci, które odpowiada stezeniu zaka¬ zajacego drobnoustroju w srodowisku. Miano to mozna okreslic równiez jako minimalna dawke zakazajaca kulture tkankowa. Zazwyczaj okresla sie je jako odwrotnosc rozcienczenia.Jednostka TCID50 (dawka zakazajaca kulture tkankowa w odniesieniu do 50%) jest miara ste¬ zenia wirusa. Tak wiec np. sporzadza sie dwu¬ krotne rozcienczenie zawiesiny wirusowej, której miano ma sie okreslic i bada sie ich stopien za¬ kaznosci tkanek, przy czym dla kazdlego rozcien¬ czenia stosuje sie kilka próbek. Za jednostke za¬ kaznosci przyjmuje sie dawke wirusa w takim roz¬ cienczeniu, które wywoluje rozpad tkanek w polo¬ wie próbek. Miano wyrazone w TCIDso na ml za¬ wiesimy oblicza sie jako wielokrotnosc tej dawki. 40 Przyklad IV V VI VII Moc (TCID50) 10-2.5/1,0 ml 10-4.0/1,0 ml 10-2.5/1,0 ml 10-2.8/1,0 ml 55 60 65 Wynalazek zostal opisany w odniesieniu do dziesieciu seryjnych etapów przejscia przez DEF, w celu zapewnienia oslabienia wirusa, lecz moze okazac sie wystarczajaca równiez mniejsza ich ilosc.Wynalazek moze takze obejmowac pojedynczy proces inkubacji w DEF w celu osiagniecia zada¬ nej formy wirusa, który spowoduje powstanie przeciwcial w organizmie, przeciwdzialajacych ciezkim objawom choroby. Mozna oczekiwac, ze nastepne etapy rozwoju po procesie pierwszego wzrostu w DEF moga dac w wyniku zwiekszone oslabienie wirusa. PL PL PL
Claims (4)
1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób otrzymywania szczepionki rózyczki, znamienny tym, ze wirus rózyczki izoluje sie z7 60 449 8 materialu klinicznego przez zaszczepienie go w hodowli tkankowej embrionu kaczki lub hodowli tkankowej nerki malpy i inkubacje tej hodowli w temperaturze 30—38°C, nastepnie sukcesywnie pasazuje sie wymieniony wirus dostateczna ilosc razy w srodowiskach hodowlanych w celu osla¬ bienia wirusa, przy czym przynajmniej dziesiec z wymienionych pasazy dokonuje sie w srodowis¬ kach zawierajacych hodowle pokrajanego i po¬ traktowanego trypsyna dziesiecio- lub jedenasto- dniowego, pozbawionego glowy i konczyn embrio¬ nu kaczki, w srodowisku wzrostu komórek, w temperaturze 30—38°C, a jednoczesnie po kazdym wymienionym pasazu przeprowadza sie oznaczenie zdolnosci zakazenia na zbiorach próbnych w od¬ stepach 2—14 dni, przy czym zbiory te zamraza sie do momentu dokonywania pomiaru, zas je¬ zeli wirusy wykazuja zbyt duzy stopien wirulent- nosci, poddaje sie je ponownemu pasazowaniu w srodowisku hodowlanym.
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze stosuje sie dziesieciodniowy embrion kaczki.
3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze inkubacje prowadzi sie na etapie pasazowania w temperaturze 35—38°C.
4. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze inkubacje prowadzi sie na etapie pasazowania w temperaturze 30—34°C. 10 Bltk 1340/70 r. 220 egz. A4 PL PL PL
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL60449B1 true PL60449B1 (pl) | 1970-04-25 |
Family
ID=
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Swayne et al. | Influence of virus strain and antigen mass on efficacy of H5 avian influenza inactivated vaccines | |
| Anis et al. | Antigenic analysis of genetic variants of Canine distemper virus | |
| US4122167A (en) | Respiratory synctial vaccine | |
| US4224412A (en) | Living virus culture vaccine against canine distemper and method of preparing same | |
| Rosenberger et al. | Characterization of several viruses isolated from chickens with inclusion body hepatitis and aplastic anemia | |
| Beck et al. | Mumps vaccine L-Zagreb, prepared in chick fibroblasts. I. Production and field trials | |
| US8178110B2 (en) | Reovirus compositions and methods of use | |
| HU183765B (en) | Process for producing lyophilized vaccine against duck hepatitis | |
| DK162421B (da) | Hundeparvovirus-vaccine, fremgangsmaade til fremstilling heraf og virusstamme til brug i vaccinen | |
| CA1109393A (en) | Vaccine and its preparation | |
| US4324861A (en) | Preparation of live attenuated mumps virus for a vaccine | |
| DE60019178T2 (de) | Neue Antigenklasse von Geflügelreoviren | |
| CN104056265B (zh) | 猪圆环病毒2型、猪繁殖与呼吸综合征二联疫苗及其制备方法 | |
| AU782013B2 (en) | IBDV strain for in ovo administration | |
| US3555149A (en) | Mumps vaccine and its preparation | |
| US4215107A (en) | Parainfluenza virus vaccine and its preparation | |
| PL60449B1 (pl) | ||
| US3401084A (en) | Rubella vaccine and its preparation | |
| US4145252A (en) | Respiratory syncytial vaccine | |
| US3143474A (en) | Preparation of duck-embryo modified infectious canine hepatitis virus vaccine | |
| JP2006503863A (ja) | トリ吸収不良症候群に関与するウイルスを含有するワクチンおよびその投与法 | |
| EP0000677B1 (en) | Parainfluenza virus vaccine and its preparation | |
| US3098011A (en) | Process of producing a vaccine against distemper | |
| GB1560185A (en) | Respiratory syncytical virus vaccine | |
| Koprowski et al. | Propagation of Japanese B encephalitis virus in the developing chick embryo |