PL60449B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL60449B1
PL60449B1 PL121543A PL12154367A PL60449B1 PL 60449 B1 PL60449 B1 PL 60449B1 PL 121543 A PL121543 A PL 121543A PL 12154367 A PL12154367 A PL 12154367A PL 60449 B1 PL60449 B1 PL 60449B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
virus
environment
carried out
incubation
rubella
Prior art date
Application number
PL121543A
Other languages
English (en)
Original Assignee
Merck And Co
Filing date
Publication date
Application filed by Merck And Co filed Critical Merck And Co
Publication of PL60449B1 publication Critical patent/PL60449B1/pl

Links

Description

Opublikowano: 10.VII.1970 60449 KI. 30 h, 6 MKP C 12 k, 5/00 UKD Wlasciciel patentu: Merck and Co., Inc., Rahway (Stany Zjednoczone Ameryki) Sposób otrzymywania szczepionki rózyczki Wynalazek dotyczy otrzymywania szczepionki rózyczki zawierajacej oslabiony zywy wirus ró¬ zyczki.Dzieki temu, ze szczepionka zawiera wirus' w oslabionej formie, powoduje ona niewielka go¬ raczke i nieznaczne kliniczne reakcje organizmu.Wytwarza ona natomiast dostateczna ilosc prze¬ ciwcial w organizmie czlowieka i zwierzecia, wy¬ starczajaca do zabezpieczenia organizmu przed in¬ fekcja wirusowa. Rózyczka jest zwykle lagodnie przebiegajaca choroba u dzieci, chociaz moze po¬ wodowac komplikacje artretyczne, zapalenie ner¬ wów, zapalenie mózgu. Choroby umyslowe zdarza¬ ja sie rzadziej niz w przypadku odry. Infekcja kobiety w pierwszych trzech miesiacach ciazy, mo¬ ze spowodowac opóznienia w okresie dojrzewania plodu. Wirus atakuje zarodek powodujac nie¬ wlasciwy rozwój embrionu, co w efekcie powo¬ duje takie defekty jak: mikrocefal, gluchote, de¬ fekty oczu, nieprawidlowy rozwój serca i ukladu zebowego. Niebezpieczenstwo wirusa rózyczki dla plodu w pierwszych dwóch lub trzech miesiacach ciazy jest tak wielkie, ze mlode dziewczeta po¬ winny byc zaszczepione przed uzyskaniem doj¬ rzalosci plciowej. Szczepionka oslabionego wirusa zgodnie z niniejszym wynalazkiem moze uodpor¬ nic organizm.Celem wynalazku jest wynalezienie sposobu otrzymywania szczepionki wywolujacej powsta¬ wanie przeciwcial zwalczajacych wirus rózyczki. 15 20 30 Cel ten osiagnieto dzieki temu, ze wirus rózycz¬ ki izoluje sie z materialu klinicznego przez za¬ szczepienie hodowli tkankowej embrionu kaczki lub hodowli tkankowej nerki malpy i inkubacje tej hodowli w temperaturze 30—38°C, nastepnie sukcesywnie pasazuje sie wymieniony wirus do¬ stateczna ilosc razy w osrodku hodowlanym w celu oslabienia wirusa, przy czym przynajmniej dziesiec z wymienionych pasazy dokonuje sie w srodowiskach zawierajacych hodowle pokrajane¬ go i potraktowanego trypsyna dziesiecio- lub je- denastodniowego, pozbawionego glowy i konczyn embrionu kaczki, w srodowisku wzrostu komórek w temperaturze 30-=-38°C, a jednoczesnie po kaz¬ dym wspomnianym pasazu przeprowadza sie oznaczenie zdolnosci zakazenia na zbiorach prób¬ nych w odstepach dwu do czternastu dni, które to zbiory zamraza sie do momentu dokonywania pomiaru, przy czym w przypadku jezeli wirusy wykazuja zbyt duzy stopien wirulentnosci, pod¬ daje sie go ponownemu pasazowaniu w srodowis¬ ku hodowlanym.Sposób wedlug wynalazku obejmuje nastepu¬ jace etapy: A, izolacji zlosliwego wirusa w jakiej¬ kolwiek odmianie komórek w hodowli, jego ada¬ ptacji do hodowli komórkowej embrionu kaczki; B, rozwoju oslabionego zywego wirusa poprzez szereg etapów rozwoju w tkance kaczego embrio¬ nu i C, przygotowanie szczepionki opartej na wy- 60 4493 zej wspomnianym wirusie. Etapy te sa ponizej oddzielnie opisane.A. Izolacja i adaptacja zlosliwego wirusa.Mozna dokonac izolacji i adaptacji wirusa ró¬ zyczki w hodowli tkankowej embrionu kaczki, u- zywajac materialu klinicznego (na przyklad tam¬ ponu za pomoca którego pobiera sie wymaz z gardla) lub za posrednictwem uprzednio rozprze¬ strzenionego wirusa w innym typie hodowli ko¬ mórkowej, takiej jak nerka malpy lub zaplod¬ nione jajka. Mozna przeprowadzac inkubacje zain¬ fekowanych hodowli w temperaturze pomiedzy 30°C a 38°C, najlepiej w.30—34°C (optymalna 32°C) lub w temperaturze 35--380C (optymalna 36°C). 15 Ponizej podano typowe procedury etapu A Procedura 1. Wirus rózyczki izoluje sie w hodo¬ wli tkankowej embriona kaczki z materialu kii- 20 nicznego, na przyklad z gardla osoby zarazonej rózyczka. * Procedura 2. Wirus rózyczki z klinicznego ma¬ terialu jest wyizolowany w hodowli tkankowej ?.s nerki malpy.B. Rozwój szczepionki oslabionego zywego wi¬ rusa rózyczki 3C Wirus,' po jego zidentyfikowaniu w etapie A, dodaje sie do szklanych butelek zawierajacych hodowle tkankowa embrionu kaczki! przygotowana z rozdrobnionego i potraktowanego trypsyna dziesieciodniowego embrionu kaczki. Srodowisko 35 hodowlane moze byc jednym z jakichkolwiek sro¬ dowisk podtrzymujacych wzrost komórki. Moze to byc na przyklad srodowisko 199, do którego zo¬ stala dodana surowica cieleca. Sklad tego srodo¬ wiska opisany zostal ,np. w publikacji Dilagnostic 40 Procedures for Viral and Rickettsial Diseases, 1964, str. 158—163. Po dodaniu wirusa, zainfeko¬ wane hodowle komórkowe poddaje sie inkuba¬ cji w sukcesywnych etapach, w temperaturze po¬ miedzy 30°C a 38°C (optymalna 36°C). Podczas 45 powyzszego procesu, wirus rozmnaza sie w wiel¬ kich ilosciach i zostaje oslabiony. Powyzsze suk¬ cesywne etapy zostaly przeprowadzone przy za¬ stosowaniu rozcienczonej lub nierozcienczonej szczepionki (inoculum). Pobierano w róznorodnych 50 odstepach czasu rózne próbki. Przeprowadzono na¬ stepnie, miareczkowanie w hodowlach tkankowych nerki malpy. W odpowiednich okresach czasu, hodowle byly traktowane okolo 1000 TDID50 wi¬ rusa prowokujacego, majacego wlasciwosci od- 55 dzialywania (ECHOn, Bunyamwera, itd.). Hodo¬ wle w probówkach nie wykazujace objawów cy- topatologicznych prowokujacego wirusa — w cia¬ gu 3—4 dni po potraktowaniu, uwazane byly za zakazone wirusem rózyczki. Wirus zbiera sie na- 6& stepnie i przechowuje w niskiej temperaturze, aby utrzymac jego zakaznosc.C. Stwierdzono, ze wirus rózyczki otrzymany po szeregu etapach rozwoju byl ntepatogeniczny dla 65 449 4 - malp i gryzoni, i powodowal lekka chorobe u lu¬ dzi oraz powstawanie pozadanej ilosci neutrali¬ zujacych przeciwcial. Zdolnosc infekcyjna wirusa stabilizuje sie za pomoca odpowiedniego stabili¬ zatora takiego jak sacharoza, ludzka albumina, glutamina lub fosforan lub ich mieszanina. Po operacji miareczkowania ustalajacego jego moc, mase wirusa dzieli sie i napelnia nia ampulki przeznaczone do pózniejszego uzycia. Produkt mozna przechowywac w stanie zamrozonym w suchym otoczeniu pozbawionym wilgoci.Ponizsze przyklady wyjasniaja blizej sposób wedlug wynalazku.Przyklad I. Jako wyjsciowe inoculum sto¬ suje sie material Otrzymany w sposób opisany w procedurze 1. Embriony kacze 9-11-dniowe, po od¬ laczeniu glcwy i czesci wystajacych (odnóza) do¬ kladnie sie rozdrabnia w warunkach aseptj^cz- nych, a rozdrobniona tkanke przemywa szereg ra¬ zy w swiezym plynie Hanksa BBS. Wymyta tkan¬ ke nastepnie traktuje sie 0,25% trypsyna w tem¬ peraturze 26°0 \(Difco 1 : 259) w mieszaninie trzech soli buforowych (sól trypsynowa), w tym przypad¬ ku w ciagu dwóch i pól-godzin.Sklad mieszaniny soli: 1,0 litr roztworu NaCI 8,00 g KC1 0,38 g Na2HP04 0,10 g dekstroza 1,00 g trójhydroksymetyloaminometan 3,00 g trypsyna 2,50 g Wartosc pH nastawia sie na 7,4 przed dodaniem trypsyny. Nastepnie, zawiesine komórek potrakto¬ wanych trypsyna odsiewa sie poprzez dwie gru¬ bosci wysterylizowanej gazy. i odwirowuje przy 1500 obr/min w ciagu 5 minut. Upakowane ko¬ mórki umieszcza sie w osrodku wzrostowym w celu policzenia. Srodowisko wzrostowe sklada sie ze srodowiska 199 (Morgan, J. F. Morton. H. J. and Parker, R. C. Proc. Soc. Exp. Biol. and Med., •73:1-8, 1950) zawierajacego 2% surowicy cielecej agamma (Surowica cieleca agamma oznacza su¬ rowice cieleca, z której usunieto globuline gam¬ ma w procesie frakcjonowania) ogrzewanej w temperaturze 56°C w ciagu 30 minut i 50 mcg/ml neomycyny. Hodowle w butelkach posiewa sie w celu otrzymania stezenia 350 000 zdolnych do zycia komórek na ml. Po operacji inkubacji w tempe¬ raturze 36°C w ciagu 36—48 godzin, hodowle bu¬ telkowe mozna zastosowac w seryjnym etapie roz¬ woju lub do przygotowania szczepionki.Hodowle tkankowe embrionu kaczki przygoto¬ wuje sie w szklanych butelkach przy zastosowa¬ niu srodowiska 199, zawierajacego 2% dezaktywo- wanej cielecej surowicy jako srodowiska wzrosto¬ wego. Trzy do czterech dni po posianiu, odciaga sie w' aseptycznych warunkach srodowisko wzro¬ stowe, a hodowle butelkowe przemywa cztery ra¬ zy BBS Hanksa, 100 ml na jedno przemycie, a nastepnie zaszczepia 2,5 milimetrami wyzej wspom-60 449 6 nianego nierozcienczonego wirusa rózyczki na bu¬ telke. Szescdziesiat ml srodowiska 199, zawiera¬ jacego 10% sorbitolu w charakterze stabilizatora zakaznosci, dodaje sie do kazdej hodowli butelko¬ wej, a nastepnie butelki poddaje sie inkubacji w temperaturze 30—34°C. Neomycyne o stezeniu 50 mcg/ml wlacza sie do srodowiska wzrostowego.Przeprowadza sie szereg zbiorów w odstepach cza¬ su 2—4 dni, przy czym butelki z hodowla sa po¬ wtórnie wypelniane swiezym srodowiskiem, za¬ wierajacym wyzej wspomniany czynnik stabili¬ zujacy. Kolejne etapy rozwoju odbywaja sie w temperaturze 32°C. Przeprowadza sie miareczko¬ wanie zdolnosci infekcyjnej kazdego zbioru* w ho¬ dowlach tkankowych nerki malpy. Kazdy zbiór gromadzi sie w warunkach aseptycznych w wy- sterylizowanym pojemniku. Zostaja pobrane prób¬ ki do mikrobiologicznych badan wysterylizowania, pozostalosc tworzy zamarznieta warstwa w suchej kapieli zamarznietego alkoholu.Plyny zawierajace wirus sa magazynowane w temperaturze —70°C w elektrycznym urzadzeniu chlodniczym, przed selekcja odsiewu lub odsie¬ wów po dokonaniu kompletnych operacji miarecz¬ kowania majacych na celu okreslenie stopnia za¬ kazenia. Wybrany material nastepnie usuwa sie z urzadzenia chlodniczego i rozmraza. Przeprowadza sie kontrole i próby bezpieczenstwa próbki. Po¬ zostala ciecz oczyszcza nastepnie, a próbke pod¬ daje sie próbom bezpieczenstwa na malpach. Do pozostalej cieczy dodaje sie dodatkowo odpowiedni czynnik stabilizujacy. Ciecze rozprowadza sie do poszczególnych ampulek, a nastepnie suszy. Po procesie osuszenia, ampulki kapsluje sie i zatapia z mozliwoscia uzyskania szczepionki po dodaniu wyjalowionej wody. Moc produktu ocenia sie na podstawie zdolnosci infekcyjnej hodowli komór¬ kowych. Dodatkowo oslabiona szczepionka, zaszcze¬ piona malpom pozajelitowo w sposób regularny, powoduje powstawanie duzej ilosci specyficznych neutralizujacych przeciwcial, które zostaja w or¬ ganizmie w niezmienionej ilosci przez przynaj¬ mniej rok.Doswiadczenia z ludzmi. Siedmiorgu dzieciom nie zakazonym uprzednio wirusem rózyczki podano pozajelitowo szczepionke oslabionego wirusa ró¬ zyczki. W organizmie wszystkich powstala duza ilosc neutralizujacych przeciwcial (1:16 — 1:64) w okresie jednego miesiaca po szczepieniu. Ilosc tych przeciwcial równa sie z grubsza ilosci, która jest wytwarzana przy rozwoju choroby naturalnej.Niektóre dzieci mialy goraczke niewielka, nie¬ wielka i przemijajaca wysypke i klinicznie slabo zaznaczona limfodemopatiie.Przyklad II. Postepuje sie jak w przy¬ kladzie I, z tym, ze inkubacja wirusa rózyczki odbywa sie w temperaturze okolo 36°C.Przyklad III. Postepuje sie jak w przy¬ kladzie II, z tym, ze trzy seryjne inkubacje wiru¬ sa przeprowadza sie w temperaturze 36°C, a na¬ stepnie siedem w temperaturze 32°C. Aby dodat¬ kowo oslabic wirus, mozna przeprowadzac wiecej niz dziesiec sukcesywnych etapów rozwoju wiru¬ sa w hodowli 'tlenkowej amibriotnu kaczki. Etapy te 30 35 moga obejmowac inklinacje w hodowlach w ner¬ kach malpy lub w zaplodnionych jajach kurzych.Jest to zilustrowane w nastepujacych przykla¬ dach w których: GMK oznacza hodowle nerki malpy EAM oznacza zaplodnione jaja kurze DEF oznacza hodowle tkankowa embrionu kaczki Przyklad IV. 2 GMiK -^ [1 EAM -^9 GMK -J- -^5 DEF (36aC) -^ 5 DEF <32°C) Przyklad V. 2 GMK -r- 1 EAIM -*- 13 GMK r2 DEF <36°C) -f- 8 DEF (32°C) Przyklad VI. 2 GMK -^ 1 EAM +• 17 GiMK -7-10 DEF (32°C) Przyklad VII. 21 GMK -r- 3 DEF 36°C) -r- -h 7 DEF (32°C) W wyniku postepowania opisanego w przykla¬ dach IV, V, VI d VII otrzymuje sile szczepionki których moc przedstawiono w ponizszym zestawie¬ niu. Moc szczepionki wyrazona jest w postaci miana zakaznosci, które odpowiada stezeniu zaka¬ zajacego drobnoustroju w srodowisku. Miano to mozna okreslic równiez jako minimalna dawke zakazajaca kulture tkankowa. Zazwyczaj okresla sie je jako odwrotnosc rozcienczenia.Jednostka TCID50 (dawka zakazajaca kulture tkankowa w odniesieniu do 50%) jest miara ste¬ zenia wirusa. Tak wiec np. sporzadza sie dwu¬ krotne rozcienczenie zawiesiny wirusowej, której miano ma sie okreslic i bada sie ich stopien za¬ kaznosci tkanek, przy czym dla kazdlego rozcien¬ czenia stosuje sie kilka próbek. Za jednostke za¬ kaznosci przyjmuje sie dawke wirusa w takim roz¬ cienczeniu, które wywoluje rozpad tkanek w polo¬ wie próbek. Miano wyrazone w TCIDso na ml za¬ wiesimy oblicza sie jako wielokrotnosc tej dawki. 40 Przyklad IV V VI VII Moc (TCID50) 10-2.5/1,0 ml 10-4.0/1,0 ml 10-2.5/1,0 ml 10-2.8/1,0 ml 55 60 65 Wynalazek zostal opisany w odniesieniu do dziesieciu seryjnych etapów przejscia przez DEF, w celu zapewnienia oslabienia wirusa, lecz moze okazac sie wystarczajaca równiez mniejsza ich ilosc.Wynalazek moze takze obejmowac pojedynczy proces inkubacji w DEF w celu osiagniecia zada¬ nej formy wirusa, który spowoduje powstanie przeciwcial w organizmie, przeciwdzialajacych ciezkim objawom choroby. Mozna oczekiwac, ze nastepne etapy rozwoju po procesie pierwszego wzrostu w DEF moga dac w wyniku zwiekszone oslabienie wirusa. PL PL PL

Claims (4)

1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób otrzymywania szczepionki rózyczki, znamienny tym, ze wirus rózyczki izoluje sie z7 60 449 8 materialu klinicznego przez zaszczepienie go w hodowli tkankowej embrionu kaczki lub hodowli tkankowej nerki malpy i inkubacje tej hodowli w temperaturze 30—38°C, nastepnie sukcesywnie pasazuje sie wymieniony wirus dostateczna ilosc razy w srodowiskach hodowlanych w celu osla¬ bienia wirusa, przy czym przynajmniej dziesiec z wymienionych pasazy dokonuje sie w srodowis¬ kach zawierajacych hodowle pokrajanego i po¬ traktowanego trypsyna dziesiecio- lub jedenasto- dniowego, pozbawionego glowy i konczyn embrio¬ nu kaczki, w srodowisku wzrostu komórek, w temperaturze 30—38°C, a jednoczesnie po kazdym wymienionym pasazu przeprowadza sie oznaczenie zdolnosci zakazenia na zbiorach próbnych w od¬ stepach 2—14 dni, przy czym zbiory te zamraza sie do momentu dokonywania pomiaru, zas je¬ zeli wirusy wykazuja zbyt duzy stopien wirulent- nosci, poddaje sie je ponownemu pasazowaniu w srodowisku hodowlanym.
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze stosuje sie dziesieciodniowy embrion kaczki.
3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze inkubacje prowadzi sie na etapie pasazowania w temperaturze 35—38°C.
4. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze inkubacje prowadzi sie na etapie pasazowania w temperaturze 30—34°C. 10 Bltk 1340/70 r. 220 egz. A4 PL PL PL
PL121543A 1967-07-05 PL60449B1 (pl)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL60449B1 true PL60449B1 (pl) 1970-04-25

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Swayne et al. Influence of virus strain and antigen mass on efficacy of H5 avian influenza inactivated vaccines
Anis et al. Antigenic analysis of genetic variants of Canine distemper virus
US4122167A (en) Respiratory synctial vaccine
US4224412A (en) Living virus culture vaccine against canine distemper and method of preparing same
Rosenberger et al. Characterization of several viruses isolated from chickens with inclusion body hepatitis and aplastic anemia
Beck et al. Mumps vaccine L-Zagreb, prepared in chick fibroblasts. I. Production and field trials
US8178110B2 (en) Reovirus compositions and methods of use
HU183765B (en) Process for producing lyophilized vaccine against duck hepatitis
DK162421B (da) Hundeparvovirus-vaccine, fremgangsmaade til fremstilling heraf og virusstamme til brug i vaccinen
CA1109393A (en) Vaccine and its preparation
US4324861A (en) Preparation of live attenuated mumps virus for a vaccine
DE60019178T2 (de) Neue Antigenklasse von Geflügelreoviren
CN104056265B (zh) 猪圆环病毒2型、猪繁殖与呼吸综合征二联疫苗及其制备方法
AU782013B2 (en) IBDV strain for in ovo administration
US3555149A (en) Mumps vaccine and its preparation
US4215107A (en) Parainfluenza virus vaccine and its preparation
PL60449B1 (pl)
US3401084A (en) Rubella vaccine and its preparation
US4145252A (en) Respiratory syncytial vaccine
US3143474A (en) Preparation of duck-embryo modified infectious canine hepatitis virus vaccine
JP2006503863A (ja) トリ吸収不良症候群に関与するウイルスを含有するワクチンおよびその投与法
EP0000677B1 (en) Parainfluenza virus vaccine and its preparation
US3098011A (en) Process of producing a vaccine against distemper
GB1560185A (en) Respiratory syncytical virus vaccine
Koprowski et al. Propagation of Japanese B encephalitis virus in the developing chick embryo