PL36968B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL36968B1
PL36968B1 PL36968A PL3696852A PL36968B1 PL 36968 B1 PL36968 B1 PL 36968B1 PL 36968 A PL36968 A PL 36968A PL 3696852 A PL3696852 A PL 3696852A PL 36968 B1 PL36968 B1 PL 36968B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
bacteria
viability
measured
depth
electrodes
Prior art date
Application number
PL36968A
Other languages
English (en)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Publication of PL36968B1 publication Critical patent/PL36968B1/pl

Links

Description

Wynalazek dotyczy sposobu elektrycznego po¬ miaru zywotnosci bakterii oraz urzadzenia do wy¬ konywania tego sposobu.Znany dotychczas sposób pomiaru zywotnosci bakterii polega badz na dokonywaniu posiewów bakterii na rózne podloza i kultywowaniu tych posiewów w odpowiedniej temperaturze, badz tez na wykorzystywaniu zjawiska kataforozy i mie¬ rzeniu szybkosci ruchu bakterii w polu elektrycz¬ nym, zmieniajacej sie pod wplywem wszystkich tych czynników, które zmieniaja i hamuja zywot¬ nosc bakterii.-Poniewaz wzrost bakterii, zaleznie od ich ro¬ dzaju i stopnia hamowania ich zywotnosci, wy¬ maga okresu czasu wynoszacego od 48 godzin do 3 miesiecy, przeto przy zastosowaniu pierwszego z wyzej wymienionych sposobów pomiaru zywot¬ nosci bakterii, zahamowanie ich, zywotnosci mo¬ zna stwierdzic dopiero po uplywie tego czasu, drugi natomiast z podanych sposobów nie nadaje sie do stosowania w praktyce, gdyz mikrosko¬ powa metoda pomiaru szybkosci kataforetycznej wymaga dokonania duzej liczby pomiarów czasu potrzebnego do przebycia przez bakterie pewnej okreslonej drogi w jednostkowym polu elek¬ trycznym, wytworzonym przez prad staly i wy¬ konania przeliczen licznych wzorów.Niedogodnosci te usuwa sposób elektrycznego pomiaru zywotnosci bakterii, stanowiacy przed¬ miot wynalazku i polegajacy na mierzeniu za po¬ moca podzialki sruby mikrometrycznej mikro¬ skopu tylko glebokosci warstwy cieczy, w której znajduja sie badane bakterie, posiadajace mie¬ rzona szybkosc kataforetyczna (V' = O) równa zeru. Sposób wedlug wynalazku nie wymaga za¬ tem mierzenia czasu potrzebnego bakteriom na przebycie okreslonej drogi w jednostkowym polu elektrycznym wytworzonym przez prad staly — jak to ma miejsce przy znanej dotychczas me¬ todzie pomiaru zywotnosci bakterii.Doswiadczenia wykazaly, ze glebokosc war¬ stwy cieczy z bakteriami, która oznacza sie sym-bólem Xm, zmienia sie wraz ze zmiana szyb¬ kosci kataforetycznej bakterii, a wiec tym sa¬ mym i zywotnosci bakterii.Wynalazek jest blizej wyjasniony na rysunku, przedstawiajacym schematycznie przyklad wy¬ konania urzadzenia do wykonywania powyzej opisanego sposobu elektrycznego pomiaru zy¬ wotnosci bakterii. Sposób i urzadzenie stano¬ wiace przedmiot wynalazku, wykorzystujac zna¬ ne zjawisko elektroforezy, pozwalaja na skróce¬ nie czasu okreslenia zywotnosci bakterii do bar¬ dzo krótkiego okresu, bowiem zaledwie do 10—20 minut, przy czym wynik otrzymuje sie w procentach w stosunku do (predkosci elektro- loretycznej bakterii swiezo wyhodowanych, czyli w stosunku do predkosci elektroforetycznej tak zwanych bakterii wyjsciowych.W mysl wynalazku w zaglebieniu plytki pod¬ stawowej A, do której przymocowane sa najko¬ rzystniej przestawnie, uchwyty D, sluzace do umocowania w nich kapilarów E z umieszczo¬ nymi w nich elektrodami platynowymi B, osa¬ dzona jest kuwetka C, skladajaca sie z dwóch umieszczonych nad soba szkielek róznej dlugo¬ sci, na dolnym z których, posiadajacym wieksza dlugosc, naklejone sa równolegle dwa szklane preciki jednakowej grubosci i dlugosci, nie uwi¬ docznione na zalaczonym rysunku.Do wspomnianych elektrod B przylaczony jest z jednej strony woltomierz W, z drugiej zas strony miliamperomierz mA oraz opornik poten- cjometryczny R, do zacisków którego przylaczone jest dowolnego rodzaju zródlo pradu stalego F.Jezeli na dolne szkielko kuwetki C z naklejo¬ nymi na nim szklanymi precikami nalac kilka kropli cieczy, w której zawieszone sa badane bakterie, i nakryc ja górnym szkielkiem nakryw¬ kowym, to miedzy tymi szkielkami otrzyma sie równolegla warstwe cieczy z zawieszonymi w niej bakteriami, ograniczona z góry i z dolu tymi szkielkami oraz z obu boków dluzszych tych szkielek wspomnianymi szklanymi precikami.Nastepnie plytke A wraz z kuwetka C, zawie¬ rajaca ciecz z bakteriami, umieszcza sie na sto¬ liku mikroskopu lub ultramikroskopu i wlacza prad do elektrod B, które jak juz wspomniano sa umieszczone w kapilarach E. Kapilary E sa zamocowane w uchwytach D pionowo. Elektro¬ dy B sa przy tym tak ustawione, ze ich dolne konce opieraja sie o dolne szkielko kuwetki C.Takie ustawienie elektrod B w kapdlarach za¬ pewnia dobry ich styk z równolegla warstwa ba¬ danej cieczy dzieki wloskowatosci oraz pozwala na latwe usuwanie produktów elektrolizy.Przy wlaczeniu elektrod B w obwód pradu elektrycznego, skadajacego sie ze zródla pradu stalego F, np. baterii, anodowej lub prostow¬ nika ze stabilizatorem, opornika potencjonetycz- nego R, miliamperomierza mA, i równoleglej warstwy cieczy, zawartej miedzy szkielkami ku¬ wetki C — miedzy elektrodami B wytwarza sie pole elektryczne. Po wlaczeniu pradu obserwuje sie przez okular mikroskopu bakterie wedrujace do katody lub anody, w zaleznosci od znaku ich ladunku.W urzadzeniu wedlug wynalazku predkosc elektroforetyczna (kataforetyczna) mierzy sie za¬ tem metoda mikroskopowa lub ultramikrosko- powa, poslugujac sie znanym wzorem na rzeczy¬ wista szybkosc w równoleglej warstwie cieczy.Zaklada sie przy tym, ze obserwowana przez okular szybkosc V bakterii lub czastekzawiesin, lub czastek roztworów koloidalnych jest wypad¬ kowa szybkosci kataforetycznej bakterii (czastek stalych zawiesiny) i predkosci cieczy (wody) pod wplywem wytworzonego pola elektrycznego.Szybkosc rzeczywista V ruchu bakterii jest w kazdej glebokosci warstwy cieczy jednakowa dla 'danego rodzaju (szczepu) bakterii, natomiast szybkosc samej cieczy zalezy od glebokosci war¬ stwy, w której dokonano pomiaru. Szybkosc ru¬ chu bakterii, mierzona jako suma obu tych predkosci, zalezy w'ec od glebokosci warstwy zawiesiny.Znany jest nastepujacy wzór na glebokosc warstwy cieczy, w której szybkosc cieczy równa sie zeru, czyli mierzona szybkosc bakterii jest rzeczywista szybkoscia ruchu bakterii: Xi =d- ii-M (1( Ze wzoru tego wynika, ze ta glebokosc Xi warstwy cieczy zalezy od grubosci d tej war¬ stwy.W równoleglej warstwie cieczy miedzy szkiel¬ kami kuwetki C znajduje sie takze taka glebo¬ kosc, w której mierzona szybkosc V bakterii równa sie zeru. Jezeliby obserwowac pod mi¬ kroskopem bakterie w tej wlasnie warstwie, to zaobserwowano by, ze bakterie te sie nie poru¬ szaja, pomimo ze znajduja sie w polu elektrycz¬ nym.Majac wiec pewna warstwe zawiesiny o zna¬ nej zmierzonej grubosci d, zawierajacej zawie¬ szone w niej bakterie, znajdujace sie w polu ele¬ ktrycznym, wytworzonym miedzy elektrodami B, przez które przeplywa prad, jak równiez obli¬ czywszy na podstawie wzoru (1) glebokosc X± przystepuje sie nastepnie do szukania za pomoca 2mikroskopu takiej glebokosci Xv? w tej warstwie w której swiezo wyhodowane bakterie wyjscio¬ we posiadaja szybkosc wyjsciowa V równa zeru.Glebokosc te odczytuje sie w nastepujacy spo- sjb za pomoca ipodzialki sruby mikrometrycznej mikroskopu: " Obserwuje sie, poczawszy od dna warstwy o grubosci d, ruch bakterii, np. bacterium coli, i widzi sie ze sa one przenoszone w kierunku katody. Nastepnie szuka sie takiej glebokosci, w której ruch tych bakterii odbywa sie jeszcze w kierunku katody i glebokosc te odczytuje sie na srubie mikrometrycznej. Nastepnie odczytuje sie w ten sam sposób glebokosc, w której ruch bakterii odbywa sie juz w kierunku przeciw¬ nym, to Jest ku anodzie. Srednia arytmetyczna tych dwóch pomiarów oznacza sie powyzej wspomnianym symbolem JCW. Nastepnie w tenze sposób wyznacza sie Xm (mierzone) dla danej próbki bakterii tego samego szczepu, której zy¬ wotnosci sie poszukuje. Nalezy zaznaczyc, ze za¬ równo Xw jak i Xm wyznacza sie w warstwie cie¬ czy o tej samej grubosci d, przy jednakowym na¬ pieciu i przy tej samej ocUeglosci elektrod B w obu przypadkach.Na podstawie uzyskanych w ten sposób danych dla Xi, Xw i Xm przy zastosowaniu okreslonego napiecia pradu i okreslonej odleglosci miedzy- elektrodowej, oblicza sie w procentach zywot¬ nosc 2 bakterii wedlug nastepujacego stosunku, okreslajac zywotnosc bakterii wyjsciowej przez jej predkosc elektroforetyczna „wyjsciowa" jako 100%-wa.Xw — Xx 100 Xm-X1 =^~ (2) W przypadku gdy Xm < X1 cm, wyrazenie Xm — X1 staje sie mniejsze od zera i wówczas szybkosc kataforetyczna bakterii zmienia znak i zywotnosc bakterii zostaje calkowicie zahamo¬ wana.Jezeli zatem Xm jest mniejsze od Xh czyli Xm lezy w zakresie liczb miedzy O Xh to bez korzystania ze stosunku podanego we wzorze (2) mozna stwierdzic, ze zywotnosc bak¬ terii jest zahamowana. Procent zywotnosci ob¬ licza sie dla Xm, lezacych w zakresie wartosci xi xw Jest rzecza oczywista, ze podczas dokonywania pomiarów nalezy wlaczyc, miliamperomierz mA i odczytywac glebokosci przy ustalonym pradzie, kontrolujac za pomoca woltomierza w napiecie na elektrodach B.W przypadku gdy szybkosc kataforetyczna bakterii jest O, co ma np. miejsce przy bada¬ niu zywotnosci gronkowca zlocistego, zywotnosc procentowa bakterii oblicza sie ze wzoru: Xx — Xw 100 Xi - xm ^z% (3) przy czym Xx Xw i Xt Xm, Ucz Xm Xw Jezeli Xm l^zy w obrebie pobialki sruby mi¬ krometrycznej mikroskopu miedzy Xw X^, czyli jezel; xw < xm < xi wówczas zywotnosc bakterii oblicza sie na pod¬ stawie wzoru (3), przy czym im Xm jest wieksze, tym Z % jest mniejsze. PL

Claims (3)

  1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób elektrycznego pomiaru zywotnosci bakterii, pratków B. C. G. i bakterii innych szcze¬ pionek plemników oraz innych ozywionych komórek, znamienny tym, ze poczatkowo mierzy sie za pomoca sruby mikrometrycznej mikro¬ skopu lub ultramikroskopu taka glebokosc (Xw) warstwy cieczy z zawieszonymi w niej ustrojami, umieszczonej miedzy dwoma szkiel¬ kami i ograniczonej bocznie dwoma szklanymi precikami, w której swiezo wyhodowane bakte¬ rie posiadaja mierzona szybkosc elektroforetyczna równa zeru, a nastepnie dokonuje sie pomiaru takiejze glebokosci warstwy cieczy, w której bakterie tego samego szczepu co swiezo wyho¬ dowane, lecz poddane dzialaniu czynnika hamu¬ jacego zywotnosc tych ustrojów, wykazuja mie¬ rzona szybkosc kataforetyczna (Xm) równa zeru, po czym na podstawie tych dwóch wartosci (Xw) i (Xffl) okresla sie zywotnosc danych ustro¬ jów w procentach za pomoca wzoru Xw — X< 100 —-= dla ustrojów, których pred- Xm—X1 2o/o kosc elektroforetyczna Z O i za pomoca wzoru Xi — Xw 100 - —- — dla ustrojów, których pred¬ ki — Xm 2o/o kosc elektroforetyczna O, gdzie zas d oznacza grubosc warstwy cieczy.
  2. 2. Urzadzenie do wykonywania sposobu we¬ dlug zastrz. 1, znamienne tym, ze jest zao¬ patrzone w kuwetke (C), skladajaca sie z dwóch róznej dlugosci szkielek, umieszczonych jedno nad drugim, miedzy którymi wstawione sa jed¬ nakowej grubosci i dlugosci preciki szklane, przy czym przestrzen miedzy tymi precikami oraz miedzy szklem dolnym i górnym jest wypelnio¬ na ciecza z ustrojami, których zywotnosc ma byc 3mierzona oraz wyposazona jest w elektrody, osadzone w kapilarach (E), umocowanych w uchwytach (D) plytki podstawowej (A), naj¬ lepiej nastawnych, wskutek czego odleglosc mie¬ dzy tymi elektrodami msze byc dowolnie regulo¬ wana. 3. Urzadzenie wedlug zastrz. 2, znamien¬ ne tym, ze kuwetka (C) jest umteszczona we wglebieniu plytki podstawowej (A). Ludwika Lepszo w a Zastepca: Kolegium Rzeczników Patentowych „Prasa" Stalinogród, 4777 — 25.
  3. 3. 54 — R-fl-9597 — BI bezdrz. ioo g — 100 BIBLIOTEKA Urzedu Patentowego PL
PL36968A 1952-11-10 PL36968B1 (pl)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL36968B1 true PL36968B1 (pl) 1954-02-15

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hodgkin The effect of potassium on the surface membrane of an isolated axon
Primak et al. Electrical conductivities of natural graphite crystals
US4456513A (en) Method of and apparatus for measuring electrophoretic mobility
Boyd et al. Membrane constants of mammalian muscle fibres
Kamada Some observations on potential differences across the ectoplasm membrane of Paramecium
JPWO2009037804A1 (ja) 微粒子測定装置および微粒子測定方法
Baudet et al. How to Make and Use Calcium–Specific Mini–and Microelectrodes
Guo et al. A microchip integrating cell array positioning with in situ single-cell impedance measurement
WO2009090280A1 (es) Dispositivo y procedimiento para medir concentración de biomasa, y uso de un elemento electrónico chip para medir dicha concentración de biomasa
DE69702966T2 (de) Verfahren zur quantitativen bestimmung einer nukleinsäure in einer lösung durch messung der elektrischen leitfähigkeit und vorrichtung dafür
PL36968B1 (pl)
Taylor et al. Potentiometric determinations in the protoplasm and cell-sap of Nitella
JPWO2009093458A1 (ja) 微粒子測定装置および微粒子測定方法
Miller et al. 60 Hz electric field parameters associated with the perturbation of a eukaryotic cell system
del Castillo et al. On increasing the velocity of a nerve impulse
Torgesen et al. Equipment for Single Crystal Growth from Aqueous Solution
US3313720A (en) Apparatus for measuring dissolved oxygen in water
US3339138A (en) Apparatus for measuring the resistivity of molten glass
Novák et al. Orientation of Fucus egg polarity by electric ac and dc fields
Halliwell et al. Using microelectrodes
Lobo et al. Diffusion coefficients in aqueous solutions of hydrochloric acid at 298 K
Kim et al. Effects of temperature and pressure on conductance of solid electrolyte, rubidium silver iodide
Sen A method for measuring the change of permeability to ions of single cells under electric stimulation
Paine Cataphoresis in copper oxide sols. The application of Debye and Hückel's theory of electrolytic conduction to colloid particles
Greathouse Conductivity measurements of plant sap