PL244834B1 - Sposób otrzymywania nanocząstek lipidowych syntetyzowanych na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora) - Google Patents

Sposób otrzymywania nanocząstek lipidowych syntetyzowanych na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora) Download PDF

Info

Publication number
PL244834B1
PL244834B1 PL438767A PL43876721A PL244834B1 PL 244834 B1 PL244834 B1 PL 244834B1 PL 438767 A PL438767 A PL 438767A PL 43876721 A PL43876721 A PL 43876721A PL 244834 B1 PL244834 B1 PL 244834B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
rpm
speed
seconds
amount
oil
Prior art date
Application number
PL438767A
Other languages
English (en)
Other versions
PL438767A1 (pl
Inventor
Marta Marzec
Izabela Nowak
Przemysław Dąbek
Andrzej Witkowski
Original Assignee
Univ Im Adama Mickiewicza W Poznaniu
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Im Adama Mickiewicza W Poznaniu filed Critical Univ Im Adama Mickiewicza W Poznaniu
Priority to PL438767A priority Critical patent/PL244834B1/pl
Priority to EP22460021.3A priority patent/EP4137125A1/en
Publication of PL438767A1 publication Critical patent/PL438767A1/pl
Publication of PL244834B1 publication Critical patent/PL244834B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/48Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
    • A61K9/50Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
    • A61K9/51Nanocapsules; Nanoparticles
    • A61K9/5107Excipients; Inactive ingredients
    • A61K9/5123Organic compounds, e.g. fats, sugars
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/02Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by special physical form
    • A61K8/0241Containing particulates characterized by their shape and/or structure
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/18Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
    • A61K8/92Oils, fats or waxes; Derivatives thereof, e.g. hydrogenation products thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/18Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
    • A61K8/92Oils, fats or waxes; Derivatives thereof, e.g. hydrogenation products thereof
    • A61K8/922Oils, fats or waxes; Derivatives thereof, e.g. hydrogenation products thereof of vegetable origin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/18Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
    • A61K8/96Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing materials, or derivatives thereof of undetermined constitution
    • A61K8/97Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing materials, or derivatives thereof of undetermined constitution from algae, fungi, lichens or plants; from derivatives thereof
    • A61K8/9706Algae
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61QSPECIFIC USE OF COSMETICS OR SIMILAR TOILETRY PREPARATIONS
    • A61Q17/00Barrier preparations; Preparations brought into direct contact with the skin for affording protection against external influences, e.g. sunlight, X-rays or other harmful rays, corrosive materials, bacteria or insect stings
    • A61Q17/04Topical preparations for affording protection against sunlight or other radiation; Topical sun tanning preparations
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61QSPECIFIC USE OF COSMETICS OR SIMILAR TOILETRY PREPARATIONS
    • A61Q19/00Preparations for care of the skin
    • A61Q19/08Anti-ageing preparations
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K2800/00Properties of cosmetic compositions or active ingredients thereof or formulation aids used therein and process related aspects
    • A61K2800/40Chemical, physico-chemical or functional or structural properties of particular ingredients
    • A61K2800/41Particular ingredients further characterized by their size
    • A61K2800/413Nanosized, i.e. having sizes below 100 nm
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K2800/00Properties of cosmetic compositions or active ingredients thereof or formulation aids used therein and process related aspects
    • A61K2800/40Chemical, physico-chemical or functional or structural properties of particular ingredients
    • A61K2800/59Mixtures
    • A61K2800/591Mixtures of compounds not provided for by any of the codes A61K2800/592 - A61K2800/596
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K2800/00Properties of cosmetic compositions or active ingredients thereof or formulation aids used therein and process related aspects
    • A61K2800/80Process related aspects concerning the preparation of the cosmetic composition or the storage or application thereof
    • A61K2800/805Corresponding aspects not provided for by any of codes A61K2800/81 - A61K2800/95

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Birds (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Nanotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Optics & Photonics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Gerontology & Geriatric Medicine (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Manufacturing Of Micro-Capsules (AREA)

Abstract

Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania nanocząstek lipidowych, syntetyzowanych na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora), charakteryzujących się wielkością cząstek w zakresie 100 – 300 nm. Sposób otrzymywania nanocząstek lipidowych syntetyzowanych na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora) metodą HSH polega na tym, że ogrzewa się mieszaninę zawierającą stearynian glicerolu (Imwitor 900K) w ilości 1 – 5 g korzystnie 2,5 g, bromek cetylotrimetyloamoniowy (CTAB) w ilości 0,1 – 0,8 g korzystnie 0,4 g, lipidy wyekstrahowane wcześniej z okrzemek Halamphora w ilości 0,2 – 1 g korzystnie 0,6 g, olej z mikroglonów morskich (Schizochytrium) w ilości 0,4 – 1,2 g korzystnie 0,8 g i glicerol w ilości 5 – 15 g korzystnie 10 g, do temperatury powyżej 75°C przy ciągłym mieszaniu z prędkością 400 – 600 rpm korzystnie 600 rpm do uzyskania jednolitej konsystencji, następnie mieszaninę poddaje się prehomogenizacji przy prędkości 8 000 – 24 000 rpm korzystnie 13 500 rpm przez 5 – 20 sekund korzystnie 10 sekund, dalej do zhomogenizowanej próbki dodaje się 1 ml roztworu wodnego Tween 80 podgrzanego do temperatury 40°C o stężeniu 10 – 60% wag., korzystnie 30% wag. i miesza się z prędkością 400 – 600 rpm korzystnie 600 rpm przez 0,5 – 2 minut korzystnie przez 1 minutę do uzyskania jednolitej konsystencji, dalej próbkę poddaje się dwuetapowej homogenizacji właściwej: w pierwszym etapie przy prędkości 13 500 – 24 000 rpm korzystnie 20 500 rpm przez 5 – 15 sekund korzystnie 10 sekund; w drugim etapie przy prędkości 8 000 – 13 500 rpm korzystnie 9 500 rpm przez 5 – 15 sekund korzystnie 10 sekund, po czym tak powstałą dyspersję dodaje się do 14 – 14,9 ml korzystnie 14,3 ml roztworu wodnego Tween 80 o stężeniu 10 – 60% wag. korzystnie 30% wag. przy ciągłym mieszaniu z prędkością 350 – 550 rpm, korzystnie 350 rpm i miesza do momentu ochłodzenia układu do temperatury pokojowej korzystnie 25°C i do otrzymania nanocząstek lipidowych typu NLC, charakteryzujących się wielkością cząstek w zakresie 100 – 300 nm.

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania nanocząstek lipidowych, syntetyzowanych na bazie lipidów z glonów, tj. oleju z mikroglonów (potocznie nazywanych mikroalgami) morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora), charakteryzujących się wielkością cząstek w zakresie 100-300 nm oraz mających zastosowanie w preparatach farmaceutycznych oraz kosmetycznych.
Nanocząstki lipidowe stosowane są jako nośniki substancji aktywnych w produktach farmaceutycznych od roku 1990 oraz kosmetycznych od 2005, zapewniając poprawę penetracji składników czynnych do docelowego miejsca działania. Pierwszą generację nośników stanowią stałe nanocząstki lipidowe (ang. solid lipid nanoparticles, SLN), których kluczową wadą jest relatywnie niska pojemność dla enkapsulowanej substancji czynnej oraz ich tendencja do postępującego ubytku związku aktywnego z matrycy lipidowej podczas przechowywania utworzonej dyspersji. Drugą generację nośników lipidowych stanowią nanostrukturalne nośniki lipidowe (ang. nanostructured lipid carriers, NLC), w których do lipidów stałych dodane zostały lipidy ciekłe (oleje). W porównaniu do klasycznych SLN, takie rozwiązanie zapewniło możliwość zwiększenia ilości inkorporowanego związku czynnego oraz poprawę stabilności fizycznej dyspersji nanocząstek lipidowych i stabilności chemicznej enkapsulowanej substancji aktywnej. Tematyka obejmująca wykorzystanie nanocząstek lipidowych jako nośników przeznaczonych do celów farmaceutycznych oraz kosmetycznych została szeroko opisana w pracach: E.B. Souto, I. Baldim, W.P. Oliveira, R. Rao, N. Yadav, F.M. Gama, S. Mahant, Expert Opinion on Drug Delivery, 2020, 17(3), 357-377; E.B. Souto, R.H. Muller, Lipid Nanoparticles (Solid Lipid Nanoparticles and Nanostructured Lipid Carriers) for Cosmetic, Dermal, and Transdermal Applications, w: D. Thassu (red.), Nanoparticulate Drug Delivery Systems, CRC Press, 2007, 213-233. Ponadto, synteza NLC oparta na wprowadzeniu do matrycy lipidowej olejów pochodzenia naturalnego wydaje się być zasadna z punktu widzenia obniżenia ryzyka wystąpienia reakcji niepożądanych po kontakcie ze skórą jak i samych właściwości olejów, m.in. antyoksydacyjnych, a nawet fotoprotekcyjnych [G. Badea, I. Lacatuęu, N. Badea, C. Ott, A. Meghea, Industrial Crops and Products, 2015, 67, 18-24], korzystnych z punktu widzenia późniejszego ich wykorzystania w produktach farmaceutycznych i kosmetycznych.
Dobór metody otrzymywania nanocząstek lipidowych uzależniony jest w głównej mierze od docelowej struktury i rozmiaru nośnika. W przypadku penetracji przez skórę (przede wszystkim przeznaskórkowej), wielkość nośników w zakresie 100-300 nm predysponuje je do wykorzystania jako surowców farmaceutycznych/kosmetycznych. Znanych jest wiele metod otrzymywania nanocząstek lipidowych obejmujących między innymi metodę homogenizacji wysokociśnieniowej (HPH), z wykorzystaniem homogenizatora wysokoobrotowego (HSH), metodę mikroemulsji czy też sonikacji przedstawione szczegółowo w M. Uner, Pharmazie, 2006, 61,375-386 oraz E.B. Souto, I. Baldim, W.P. Oliveira, R. Rao, N. Yadav, F.M. Gama, S. Mahant, Expert Opinion on Drug Delivery, 2020, 17(3), 357-377. Dotychczas nanostrukturalne nośniki lipidowe zawierające oleje pochodzenia naturalnego otrzymuje się w toku:
J syntezy metodą homogenizacji wysokociśnieniowej (300-800 bar, temp. 40-70°C) z zastosowaniem, m.in. oleju buriti, oleju kokosowego, oleju z orzechów brazylijskich, oleju z passiflory, oleju andiroba, oleju z jagód accai, oleju arganowego, oleju z awokado, oleju rumiankowego, oleju słonecznikowego lub ich kombinacji [WO2017185147A1; https://patents.google.com/patent/WO2017185147A1/en]. Synteza zaproponowana przez twórców wynalazku bazuje na zastosowaniu w ramach dyspersji nanocząstek lipidowych masła murumuru w ilości 0,5-15% wag., mieszaniny estrów glicerolu i poliacyladypinianu na poziomie 0,3-10% wag., lipidu ciekłego w przedziale 0,01-20% wag. oraz surfaktantu w ilości 0,01-5% wag. Rozmiar otrzymanych nośników mieści się w zakresie 160-250 nm;
J syntezy metodą homogenizacji wysokociśnieniowej (100-2000 bar, temp. 50-90°C) z zastosowaniem oleju z Petiolus Trachycarpi i lipidu stałego w stosunku 90 : 10 [CN102283809B; https://patents.google.com/patent/CN102283809B/en]. W trakcie trwania syntezy modyfikacji poddano rodzaj zastosowanych surfaktantów hydrofilowych oraz lipofilowych;
J syntezy metodą sonikacji z zastosowaniem oleju sojowego lub arachidowego [CN1490055A; https://patents.google.com/patent/CN1490055A/en]. Proces syntezy zakłada zastosowanie kwasu tłuszczowego i oleju w stosunku od 10 : 1 do 1 : 1, Tween 80 jako surfaktantu oraz poprzedzenie procesu sonikacji homogenizacją HSH przy prędkości 3000-25000 rpm. Otrzymuje się NLC wielkości 200-300 nm, stabilne przez czas 8 tygodni.
syntezy metodą homogenizacji wysokociśnieniowej (80-1000 bar) z zastosowaniem, m.in. oleju sojowego, oleju słonecznikowego, oleju kukurydzianego, oliwy z oliwek, oleju palmowego, oleju z nasion bawełny, oleju rzepakowego, oleju arachidowego, oleju rycynowego, oleju lnianego, oleju z ogórecznika, oleju z wiesiołka oraz dodatkowej otoczki polimerowej chroniącej inkorporowane substancje aktywne przed chemiczną degradacją [ES2384060B1; https://patents.google.com/patent/ ES2384060B1/en]. Zsyntetyzowane nośniki lipidowe (rozmiar w przedziale 102-198 nm) przeznaczone są zastosowania w produktach kosmetycznych, farmaceutycznych oraz żywnościowych.
Pozyskiwanie lipidów z okrzemek (m.in. z gatunku Halamphora) przeprowadzane jest najczęściej z wykorzystaniem powszechnie znanej jednoetapowej metody, opisanej w pracy M. Axelsson, F. Gentili, A singie-step method for rapid extraction of total lipids from green microalgae, PLoS ONE 2014, 9, e89643, doi: 10.1371/journal.pone.0089643. Procedura zakłada dodanie 8 ml mieszaniny chloroformu i metanolu (v/v) w stosunku 2 : 1 do świeżej biomasy glonów (4 ml) znajdującej się w szklanej probówce wirówkowej. Biomasa zostaje zdyspergowana poprzez energiczne potrząsanie probówką przez kilka sekund, a następnie dodanie 2 ml 0,73% wodnego roztworu NaCI (układ 2 : 1 : 0,8 chloroform : metanol : woda (v/v/v)). Rozdzielenie faz przyspieszane jest poprzez 2-minutowe wirowanie przy prędkości 350 rpm, gdzie po zakończonym rozdziale dolną fazę stanowią ekstrahowane lipidy w chloroformie. Opisana powyżej metoda została w roku 2014 porównana z innymi metodami i w ramach cytowanej powyżej pracy określona jako najkorzystniejsza ze względu na wysoką wydajność procesu. Metoda oparta ma ekstrakcji w układzie chlorofrom-metanol-woda znana jest już od roku 1959 (E.G. Bligh, W.J. Dyer, A rapid method of total lipid extraction and purification, Can J Biochem Physiol, 1959, 37(8), 911-7, doi: 10.1139/o59-099). Metodę tę zastosowano do pozyskania lipidów z okrzemek (Halamphora).
Celem wynalazku jest opracowanie sposobu otrzymywania nanocząstek lipidowych, syntetyzowanych na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora), nośników charakteryzujących się wielkością cząstek w zakresie 100-300 nm, predysponującym je do wykorzystania jako surowiec farmaceutyczny/kosmetyczny.
Istotą wynalazku jest sposób otrzymywania nanocząstek lipidowych syntetyzowanych na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora) metodą homogenizacji z wykorzystaniem homogenizatora wysokoobrotowego (HSH), który polega na tym, że ogrzewa się mieszaninę zawierającą stearynian glicerolu (Imwitor 900K) w ilości 1-5 g korzystnie 2,5 g, bromek cetylotrimetyloamoniowy (CTAB) w ilości 0,1-0,8 g korzystnie 0,4 g, lipidy wyekstrahowane wcześniej z okrzemek Halamphora w ilości 0,2-1 g korzystnie 0,6 g, olej z mikroglonów morskich (Schizochytrium) w ilości 0,4-1,2 g korzystnie 0,8 g i glicerol w ilości 5-15 g korzystnie 10 g, do temperatury powyżej 75°C przy ciągłym mieszaniu z prędkością 400-600 rpm korzystnie 600 rpm do uzyskania jednolitej konsystencji, następnie mieszaninę poddaje się prehomogenizacji przy prędkości 8 000-24 000 rpm korzystnie 13 500 rpm przez 5-20 sekund korzystnie 10 sekund, dalej do zhomogenizowanej próbki dodaje się 1 ml wodnego roztworu monooleinianu polioksyetylenosorbitanu (Tween 80) podgrzanego do temperatury 40°C o stężeniu 10-60% wag. korzystnie 30% wag. i miesza się z prędkością 400-600 rpm korzystnie 600 rpm przez 0,5-2 minut korzystnie przez 1 minutę do uzyskania jednolitej konsystencji, dalej próbkę poddaje się dwuetapowej homogenizacji właściwej: w pierwszym etapie przy prędkości 13 500-24 000 rpm korzystnie 20 500 rpm przez 5-15 sekund korzystnie 10 sekund; w drugim etapie przy prędkości 8 000-13 500 rpm korzystnie 9 500 rpm przez 5-15 sekund korzystnie 10 sekund, po czym tak powstałą dyspersję dodaje się do 14-14,9 ml korzystnie 14,3 ml wodnego roztworu monooleinianu polioksyetylenosorbitanu (Tween 80) o stężeniu 10-60% wag. korzystnie 30% wag. przy ciągłym mieszaniu z prędkością 350-550 rpm, korzystnie 350 rpm i miesza do momentu ochłodzenia układu do temperatury pokojowej korzystnie 25°C i do otrzymania nanocząstek lipidowych typu NLC, charakteryzujących się wielkością cząstek w zakresie 100-300 nm.
Dzięki zastosowaniu rozwiązania według wynalazku uzyskano następujące efekty techniczno-użytkowe:
a. możliwość wykorzystania metody HSH - czyli metody niewymagającej zastosowania wysokiego ciśnienia;
b. właściwości zastosowanych lipidów:
Olej z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidy pozyskiwane z okrzemek (Halamphora) ze względu na korzystną kompozycją kwasów tłuszczowych mogą być z powodzeniem wprowadzane do syntezy nośników lipidowych w roli lipidów ciekłych wbudowywanych w matrycę lipidową NLC. Olej z mikroglonów zawiera układ wielonienasyconych kwasów tłuszczowych - kwas eikozapentaenowy - EPA, kwas dokozaheksaenowy - DHA - odpowiadające, m.in. za ochronę skóry przed negatywnym działaniem promieniowania słonecznego, zabezpieczając ją przed fotostarzeniem i powstawaniem przebarwień. Wspomagają również leczenie egzemy oraz nadmiernej szorstkości skóry, zapewniając prawidłowy poziom lipidów naskórkowych [H. Bojarowicz, B. Woźniak, Problemy Higieny i Epidemiologii, 2008, 89(4), 417-475]. Zbliżone działanie wykazują, zawarte w okrzemkach gatunku Halamphora, kwas oleopalmitynowy i palmitynowy, które regulują metabolizm kwasów tłuszczowych w obrębie naskórka. Sprzyjają wytwarzaniu większej ilości lipidów w ciałach lamelarnych warstwy ziarnistej naskórka, przyczyniając się do wzmożonego tempa procesów regeneracyjnych w przebiegu jednostek chorobowych skóry związanych z zaburzeniami rogowacenia [T.K. Lin, L. Zhong, J.L. Santiago, International Journal of Molecular Sciences, 2018, 19(1), 70];
c. możliwość uzyskania wielkości nośników lipidowych w zakresie 100-300 nm predysponuje je do wykorzystania jako surowiec farmaceutyczny/kosmetyczny;
d. homogeniczność rozkładu wielkości cząstek przejawia się wskaźnikiem polidyspersyjności (PDI) poniżej 0,26;
e. wysoka stabilność cząstek manifestowana potencjałem zeta powyżej +40 mV;
f. dodatni ładunek uzyskanych nanocząstek lipidowych jest korzystny ze względu na obecność oddziaływania elektrostatycznego pomiędzy ujemnie naładowaną powierzchnią skóry a dodatnio naładowanymi cząsteczkami.
Wynalazek ilustrują poniższe przykłady:
Przykład I
0,8 g oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz 0,6 g lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora) połączono z mieszaniną stopionego 2,5 g stearynianu glicerolu, 10 g glicerolu i 0,4 g CTAB oraz mieszano z prędkością 600 rpm do uzyskania jednolitej konsystencji, po czym zhomogenizowano przy prędkości 13 500 rpm przez 10 sekund. Następnie, dodano 1 ml wodnego roztworu monooleinianu polioksyetylenosorbitanu (Tween 80) podgrzanego do temperatury 40°C o stężeniu 30% wag. i mieszano z prędkością 600 rpm przez 1 minutę, po czym próbkę homogenizowano w dwóch etapach: I. przy prędkości 20 500 rpm przez 10 sekund; II. przy prędkości 9 500 rpm przez 10 sekund. Tak powstałą dyspersję dodano do 14,3 ml wodnego roztworu monooleinianu polioksyetylenosorbitanu (Tween 80) o stężeniu 30% wag. przy ciągłym mieszaniu z prędkością 350 rpm i mieszano do momentu ochłodzenia układu do temperatury pokojowej (25°C).
Przykład II
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, zmieniając stężenie roztworu surfaktantu niejonowego (monooleinianu polioksyetylenosorbitanu - Tween 80) na 10% wag.
Przykład III
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, zmieniając stężenie roztworu surfaktantu niejonowego (monooleinianu polioksyetylenosorbitanu - Tween 80) na 60% wag.
Przykład IV
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, zmieniając ilość oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) na 0,4 g.
Przykład V
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, zmieniając ilość oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) na 1,2 g.
Przykład VI
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 1 g.
Przykład VII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 5 g.
Przykład VIII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie II, zmieniając ilość oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) na 0,4 g.
Przykład IX
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie II, zmieniając ilość oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) na 1,2 g.
Przykład X
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie II, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 1 g.
Przykład XI
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie II, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 5 g.
Przykład XII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie III, zmieniając ilość oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) na 0,4 g.
Przykład XIII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie III, zmieniając ilość oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) na 1,2 g.
Przykład XIV
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie III, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 1 g.
Przykład XV
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie III, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 5 g.
Przykład XVI
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie IV, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 1 g.
Przykład XVII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie IV, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 5 g.
Przykład XVIII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie V, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 1 g.
Przykład XIX
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie V, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 5 g.
Przy kład XX
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie VIII, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 1 g.
Przykład XXI
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie VIII, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 5 g.
Przykład XXII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie IX, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 1 g.
Przykład XXIII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie IX, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 5 g.
Przykład XXIV
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie XII, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 1 g.
Przykład XXV
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie XII, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 5 g.
Przykład XXVI
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie XIII, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 1 g.
Przykład XXVII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie XIII, zmieniając ilość stearynianu glicerolu na 5 g.
Przykład XXVIII
Postępowanie analogiczne, jak w przykładzie I, zmieniając ilość lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora) na 0,2 g.
Przykład X XIX
Postępowanie analogiczne, jak w przykładzie I, zmieniając ilość lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora) na 1 g.
Przykład XXX
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, zmieniając ilość glicerolu na 5 g.
Przykład XXXI
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, zmieniając ilość glicerolu na 15 g.
Przykład XXXII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, zmieniając ilość CTAB na 0,1 g.
Przykład XXXIII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, zmieniając ilość CTAB na 0,8 g.
Przykład XXXIV
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując prędkość łączenia fazy lipidowej na 400 rpm.
Przykład XXXV
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując prędkość łączenia fazy lipidowej na 500 rpm.
Przykład XXXVI
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując czas prehomogenizacji na 5 sekund.
Przykład XXXVII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując czas prehomogenizacji na 20 sekund.
Przykład XXXVIII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując prędkość prehomogenizacji na 8 000 rpm.
Przykład XXXIX
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie XXXVIII, modyfikując czas prehomogenizacji na 5 sekund.
Przykład XL
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie XXXVIII, modyfikując czas prehomogenizacji na 20 sekund.
Przykład XLI
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując prędkość prehomogenizacji na 24 000 rpm.
Przykład XLII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie XLI, modyfikując czas prehomogenizacji na 5 sekund.
Przykład XLIII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie XLI, modyfikując czas prehomogenizacji na 20 sekund.
Przykład XLIV
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując prędkość dodawania roztworu surfaktantu niejonowego (monooleinianu polioksyetylenosorbitanu - Tween 80) na 400 rpm.
Przykład XLV
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując prędkość dodawania roztworu surfaktantu niejonowego (monooleinianu polioksyetylenosorbitanu - Tween 80) na 500 rpm.
Przykład XLVI
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując czas mieszania po dodaniu roztworu surfaktantu niejonowego (monooleinianu polioksyetylenosorbitanu - Tween 80) na 0,5 min.
Przykład XLVII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując czas mieszania po dodaniu roztworu surfaktantu niejonowego (monooleinianu polioksyetylenosorbitanu -- Tween 80) na 2 min.
Przykład XLVIII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując prędkość I etapu homogenizacji właściwej na 13 500 rpm.
Przykład XLIX
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując prędkość I etapu homogenizacji właściwej na 24 000 rpm.
Przykład L
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując prędkość II etapu homogenizacji właściwej na 8 000 rpm.
Przykład LI
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie XLVIII, modyfikując prędkość II etapu homogenizacji właściwej na 8 000 rpm.
Przykład LII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie XLIX, modyfikując prędkość II etapu homogenizacji właściwej na 13 500 rpm.
Przykład LIII
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując czas I etapu homogenizacji właściwej na 5 sekund.
Przykład LIV
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując czas I etapu homogenizacji właściwej na 15 sekund.
Przykład LV
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując czas II etapu homogenizacji właściwej na 5 sekund.
Przykład LVI
Postępowano analogicznie, jak w przykładzie I, modyfikując czas II etapu homogenizacji właściwej na 15 sekund.
PL 244834 Β1
Według przykładów l-LVI uzyskano nanostrukturalne nośniki lipidowe charakteryzujące się wielkością cząstek (Z-Ave) w przedziale 145,8-280,8 nm, wskaźnikiem polidyspersyjności (PDI) maksymalnie do 0,259 oraz potencjałem zeta (ZP) minimum 44,1 mV. Szczegółowe wyniki zebrano w poniższej tabeli:
Wskaźnik
Przykład Wielkość cząstek (Z-Ave) polidyspersyjności Potencjał zeta (ZP)
[nm] [mV]
(PDI) [-]
I. 194,5±3,5 0,194+0,014 50,l±0,8
II. 241,8±5,4 0,160+0,020 51,5+1,3
III. 179,9±3,2 0,178+0,018 49,9±0,6
IV. 203,6+4,2 0,186+0,010 51,4+0,7
V. 207,2+5,3 0,157+0,010 49,4+1,3
VI. 205,2±2,6 0,159+0,013 5G,5±0,5
VII. 195,2±3,4 0,155+0,015 50,8±0,5
VIII. 196,7±6,6 0,175+0,006 48,3±1,2
IX. 216,6±3,1 0,122+0,021 52,7±0,6
X. 201,1+4,7 0,155+0,024 51,0±l,3
XI. 253,l±9,0 0,129+0,018 53,l±0,6
XII. 156,9±3,0 0,218+0,006 49,7±l,0
XIII. 179,9±3,1 0,147+0,005 51,2±1,9
XIV. 155,4±1,8 0,160+0,012 49,1±2,1
XV. 189,5+4,3 0,210+0,009 47,9±1,8
XVI. 186,8±5,3 0,198+0,018 52,6±0,2
XVII. 247,4±7,4 0,259+0,006 48,4±1,3
XVIII. 195,0±2,6 0,155+0,007 49,4+0,5
XIX. 215,4±4,3 0,178+0,005 48,5±l,0
XX. 232,6±5,9 0,166+0,016 53,0+1,4
XXI. 280,8±6,9 0,180+0,018 53,9±2,3
XXII. 19O,l±2,2 0,119±0,004 50,6+1,0
XXIII. 245,7±3,3 0,124±0,021 53,1±1,4
XXIV. 145,8+1,6 0,232±0,012 51,1+1,0
XXV. 2O9,3±4,4 0,234±0,006 48,7±1,7
XXVI. 151,8±1,7 0,152±0,018 51,5±3,4
XXVII. 173,l±3,0 0,163+0,011 49,9±1,6
XXVIII. 175,9±0,4 0,158+0,006 45,9±1,1
XXIX. 230,2±4,4 0,195+0,008 52,9±1,2
XXX. 172,8±1,7 0,190±0,005 50,5±l,2
XXXI. 253,4+1,9 0,187+0,004 44,5+0,5
XXXII. 237,4±4,3 0,247+0,004 50,3±l,4
XXXIII. 194,4± 1,3 0,149±0,010 53,2±2,2
XXXIV. 220,3±3,6 0,193+0,011 50,8±l,3
XXXV. 218,9+2,8 0,224+0,011 50,7±l,3
PL 244834 Β1
XXXVI.7 211,5±6,5 0,250+0,010 49,5+0,6
XXXVII. e 204,1+0,7 0,181+0,018 50,8+1,1
” XXXVIII. - 252,0±0,9 0,172+0,033 50,2±0,4
& XXXIX.r 228,9+3,1 0,198±0,010 51,4+1,2
' XL. 248,2+3,9 0,224+0,018 51,3±1,1
XLI. 259,7±5,3 0,209+0,013 49,7±1,7
XLH. - 203,0±3,7 0,178±0,009 51,7±0,6
- XLIII. - 203,9+3,6 0,210+0,025 48,9+0,3
XLIV. 241,4±4,1 0,150+0,017 49,9+1,6
XLV. 189,9±1,4 0,175±0,010 43,4±0,l
XLVI. 211,6±1,7 0,195±0,023 46,8±0,6
' XLVII. . 272,2±4,7 0,158+0,016 49,6±1,5
XLVIII. 209,5=3,1 0,178±0,014 49,0±2,3
XLIX. 190,6±2,3 0,170±0,031 51,4±1,3
L. 225,1±5,6 0,135+0,005 50,2+0,7
LI. 249,5±2,7 0,157+0,012 51,3±0,8
LII. 202,0±l,9 0,153+0,016 50,3±0,8
LIII. 174,2±5,2 0,183+0,018 47,3±2,6
~ liv. - 263,7±5,8 0,137±0,041 51,7±0,5
LV. T 225,O±2,l 0,149+0,024 47,8±3,0
LVI. 194,2±3,4 0,144±0,010 44,1±1,2
Nanostrukturalne nośniki lipidowe otrzymane sposobem według wynalazku (przykład I z zastosowaniem następującej ilości substratów: 0,8 g oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium), 0,6 g lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora), 2,5 g stearynianu glicerolu, 10 g glicerolu, 0,4 g CTAB, roztwór monooleinianu polioksyetylenosorbitanu (Tween 80) o stężeniu 30% wag.) charakteryzują się wielkością cząstek (Z-Ave) na poziomie 194,5 nm, wskaźnikiem polidyspersyjności (PDI) - 0,194 oraz potencjałem zeta (ZP) - 50,1 mV.
Nanostrukturalne nośniki lipidowe otrzymane sposobem według wynalazku scharakteryzowano z wykorzystaniem skaningowej kalorymetrii różnicowej - DSC przedstawiony na Fig. 1 i dyfrakcji promieniowania rentgenowskiego -XRD przedstawionego na Fig. 2. Przeprowadzona charakterystyka matrycy lipidowej potwierdziła obecność lipidu w stabilnej odmianie polimorficznej β', charakterystycznej dla lipidów na bazie triacylogliceroli w stanie koloidalnym (w dyspersji nanocząstek lipidowych).
Fig. 1 przedstawia porównanie termogramów DSC lipidu stałego (stearynianu glicerolu) oraz otrzymanych nanocząstek lipidowych a Fig. 2 przedstawia porównanie dyfraktogramów lipidu stałego (stearynianu glicerolu) oraz otrzymanych nanocząstek lipidowych.
4. Przykład zastosowania:
Nanocząstki lipidowe syntetyzowane na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora) mogą być stosowane w przemyśle kosmetycznym (nośniki substancji aktywnych i ich mieszanin), farmaceutycznym (do inkorporowania substancji aktywnych i ich mieszanin), spożywczym (jako ochrony substancji wartościowych, np. witamin podczas obróbki spożywczej) i ogólnie chemicznym (ochrona wybranych związków chemicznych przed degradacją czy też uleganiu reakcjom następczym i kaskadowym).

Claims (1)

1. Sposób otrzymywania nanocząstek lipidowych syntetyzowanych na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora) metodą homogenizacji z wykorzystaniem homogenizatora wysokoobrotowego (HSH), znamienny tym,
PL 244834 Β1 że ogrzewa się mieszaninę zawierającą stearynian glicerolu (Imwitor 900K) w ilości 1-5 g korzystnie 2,5 g, bromek cetylotrimetyloamoniowy (CTAB) w ilości 0,1-0,8 g korzystnie 0,4 g, lipidy wyekstrahowane wcześniej z okrzemek Halamphora w ilości 0,2-1 g korzystnie 0,6 g, olej z mikroglonów morskich (Schizochytrium) w ilości 0,4-1,2 g korzystnie 0,8 g i glicerol w ilości 5-15 g korzystnie 10 g, do temperatury powyżej 75°C przy ciągłym mieszaniu z prędkością 400-600 rpm korzystnie 600 rpm do uzyskania jednolitej konsystencji, następnie mieszaninę poddaje się prehomogenizacji przy prędkości 8 000-24 000 rpm korzystnie 13 500 rpm przez 5-20 sekund korzystnie 10 sekund, dalej do zhomogenizowanej próbki dodaje się 1 ml wodnego roztworu monooleinianu polioksyetylenosorbitanu (Tween 80) podgrzanego do temperatury 40°C o stężeniu 10-60% wag. korzystnie 30% wag. i miesza się z prędkością 400-600 rpm korzystnie 600 rpm przez 0,5-2 minut korzystnie przez 1 minutę do uzyskania jednolitej konsystencji, dalej próbkę poddaje się dwuetapowej homogenizacji właściwej: w pierwszym etapie przy prędkości 13 500-24 000 rpm korzystnie 20 500 rpm przez 5-15 sekund korzystnie 10 sekund; w drugim etapie przy prędkości 8 000-13 500 rpm korzystnie 9 500 rpm przez 5-15 sekund korzystnie 10 sekund, po czym tak powstałą dyspersję dodaje się do 14-14,9 ml korzystnie 14,3 ml wodnego roztworu monooleinianu polioksyetylenosorbitanu (Tween 80) o stężeniu 10-60% wag. korzystnie 30% wag. przy ciągłym mieszaniu z prędkością 350-550 rpm, korzystnie 350 rpm i miesza do momentu ochłodzenia układu do temperatury pokojowej korzystnie 25°C i do otrzymania nanocząstek lipidowych typu NLC, charakteryzujących się wielkością cząstek w zakresie 100-300 nm.
PL438767A 2021-08-19 2021-08-19 Sposób otrzymywania nanocząstek lipidowych syntetyzowanych na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora) PL244834B1 (pl)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL438767A PL244834B1 (pl) 2021-08-19 2021-08-19 Sposób otrzymywania nanocząstek lipidowych syntetyzowanych na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora)
EP22460021.3A EP4137125A1 (en) 2021-08-19 2022-04-04 A method of obtaining of lipid nanoparticles synthesised on the basis of marine microalgae (schizochytrium) and lipids obtained from diatoms (halamphora)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL438767A PL244834B1 (pl) 2021-08-19 2021-08-19 Sposób otrzymywania nanocząstek lipidowych syntetyzowanych na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL438767A1 PL438767A1 (pl) 2023-02-20
PL244834B1 true PL244834B1 (pl) 2024-03-11

Family

ID=81748249

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL438767A PL244834B1 (pl) 2021-08-19 2021-08-19 Sposób otrzymywania nanocząstek lipidowych syntetyzowanych na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora)

Country Status (2)

Country Link
EP (1) EP4137125A1 (pl)
PL (1) PL244834B1 (pl)

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1194760C (zh) 2003-08-28 2005-03-30 东南大学 一种制备油溶性的纳米结构脂质药物的方法
ES2384060B1 (es) 2010-03-24 2013-09-23 Lipotec S.A. Cápsulas de nanopartículas lipídicas.
WO2017185147A1 (en) 2016-04-25 2017-11-02 L'oreal Nanostructured lipid carriers and methods for making and using them

Also Published As

Publication number Publication date
EP4137125A1 (en) 2023-02-22
PL438767A1 (pl) 2023-02-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7678931B2 (en) Process for preparing materials for extraction
Zheng et al. Formulation and characterization of nanostructured lipid carriers containing a mixed lipids core
Kumar et al. Solid lipid nanoparticles of stearic acid for the drug delivery of paliperidone
US20090275658A1 (en) Method for Producing a Raw Oil from Mixtures of Micro-Organisms and Plants, Oil Produced According to Said Method and Specific Uses of the Thus Produced Oil and, Optionally, Additional Refined Oil
JPH0249719A (ja) 易水分散・可溶性能を有する油溶性ビタミン粉末
DE102005003625A1 (de) Verfahren zur Herstellung einer DHA-haltigen Fettsäure-Zusammensetzung
WO2013178752A1 (fr) Procédé de préparation d'une composition dermatologique comprenant des oléosomes
JP2011516548A (ja) オレオソームからの活性薬剤の制御放出
FR2916973A1 (fr) Nanocapsules a coeur lipidique chargees en actif(s) hydrosoluble(s) ou hydrodispersible(s)
KR100951706B1 (ko) 레스베라트롤을 함유하는 나노에멀젼, 나노입자 및 그제조방법
US20160324178A1 (en) Structuring and Gelling Agents
Machado et al. Application of sonication and mixing for nanoencapsulation of the cyanobacterium Spirulina platensis in liposomes
CN1894158A (zh) 使用固体脂肪作为溶剂制备纳米级或无定形颗粒的方法
CN107920553A (zh) 卵磷脂组合物及制备和使用此种卵磷脂组合物的方法
Papadaki et al. Recovery and encapsualtion of bioactive extracts from Haematococcus pluvialis and Phaedodactylum tricornutum for food applications
CN102048696B (zh) 一种脂质纳米粒的制备方法
PL244834B1 (pl) Sposób otrzymywania nanocząstek lipidowych syntetyzowanych na bazie oleju z mikroglonów morskich (Schizochytrium) oraz lipidów pozyskiwanych z okrzemek (Halamphora)
Kumar et al. Paliperidone-loaded spherical solid lipid nanoparticles
WO2020053375A1 (fr) Procede d'extraction d'une huile riche en acides gras polyunsatures (agpi)
US20100136130A1 (en) Preparation for the Controlled Release of Bioactive Natural Substances
CA3123488C (en) Process for manufacturing lysed cell suspension
CN108208197B (zh) 一种油脂组合物及其制备方法
FR3078630A1 (fr) Mode de formulation sous forme de solide divise hydrophobe
Huang et al. Comparative Analysis of Lipid Oxidation Stability and Bioaccessibility in Krill Oil Emulsions: Microfluidization vs. High-Pressure Homogenization
JP6241852B2 (ja) レシチンオルガノゲル形成剤