PL244491B1 - Sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin - Google Patents

Sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin Download PDF

Info

Publication number
PL244491B1
PL244491B1 PL433731A PL43373120A PL244491B1 PL 244491 B1 PL244491 B1 PL 244491B1 PL 433731 A PL433731 A PL 433731A PL 43373120 A PL43373120 A PL 43373120A PL 244491 B1 PL244491 B1 PL 244491B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
preparation
silver
explants
sterile
amount
Prior art date
Application number
PL433731A
Other languages
English (en)
Other versions
PL433731A1 (pl
Inventor
Alicja Tymoszuk
Magdalena Tomaszewska-Sowa
Piotr Wojewódzki
Original Assignee
Univ Technologiczno Przyrodniczy Im Jana I Jedrzeja Sniadeckich W Bydgoszczy
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Technologiczno Przyrodniczy Im Jana I Jedrzeja Sniadeckich W Bydgoszczy filed Critical Univ Technologiczno Przyrodniczy Im Jana I Jedrzeja Sniadeckich W Bydgoszczy
Priority to PL433731A priority Critical patent/PL244491B1/pl
Publication of PL433731A1 publication Critical patent/PL433731A1/pl
Publication of PL244491B1 publication Critical patent/PL244491B1/pl

Links

Landscapes

  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Abstract

Przedmiotem wynalazku jest sposób powierzchniowej dezynfekcji eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin ozdobnych rozmnażanych w warunkach in vitro z wykorzystaniem środka zawierającego nanocząstki srebra; lub srebra i miedzi. Sposób znajduje zastosowanie w inicjacji kultur in vitro ważnych gospodarczo roślin ozdobnych jak m.in.: chryzantema, trzykrotka, begonia, fikus, anturium, róża, sępolia skrzydłokwiat, storczyki. Sposób polega na tym, że eksplantaty płucze się pod bieżącą wodą, następnie moczy w 70% alkoholu etylowym przez 5-15 sekund, kolejno inkubuje przez 5-10 min w preparacie dezynfekującym w postaci wodnego roztworu nanokoloidowych cząstek srebra; lub srebra i miedzi o stężeniu nanometalu 15-30 mg·dm-3, korzystnie 20 mg·dm-3,o wymiarach nanocząstek 20-50 nm, korzystnie 30 nm, przy czym preparat jest stabilizowany za pomocą sterylnego roztworu surfaktantów niwelujących koagulację nanocząstek np. poliwinylopirolidon - PVP, o masie cząsteczkowej 5000-10000, korzystnie 6000, w ilości 0,05-1%, korzystnie 0,4% oraz zawiera dodatek sterylnej hydroksyetytocelulozy w ilości 150 mg - 250 mg, korzystnie 200 mg, na 100 ml preparatu, gęstość preparatu wynosi 1,40 -1,80 g·cm-3, korzystnie 1,60 g·cm-3, a jego absorbancja 3,900-4,100 dla 200 nm, 0,030-0,150 dla 300 nm i 0,020-0,140 dla 400 nm, następnie tak przygotowany eksplantat, bez uprzedniego płukania w wodzie destylowanej, wykłada się na wyjałowioną uniwersalną pożywkę MS.

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób powierzchniowej dezynfekcji eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin ozdobnych rozmnażanych w warunkach in vitro, z wykorzystaniem środka zawierającego nanocząstki srebra lub srebra i miedzi. Sposób znajduje zastosowanie w inicjacji kultur in vitro ważnych gospodarczo roślin ozdobnych jak m.in.: chryzantema, trzykrotka, begonia, fikus, anturium, róża, sępolia, skrzydłokwiat, storczyki.
Produkcja sadzonek wielu gatunków roślin ozdobnych odbywa się w kulturze in vitro i polega na wegetatywnym rozmnażaniu (mikrorozmnażaniu) roślin na specjalnych pożywkach, w ściśle kontrolowanych warunkach laboratoryjnych. Techniki in vitro są powszechnie stosowane w celu szybkiego uzyskania wielu roślin z niewielkiej, początkowej ilości wyjściowego materiału roślinnego. Wzrost lub regeneracja roślin potomnych odbywa się z niewielkich fragmentów organów i tkanek roślinnych nazywanych eksplantatami.
Do zainicjowania kultury in vitro roślin ozdobnych wykorzystuje się najczęściej eksplantaty w postaci wierzchołków pędu lub odcinków pędu zawierających węzeł, z którego wyrasta liść. Eksplantaty te zawierają młode (juwenilne) tkanki merystematyczne, które in vitro szybko podejmują dalszy wzrost prowadząc do uzyskania roślin potomnych. Ponadto stosowanie eksplantatów merystematycznych daje gwarancję stabilności genetycznej, co pozwala uzyskiwać rośliny potomne (klony) wiernie odtwarzające wszystkie cechy rośliny macierzystej.
Mikrorozmnażanie odbywa się w sterylnych warunkach, z tego względu, aby zainicjować kulturę in vitro z eksplantatów pobranych z roślin matecznych uprawianych w warunkach niesterylnych (na polu, w ogrodzie lub w szklarni) należy przeprowadzić ich dezynfekcję powierzchniową. Zabieg ten usuwa mikroorganizmy (bakterie i grzyby) pochodzące z powietrza, wody czy gleby, które znajdują się na powierzchni organów i tkanek roślinnych. W standardowych procedurach dezynfekcji eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin ozdobnych wykorzystywane są znane preparaty jak podchlorynu sodu lub wapnia, alkohol etylowy, woda utleniona, woda bromowa, formaldehyd, sublimat rtęci czy chloramina T, a także środki chemiczne (np. detergenty) obniżające napięcie powierzchniowe, co ułatwia środkom dezynfekującym penetrację trudno dostępnych miejsc na powierzchni eksplantatów. Następnie eksplantaty przekłada się do sterylnej wody destylowanej, aby wypłukać pozostałości środka dezynfekującego mogącego uszkodzić tkanki roślinne. Zazwyczaj wykonuje się trzykrotne płukanie, każde po 10 min.
Do wad standardowych procedur dezynfekcji zalicza się m.in.: (1) szkodliwość wykorzystywanych środków dezynfekujących dla środowiska i zdrowia personelu laboratorium, a także ich niekorzystny wpływ na materiał roślinny (nieodwracalne uszkodzenia tkanek), (2) wieloetapowość, praco- i czasochłonność, (3) konieczność eksperymentalnego doboru stężenia i czasu działania czynnika dezynfekującego dla różnych eksplantatów, (4) możliwość występowania wtórnych zakażeń dezynfekowanych eksplantatów związana z wieloetapowością procedury (trzykrotne płukanie po dezynfekcji właściwej).
Z dokumentu PL 172955 znany jest sposób odkażania i preparat składający się z płynów odkażających (A i B) stosowanych m.in. do odkażania części roślin (cebule, bulwy, sadzonki, nasiona), których składnikami są podchloryn sodu, kwas mlekowy, octan miedzi i cynku, kwas borowy, molibdenian sodu, potasu lub amonu, azotan srebra, zmiażdżony czosnek oraz zwilżacz. Istotą sposobu jest moczenie części roślin w czasie 30 min do 3 godzin w płynach odkażających i następnie wysadzanie ich do podłoża.
Dokument PL 180374 opisuje agrochemiczny środek do ochrony roślin przed zakażeniami grzybiczymi i owadami oraz sposób ochrony roślin przed takimi zakażeniami. Preparat stanowi kombinację benzylidenoazolilometylocykloalkanu i związku owadobójczego, natomiast sposób ochrony roślin przed zakażeniami polega na wprowadzaniu do gleby, zwłaszcza w bruzdy, granulatu składającego się z opisanego wyżej preparatu.
W patencie PL 189890 zastrzeżono preparat do ochrony roślin przed chorobami, którego podstawowym składnikiem jest chitozan. Wskazany preparat, według tego wynalazku, pozwala na ekologiczną ochronę roślin przed infekcjami wirusowymi, bakteryjnymi i grzybowymi przy zachowaniu trwałości efektu w zmiennych warunkach atmosferycznych. Preparat przeznaczony jest do ochrony roślin w warunkach produkcji ogrodniczej i polowej.
W patencie PL 223425 zastrzeżono sposób wyjaławiania powierzchni nasion za pomocą suspensji wodnej metalicznych cząstek srebra i miedzi. Zastrzeżony sposób, polegający na jednoetapowym procesie wyjaławiania, trwającym 1-10 minut, dotyczy nasion przeznaczonych do kiełkowania w warunkach in vitro.
Znane są również przykłady stosowania, w ochronie roślin oraz elementów drewnianych, roztworów zawierających sole srebra bądź nanocząstki srebra.
W dokumencie US 2010203157 (A1)( 2010-08-12, Bylemans Dany Leopold Jozefien; Hendrik Jan Peter; Van Der Flaas Mark Arthur Josepha [BE]), pt. „Combinations of pyrimethanil and silver compounds” (tłumaczenie PL 2200438), wskazano wykorzystanie kombinacji pirymetanilu i związków srebra. Pirymetanil stanowi znany składnik aktywny fungicydów hamujący wytwarzanie zarodników oraz syntezę enzymów przez patogeny. Związki srebra przywołane w przedmiotowym opisie to sole srebra (octan srebra, alginian srebra, azydek srebra, cytrynian srebra, mleczan srebra, azotan srebra, siarczan srebra, chlorek srebra, tiocyjanian srebra, fosforan srebrowo-sodowo-wodorowo-cyrkonowy, sulfadiazyna srebra, sól srebrowa kwasu cykloheksanoacetylooctowego oraz disrebrowy 2,5-dichloro-3,6-dihydroksy-2,5-cykloheksadieno-1,4-dion) oraz nanocząstki srebra o wymiarach 1-1000 nm. Przywołany dokument stanowi opis zastosowania, który odnosi się do patentu nr US 8,852,647 B2 z dnia 07.10.2014 r. Przedmiotowy patent zawiera sześć zastrzeżeń, z czego 4 dotyczą składu i kompozycji preparatu, a 2 zastrzeżenia dotyczą sposobu (metody) jego stosowania. Zastrzeżone sposoby dotyczą: ograniczania wzrostu mikroorganizmów na drewnie oraz materiałach biodegradowalnych (zastrzeżenie nr 3 US 8,852,647 B2), metody ograniczania wzrostu mikroorganizmów na materiałach konstrukcyjnych (zastrzeżenie nr 4 US 8,852,647 B2).
Dokument CN 103302307 (A),pt. „Preparation method of silver nano particles and method for facilitating germination of cucumber seeds and growth and development of seedlings with silver nano particles”, opisuje wynalazek należący do dziedziny techniki wytwarzania materiału nano i badań jego skuteczności, ujawnia także sposób wytwarzania nanocząstek srebra i sposób ułatwienia kiełkowania nasiona ogórka oraz wzrost i rozwój siewek przy zastosowaniu nanocząstek srebra. Zgłoszenie zawiera 9 zastrzeżeń, w szczególności zastrzeżenia nr 1-4 dotyczą metody wytwarzania nanocząstek srebra z materiału wyjściowego, którym jest azotan srebra (AgNO3), natomiast zastrzeżenia nr 5-9 dotyczą sposobu wykorzystania nanocząstek w celu pobudzania kiełkowania nasion ogórka.
Dokument CN 110402819 (A), pt. „Amur corktree tissue culture method”,opisuje wynalazek należący do dziedziny techniki roślinnych kultur tkankowych, ujawnia metodę prowadzenia hodowli tkankowej drzewa korkowca do celu pozyskiwania dużej ilości materiału szkółkarskiego. Zgłoszenie zawiera 10 zastrzeżeń, w szczególności zastrzeżenie nr 6 charakteryzuje sposób dezynfekcji eksplantatów korkowca z wykorzystaniem 5% roztworu alkoholu etylowego i nanosrebra oraz sterylizacji roztworem chlorku rtęci, po których następuje 4 lub 5 kolejnych kroków płukania materiału.
Nie jest znany w dostępnym stanie techniki sposób dezynfekcji eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin ozdobnych, z wykorzystaniem preparatu zawierającego nanokoloidy srebra lub srebra i miedzi.
Istotą rozwiązania według wynalazku jest sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin ozdobnych rozmnażanych w warunkach in vitro polegający na tym, że w pierwszym etapie eksplantaty płucze się pod bieżącą wodą, następnie umieszcza w 70% roztworze alkoholu etylowego na 5-15 sekund, kolejno inkubuje przez 5-10 min w preparacie dezynfekującym złożonym z nanocząstek srebra lub srebra i miedzi, o stężeniu nanometali 15-30 mg-dm-3, korzystnie 20 mg-dm-3, o wymiarach nanocząstek 20-50 nm, korzystnie 30 nm, przy czym preparat nanokoloidowy jest ustabilizowany za pomocą sterylnego roztworu surfaktantów niwelujących koagulację nanocząstek, takiego jak poliwinylopirolidon - PVP, o masie cząsteczkowej 5000-10000, korzystnie 6000, w ilości 0,05-1%, korzystnie 0,4%, oraz zawiera dodatek sterylnej hydroksyetylocelulozy w ilości 150 mg - 250 mg na 100 ml preparatu, korzystnie 200 mg, celem zapewnienia gęstości i lepkości, a także wyeliminowania konieczności zamaczania eksplantatów w środkach powierzchniowo czynnych. Gęstość preparatu wynosi 1,40-1,80 g-cm-3, korzystnie 1,60 g-cm-3, a absorbancja mierzona spektrofotometrem UV-VIS przy 200, 300 i 400 nm wynosi 3,900-4,100 dla 200 nm, 0,030-0,150 dla 300 nm i 0,020-0,140 dla 400 nm. Następnie eksplantaty umieszcza się na wyjałowionej standardowej pożywce MS (Murashige i Skoog, 1962) zestalonej 0,6% agarem w pozycji polarnej. Wyłożenie eksplantatów na pożywkę nie wymaga ich uprzedniego płukania w wodzie destylowanej.
Zaletami rozwiązania wg wynalazku są: skrócenie czasu dezynfekcji, uproszczenie procedury dezynfekcji, stosowanie środka dezynfekującego w niskim stężeniu, eliminacja użycia agresywnych środków chemicznych, wysoka skuteczność w eliminacji zakażeń mikrobiologicznych, brak uszkodzeń dezynfekowanego materiału w przeciwieństwie do klasycznych środków odkażających, brak konieczności dodatkowego stosowania środków obniżających napięcie powierzchniowe (detergentów), brak konieczności końcowego płukania dezynfekowanego materiału, co skraca czas procedury oraz eliminuje możliwość występowania zakażeń wtórnych wywoływanych obecnością form przetrwalnikowych mikroorganizmów, które mogą uaktywniać się w konwencjonalnych metodach sterylizacji.
Sposób według wynalazku przedstawiono bliżej w przykładach realizacji.
Przykład 1
Sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów węzłowych trzykrotki (Tradescantia L), pochodzących z warunków ex vitro, przebiega w następujących etapach:
1. Wyizolowane z rośliny matecznej jednowęzłowe fragmenty pędu o długości 1 cm oczyszcza się wstępnie poprzez płukanie pod bieżącą wodą.
2. W sterylnych warunkach, w komorze z laminarnym przepływem sterylnego powietrza, eksplantaty inkubuje się w 70% roztworze etanolu przez 5 sekund, a następnie przenosi się do roztworu preparatu dezynfekującego zawierającego nanocząstki srebra w stężeniu 15 mg-dm-3, PVP (M=6000, 0,05%) oraz hydroksyetylocelulozę w ilości 150 mg na 100 ml preparatu, na okres 5 minut.
3. Eksplantaty wykłada się w pozycji polarnej na wyjałowionej standardowej pożywce MS (Murashige i Skoog, 1962) zestalonej 0,6% agarem i umieszcza w pokoju wzrostowym.
Przykład 2
Sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów węzłowych trzykrotki (Tradescantia L), pochodzących z warunków ex vitro, przebiega w następujących etapach:
1. Wyizolowane z rośliny matecznej jednowęzłowe fragmenty pędu o długości 1 cm oczyszcza się wstępnie poprzez płukanie pod bieżącą wodą.
2. W sterylnych warunkach, w komorze z laminarnym przepływem sterylnego powietrza, eksplantaty inkubuje się w 70% roztworze etanolu przez 10 sekund, a następnie przenosi się do roztworu preparatu dezynfekującego zawierającego nanocząstki srebra i miedzi w stężeniu 20 mg-dm-3, PVP (M=6000, 0,5%) oraz hydroksyetylocelulozę w ilości 200 mg na 100 ml preparatu, na okres 7 minut.
3. Eksplantaty wykłada się w pozycji polarnej na wyjałowionej standardowej pożywce MS (Murashige i Skoog, 1962) zestalonej 0,6% agarem i umieszcza w pokoju wzrostowym.
Przykład 3
Sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów wierzchołkowych chryzantemy (Chrysanthemum), pochodzących z warunków ex vitro, przebiega w następujących etapach:
1. Wyizolowane z rośliny matecznej wierzchołki pędu o długości 3 cm oczyszcza się wstępnie poprzez płukanie pod bieżącą wodą.
2. W sterylnych warunkach, w komorze z laminarnym przepływem sterylnego powietrza, eksplantaty inkubuje się w 70% roztworze etanolu przez 15 sekund, a następnie przenosi się do roztworu preparatu dezynfekującego zawierającego nanocząstki srebra i miedzi w stężeniu 30 mg-dm-3, PVP (M=6000, 1%) oraz hydroksyetylocelulozę w ilości 250 mg na 100 ml preparatu, na okres 10 minut.
3. Eksplantaty wykłada się w pozycji polarnej na wyjałowionej standardowej pożywce MS (Murashige i Skoog, 1962) zestalonej 0,6% agarem i umieszcza w pokoju wzrostowym.

Claims (2)

1. Sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin ozdobnych rozmnażanych w warunkach in vitro, znamienny tym, że eksplantaty płucze się pod bieżącą wodą, następnie moczy w 70% alkoholu etylowym przez 5-15 sekund, kolejno inkubuje przez 5-10 min w preparacie dezynfekującym w postaci wodnego roztworu nanokoloidowych cząstek srebra o stężeniu nanometalu 15-30 mg-dm-3, korzystnie 20 mg-dm-3, o wymiarach nanocząstek 20-50 nm, korzystnie 30 nm, przy czym preparat jest ustabilizowany za pomocą sterylnego roztworu surfaktantów niwelujących koagulację nanocząstek, takiego jak poliwinylopirolidon - PVP, o masie cząsteczkowej 5000-10000, korzystnie 6000, w ilości 0,05-1%, korzystnie 0,4%, oraz zawiera dodatek sterylnej hydroksyetylocelułozy w ilości
150 mg - 250 mg, korzystnie 200 mg, na 100 ml preparatu, gęstość preparatu wynosi 1,40-1,80 mg-dm-3, korzystnie 1,60 mg-dm-3, a jego absorbancja 3,900-4,100 dla 200 nm, 0,030-0,150 dla 300 nm i 0,020-0,140 dla 400 nm, następnie tak przygotowany eksplantat, bez uprzedniego płukania w wodzie destylowanej, wykłada się na wyjałowioną uniwersalną pożywkę MS.
2. Sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin ozdobnych rozmnażanych w warunkach in vitro, znamienny tym, że eksplantaty płucze się pod bieżącą wodą, następnie moczy w 70% alkoholu etylowym przez 5-15 sekund, kolejno inkubuje przez 5-10 min w preparacie dezynfekującym w postaci wodnego roztworu nanokoloidowych cząstek srebra i miedzi o stężeniu nanometali 15-30 mg-dm-3, korzystnie 20 mg-dm-3, o wymiarach nanocząstek 20-50 nm, korzystnie 30 nm, przy czym preparat jest ustabilizowany za pomocą sterylnego roztworu surfaktantów niwelujących koagulację nanocząstek, takiego jak poliwinylopirolidon - PVP, o masie cząsteczkowej 5000-10000, korzystnie 6000, w ilości 0,05-1%, korzystnie 0,4%, oraz zawiera dodatek sterylnej hydroksyetylocelulozy w ilości 150 mg - 250 mg, korzystnie 200 mg, na 100 ml preparatu, gęstość preparatu wynosi 1,40-1,80 mg-dm-3, korzystnie 1,60 mg-dm-3, a jego absorbancja 3,900-4,100 dla 200 nm, 0,030-0,150 dla 300 nm i 0,020-0,140 dla 400 nm, następnie tak przygotowany eksplantat, bez uprzedniego płukania w wodzie destylowanej, wykłada się na wyjałowioną uniwersalną pożywkę MS.
PL433731A 2020-04-28 2020-04-28 Sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin PL244491B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL433731A PL244491B1 (pl) 2020-04-28 2020-04-28 Sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL433731A PL244491B1 (pl) 2020-04-28 2020-04-28 Sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL433731A1 PL433731A1 (pl) 2021-11-02
PL244491B1 true PL244491B1 (pl) 2024-02-05

Family

ID=78595291

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL433731A PL244491B1 (pl) 2020-04-28 2020-04-28 Sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL244491B1 (pl)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL248280B1 (pl) * 2023-06-23 2025-11-17 Politechnika Bydgoska Im. Jana I Jędrzeja Śniadeckich Sposób stymulacji wzrostu in vitro pędów bocznych chryzantemy wielkokwiatowej z zastosowaniem pożywki z dodatkiem tlenku cynku, nanocząstek tlenku cynku, lub nanocząstek tlenku cynku i nanocząstek srebra

Also Published As

Publication number Publication date
PL433731A1 (pl) 2021-11-02

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Mahmoud et al. Effect of different sterilization methods on contamination and viability of nodal segments of Cestrum nocturnum L
Volk et al. Survival of mint shoot tips after exposure to cryoprotectant solution components
Al-Jubori et al. Optimizing media sterilization via chlorine dioxide and autoclaving of paulowni micropropagation
Zinabu et al. Explants sterilization protocol for in-vitro propagation of elite enset (Ensete ventricosum (Welw.) Chessman) cultivars
PL244491B1 (pl) Sposób dezynfekcji powierzchniowej eksplantatów wierzchołkowych i węzłowych roślin
Shaafi et al. The effects of nanosilver on bacterial contamination and increase durability cultivars of Rosa hybrida L. through of stenting method
Nguyen et al. In vitro propagation of a Vietnam endemic lady’s slipper orchid (Paphiopedilum vietnamense O. Gruss & Perner)
Pant A minimal cost micropropagation protocol for Dianthus caryophyllus L.—a commercially significant venture
Aggarwal et al. Effects of plant growth regulators on in vitro propagation of economically important ornamental plant Rosa hybrida L
RU2490871C1 (ru) Способ поверхностной стерилизации эксплантов и апикальных почек земляники садовой, винограда, хурмы сорта "королек" in vitro
Warakagoda et al. In vitro clonal propagation of Coscinium fenestratum (Gertn.) Colebr.(Weniwel) through nodal explants
Zemene et al. Protocol optimization for micro-propagation of Green pepper (Capsicum annum L.) cultivated in Ethiopia
Meghwal et al. Effect of surface sterilizing agents on in vitro culture establishment of guava (Psidium guajava L.)
EKINCI et al. Screening of some chemical disinfectants for explant sterilization during in vitro micropropagation of UCB-1 (P. atlantica x P. integerrima)
RU2845272C1 (ru) Способ стерилизации зеленого растительного экспланта при введении в культуру in vitro при микроклональном размножении
SHARMA et al. In vitro sterilization protocol of Vanilla planifolia explants for micropropagation
Asmono et al. Optimization of the sterilization method for leaf explant Robusta BP 308 coffee in vitro
Rose et al. Comparison of Three Cytokinins on
Rose et al. Comparison of Three Cytokinins on In vitro Multiplication of Orbea semota, a Conical, Stout-Teethed Succulent
Douban et al. In vitro propagation and ex vitro acclimatization of solidago canadensis using nodal segment explants
Mehraj In vitro regeneration of double haploid line of African marigold (Tagetes erecta) derived from ovule culture using non-axillary explants
Perales-Aguilar et al. A protocol for the in vitro establishment of Psidium guajava L. using seeds, for the conservation of native germplasm
Wagih et al. Establishment of mature axillary bud culture of sugarcane and overcoming persistent culture contamination
JP2005278496A (ja) アマモ類の無菌培養法および該方法により作出されるアマモ類
ISAC et al. PLANT MATERIAL IN SOME STONE FRUIT SPECIES ROOTSTOCKS.