PL237886B1 - Zastosowanie pochodnej styrylochinazolinonu - Google Patents

Zastosowanie pochodnej styrylochinazolinonu Download PDF

Info

Publication number
PL237886B1
PL237886B1 PL421717A PL42171717A PL237886B1 PL 237886 B1 PL237886 B1 PL 237886B1 PL 421717 A PL421717 A PL 421717A PL 42171717 A PL42171717 A PL 42171717A PL 237886 B1 PL237886 B1 PL 237886B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
derivative
activity
derivatives
compound
cells
Prior art date
Application number
PL421717A
Other languages
English (en)
Other versions
PL421717A1 (pl
Inventor
Jacek Mularski
Katarzyna Malarz
Robert Musioł
Original Assignee
Univ Slaski
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Slaski filed Critical Univ Slaski
Priority to PL421717A priority Critical patent/PL237886B1/pl
Publication of PL421717A1 publication Critical patent/PL421717A1/pl
Publication of PL237886B1 publication Critical patent/PL237886B1/pl

Links

Landscapes

  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Plural Heterocyclic Compounds (AREA)

Abstract

Przedmiotem zgłoszenia są pochodne styrylochinazolinonu o wzorze 1, gdzie R1-R5 oznaczają atom wodoru lub atom halogenu lub grupę hydroksylową lub grupę acylową lub rozgałęzioną grupę alkoksylową zawierającą od jednego do czterech atomów węgla lub grupę nitrową oraz zastosowanie przedmiotowych pochodnych.

Description

Przedmiotem wynalazku jest zastosowanie pochodnej styrylochinazolinonu do wytwarzania leków przeciwnowotworowych.
Znane są z WO2005/115145 pochodne chinoliny i chinazoliny będące inhibitorami kinaz proteinowo-tyrozynowych (PTK) związanych z angiogenezą komórek rakowych. Aktywność opisywanych w tym zgłoszeniu związków polegała na hamowaniu czynników wzrostu receptorów kinaz, które regulują rozwój naczyń krwionośnych. Działanie opisanych układów jest nieodwracalne a więc polega na silnym i trwałym wiązaniu do odpowiednich receptorów. Opis wynalazku zezwala na obecność podstawników w pozycji 2 szkieletu chinoliny lecz nie obejmuje pochodnych 2-styrylochinazolinowych.
W opisie patentowym WO2006/040522 ujawniono układy chinoliny modyfikowane w położeniu 4- podstawionym pirazolem. Według opisu związki mogą stanowić środki ograniczające proliferację komórek rakowych poprzez mechanizm hamowania PDGF receptorów kinaz.
WUS 9216177 przedstawiono 2-styrylochiazolinonyjako inhibitory rekombinazy RAD51. Związki takie mogą być wartościowymi składnikami leków przeciwnowotworowych. Ujawnione w opisie zostały przede wszystkim pochodne modyfikowane w pozycji N3 pierścienia chinazolinonu.
Szeroka grupa pochodnych chinazolinonu oraz ich zastosowanie do wytwarzania leków przeciwnowotworowych znana jest z opisu WO2006/125555. Jednakże ujawnione tam związki nie posiadają ugrupowania 2-styrylochinazolinonu. Badania skoncentrowane na poszukiwaniu nowych związków zawierających układ styrylochinazolinonu doprowadziły do opracowania pochodnych będących silnymi inhibitorami kinaz białkowych. Takie związki mogą stanowić aktywne składniki leków przeciwnowotworowych.
Istotę wynalazku stanowi zastosowanie pochodnej styrylochinazolinonu o wzorze 1, do wytwarzania leku służącego do modulowania aktywności kinaz białkowych, korzystnie do leczenia nowotworów wykazujących ekspresję kinaz tyrozynowych, szczególnie korzystnie nowotworu okrężnicy.
Poniżej przedstawiono przykład związku opisanego wynalazkiem (pochodna 3) oraz jego zastosowanie, a dodatkowo dla porównania pokazano pochodne podobne (pochodna 1 i 2) jednak o gorszych właściwościach niż pochodna według wynalazku. W przykładzie 1 przedstawiono otrzymywanie oraz opis właściwości związku opisanego wynalazkiem.
W przykładzie 2 przedstawiono sposób modulowania aktywności kinaz białkowych oraz wyniki uzyskane dla związków z przykładu 1. W przykładach 3 i 4 przedstawiono aktywność związku objętego wynalazkiem wobec linii komórek nowotworowych, a w przykładzie 5 cytotoksyczność wobec komórek normalnych. W przykładzie 6 przedstawiono sposób weryfikacji podatności nowotworów na działanie leków modulujących aktywność kinaz białkowych. Dla porównania oraz podkreślenia zalet wynalazku przedstawiono również bliskie analogi (pochodne 1 i 2) związku będącego przedmiotem wynalazku. Zgodnie z danymi przedstawionymi w przykładach 1-6 można stwierdzić, że pomimo zbieżności strukturalnej pochodnych 1,2 charakterystyka ich aktywności biologicznej jest znacząco odmienna. Zwłaszcza w zakresie aktywności przeciwnowotworowej gdzie pochodna będąca przedmiotem wynalazku wykazuje aktywność wyższą od jej analogów oraz od powszechnie stosowanego leku (imatynibu). Z uwagi na podobieństwo strukturalne, warto podkreślić, nie istnieje możliwość przewidzenia ani wymodelowania takich zależności.
Przykład 1
Ogólna metoda syntezy związków z przykładu 1 przebiega według poniższego schematu.
AqO/AcOH
Wszystkie pochodne otrzymano umieszczając w naczyniu reakcyjnym 20 mL 25% (v/v) roztworu bezwodnika octowego w 80% kwasie octowym, 2-metylo-4(3H)-chinazolon oraz odpowiedni aldehyd aromatyczny (pochodna benzaldehydu). Roztwór mieszano, ogrzewając w temperaturze 130°C do momentu pojawienia się obfitego osadu, a jeżeli osad nie wypadł, reakcję przerywano w momencie pojawienia się słomkowej barwy roztworu. Pozostałości medium reakcyjnego usuwano pod zmniejszonym ciśnieniem. Surowe produkty oczyszczano przez krystalizację z etanolu.
PL 237 886 Β1 o
Pochodna 1.
2-[(E)-2-(2-acetoksyfenylo)etenylo]-4(3H)chinazolon. Związek otrzymano w reakcji 0,81 g 2-metylo-4(3H)chinazolonu i 0,61 g 2-hydroksybenzaldehydu, uzyskując wydajność 6,51 g (43%) białego osadu, t.top=229-235°C. Strukturę związku potwierdzono na podstawie spektroskopii 1H NMR (400 MHz, DMSO - d6) δ (ppm) 12.48 (s, 1H), 8.12 (dd, J = 7.9, 1.1, 1H), 7.92 (d, J = 16.4, 1H), 7.83 (d, J = 8, 1H), 7.82 (td, J = 8.28, 1.4, 1H), 7.70 (d, J = 7.8 1H), 7.50 (td, J = 7.7, 1.1,1 H), 7.47 (td, J =7.8, 1.4, 1H), 7.37 (td, J = 7.7, 0.7, 1H), 7.23 (dd, J = 8.0, 1.0, 1H), 7.03 (d, J = 16.3, 1H), 2.43 (s, 3H); 13C NMR (100 MHz, DMSO-d6)δ (ppm) 169.76, 162.27, 151.65, 149.42, 149.34, 134.95, 132.04, 131.12, 128.17, 128.08, 127.79, 126.99, 126.89, 126.33, 124.01, 121.67,21.43;
o
Pochodna 2.
2-[(E)-2-(2,4-diacetoksyfenylo)etenylo]-4(3H)chinazolon. Związek otrzymano w reakcji 1,60 g 2-metylo-4(3H)chinazolonu i 1,38 g 2,4-dihydroksybenzaldehydu uzyskując wydajność 0,58 g (16%) brunatnego osadu, t.top=233°C. Strukturę związku potwierdzono na podstawie spektroskopii 1H NMR (400 MHz, DMSO - d6) δ (ppm) 12.48 (s, 1H), 8.12 (dd, J = 7.9, 1.0, 1H), 7.89 (d, J = 16.4, 1H), 7.88 (d, J = 8.5, 1H), 7.82 (ddd, J = 8.4, 7.2, 1.3, 1H), 7.70 (d, J = 8.1, 1H), 7.50 (ddd, J = 8.2, 7.2, 0.9, 1H), 7.18 (dd, J = 8.6, 2.3, 1H), 7.14 (d, J = 2.3, 1H), 7.02 (d, J = 16.3, 1H), 2.43 (s, 3H), 2.30 (s, 3H); 13C NMR (100 MHz, DMSO-d6)δ (ppm) 169.52, 169.28, 162.28, 152.03, 151.63, 149.71,149.32, 134.95, 131.36, 128.79, 127.77, 126.89, 126.33, 125.89, 123.98, 121.66, 120.73, 117.74, 21.39, 21.28;
o
Pochodna 3.
2-[(E)-2-(3-acetoksyfenylo)etenylo]-4(3H)chinazolon. Związek otrzymano w reakcji 1,60 g 2-metylo-4(3H)chinazolonu i 1,20 g 3-hydroksybenzaldehydu uzyskując wydajność 1,45 g (48%) białego osadu, t.top=239°C. Strukturę związku potwierdzono na podstawie spektroskopii 1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ (ppm) 12.33 (s, 1H), 8.12 (ddd, J = 7.9, 1.4, 0.5, 1H), 7.94 (d, J = 16.2, 1H), 7.82 (ddd, J = 8.3, 7.0, 1.4, 1H), 7.69 (d, J = 8.0, 1H), 7.56 (d, J = 7.6, 1H), 7.51 (t, J = 8, 1H), 7.50 (ddd, J = 8.4, 6.6, 1.0, 1H), 7.45 (s, 1H), 7.19 (ddd, J = 7.8, 2.1,1.1,1 H), 7.03 (d, J = 16.2, 1H), 2.31 (s, 3H; 13C NMR (125 MHz, DMSO - d6) δ (ppm) 169.66, 162.16, 151.67, 151.47, 149.40, 137.69, 137.07, 135.04, 130.64, 127.68, 126.86, 126.36, 125.69, 123.63, 122.69, 121.64, 121.02, 21.38;
Przykład 2
Oznaczanie hamowania kinazy białkowej.
Przykładowa procedura pomiaru inhibicji niereceptorowych kinaz tyrozynowych przy pomocy testów Kinase Selectivity Profiling Systems (Promega) oraz ADP-Glo Kinase Assay (Promega). Przed przystąpieniem do badania rozpuszczono związki w DMSO, a następnie przygotowano roztwory w stężeniu 0,5 μΜ w 1X Kinase Reaction Buffer (40 mM Tris - pH 7,5; 20 mM MgCh; 0,1 mg/mL BSA; 50 μΜ DTT), w którym końcowe stężenie DMSO wynosiło 5%. Następnie każdą kinazę (ABL1; BRK; BTK; CSK; FYN A; LCK; LYN B; SRC) z 8-dołkowego paska rozpuszczono w 95 μί 2,5X Kinase Reaction Buffer, a 8-dołkowe paski zawierające substraty w 15 μί 100 μΜ ATP. Test na inhibicję kinaz tyrozynowych przeprowadzono na białej płytce 384-dołkowej, w tym celu przeniesiono roztwory związków w ilości 1 μί, a następnie dodano po 2 μί wcześniej przygotowanych roztworów kinaz oraz substratów i inkubowano przez 1 h w temperaturze pokojowej. Aktywność kinaz wykrywano przy pomocy testu ADPGlo Kinase Assay. W metodzie tej dodano 5 μί odczynnika ADP- Glo™ Reagent do każdej studzienki,
PL 237 886 Β1 po czym płytkę wymieszano na wytrząsarce przez 2 minuty i inkubowano 40 minut w temperaturze pokojowej. Następnie, dodano 10 μί odczynnika Kinase Detection Reagent, ponownie mieszano i inkubowano 30 minut w temperaturze pokojowej. Wartość luminescencji odczytano przy użyciu wielodetekcyjnego czytnika płytek Synergy 4, Bio Tek.
Wyniki, w postaci procentowej wartości zahamowania aktywności kinazy przedstawiono w tabeli 1.
T a b e I a 1 Hamowanie kinaz przez pochodne z przykładu 1.
Nr pochodnej z przykładu 1 struktura Kinazy białkowe z przykładu 3
ABL1 BR K BT K CS K FY N A LC K LY N B SR C
1 0 ί^'ΐ'ΝΙΙ OAc 0 29,72 50,53 14,35 0 0 0 40,43
2 O OAc ^-^OAc 30,01 0 0 63,98 19,38 0 24,83 51,08
3 O 14,81 36,11 0 0 0 0 5,62 0,64
Przykład 3
Aktywność przeciwnowotworowa pochodnych styrylochinazolinonu wobec nowotworów jelita grubego.
Aktywność antyproliferacyjną badanych związków oznaczono wobec komórek ludzkiego raka jelita HCT 116 +/+ (linia komórek p53 pozytywnych). Komórki wysiano w ilości 9 tysięcy na dołek (wraz z 100 μL/dołek medium DMEM) i pozostawiono na 24 godziny w temperaturze 37°C; 5% CO2. Związki rozpuszczone w minimalnej ilości DMSO podawano w stężeniach umożliwiających wyznaczenie krzywej aktywności. Przykładowa aplikacja związku - rozpuszczenie związku w DMSO w celu przygotowania roztworów o następujących stężeniach: 25 μΜ, 10 μΜ, 5 μΜ, 2,5 μΜ, 0,5 μΜ, 0,1 μΜ. Końcowa objętość w dołkach wynosiła 200 μί. Tak przygotowane komórki poddano inkubacji w czasie 72 h, po czym przeprowadzono ocenę żywotności komórek w teście MTS. Do każdej studzienki w płytce 96 dołkowej dodano 20 μί roztworu MTS (5 mg/mL) i inkubowano przez 1 h. Wartości absorbancji odczytano przy użyciu spektrofotometru przy długości fali 490 nm. Wyniki testów w postaci średniej wraz z odchyleniem zostały przedstawione w tabeli 2 w przeliczeniu na wartości IC50. Jako związek referencyjny zastosowano imatynib.
Przykład 4
Aktywność przeciwnowotworowa pochodnych chinazolinonu wobec nowotworów jelita grubego z delecją genu supresorowego TP53.
Aktywność antyproliferacyjną badanych związków oznaczono wobec komórek ludzkiego raka jelita HCT 116-/- (linia komórek z delecją genu p53). Komórki wysiano w ilości 9 tysięcy na dołek (wraz z 100 μL/dołek medium DMEM) i pozostawiono na 24 godziny w temperaturze 37°C; 5% CO2. Związki rozpuszczone w minimalnej ilości DMSO podawano w stężeniach umożliwiających wyznaczenie krzywej aktywności. Przykładowa aplikacja związku - rozpuszczenie związku w DMSO w celu przygotowania roztworów o następujących stężeniach: 25 μΜ, 10 μΜ, 5 μΜ, 2,5 μΜ, 0,5 μΜ, 0,1 μΜ. Końcowa objętość w dołkach wynosiła 200 μί. Tak przygotowane komórki poddano inkubacji w czasie 72 h, po czym przeprowadzono ocenę żywotności komórek w teście MTS. Do każdej studzienki w płytce 96 dołkowej dodano 20 μί roztworu MTS (5 mg/mL) i inkubowano przez 1 h. Wartości absorbancji odczytano przy użyciu spektrofotometru przy długości fali 490 nm. Wyniki testów w postaci średniej wraz z odchyleniem zostały przedstawione w tabeli 2 w przeliczeniu na wartości IC50.
PL 237 886 B1
W analogiczny sposób jak w przykładach 3 i 4 można oznaczyć aktywność przeciwnowotworową na dowolnych wyizolowanych komórkach nowotworów zwierzęcych w szczególności ludzkich.
Pochodna służy do wytwarzania leku służącego do modulowania aktywności kinaz białkowych, do leczenia nowotworów wykazujących ekspresję kinaz tyrozynowych, w postaci nowotworu okrężnicy.
P r z y k ł a d 5
Cytotoksyczność związków z przykładu 1 względem normalnych komórek ludzkich.
Cytotoksyczność związków oznaczono wobec ludzkich fibroblastów (linia komórek NHDF). Komórki wysiano w ilości 9 tysięcy na dołek (wraz z 100 μL/dołek medium DMEM) i pozostawiono na 24 godziny w temperaturze 37°C; 5% CO2. Związki rozpuszczone w minimalnej ilości DMSO podawano w stężeniach umożliwiających wyznaczenie krzywej aktywności. (Przykładowa aplikacja związku - rozpuszczenie związku w DMSO w celu przygotowania roztworów o następujących stężeniach: 25 μΜ, 10 μΜ, 5 μΜ, 2,5 μΜ, 0,5 μΜ, 0,1 μM). Końcowa objętość w dołkach wynosiła 200 μΕ. Tak przygotowane komórki poddano inkubacji w czasie 72 h, po czym przeprowadzono ocenę żywotności komórek w teście MTS. Do każdej studzienki w płytce 96 dołkowej dodano 20 μΕ roztworu ΜΤ8 (5 mg/mL) i inkubowano przez 1 h. Wartości absorbancji odczytano przy użyciu spektrofotometru przy długości fali 490 nm. Wyniki testów w postaci średniej wraz z odchyleniem są przedstawione w tabeli 2 (w przeliczeniu na wartości IC50).
PL 237 886 Β1
Tabela 2. Aktywność przeciwnowotworowa pochodnych z przykładu 1
Pochodna Struktura Aktywność przykłady 3-5
HCT11 6 +/+ [μΜ] HCT11 6 -/- [μΜ] NHD F [μΜ]
1 O OAc >25 17,24 ± 0,72 >25
2 0 OAc ^^^^OAc >25 22,98 ± 1,06 >25
3 CĆU^«. 15,33 ± 1,04 9,287 ± 1,347 >25
1MT Q d 0 z T ω 44,55 ± 2,41 51,21 ± 4,09 >25
Przykład 6
Oznaczanie podatności nowotworu na działanie pochodnej opisanej wynalazkiem. Oznaczanie podatności wykonano jako wyznaczenie poziomu ekspresji genów kinaz z rodziny SRC (CSK; FYN A; LCK; LYN B; SRC) przy pomocy metody Real-Time PCR (RT-PCR). Oznaczenia przeprowadzono na ludzkich liniach komórkowych: raka jelita grubego (HCT 116), gruczolakoraka jelita grubego (Caco-2), raka piersi (MCF-7), raka płuc (A549) oraz prawidłowych fibroblastów (NHDF). Przed przystąpieniem do właściwej części oznaczenia, komórki wysiano na 3 cm szalkach Petriego w ilości 500 tys./1 mL medium DMEM i inkubowano przez 24 godziny w temperaturze 37°C; 5% CO2. Po tym czasie, z komórek wyizolowano RNA przy pomocy odczynnika TRIzol Reagent (Ambion), oczyszczono i zmierzono w spektrofotometrze typu NanoDrop. Następnie, 5 μg wyizolowanego RNA poddano procesowi odwrotnej transkrypcji do cDNA przy pomocy GoScript™ Reverse Transcriptase kit (Promega) oraz Oligo(dT)23 Primers (Sigma). Otrzymany produkt wykorzystano do reakcji Real-Time PCR, którą przeprowadzono wtermocyklerze CTX96 Touch™ Real-Time PCR Detection System (Biorad). Wtym celu, przygotowano mieszaninę reakcyjną w objętości 20 μί. Przykładowo mieszaninę reakcyjną sporządzono z master mixu - 2X PowerUp™ SYBR® Green Master Mix (Applied Biosystems), który zawierał dinukleotydy (dNTPs), polimerazę (Dual-Lock Tag DNA Polymerase) oraz barwnik SYBR Green, po czym dodano
PL 237 886 Β1 pary starterów w ilości 0,5 μΜ, 1 μί matrycy cDNA oraz uzupełniono sterylną wodą do końcowej objętości. Przykładowe pary starterów podano w tabeli 3. Gotową mieszaninę reakcyjną umieszczono w termocyklerze i przeprowadzono reakcję RT-PCR, składającą się z następujących etapów:
- początkowa denaturacja w 95°C przez 120 sekund,
- denaturacja w 95°C przez 15 sekund, przyłączanie starterów przez 30 sekund (temperatura specyficzna dla zaprojektowanych par starterów), wydłużanie matrycy w temperaturze 72°C przez 60 sekund; etap ten składa się z 40 cykli,
- pomiar krzywych topnienia w zakresie temperaturowym 65°C-95° (2-5 sekund na każde 0,5°C), celem weryfikacji otrzymanych produktów podczas reakcji RT-PCR.
Otrzymane dane analizowano porównując ekspresję badanych genów do referencyjnego genu podstawowego metabolizmu - β-aktyny przy pomocy standardowej metody 2 ΔΔσΓ wprowadzonej przez Livak i Schmittgen.
Tabela 3. Zaprojektowane pary starterów.
Gen Forward primer (5'—G') Reverse primer (5—>3')
CSK GGCTCTACATCGTCACTGA G CTCAGACACCAGCACATTG
FYN A GTAGTCATGGCAACCCGCT A ACAACCCCCACCCTCATTTC
LCK AGCTTTTCTGTGGCTGGTG A CATTTCGGATGAGCAGCGTG
LYNB GCGAGCGGGAAATATGGG AT AGATTCTGGAACTGGTTGAGT CT
SRC CCTCGTGCGAGAAAGTGA G TGGCGTTGTCGAAGTCAG
β-aktyna CTCGCCTTTGCCGATCC GCTGGGGTGTTGAAGGTCTC
Tabela 4. Względna ekspresja kinaz w badanych komórkach nowotworowych.
Komórki Ekspresja kinaz
SRC CSK FYNA LYNB LCK
HCT116 p53 +/+ 0,997561 3,597657 5,872974 5,536789 1,385958
HCT116p53 -/- 0,448602 2,745799 3,57869 3,213361 4,957144
MCF-7 0,057369 1,222902 0,367766 0,477916 0,047678
A549 1,024934 0,871319 0,259529 0,605141 0,014632
Otrzymane wyniki wskazują w prosty sposób jak można określić rodzaj nowotworu podatny na modulowanie kinaz białkowych. Zgodnie z danymi przedstawionymi w tabeli 4 zwiększona ekspresja
PL 237 886 Β1 może dotyczyć zarówno jednego enzymu lub całej grupy w konkretnych komórkach. Jednocześnie, zgodnie z obowiązującym podejściem większa ogólna zależność skutkować może większą efektywnością substancji wpływającej na profil aktywności kinaz.

Claims (1)

1. Zastosowanie pochodnej styrylochinazolinonu o wzorze 1, do wytwarzania leku służącego do modulowania aktywności kinaz białkowych, korzystnie do leczenia nowotworów wykazujących ekspresję kinaz tyrozynowych, szczególnie korzystnie nowotworu okrężnicy.
PL421717A 2017-05-26 2017-05-26 Zastosowanie pochodnej styrylochinazolinonu PL237886B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL421717A PL237886B1 (pl) 2017-05-26 2017-05-26 Zastosowanie pochodnej styrylochinazolinonu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL421717A PL237886B1 (pl) 2017-05-26 2017-05-26 Zastosowanie pochodnej styrylochinazolinonu

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL421717A1 PL421717A1 (pl) 2018-12-03
PL237886B1 true PL237886B1 (pl) 2021-06-14

Family

ID=64460774

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL421717A PL237886B1 (pl) 2017-05-26 2017-05-26 Zastosowanie pochodnej styrylochinazolinonu

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL237886B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL421717A1 (pl) 2018-12-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Khalifa et al. Topo II inhibition and DNA intercalation by new phthalazine-based derivatives as potent anticancer agents: design, synthesis, anti-proliferative, docking, and in vivo studies
El-Naggar et al. Eco-friendly sequential one-pot synthesis, molecular docking, and anticancer evaluation of arylidene-hydrazinyl-thiazole derivatives as CDK2 inhibitors
Rzymski et al. SEL120-34A is a novel CDK8 inhibitor active in AML cells with high levels of serine phosphorylation of STAT1 and STAT5 transactivation domains
Hu et al. Synthesis and biological evaluation of novel thiazolidinone derivatives as potential anti-inflammatory agents
Alkahtani et al. Synthesis and biological evaluation of benzo [d] imidazole derivatives as potential anti-cancer agents
Jobson et al. Cellular inhibition of checkpoint kinase 2 (Chk2) and potentiation of camptothecins and radiation by the novel Chk2 inhibitor PV1019 [7-nitro-1H-indole-2-carboxylic acid {4-[1-(guanidinohydrazone)-ethyl]-phenyl}-amide]
RS52739B (sr) Jedinjenja korisna za inhibiciju chk1
Halim et al. Synthesis and biological evaluation of halogenated phenoxychalcones and their corresponding pyrazolines as cytotoxic agents in human breast cancer
US20100086518A1 (en) Treatment of melanoma
Jin et al. Ethyl 2-(benzylidene)-7-methyl-3-oxo-2, 3-dihydro-5H-thiazolo [3, 2-a] pyrimidine-6-carboxylate analogues as a new scaffold for protein kinase casein kinase 2 inhibitor
Ismail et al. Design, synthesis, and biological evaluation of novel 7 H-[1, 2, 4] Triazolo [3, 4-b][1, 3, 4] thiadiazine inhibitors as antitumor agents
Batran et al. Design, synthesis, and molecular modeling of quinoline‐based derivatives as anti‐breast cancer agents targeting EGFR/AKT signaling pathway
Seif et al. Design and synthesis of novel hexahydrobenzo [4, 5] thieno [2, 3‐d] pyrimidine derivatives as potential anticancer agents with antiangiogenic activity via VEGFR‐2 inhibition, and down‐regulation of PI3K/AKT/mTOR signaling pathway
Li et al. Inhibitor of the human telomerase reverse trancriptase (hTERT) gene promoter induces cell apoptosis via a mitochondrial-dependent pathway
Geng et al. Antitumor activity of a 5-hydroxy-1 H-Pyrrol-2-(5 H)-one-based synthetic small molecule in vitro and in vivo
PT1636215E (pt) Furazanobenzimidazoles
WO2019038683A1 (en) COMPOUNDS TARGETING BRCA1 BRCT TANDEM DOMAINS, COMPOSITIONS AND RELATED METHODS
Nazari et al. Synthesis and evaluation of in vitro cytotoxic effects of triazol/spiroindolinequinazolinedione, triazol/indolin-3-thiosemicarbazone and triazol/thiazol-indolin-2-one conjugates
Li et al. Development of a novel thymidylate synthase (TS) inhibitor capable of up-regulating P53 expression and inhibiting angiogenesis in NSCLC
Yang et al. Synthesis and bioactivity of 4-alkyl (aryl) thioquinazoline derivatives
Radwan et al. Synthesis, and docking studies of some fused-quinazolines and quinazolines carrying biological active isatin moiety as cell-cycle inhibitors of breast cancer cell lines
Zhan et al. PKCα is involved in the progression of kidney carcinoma through regulating netrin-1/UNC5B signaling pathway
Malarz et al. Styrylquinazoline derivatives as ABL inhibitors selective for different DFG orientations
Haneen et al. Novel pyrano [2, 3-c] pyrazolopyrimidines as promising anticancer agents: Design, synthesis, and cell cycle arrest of HepG2 cells at S phase
Singh et al. A gain of function mutation in AKT1 increases hexokinase 2 and diminishes oxidative stress in meningioma