PL223448B1 - Sposób stymulacji żywotności nicieni owadobójczych i ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin - Google Patents

Sposób stymulacji żywotności nicieni owadobójczych i ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin

Info

Publication number
PL223448B1
PL223448B1 PL406403A PL40640314A PL223448B1 PL 223448 B1 PL223448 B1 PL 223448B1 PL 406403 A PL406403 A PL 406403A PL 40640314 A PL40640314 A PL 40640314A PL 223448 B1 PL223448 B1 PL 223448B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
nematodes
pathogenicity
stimulating
insecticidal
pests
Prior art date
Application number
PL406403A
Other languages
English (en)
Other versions
PL406403A1 (pl
Inventor
Magdalena Jaworska
Piotr Tomasik
Jerzy Domański
Original Assignee
Univ Rolniczy Im Hugona Kołłątaja W Krakowie
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Rolniczy Im Hugona Kołłątaja W Krakowie filed Critical Univ Rolniczy Im Hugona Kołłątaja W Krakowie
Priority to PL406403A priority Critical patent/PL223448B1/pl
Publication of PL406403A1 publication Critical patent/PL406403A1/pl
Publication of PL223448B1 publication Critical patent/PL223448B1/pl

Links

Landscapes

  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Catching Or Destruction (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób stymulacji żywotności nicieni owadobójczych i ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin.
Zwalczanie szkodników i chorób roślin wyłącznie preparatami chemicznymi jest od lat 70-tych XX wieku stopniowo zastępowane integrowanymi programami ochrony roślin łączącymi metody agrotechniczne, biologiczne, fizyczne i chemiczne. Stosowanie chemicznych pestycydów spowodowało kumulowanie ich w plonach i potem w żywności, przedostawanie się ich do źródeł wody pitnej oraz powstawanie ras zwalczanych szkodników odpornych na stosowane pestycydy. Te okoliczności zwróciły uwagę zwłaszcza na metody biologiczne. Metody biologiczne polegają na czynnym wykorzystaniu naturalnych wrogów mikroorganizmów chorobotwórczych (wirusów, bakterii, grzybów, nicieni) oraz pasożytniczych i drapieżnych owadów i pajęczaków, a także naturalnych sprzymierzeńców jakimi są owadożerne zwierzęta. Ważnym czynnikiem ograniczającym w warunkach naturalnych populacje szkodliwych owadów są owadobójcze nicienie. Dla praktyki ochrony roślin największe znaczenie mają nicienie z rodzin Steinernematidae i Heterorhabditiae będące wektorami owadobójczych bakterii odpowiednio z rodzaju Xenorhabdus i Photorhabdus. W tym mutualistycznym związku szybko rozmnażające się bakterie są dla nicieni źródłem pokarmu wraz z martwym ciałem zabitego owada, a same nicienie są jedynie „żywymi strzykawkami” wyszukującymi owady i infekującymi je bakteriami. Owadobójcze nicienie infekują w warunkach naturalnych różne szkodliwe owady. Szybkość infekcji zależy od stadium rozwojowego owada i jego odporności, a także od właściwości fizycznych i chemicznych gleby, jednak pierwsze owady giną już po kilku godzinach od zetknięcia się z nicieniami, a więc równie szybko jak w przypadku zetknięcia się z truciznami chemicznymi. W martwych ciałach owadów żywicielskich nicienie realizują swój cykl życiowy i rozmnażają się, a po kilkunastu dniach do środowiska migruje ogromna ilość młodych larw inwazyjno-przetrwalnych, z których każda zdolna jest do zabicia owada. Jest to ogromny potencjał biotyczny, który rozprasza się w glebie oczekując na owady żywicielskie. Obecnie biopreparaty z żywymi nicieniami owadobójczymi używane są do ochrony upraw polowych, ogrodniczych, sadowniczych, trawników i upraw leśnych, a także ochrony pieczarek przed szkodnikami owadzimi.
Polowa efektywność tych organizmów może być ograniczana niesprzyjającymi warunkami śr odowiska. Do czynników abiotycznych hamujących występowanie i rozwój mikroorganizmów glebowych należą między innymi jony metali kumulujące się w nadmiarze w glebie wskutek antropogenicznych zanieczyszczeń. Na toksyczność metali względem nicieni może mieć również wpływ pH gleby.
W związku z powyższym, prowadzone są badania nad możliwością stymulacji żywotności owadobójczych nicieni, a tym samym nad poprawą ich funkcjonowania w środowisku.
W pracach M. Jaworskiej i A. Gorczycy pod tytułem „Effect of manganese ions on entomo pathogenic nematodes opublikowanej w czasopiśmie „Entomonematologia”, tom 4 z roku 1995,
M. Jaworskiej, D. Ropka i P. Tomasika pod tytułem Chemical stimulation of productivity and pathogenicity of entomopathogenic nematodes z czasopisma Journal of Invertebrate Pathology tom 73 z roku 1999 oraz M. Jaworskiej i A. Gorczycy „The effect of metal ions on mortality, pathogenicity and reproduction of entomopathogenic nematodes Steinernema feltiae Filipjev [Rhabditida, Steinernematidae) z czasopisma Polish Journal of Environmental Studies, w tomie 11 z roku 2002 opisano metody stymulacji żywotności i patogeniczności nicieni owadobójczych polegające na zastoso waniu w temperaturze 20-22°C pożywek zawierających wodne roztwory soli zawierających siarczan ma nganu II (400 mg/dcm) lub magnezu (160 mg/dcm).
Istota pierwszego rozwiązania polega na tym, że nicienie owadobójcze umieszcza się w zawiesinie wody destylowanej i przechowuje w temperaturze 4°C przez dowolny okres czasu, po czym poddaje się działaniu pola magnetycznego o indukcji 0,01-0,5 Tesli w czasie od 5 minut do 5 godzin i temperaturze od 0 do 30°C,
Istota drugiego rozwiązania polega na tym, że nicienie owadobójcze przechowuje się w wodzie destylowanej w temperaturze 4°C przez dowolny okres czasu, a następnie nicieniom owadobójczym dostarcza się stopniowo wodę destylowaną poddaną uprzednio procesowi namagnesowania polem magnetycznym o indukcji 0,01 do 0,5 Tesli w czasie od 0,5 do 1 godziny i pozostawia w tej wodzie.
Zaletą przedstawionych powyżej rozwiązań jest zwiększenie żywotności i patogeniczności nicieni w stosunku do owadów, co można wykorzystać przy stosowaniu tych nicieni do zwalczania szkodników roślin w ich biologicznej ochronie w systemie zintegrowanym, obowiązującym w naszym rolnictwie od 2014 r.
PL 223 448 B1
W każdym wypadku obserwuje się wzrost patogeniczności nicieni stymulowanych przez pole magnetyczne co mierzono śmiertelnością larw owadów doświadczalnych, jak również wzrost rozrodczości stymulowanych nicieni. Rozrodczość wzrasta o 40 do 150% i zależy od gatunku nicieni, natężenia pola magnetycznego oraz czasu jego działania. Patogeniczność, która wzrasta od 10 do kilkuset procent zależy od tych samych czynników.
P r z y k ł a d I
W przykładzie wykonania przeprowadza się procedurę stymulacji nicieni z gatunku Steinernema feltiae pochodzących z biopreparatów komercyjnych. Przed rozpoczęciem stymulacji nicienie przechowuje się w wodzie destylowanej w lodówce o temperaturze 4°C. Następnie do nicieni dodaje się wodę destylowaną namagnesowaną przez 30 minut polem magnetycznym o indukcji 0,1 Tesli i przechowuje w niej nicienie przez okres potrzebny do ich zastosowania.
P r z y k ł a d II
W przykładzie wykonania przeprowadza się procedurę stymulacji nicieni z gatunku Steinernema feltiae pochodzących z biopreparatów komercyjnych. Przed rozpoczęciem stymulacji nicienie przechowuje się w wodzie destylowanej w lodówce o temperaturze 4°C. Następnie zawiesinę nicieni w wodzie destylowanej namagnesowuje się w temp. pokojowej magnesem o indukcji 0,1 Tesli w czasie 1,5 godziny.
P r z y k ł a d III
W przykładzie wykonania przeprowadza się procedurę stymulacji nicieni z gatunku Steinernema feltiae pochodzących z biopreparatów komercyjnych. Przed rozpoczęciem stymulacji nicienie przechowuje się w wodzie destylowanej w lodówce o temperaturze 4°C. Następnie zawiesinę nicieni w wodzie destylowanej namagnesowuje się w temp. pokojowej magnesem o indukcji 0,2 Tesli w czasie 0,5 godziny.

Claims (2)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób stymulacji żywotności nicieni owadobójczych i ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin, znamienny tym, że nicienie owadobójcze umieszcza się w zawiesinie wody destylowanej i przechowuje w niej w temperaturze 4°C przez dowolny okres czasu, po czym poddaje się działaniu pola magnetycznego o indukcji 0,01 Tesli w czasie od 5 minut do 5 godzin i temperaturze od 0 do 30°C.
  2. 2. Sposób stymulacji żywotności nicieni owadobójczych i ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin, znamienny tym, że nicienie owadobójcze przechowuje się w wodzie destylowanej w temperaturze 4°C przez dowolny okres czasu, a następnie nicieniom owadobójczym dostarcza się stopniowo wodę destylowaną poddaną uprzednio procesowi namagnesowania polem magnetycznym o indukcji 0,01 do 0,5 Tesli w czasie od 0,5 do 1 godziny i pozostawia w tej wodzie.
PL406403A 2014-01-09 2014-01-09 Sposób stymulacji żywotności nicieni owadobójczych i ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin PL223448B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL406403A PL223448B1 (pl) 2014-01-09 2014-01-09 Sposób stymulacji żywotności nicieni owadobójczych i ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL406403A PL223448B1 (pl) 2014-01-09 2014-01-09 Sposób stymulacji żywotności nicieni owadobójczych i ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL406403A1 PL406403A1 (pl) 2014-08-18
PL223448B1 true PL223448B1 (pl) 2016-10-31

Family

ID=51302527

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL406403A PL223448B1 (pl) 2014-01-09 2014-01-09 Sposób stymulacji żywotności nicieni owadobójczych i ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL223448B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL406403A1 (pl) 2014-08-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Shapiro‐Ilan et al. Nematodes
Le Vieux et al. Prospects for using entomopathogenic nematodes to control the vine mealybug, Planococcus ficus, in South African vineyards
Pilz et al. Persistence of the entomoparasitic nematode H eterorhabditis bacteriophora in maize fields
JP6467177B2 (ja) 花の香り由来の天敵昆虫誘引成分およびその利用
Laznik et al. The activity of three new strains of Steinernema feltiae against adults of Sitophilus oryzae under laboratory conditions
Entsar Nematicidal effects of silver nanoparticles on root-knot nematodes (Meloidogyne incognita) in laboratory and screenhouse
Silva et al. Toxicity of neem oil to the cassava green mite Mononychellus tanajoa (Bondar)(Acari: Tetranychidae)
JP5490897B2 (ja) 物理的植物処理方法
PL223448B1 (pl) Sposób stymulacji żywotności nicieni owadobójczych i ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin
Franco et al. Common-garden experiments reveal geographical variation in the interaction among Crotalaria pallida (Leguminosae: Papilionideae), Utetheisa ornatrix L.(Lepidoptera: Arctiidae), and extrafloral nectary visiting ants
Vieux et al. Prospects for using entomopathogenic nematodes to control the vine mealybug, Planococcus ficus, in South African vineyards.
Hafeez et al. 07. Diversity and distribution of Dragonfly in District Sialkot, Punjab, Pakistan
Zahavi et al. Push and pull strategy to reduce Hyalesthes obsoletus population in vineyards by Vitex agnus castus as trap plant
Mahmoud Virulence of Entomopathogenic Nematodes against the Jasmine Moth, Palpita unionals Hb.(Lepidoptera: Pyralidae)
Rodriguez‐Saona et al. Long‐term evaluation of field‐wide oriental beetle (C ol., S carabaeidae) mating disruption in blueberries using female‐mimic pheromone lures
PL223412B1 (pl) Sposób stymulacji wzrostu grzybów owadobójczych oraz ich patogeniczności dla owadów w biologicznej ochronie roślin
Atwa Susceptibility of Spodoptera littoralis (Boisd.) to treated entomopathogenic rhabdities, Heterorhabditis bacteriophora and Steinernema sp. by different pesticides
Al-Ameri et al. Relationship between ants Pheidole megacephala (Hymenoptera: Formicidae) and some dead animals tissue.
Gautam et al. Entomopathogenic nematode and insect pest management: a review
Pokhrel et al. Efficacy of two entomopathogenic nematodes strains Steinernema siamkayai and S. abbasi against the 3rd instar larvae of Chiloloba acuta
Gupta et al. VANISHING HONEY BEES: THE FULCRUM OF OUR ECOSYSTEM
Zanuri et al. Toxicity Testing of Three Commonly Used Herbicides on Soil-Dwelling Ant (Family: Formicidae-Odontomachus simillimus)
Hoseininia et al. Comparison of different methods for control of gladiolus bulb mite Rhizoglyphus echinopus (Fumouze & Robin)(Astigmata: Acaridae) under greenhouse conditions.
Bhowmik et al. Bactrocera Dorsalis (Diptera: Tephritidae) management through lure and kill traps
Girón-Pablo et al. Biological Control of Phyllophaga vetula (Horn) 1, and Lethal Concentrations and Times of Entomopathogenic Nematodes