PL220906B1 - Sposób wizualnego wykrywania i diagnostyki mikroorganizmów - Google Patents
Sposób wizualnego wykrywania i diagnostyki mikroorganizmówInfo
- Publication number
- PL220906B1 PL220906B1 PL400442A PL40044212A PL220906B1 PL 220906 B1 PL220906 B1 PL 220906B1 PL 400442 A PL400442 A PL 400442A PL 40044212 A PL40044212 A PL 40044212A PL 220906 B1 PL220906 B1 PL 220906B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- detection
- pcr
- escherichia coli
- dna
- probe
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 71
- 238000001514 detection method Methods 0.000 title claims description 47
- 244000005700 microbiome Species 0.000 title claims description 17
- 230000000007 visual effect Effects 0.000 title claims description 9
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 title description 9
- 239000000523 sample Substances 0.000 claims description 27
- 238000003752 polymerase chain reaction Methods 0.000 claims description 24
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims description 22
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 claims description 17
- 230000000295 complement effect Effects 0.000 claims description 8
- 230000005855 radiation Effects 0.000 claims description 8
- 102000016928 DNA-directed DNA polymerase Human genes 0.000 claims description 4
- 108010014303 DNA-directed DNA polymerase Proteins 0.000 claims description 4
- 244000000010 microbial pathogen Species 0.000 claims description 4
- 238000010791 quenching Methods 0.000 claims description 4
- 108010068698 spleen exonuclease Proteins 0.000 claims description 3
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims description 2
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 claims description 2
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 claims description 2
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 35
- 238000003753 real-time PCR Methods 0.000 description 20
- 108010079723 Shiga Toxin Proteins 0.000 description 12
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 11
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 10
- 108700012359 toxins Proteins 0.000 description 10
- 239000002105 nanoparticle Substances 0.000 description 9
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 9
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 8
- 238000007403 mPCR Methods 0.000 description 8
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 8
- 239000000047 product Substances 0.000 description 8
- 239000003053 toxin Substances 0.000 description 8
- 231100000765 toxin Toxicity 0.000 description 8
- 238000000018 DNA microarray Methods 0.000 description 7
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 7
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 6
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 6
- 241001646719 Escherichia coli O157:H7 Species 0.000 description 5
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 5
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 5
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 5
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 5
- 239000000304 virulence factor Substances 0.000 description 5
- 230000007923 virulence factor Effects 0.000 description 5
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 4
- YPHMISFOHDHNIV-FSZOTQKASA-N cycloheximide Chemical compound C1[C@@H](C)C[C@H](C)C(=O)[C@@H]1[C@H](O)CC1CC(=O)NC(=O)C1 YPHMISFOHDHNIV-FSZOTQKASA-N 0.000 description 4
- PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N gold Chemical compound [Au] PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 229910052737 gold Inorganic materials 0.000 description 4
- 239000010931 gold Substances 0.000 description 4
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 4
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 4
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 4
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 4
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 4
- RXWNCPJZOCPEPQ-NVWDDTSBSA-N puromycin Chemical compound C1=CC(OC)=CC=C1C[C@H](N)C(=O)N[C@H]1[C@@H](O)[C@H](N2C3=NC=NC(=C3N=C2)N(C)C)O[C@@H]1CO RXWNCPJZOCPEPQ-NVWDDTSBSA-N 0.000 description 4
- XMTQQYYKAHVGBJ-UHFFFAOYSA-N 3-(3,4-DICHLOROPHENYL)-1,1-DIMETHYLUREA Chemical compound CN(C)C(=O)NC1=CC=C(Cl)C(Cl)=C1 XMTQQYYKAHVGBJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 3
- FBPFZTCFMRRESA-FSIIMWSLSA-N D-Glucitol Natural products OC[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-FSIIMWSLSA-N 0.000 description 3
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 description 3
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 3
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 3
- 241001333951 Escherichia coli O157 Species 0.000 description 3
- 206010061126 Escherichia infection Diseases 0.000 description 3
- 108010017898 Shiga Toxins Proteins 0.000 description 3
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 3
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 description 3
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 3
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 3
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 3
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 3
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 description 3
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 3
- 208000020612 escherichia coli infection Diseases 0.000 description 3
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 3
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 3
- 230000000171 quenching effect Effects 0.000 description 3
- 230000000405 serological effect Effects 0.000 description 3
- 239000000600 sorbitol Substances 0.000 description 3
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 description 2
- 108010067770 Endopeptidase K Proteins 0.000 description 2
- TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L Magnesium chloride Chemical compound [Mg+2].[Cl-].[Cl-] TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 102000016943 Muramidase Human genes 0.000 description 2
- 108010014251 Muramidase Proteins 0.000 description 2
- 108010062010 N-Acetylmuramoyl-L-alanine Amidase Proteins 0.000 description 2
- 241000607142 Salmonella Species 0.000 description 2
- 235000015278 beef Nutrition 0.000 description 2
- 244000309466 calf Species 0.000 description 2
- 239000011852 carbon nanoparticle Substances 0.000 description 2
- 230000001472 cytotoxic effect Effects 0.000 description 2
- 231100000263 cytotoxicity test Toxicity 0.000 description 2
- 230000010460 detection of virus Effects 0.000 description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 description 2
- 230000036541 health Effects 0.000 description 2
- 238000003018 immunoassay Methods 0.000 description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 2
- 238000012092 latex agglutination test Methods 0.000 description 2
- 229960000274 lysozyme Drugs 0.000 description 2
- 235000010335 lysozyme Nutrition 0.000 description 2
- 239000004325 lysozyme Substances 0.000 description 2
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 2
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 2
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 2
- 238000007899 nucleic acid hybridization Methods 0.000 description 2
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 2
- 229950010131 puromycin Drugs 0.000 description 2
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 2
- 239000002352 surface water Substances 0.000 description 2
- 241001515965 unidentified phage Species 0.000 description 2
- BZTDTCNHAFUJOG-UHFFFAOYSA-N 6-carboxyfluorescein Chemical compound C12=CC=C(O)C=C2OC2=CC(O)=CC=C2C11OC(=O)C2=CC=C(C(=O)O)C=C21 BZTDTCNHAFUJOG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- 241000589876 Campylobacter Species 0.000 description 1
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101710112752 Cytotoxin Proteins 0.000 description 1
- 101150082208 DIABLO gene Proteins 0.000 description 1
- 238000007399 DNA isolation Methods 0.000 description 1
- 102100033189 Diablo IAP-binding mitochondrial protein Human genes 0.000 description 1
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000008157 ELISA kit Methods 0.000 description 1
- 241000588722 Escherichia Species 0.000 description 1
- 201000005569 Gout Diseases 0.000 description 1
- 238000007397 LAMP assay Methods 0.000 description 1
- 240000002129 Malva sylvestris Species 0.000 description 1
- 235000006770 Malva sylvestris Nutrition 0.000 description 1
- 241000607768 Shigella Species 0.000 description 1
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 1
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 238000005273 aeration Methods 0.000 description 1
- 238000000246 agarose gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 230000002776 aggregation Effects 0.000 description 1
- 238000004220 aggregation Methods 0.000 description 1
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 1
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 1
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 1
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 238000009835 boiling Methods 0.000 description 1
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 1
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 1
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000013351 cheese Nutrition 0.000 description 1
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 description 1
- 230000002860 competitive effect Effects 0.000 description 1
- 230000037029 cross reaction Effects 0.000 description 1
- 230000009089 cytolysis Effects 0.000 description 1
- 231100000599 cytotoxic agent Toxicity 0.000 description 1
- 239000002619 cytotoxin Substances 0.000 description 1
- 235000013365 dairy product Nutrition 0.000 description 1
- 238000002405 diagnostic procedure Methods 0.000 description 1
- 239000006160 differential media Substances 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 230000000369 enteropathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 210000003608 fece Anatomy 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 238000001502 gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 238000009396 hybridization Methods 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 239000012678 infectious agent Substances 0.000 description 1
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 1
- 230000000968 intestinal effect Effects 0.000 description 1
- 230000009545 invasion Effects 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 239000012139 lysis buffer Substances 0.000 description 1
- 229910001629 magnesium chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 238000013048 microbiological method Methods 0.000 description 1
- 235000013336 milk Nutrition 0.000 description 1
- 239000008267 milk Substances 0.000 description 1
- 210000004080 milk Anatomy 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 239000003068 molecular probe Substances 0.000 description 1
- 239000002086 nanomaterial Substances 0.000 description 1
- 230000008569 process Effects 0.000 description 1
- 238000004451 qualitative analysis Methods 0.000 description 1
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 1
- 238000004445 quantitative analysis Methods 0.000 description 1
- 235000020185 raw untreated milk Nutrition 0.000 description 1
- 239000011535 reaction buffer Substances 0.000 description 1
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 230000004044 response Effects 0.000 description 1
- 238000011896 sensitive detection Methods 0.000 description 1
- 238000009589 serological test Methods 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 238000010998 test method Methods 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 239000001974 tryptic soy broth Substances 0.000 description 1
- 108010050327 trypticase-soy broth Proteins 0.000 description 1
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 1
- 210000003501 vero cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000001018 virulence Effects 0.000 description 1
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wizualnego wykrywania i diagnostyki mikroorganizmów.
Wynalazek dotyczy szczególnej metody wizualnego wykrywania i diagnostyki mikroorganizmów, przez detekcję sygnału pochodzącego z sond z zastosowaniem transiluminatora.
Znane są i opisane w literaturze przedmiotu liczne metody wykrywania i diagnostyki mikroorganizmów.
Grupę pierwszą tworzą metody mikrobiologiczne. Do tej kategorii należą metody oparte na hodowli bakterii i innych mikroorganizmów na specjalnych, różnicujących podłożach, wykorzystujących właściwości biochemiczne tych mikroorganizmów. Dla przykładu w przypadku bakterii enterokrwotocznych szczepów Escherichia coli (EHEC) stosuje się posiewy bakterii na różnicujących podłożach typu McConkey z sorbitolem (SMAC), wykorzystujących brak zdolności bakterii EHEC do fermentacji sorbitolu [Gould LH, Bopp C, Strockbine N et al. Recommendations for diagnosis of Shiga toxinproducing Escherichia coli infections by clinical laboratories. MMWR Recomm. Rep. 58(RR-12), 1-14 (2009), oraz Łoś J.M, Loś M, Węgrzyn G. Bacteriophages carrying Shiga toxin genes: genomic variations, detection and potential treatment of pathogenic bacteria. Future Microbiol. Aug; 6(8):909-24. do 10.2217/FMB.11.70. (2011)]. Za ich pomocą możliwe jest wykrycie sorbitolo - ujemnych bakterii EHEC.
Grupę drugą tworzą metody serologiczne/immunoenzymatyczne i w przypadku metod tego typu wyróżnia się zwłaszcza testy ELISA, oraz testy aglutynacji lateksowej przeznaczone do identyfikacji mikroorganizmów [Gould LH, Bopp C, Strockbine N et al: Recommendations for diagnosis of Shiga toxin-producing Escherichia coli infections by clinical laboratories. MMWR Recomm. Rep. 58(RR-12),
1-14 (2009)], oraz [Willford J, Mills K, Goodridge LD: Evaluation of three commercially available enzyme-linked immunosorbent assay kits for detection of Shiga toxin. J. Food Prot. 72(4), 741-747 (2009)].
Grupę trzecią tworzą metody genetyczne oparte na amplifikacji materiału genetycznego - PCR.
W tej grupie opisane zostały metody wykrywania mikroorganizmów wykorzystujące technikę PCR (ang. Polymerase Chain Reaction), w tym multipleks PCR [Riyaz-Ul-Hassan S, Syed S, Johri S, Verma V, Qazi GN: Application of a multiplex PCR assay for the detection of Shigella, Escherichia coli and Shiga toxin-producing E. coli in milk. J. Dairy Res. 76(2), 188-194 (2009)], oraz [Andrade GI, Coura FM, Santos EL, Ferreira MG, Galinari GC, Facury Filho EJ, de Carvalho AU, Lage AP, Heinemann MB. Identification of virulence factors by multiplex PCR in Escherichia coli isolated from calves in Minas Gerais, Brazil. Trop Anim Health Prod. Apr 4 (2012)], a także jej modyfikacje.
Metody te są niezwykle obiecujące, ze względu na wysoką czułość, gdyż pozwalają wykryć nawet bardzo małe ilości materiału genetycznego patogennego organizmu. Techniki tego typu wymagają jednak przeprowadzenia dodatkowego etapu detekcji produktów po zakończeniu reakcji PCR w celu uzyskania wyników. Najczęściej stosowanym sposobem detekcji jest elektroforeza w żelu agarowym.
Grupę czwartą tworzą metody genetyczne oparte na amplifikacji materiału genetycznego w czasie rzeczywistym - real-time PCR (rt-PCR). W tej grupie testów umożliwiających wykrywanie mikroorganizmów opisane zostały metody wykorzystujące technikę real-time PCR (rt-PCR) [Mull B, Hill VR: Recovery and detection of Escherichia coli O157:H7 in surface water, using ultrafiltration and real-time PCR Appl. Environ. Microbiol 75(11), 3593-3597 (2009)], oraz [Stefan A, Scaramagli S, Bergami R et al. Real-time PCR and enzyme-linked fluorescent assay methods for detecting Shigatoxin-producing Escherichia coli in mincemeat samples. Can. J. Microbiol 53(3), 337-342 (2007)].
Technika rt-PCR charakteryzuje się wysoką czułością i przynosi rozwiązanie większości problemów istniejących w konwencjonalnej metodzie PCR. Przede wszystkim jednak pozwala na bardzo szybką analizę ilości produktu w każdym cyklu reakcji PCR. Ponadto poprzez stosowanie wyznakowanych sond molekularnych znacznie wzrasta specyficzność reakcji w stosunku do klasycznej metody PCR. Zaletą metody jest również fakt, iż amplifikacja kwasów nukleinowych i detekcja produktu odbywa się w jednej zamkniętej probówce co zmniejsza ryzyko zanieczyszczenia badanej próby.
Grupę piątą tworzą metody wykorzystujące zjawisko hybrydyzacji kwasów nukleinowych. W tej kategorii opisane zostały metody wykorzystujące zautomatyzowane, nowatorskie techniki typu mikromaderze, lub też elektryczne biochipy wykrywające przez hybrydyzację komplementarne cząsteczki kwasów nukleinowych [Quinones B, Swimley MS, Taylor AW, Dawson ED. Identification of Escherichia coli O157 by using a novel colorimetric detection method with DNA microarrays. Foodborne Pathog Dis. Jun;8(6):705-11. (2011)], oraz [Los M, Los JM, Węgrzyn G: Rapid identification of Shiga toxinPL 220 906 B1 producing Escherichia coli (STEC) using electric biochips. Diagn. Mol. Pathol. 17(3), 179-184 (2008)], oraz [Los M, Los JM, Blohm L et al: Rapid detection of viruses using electrical biochips and anti-virion sera. Lett. Appl. Microbiol 40(6), 479-485 (2005)], jak również [Todd EC, Szabo RA, MacKenzie JM, Martin A, Rahn K, Gyles C, Gao A, Alves D, Yee AJ. Application of a DNA hybridization-hydrophobicgrid membrane filter method for detection and isolation of verotoxigenic Escherichia coli. Appl Environ Microbiol. Nov; 65(11): 4775-80 (1999)].
Grupę szóstą tworzą metody wykorzystujące nanocząsteczki. Metody z użyciem nanocząsteczek stanowią nowatorskie podejście. Na przykład opisano metody z wykorzystaniem nanocząsteczek złota, węglowych oraz glikopolidiacetylenowych [ Nagy JO, Zhang Y, Yi W et al.: Glycopolydiacetylene nanoparticles as a chromatic biosensor to detect Shiga-like toxin producing Escherichia coli O157:117. Bioorg. Med Chem. Lett. 18(2), 700-703 (2008)], oraz [Chien YY, Jan MD, A dak AK et al.: Globotriose-functionalized gold nanoparticles as multivalent probes for Shiga-like toxin. Chembiochem. 9(7), 1100-1109 (2008)], oraz [Noguera P, Posthuma-Trumpie GA, van Tuil M et al: Carbon nanoparticles in lateral flow methods to detect genes encoding virulence factors of Shiga toxin-producing Escherichia coli. Anal. Bioanal Chem. 399(2), 831-838 (2011)], jak również [Jyoti A, Pandey P, Singh SP, Jain SK, Shanker R: Colorimetric detection of nucleic acid signature of Shiga toxin producing Escherichia coli using gold nanoparticles. J. Nanosci. Nanotechnol. 10(7), 4154-4158 (2010)].
Odrębną grupę siódmą tworzą testy in vitro z wykorzystaniem hodowli komórkowych. W tej grupie opisano testy cytotoksyczność pozwalające na oznaczenie aktywności różnych substancji, w tym toksyn produkowanych przez mikroorganizmy [Konowalchuk J, Speirs JI, Stavric S. Vero response to a cytotoxin of Escherichia coli Infect Immun; 18: 775-9 (1977)], oraz [Petric M, Karmali MA, Arbus GS, Roscoe M, Louie S, Cheung R. Effects of Effects of cycloheximide and puromycin on cytotoxic activity of Escherichia coli verocytotoxin (Shiga-like toxin). J Clin Microbiol. Jul; 25(7):1265-8 (1987)].
Znane i opisane w literaturze metody wykrywania i diagnostyki mikroorganizmów, charakteryzują się następującymi wadami.
Diagnostyka mikrobiologiczna umożliwia identyfikację jedynie unikatowych, biochemicznych właściwości w większości typowych dla danego szczepu. W związku z tym metoda ta nie pozwala na wykrycie wszystkich odmian patogennych mikroorganizmów, szczególnie tych wykazujących cechy stosunkowo nietypowe. Wadą tego typu metod jest także ich niska czułość i długi czas oczekiwania na wyniki - ok. 24 h.
Poważnym problemem w przypadku wykrywania mikroorganizmów z wykorzystaniem metod serologicznych jest duża różnorodność serotypowa w obrębie poszczególnych ich grup. Większość dostępnych metod ukierunkowana jest na wykrywanie kilku lub kilkunastu najpopularniejszych grup serotypowych danego gatunku. Ponadto w przypadku testów ELISA wykrywających przeciwciała we krwi, wadą jest m.in. występowanie tzw. „serologicznego okienka” - czyli okresu od wtargnięcia czynnika zakaźnego do organizmu do momentu pojawienia się we krwi przeciwciał. To właśnie opóźnienie sprawia, że testy dają najbardziej rzetelne wyniki dopiero po około 6 tygodniach od zakażenia. Zbyt wcześnie wykonane badanie może w ogóle nie wykazać obecności patogenu, pomimo zakażenia organizmu (wyniki fałszywie ujemne). Duże znaczenie ma także częsta agregacja przeciwciał i tworzenie tzw. kompleksów immunologicznych, które nie są wykrywane tego typu testami.
Pozytywny wynik testu serologicznego nie w każdym przypadku wskazuje na aktywny proces chorobowy, ponieważ przeciwciała zwykle długo utrzymują się we krwi i możliwe jest wykrycie przeciwciał pochodzących z dawno już przebytej infekcji (wyniki fałszywie dodatnie). Pewien problem stanowią także reakcje krzyżowe z przeciwciałami powstającymi na skutek infekcji z innymi patogenami. W przypadku testów ELISA wykrywających patogenne antygeny w próbkach kału, podstawowym problem jest ich ograniczona czułość oraz specyficzność. Podobnie w przypadku testów aglutynacji lateksowej głównym czynnikiem ograniczającym jest ich czułość. Ponadto pojawia się problem w interpretacji wyników związany z analizą tzw. „zmętnienia”.
W przypadku metod genetycznych opartych na amplifikacji materiału genetycznego - PCR, głównym ograniczeniem jest czasochłonny etap detekcji produktu reakcji i jego ilości. Używa się do tego celu takich technik jak m.in. elektroforeza w żelu agarozowym, czy Southern Bloting, które umożliwiają analizę zarówno jakościową, jak i ilościową, jednakże często dostarczają problemów związanych z interpretacją wyników. Ponadto istnieje ryzyko zanieczyszczenia badanej próby podczas etapu detekcji, który wiąże się najczęściej z otwarciem probówki reakcyjnej i przeniesieniem jej zawartości.
PL 220 906 B1
W przypadku metod genetycznych opartych na amplifikacji materiału genetycznego w czasie rzeczywistym - real-time PCR (rt-PCR), głównym ograniczeniem tego typu metod jest bardzo wysoki koszt sprzętu. Ponadto, pomimo iż zaliczane są do metod szybkich, to ze względu na konieczność optymalizacji i standaryzacji procedury, faktyczny czas uzyskania wyniku jest o wiele dłuższy. Często także obsługa aparatu oraz interpretacja wyników wymaga zatrudnienia specjalnie przeszkolonych w tym zakresie pracowników.
W przypadku metod wykorzystujących zjawisko hybrydyzacji kwasów nukleinowych, istotnym mankamentem są ich wysokie koszty jednostkowe i znaczny stopień skomplikowania procedur, aby mogły być one powszechnie stosowane w laboratoriach diagnostycznych.
Znane metody wykorzystujące nanocząsteczki, nie są powszechnie stosowane, głównie ze względu na wysokie koszty nanomateriałów i ograniczony dostęp do tego typu metod.
W przypadku testów in vitro z wykorzystaniem hodowli komórkowych, do głównych ich wad zalicza się przede wszystkim wysoki koszt, czasochłonność ze względu na długie procedury hodowlane, częste zakażenia i problemy związane z utrzymaniem hodowli, a także ograniczone możliwości odnośnie ilości przeprowadzanych w tym samym czasie analiz. Ponadto stosowanie tego typu metod wymaga wydzielenia odrębnego laboratorium, i zakupu dodatkowych sprzętów by oddzielić tego typu badania od analiz mikrobiologicznych i ograniczyć ryzyko mikrobiologicznego zakażenia hodowli komórkowych. Procedury te są koniczne i wiążą się ze znacznymi nakładami finansowymi.
Wynalazek rozwiązuje zagadnienie z opracowania nowego sposobu wizualnego wykrywania i diagnostyki mikroorganizmów, stanowiącego rozwinięcie metody postępowania zaproponowanej we wcześniejszym zgłoszeniu patentowym nr P-396283 z dnia 09-09-2011 p.t. „Sposób wykrywania enterokrwotocznych Escherichia coli (EHEC), sonda do wykrywania enterokrwotocznych Escherichia coli, sekwencja do amplifikacji i zastosowanie sond” dokonanym na rzecz f-my 3G THERAPEUTICS Inc. Miami - USA.
Sposób wizualnego wykrywania i diagnostyki patogennych mikroorganizmów obejmuje dwa charakterystyczne etapy. W pierwszym etapie przygotowuje się i przeprowadza w probówce reakcję łańcuchowej polimerazy (PCR) z wykorzystaniem polimerazy DNA o aktywności 5' >3' egzonukleazy oraz znakowanej fluorescencyjnie sondy, zawierającej na jednym z końców cząsteczkę fluorescencji wzbudzaną promieniowaniem ultrafioletowym (UV), natomiast na drugim cząsteczkę wygaszającą fluorescencję. Sondę stanowi krótki fragment DNA (do 80 nukleotydów), komplementarny do DNA mikroorganizmu.
Zasada działania sposobu wizualnego wykrywania według wynalazku, polega na tym, że znajdujące się na końcach sondy cząsteczki: fluorescencji i wygaszająca, są względem siebie w bliskim kontakcie i nie dochodzi do emisji sygnału fluorescencyjnego. W sposobie według wynalazku, podczas reakcji łańcuchowej polimerazy, sonda wiąże się z komplementarną sekwencją na matrycy DNA mikroorganizmu i jest degradowana na etapie elongacji przez polimerazę DNA posiadającą aktywność 5'>3' egzonukleazową, w konsekwencji czego następuje uwolnienie i oddzielenie obydwu cząsteczek, dzięki czemu możliwa jest emisja sygnału fluorescencyjnego.
Istotne jest według wynalazku, że w drugim etapie dokonuje się charakterystycznej detekcji fluorescencyjnego sygnału pochodzącego z sondy bezpośrednio w probówce reakcyjnej, przy wykorzystaniu prostych urządzeń (typu transiluminator, lampa lub inne podobne) będących źródłem promieniowania UV. Detekcja sygnału polega na zaobserwowaniu gołym okiem pojawienia się zielonożółtego zabarwienia roztworu w probówce reakcyjnej.
Istotnym jest, że po zakończeniu reakcji, probówkę w której prowadzono reakcję, umieszcza się w obszarze emitowanego promieniowania ultrafioletowego, po czym światło UV wzbudza fluorescencję cząsteczki fluorescencji uwolnionej spod działania cząsteczki wygaszającej co pozwala na obserwację gołym okiem zielonożółtego świecenia roztworu w probówce. Zielonożółta fluorescencja jest widoczna tylko w przypadku gdy znakowana sonda ulegnie degradacji, a tym samym gdy do probówki wprowadzone zostanie DNA komplementarne do zaprojektowanej sondy. W przykładzie korzystano z promieniowania UV o długości fali 312 nm.
Rozwiązanie sposobu wizualnego wykrywania i diagnostyki patogennych mikroorganizmów według wynalazku, zalicza się do grupy metod genetycznych opartych na amplifikacji materiału genetycznego, jednakże cechuje się zupełnie nowym sposobem detekcji, co odróżnia je od dotychczas opisanych i stosowanych metod diagnostycznych. Jest to w pewnym charakterystycznym stopniu rozwiązanie pośrednie, między znanymi technikami PCR, a znanymi technikami określanymi jako real time-PCR (rt-PCR), jednakże łączącym zalety obydwu metod.
PL 220 906 B1
Rozwiązanie według wynalazku jest konkurencyjne w stosunku do znanych i stosowanych testów genetycznych ze względu na dużo niższy koszt sprzętu. Metoda pozwala na wizualną ocenę obecności mikroorganizmów za pomocą prostych urządzeń będących źródłem promieniowania UV typu lampy i transiluminatory i nie wymaga konieczności zakupu skomplikowanego i drogiego sprzętu, takiego jak np. aparaty do rt-PCR, czytniki płytek, czy też systemy do elektroforezy oraz do zakupu dokumentacji żeli typu Gel Doc w przypadku klasycznej metody PCR.
Również interpretacja uzyskanych wyników jest w przypadku sposobu według wynalazku dużo prostsza, gdyż polega jedynie na zaobserwowaniu charakterystycznego, żółtozielonego „świecenia” zawartości probówki, bez konieczności stosowania skomplikowanych technik detekcyjnych i analizowania obecności specyficznych i niespecyficznych prążków, w przypadku klasycznej metody PCR lub dość skomplikowanych wyników z aparatu do rt-PCR.
Rozwiązanie sposobu według wynalazku znacząco ogranicza problem tzw. niespecyficznych produktów, które stanowią duże utrudnienie w przypadku klasycznej reakcji PCR i pod tym względem jest podobne do techniki rt-PCR. Zastosowanie komplementarnej sondy stanowi dodatkowe zabezpieczenie specyficzności reakcji i nawet jeśli dojdzie do powstania produktów niespecyficznych to nie będą one dawały sygnału w postaci świecenia.
Przewagą metody według wynalazku w stosunku do klasycznej metody PCR jest także fakt, iż amplifikacja kwasów nukleinowych i detekcja produktu odbywa się w jednej, zamkniętej probówce. Podczas etapu detekcji nie ma konieczności otwierania probówki i przenoszenia jej zawartości, co zmniejsza ryzyko zanieczyszczenia badanej próby.
Zaletą wynalezionej metody jest również większa oszczędność czasu w porównaniu z klasycznymi testami genetycznymi. Brak konieczności wykonywania dodatkowych analiz w celu detekcji sygnału, oraz krótki czas trwania samej reakcji (poniżej 1 godziny w przypadku testów opisanych w znanym rozwiązaniu według zgłoszenia patentowego nr P - 396283) i podanych w poniższym przykładzie skraca czas uzyskania wyników.
Wynalazek jest szczegółowo opisany na przykładzie jego wykonania i zilustrowany na rysunku przedstawiającym analizę 19 szczepów EHEC na obecność genu kodującego toksynę Shiga 1 za pomocą reakcji PCR z sondą typu TaqMan (+) zawierającą na końcu 5' reporter fluorescencji FAM (6-karboksyfluoresceinę), a na końcu 3' cząsteczkę wygaszającą fluorescencję BHQ-1.
Ilustracja przykładowego wykonania wynalazku na rysunku ujawnia detekcję sygnału pochodzącego z sondy: tox1probe, komplementarnej do genu kodującego toksynę Shiga 1 za pomocą:
A. systemu do dokumentacji żeli (Gel Doc XR - Bio-Rad)
B. elektroforezy agarozowej i systemu do dokumentacji żeli ( Gel Doc XR - Bio-Rad)
C. transiluminatora UV przy 312 nm dł. fali.
D. oraz pomiar sygnału fluorescencji 485/535 nm za pomocą czytnika Perkin Elmer Multilabel Counter Victor3, Wallac 1420.
Opracowaną metodę postępowania według wynalazku sprawdzono na 19 przykładowych próbach, z których 17 otrzymano z Państwowego Zakładu Higieny w Polsce (PZH), natomiast dwie pochodziły z kolekcji własnej Katedry Biologii Molekularnej Uniwersytetu Gdańskiego. Próbki DNA otrzymane z PZH zostały wyizolowane przez PZH z werotoksycznych pałeczek E. coli izolowanych z kału od pacjentów w Polsce. Obecność werotoksyn oznaczona została przez PZH przy użyciu testu cytotoksyczności na linii komórkowej Vero, testu RPLA-VTEC (Oxoid) oraz metodą standardowych testów PCR.
W etapie I przeprowadzono przykładową izolację DNA na próbach otrzymanych z PZH które zostały wyizolowane przez za pomocą lizy z wykorzystaniem lizozymu i proteinazy-K, natomiast pozostałe próby z kolekcji własnej Katedry Biologii Molekularnej Uniwersytetu Gdańskiego izolowano za pomocą lizy przez gotowanie.
Bakterie hodowano przez noc w 5 ml pożywki LB w temperaturze około 37°C, a następnie wirowano przy 10 000 rpm, przez 10 min. Otrzymany osad zawieszono w 250 μΐ destylowanej wody, inkubowano przez 10 min w temp. 100°C i ponownie wirowano przy 10 000 rpm, przez 5 min. Supernatant rozcieńczono 10 razy wodą destylowaną i przechowywano w temp. -20°C. Do reakcji PCR dodano 2 μl rozcieńczonego DNA, co przekładało się na stężenia w zakresie 100-300 ng.
DNA izolowano z 1 ml świeżej kultury hodowanej na podłożu płynnym TBS (Tryptic Soy Broth). Po 4 godzinach inkubacji prowadzonej w temperaturze około 37°C z napowietrzaniem (300 rpm), otrzymaną w ten sposób kulturę odwirowano, a odwirowany osad bakteryjny zmieszano z 40 μl lizozymu o stężeniu 10 mg/ml i inkubowano przez 30 min w temp. około 37°C. Następnie do probówek
PL 220 906 B1 dodano, 160 μΐ buforu do lizy ( składającego się z 10 mM Tris-HCl, mającego pH 8.0, z 10 mM EDTA i z 1% Triton X-100) zawierającego 2 mg/ml proteinazy-K i inkubowano w temp. około 52°C przez przynajmniej 1 godzinę lub do czasu uzyskania przezroczystej zawiesiny. Następnie dodano 0.8 ml 10 mM Tris-HCl o pH 8.0 i probówki ogrzewano w 95°C przez 30 min. Tak przygotowane DNA rozcieńczono 10 razy wodą destylowaną i z tak przygotowanego roztworu 2 μΐ dodano do reakcji PCR.
W przykładowo zrealizowanym etapie drugim przeprowadzono reakcję PCR z użyciem sondy, przy zachowaniu następujących parametrów.
Składnik
DNA
10x Reaction buffer „incomplete” (Bioron) dNTPs mix (4mM każdy dNTP)
MgCl2 (Bioron)
Starter F: tox1F
Starter R: tox1R
Sonda: tox1 probe (rozc. ok. 20x) DFS-Taq DNA polimeraza (Bioron)
H2O
Końcowe stężenie lub ilość 250 ng 1x
160 μΜ (każdy) mM 1 pM 1 pM 150 nM
1.25 U do 25 pl
Tak przygotowana próba została poddana reakcji w termocyklerze według następującego programu:
95°C -2 min
95°C-15s 60°C - 60 s j 28 cykli
Wielkość otrzymanego w ten sposób produktu tox1 = 196 pz
Po zakończeniu reakcji, probówki w których prowadzono reakcję (0.2 ml objętości np. Nippon, w paskach z płaskim wieczkiem) wyjęto z termocyklera, krótko odwirowano i umieszczono w trans iluminatorze, wzbudzając fluorescencję zawartości probówki światłem UV o długości fali 312 nm (Vilber Lourmat). Charakterystyczna zielonożółta fluorescencja świadczy o obecności EHEC z genem toksyny Shiga 1.
Wyniki uzyskane na skutek wykonania powyżej opisanych czynności zostały sprawdzone na obecność produktu za pomocą elektroforezy agarozowej, oraz dokonując pomiaru fluorescencji 485 nm/535 nm przy użyciu czytnika płytek (Perkin Elmer Multilabel CounterVictor3).
Wykaz literatury do opisu patentowego
1. Gould LH, Bopp C, Strockbine N et al.: Recommendations jor diagnosis of Shiga toxinproducing Escherichia coli infections by clinical laboratories. MM WR Recomm. Rep.
58(RR-12), 1-14 (2009).
2. Blanco JE, Blanco M, Alonso MP et al.: Serotypes, virulence genes of Shiga toxinproducing Escherichia coli isolates from human patients. J. Clin. Microbiol 42(1), 311-319 (2004).
3. Chart H, Cheasty T, Rowe B. Serological identification of infection by verocytotoxinproducing Escherichia coli Lett Appl Microbiol. Nov; 23(5):322-4 (1996).
4. Toth I, Barrett TJ, Cohen ML, Rumschlag HS, Green JH, Wachsmuth IK. Enzyme-linked immunosorbent assai for products of the 60-megadalton plasmid of Escherichia coli serotype O157:H7. J Clin Microbiol May; 29(5): 1016-9 (1991).
5. Hajra TK, Bag PK, Das SC, Mukherjee S, Khan A, Ramamurthy T: Development of a simple latex agglutination assay for detection of Shiga toxin-producing Escherichia coli (STEC) by Rusing polyclonal antibody against STEC. Clin. Vaccine Immunol. 14(5), 600-604 (2007).
6. Willford J, Mills K, Goodridge LD: Evaluation of three commercially available enzyme-linked immunosorbent assay kits for detection of Shiga toxin. J. Food Prot. 72(4), 741-747 (2009).
PL 220 906 B1
7. Riyaz-Ul-Hassan S, Syed S, Johri S, Verma V, Qazi GN: Application of a multiplex PCR assay for the detection of Shigella, Escherichia coli and Shiga toxin-producing E. coli in milk. J. Dairy Res. 76(2), 188-194 (2009).
8. Fratamico PM, DebRoy C, Miyamoto T, Liu Y: PCR detection of enterohemorrhagic Escherichia coli O145 in food by targeting genes in the E. coli O145 O-antigen gene cluster and the shiga toxin 1 and shiga toxin 2 genes. Foodbome Pathog. Dis. 6(5), 605-611 (2009).
9. Rajkhowa S, Das R, Bora S, Rajkhowa C, Rahman H, Bujarbaruah KM: Detection of Shiga toxin-producing Escherichia coli and enteropathogenic Escherichia coli in faecal samples of healthy mithun (Bos frontalis) by multiplex polymerase chain reaction. Zoonoses Public Health. 57(6), 397-401 (2010).
10. Gómez-Duarte OG, Arzuza O, Urbina D et al.: Detection of Escherichia coli enteropathogens by multiplex polymerase chain reaction from children's diarrbeal stools in two Caribbean-Colombian cities. Foodbome Pathog. Dis. 72(2), 199-206 (2010).
11. DebRoy C, Roberts E, Davis M, Bumbaugh A: Multiplex polymerase chain reaction assay for detection of nonserotypable Shiga toxin producing Escherichia coli strains of serogroup O147. Foodborne Pathog. Dis. 7(11), 1407-1414 (2010).
12. Bonetta S, Borelli E, Bonetta S, Conio O, Palumbo F, Carraro E: Development of a PCR protocol for the detection of Escherichia coli O157:H7 and Salmonella spp. in surface water. Environ. Monit. Assess. 177(1-4), 493-503 (2011).
13. Park SH, Hanning I, Jarquin R et al.: Multiplex PCR assay for the detection and quantification of Campylobacter spp., Escherichia coli O157:H7, and Salmonella serotypes in water samples. FEMS Microbiol. Lett. 316(1), 7-15 (2011).
14. Andrade GI, Coura FM, Santos EL, Ferreira MG, Galinari GC, Facury Filho EJ, de Carvalho AU, Lage AP, Heinemann MB. Identification of virulence factors by multiplex PCR in Escherichia coli isolated from calves in Minas Gerais, Brazil. Trop Anim Health Prod. Apr 4 (2012).
15. Muller D, Greune L, Heusipp G, Karch H, Fruth A, Tschape H, Schmidt MA. Identification of unconventional intestinal pathogenic Escherichia coli isolates expressing intermediate virulence factor profiles by using a novel single-step multiplex PCR Appl. Environ Microbiol. May;7 3(10): 3380-90 (2007).
16. Kim JY, Kim SH, Kwon NH, Bae WK, Lim JY, Koo HC, Kim JM, Noh KM, Jung WK, Park KT, Park YH. Isolation and identification of Escherichia coli O157:H7 using different detection methods and molecular determination by multiplex PCR and RAPD. J Vet Sci. Mar; 6(1): 7-19 (2005).
17. Wang F, Jiang L, Ge B. Loop-mediated isothermal amplification assays for detecting shiga toxin-producing Escherichia coli in ground beef and human stools. J Clin Microbiol. Jan; 50(1):91-7 (2012).
18. Fach P, Perelle S, Grout J, Dilasser F. Comparison of different PCR tests for detecting Shiga toxin-producing Escherichia coli O157 and development of an ELISA-PCR assay for specific identification of the bacteria. J Microbiol Methods. Nov; 55(2):383-92 (2003).
19. [Weagant SD, Jagow JA, Jinneman KC, Omiecinski CJ, Kaysner CA, Hill WE. Development of digoxigenin-labeled PCR amplicon probes for use in the detection and identification of enteropathogenic Yersinia and Shiga toxin-producing Escherichia coli from foods. J Food Prot. May; 62(5):438-43 (1996).
20. Zhang W, Bielaszewska M, Pulz M et al: New immuno-PCR assay for detection of low concentrations of Shiga toxin 2 and its variants. J. Clin. Microbiol. 46(4), 1292-1297 (2008).
21. Kido C, Tsuruoka M. Measurement of the time course of DNA/RNA hybridization and RNA detection using fluorescence polarization analysis. Nucleic Acids Symp Ser.; (44):145-6 (2000).
22. Mull B, Hill VR: Recovery and detection of Escherichia coli O157:H7 in surface water, using ultrafiltration and real-time PCR. Appl. Environ. Microbiol. 75(11), 3593-3597 (2009).
23. Chassagne L, Pradel N, Robin F, Livrelli V, Bonnet R, Delmas J: Detection of stx1, stx2, and eae genes of enterohemorrhagic Escherichia coli using SYBR Green in a real-time polymerase chain reaction. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 64(1),98-101 (2009).
24. Grys TE, Sloan LM, Rosenblatt JE, Patel R: Rapid and sensitive detection of Shiga toxinproducing Escherichia coli from nonenriched stool specimens by real-time PCR in comparison to enzyme immunoassay and culture. J. Clin. Microbiol. 47(7), 2008-2012 (2009).
PL 220 906 B1
25. Imamovic L, Serra-Moreno R, Jofre J, Muniesa M: Quantification of Shiga toxin 2-encoding bacteriophages, by real-time PCR and correlation with phage infectivity. J. Appl. Microbiol.
108(3), 1105-1114 (2010).
26. Pavlovic M, Huber I, Skala H et al.: Development of a multiplex real-time polymerase chain reaction for timultaneous detection of enterohemorrhagic Escherichia coli and enteropathogenic Escherichia coli strains. Foodbome Pathog. Dis. 7(7), 801-808 (2010).
27. Kim IW, Kang MH, Kwon SH et al.: Rapid detection of vimlence stx2 gene of
Enterohemorrhagic Escherichia coli using two-step ultra-rapid real-time PCR. Biotechnol.
Lett. 32(5), 681-688 (2010).
28. Kouguchi Y, Teramoto M, Kuramoto M: Real-time nucleic acid sequence-based amplification (NASBA) using an adenine-induced quenching probe and an intercalaor dye. J. Appl.
Microbiol. 109(5),1724-1732 (2010).
29. Fratamico PM, Bagi LK, Cray WC et al: Detection by multiplex real-time polymerase chain reaction assays and isolation of Shiga toxin-producing Escherichia coli serogroups O26, O45, O103, O111, O121, and O145 in ground beef. Foodborne Pathog. Dis. 8(5), 601-607 (2011).
30. Madic J, Vingadassalon N, Peytavin de Garam C et al: Detection of Shiga toxin-produdng
Escherichia coli (STEC) O26.-H11, O103:H2, O111:H8, O145:H28 and O157:H7 in raw-milk cheeses by udng multiplex real-time PCR. Appl Environ. Microbiol. 77(6), 2035-2041 (2011).
31. Anklam KS, Kanankege KS, Gonzales TK, Kaspar CW, Dopfer D. Rapid and Reliable Detection of Shiga Toxin-Producing Escherichia coli by Real-Time Multiplex PCK J Food Prot. Apr; 75(4):643-50 (2012).
32. Stefan A, Scaramagli S, Bergami R et al.: Real-time PCR and enzyme-linked fluorescent assay methods for detecting Shiga-toxin-producing Escherichia coli in mincemeat samples.
Can. J. Microbiol. 53(3), 337-342 (2007)
33. Quinones B, Swimley MS, Taylor AW, Dawson ED. Identification of Escherichia coli O157 by udng a novel colorimetric detection method with DNA microarrays. Foodborne Pathog Dis. Jun; 8(6):705-11. (2011).
34. Los M, Los JM, Węgrzyn G: Rapid identification of Shiga toxin-producing Escherichia coli (STEC) using electric biochips. Diagn. Mol Pathol. 17(3), 179-184 (2008).
35. Los M, Los JM, Blohm L et al.: Rapid detection of viruses using electrical biochips and antivirion sera. Lett. Appl Microbiol. 40(6), 479-485 (2005).
36. Todd EC, Szabo RA, MacKenzie JM, Martin A, Rahn K, Gyles C, Gao A, Alves D, Yee AJ. Application of a DNA hybridization-hydrophobic-grid membrane filter method for detection and isolation of verotoxigenic Escherichia coli. Appl Environ Microbiol. Nov; 65(11):4775-80 (1999).
37. Nagy JO, Zhang Y, Yi W et al.: Glycopolydiacetylene nanoparticles as a chromatic biosensor to detect Shiga-like toxin producing Escherichia coli O157:H7. Bioorg. Med Chem. Lett. 18(2), 700-703 (2008).
38. Chien YY, Jan MD, Adak AK et al: Globotriose-functionalized gold nanoparticles as multivalent probes for Shiga-like toxin. Chembiochem. 9(7), 1100-1109 (2008).
39. Noguera P, Posthuma-Trumpie GA, van Tuil M et al: Carbon nanoparticles in lateral flow methods to detect genes encoding virulence factors of Shiga toxin-produdng Escherichia cod. Anal. Bioanal Chem. 399(2), 831-838 (2011).
40. Jyoti A, Pandey P, Singh SP, Jain SK, Shanket R: Colorimetric detection of nucleic acid signature of Shiga toxin produdng Escherichia coli using gold nanoparticles. J. Nanosci. Nanotechnol 10(7), 4154-4158 (2010).
41. Konowalchuk J, Speirs TI, Stavric S. Vero response to a cytotoxin of Escherichia coli. Infect
Immun; 18: 775-9 (1977).
42. Petrie M, Karmali MA, Arbus GS, Roscoe M, Louie S, Cheung R Effects of cycloheximide and puromycin on cytotoxic activity of Escherichia coli verocytotoxin (Shiga-like toxin). J Clin Microbiol. Jul; 25(7):1265-8 (1987).
43. Loś JM, Loś M, Węgrzyn G. Bacteriophages carrying Shiga toxin genes: genomic variations, detection and potential treatment of pathogenic bacteria. Future Microbiol. Aug; 6(8):909-24. doi: 10.2217/FMB.11.70. (2011).
Claims (1)
- Zastrzeżenie patentoweSposób wizualnego wykrywania i diagnostyki patogennych mikroorganizmów, znamienny tym, że w etapie pierwszym przygotowuje się i przeprowadza w probówce reakcję łańcuchowej polimerazy (PCR) z wykorzystaniem polimerazy DNA o aktywności 5' > 3' egzonukleazy przy użyciu znakowanej fluorescencyjnie sondy, zawierającej na jednym z końców cząsteczkę fluorescencji wzbudzaną promieniowaniem ultrafioletowym (UV), a na drugim końcu cząsteczkę wygaszającą fluorescencję, przy czym sondę stanowi krótki fragment DNA (korzystnie do 80 nukleotydów), komplementarny do DNA mikroorganizmu, po czym w etapie drugim dokonuje się detekcji fluorescencyjnego sygnału pochodzącego z sondy bezpośrednio w probówce reakcyjnej, przy wykorzystaniu zwłaszcza transiluminatora lub lampy będących źródłem promieniowania UV, zwłaszcza promieniowania UV o dł. fali 312 nm i prowadzi się obserwację gołym okiem zielonożółtego świecenia roztworu w probówce, które jest widoczne tylko w przypadku gdy znakowana sonda ulegnie degradacji, a tym samym gdy do probówki wprowadzone zostanie DNA komplementarne do zaprojektowanej sondy.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL400442A PL220906B1 (pl) | 2012-08-20 | 2012-08-20 | Sposób wizualnego wykrywania i diagnostyki mikroorganizmów |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL400442A PL220906B1 (pl) | 2012-08-20 | 2012-08-20 | Sposób wizualnego wykrywania i diagnostyki mikroorganizmów |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL400442A1 PL400442A1 (pl) | 2014-03-03 |
| PL220906B1 true PL220906B1 (pl) | 2016-01-29 |
Family
ID=50158419
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL400442A PL220906B1 (pl) | 2012-08-20 | 2012-08-20 | Sposób wizualnego wykrywania i diagnostyki mikroorganizmów |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL220906B1 (pl) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP3312294A1 (en) | 2016-10-18 | 2018-04-25 | Uniwersytet Gdanski | Looped uvex type probes, primers and a way of tick-transmitted pathogens' detection and use thereof in optimized pcr reaction in order to identify an amplified genetic material |
-
2012
- 2012-08-20 PL PL400442A patent/PL220906B1/pl unknown
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP3312294A1 (en) | 2016-10-18 | 2018-04-25 | Uniwersytet Gdanski | Looped uvex type probes, primers and a way of tick-transmitted pathogens' detection and use thereof in optimized pcr reaction in order to identify an amplified genetic material |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL400442A1 (pl) | 2014-03-03 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Lee et al. | A multiplex real-time PCR for differential detection and quantification of Salmonella spp., Salmonella enterica serovar Typhimurium and Enteritidis in meats | |
| Yang et al. | Magnetic nano-beads based separation combined with propidium monoazide treatment and multiplex PCR assay for simultaneous detection of viable Salmonella Typhimurium, Escherichia coli O157: H7 and Listeria monocytogenes in food products | |
| Maiwald et al. | Comparison of polymerase chain reaction and conventional culture for the detection of legionellas in hospital water samples | |
| Lin et al. | O serogroup specific real time PCR assays for the detection and identification of nine clinically relevant non-O157 STECs | |
| Zhou et al. | Multiple PCR assay based on the cigR gene for detection of Salmonella spp. and Salmonella Pullorum/Gallinarum identification | |
| Sebastião et al. | Validation of absolute quantitative real-time PCR for the diagnosis of Streptococcus agalactiae in fish | |
| CN107190063A (zh) | 一种等温快速扩增检测食品中致病菌的方法 | |
| Ranjbar et al. | Development of multiplex PCR for simultaneous detection of three pathogenic Shigella species | |
| Tzeling et al. | One-step, multiplex, dual-function oligonucleotide of loop-mediated isothermal amplification assay for the detection of pathogenic Burkholderia pseudomallei | |
| Almeida et al. | Rapid detection of urinary tract infections caused by Proteus spp. using PNA-FISH | |
| Teh et al. | One-step differential detection of Salmonella enterica serovar Typhi, serovar Paratyphi A and other Salmonella spp. by using a quadruplex real-time PCR assay | |
| Hadjinicolaou et al. | Use of molecular beacons and multi-allelic real-time PCR for detection of and discrimination between virulent Bacillus anthracis and other Bacillus isolates | |
| Gupta et al. | Single-step PCR for detection of Brucella melitensis from tissue and blood of goats | |
| CN103205494A (zh) | 一种检测副猪嗜血杆菌的lamp方法 | |
| Ranjbar et al. | Use of TaqMan® real-time PCR for rapid detection of Salmonella enterica serovar Typhi | |
| Milton et al. | Novel saltatory rolling circle amplification assay for rapid and visual detection of Campylobacter jejuni in chicken meat | |
| Paton et al. | Methods for detection of STEC in humans: an overview | |
| Yousef | Detection of bacterial pathogens in different matrices: current practices and challenges | |
| RU2435860C1 (ru) | ФЛУОРЕСЦЕНТНО-МЕЧЕНЫЙ ОЛИГОНУКЛЕОТИДНЫЙ ЗОНД ДЛЯ ИДЕНТИФИКАЦИИ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ САПА И МЕЛИОИДОЗА B.pseudomallei И B.mallei | |
| Nour et al. | Amplification of P1 and 16S rRNA genes by nested PCR for detection of Mycoplasma pneumoniae in paediatric patients | |
| RU2435853C1 (ru) | ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ Streptococcus agalactiae В БИОЛОГИЧЕСКОМ МАТЕРИАЛЕ | |
| Ali et al. | Development of an ultra rapid and simple multiplex polymerase chain reaction technique for detection of Salmonella typhi | |
| Afroj et al. | Simultaneous detection of multiple Salmonella serovars from milk and chicken meat by real-time PCR using unique genomic target regions | |
| Mapes et al. | Comparison of five real‐time PCR assays for detecting virulence genes in isolates of Escherichia coli from septicaemic neonatal foals | |
| US20150044671A1 (en) | Probes targeting the gene encoding the shiga toxin and use thereof for detection of enterohemorrhagic escherichia coli (ehec) |