PL220375B1 - Sposób wytwarzania polihydroksyalkanolanów (PHA) z metanu przez konsorcjum bakteryjne zasiedlające skały przywęglowe - Google Patents
Sposób wytwarzania polihydroksyalkanolanów (PHA) z metanu przez konsorcjum bakteryjne zasiedlające skały przywęgloweInfo
- Publication number
- PL220375B1 PL220375B1 PL401711A PL40171112A PL220375B1 PL 220375 B1 PL220375 B1 PL 220375B1 PL 401711 A PL401711 A PL 401711A PL 40171112 A PL40171112 A PL 40171112A PL 220375 B1 PL220375 B1 PL 220375B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- bacteria
- pha
- phb
- consortium
- methanol
- Prior art date
Links
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 title claims description 19
- 239000011435 rock Substances 0.000 title claims description 8
- 229920000903 polyhydroxyalkanoate Polymers 0.000 title description 32
- 208000037534 Progressive hemifacial atrophy Diseases 0.000 title description 22
- 238000012017 passive hemagglutination assay Methods 0.000 title description 22
- VNWKTOKETHGBQD-UHFFFAOYSA-N methane Chemical compound C VNWKTOKETHGBQD-UHFFFAOYSA-N 0.000 title description 16
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title description 7
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 21
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims description 10
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 9
- HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N Chloroform Chemical compound ClC(Cl)Cl HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 8
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 claims description 8
- 230000001450 methanotrophic effect Effects 0.000 claims description 7
- 239000012298 atmosphere Substances 0.000 claims description 6
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 238000009835 boiling Methods 0.000 claims description 3
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims description 3
- 238000000605 extraction Methods 0.000 claims description 2
- 239000006911 nms medium Substances 0.000 claims 2
- 230000005526 G1 to G0 transition Effects 0.000 claims 1
- 239000000975 dye Substances 0.000 claims 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims 1
- 239000012535 impurity Substances 0.000 claims 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 claims 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 claims 1
- 239000005014 poly(hydroxyalkanoate) Substances 0.000 description 26
- 229920000070 poly-3-hydroxybutyrate Polymers 0.000 description 19
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 10
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 5
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 5
- 239000003245 coal Substances 0.000 description 4
- 241000589351 Methylosinus trichosporium Species 0.000 description 3
- 239000000463 material Substances 0.000 description 3
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 3
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- REKYPYSUBKSCAT-UHFFFAOYSA-N 3-hydroxypentanoic acid Chemical compound CCC(O)CC(O)=O REKYPYSUBKSCAT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000193830 Bacillus <bacterium> Species 0.000 description 2
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 description 2
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 2
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 2
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 2
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 2
- 230000003834 intracellular effect Effects 0.000 description 2
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 2
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 2
- 239000000178 monomer Substances 0.000 description 2
- 239000003345 natural gas Substances 0.000 description 2
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 2
- WHBMMWSBFZVSSR-UHFFFAOYSA-N 3-hydroxybutyric acid Chemical compound CC(O)CC(O)=O WHBMMWSBFZVSSR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ALRHLSYJTWAHJZ-UHFFFAOYSA-M 3-hydroxypropionate Chemical compound OCCC([O-])=O ALRHLSYJTWAHJZ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 241000588986 Alcaligenes Species 0.000 description 1
- 241000589151 Azotobacter Species 0.000 description 1
- 241000681683 Azotobacter beijerinckii Species 0.000 description 1
- 241000589966 Methylocystis Species 0.000 description 1
- 241000589354 Methylosinus Species 0.000 description 1
- 229920001397 Poly-beta-hydroxybutyrate Polymers 0.000 description 1
- 229920000331 Polyhydroxybutyrate Polymers 0.000 description 1
- 241000192142 Proteobacteria Species 0.000 description 1
- 241000589516 Pseudomonas Species 0.000 description 1
- MTCFGRXMJLQNBG-UHFFFAOYSA-N Serine Natural products OCC(N)C(O)=O MTCFGRXMJLQNBG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000005708 Sodium hypochlorite Substances 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 1
- 238000013019 agitation Methods 0.000 description 1
- 230000003698 anagen phase Effects 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 229920000249 biocompatible polymer Polymers 0.000 description 1
- 229920002988 biodegradable polymer Polymers 0.000 description 1
- 239000004621 biodegradable polymer Substances 0.000 description 1
- 238000006065 biodegradation reaction Methods 0.000 description 1
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 1
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 1
- 229920001577 copolymer Polymers 0.000 description 1
- LDHQCZJRKDOVOX-NSCUHMNNSA-N crotonic acid Chemical compound C\C=C\C(O)=O LDHQCZJRKDOVOX-NSCUHMNNSA-N 0.000 description 1
- 238000000354 decomposition reaction Methods 0.000 description 1
- 230000007812 deficiency Effects 0.000 description 1
- 230000001336 diazotrophic effect Effects 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 230000029142 excretion Effects 0.000 description 1
- 239000003925 fat Substances 0.000 description 1
- 235000019197 fats Nutrition 0.000 description 1
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 1
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 1
- 239000003337 fertilizer Substances 0.000 description 1
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 1
- 229920000140 heteropolymer Polymers 0.000 description 1
- 229920001519 homopolymer Polymers 0.000 description 1
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001257 hydrogen Substances 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 238000009776 industrial production Methods 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 239000006166 lysate Substances 0.000 description 1
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 1
- 239000007003 mineral medium Substances 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000007524 organic acids Chemical class 0.000 description 1
- 235000005985 organic acids Nutrition 0.000 description 1
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 1
- 230000003204 osmotic effect Effects 0.000 description 1
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000004806 packaging method and process Methods 0.000 description 1
- 230000037361 pathway Effects 0.000 description 1
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 1
- 239000000575 pesticide Substances 0.000 description 1
- 229910052698 phosphorus Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000005015 poly(hydroxybutyrate) Substances 0.000 description 1
- 229920000728 polyester Polymers 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 230000029964 regulation of glucose metabolic process Effects 0.000 description 1
- 238000012552 review Methods 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 239000010802 sludge Substances 0.000 description 1
- SUKJFIGYRHOWBL-UHFFFAOYSA-N sodium hypochlorite Chemical compound [Na+].Cl[O-] SUKJFIGYRHOWBL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 1
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 1
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 description 1
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 1
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 1
- 238000013268 sustained release Methods 0.000 description 1
- 239000012730 sustained-release form Substances 0.000 description 1
- 229920001169 thermoplastic Polymers 0.000 description 1
- 239000004416 thermosoftening plastic Substances 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- 231100000563 toxic property Toxicity 0.000 description 1
- LDHQCZJRKDOVOX-UHFFFAOYSA-N trans-crotonic acid Natural products CC=CC(O)=O LDHQCZJRKDOVOX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania polihydroksyalkanolanów z metanu przez konsorcjum bakteryjne zasiedlające skały przywęglowe.
Polihydroksyalkanolany są syntetyzowane i akumulowane w komórkach bakterii i niektórych roślin (Verlinden R.A.J., Hill D.J., Kenward M.A., Williams C.D., Radecka I. (2007) Bacterial synthesis of biodegradable polyhydroxyalkanoates. Journal of Applied Microbiology 102(6); 437-1449) jako materiał zapasowy, stanowiący wewnętrzne źródło węgla i energii, umożliwiający im przetrwanie w niekorzystnych warunkach środowiska (Yilmaz M., Soran H., Yavuz B. (2005) Determination of poly-e-hydroxybutyrate (PHB) production by some Bacillus spp. World Journal of Microbiol Biotechnology 21(4): 565-566). Istnieją hipotezy mówiące o tym, że pełnią one także rolę regulatora wewnątrzkomórkowego potencjału oksydoredukcyjnego (Senior P. J., Dawes E. A. (1971) Poly-hydroxybutyrate biosynthesis and the regulation of glucose metabolism in Azotobacter beijerinckii. Journal of Biochemistry 125: 55-66). PHA syntetyzowane są komórkach bakteryjnych, szczególnie intensywnie w warunkach stresu, wywołanego niedostatkiem dostępnego N, P lub O, przy jednoczesnym braku ograniczenia ze strony substratu węglowego. Potwierdzono, iż przy zachowaniu tych warunków PHA mogą stanowić nawet 90% suchej masy komórek bakterii i do 40% masy komórek roślinnych (Verlinden R.A.J., Hill D.J., Kenward M.A., Williams C.D., Radecka I. (2007) Bacterial synthesis of biodegradable polyhydroxyalkanoates. Journal of Applied Microbiology 102(6): 437-1449).
Znanych jest szereg PHA syntetyzowanych przez mikroorganizmy. Tworzą one zarówno homojak i hetero polimery o długości od 600 do 35 000 cząsteczek, wśród których najczęściej występującym i o największym znaczeniu przemysłowym jest homopolimer kwasu hydroksylomasłowego (z ang. polyhydroksybutyric acid - PHB), charakteryzujący się wysoce krystaliczną strukturą (do 80%) i stosunkowo niską temperaturą wrzenia, wynoszącą 179°C (Hrabak O. (1992) Industrial production of Poly-β-hydroxybutyrate. FEMS Microbial Reviews, 103: 251-256). Strukturę i przykłady występujących w PHA monomerów przedstawiono na rys. 1.
R-wodór poli(3-hydroksypropionian)
R-metyl poli(3-hydroksymaślan)
R-etyl poli(3-hydroksywalerian)
R-pentyl poli(3-hydroksyoctan)
Rys. 1. Struktura wybranych monomerów PHA, występujących w komórkach bakteryjnych (za Lee S. Y., 1996, Bacterial Polyhydroxyalkanoates. Biotechnology and Bioengineering 49: 1-14).
PHA są nierozpuszczalne w wodzie a zatem gromadzone wewnątrz komórek w postaci zwartych ziaren. Korzyścią wynikającą z gromadzenia tych polimerów jest fakt, iż w tej formie nie wpływają na wewnątrzkomórkowy potencjał osmotyczny. Zakumulowane PHA są zabezpieczone przed wydaleniem z komórki, ich utrzymanie nie wymaga wysokich nakładów energii a jednocześnie stanowią łatwo dostępne źródło węgla. Dlatego też akumulacja PHA jest powszechnie występującą strategią przetrwania, wykorzystywaną m.in. przez Alcaligenes spp.. Bacillus spp., Azotobacter spp., Pseudomonas spp. i in. (Verlinden R.A.J., Hill D.J., Kenward M.A., Williams C.D., Radecka I. (2007) Bacterial synthesis of biodegradable polyhydroxyalkanoates. Journal of Applied Microbiology 102(6): 437-1449).
Polihydroksyalkanolany, a szczególnie polihydroksymaślan są polimerami w pełni biokompatybilnymi i biodegradowalnymi, nie wykazującymi właściwości toksycznych ani nie ulegającymi rozkładowi do związków szkodliwych (Chen G-Q., Wu Q. (2005) The application of polyhydroxyalkanoates as tissue engineering materials. Biomaterials 26: 6565-6578). Z tego względu od lat prowadzone są badania nad ich zastosowaniem w medycynie np. do produkcji narzędzi czy też tymczasowych protez, wykorzystywanych w chirurgii (rozpuszczalnych nici, połączeń naczyń krwionośnych i kości) (Chen G-Q., Wu Q. (2005) The application of polyhydroxyalkanoates as tissue engineering materials. Biomaterials 26: 6565-6578), czy też systemów służących do długoterminowego i ciągłego dawkowania leków.
Postulowane jest także wykorzystanie PHA w rolnictwie (do systemów spowolnionego uwalniania nawozów i pestycydów). Doskonałe właściwości termoplastyczne powodują, że PHA mogą być wykorzystywane do produkcji opakowań, jako domieszka do tradycyjnych (petrochemicznych) polimePL 220 375 B1 rów w celu przyspieszenia ich rozkładu w środowisku (Bonartsev A. P., Myshkina V. L. Nikolaeva D. A., Purina E. K., Makhina T. A, Livshits V. A., Boskhomdzhiev A. P., Ivanov E. A., lordanskii A. L., Bonartseva G. A. (2007) Biosynthesis, biodegradation, and application of poly(3-hydroxybutyrate) and its copolymers - natural polyesters produced by diazotrophic bacteria. Communicating Current Research and Educational Topics and Trends in Applied Microbiology, Mendez-Vilas A., (Ed.),
295-307).
Produkcja PHA w oparciu o mikroorganizmy zazwyczaj opiera się na dwuetapowej fermentacji, której pierwszy etap prowadzony jest w warunkach zbilansowanego podłoża w celu wytworzenia jak największej ilości biomasy. W drugim etapie, podczas którego zachodzi synteza PHB, bakterie hodowane są na pożywce charakteryzującej się najczęściej ograniczoną dostępnością N (Verlinden i wsp., 2007). Powszechne zastosowanie PHA blokowane jest wysoką ceną tej substancji. Wysoki koszt procesu produkcji PHA wynika z charakteru dostarczanego mikroorganizmom źródła C, które stanowią najczęściej cukry, tłuszcze lub kwasy organiczne (Verlinden i wsp., 2007). Korzystną alternatywę w tym względzie mogą stanowić bakterie metanotroficzne, które zarówno do budowy biomasy jak i syntezy PHB wykorzystują CH4.
Zdolność do syntezy PHA, a szczególności PHB rozpowszechniona jest szczególnie wśród bakterii metanotroficznych typu II (Methylosinus spp. Methylocystis spp.), wykorzystujących do asymilacji C szlak serynowy. Znane są doniesienia na temat biosyntezy PHA przez czyste kultury bakterii metanotroficznych (Hang i wsp., 2008 Methylosinus trichosporium IMV3011; Xin J., Zhang Y., Dong J., Song H., Xia C. (2011) An experimental study on molecular weight of poly-3-hydroxybutyrate (PHB) accumulated in Methylosinus trichosporium IMV 3011. African Journal of Biotechnology 10 (36): 7078-7087) czy też konsorcjum wyizolowane z osadów aktywnych (Pieja A.J., Rostkowski K.H., Criddle C.S. (2011) Distribution and selection of poly-3-hydroxybutyrate production capacity in methanotrophic proteobacteria. Microbial Ecology 62(3):564-73).
Nieoczekiwanie okazało się, że możliwa jest produkcja PHA z metanu przy udziale konsorcjum bakterii matanotroficznych występujących w skałach przywęglowych.
Istota sposobu według wynalazku polega na tym, że skałę przywęglową najpierw rozdrabnia się do 0 < 2 i poddaje preinkubacji w temperaturze od 10 do 30°C przy wilgotności wynoszącej 25-200% całkowitej pojemności wodnej, w atmosferze zawierającej 1-50% CH4 v/v. Następnie skałą inokuluje się pożywkę NMS (Whittenbury R, Phillips K, Wilkinson J. Enrichment isolation and some properties of methane - utilizing bacteria. Journal of General Microbiology 1970; 61:205-218), zawierającą od 0,1 3 do 1 g/dm N-NO3 i inkubuje w temperaturze od 20 do 30°C, w atmosferze zawierającej 1-50% CH4 v/v, stale mieszając aż do osiągnięcia przez hodowlę stacjonarnej fazy wzrostu. Następnie bakterie oddziela się od podłoża i izoluje PHA metodą opisaną przez Zhang i wsp. (Zhang Y.X., Xin J.Y., Chen L.L., Song H., Xia C.G. (2008). Biosynthesis of poly-3-hydroxybutyrate with a high molecular weight by methanotroph from methane and methanol. Journal of Natural Gas Chemistry 17:103-109).
Większość metod izolacji PHA, w tym te stosowane wobec bakterii metanotroficznych bazuje na dwu strategiach. Pierwsza zakłada trawienie komórek przy pomocy surfaktantów i wysoce reaktywnych substancji jak np. podchloryn sodu, co prowadzi do uwolnienia niepodlegających rozkładowi w tych warunkach ziaren PHA. Druga strategia zakłada ekstrakcję PHA przy pomocy organicznych rozpuszczalników np. chloroformu. Zaletą tej metody jest wysoka czystość uzyskiwanej substancji natomiast wadą wysoki koszt środowiskowy, wynikający z dużej ilości i szkodliwości generowanych odpadów. Metodę tę stosowano z powodzeniem do odzyskiwania PHA syntetyzowanego przez Methylosinus trichosporium IMV3011 (Zhang Y.X., Xin J.Y., Chen L.L., Song H., Xia C.G. (2008) Biosynthesis of poly-3-hydroxybutyrate with a high molecular weight by methanotroph from methane and methanol. Journal of Natural Gas Chemistry 17:103-109).
P r z y k ł a d I.
Skałę przywęglową, rozdrobnioną do 0 < 2 mm, poddano preinkubacji w temperaturze 30°C, przy pełnej pojemności wodnej, w powietrzu zawierającym 10% v/v CH4 w. Po stwierdzeniu ubytku CH4 w atmosferze inkubacji, świadczącym o namnożeniu się bakterii metanotroficznych preinkubowaną skałą inokulowano 20 ml pożywki mineralnej NMS o składzie według Whittenbury i wsp. (1970), zmo-3 dyfikowanej poprzez zmniejszenie stężenia NO3- do 0,1 g/dm3. Namnażanie bakterii prowadzono w temperaturze 30°C, w atmosferze zawierającej 10% v/v CH4, przy 200 obr/min przez 6 dni. Następnie hodowlę odwirowano przez 10 minut przy 20 000 x g. Izolację PHB prowadzono metodą zaproponowaną przez Zhang i wsp. (2008). Uzyskany po wirowaniu osad komórek zawieszono w 10 ml 80% roztworu metanolu w wodzie i inkubowano przez 1,5 godz. w temp. 50°C. Po upływie tego czasu, lizaty
PL 220 375 B1 zawierające zdezintegrowane komórki oraz granule PHB odwirowano przy 20 000 x g przez 10 min. Ekstrakcję PHB z osadu prowadzono z wykorzystaniem 2 ml wrzącego chloroformu (temp. 70°C) przez 90 min. Rozpuszczony w chloroformie PHB filtrowano a następnie wytrącano z roztworu poprzez dodanie metanolu w proporcji objętościowej 1CH3Cl:5CH3OH. W celu uzyskania pełnej precypitacji próbki inkubowano przez 20 min. w temp. pokojowej a następnie wirowano przez 30 minut przy 20 000 x g. Po odwirowaniu PHB płukano dwukrotnie metanolem a następnie suszono w temp. 60°C.
Oznaczenie ilości uzyskanego PHB prowadzono spektrofotometrycznie, przy 235 nm, po uprzednim utlenieniu PHB do kwasu krotonowego przy pomocy stężonego H2SO4, metodą opisaną wcześniej przez Law i Slepecky. (Law J. Slepecky, R. A. (1961) Assay of poly-β-hydroxybutyric acid. Journal of Bacteriology 82: 52-55.) (rys. 2).
P r z y k ł a d II.
3
Jak wyżej, z tą różnicą, że hodowle bakterii prowadzone były na pożywce zawierającej 0,5 g/dm3 NO3- (rys. 2).
P r z y k ł a d III.
[140] Jak wyżej, z tą różnicą, że hodowle bakterii prowadzone były na pożywce zawierającej 1 g/dm3 NO3- (rys. 2).
Claims (1)
- Sposób wytwarzania PHA przy udziale konsorcjum bakterii metanotroficznych namnażanych na pożywce NMS, znamienny tym, że aktywną metanotroficznie skalę przywęglową rozdrobnioną do 0 < 2 mm poddaje się preinkubacji w temperaturze od 10 do 30°C, korzystnie 30°C, przy wilgotności wynoszącej25-200% pełnej pojemności wodnej w atmosferze zawierającej 1-50% CH4 v/v, następnie po namnożeniu 3 się bakterii metanotroficznych skałą inokuluje się ww. pożywkę NMS zawierającą od 0,1 do 1 g/dm N-NO3 i prowadzi hodowlę bakterii w temperaturze od 20 do 30°C w atmosferze zawierającej 1-50% CH4 v/v stale mieszając do osiągnięcia stacjonarnej fazy wzrostu, następnie wyhodowane bakterie oddziela się od podłoża i izoluje PHA dwuetapowo, w pierwszym etapie z komórek bakterii usuwa się lipidy i barwniki poprzez ekstrakcję 80% metanolem przez 1,5 godziny w temperaturze 50°C, a następnie PHB zawarty w masie bakteryjnej ekstrahuje się przy pomocy wrzącego chloroformu przez 1,5 godziny w temperaturze 70°C, po czym po odfiltrowaniu zanieczyszczeń PHB wytrąca się przy pomocy metanolu a następnie separuje i suszy w 60°C.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL401711A PL220375B1 (pl) | 2012-11-22 | 2012-11-22 | Sposób wytwarzania polihydroksyalkanolanów (PHA) z metanu przez konsorcjum bakteryjne zasiedlające skały przywęglowe |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL401711A PL220375B1 (pl) | 2012-11-22 | 2012-11-22 | Sposób wytwarzania polihydroksyalkanolanów (PHA) z metanu przez konsorcjum bakteryjne zasiedlające skały przywęglowe |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL401711A1 PL401711A1 (pl) | 2014-05-26 |
| PL220375B1 true PL220375B1 (pl) | 2015-10-30 |
Family
ID=50771868
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL401711A PL220375B1 (pl) | 2012-11-22 | 2012-11-22 | Sposób wytwarzania polihydroksyalkanolanów (PHA) z metanu przez konsorcjum bakteryjne zasiedlające skały przywęglowe |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL220375B1 (pl) |
-
2012
- 2012-11-22 PL PL401711A patent/PL220375B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL401711A1 (pl) | 2014-05-26 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Alsafadi et al. | Utilizing the crop waste of date palm fruit to biosynthesize polyhydroxyalkanoate bioplastics with favorable properties | |
| Pieja et al. | Distribution and selection of poly-3-hydroxybutyrate production capacity in methanotrophic proteobacteria | |
| Salgaonkar et al. | Biosynthesis of poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) by Halogeometricum borinquense strain E3 | |
| Yamaguchi et al. | Production of poly (3-hydroyxybutylate) by a novel alginolytic bacterium Hydrogenophaga sp. strain UMI-18 using alginate as a sole carbon source | |
| Inoue et al. | Polyhydroxyalkanoate production potential of heterotrophic bacteria in activated sludge | |
| Ghoddosi et al. | Effect of carbon sources for PHB production in bubble column bioreactor: Emphasis on improvement of methane uptake | |
| Mandic et al. | Biodegradation of poly (ε-caprolactone)(PCL) and medium chain length polyhydroxyalkanoate (mcl-PHA) using whole cells and cell free protein preparations of Pseudomonas and Streptomyces strains grown on waste cooking oil | |
| Jung et al. | Spontaneous liberation of intracellular polyhydroxybutyrate granules in Escherichia coli | |
| Ng et al. | Identification of a new polyhydroxyalkanoate (PHA) producer Aquitalea sp. USM4 (JCM 19919) and characterization of its PHA synthase | |
| Di et al. | Biodegradation of polyhydroxybutyrate by Pseudomonas sp. DSDY0501 and purification and characterization of polyhydroxybutyrate depolymerase | |
| Esposito et al. | Enhanced production of biobased, biodegradable, Poly (3-hydroxybutyrate) using an unexplored marine bacterium Pseudohalocynthiibacter aestuariivivens, isolated from highly polluted coastal environment | |
| Tran et al. | An efficient and eco-friendly approach for the sustainable recovery and properties characterization of polyhydroxyalkanoates produced by methanotrophs | |
| Van Thuoc et al. | Genome mining reveals the biosynthetic pathways of polyhydroxyalkanoate and ectoines of the halophilic strain Salinivibrio proteolyticus M318 isolated from fermented shrimp paste | |
| Fang et al. | A novel strategy for waste activated sludge treatment: Recovery of structural extracellular polymeric substances and fermentative production of volatile fatty acids | |
| Jeyaseelan et al. | Production of polyhydroxyalkanoate (PHA) using hydrolyzed grass and Syzygium cumini seed as low cost substrates | |
| JP6274494B2 (ja) | 微生物によるポリヒドロキシアルカン酸の生産方法 | |
| Chang et al. | Characterization of Ralstonia insidiosa C1 isolated from Alpine regions: Capability in polyhydroxyalkanoates degradation and production | |
| Pu et al. | Metabolic engineering of Salinivibrio sp. TGB10 for PHBV biosynthesis with a high 3-hydroxyvalerate fraction from starch and propionate | |
| Jeon et al. | Bioplastic (poly-3-hydroxybutyrate)-producing Massilia endophytica sp. nov., isolated from Cannabis sativa L.‘Cheungsam’ | |
| Amirul et al. | Synthesis of biodegradable polyesters by Gram negative bacterium isolated from Malaysian environment | |
| Tay et al. | Polyhydroxyalkanoate (PHA) accumulating bacteria from the gut of higher termite Macrotermes carbonarius (Blattodea: Termitidae) | |
| Koller et al. | Physiological, kinetic, and process engineering aspects of polyhydroxyalkanoate biosynthesis by extremophiles | |
| Das et al. | Microbial and natural macromolecules: synthesis and applications | |
| Chandrika et al. | Bioremediation of coffee husk through polyhydroxyalkanoates (PHA) production for a greener environment | |
| Xu et al. | Extraction and characterization of PHB from Acidiphilium cryptum DX1-1 |