PL217996B1 - Nowa fosfolipidowa pochodna betuliny i sposób jej otrzymywania - Google Patents

Nowa fosfolipidowa pochodna betuliny i sposób jej otrzymywania

Info

Publication number
PL217996B1
PL217996B1 PL393255A PL39325510A PL217996B1 PL 217996 B1 PL217996 B1 PL 217996B1 PL 393255 A PL393255 A PL 393255A PL 39325510 A PL39325510 A PL 39325510A PL 217996 B1 PL217996 B1 PL 217996B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
betulin
glycero
dioleoyl
derivative
preparation
Prior art date
Application number
PL393255A
Other languages
English (en)
Other versions
PL393255A1 (pl
Inventor
Barbara Tubek
Paweł Mituła
Czesław Wawrzeńczyk
Original Assignee
Univ Przyrodniczy We Wrocławiu
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Przyrodniczy We Wrocławiu filed Critical Univ Przyrodniczy We Wrocławiu
Priority to PL393255A priority Critical patent/PL217996B1/pl
Publication of PL393255A1 publication Critical patent/PL393255A1/pl
Publication of PL217996B1 publication Critical patent/PL217996B1/pl

Links

Landscapes

  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest nowa fosfolipidowa pochodna betuliny, o wzorze przedstawionym na rysunku, oraz sposób jej otrzymywania.
Związek ten może znaleźć zastosowanie w przemyśle farmaceutycznym.
Substratem do otrzymania nowej pochodnej jest betulina (alkohol triterpenowy, pentacykliczny, typu lupanu). Związek ten posiada liczne, udokumentowane aktywności biologiczne, między innymi: działanie przeciwalergiczne, przeciwzapalne (C.P. Reyes i inni, Bioorg. Med. Chem. 2006, 14, s. 1573), antybakteryjne, przeciwgrzybiczne (B. Barros Cota i inni, Fitoterapia, 2003, 74, s. 729). Pochodne karboksylowe betuliny, kwas betulinowy i kwas betulonowy, wykazują wysoką aktywność przeciwnowotworową wobec komórek czerniaka na drodze apoptozy (E. Pisha i inni, Nat. Med. 1995, 1, s. 1046). Dogodnym źródłem otrzymywania betuliny jest zewnętrzna warstwa kory brzozy, gdzie zawartość tego alkoholu sięga nawet 35% (C. Eckerman i inni, Paperi ja Puu, 1985, 67, s. 100).
Drugim substratem do otrzymania nowego estru jest kwas L-1,2-dioileoilo-sn-glicero-3-fosfatydowy, uzyskany z odpowiedniej fosfatydylocholiny. Wśród licznych funkcji kwasu fosfatydowego wymienia się regulację aktywności kinaz białkowych i lipidowych, dostarczanie 1,2-diacylogliceroli i kwasu lizofosfatydowego (M. Szumiło i inni, Postępy Hig. Med. Dośw., 2006, 60, s. 421), uczestnictwo w procesach jak: egzocytoza, endocytoza, różnicowanie się komórek, apoptoza, udział w powstawanie pęcherzyków i transporcie aparatu Golgiego (C. Riebeling i inni, Bioch. Bioph. Acta, 2009, 1791, s. 876).
Dotychczas brak jest doniesień literaturowych na temat otrzymywania nowej fosfolipidowej pochodnej betuliny.
Istotą wynalazku jest nowa fosfolipidowa pochodna betuliny (28-O-(L-1,2-dioleoilo-sn-glicero-3-fosfatydylo)-betulina), o wzorze przedstawionym na rysunku.
Sposób otrzymywania nowej fosfolipidowej pochodnej betuliny (28-O-(L-1,2-dioleoilo-sn-glicero-3-fosfatydylo)-betuliny), o wzorze przedstawionym na rysunku, polega na tym, że kwas L-1,2-dioleoilosn-glicero-3-fosfatydowy poddaje się estryfikacji z betulina, z udziałem czynnika sprzęgającego, w obecności 4-di-metyloamino-pirydyny.
Korzystnie jest, gdy czynnikiem sprzęgającym jest chlorek kwasu p-tolueno-sulfonowego.
Nowy związek 28-O-(L-1,2-dioleoilo-sn-glicero-3-fosfatydylo)-betulina, jest donorem aktywnej biologicznie betuliny oraz odpowiedniego kwasu fosfatydowego z wbudowanym w pozycjach sn-1 i sn2 kwasem oleinowym. Związek ten charakteryzuje się zwiększoną polarnością w stosunku do wyjściowej betuliny. Dodatkowo, obecność fragmentu fosfolipidowego (kwasu fosfatydowego) zwiększa jego powinowactwo do błon biologicznych i może ułatwić transport tej cząsteczki przez błony białkowo-lipidowe w komórkach zwierzęcych. Obecność kwasu nienasyconego (kwasu oleinowego) w pozycjach sn-1 i sn-2 we fragmencie fosfolipidowym związku, korzystnie wpłynie na procesy metaboliczne w komórkach zwierzęcych.
Sposób według wynalazku przedstawiony jest dokładniej w przykładzie wykonania.
3
Przykład 1. W 20 cm3 chlorku metylenu zawiesza się sn-glicero-3-fosfatydy-locholinę (1 g, 3,89 mmol), kwas oleinowy (4,4 g, 15,56 mmol), N,N'-dicyklo-heksylokarbodiimid (3,2 g, 15,56 mmol) oraz 4-dimetyloamino-pirydynę (1,89 g, 15,56 mmol) i miesza się w temperaturze pokojowej, w zaciemnieniu, w atmosferze azotu przez 24 godziny. Następnie mieszaninę przesącza się przez lejek Schotta, przemywa CH2CI2, po czym przesącz odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem. Surowy produkt oczyszcza się za pomocą chromatografii kolumnowej na żelu krzemionkowym (eluent - chloroform:metanol:woda 65:25:4). Otrzymuje się 2,84 g (wydajność 93%) L-1,2-dioleoilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholiny. Czystość związku (97%) określono za pomocą HPLC.
Dane spektroskopowe otrzymanego produktu są następujące:
1H NMR (300 MHz, CDCI3OD3OD 3:1) δ: 0,67-0,71 (m, 6H, -CH3); 1,08-1,12 (m, 44H, CH2); 1,41 (m, 4H, CH2-2); 1,82-1,87 (m, 8H, CH2CH=); 2,09-2,16 (m, 4H, C(O)CH2); 3,03 (s, 9H, -N(CHs)3); 3,40-3,43 (m, 2H, CH2CI±N); 3,80 (m, 2H, CH2-3); 3,96 (dd, J= 12 i 7,2 Hz, 1H, jeden z CH2-1); 4,06 (m, 2H, OCH2CH2N); 4,22 (dd, J= 12 i 3 Hz, 1H, jeden z CH2-1); 5,04 (m, 1H, CH-2); 5,105,23 (m, 4H, -CH=CH-).
31P NMR(121 MHz CDCl3:CD3OD 3:1) δ: -0,081.
IR (film, cm-1): 3416 (s,b), 3006 (s), 2923 (s), 2854 (s), 1733 (s), 1648 (m), 1463 (m), 1227 (m), 1087 (m), 826 (m), 757 (m).
PL 217 996 B1
Z uzyskanej L-1,2-dioleoilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholiny otrzymuje się na drodze hydrolizy 3 enzymatycznej kwas fosfatydowy. W 10 cm3 buforu Tris-HCl (pH 8,0; 0,05M) zawierającego 1,28 mmol CaCl2;, zawiesza się 755 mg (0,962 mmol) L-1,2-dioleoilo-sn-glicero-3-fosfatydylocholiny. Na3 stępnie dodaje się 100 jednostek PLD ze Streptomyces chromofuscus oraz 12 cm3 heksanu. Reakcję prowadzi się w temperaturze 310K, w zaciemnieniu, w atmosferze azotu przez 48 godzin, w warunkach intensywnego mieszania. Po zakończeniu reakcji (TLC, HPLC) do mieszaniny reakcyjnej dodaje się 6,4 cm EDTA (0,2M), a następnie zakwasza do pH 1 za pomocą 2M HCl. Po rozdzieleniu warstw frakcję wodną ekstrahuje się trzykrotnie mieszaniną chloroform:metanol, w stosunku objętościowym 2:1 3 (3 x 25 cm3). Połączone frakcje organiczne osusza się za pomocą MgSO4 i po odsączeniu środka suszącego rozpuszczalnik odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem. Surowy produkt oczyszcza się za pomocą chromatografii kolumnowej na żelu krzemionkowym (eluent - chloroform:metanol:woda, w gradiencie, w stosunku objętościowym, od 65:25:0 do 65:25:4). Otrzymuje się 437 mg (wydajność 65%) kwasu L-1,2-dioleoilo-sn-glicero-3-fosfatydowego.
Czystość związku (98%) określono za pomocą HPLC. Dane spektroskopowe otrzymanego produktu są następujące:
1H NMR (300 MHz, CDCI3OD3OD 3:1) δ: 0,68-0,73 (m, 6H, -CH3); 1,09-1,13 (m, 44H, CH2); 1,44 (m, 4H, CH2-2); 1,76-1,91 (m, 8H, CH2 CH=); 2,16 (m, 4H, C(O)CH2); 3,91 (m, 2H, CH2-3); 4,01 (dd, J= 12 i 6,5 Hz, 1H, jeden z CH2-1); 4,20 (dd, J= 12 i 3,6 Hz, 1H, jeden z CH2-1); 5,07 (m, 1H, CH-2); 5,12-5,22 (m, 4H, -CH=CH-).
31P NMR (121 MHz CDCl3:CD3OD 3:1) : δ 0,095.
IR (film, cm-1): 3370 (s,b) 2926 (s), 2855 (s), 1738 (s), 1643 (w), 1460 (m), 1375 (w), 1216 (m), 1031 (m), 880 (w), 758 (m).
Otrzymany kwas L-1,2-dioleoilo-sn-glicero-3-fosfatydowy poddaje się estryfikacji z betulina. 4- Mieszaninę kwasu L-1,2-dioleoilo-sn-glicero-3-fosfatydowego (99 mg, 0,141 mmol) i betuliny (94 mg,
0,212 mmol) odparowuje się trzykrotne z bezwodnej pirydyny (3 x 1,5 cm3). Następnie mieszaninę roz3 puszcza się w 3 cm3 bezwodnej pirydyny, dodaje chlorek kwasu p-toluenosulfonowego (107 mg, 0,564 mmol) oraz 4-dimetyloamino-pirydynę (69 mg, 0,564 mmol) i miesza w temperaturze pokojowej w atmosferze azotu, w zaciemnieniu przez 24 godziny. Po tym czasie odparowuje się pirydynę, mieszaninę poreakcyjną rozpuszcza się w chlorku metylenu, przemywa solanką, osusza za pomocą MgS04 i odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem. Surowy produkt oczyszcza się za pomocą chromatografii kolumnowej na żelu krzemionkowym (eluent - chloroform: metanol w gradiencie od 95:5 do 85:15, w procentach objętościowych).
Otrzymuje się 151 mg (wydajność 95%) 28-0-(L-1,2-dioleoilo-sn-glicero-3-fosfatydylo)-betuliny. Czystość związku (98%) określono za pomocą HPLC. Dane spektroskopowe otrzymanego produktu są następujące:
1H NMR (300 MHz, CDC>CD3OD 3:1) δ: 0,54 (d, J= 9,6 Hz, 1H, H-5a); 0,61 i 0,68 (dwa s, 6H, CH3- w betulinie); 0,74 ( m, 6H, CH3- w kwasie oleinowym); 0,81, 0,84 i 0,89 (trzy s, 9H, CH3w betulinie); 1,03-1,29 (m, 58H, CH, CH2); 1,37-1,48 (m, 12H, CH2); 1,54 (s, 3H, CH3-30); 1,61 (m, 1H); 1,73-1,80 (m, 2H, H-2); 1,86-1,94 (m, 8H, CH2;CH=) 2,14-2,21 (m, 4H, CH2-2'); 2,27 (m, 1H, H-19); 3,02 (m, 1H, H-3); 3,48 (m, 1H, jeden z CH2-28); 3,83-3,90 (m, 3H, CH2-3'oraz jeden z CH2-28); 4,04 (dd, J=12 i 6,4 Hz, 1H, jeden z CH2-1'), 4,25 (dd, J= 12 i 3 Hz, 1H, jeden z CH21'); 4,44 i 4,53 (dwa m, 2H, =CH2-29); 5,09 (m, 1H, CH-2'); 5,14-5,28 (m, 4H, -CH=CH-).
31P NMR (121MHz CDC13:CD3OD 3:1)5 0,156.
IR (film, cm-1): 3376 (m), 2926 (s), 1739 (s), 1642 (w), 1460 (m), 1375 (m), 1031 (m), 758 (m)

Claims (3)

1. Nowa fosfolipidowa pochodna betuliny (28-0-(L-1,2-dioleoilo-sn-glicero-3-fosfatydylo)-betulina), o wzorze przedstawionym na rysunku.
2. Sposób otrzymywania nowej fosfolipidowej pochodnej betuliny, o wzorze przedstawionym na rysunku, znamienny tym, że kwas L-1,2-dioleoilo-sn-glicero-3-fosfatydowy poddaje się estryfikacji z betulina, z udziałem czynnika sprzęgającego, w obecności 4-dimetyloamino-pirydyny, w środowisku pirydyny.
3. Sposób, według zastrz. 2, znamienny tym, że czynnikiem sprzęgającym jest chlorek p-toluenosulfonowy.
PL393255A 2010-12-13 2010-12-13 Nowa fosfolipidowa pochodna betuliny i sposób jej otrzymywania PL217996B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL393255A PL217996B1 (pl) 2010-12-13 2010-12-13 Nowa fosfolipidowa pochodna betuliny i sposób jej otrzymywania

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL393255A PL217996B1 (pl) 2010-12-13 2010-12-13 Nowa fosfolipidowa pochodna betuliny i sposób jej otrzymywania

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL393255A1 PL393255A1 (pl) 2011-05-23
PL217996B1 true PL217996B1 (pl) 2014-09-30

Family

ID=44070311

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL393255A PL217996B1 (pl) 2010-12-13 2010-12-13 Nowa fosfolipidowa pochodna betuliny i sposób jej otrzymywania

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL217996B1 (pl)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111454289A (zh) * 2019-11-08 2020-07-28 苏州东南药业股份有限公司 一种二油酰磷脂酰胆碱的制备方法

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111454289A (zh) * 2019-11-08 2020-07-28 苏州东南药业股份有限公司 一种二油酰磷脂酰胆碱的制备方法

Also Published As

Publication number Publication date
PL393255A1 (pl) 2011-05-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Martinez et al. Biotransformation of oleanolic and maslinic acids by Rhizomucor miehei
Spivak et al. Triphenylphosphonium cations of betulinic acid derivatives: Synthesis and antitumor activity
Singh et al. Deciphering the role of charge, hydration, and hydrophobicity for cytotoxic activities and membrane interactions of bile acid based facial amphiphiles
Májer et al. New highly toxic bile acids derived from deoxycholic acid, chenodeoxycholic acid and lithocholic acid
Salomatina et al. Synthesis of novel 2-cyano substituted glycyrrhetinic acid derivatives as inhibitors of cancer cells growth and NO production in LPS-activated J-774 cells
Aiello et al. Clavaminols G–N, six new marine sphingoids from the Mediterranean ascidian Clavelina phlegraea
Michalak et al. Antioxidant activity of novel diosgenin derivatives: Synthesis, biological evaluation, and in silico ADME prediction
Qian et al. Discovery of novel cholic acid derivatives as highly potent agonists for G protein-coupled bile acid receptor
PL217996B1 (pl) Nowa fosfolipidowa pochodna betuliny i sposób jej otrzymywania
Xie et al. Structure–activity relationship of Aza-steroids as PI-PLC inhibitors
CN102675405A (zh) 熊果酸哌嗪酰胺类化合物及其制备方法和用途
Kłobucki et al. Syntheses and antiproliferative activities of novel phosphatidylcholines containing dehydroepiandrosterone moieties
Li et al. Synthesis of methyl 2-cyano-3, 12-dioxo-18β-olean-1, 9 (11)-dien-30-oate analogues to determine the active groups for inhibiting cell growth and inducing apoptosis in leukemia cells
Simao et al. In vitro cytotoxicity study of ent-kaurenoic acid derivatives against human breast carcinoma cell line
EP3130594B1 (en) Phosphonates of acetylenic betulin derivatives with anticancer activity, method for their production and their application
Li et al. Discovery and biological evaluation of cholic acid derivatives as potent TGR5 positive allosteric modulators
Minh et al. Study on chemical constituents and cytotoxic activities of Salacia chinensis growing in Vietnam
PL216420B1 (pl) Nowe diestry betuliny i sposób ich otrzymywania
Tsepaeva et al. Reaction of Methyl (2-Methylidene)-3-oxolup-20 (29)-en-28-oate with Dimethyl Trimethylsilyl Phosphite
RU2551647C2 (ru) Трифенилфосфониевые соли лупановых тритерпеноидов, способ получения и применение в качестве противоопухолевых веществ
Gómez-Calvario et al. Synthetic pathway to 22, 23-dioxocholestanic chain derivatives and their usefulness for obtaining brassinosteroid analogues
WO2012057068A1 (ja) 23-イン-ビタミンd3誘導体
PL214914B1 (pl) Nowy ester kwasu 1,2-diacylofosfatydowego z betuliną i sposób jego otrzymywania
Ibrahim-Ouali et al. A ring-closing metathesis approach to secosteroidal macrocycles
Pérez-Díaz et al. Novel steroidal penta-and hexacyclic compounds derived from 12-oxospirostan sapogenins

Legal Events

Date Code Title Description
LICE Declarations of willingness to grant licence

Effective date: 20140317