PL215256B1 - Sposób otrzymywania drożdży piekarskich zawierających wewnątrzkomórkową trehalozę - Google Patents

Sposób otrzymywania drożdży piekarskich zawierających wewnątrzkomórkową trehalozę

Info

Publication number
PL215256B1
PL215256B1 PL391773A PL39177310A PL215256B1 PL 215256 B1 PL215256 B1 PL 215256B1 PL 391773 A PL391773 A PL 391773A PL 39177310 A PL39177310 A PL 39177310A PL 215256 B1 PL215256 B1 PL 215256B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
yeast
ions
trehalose
amount
salts
Prior art date
Application number
PL391773A
Other languages
English (en)
Other versions
PL391773A1 (pl
Inventor
Malgorzata Makarewicz
Tadeusz Tuszyński
Paweł Sroka
Original Assignee
Univ Rolniczy Im Hugona Kollataja W Krakowie
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Rolniczy Im Hugona Kollataja W Krakowie filed Critical Univ Rolniczy Im Hugona Kollataja W Krakowie
Priority to PL391773A priority Critical patent/PL215256B1/pl
Publication of PL391773A1 publication Critical patent/PL391773A1/pl
Publication of PL215256B1 publication Critical patent/PL215256B1/pl

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania drożdży piekarskich zawierających wewnątrzkomórkową trehalozę o wysokim stężeniu trehalozy w komórkach drożdżowych i optymalnym przyroście biomasy. Sposób ten ma szczególne zastosowanie przy produkcji drożdży suszonych.
Trehaloza jest wytwarzana w komórkach drożdżowych w warunkach stresu. Czynniki stresujące komórki drożdżowe zwiększają syntezę trehalozy, lecz jednocześnie hamują (spowolniają) namnażanie i w konsekwencji zmniejszają plon biomasy lub całkowicie zahamowują przyrostu biomasy. Wzrost biomasy drożdży uzależniony jest od wielu czynników. Trehaloza (a-D-glukopiranozylo-a-D-glukopiranozyd) jest disacharydem, zbudowanym z cząsteczek D-glukopiranozy połączonych wiązaniem a-glikozydowym. Wymieniony związek bardzo korzystnie wpływa na aktywność drożdży oraz stabilność labilnych frakcji białkowych enzymów wewnątrzkomórkowych. Trehaloza wraz z białkami szoku cieplnego zwiększa termotolerancję drożdży. Obecność trehalozy uodparnia komórki drożdżowe na różnego rodzaju stresy wywołane podwyższoną koncentracją etanolu, odwodnieniem lub zamrożeniem oraz wyczerpaniem składników pokarmowych w podłożu. Podwyższona zawartość trehalozy w drożdżach piekarskich zwiększa żywotność komórek drożdżowych oraz ich odporność na niekorzystne warunki środowiskowe.
Namnażanie komórek drożdżowych zachodzi najszybciej w warunkach optymalnych do rozwoju drożdży. W literaturze w hodowli okresowej drożdży, gdy substancje odżywcze są dostarczane jednorazowo w początkowej fazie procesu, a ze środowiska hodowlanego nie usuwa się biomasy, wyróżnia się cztery główne fazy wzrostu mikroorganizmów: A - spoczynkową (nazywaną adaptacyjną lub lag-fazą), B - logarytmiczną (wykładniczą), C - stacjonarną (zastoju) i D - zamierania (letalną), co zobrazowano na wykresie pokazanym wzał.1, ilustrującym stan techniki.
Zwiększanie ilości trehalozy w komórkach drożdżowych można uzyskać stosując fuzje drożdży winiarskich z drożdżami dzikimi, co ujawniono w patencie JP 3932307, lub przez modyfikacje genetyczne komórek Saccharomyces cerevisiae, co ujawniono w zgłoszeniu patentowym JP 10243783.
W patencie CN 1219071 przedstawiono sposób uzyskiwania wysokiej wydajności syntezy trehalozy, wydzielanej do płynu pohodowlanego, poprzez zastosowanie dwuetapowej fermentacji. W pierwszym etapie komórki poddaje się stresowi ograniczając dostępność związków azotowych, generując szok cieplny, osmotyczny lub zmieniając parametry w inny sposób, mający na celu syntezę białek stresu. Powstające białka są odpowiedzialne za aktywację syntezy trehalozy w drugim etapie fermentacji.
Z kolei w patencie JP 10323180 ujawniono sposób zwiększania gromadzenia trehalozy przez komórki drożdży rodzaju Saccharomyces przez suplementację pożywki hodowlanej za pomocą jonów miedzi.
Suplementacja pożywki hodowlanej jest znana i stosowana w celu np. zwiększenia stężenia konkretnych pierwiastków w biomasie jak np. cynku, germanu, magnezu, kobaltu i manganu, co ujawniono w japońskim opisie zgłoszeniowym JP 9124438. Podobnie podczas produkcji drożdży selenowych opisanej w zgłoszeniu WO 03078605 jony selenu wprowadzane są bezpośrednio do pożywki hodowlanej, która zawiera węglowodany, składniki odżywcze, składniki buforujące oraz etanol.
W artykule Tuszyński T. Effect of metal ions on the selected characteristics of baker's yeast Saccharomyces cerevisiae, Polish Journal of Food and Nutrition Sciences. 10/51, 11-18, 2001 r. ujawniono także, że skład jonowy pożywek hodowlanych istotnie oddziałuje na aktywność fermentacyjną, wydajność biomasy oraz zawartość trehalozy w komórkach drożdżowych. Na początku hodowli na syntezę trehalozy w fazie logarytmicznej (B) tj dynamicznego wzrostu komórek drożdży, pozytywnie wpływa obecność jonów miedzi (10 μΜ) oraz mieszanin jonowych zawierających wapń, mangan, magnez i cynk. Wykazano synergistyczny efekt zwiększający aktywność fermentacyjną drożdży oraz syntezę trehalozy w przypadku obecności zarówno jonów cynku i kobaltu oraz cynku i magnezu. Zwiększenie zawartości jonów manganu lub cynku do stężenia w zakresie od 10 do 20 μΜ zmniejsza negatywny wpływ na wzrost komórek w obecności metali ciężkich takich jak miedź i kobalt, zawartych w pożywkach hodowlanych w stężeniach powyżej 20 μΜ.
W trakcie prac nad doborem optymalnego stężenia jonów do namnażania drożdży piekarskich nieoczekiwanie okazało się, że modyfikacja składu chemicznego podłoża hodowlanego stosowanego do namnażania drożdży pod koniec procesu produkcyjnego (hodowli okresowej), umożliwia uzyskanie zarówno wysokiego plonu, jak i zwiększenie stężenia trehalozy wewnątrzkomórkowej.
PL 215 256 B1
Istota rozwiązania charakteryzuje się tym, że w trakcie procesu produkcyjnego na początku fazy stacjonarnej (C) hodowli okresowej, dodaje się dodatkowo do podłoża hodowlanego sole selenu(VI) w ilości od 1 do 100 μΜ oraz sole metali zawierające jony magnezu i manganu w stanie czystym lub ich mieszaninach z wapniem.
Korzystnie dodaje się czyste sole zawierające jony magnezu w ilości od 1 do 100 mM, oraz czyste sole zawierające jony manganu w ilości od 1 do 100 μΜ. Korzystne dodaje się także mieszaninę soli zawierających jony manganu w ilości od 1 do 100 μΜ oraz magnezu i wapnia w ilości od 1 do 100 mM.
Zaletą sposobu jest możliwość namnażania drożdży w warunkach optymalnych lub zbliżonych do optymalnych przez modyfikację, na początku fazy stacjonarnej, składu chemicznego podłoża hodowlanego stosowanego do namnażania drożdży. Zmiana składu chemicznego w trakcie namnażania komórek drożdżowych umożliwia uzyskanie wysokiego stężenia trehalozy w komórkach drożdżowych przy zachowaniu wysokiej wydajności biomasy. Odpowiedni skład jonowy pożywki hodowlanej wpływa na przemiany metaboliczne i biosyntezę materiału komórkowego oraz przyczynia się do uzyskania drożdży piekarskich o bardziej stabilnych cechach technologicznych. Otrzymana biomasa może być także wykorzystywana do produkcji trehalozy.
Przedmiot wynalazku objaśniony jest w przykładach.
Materiał badawczy stanowiły drożdże piekarskie Saccharomyces cerevisiae z Kolekcji Czystych Kultur Katedry Technologii Fermentacji i Mikrobiologii Technicznej Uniwersytetu Rolniczego w Krakowie. Do doświadczeń użyto szczep B1 otrzymany metodą fuzji protoplastów drożdży przemysłowych, wyselekcjonowanych pod względem ich osmofilności oraz hybryd YT 411x5p uzyskany przez skrzyżowanie dwóch szczepów Saccharomyces cerevisiae: biotyno - prototroficznego Y z auksotroficznym „Tczew”.
Kultury drożdży przechowywano na skosach agarowych, w temperaturze 4°C, i przeszczepiano co 30 dni na świeżą pożywkę.
P r z y k ł a d 1 (porównawczy)
Do namnażania drożdży stosowano podłoże syntetyczne o składzie: glukoza 20,0 g/dm3, (NH4)2SO4 3,0 g/dm3,
KH2PO4 3,0 g/dm3,
MgSO4x7H2O 0,25 g/dm3,
CaCI2x6H2O 4,38 g/dm3,
MnCI2x4H2O 4,0 mg/dm3, 3 ekstrakt drożdżowy 0,1 g/dm3, biotyna 0,001 g/dm3, tiamina 0,004 g/dm3, 3 pantotenian wapnia 0,400 g/dm3, inozytol 1,000 g/dm3.
Początkowe pH=5,3 roztworów hodowlanych ustalano za pomocą 2M roztworu HCI lub NaOH. Pożywkę sterylizowano w autoklawie (121°C, 30 min.). Roztwory jonów oraz biostymulatorów sterylizowano, przed dodaniem do podłoża, przy pomocy jałowych filtrów Chromafil® o średnicy porów
0,2 μm. Drożdże namnażano w fermentorze Biostat® B (B. Braun Biotech International) o pojemności
3 -1 -1 roboczej 2 dm3 (24 h, pH=5,3, 30°C, napowietrzanie 2,5 - 3 dm3 x min-1, mieszanie 250 obr x min-1, natlenienie pO2 > 60%). Uzyskaną biomasę dwukrotnie odwirowywano (wirówka MPW 350-R, 3000xg, 3 min., 20°C) i przemywano (2 x 100 cm3, 0,9% NaCI), następnie separowano na filtrze membranowym Sartorius AG Goettingen, Germany (0 0,45 μm). Wyznaczano plon oraz zawartości trehalozy w biomasie. Wyniki zestawiono w tabeli 1.
P r z y k ł a d 2
Drożdże namnażano jak w przykładzie 1. Na początku fazy stacjonarnej (C), tj. w 16 h hodowli, do podłoża dodawano w sposób jałowy, roztwór zawierający mieszaninę soli Mg(NO3)2 x 6H2O 2+ 2i Na2SeO4 w takiej ilości, aby stężenie jonów Mg2+ w bioreaktorze wzrosło o 20 mM, a jonów SeO42było równe 50 μΜ. Próby po namnożeniu separowano na filtrze membranowym Sartorius AG Goettingen, Germany (0 0,45 μm) i wyznaczano plon biomasy oraz zawartości trehalozy w biomasie. Wyniki zestawiono w tabeli 1.
PL 215 256 B1
P r z y k ł a d 3
Drożdże namnażano jak w przykładzie 1. Na początku fazy stacjonarnej (C), tj. w 16 h hodowli, do podłoża dodawano w sposób jałowy, roztwór zawierający mieszaninę soli MnCI2 x 4H2O i Na2SeO4 2+ 2w takiej ilości, aby stężenie jonów Mn2+ w bioreaktorze wzrosło o 20 μΜ, a jonów SeO42- było równe 50 μΜ. Próby po namnożeniu separowano na filtrze membranowym Sartorius AG Goettingen, Germany (0 0,45 μm) i wyznaczano plon biomasy oraz zawartości trehalozy w biomasie. Wyniki zestawiono w tabeli 1.
P r z y k ł a d 4
Drożdże namnażano jak w przykładzie 1. Na początku fazy stacjonarnej (C), tj. w 16 h hodowli, do podłoża dodawano w sposób jałowy, roztwór zawierający mieszaninę soli CaCI2 x 6H2O, Mg(NO3)2 x 6H2O, MnCI2 x 4H2O i Na2SeO4, tak aby stężenia badanych pierwiastków w bioreaktorze wzrosły o odpowiednio: Ca2+ i Mg2+ - 20 mM i Mn2+ - 20 μΜ, SeO4 2- - 50 μΜ. Próby po namnożeniu separowano na filtrze membranowym Sartorius AG Goettingen, Germany (0 0,45 μm) i wyznaczano plon biomasy oraz zawartości trehalozy w biomasie. Wyniki zestawiono w tabeli 1.
T a b e l a 1.
Plon biomasy i zawartość trehalozy w komórkach drożdży piekarskich Saccharomyces cerevisiae szczep B1 i YT
Próba Plon biomasy [g s.s.x100 cm-3] Trehaloza [% s.s.]
B1 YT B1 YT
Przykład 1 0,2898 0,2685 8,29 8,14
Przykład 2 0,2837 0,2881 11,29 12,57
Przykład 3 0,2925 0,2958 12,55 10,86
Przykład 4 0,3334 0,3047 10,29 12,29
Zastrzeżenia patentowe

Claims (4)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób otrzymywania drożdży piekarskich zawierających wewnątrzkomórkową trehalozę, produkowanych na podłożu hodowlanym zawierającym sole metali, takie jak sole magnezu, manganu i wapnia, znamienny tym, że w trakcie procesu produkcyjnego na początku fazy stacjonarnej (C) hodowli okresowej, dodaje się dodatkowo do podłoża hodowlanego sole selenu(VI) w ilości od 1 do 100 μΜ oraz sole metali zawierające jony magnezu i manganu w stanie czystym lub ich mieszaninach z wapniem.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że dodaje się czyste sole zawierające jony magnezu w ilości od 1 do 100 mM.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że dodaje się czyste sole zawierające jony manganu w ilości od 1 do 100 μΜ.
  4. 4. Sposób według zastrz. 2 albo 3, znamienny tym, że dodaje się mieszaninę soli zawierającą jony wapnia w ilości od 1 do 100 mM.
    PL 215 256 B1
    Rysunek
    Główne fazy wzrostu drożdży w hodowli okresowej A - faza adaptacyjna,
    B - faza logarytmiczna,
    C - faza stacjonarna,
    D - faza zamierania wg podręcznika:
    Carlile M.J., Watkinson S.C., Gooday G.W., The Fungi, wyd. Academic Press, Londyn, 2001 r.
PL391773A 2010-07-07 2010-07-07 Sposób otrzymywania drożdży piekarskich zawierających wewnątrzkomórkową trehalozę PL215256B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL391773A PL215256B1 (pl) 2010-07-07 2010-07-07 Sposób otrzymywania drożdży piekarskich zawierających wewnątrzkomórkową trehalozę

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL391773A PL215256B1 (pl) 2010-07-07 2010-07-07 Sposób otrzymywania drożdży piekarskich zawierających wewnątrzkomórkową trehalozę

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL391773A1 PL391773A1 (pl) 2012-01-16
PL215256B1 true PL215256B1 (pl) 2013-11-29

Family

ID=45510143

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL391773A PL215256B1 (pl) 2010-07-07 2010-07-07 Sposób otrzymywania drożdży piekarskich zawierających wewnątrzkomórkową trehalozę

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL215256B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL391773A1 (pl) 2012-01-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hevekerl et al. Influence of the pH on the itaconic acid production with Aspergillus terreus
Chatzifragkou et al. Production of 1, 3-propanediol by Clostridium butyricum growing on biodiesel-derived crude glycerol through a non-sterilized fermentation process
Olajuyigbe et al. Biochemical characterization of an extremely stable pH-versatile laccase from Sporothrix carnis CPF-05
Abeln et al. Lipid production through the single-step microwave hydrolysis of macroalgae using the oleaginous yeast Metschnikowia pulcherrima
Anastassiadis et al. Citric acid production from glucose by yeast Candida oleophila ATCC 20177 under batch, continuous and repeated batch cultivation
US8617857B2 (en) Thraustochytrid-based microalgae, and method for preparing bio-oil by using same
Han et al. Isolation and identification of yeasts from wild flowers collected around Jangseong lake in Jeollanam-do, Republic of Korea, and characterization of the unrecorded yeast Bullera coprosmaensis
Börekçi et al. Citric acid production of yeasts: an overview
JPWO2014030774A1 (ja) 酵母用培地
Wang et al. l-(+)-Lactic acid production by co-fermentation of cellobiose and xylose without carbon catabolite repression using Enterococcus mundtii QU 25
Ramesh et al. An experimental study on citric acid production by Aspergillus niger using Gelidiella acerosa as a substrate
Musiał et al. Designing a process of kaolin bleaching in an oxalic acid enriched medium by Aspergillus niger cultivated on biodiesel-derived waste composed of glycerol and fatty acids
JP7450959B2 (ja) 酵母菌およびそのエルゴチオネイン製造における用途
Yu et al. Application of methanol and sweet potato vine hydrolysate as enhancers of citric acid production by Aspergillus niger
PL215256B1 (pl) Sposób otrzymywania drożdży piekarskich zawierających wewnątrzkomórkową trehalozę
JP6393898B2 (ja) 酵母の培養方法
Lee et al. Rapid growth of a thermotolerant yeast on palm oil
Sawiphak et al. Dioscorea alata as Alternative Culture Media for Fungal Cultivation and Biomass Production.
Avila Neto et al. Evaluation and optimization of growth and citric acid production by Yarrowia lipolytica NRRL Y-1095 using glycerol as carbon source as an alternative to use biodiesel byproduct.
Mota et al. Candida boidinii isolates from olive curation water: a promising platform for methanol-based biomanufacturing
EP4365280A1 (en) Method for culturing oleaginous yeasts
Satpute et al. Solid-state fermentation for production of gibberellic acid using agricultural residues
CN112940952A (zh) 一株高产己酸乙酯酵母菌及其应用
CN103571820B (zh) 一种采用细胞融合技术生产异戊二烯的方法及其构建的融合子
Musial et al. Effect of span 20 concentration on oxalic acid production from post-refining fatty acids by Aspergillus niger XP

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20140707