PL204826B1 - Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides - Google Patents

Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides

Info

Publication number
PL204826B1
PL204826B1 PL366414A PL36641404A PL204826B1 PL 204826 B1 PL204826 B1 PL 204826B1 PL 366414 A PL366414 A PL 366414A PL 36641404 A PL36641404 A PL 36641404A PL 204826 B1 PL204826 B1 PL 204826B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
lipase
mixture
solution
polymer
dehydrated
Prior art date
Application number
PL366414A
Other languages
English (en)
Other versions
PL366414A1 (pl
Inventor
Tadeusz Antczak
Mirosława Szczęsna-Antczak
Stanisław Bielecki
Zofia Modrzejewska
Justyna Patura
Original Assignee
Politechnika Lodzka
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Lodzka filed Critical Politechnika Lodzka
Priority to PL366414A priority Critical patent/PL204826B1/pl
Publication of PL366414A1 publication Critical patent/PL366414A1/pl
Publication of PL204826B1 publication Critical patent/PL204826B1/pl

Links

Landscapes

  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides.
Z czasopisma Biotechnologia PI 44 (1999) s. 172 jest znany sposób kapsułkowania immobilizowanych in situ endolipaz Mucor w żelu alginianowym i karagenowym
W czasopiś mie Biotechnology Techniques 11 (1997) s. 9 opisano sposób pułapkowania immobilizowanej in situ endolipazy Mucor javanicus w żelu krzemionkowym.
Natomiast w czasopiśmie Journal Molecular Catalysis B: Enzymatic 19-20 (2002) s. 261 opisano sposób pułapkowania związanych z membranami komórkowymi lipaz Mucor w alkoholu poliwinylowym.
Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides, w drodze zmieszania immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych lipazy z roztworem polimeru, korzystnie chitozanu, ż elatyny, alkoholu poliwinylowego lub ich mieszaniny, w buforze oraz umieszczenia mieszaniny polimeru i lipazy w roztworze koagulującym, według wynalazku polega na tym, że immobilizacji poddaje się lipazę w postaci odwodnionego i rozdrobnionego do wielkości drobin 3-10 μm mycelium, którą miesza się z roztworem polimeru w kwasie octowym lub mlekowym, wzbogaconym korzystnie gliceryną lub poliwinylopirolidonem dodanymi w ilości 1-12% w stosunku do masy całej mieszaniny, ewentualnie zawierającym zagęszczacz, stosując 1-10% lipazy w stosunku do masy polimeru, po czym otrzymaną, jednorodną mieszaninę odpowietrza się pod próżnią w czasie 15-45 minut, wkrapla się do roztworu koagulującego i inkubuje w temperaturze pokojowej w czasie 60-360 minut. Otrzymany w wyniku inkubacji preparat lipazy, w postaci kulek o wymiarach 1-4 mm lub nitek o średnicy 1-5 mm, odwadnia się acetonem lub liofilizuje i przechowuje w zamkniętych naczyniach w temperaturze 4°C. Stosuje się chitozan o masie cząsteczkowej 10000-70000 kD, stopniu deacetylacji 20-90% i wilgotności 9-14% oraz alkohol poliwinylowy o masie cząsteczkowej 20000-80000 kD. Jako roztwór koagulujący stosuje się 1-10% roztwór tripolifosforanu lub heksametapolifosforanu w buforze o pH 5-8 lub 0,1-5% roztwór aldehydu glutarowego w buforze o pH 5-8, zawierający 0,05-5% CaCl2. Jako zagęszczacz używa się poliwinylopirolidon lub alginian sodowy.
Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides, w drodze zmieszania immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych lipazy z roztworem polimeru, korzystnie chitozanu, żelatyny, alkoholu poliwinylowego lub ich mieszaniny, w buforze oraz umieszczenia mieszaniny polimeru i lipazy w roztworze koagulującym w postaci oleju rzepakowego, według wynalazku polega również na tym, że odpowietrzoną mieszaninę lipazy z polimerem wkrapla się do oleju rzepakowego schłodzonego do temperatury od -40°C do -15°C i inkubuje w czasie 5-48 godzin, po czym otrzymany preparat ogrzewa do temperatury 25°C i ponownie zamraża do temperatury od -40°C do -15°C, powtarzając czynności zamrażania i ogrzewania 2-5-krotnie, następnie preparat przemywa się, odwadnia acetonem lub liofilizuje i przechowuje w zamkniętych naczyniach w temperaturze 4°C.
Sposób według wynalazku zezwala na otrzymanie aktywnych i stabilnych preparatów lipazy Mucor circinelloides o rozkładzie objętości porów umożliwiającym efektywny transport substratów i produktów. Preparaty lipaz wytworzone sposobem według wynalazku są przeznaczone do katalizy reakcji estryfikacji w środowisku rozpuszczalników organicznych, korzystnie sacharydów i kwasów tłuszczowych, alkoholi i kwasów tłuszczowych oraz do hydrolizy estrów w środowisku wodnym. Sposób według wynalazku ilustrują bliżej podane niżej przykłady.
P r z y k ł a d I.
Do 100 ml 2,7% roztworu chitozanu o masie cząsteczkowej 45800 kD, stopniu deacetylacji 77,6% i wilgotności 12,8%, w 1,2% kwasie octowym dodano 2,5 g lipazy Mucor circinelloides immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych, w postaci odwodnionego i rozdrobnionego mycelium i całość mieszano do osiągnięcia jednorodnej mieszaniny, którą następnie odpowietrzano pod próżnią w czasie 25 minut. Otrzymaną mieszaninę lipaza-chitozan wkroplono do 5% roztworu heksametapolifosforanu w buforze Tris-HCl o pH 7,0 i inkubowano w czasie 75 minut. Wytworzony preparat lipazy w postaci kulek przemyto 3-razy acetonem i pozostawiano do wysuszenia w temperaturze pokojowej. Preparat immobilizowanej lipazy przechowywano w zamkniętych naczyniach w temperaturze 4°C.
P r z y k ł a d II.
Do 100 ml 4,5% roztworu chitozanu o masie cząsteczkowej 45800 kD, stopniu deacetylacji 77,6% i wilgotności 12,8%, w 1,8% kwasie octowym dodano dodawano 5% poliwinylopirolidonu i 4,5 g lipazy Mucor circinelloides immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych, w postaci odwodnionego i rozdrobnionego mycelium. Całość mieszano do osiągnięcia jednorodnej mieszaniny, którą następnie odpowietrzano pod próżnią w czasie 45 minut. Wytworzoną mieszaninę lipaza-chitozan wkraplano do
PL 204 826 B1
5% roztworu heksametapolifosforanu w buforze Tris-HCl o pH 7,0 i inkubowano w czasie 75 minut. Otrzymano preparat lipazy w postaci kulek. Dalej postępowano jak w przykładzie 1.
P r z y k ł a d III.
Do 100 ml 4,5% roztworu chitozanu o masie cząsteczkowej 45800, stopniu deacetylacji 77,6% i wilgotno ś ci 12,8%, w 1,8% kwasie mlekowym dodano 1,2 g alkoholu poliwinylowego o masie czą steczkowej 72000 kD, stopniu polimeryzacji 1600 i stopniu deacetylacji 97,5-99,5% oraz 4,5 g lipazy Mucor circinelloides immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych, w postaci odwodnionego i rozdrobnionego mycelium. Całość mieszano do osiągnięcia jednorodnej mieszaniny, którą następnie odpowietrzano pod próżnią w czasie 45 minut. Wytworzoną mieszaninę lipaza-chitozan wkraplano do 5% roztworu tripolifosforanu w buforze Tris-HCl o pH 7,0 i inkubowano w czasie 240 minut. Otrzymano preparat lipazy w postaci kulek. Dalej postępowano jak w przykładzie 1.
P r z y k ł a d IV.
Do 40 ml 25% roztworu żelatyny w buforze octanowym o pH 5 dodano 2,5 g alginianu sodu, 60 ml glicerolu i 2 g lipazy w postaci odwodnionego i rozdrobnionego mycelium lipazy Mucor circinelloides immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych. Całość mieszano do osiągnięcia jednorodnej mieszaniny, którą odpowietrzano pod próżnią w czasie 15 minut. Wytworzoną mieszaninę wstrzykiwano do 250 ml 1% aldehydu glutarowego, zawierającego 20 mM CaCl2 i inkubowano w czasie 1 godziny w temperaturze 25°C. Wytworzony preparat lipazy, w postaci nitek o średnicy 3 mm, przemyto wodą, liofilizowano i przechowywano w temperaturze 4°C.
P r z y k ł a d V.
Do 100 ml 14% roztworu alkoholu poliwinylowego o masie cząsteczkowej 72000 kD, stopniu polimeryzacji 1600 i stopniu deacetylacji 97,5-99,5%, w wodzie destylowanej dodano 2 g lipazy Mucor circinelloides immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych, w postaci odwodnionego i rozdrobnionego mycelium i całość mieszano do osiągnięcia jednorodnej mieszaniny. Wytworzoną mieszaninę odpowietrzano pod próżnią w czasie 45 minut, wkraplano do oleju rzepakowego schłodzonego do temperatury 0°C i inkubowano w temperaturze -20°C w czasie 10 godzin. Następnie uformowany w postaci kulek preparat lipazy ogrzewano do temperatury 25°C i ponownie zamraż ano do temperatury -20°C. Czynność tę powtarzano trzykrotnie. Kuleczki preparatu przemyto następnie wodą z dodatkiem 0,1% tritonu X-100 i dalej postępowano jak w przykładzie 1.
P r z y k ł a d VI.
ml 4,5% roztworu chitozanu o masie cząsteczkowej 45800 kD, stopniu deacetylacji 77,6% i wilgotności 12,8%, w 1,8% kwasie octowym zmieszano z 20 ml 25% roztworu ż elatyny napęczniałej w wodzie i dodano 4,5 g lipazy Mucor circinelloides immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych, w postaci odwodnionego i rozdrobnionego mycelium. Całość mieszano do osiągnięcia jednorodnej mieszaniny, którą następnie odpowietrzano pod próżnią w czasie 45 minut. Otrzymaną mieszaninę lipaza-chitozan-żelatyna wkraplano do 5% roztworu heksametapolifosforanu w buforze Tris-HCl o pH 7,0 i inkubowano w czasie 75 minut. Wytworzony preparat lipazy, w postaci kulek, sieciowano 1% roztworem aldehydu glutarowego, przemyto 1% glicyną, odwodniono przemywając 3-razy acetonem i liofilizowano. Preparat immobilizowanej lipazy przechowywano w zamkniętych naczyniach w temperaturze 4°C.

Claims (10)

1. Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides, w drodze zmieszania immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych lipazy z roztworem polimeru, korzystnie chitozanu, żelatyny, alkoholu poliwinylowego lub ich mieszaniny, w buforze oraz umieszczenia mieszaniny polimeru i lipazy w roztworze koagulującym, znamienny tym, że immobilizacji poddaje się lipazę w postaci odwodnionego i rozdrobnionego do wielko ś ci drobin 3-10 μ m mycelium, którą miesza się z roztworem polimeru w kwasie octowym lub mlekowym, wzbogaconym korzystnie gliceryną lub poliwinylopirolidonem dodanymi w ilości 1-12% w stosunku do masy całej mieszaniny, ewentualnie zawierającym zagęszczacz, stosując 1-10% lipazy w stosunku do masy polimeru, po czym otrzymaną, jednorodną mieszaninę odpowietrza się pod próżnią w czasie 15-45 minut, wkrapla się do roztworu koagulującego i inkubuje w temperaturze pokojowej w czasie 60-360 minut, po czym otrzymany w wyniku inkubacji preparat lipazy, w postaci kulek o wymiarach 1-4 mm lub nitek o średnicy 1-5 mm, odwadnia się acetonem lub liofilizuje i przechowuje w zamkniętych naczyniach w temperaturze 4°C.
PL 204 826 B1
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się chitozan o masie cząsteczkowej 10000-70000 kD, stopniu deacetylacji 20-90% i wilgotności 9-14%.
3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, ż e stosuje się alkohol poliwinylowy o masie cząsteczkowej 20000-80000 kD.
4. Sposób wedł ug zastrz. 1, znamienny tym, ż e jako roztwór koagulują cy stosuje się 1-10% roztwór tripolifosforanu lub heksametapolifosforanu w buforze o pH 5-8.
5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako roztwór koagulujący stosuje się 0,1-5% roztwór aldehydu glutarowego w buforze o pH 5-8, zawierający 0,05-5% CaCl2.
6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, ż e jako zagęszczacz używa się poliwinylopirolidon lub alginian sodowy.
7. Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides, w drodze zmieszania immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych lipazy z roztworem polimeru, korzystnie chitozanu, żelatyny, alkoholu poliwinylowego lub ich mieszaniny, w buforze oraz umieszczenia mieszaniny polimeru i lipazy w roztworze koagulującym w postaci oleju rzepakowego, znamienny tym, że immobilizacji poddaje się lipazę w postaci odwodnionego i rozdrobnionego do wielkości drobin 3-10 μm mycelium, którą miesza się z roztworem polimeru w kwasie octowym lub mlekowym, wzbogaconymi korzystnie gliceryną lub poliwinylopirolidonem dodanymi w ilości 1-12% w stosunku do masy całej mieszaniny, ewentualnie zawierającym zagęszczacz, stosując 1-10% lipazy w stosunku do masy polimeru, po czym otrzymaną, jednorodną mieszaninę odpowietrza się pod próżnią w czasie 15-45 minut, odpowietrzoną mieszaninę wkrapla się do oleju rzepakowego schłodzonego do temperatury od -40°C do -15°C i inkubuje w czasie 5-48 godzin, po czym otrzymany preparat ogrzewa do temperatury 25°C i ponownie zamraża do temperatury od -40°C do -15°C, powtarzając czynności zamrażania i ogrzewania 2-5-krotnie, następnie preparat przemywa się, odwadnia acetonem lub liofilizuje i przechowuje w zamkniętych naczyniach w temperaturze 4°C.
8. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się chitozan o masie cząsteczkowej 10000-70000 kD, stopniu deacetylacji 20-90% i wilgotności 9-14%.
9. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się alkohol poliwinylowy o masie cząsteczkowej 20000-80000 kD.
10. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako zagęszczacz używa się poliwinylopirolidon lub alginian sodowy.
PL366414A 2004-03-18 2004-03-18 Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides PL204826B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL366414A PL204826B1 (pl) 2004-03-18 2004-03-18 Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL366414A PL204826B1 (pl) 2004-03-18 2004-03-18 Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL366414A1 PL366414A1 (pl) 2005-09-19
PL204826B1 true PL204826B1 (pl) 2010-02-26

Family

ID=36645415

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL366414A PL204826B1 (pl) 2004-03-18 2004-03-18 Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL204826B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL366414A1 (pl) 2005-09-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102210659B (zh) 一种双歧杆菌微胶囊及其制备方法
CN103224926B (zh) 一种制备固定化脂肪酶的方法
EP2783008B1 (en) Methods for the preparation of hydrogels using lipase enzymes
KR920009499B1 (ko) Pva-겔에 의해 고정된 효소를 함유하는 다공성 물질의 제조방법
Alloue et al. Comparison of Yarrowia lipolytica lipase immobilization yield of entrapment, adsorption, and covalent bond techniques
US8110386B2 (en) Lipase powder, methods for producing the same and use thereof
Hsu et al. Immobilization of lipoxygenase in an alginate-silicate solgel matrix: formation of fatty acid hydroperoxides
JP2678341B2 (ja) 固定化リパーゼ
TW200848513A (en) Lipase powder preparation, method of preparing the same and use thereof
PL204826B1 (pl) Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides
PL204909B1 (pl) Sposób immobilizacji lipazy Mucor racemosus
Stolarzewicz et al. Study on the properties of immobilized biocatalysts with lipase activity produced by Yarrowia lipolytica in batch culture
Flink et al. A novel method for immobilization of yeast cells in alginate gels of various shapes by internal liberation of Ca-ions
EP1734115A1 (en) 1,3-specific lipase powder, method of producing the same and utilization of the same
JP2002526070A (ja) 酵素のマイクロビーズ固定化方法
US20120171736A1 (en) Powdery lipase preparation and use thereof
CN104928279B (zh) 无载体固定化米根霉脂肪酶及其制备方法和生产生物柴油的应用
Panajotova et al. Immobilization of lipase produced by Rhizopus arrhizus on chitosan coated polygalacturonic acid beads.
Sawangpanya et al. Immobilization of lipase on CaCO3 and entrapment in calcium alginate bead for biodiesel production
US5010006A (en) Lipase immdoilized by cross-linking with inert protein for glyceride synthesis
JP4061415B2 (ja) 固定化用担体、固定化酵素製剤及びその製造方法
CN114317700A (zh) 荧光pcr试剂冻干保护剂、冻干方法及应用
Yi et al. Optimization of tetramethoxysilane-derived sol gel entrapment protocol stabilizes highly active chlorophyllase
Ray Purification and immobilization of human carbonic anhydrase B by using polyacrylamide gel
Tercan Immobilization of thermophilic recombinant esterase enzyme by microencapsulation in alginate-chitosan/CaCI2 polyelectrolyte beads