PL204826B1 - Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides - Google Patents
Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloidesInfo
- Publication number
- PL204826B1 PL204826B1 PL366414A PL36641404A PL204826B1 PL 204826 B1 PL204826 B1 PL 204826B1 PL 366414 A PL366414 A PL 366414A PL 36641404 A PL36641404 A PL 36641404A PL 204826 B1 PL204826 B1 PL 204826B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- lipase
- mixture
- solution
- polymer
- dehydrated
- Prior art date
Links
Landscapes
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides.
Z czasopisma Biotechnologia PI 44 (1999) s. 172 jest znany sposób kapsułkowania immobilizowanych in situ endolipaz Mucor w żelu alginianowym i karagenowym
W czasopiś mie Biotechnology Techniques 11 (1997) s. 9 opisano sposób pułapkowania immobilizowanej in situ endolipazy Mucor javanicus w żelu krzemionkowym.
Natomiast w czasopiśmie Journal Molecular Catalysis B: Enzymatic 19-20 (2002) s. 261 opisano sposób pułapkowania związanych z membranami komórkowymi lipaz Mucor w alkoholu poliwinylowym.
Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides, w drodze zmieszania immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych lipazy z roztworem polimeru, korzystnie chitozanu, ż elatyny, alkoholu poliwinylowego lub ich mieszaniny, w buforze oraz umieszczenia mieszaniny polimeru i lipazy w roztworze koagulującym, według wynalazku polega na tym, że immobilizacji poddaje się lipazę w postaci odwodnionego i rozdrobnionego do wielkości drobin 3-10 μm mycelium, którą miesza się z roztworem polimeru w kwasie octowym lub mlekowym, wzbogaconym korzystnie gliceryną lub poliwinylopirolidonem dodanymi w ilości 1-12% w stosunku do masy całej mieszaniny, ewentualnie zawierającym zagęszczacz, stosując 1-10% lipazy w stosunku do masy polimeru, po czym otrzymaną, jednorodną mieszaninę odpowietrza się pod próżnią w czasie 15-45 minut, wkrapla się do roztworu koagulującego i inkubuje w temperaturze pokojowej w czasie 60-360 minut. Otrzymany w wyniku inkubacji preparat lipazy, w postaci kulek o wymiarach 1-4 mm lub nitek o średnicy 1-5 mm, odwadnia się acetonem lub liofilizuje i przechowuje w zamkniętych naczyniach w temperaturze 4°C. Stosuje się chitozan o masie cząsteczkowej 10000-70000 kD, stopniu deacetylacji 20-90% i wilgotności 9-14% oraz alkohol poliwinylowy o masie cząsteczkowej 20000-80000 kD. Jako roztwór koagulujący stosuje się 1-10% roztwór tripolifosforanu lub heksametapolifosforanu w buforze o pH 5-8 lub 0,1-5% roztwór aldehydu glutarowego w buforze o pH 5-8, zawierający 0,05-5% CaCl2. Jako zagęszczacz używa się poliwinylopirolidon lub alginian sodowy.
Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides, w drodze zmieszania immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych lipazy z roztworem polimeru, korzystnie chitozanu, żelatyny, alkoholu poliwinylowego lub ich mieszaniny, w buforze oraz umieszczenia mieszaniny polimeru i lipazy w roztworze koagulującym w postaci oleju rzepakowego, według wynalazku polega również na tym, że odpowietrzoną mieszaninę lipazy z polimerem wkrapla się do oleju rzepakowego schłodzonego do temperatury od -40°C do -15°C i inkubuje w czasie 5-48 godzin, po czym otrzymany preparat ogrzewa do temperatury 25°C i ponownie zamraża do temperatury od -40°C do -15°C, powtarzając czynności zamrażania i ogrzewania 2-5-krotnie, następnie preparat przemywa się, odwadnia acetonem lub liofilizuje i przechowuje w zamkniętych naczyniach w temperaturze 4°C.
Sposób według wynalazku zezwala na otrzymanie aktywnych i stabilnych preparatów lipazy Mucor circinelloides o rozkładzie objętości porów umożliwiającym efektywny transport substratów i produktów. Preparaty lipaz wytworzone sposobem według wynalazku są przeznaczone do katalizy reakcji estryfikacji w środowisku rozpuszczalników organicznych, korzystnie sacharydów i kwasów tłuszczowych, alkoholi i kwasów tłuszczowych oraz do hydrolizy estrów w środowisku wodnym. Sposób według wynalazku ilustrują bliżej podane niżej przykłady.
P r z y k ł a d I.
Do 100 ml 2,7% roztworu chitozanu o masie cząsteczkowej 45800 kD, stopniu deacetylacji 77,6% i wilgotności 12,8%, w 1,2% kwasie octowym dodano 2,5 g lipazy Mucor circinelloides immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych, w postaci odwodnionego i rozdrobnionego mycelium i całość mieszano do osiągnięcia jednorodnej mieszaniny, którą następnie odpowietrzano pod próżnią w czasie 25 minut. Otrzymaną mieszaninę lipaza-chitozan wkroplono do 5% roztworu heksametapolifosforanu w buforze Tris-HCl o pH 7,0 i inkubowano w czasie 75 minut. Wytworzony preparat lipazy w postaci kulek przemyto 3-razy acetonem i pozostawiano do wysuszenia w temperaturze pokojowej. Preparat immobilizowanej lipazy przechowywano w zamkniętych naczyniach w temperaturze 4°C.
P r z y k ł a d II.
Do 100 ml 4,5% roztworu chitozanu o masie cząsteczkowej 45800 kD, stopniu deacetylacji 77,6% i wilgotności 12,8%, w 1,8% kwasie octowym dodano dodawano 5% poliwinylopirolidonu i 4,5 g lipazy Mucor circinelloides immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych, w postaci odwodnionego i rozdrobnionego mycelium. Całość mieszano do osiągnięcia jednorodnej mieszaniny, którą następnie odpowietrzano pod próżnią w czasie 45 minut. Wytworzoną mieszaninę lipaza-chitozan wkraplano do
PL 204 826 B1
5% roztworu heksametapolifosforanu w buforze Tris-HCl o pH 7,0 i inkubowano w czasie 75 minut. Otrzymano preparat lipazy w postaci kulek. Dalej postępowano jak w przykładzie 1.
P r z y k ł a d III.
Do 100 ml 4,5% roztworu chitozanu o masie cząsteczkowej 45800, stopniu deacetylacji 77,6% i wilgotno ś ci 12,8%, w 1,8% kwasie mlekowym dodano 1,2 g alkoholu poliwinylowego o masie czą steczkowej 72000 kD, stopniu polimeryzacji 1600 i stopniu deacetylacji 97,5-99,5% oraz 4,5 g lipazy Mucor circinelloides immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych, w postaci odwodnionego i rozdrobnionego mycelium. Całość mieszano do osiągnięcia jednorodnej mieszaniny, którą następnie odpowietrzano pod próżnią w czasie 45 minut. Wytworzoną mieszaninę lipaza-chitozan wkraplano do 5% roztworu tripolifosforanu w buforze Tris-HCl o pH 7,0 i inkubowano w czasie 240 minut. Otrzymano preparat lipazy w postaci kulek. Dalej postępowano jak w przykładzie 1.
P r z y k ł a d IV.
Do 40 ml 25% roztworu żelatyny w buforze octanowym o pH 5 dodano 2,5 g alginianu sodu, 60 ml glicerolu i 2 g lipazy w postaci odwodnionego i rozdrobnionego mycelium lipazy Mucor circinelloides immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych. Całość mieszano do osiągnięcia jednorodnej mieszaniny, którą odpowietrzano pod próżnią w czasie 15 minut. Wytworzoną mieszaninę wstrzykiwano do 250 ml 1% aldehydu glutarowego, zawierającego 20 mM CaCl2 i inkubowano w czasie 1 godziny w temperaturze 25°C. Wytworzony preparat lipazy, w postaci nitek o średnicy 3 mm, przemyto wodą, liofilizowano i przechowywano w temperaturze 4°C.
P r z y k ł a d V.
Do 100 ml 14% roztworu alkoholu poliwinylowego o masie cząsteczkowej 72000 kD, stopniu polimeryzacji 1600 i stopniu deacetylacji 97,5-99,5%, w wodzie destylowanej dodano 2 g lipazy Mucor circinelloides immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych, w postaci odwodnionego i rozdrobnionego mycelium i całość mieszano do osiągnięcia jednorodnej mieszaniny. Wytworzoną mieszaninę odpowietrzano pod próżnią w czasie 45 minut, wkraplano do oleju rzepakowego schłodzonego do temperatury 0°C i inkubowano w temperaturze -20°C w czasie 10 godzin. Następnie uformowany w postaci kulek preparat lipazy ogrzewano do temperatury 25°C i ponownie zamraż ano do temperatury -20°C. Czynność tę powtarzano trzykrotnie. Kuleczki preparatu przemyto następnie wodą z dodatkiem 0,1% tritonu X-100 i dalej postępowano jak w przykładzie 1.
P r z y k ł a d VI.
ml 4,5% roztworu chitozanu o masie cząsteczkowej 45800 kD, stopniu deacetylacji 77,6% i wilgotności 12,8%, w 1,8% kwasie octowym zmieszano z 20 ml 25% roztworu ż elatyny napęczniałej w wodzie i dodano 4,5 g lipazy Mucor circinelloides immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych, w postaci odwodnionego i rozdrobnionego mycelium. Całość mieszano do osiągnięcia jednorodnej mieszaniny, którą następnie odpowietrzano pod próżnią w czasie 45 minut. Otrzymaną mieszaninę lipaza-chitozan-żelatyna wkraplano do 5% roztworu heksametapolifosforanu w buforze Tris-HCl o pH 7,0 i inkubowano w czasie 75 minut. Wytworzony preparat lipazy, w postaci kulek, sieciowano 1% roztworem aldehydu glutarowego, przemyto 1% glicyną, odwodniono przemywając 3-razy acetonem i liofilizowano. Preparat immobilizowanej lipazy przechowywano w zamkniętych naczyniach w temperaturze 4°C.
Claims (10)
1. Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides, w drodze zmieszania immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych lipazy z roztworem polimeru, korzystnie chitozanu, żelatyny, alkoholu poliwinylowego lub ich mieszaniny, w buforze oraz umieszczenia mieszaniny polimeru i lipazy w roztworze koagulującym, znamienny tym, że immobilizacji poddaje się lipazę w postaci odwodnionego i rozdrobnionego do wielko ś ci drobin 3-10 μ m mycelium, którą miesza się z roztworem polimeru w kwasie octowym lub mlekowym, wzbogaconym korzystnie gliceryną lub poliwinylopirolidonem dodanymi w ilości 1-12% w stosunku do masy całej mieszaniny, ewentualnie zawierającym zagęszczacz, stosując 1-10% lipazy w stosunku do masy polimeru, po czym otrzymaną, jednorodną mieszaninę odpowietrza się pod próżnią w czasie 15-45 minut, wkrapla się do roztworu koagulującego i inkubuje w temperaturze pokojowej w czasie 60-360 minut, po czym otrzymany w wyniku inkubacji preparat lipazy, w postaci kulek o wymiarach 1-4 mm lub nitek o średnicy 1-5 mm, odwadnia się acetonem lub liofilizuje i przechowuje w zamkniętych naczyniach w temperaturze 4°C.
PL 204 826 B1
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się chitozan o masie cząsteczkowej 10000-70000 kD, stopniu deacetylacji 20-90% i wilgotności 9-14%.
3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, ż e stosuje się alkohol poliwinylowy o masie cząsteczkowej 20000-80000 kD.
4. Sposób wedł ug zastrz. 1, znamienny tym, ż e jako roztwór koagulują cy stosuje się 1-10% roztwór tripolifosforanu lub heksametapolifosforanu w buforze o pH 5-8.
5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako roztwór koagulujący stosuje się 0,1-5% roztwór aldehydu glutarowego w buforze o pH 5-8, zawierający 0,05-5% CaCl2.
6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, ż e jako zagęszczacz używa się poliwinylopirolidon lub alginian sodowy.
7. Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides, w drodze zmieszania immobilizowanej in situ w strukturach komórkowych lipazy z roztworem polimeru, korzystnie chitozanu, żelatyny, alkoholu poliwinylowego lub ich mieszaniny, w buforze oraz umieszczenia mieszaniny polimeru i lipazy w roztworze koagulującym w postaci oleju rzepakowego, znamienny tym, że immobilizacji poddaje się lipazę w postaci odwodnionego i rozdrobnionego do wielkości drobin 3-10 μm mycelium, którą miesza się z roztworem polimeru w kwasie octowym lub mlekowym, wzbogaconymi korzystnie gliceryną lub poliwinylopirolidonem dodanymi w ilości 1-12% w stosunku do masy całej mieszaniny, ewentualnie zawierającym zagęszczacz, stosując 1-10% lipazy w stosunku do masy polimeru, po czym otrzymaną, jednorodną mieszaninę odpowietrza się pod próżnią w czasie 15-45 minut, odpowietrzoną mieszaninę wkrapla się do oleju rzepakowego schłodzonego do temperatury od -40°C do -15°C i inkubuje w czasie 5-48 godzin, po czym otrzymany preparat ogrzewa do temperatury 25°C i ponownie zamraża do temperatury od -40°C do -15°C, powtarzając czynności zamrażania i ogrzewania 2-5-krotnie, następnie preparat przemywa się, odwadnia acetonem lub liofilizuje i przechowuje w zamkniętych naczyniach w temperaturze 4°C.
8. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się chitozan o masie cząsteczkowej 10000-70000 kD, stopniu deacetylacji 20-90% i wilgotności 9-14%.
9. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się alkohol poliwinylowy o masie cząsteczkowej 20000-80000 kD.
10. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako zagęszczacz używa się poliwinylopirolidon lub alginian sodowy.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PL366414A PL204826B1 (pl) | 2004-03-18 | 2004-03-18 | Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PL366414A PL204826B1 (pl) | 2004-03-18 | 2004-03-18 | Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
PL366414A1 PL366414A1 (pl) | 2005-09-19 |
PL204826B1 true PL204826B1 (pl) | 2010-02-26 |
Family
ID=36645415
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL366414A PL204826B1 (pl) | 2004-03-18 | 2004-03-18 | Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
PL (1) | PL204826B1 (pl) |
-
2004
- 2004-03-18 PL PL366414A patent/PL204826B1/pl unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
PL366414A1 (pl) | 2005-09-19 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN102210659B (zh) | 一种双歧杆菌微胶囊及其制备方法 | |
CN103224926B (zh) | 一种制备固定化脂肪酶的方法 | |
EP2783008B1 (en) | Methods for the preparation of hydrogels using lipase enzymes | |
KR920009499B1 (ko) | Pva-겔에 의해 고정된 효소를 함유하는 다공성 물질의 제조방법 | |
Alloue et al. | Comparison of Yarrowia lipolytica lipase immobilization yield of entrapment, adsorption, and covalent bond techniques | |
US8110386B2 (en) | Lipase powder, methods for producing the same and use thereof | |
Hsu et al. | Immobilization of lipoxygenase in an alginate-silicate solgel matrix: formation of fatty acid hydroperoxides | |
JP2678341B2 (ja) | 固定化リパーゼ | |
TW200848513A (en) | Lipase powder preparation, method of preparing the same and use thereof | |
PL204826B1 (pl) | Sposób immobilizacji lipazy Mucor circinelloides | |
PL204909B1 (pl) | Sposób immobilizacji lipazy Mucor racemosus | |
Stolarzewicz et al. | Study on the properties of immobilized biocatalysts with lipase activity produced by Yarrowia lipolytica in batch culture | |
Flink et al. | A novel method for immobilization of yeast cells in alginate gels of various shapes by internal liberation of Ca-ions | |
EP1734115A1 (en) | 1,3-specific lipase powder, method of producing the same and utilization of the same | |
JP2002526070A (ja) | 酵素のマイクロビーズ固定化方法 | |
US20120171736A1 (en) | Powdery lipase preparation and use thereof | |
CN104928279B (zh) | 无载体固定化米根霉脂肪酶及其制备方法和生产生物柴油的应用 | |
Panajotova et al. | Immobilization of lipase produced by Rhizopus arrhizus on chitosan coated polygalacturonic acid beads. | |
Sawangpanya et al. | Immobilization of lipase on CaCO3 and entrapment in calcium alginate bead for biodiesel production | |
US5010006A (en) | Lipase immdoilized by cross-linking with inert protein for glyceride synthesis | |
JP4061415B2 (ja) | 固定化用担体、固定化酵素製剤及びその製造方法 | |
CN114317700A (zh) | 荧光pcr试剂冻干保护剂、冻干方法及应用 | |
Yi et al. | Optimization of tetramethoxysilane-derived sol gel entrapment protocol stabilizes highly active chlorophyllase | |
Ray | Purification and immobilization of human carbonic anhydrase B by using polyacrylamide gel | |
Tercan | Immobilization of thermophilic recombinant esterase enzyme by microencapsulation in alginate-chitosan/CaCI2 polyelectrolyte beads |