PL106776B1 - Srodek hamujacy wzrost wirusow u roslin - Google Patents

Srodek hamujacy wzrost wirusow u roslin Download PDF

Info

Publication number
PL106776B1
PL106776B1 PL19392976A PL19392976A PL106776B1 PL 106776 B1 PL106776 B1 PL 106776B1 PL 19392976 A PL19392976 A PL 19392976A PL 19392976 A PL19392976 A PL 19392976A PL 106776 B1 PL106776 B1 PL 106776B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
virus
copolymer
carbon atoms
plants
maleic anhydride
Prior art date
Application number
PL19392976A
Other languages
English (en)
Other versions
PL193929A1 (pl
Inventor
David S Breslow
Arthur A Chadwick
Original Assignee
Hercules Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hercules Inc filed Critical Hercules Inc
Priority to PL19392976A priority Critical patent/PL106776B1/pl
Publication of PL193929A1 publication Critical patent/PL193929A1/pl
Publication of PL106776B1 publication Critical patent/PL106776B1/pl

Links

Landscapes

  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest srodek hamujacy wzrost wirusów u roslin pozwalajacy na zapobie¬ ganie, hamowanie lub opóznianie zakazen wywo¬ lywanych rozmnazaniem sie wirusów w roslinach.Szkodliwe dzialanie wirusów na rozmaite rosliny jest znane i notowane od prawie stu lat. Wszyst¬ kie rodzaje roslin, zarówno ozdobnych jak i uzyt¬ kowych, w tym rosliny jednoroczne, dwuletnie, trwale i drzewa, ulegaja zakazeniom wirusowym.W niektórych przypadkach to szkodliwe dzialanie jest powazne i powoduje duze straty.Chociaz straty wywolywane zakazeniami wiruso¬ wymi sa powazne, stosuje sie zaledwie kilka rze¬ czywiscie skutecznych srodków do zwalczania wi¬ rusów. Dotychczas niemal jedynymi dostepnymi zabiegami bylo odymianie gleby oraz ogrzewanie i niszczenie zakazonych roslin.Przedmiotem wynalazku jest srodek hamujacy wzrost wirusów u roslin zawierajacy jako substan¬ cje czynna kopolimery kwasu maleinowego, bez¬ wodnika maleinowego lub kwasu fumarowego, za¬ pobiegajacy lub hamujacy wzrost wirusa, a wiec zapewniajacy ochrone roslin narazonych na dziala¬ nie wirusów.Stwierdzono, ze pewne szczególne kopolimery kwasu maleinowego, bezwodnika maleinowego lub kwasu fumarowego oraz ich pólamidy albo nietok¬ syczne dla roslin sole pólamidów, a takze czescio¬ we lub calkowicie zhydrolizowane estry i ich nie- 10 15 20 25 30 2 toksyczne dla roslin sole, hamuja wzrost wirusów w roslinach, a zatem stanowia substancje czynna srodka hamujacego wzrost wirusów u roslin.Kopolimerami uzytecznymi jako substancja czynna srodka wedlug wynalazku sa kopolimery ,kwasu maleinowego, bezwodnika maleinowego i kwasu fumarowego z eterem dwuwinylowym, estrami allilowym! jednokarboksylowych kwasów alifatycznych o 1—17 atomach wegla w lancuchu alifatycznym i olefinami o wzorze ogólnym CH2=C(R)-R*, w którym R oznacza atom wodoru, grupe alkilowa o 1—18 atomach wegla, jedno- lub dwupierscieniowa grupe arylowa, jedno- lub dwu¬ pierscieniowa grupe arylowa podstawiona grupa alkilowa o 1—12 atomach wegla, grupe cykloalki- lowa o 3—12 atomach wegla lub wymienione grupy podstawione atomem chloru, bromu lub fluoru, a R' oznacza grupe alkilowa o 1—18 atomach wegla, jedno- lub dwupierscieniowa grupe arylowa, jedno- lub dwupierscieniowa grupe arylowa pod¬ stawiona grupa alkilowa o 1—12 atomach wegla, grupe cykloalkilowa o 3—12 atomach wegla lub wymienione grupy podstawione atomem chloru, bromu lub fluoru, przy czym R i R' zawieraja lacznie nie wiecej niz 18 atomów wegla lub pól¬ amidy, nietoksyczne dla roslin sole pólamidów, czesciowo lub calkowicie zhydrolizowane estry i ich nietoksyczne dla roslin sole, najbardziej ko¬ rzystnie sole sodowe, potasowe, litowe i amoniowe. 106 776106 776 Do typowych kopolimerów kwasu maleinowego, bezwodnika maleinowego i kwasu fumarowego, uzytecznych jako substancje czynne srodka wedlug wynalazku, naleza m.in. kopolimer eteru dwuwiny- lowego i bezwodnika maleinowego, pólamid kopo¬ limeru eteru dwuwinylowego i bezwodnika male¬ inowego, czesciowo zhydrolizowany kopolimer kwa¬ su dwuwinylowego i fumaranu dwuetylu, kopoli¬ mer octanu allilu i bezwodnika maleinowego, ko¬ polimer propionianu allilu i bezwodnika maleino¬ wego, kopolimer maslanu allilu i bezwodnika ma¬ leinowego, kopolimer izomaslanu allilu i bezwod¬ nika maleinowego, kopolimer trójmetylooctanu allilu i bezwodnika maleinowego, kopolimer pen- tanokarboksylanu allilu i bezwodnika maleinowego, kopolimer 2-etyLokapronianu allilu i bezwodnika maleinowego, kopolimer laurynianu allilu i bez¬ wodnika maleinowego, kopolimer palmitynianu allilu i bezwodnika maleinowego, kopolimer stearynianu allilu i bezwodnika maleinowego, sól sodowa ko¬ polimeru propionianu allilu i bezwodnika maleino¬ wego, pólamid kopolimeru octanu allilu i kwasu fumarowego, kopolimer styrenu i bezwodnika ma¬ leinowego, zhydrolizowany kopolimer winylotolu- enu i maleinianu dwumetylu, kopolimer 4-III- -rzed.-butylostyremi i bezwodnika maleinowego, zhydrolizowany polimer 2,4,6-trójmetylostyrenu i fumaranu dwubutylu, sól sodowa kopolimeru kwasu etylofumarowego i styrenu, kopolimer 2,3,5,6-czterometylostyrenu i bezwodnika maleino¬ wego, czesciowo zhydrolizowany kopolimer chloro- styrenu i fumaranu dwumetylu, zhydrolizowany kopolimer fumaranu dwumetylu i izobutylenu, ko¬ polimer a-metylostyrenu i bezwodnika maleino¬ wego, kopolimer a, p-dwumetylostyrenu i bezwod¬ nika maleinowego, kopolimer propylenu i bezwod¬ nika maleinowego, kopolimer izobutylenu i bez¬ wodnika maleinowego, kopolimer dwuizobutylenu i bezwodnika maleinowego, zhydrolizowany kopoli¬ mer p-bromostyrenu i dwu-(2-etyloheksylo)fuma¬ ranu, czesciowo zhydrolizowany kopolimer m-flu- orostyrenu i maleinianu dwuetylu, kopolimer p-(2,4,4-trójmetylo-2-pentylo)-styrenu i bezwodnika maleinowego, sól potasowa kopolimeru 1-oktade- cenu i kwasu maleinowego, kopolimer 2-winylo- naftalenu i bezwodnika maleinowego, kopolimer winylocyklobutanu i bezwodnika maleinowego, kopolimer winylocyklopentanu i bezwodnika male¬ inowego, zhydrolizowany kopolimer winylocyklo- heptamu i fumarainu dwumetylu, kopolimer winylo- cykloseksanu i bezwodnika maleinowego, sól so¬ dowa pólamidu kopolimeru winylocyklooktanu i bezwodnika maleinowego, kopolimer winylocyklo- nonanu i bezwodnika maleinowego, kopolimer wi- nylocyklodekanu i bezwodnika maleinowego, ko¬ polimer izopropenylocykloheksanu i bezwodnika maleinowego, kopolimer mieszaniny a-olefin o 6—9 atomach wegla i bezwodnika maleinowego i po¬ dobne.Chociaz wszystkie przedstawione wyzej kopoli¬ mery dzialaja hamujaco na wzrost wirusów roslin, to jednak korzystne sa jako substancje czynne srodka wedlug wynalazku kopolimery o srednim ciezarze czasteczkowym 1000—500 000, a najbar- 10 15 30 35 40 45 50 55 60 dziej korzystne o ciezarze czasteczkowym 1000— 100 000.Kopolimery mozna byloby stosowac bezposrednio na liscie, ale w praktyce rozciencza sie je obojet¬ nym nosnikiem, cieklym lub stalym i stosuje sie w postaci srodka hamujacego wzrost. Mozna sto¬ sowac np. wodne roztwory, zawiesiny, emulsje, hygroskopijne proszki lub preparaty, w których kopolimer jest zmieszany badz ze stalym rozcien¬ czalnikiem badz osadzony na stalym nosniku.Stezenie kopolimeru w preparacie zalezy od ro¬ dzaju kopolimeru, rosliny i rodzaju wirusa. Ste¬ zenie kopolimeru powinno jednak wynosic co naj¬ mniej od okolo 500 ppm do okolo 15%, korzystnie od co najmniej 4500 ppm do okolo 10% w stosunku do wagi nosnika.Srodek wedlug wynalazku mozna stosowac na liscie roslin wieloma sposobami, takimi jak oprys¬ kiwanie roslin wodnym roztworem, zawiesina lub emulsja, w ilosci co najmniej wystarczajacej do zahamowania wzrostu wirusa. Do innych metod stosowania srodka nalezy zanurzenie, w przypadku roslin doniczkowych, opylanie zawiesina kopoli¬ meru w obojetnym proszku, zawieszanie malych czastek kopolimeru w strumieniu powietrza lub innego gazu i nastepnie opryskiwanie roslin taka zawiesina lub skraplanie roslin kopolimerem w postaci stezonej lub sproszkowanej. Chociaz kopo¬ limery dzialaja skutecznie w podanych wyzej nizszych stezeniach, mozna jest stosowac w ste¬ zeniach wiekszych, ale utrzymanych ponizej po¬ ziomu, przy którym nastepuje fitotoksyczne uszko¬ dzenie roslin.Sposób stosowania srodka wedlug wynalazku ha¬ mujacego wzrost wirusów u poszczególnych grup roslin, jest dla fachowców oczywisty. Przykla¬ dowo, sadzonki pomidorów sa narazone na zaka¬ zenie podczas przenoszenia, np. podczas przesa¬ dzania. Dlatego tez sadzonki pomidorów nalezy chronic poddajac dzialaniu srodka, przed lub bez¬ posrednio p° przesadzeniu. W wielu przypadkach wirus jest przenoszony przez owady i wtedy ros¬ liny narozone na atak owadów i zakazenie wiru¬ sowe nalezy chronic w okresie najwiekszej aktyw¬ nosci owadów. Rosliny poddane dzialaniu srodka nabywaja odpornosci na zakazenie wirusowe w okresie jednego tygodnia lub dluzszym.Poniewaz wiele kopolimerów jest rozpuszczal¬ nych w wodzie po zhydrolizowaniu, niepotrzebny jest dodatek srodków rozpraszajacych, chociaz dla uzyskania najwiekszej skutecznosci pozadany jest dodatek srodków zwilzajacych. Jesli kopolimer zle sie rozpuszcza w wodzie, dla uzyskania zawie¬ siny moze byc niezbedny dodatek srodka emulgu¬ jacego. Typowe, dopuszczone do stosowania emul¬ gatory sa podane w spisie opublikowanym w Biu¬ letynie nr E 607 Ministerstwa Rolnictwa Stanów Zjednoczonych.Srodek wedlug wynalazku mozna takze jak wspomniano stosowac w postaci roztworów lub za- 65 wiesin w rozpuszczalnikach organicznych nie wy-106 776 6 kazujacych fitotoksycznosci. Roztwory kopolimerów w rozpuszczalnikach organicznych moga byc emul¬ gowane woda. Jak wspomniano uprzednio, kopoli¬ mery mozna stosowac w postaci mieszaniny z obo¬ jetnymi nosnikami takimi jak talk, bentonit, ziemia okrzemkowa, stracony tlenek krzemu i podobne.Srodek wedlug wynalazku mozna stosowac do hamowania wzrostu dowolnego z wirusów roslin, przenoszonych przez osady lub nicienie, a takze przenoszonych mechanicznie podczas transportu, ciecia i podobnych operacji. W niniejszym opisie wirusy roslin podzielono na 16 grup zgodnie z kla¬ syfikacja podana w „Matthews Standard Text, Plant Yorology", Academic Press Incorporated, New York, 1970. Poszczególne rodzaje wirusów w kazdej grupie sa reprezentowane przez jeden typowy wirus nazywany „typowym przedstawi¬ cielem".Typowym przedstawicielem grupy 1 jest wirus smugowatosci tytoniu, ponadto do tej grupy nalezy wirus wczesnego brunatnienia grochu. Grupe 2 reprezentuje wirus mozaiki tytoniu, a ponadto do niej nalezy wirus zielonej mozaiki ogórka, wirus pierscieniowej plamistosci jezatki, wirus mozai¬ kowy babki, wirus opuncji Sammona, wirus mozaiki konopi, wirus mozaiki pomidora itd.Przedstawicielem grupy 3 jest wirus X ziemniaka, a poza tym do grupy tej nalezy wirus zóltej mo¬ zaiki koniczyny, wirus pierscieniowej plamistosci hortensji, wirus mozaiki bialej koniczyny itd.Typowym przedstawicielem grupy 4 jest wirus latentny gozdzika, ponadto nalezy do tej grupy wirus 2 kaktusa, wirus B chryzantemy, wirus la¬ tentny meczennicy, wirus nostrzyka, wirus M ziem¬ niaka, wirus S ziemniaka, wirus mozaiki zylkowej koniczyny itd.Grupe 5 reprezentuje wirus Y ziemniaka oraz wirus zwyklej mozaiki grochu, wirus zóltej mo¬ zaiki fasoli, wirus mozaiki buraka, wirus zóltaczki zylkowej koniczyny, wirus mozaiki grochu przeno¬ szonej przez mszyce, wirus bielunia kolumbijskiego, wirus mozaiki lulka czarnego, wirus mozaiki grochu, wirus A ziemniaka, wirus mozaiki soi, wirusy zóltaczki buraka cukrowego, wirus mozaiki trzciny cukrowej, wirus nadzerki tytoniu, wirus mozaiki. arbuza (poludniowo-afrykanski) itd.Typowym przedstawicielem grupy 6 jest wirus lucerny. Grupe 7 reprezentuje wirus ostrej mozaiki groszku. Typowym przedstawicielem grupy 8 jest wirus mozaiki ogórka (typ S), ponadto do tej grupy nalezy wirus aspermii pomidora, wirus mozaiki zóltej ogórka i podobne. Grupe 9 reprezentuje wirus zóltej pierscieniowatej plamistosci rzepy oraz wirus zóltej mozaiki kakao, wirus mozaiki dzikiego ogórka, wirus latentny ziemniaka andyjskiego, wirus plamistosci porzyku wilczej jagody, wirus plamistosci dulcamara, wirus mozaikowy bakla¬ zana, wirus zóltej karlowatosci cebuli i podobne.Typowym przedstawicielem grupy 10 jest wirus mozaiki grochu krowiego (typ SB), a ponadto wirus plamistosci straków grochu, wirus mozaiki rzodkwi, wirus plamistosci czerwonej koniczyny, wirus mo¬ zaiki dyni i inne. Grupa 11 jest reprezentowana przez wirusa pierscieniowej plamistosci tytoniu, a ponadto nalezy do niej wirus mozaiki gesiówki, 5 wirus krzaczastosci winorosli, wirus pierscieniowej plamistosci truskawki, wirus czarnej pierscienio- watosci pomidora, wirus pierscieniowej plamistosci pomidora i inne. Typowym przedstawicielem gru¬ py 12 jest wirus nerkozy tytoniu (szczep A), a po- ip nadto wirus nerkozy tytoniu szczep D. Reprezen¬ tantem grupy 13 jest wirus mozaiki stoklosy, poza tym do grupy tej nalezy wirus pstrej mozaiki bobu, wirus mozaiki chlorotycznej grochu i inne. Gru¬ pe 14 reprezentuje wirus krzaczastej karlowatosci 15 pomidora, a ponadto nalezy do niej wirus mozaiki kedzierzawki karczocha, wirus pierscieniowej pla¬ mistosci gozdzika ogrodowego, wirus zóltej pla¬ mistosci pelargonii, wirus mozaiki petunii i inne.Typowym przedstawicielem grupy 15 jest wirus 26 brazowej plamistosci pomidora. Wreszcie, grupe 16 reprezentuje wirus mozaiki kalafiora (typ B) lub wirus mozaiki dalii.Srodek wedlug wynalazku moina ponadto wy- 25 korzystywac do hamowania wzrostu dowolnych wiroidów roslinnych, takich jak wiroid chlorotycz¬ nej mozaiki chryzantemy, wiroid wrzecionowatosci bulw ziemniaka, wiroid karlowatosci chryzantemy, wiroid chropowacenia skórki cytrusów i inne. 30 Srodek wedlug wynalazku jest zilustrowany na¬ stepujacymi przykladami Jesli nie podano inaczej, wszystkie czesci i procenty sa wielkosciami wago¬ wymi 35 40 Przyklad I—V. W celu oznaczenia efektu dzialania róznych kopolimerów na zakazenia wiru¬ sowe roslin, badano miejscowe uszkodzenia wywo¬ lywane wirusem pierscieniowej plamistosci tytoniu (TRSV). Badaniom poddawano 9—14 dniowe sa¬ dzonki grochu krowiego (Vigna sinensis) o jedna¬ kowej wielkosci. W kazdym przypadku pierwsze liscie spryskiwano az do splywania roztworem ko¬ polimeru o stezeniu 10.000 ppm i wartosci pH wy¬ noszacej 7. Sadzonki podlewano dopiero po zaka¬ zeniu wirusem TRSV. ¦ i ¦ Inokulum przygotowywano ucierajac w mozdzie¬ rzu tkanki ogórka zakazonego wirusem TRSV z 4 objetosciami 0,05 molarnego buforu forforanowego o wartosci pH 7,0—7,2. Po uplywie 24 godzin od spryskania kopolimerem, pierwsze liscie opylano karborundem o granulacji 600 mesh i zakazono.Inokulum nanoszono za pomoca pedzla w odleg¬ losci 2,5 cm, stosujac jedno pociagniecie na pojtówke liscia. Po uplywie okolo 10 minut po zakazeniu wi¬ rusem, liscie zwilzano woda wodociagowa. W po¬ dobny sposób postepowano z roslinami kontrolny¬ mi, nie stosujac jednak w tym przypadku kopoli- meru. Po uplywie 3—6 dni od zakazenia zliczano uszkodzenia. Wyniki sa srednia z grup kontrolnych i doswiadczalnych i zostaly przedstawione jako procent zmniejszenia uszkodzen. Stosowany kopo¬ limer i odpowiednie wartosci procentowe zmniej- w szenia podano w tablicy I. 50 88106 776 8 Tablica I Przyklad I II III IV V Kopolimer eter dwuwinylowy- -bezwodnik male¬ inowy1 eter dwuwinylowy- -bezwodnik male¬ inowy2 a-olefina-bezwodnik maleinowy8 styrein-bezwodnik ma¬ leinowy4 dwuizobutylen-bez- wodnik maleinowy 8 % zmniej¬ szenia 97 84 78 89 99 1 Uwagi: 1) Kopolimer wytwarzany z eteru dwuwinylo¬ wego i bezwodnika maleinowego, uzytych w sto¬ sunku molowym 1 : 2, sredni ciezar czasteczkowy 1900. 2) Kopolimer wytwarzany z eteru dwuwinylo¬ wego i bezwodnika maleinowego, uzytych w sto¬ sunku molarnym 1:2, sredni ciezar czasteczko¬ wy 17.000. 3) Kopolimer wytwarzany z mieszaniny a-olefin o 6—9 atomach wegla i 'bezwodnika maleinowego, uzytych w stosunku molowym okolo 1:1, o tempe¬ raturze miekniecia (odrywania sie kropli) wynosza¬ cej 180°a 4) Produkt handlowy wytwarzany ze styrenu i bezwodnika maleinowego, uzytych w stosunku mo¬ lowym 1:1 i sprzedawanym pod nazwa firmowa zywica SMA 1000 A. 5) Produkt handlowy sprzedawany pod nazwa firmowa Tamol 731 przez firme Rohm and Haas Company.Przyklady te ilustruja efekt dzialania róznych kopolimerów na wzrost wirusa mozaiki lucerny siewnej.Badania przeprowadzono na sadzonkach grochu krowiego, przygotowujac inokulum z zakazonych tkanek ogórka, w sposób opisany w przykladach I—V. Stasowane kopolimery i wartosci procentowe zmniejszenia uszkodzen przedstawiono w tablicy II.T a b 1 i c a II przyklady VI VII VIII ¦ Kopolimer Eter dwuwinylowy- -bezwodnik male¬ inowy6 Styren-bezwodnik ma- leinow7 Dwuizobutylen-bez- wódnik maleinowy8 °/o zmniej¬ szenia 90 98 97 Uwagi: 1) Kopolimer opisany w przykladzie I. 2) Kopolimer opisany w przykladzie IV. 3) Kopolimer opisany w przykgladzie V. 10 15 20 25 30 35 Przyklad IX i X. Przyklady ilustruja efekt dzialania róznych kopolimerów na wzrost wirusa mozaiki tytoniu.Badania przeprowadzono w taki sam sposób jak opisany w przykladach I—V, z tym, ze stosowano sadzonki fasoli zwyklej (Phasoelus vulgaris) i za¬ kazono je inokulum sporzadzonym z tkanek pomi¬ dora porazonych wirusem mozaiki tytoniu. Stoso¬ wane kopolimery i wartosci procentowe zmniej¬ szania uszkodzen przedstawiono w tablicy III.Tablica III 45 50 55 Przyklady IX X Kopolimer Eter dwuwinylowy- -bezwodnik malei¬ nowy9 Styren-bezwodnik maleinowy10 % zmniej¬ szenia 90 97 Uwagi: 9) Kopolimer opisany w przykladzie I. 10) Kopolimer opisany w przykladzie IV.Przyklady XI—XIII. Przyklady te ilustruja efekt dzialania róznych kopolimerów na wzrost wirusa pierscieniowej plamistosci pomidora. Bada¬ nia przeprowadzono na sadzonkach grochu kro¬ wiego, stosujac inokulum sporzadzone z zakazo¬ nych tkanek ogórka, w sposób opisany w przy¬ kladach I—V. Stosowane kopolimery i wartosci procentowe zmniejszenia uszkodzen podano w tab¬ licy IV.Tablica IV Przyklady XI XII XIII Kopolimer Eter dwuwinylowy- -bezwodnik male¬ inowy11 Styren-bezwodnik ma¬ leinowy12 Dwuizobutylen-bez- wodnik maleinowy18 % zmniej- 1 szenia 88 67 90 Uwagi: 11) Kopolimer opisany w przykladzie I. 12) Kopolimer opisany w przykladzie IV. 13) Kopolimer opisany w przykladzie V.Przyklady XIV—XIX. Przyklady ilustruja efekt dzialania kopolimeru eteru dwuwinylowego i bezwodnika maleinowego, opisanego w przykla¬ dzie I, w róznych stezeniach, na wzrost wirusa mozaiki tytoniu.Badania przeprowadzono w sposób opisany w przykladach IX i X z tym, ze w kazdym z przykla¬ dów grupe sadzonej fasoli zwyklej poddawano dzialaniu roztworów wodnych o róznych stezeniach kopolimeru estru dwuwinylowego i bezwodnika9 106 776 10 maleinowego. Poszczególne stezenia i uzyskane wartosci procentowe zmniejszania uszkodzen po¬ dano w tablicy V.Przyklady XIV XV XVI XVII XVIII XIX Tablica V Stezenie 500 ppm 1000 ppm 2500 ppm 5000 ppm 10000 ppm 5% % zmniej¬ szenia 27,5 25,0 31,0 62,0 79,0 | 85,0 Przyklady XX—XXII. Przyklady te ilustru¬ ja dzialanie kopolimerów na rosliny uprzednio za¬ kazone wirusem.Badania prowadzone w sposób taki sam, jak opi¬ sany w przykladach I^-V z tym, ze sadzonki grochu krowiego najpierw zakazono wirusem pierscienio¬ wej plamistosci tytoniu a pózniej spryskiwano wodnym roztworem kopolimeru eteru dwuwinylo¬ wego i bezwodnika maleinowego o stezeniu 10 000 ppm, opisanego w przykladzie I. W tablicy VI podano czas spryskiwania po zakazeniu sadzonek oraz wartosc procentowa zmniejszenia uszkodzen.Tablica VI Przyklad XX XXI XXII Ilosc godzin po zakazeniu zmniejszenia 2 6 12 59 50 52 Przyklad XXIII. Przyklad ten ilustruje dzia¬ lanie systemiczne kopolimerów na wzrost wirusów roslin.Badania prowadzono w sposób opisany w przy¬ kladach I—V z tym, ze dolna strone pierwszych lisci sadzonek grochu krowiego traktowano wod¬ nym roztworem kopolimeru eteru dwuwinylo¬ wego i bezwodnika maleinowego o stezeniu 10 000 ppm opisanego w przykladzie I, i po uply¬ wie 24 godzin zakazono wirusem pierscieniowej plamistosci tytoniu, przeprowadzajac te operacje na górnej powierzchni lisci. Zaobserwowano 38% zmniejszenia ilosci uszkodzen w stosunku do grupy kontrolnej.Przyklad XXIV. Przyklad ten ilustruje dzia¬ lanie systemiczne kopolimerów na wzrost wirusów roslin.Badania prowadzono w sposób opisany w przy¬ kladach I—V z tym, ze tylko na jeden z pierwszych lisci dzialano wodnym roztworem o stezeniu 10 000 ppm kopolimeru eteru dwuwinylowego i bezwodnika maleinowego, opisanego w przykla¬ dzie I, a nastepnie po uplywie 24 godzin przeciwny pierwszy lisc zakazono wirusem pierscieniowej pla- 10 ii 20 40 45 50 mistosci tytoniu. Uzyskano okolo 20% zmniejszenie ilosci uszkodzen w stosunku do grupy kontrolnej.Przyklad XXV. Przyklad ten ilustruje dzia¬ lanie systemiczne kopolimerów na wzrost wirusów roslin.Badania prowadzono w sposób opisany w przy¬ kladach I—V z tym, ze jedynie odlegla polowe górnej powierzchni pierwszych lisci sadzonek gro¬ chu krowiego poddaje sie dzialaniu wodnego roz¬ tworu kopolimeru eteru dwuwinylowego i bezwod¬ nika maleinowego o stezeniu 10 000 ppm, opisanego w przykladzie I. Po uplywie 24 godzin cala górna powierzchnie pierwszych lisci zakaza sie wirusem pierscieniowej plamistosci tytoniu. Obserwowano 40% zmniejszenia ilosci uszkodzen w stosunku do grupy kontrolnej.Przyklad XXVI. Przyklad ten ilustruje ha¬ mowanie wzrostu wiroidu roslin za pomoca dzia¬ lania kopolimerem.Zakorzenione na róznej glebokosci zrazy chry¬ zantem spryskano az do splywania wodnym roz¬ tworem kopolimeru eteru dwuwinylowego i bez¬ wodnika maleinowego o stezeniu 10 000 ppm, opi¬ sanego w przykladzie I. Inokulum przygotowano ucierajac w mozdzierzu tkanke chryzantem zakazo¬ nych wiroidem chlorotycznej mozaiki z 4 obje- tosciami buforu fosforanowego o wartosci pH 7,0 — 7,2. Po uplywie 24 godzin po spryskaniu kopoli¬ merem, trzy liscie z kazdej rosliny opylono karbo- rundem o granulacji 600 mesh i zakazono. Inoku¬ lum nanoszone za pomoca pedzla o dlugosci 2,5 cm, stosujac jedno pociagniecie na polowe liscia. Po uplywie okolo 10 minut po zakazeniu wirusem liscie zwilzano woda wodociagowa. W podobny sposób postepowano z roslinami kontrolnymi, nie stosujac jednak w tym przypadku kopolimeru. Po uplywie od 15 dni do okolo 3 tygodni na roslinach kontrolnych wystepowaly zólte plamy i rosliny te karlowacialy. Objawów tych nie obserwowano w przypadku roslin poddanych dzialaniu kopolimeru.Przyklady XXVII—XXXIX. Przyklady te ilustruja dzialanie kopolimeru bezwodnika male¬ inowego na rózne wirusy roslin.Badania prowadzono na mlodych sadzonkach wybranych pod katem przydatnosci jako gospo¬ darzy lokalnych uszkodzen. W kazdym przypadku liscie opryskiwano wodnym roztworem kopolimeru eteru dwuwinylowego i bezwodnika maleinowego o stezeniu 10 000 ppm, opisanego w przykladzie I.Inokulum przygotowywano ucierajac w mozdzie¬ rzu tkanki odpowiednich roslin nosicieli zakazone wirusem z 4 objetosciami buforu fosforanowego o wartosci pH 7,0—7,2. Po uplywie 24 godzin od spryskania kopolimerem, pierwsze liscie opylano karborundem o granulacji 600 mesh i zakazono.Inokulum nanoszono za pomoca pedzla o dlugosci 2,5 cm, stosujac jedno pociagniecie na polowe liscia. Po uplywie okolo 10 minut po zakazeniu wirusem, liscie zwilzono woda wodociagowa. W po¬ dobny sposób postepowano z roslinami kontrol¬ nymi, nie stosujac jednak w tym przypadku ko¬ polimeru. Po uplywie 3—9 dni porównywano rosliny kontrolne i testowane. W kazdym przy-11 106 776 12 padku obserwowano znaczny spadek wzrostu wi¬ rusa roslin w grupach poddanych dzialaniu kopo¬ limeru eteru dwuwinylowego i bezwodnika male¬ inowego.W tablicy VII zestawiono uzywane rodzaje wiru¬ sów, rosliny nosiciele sluzace do utrzymywania wirusów i przygotowywania inokulum oraz rosliny gospodarze lokalnych uszkodzen.Tablica VII Przyklad XXVII XXVIII XIX xxx XXXI XXXII XXXIII XXXIV xxxv XXXVI XXXVII XXXVIII XXXIX Wirus Wirus smugowatosci tytoniu Wirus X ziemniaka Wirus latentny gozdzika Wirus Y ziemniaka Wirus ostrej mozaiki grochu Wirus mozaiki ogórka Wirus zóltej pierscieniowej plamistosci rzepy Wirus mozaiki grochu kro¬ wiego (typ SB) Wirus nekrozy tytoniu (szczep A) Wiruis mozaiki stoklosy Wirus krzaczastej karlowa¬ tosci pomidora Wirus brazowej plamistosci pomidora Wirus mozaiki kalafiora Roslina-nosiciel Tyton (Nicotiana clevelandii) Tyton (Nicotiana tabacum) Gozdzik (Dianthus barbatus) Tyton (Nicotiana glutinosa) Groszek ogrodowy (Pisum sativum) Tyton (Nicotiana glutinosa) Kapusta chinska (Brassica pekinensis) Groch krowi (Vigna sinensis) Tyton (Nicotiana tabacum) Jeczmien (Hordeum vulgaris) Tyton (Nicotiana clevelandii) Tyton (Nicotiana rustica) Gorczyca (Brassica cam- pestris) Roslina gospodarz lokalnych uszkodzen Chenopodium amaranticolor Gomphrena globosa Chenopodium amaranticolor Chenopodium auinos Chenopodium amaranticolor Groch krowi (Vigna sinensis) Kapusta chinska (Brassica pekinensis) Fasola zwykla (Phasocolus vulgaria) Fasola zwykla (Phasocolus vulgaria) Chenopodium hybridum Chenopodium amaranticolor Petunia hibrida (rózowa pieknosc) Gorczyca (Brassica campes- tris) Zastrzezenie patentowe Srodek hamujacy wzrost wirusów u roslin, zna¬ mienny tym, ze jako substancje czynna zawiera kopolimer kwasu maleinowego, bezwodnika male¬ inowego lub kwasu fumarowego i eteru dwuwiny¬ lowego, estrów allilowych jednokarboksylowych kwasów alifatycznych zawierajacych 1—17 atomów wegla w lancuchu alifatycznym lub olefin o wzo¬ rze ogólnym CH2C(R)-R', w którym R oznacza atom wodoru, grupe alkilowa o 1—18 atomach wegla, jedno- lub dwupierscieniowa grupe arylowa, jedno- lub dwupierscieniowa grupe arylowa podstawiona grupa alkilowa o 1—12 atomach wegla, grupe cy- 45 M kloalkilowa o 3—12 atomach wegla lub wymienione grupy podstawione atomem chloru, bromu lub flu¬ oru, a R* oznacza grupe alkilowa o 1—18 atomach wegla, jedno- lub dwupierscieniowa grupe arylowa, jedno- lub dwupierscieniowa grupe arylowa pod¬ stawiona grupa alkilowa o 1—12 atomach wegla, grupe cykloalkilowa o 3—12 atomach wegla lub wymienione grupy podstawione atomem chloru, bromu lub fluoru, przy czym R i R' zawieraja lacznie nie wiecej niz 18 atomów wegla lub pól- amidy, nietoksyczne dla roslin sole pólamidów, cze¬ sciowo lub calkowicie zhydrolizowane estry i nie¬ toksyczne dla roslin sole tych kopolimerów.OZGrafg. Z.P. Dz-wo, z. 28 (90+20) 3.80 Cena 45 zl PL

Claims (1)

1. Zastrzezenie patentowe Srodek hamujacy wzrost wirusów u roslin, zna¬ mienny tym, ze jako substancje czynna zawiera kopolimer kwasu maleinowego, bezwodnika male¬ inowego lub kwasu fumarowego i eteru dwuwiny¬ lowego, estrów allilowych jednokarboksylowych kwasów alifatycznych zawierajacych 1—17 atomów wegla w lancuchu alifatycznym lub olefin o wzo¬ rze ogólnym CH2C(R)-R', w którym R oznacza atom wodoru, grupe alkilowa o 1—18 atomach wegla, jedno- lub dwupierscieniowa grupe arylowa, jedno- lub dwupierscieniowa grupe arylowa podstawiona grupa alkilowa o 1—12 atomach wegla, grupe cy- 45 M kloalkilowa o 3—12 atomach wegla lub wymienione grupy podstawione atomem chloru, bromu lub flu¬ oru, a R* oznacza grupe alkilowa o 1—18 atomach wegla, jedno- lub dwupierscieniowa grupe arylowa, jedno- lub dwupierscieniowa grupe arylowa pod¬ stawiona grupa alkilowa o 1—12 atomach wegla, grupe cykloalkilowa o 3—12 atomach wegla lub wymienione grupy podstawione atomem chloru, bromu lub fluoru, przy czym R i R' zawieraja lacznie nie wiecej niz 18 atomów wegla lub pól- amidy, nietoksyczne dla roslin sole pólamidów, cze¬ sciowo lub calkowicie zhydrolizowane estry i nie¬ toksyczne dla roslin sole tych kopolimerów. OZGrafg. Z.P. Dz-wo, z. 28 (90+20) 3.80 Cena 45 zl PL
PL19392976A 1976-11-25 1976-11-25 Srodek hamujacy wzrost wirusow u roslin PL106776B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL19392976A PL106776B1 (pl) 1976-11-25 1976-11-25 Srodek hamujacy wzrost wirusow u roslin

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL19392976A PL106776B1 (pl) 1976-11-25 1976-11-25 Srodek hamujacy wzrost wirusow u roslin

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL193929A1 PL193929A1 (pl) 1978-06-05
PL106776B1 true PL106776B1 (pl) 1980-01-31

Family

ID=19979517

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL19392976A PL106776B1 (pl) 1976-11-25 1976-11-25 Srodek hamujacy wzrost wirusow u roslin

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL106776B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL193929A1 (pl) 1978-06-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Murakami et al. Reduction of resting spore density of Plasmodiophora brassicae and clubroot disease severity by liming
MAP et al. Agricultural Research Service
Irwin et al. Ecology and control of soybean mosaic virus
CA1154606A (en) Engineering improved chemical performance in plants
JPH09506615A (ja) 農薬製剤の効力および/または耐雨性を高める界面活性剤
Falloon et al. Assessment of seed tuber, in‐furrow, and foliar chemical treatments for control of powdery scab (Spongospora subterranea f. sp. subterranea) of potato
Hide et al. Effects of rotation length, fungicide treatment of seed tubers and nematicide on diseases and the quality of potato tubers
GB2279252A (en) Fungicidal seed treatment using phosphorous acid or its salts
Jones Seed‐borne cucumber mosaic virus infection of narrow‐leafed lupin (Lupinus angustifolius) in Western Australia
Arnott et al. Early growth of planted western hemlock in relation to stock type and controlled-release fertilizer application
Jones et al. Seed‐borne alfalfa mosaic virus infecting annual medics (Medicago spp.) in Western Australia
NAQVI ITALIAN RYEGRAss (zozr zor L.)
Hide et al. Chemical techniques for control of stem canker and black scurf (Rhizctonia solani) disease of potatoes
PL106776B1 (pl) Srodek hamujacy wzrost wirusow u roslin
Hendrix et al. Control of root pathogens in peach decline sites
McFadden et al. Relation of initial inoculum density to severity of fusarium root rot of white bean in commercial fields
MacKinnon Detection, spread, and aphid transmission of potato virus S
Smith et al. Studies of the distribution of yellowing viruses in the sugar beet root crop from 1981 to 1984
Alphey et al. Systemic nematicides for the control of Tricbodorid nematodes and of potato spraing disease caused by tobacco rattle virus
Bolland Effects of phosphorus on seed yields of subterranean clover, serradella and annual medics
US3996347A (en) Plant virus treatment
GB1560357A (en) Treatment of sand
Hildebrand Soil solar heating for control of damping-off fungi and weeds at the Colorado State Forest Service Nursery
Ashby et al. A survey of sap-transmissible viruses of lucerne in New Zealand
Keever et al. Response of established landscape plants to uniconazole