NO861229L - PROCEDURE AND TESTING DEVICE FOR DETERMINING ANALYSTS. - Google Patents
PROCEDURE AND TESTING DEVICE FOR DETERMINING ANALYSTS.Info
- Publication number
- NO861229L NO861229L NO861229A NO861229A NO861229L NO 861229 L NO861229 L NO 861229L NO 861229 A NO861229 A NO 861229A NO 861229 A NO861229 A NO 861229A NO 861229 L NO861229 L NO 861229L
- Authority
- NO
- Norway
- Prior art keywords
- zone
- particles
- sps
- reaction
- analyte
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 20
- 239000002245 particle Substances 0.000 claims description 59
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 claims description 37
- 238000009739 binding Methods 0.000 claims description 32
- 238000001514 detection method Methods 0.000 claims description 31
- 238000000926 separation method Methods 0.000 claims description 30
- 239000012491 analyte Substances 0.000 claims description 26
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 19
- 230000004520 agglutination Effects 0.000 claims description 18
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 12
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 10
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 claims description 6
- 230000001588 bifunctional effect Effects 0.000 claims description 5
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 4
- 239000004816 latex Substances 0.000 description 15
- 229920000126 latex Polymers 0.000 description 15
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 9
- 102000003992 Peroxidases Human genes 0.000 description 7
- 239000002390 adhesive tape Substances 0.000 description 7
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 description 7
- 239000011888 foil Substances 0.000 description 7
- 108040007629 peroxidase activity proteins Proteins 0.000 description 7
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 5
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 5
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 5
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 5
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 5
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 4
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 4
- JQWHASGSAFIOCM-UHFFFAOYSA-M sodium periodate Chemical compound [Na+].[O-]I(=O)(=O)=O JQWHASGSAFIOCM-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 3
- KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N citric acid Chemical compound OC(=O)CC(O)(C(O)=O)CC(O)=O KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 3
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 3
- 229920000728 polyester Polymers 0.000 description 3
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 3
- BEOOHQFXGBMRKU-UHFFFAOYSA-N sodium cyanoborohydride Chemical compound [Na+].[B-]C#N BEOOHQFXGBMRKU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 235000011121 sodium hydroxide Nutrition 0.000 description 3
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 3
- 102000002260 Alkaline Phosphatase Human genes 0.000 description 2
- 108020004774 Alkaline Phosphatase Proteins 0.000 description 2
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000008100 Human Serum Albumin Human genes 0.000 description 2
- 108091006905 Human Serum Albumin Proteins 0.000 description 2
- TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L Magnesium chloride Chemical compound [Mg+2].[Cl-].[Cl-] TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 description 2
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 2
- PPBRXRYQALVLMV-UHFFFAOYSA-N Styrene Chemical compound C=CC1=CC=CC=C1 PPBRXRYQALVLMV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000007983 Tris buffer Substances 0.000 description 2
- IBVAQQYNSHJXBV-UHFFFAOYSA-N adipic acid dihydrazide Chemical compound NNC(=O)CCCCC(=O)NN IBVAQQYNSHJXBV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 2
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 2
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 2
- 239000011258 core-shell material Substances 0.000 description 2
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 2
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 2
- BNIILDVGGAEEIG-UHFFFAOYSA-L disodium hydrogen phosphate Chemical compound [Na+].[Na+].OP([O-])([O-])=O BNIILDVGGAEEIG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 2
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 2
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 2
- 230000011664 signaling Effects 0.000 description 2
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 2
- JIAARYAFYJHUJI-UHFFFAOYSA-L zinc dichloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Zn+2] JIAARYAFYJHUJI-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- YRNWIFYIFSBPAU-UHFFFAOYSA-N 4-[4-(dimethylamino)phenyl]-n,n-dimethylaniline Chemical compound C1=CC(N(C)C)=CC=C1C1=CC=C(N(C)C)C=C1 YRNWIFYIFSBPAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108090001008 Avidin Proteins 0.000 description 1
- CKLJMWTZIZZHCS-UHFFFAOYSA-N D-OH-Asp Natural products OC(=O)C(N)CC(O)=O CKLJMWTZIZZHCS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010015776 Glucose oxidase Proteins 0.000 description 1
- 239000004366 Glucose oxidase Substances 0.000 description 1
- 108060003951 Immunoglobulin Proteins 0.000 description 1
- CKLJMWTZIZZHCS-UWTATZPHSA-N L-Aspartic acid Natural products OC(=O)[C@H](N)CC(O)=O CKLJMWTZIZZHCS-UWTATZPHSA-N 0.000 description 1
- CKLJMWTZIZZHCS-REOHCLBHSA-N L-aspartic acid Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CC(O)=O CKLJMWTZIZZHCS-REOHCLBHSA-N 0.000 description 1
- CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-N Methacrylic acid Chemical compound CC(=C)C(O)=O CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 1
- 229920001213 Polysorbate 20 Polymers 0.000 description 1
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 description 1
- 235000009943 Raphanus landra Nutrition 0.000 description 1
- 235000003425 Raphanus raphanistrum subsp maritimus Nutrition 0.000 description 1
- 241000816532 Raphanus raphanistrum subsp. maritimus Species 0.000 description 1
- 229920005654 Sephadex Polymers 0.000 description 1
- 239000012507 Sephadex™ Substances 0.000 description 1
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- DHKHKXVYLBGOIT-UHFFFAOYSA-N acetaldehyde Diethyl Acetal Natural products CCOC(C)OCC DHKHKXVYLBGOIT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 1
- 125000003172 aldehyde group Chemical group 0.000 description 1
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 1
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 1
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 1
- 238000000149 argon plasma sintering Methods 0.000 description 1
- 229960005261 aspartic acid Drugs 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 239000000440 bentonite Substances 0.000 description 1
- 229910000278 bentonite Inorganic materials 0.000 description 1
- SVPXDRXYRYOSEX-UHFFFAOYSA-N bentoquatam Chemical compound O.O=[Si]=O.O=[Al]O[Al]=O SVPXDRXYRYOSEX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000005936 beta-Galactosidase Human genes 0.000 description 1
- 108010005774 beta-Galactosidase Proteins 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 229960002685 biotin Drugs 0.000 description 1
- 239000011616 biotin Substances 0.000 description 1
- 229910021538 borax Inorganic materials 0.000 description 1
- 244000309466 calf Species 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 238000010668 complexation reaction Methods 0.000 description 1
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 description 1
- 229910000397 disodium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019800 disodium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 239000003480 eluent Substances 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- BGZZWXTVIYUUEY-UHFFFAOYSA-N fomesafen Chemical compound C1=C([N+]([O-])=O)C(C(=O)NS(=O)(=O)C)=CC(OC=2C(=CC(=CC=2)C(F)(F)F)Cl)=C1 BGZZWXTVIYUUEY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002523 gelfiltration Methods 0.000 description 1
- 229940116332 glucose oxidase Drugs 0.000 description 1
- 235000019420 glucose oxidase Nutrition 0.000 description 1
- 238000010559 graft polymerization reaction Methods 0.000 description 1
- 230000035931 haemagglutination Effects 0.000 description 1
- 230000005660 hydrophilic surface Effects 0.000 description 1
- 102000018358 immunoglobulin Human genes 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 1
- 210000000936 intestine Anatomy 0.000 description 1
- 229910001629 magnesium chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 239000000178 monomer Substances 0.000 description 1
- KHIWWQKSHDUIBK-UHFFFAOYSA-N periodic acid Chemical compound OI(=O)(=O)=O KHIWWQKSHDUIBK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 1
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 238000005375 photometry Methods 0.000 description 1
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 1
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 1
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 1
- 239000000256 polyoxyethylene sorbitan monolaurate Substances 0.000 description 1
- 235000010486 polyoxyethylene sorbitan monolaurate Nutrition 0.000 description 1
- 229920000136 polysorbate Polymers 0.000 description 1
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 description 1
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 1
- 238000011085 pressure filtration Methods 0.000 description 1
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 1
- 230000011514 reflex Effects 0.000 description 1
- 239000012047 saturated solution Substances 0.000 description 1
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 1
- 235000010339 sodium tetraborate Nutrition 0.000 description 1
- 238000009987 spinning Methods 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 108010075210 streptolysin O Proteins 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- BSVBQGMMJUBVOD-UHFFFAOYSA-N trisodium borate Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[O-]B([O-])[O-] BSVBQGMMJUBVOD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002604 ultrasonography Methods 0.000 description 1
- AQLJVWUFPCUVLO-UHFFFAOYSA-N urea hydrogen peroxide Chemical compound OO.NC(N)=O AQLJVWUFPCUVLO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000000007 visual effect Effects 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000011592 zinc chloride Substances 0.000 description 1
- 235000005074 zinc chloride Nutrition 0.000 description 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/54313—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being characterised by its particulate form
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/52—Use of compounds or compositions for colorimetric, spectrophotometric or fluorometric investigation, e.g. use of reagent paper and including single- and multilayer analytical elements
- G01N33/525—Multi-layer analytical elements
- G01N33/526—Multi-layer analytical elements the element being adapted for a specific analyte
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Hematology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Analysing Materials By The Use Of Radiation (AREA)
- Financial Or Insurance-Related Operations Such As Payment And Settlement (AREA)
- Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
Description
Oppfinnelsen vedrører en fremgangsmåte til vurdering av agglutinasjoner forårsaket ved kompleksering av bioaffine bindingspartnere under hjelp av et signalproduserende system. Oppfinnelsen vedrører videre en prøveinnretning med hvis hjelp fremgangsmåten gjennomføres. The invention relates to a method for assessing agglutinations caused by complexation of bioaffinity binding partners using a signal-producing system. The invention further relates to a test device with the help of which the method is carried out.
Det overveiende antall av bindingsreaksjoner mellom bioaffine bindingspartnere fører til et kompleks, som har en større romlig utvidelse enn hver av de enkelte bindingspartnere. Spesielt utpreget er denne størirelsesendring, når en bindingspartner av det bioaffine bindingspar fra naturen er partikulær eller knyttes til en dispergerbar partikkel eller til et stort oppløselig polymermolekyl. De før bindingsreaksjonen som monomere foreliggende partikler danner ved bindingsreaksjonen dimere eller oligomere aggregater. Eksempler hertil er bakteriagglutj,nas jonene, bentonitt-agglutinasjonene, hemagglutinasjonene og lateks-agglutinasjonene. The predominant number of binding reactions between bioaffinity binding partners leads to a complex, which has a greater spatial extension than each of the individual binding partners. This change in structure is particularly pronounced when a binding partner of the bioaffinous binding pair from nature is particulate or is linked to a dispersible particle or to a large soluble polymer molecule. The particles present as monomers before the binding reaction form dimeric or oligomeric aggregates during the binding reaction. Examples of this are bacterial egg agglutination, bentonite agglutination, hemagglutination and latex agglutination.
På analog måte oppnås i en i PCT WO 83/04314 omtalt lateks-agglutinasjons-inhibisjonsprøve til bestemmelse av haptener, f.eks. penicillin, en adskillelse mellom immunkjemisk aggregerte og ikke-aggregerte lateks-partikler. Derved blandes sensibilisert lateks i en sprøyte med en penicillinholdig prøve, inkuberes og presses under trykk gjennom en forfuktet filtrasjonsmembran og den ikke aggregerte del bestemmes i et spektrofotometer ved hjelp av lysspredningsegenskapen. In an analogous manner, a latex agglutination inhibition test for the determination of haptens, e.g. penicillin, a separation between immunochemically aggregated and non-aggregated latex particles. Thereby, sensitized latex is mixed in a syringe with a penicillin-containing sample, incubated and pressed under pressure through a pre-moistened filtration membrane and the non-aggregated part is determined in a spectrophotometer using the light scattering property.
Uheldig ved denne fremgangsmåte er det tall av operasjonerUnfortunate with this method is the number of operations
som forlanges av brukeren, som f.eks. dosering og blanding av reagenser og prøver, nøyaktig overholdelse av inkuba-sjonstider, trykkfiltrering, oppfanging av filtratet, bestemmelse av delen av aggregerte og ikke-aggregerte partikler. Ved siden av det tilsvarende manuelle arbeidet er det i tillegg å se muligheten for betjeningsfeil, which is requested by the user, such as e.g. dosing and mixing of reagents and samples, exact observance of incubation times, pressure filtration, collection of the filtrate, determination of the proportion of aggregated and non-aggregated particles. Alongside the corresponding manual work, there is also the possibility of operating errors,
som forfalsker resultatet av bestemmelsesfremgangsmåten. which falsifies the result of the determination procedure.
Spesielt adskillelsen av de aggregerte og ikke-aggregerte partikler på en filtermembran på reproduserbar måte er meget vanskelig, da det i avhengighet av det anvendte trykk kommer til en anrikning av partikler i membrannærheten som avgjør-ende påvirker filtreringsforholdet. Tilsvarende passerer til forskjellige tider av filtreringsprosessen forskjellige mengder av ikke-aggregerte partikler membranen, således at uttak av en representativ mengde av filtrat for den etter-følgende bestemmelsesfremgangsmåte vanskeliggjøres. In particular, the separation of the aggregated and non-aggregated particles on a filter membrane in a reproducible manner is very difficult, as depending on the applied pressure there is an enrichment of particles in the vicinity of the membrane which decisively affects the filtration ratio. Correspondingly, at different times of the filtration process, different amounts of non-aggregated particles pass the membrane, so that extraction of a representative amount of filtrate for the subsequent determination procedure is made difficult.
Det ble funnet en fremgangsmåte, hvormed de ved bioaffin vekselvirkning frembragte agglutinater av partikler ved selvstendig filtrering etter typen av en kromatografi skilles fra dek dispergertblivende partikler og delen av dispergerte partikler påvises ved hjelp av et signalproduserende system.(SPS). Fremgangsmåten gjennomføres under anvendelse av en innretning som muliggjør en selvstendig filtrering etter typen av en kromatografi. A method was found, by which the agglutinates of particles produced by bioaffinity interaction are separated from the dispersed particles by independent filtration according to the type of chromatography, and the part of dispersed particles is detected using a signal-producing system (SPS). The procedure is carried out using a device which enables independent filtration according to the type of chromatography.
Oppfinnelsens gjenstand er en fremgangsmåte til påvisning og til bestemmelse av konsentrasjonen av en i vandig opp-løsning foreliggende analytt med bioaffine bindingsegenskaper ved agglutinasjon eller ved agglutinasjonshemming av partikler, som er utrustet med bioaffine bindingsegenskaper og samtidig med en SPS eller med deler av en SPS, idet fremgangsmåten erkarakterisert vedat The object of the invention is a method for detecting and determining the concentration of an analyte present in aqueous solution with bioaffinity binding properties by agglutination or by agglutination inhibition of particles, which are equipped with bioaffinity binding properties and at the same time with an SPS or with parts of an SPS, as the method is characterized by
a) en adskillelse av agglutinerte og ikke-agglutinerte partikler foretas ved hjelp av en innretning bestående a) a separation of agglutinated and non-agglutinated particles is carried out using a device comprising
av materialer som oppsuger og transporterer vandige oppløsninger og deri dispergerte partikler, og b) den adskilte del av ikke agglutinerte partikler be-. stemmes over dens SPS. of materials which absorb and transport aqueous solutions and particles dispersed therein, and b) the separated part of non-agglutinated particles be-. voted on its SPS.
De ved fremgangsmåten anvendte partikler inneholder ved siden av komponentene, som gir dem deres bioaffine bindingsegenskaper i tillegg minst en bestanddel av SPS. Fremgangsmåten gjennomføres ved hjelp av en innretning, som etter typen av en kromatografi muliggjør den selvstendige adskillelse av agglutinerte og dispergerte partikler under anvendelse av materialer som oppsuger og transporterer vandige dispersjoner, imidlertid holder tilbake agglutinater. Derved påføres oppløsningen som inneholder analytten på et The particles used in the method also contain, in addition to the components, which give them their bioaffinity binding properties, at least one component of SPS. The method is carried out with the help of a device which, according to the type of chromatography, enables the independent separation of agglutinated and dispersed particles using materials which absorb and transport aqueous dispersions, but retain agglutinates. Thereby, the solution containing the analyte is applied to a
av området av midlet som er utformet som påførings- eller reaksjonssoner. Analytten reagerer enten med de i reaksjonssonen i fast form inneholdte eller på skillesonen som dispersjon påførte partikler og eventuelt med de øvrige på forhånd omtalte komponenter av det bioaffine bindingssystem. Agglutinatene som danner seg ble fastholdt på eller i et område av midlet som er utformet som skillesone. De som dispersjon gjenblivne partikler vandrer med væsken gjennom skillesonen og kommer inn i et som påvisningssone utformet område hvor de under medvirkning av alle komponenter av SPS frembringer et vurderbart signal. of the area of the agent designed as application or reaction zones. The analyte reacts either with the particles contained in the reaction zone in solid form or applied as a dispersion to the separation zone and possibly with the other previously mentioned components of the bioaffinity binding system. The agglutinates that form were retained on or in an area of the agent designed as a separation zone. The particles remaining as a dispersion travel with the liquid through the separation zone and enter an area designed as a detection zone where, under the influence of all components of the SPS, they produce a measurable signal.
Oppfinnelsens gjenstand er videre en' innretning til påvisning og til bestemmelse av konsentrasjonen av en i vandig oppløsning foreliggende analytt med bioaffine bindingsegenskaper ved hjelp av partikler i en agglutinasjonsreaksjon, idet agglutinerter og ikke agglutinerte deler skilles fra hverandre, idet innretningen erkarakterisertved at The object of the invention is further a device for detecting and determining the concentration of an analyte present in aqueous solution with bioaffinity binding properties by means of particles in an agglutination reaction, whereby agglutinated and non-agglutinated parts are separated from each other, the device being characterized by
a) den inneholder en påførings-, en reaksjons-, en skille-og en påvisningssone, b) alle soner består av materialer, som opptar og transporterer vandige væsker, c) alle nevnte soner er gjennomtrengelige for de ikke agglutinerte partikler, d) i det minste skillesonen er ugjennomtrengelig for agglutinerte partikler, e). innretningen inneholder et signalproduserende system, som i påvisningssonen frembringer et vurderbart signal. a) it contains an application, a reaction, a separation and a detection zone, b) all zones consist of materials, which absorb and transport aqueous liquids, c) all said zones are permeable to the non-agglutinated particles, d) in the smallest separation zone is impermeable to agglutinated particles, e). the device contains a signal-producing system, which produces an evaluable signal in the detection zone.
Innretningen kan bestå av flere flateformede strukturer eller småplater, som står i kontakt med hverandre eller kan bringes i kontakt, berører seg ved deres flater av minste utstrekning, er anordnet ved siden av hverandre, altså flateformet eller berørende seg med deres flater av største utvidelse, altså sjiktformet. En kombinasjon av flate- og sjiktformet anordning er likeledes mulig. Småplatene kan være fastgjort ved holdere eller ved bærere i de omtalte anordninger. Småplatene består av materialer som opptar og transporterer vandige oppløsninger og deri dispergerte partikler. The device can consist of several flat-shaped structures or small plates, which are in contact with each other or can be brought into contact, touching at their surfaces of smallest extent, are arranged next to each other, i.e. flat-shaped or touching at their surfaces of greatest extension, i.e. layered. A combination of surface and layer-shaped device is also possible. The small plates can be attached to holders or to carriers in the mentioned devices. The small plates consist of materials that absorb and transport aqueous solutions and particles dispersed therein.
Når innretningen eksempelvis består av tre plater, erWhen the device, for example, consists of three plates,
disse utformet som reaksjons-, skille- og påvisningssone, består den av fire småplater, så er den ekstra platen utformet som påføringssone. these designed as a reaction, separation and detection zone, it consists of four small plates, then the extra plate is designed as an application zone.
Eksempelvise utførelsesformer av innretningen er vist i lengdesnitt på figurene 1, 2, 3 og 4. Holderene eller bærerene er betegnet med A. De består av flateformede strukturer av plater eller strimler fremstilt av materialer som ikke opptar vandige oppløsninger. Ved den på Exemplary embodiments of the device are shown in longitudinal section in Figures 1, 2, 3 and 4. The holders or carriers are denoted by A. They consist of flat-shaped structures of plates or strips made of materials that do not absorb aqueous solutions. At it on
fig. 1 viste innretningen er bæreren en transparent plate. Ved de på fig. 2, 3 og 4 viste innretninger er bæreren fig. In the device shown in 1, the carrier is a transparent plate. At those in fig. 2, 3 and 4 shown devices are the carrier
ikke transparent, imidlertid utstyrt med utsparinger eller slisser a. E angir platene utformet som påførings-, not transparent, but equipped with recesses or slits a. E denotes the plates designed as application,
B de utformet som reaksjons-, C slike utformet som skille-og C slike utformet som påvisningssoner. Ved innret-ningene ifølge fig. 2 og 3 består holderen av to vingeformede strimler eller' plater, som er forbundet med hverandre ved respektivt en kant og som ved en anvendelse klappes på hverandre. Den ene ving inneholder på sin overside i flateformet anordning, dvs. liggende ved siden av hverandre påføringssone E og reaksjonssone B, den andre ving i sjiktformet anordning på sin underside og i utsparingen oppadrekkende skillesonen C, på sin overside og i utsparingen nedad rekkende inn i påvisningssonen D, berørende skillesonen C. Fig. 2 og 3 adskiller seg ved forskjellige store påførings- resp. reaksjonssoner E resp. B. B those designed as reaction zones, C those designed as separation zones and C those designed as detection zones. In the devices according to fig. 2 and 3, the holder consists of two wing-shaped strips or plates, which are connected to each other at an edge respectively and which are folded over each other during use. One wing contains on its upper side in a flat arrangement, i.e. lying next to each other application zone E and reaction zone B, the other wing in a layer-shaped arrangement on its underside and in the recess extending upwards the separation zone C, on its upper side and in the recess extending downwards into the detection zone D, touching the separation zone C. Fig. 2 and 3 are separated by different large application resp. reaction zones E or B.
Fig. 4 viser en innretning hvor det på innersiden av bæreren A er anordnet påførings- og reaksjonssonen E og B flateformet ved siden av hverandre. Påføringssonen E er gjennom utsparingen a' tilgjengelig for prøveopptak og eventuelt for opptak av ytterligere oppløsninger. I utsparingen a er skillesonen c innarbeidet og derover påvisningssonen D anbragt på over-siden av bæreren A berørende skillesonen C med undersiden. Fig. 4 shows a device where, on the inside of the carrier A, the application and reaction zones E and B are arranged flat next to each other. Through the recess a', the application zone E is available for taking up samples and possibly for taking up additional solutions. In the recess a, the separation zone c is incorporated and above that the detection zone D is placed on the upper side of the carrier A touching the separation zone C with the underside.
I tilfellet nærvær av en påføringssone E tjener den til opptak av oppløsningen av analytten. Den kan i tillegg tjene til opptak av en oppløsning med bestanddeler av SPS og/eller en dispersjon av partikler for agglutinasjonsreaksjonen samt et ekstra elusjonsmiddel. In the case of the presence of an application zone E, it serves to absorb the solution of the analyte. It can also serve to absorb a solution with components of SPS and/or a dispersion of particles for the agglutination reaction as well as an additional eluent.
Reaksjonssonen B tjener til dannelse eller til inhiberingThe reaction zone B serves for formation or inhibition
av agglutinasjonen av partikler under deltagelse av alle komponenter av det bioaffine bindingssystem som også eventuelt til opptak av en dispersjon av partikler og av opp-løsningen av analytten, når ingen opptakssone E er tilstede. Den kan også inneholde partiklene samt de oppløselige komponenter av det bioaffine bindingssystem og av SPS i tørr form. of the agglutination of particles with the participation of all components of the bioaffine binding system as well as possibly for the uptake of a dispersion of particles and of the dissolution of the analyte, when no uptake zone E is present. It can also contain the particles as well as the soluble components of the bioaffine binding system and of SPS in dry form.
Skillesonene C tjener til adskillelse av agglutinerte partikler som oppstår i reaksjonssonen. Agglutinatene ble enten tilbakeholdt på grenseflaten av reaksjons- og skillesone eller opptatt av den og fastholdt. Den er gjennomtrengelig for ikke agglutinerte partikler og for alle øvrige oppløselige komponenter som er nødvendige for bestemmelse av analytten. Skillesonen kan være fremstilt av materialer med fiberaktig som også kuleformet struktur, altså av materialer med anisotrop som også med isotrop porøse strukturer. The separation zones C serve to separate agglutinated particles that occur in the reaction zone. The agglutinates were either retained at the interface of the reaction and separation zone or taken up by it and retained. It is permeable to non-agglutinated particles and to all other soluble components that are necessary for the determination of the analyte. The separation zone can be made from materials with fibrous as well as spherical structure, i.e. from materials with anisotropic as well as isotropic porous structures.
Påvisningssonen D tjener til opptak av etter foregått bioaffin reaksjon dithen vandrede, dispergertblivende partikler og deres påvisning ved hjelp av SPS. Den er fortrinnsvis fremstilt av materialer som har en høy remisjonsgrad for innstrålet lys. Er eksempelvis signalgiverenheten en kromofor eller fluorofor, så kreves ingen videre komponenter for SPS, påvisningen foregår ved visuell vurdering, eventuelt ved hjelp av en fargesammenligningsskala eller ved The detection zone D is used for recording particles that have migrated and become dispersed after the bioaffinity reaction has taken place and their detection using SPS. It is preferably made from materials that have a high degree of remission for radiated light. If, for example, the signaling unit is a chromophore or fluorophore, then no further components are required for SPS, the detection takes place by visual assessment, possibly by means of a color comparison scale or by
■ref leks jonsf otometri eller ^f luorometri . I den på grunn av den oppnåelige sensitivitet foretrukkede utførelsesform av bestemmelsesfremgangsmåten, hvori signalgiverenheten er et enzym, bestemmes i deteksjonssonen enzymaktiviteten av den del av SPS som passerer skillesonen. Dette kan foregå ved tilsettelse av en enzymsubstratoppløsning på deteksjonssonen, fortrinnsvis inneholder imidlertid deteksjonssonen alle komponenter av enzym-substrat-reaksjonen. Ved bestemte enzymer, f.eks. peroksidase, kan det av ■ref lex ionsf otometry or ^f luorometry . In the preferred embodiment of the determination method, in which the signaling unit is an enzyme, due to the achievable sensitivity, the enzyme activity of the part of the SPS that passes the separation zone is determined in the detection zone. This can take place by adding an enzyme substrate solution to the detection zone, preferably, however, the detection zone contains all components of the enzyme-substrate reaction. With certain enzymes, e.g. peroxidase, it can of
grunner for reagensstabilitet være nødvendig å fremstille deteksjonssonen av to soner, som står i forbindelse med hverandre sugbart og hvori respektivt en eller flere komponenter av substratreaksjonen er inkorporert adskilt fra de andre. reasons for reagent stability, it may be necessary to produce the detection zone from two zones, which are connected to each other by suction and in which respectively one or more components of the substrate reaction are incorporated separately from the others.
Som partikler foretrekkes latekser med hydrofil overflate, spesielt slike med kjerne-skall-oppbygning, slik de om- As particles, latexes with a hydrophilic surface are preferred, especially those with a core-shell structure, as they re-
tales i DOS 31 45 082. Andre partikler dispergerbare i vandige oppløsninger er likeledes egnet. Til partiklene er i det minste en komponent av det for analytten spesi- are mentioned in DOS 31 45 082. Other particles dispersible in aqueous solutions are also suitable. To the particles, at least a component of that for the analyte is specific
fikke bioaffine spinningssystemer og minst en komponent av SPS bundet. Det foretrekkes kovalente bindinger for de bioaffine bindingspartnere og for komponentene av SPS, obtained bioaffinity spinning systems and at least one component of SPS bound. Covalent bonds are preferred for the bioaffinity binding partners and for the components of SPS,
men også avidin/streptavidin-biotin-systemene er egnet for binding av komponentene av SPS til partiklene. but also the avidin/streptavidin-biotin systems are suitable for binding the components of SPS to the particles.
Bundede komponenter av SPS kan være enzymer som glukose- oksydase, alkalisk fosfatase, peroksydase eller beta-galakto-sidase samt kromofore eller fluorofore. Bound components of SPS can be enzymes such as glucose oxidase, alkaline phosphatase, peroxidase or beta-galactosidase as well as chromophores or fluorophores.
Partnerene eller komponentene av det bioaffine system som ved nærvær av analytten medvirker til agglutinasjonen av partiklene eller til deres inhibering, er så vidt det ikke dreier seg om de til partiklene bundede bindingspartnere, oppløselige komponenter som er anbragt i innretningen i fast form eller kan påføres i en oppløsning på den tidligere omtalte påførings- eller reaksjonssonen. The partners or components of the bioaffinity system which, in the presence of the analyte, contribute to the agglutination of the particles or to their inhibition, insofar as it does not concern the binding partners bound to the particles, are soluble components which are placed in the device in solid form or can be applied in a resolution of the previously mentioned application or reaction zone.
En agglutinasjon finner sted når eksempelvisAn agglutination takes place when, for example,
a) de dispergerte partikler inneholder en minst biofunk-sjonell bioaffin bindingspartner av analytten og b) de dispergerte partikler inneholder analytten eller et bindingsdyktig derivat av analytten og en minst a) the dispersed particles contain at least one biofunctional bioaffinity binding partner of the analyte and b) the dispersed particles contain the analyte or a binding-capable derivative of the analyte and at least
bifunksjonell bindingspartner av analytten er tilstede.bifunctional binding partner of the analyte is present.
En hemming av agglutinasjonen ved hjelp av analytten foregår når de dispergerte partikler inneholder en minst bifunksjonell bindingspartner av analytten og et minst bifunksjonelt derivat av analytten er tilstede. An inhibition of the agglutination by the analyte takes place when the dispersed particles contain at least one bifunctional binding partner of the analyte and one at least bifunctional derivative of the analyte is present.
Oppfinnelsen skal forklares nærmere ved hjelp av noen eksempler. The invention will be explained in more detail with the help of some examples.
Eksemp_el_lExample_el_l
Fremstilling av en prøveinnretning til påvisning av antistoffer mot Streptolysin-0 (SL-O) Preparation of a test device for the detection of antibodies against Streptolysin-0 (SL-O)
1.1. Lateks-partikler med kjerne-skall-oppbygning Fremstillingen av til kovalent binding av proteiner egneede lateks-partikler foregikk som omtalt i eksempel 2b av DE 31 45 082 under anvendelse av polystyren-lateks-kjerner. Lateksene med kjerne- 1.1. Latex particles with core-shell structure The production of latex particles suitable for covalent binding of proteins took place as described in example 2b of DE 31 45 082 using polystyrene latex cores. The latexes with core
skall-oppbygning oppnådd etter en podningspolymerisasjon med styren, metakrylsyre og metacrylamido-racedaldehyd di-n-pentylacetal hadde.en partikkeldiameter på 160 nm, shell structure obtained after a graft polymerization with styrene, methacrylic acid and methacrylamido-racedaldehyde di-n-pentyl acetal had a particle diameter of 160 nm,
innholdet av frigjørbare aldehydgrupper utgjorde the content of releasable aldehyde groups constituted
0,05 mval/g lateks.0.05 mval/g latex.
1.2 l-"peroksydasyl"-l,2,9,lO-tetraza-3,8-dioksodecan1.2 l-"peroxidasyl"-l,2,9,10-tetraza-3,8-dioxodecane
5 mg lyofilisert sjøreddik peroksydase (POD), 250 U/mg 5 mg lyophilized sea radish peroxidase (POD), 250 U/mg
ved 25°C (Boehringer Mannheim, renhetsgrad I, best.-nr. 121606) ble oppløst i 2 ml av en puffer av 0,1 mol/l natriumhydrogenfosfat, pH 6,0, tilsatt 0,5 ml av en nyfremstilt oppløsning av 5 0 mmol/1 natriummetaperjodat i vann og inkubert under omrøring 10 minutter ved værelsestemperatur under lysbeskyttelse. Deretter ble reaksjonsblandingen befridd for perjodat ved gelfiltrering på "Sephadex" G-25, ekvilibrert med ovennevnte fosfatpuffer. Den peroksydaseholdige fraksjon på 3 ml ble inkubert med en oppløsning av adipinsyredihydrazid i en sluttkonsentrasjon på at 25°C (Boehringer Mannheim, purity grade I, order no. 121606) was dissolved in 2 ml of a buffer of 0.1 mol/l sodium hydrogen phosphate, pH 6.0, to which was added 0.5 ml of a freshly prepared solution of 50 mmol/1 sodium metaperiodate in water and incubated with stirring for 10 minutes at room temperature under light protection. The reaction mixture was then freed from periodate by gel filtration on "Sephadex" G-25, equilibrated with the above-mentioned phosphate buffer. The peroxidase-containing fraction of 3 ml was incubated with a solution of adipic acid dihydrazide at a final concentration of
0,1 mol/l 2 timer ved værelsestemperatur i nærvær av 1 g/l natriumcyanoborhydrid. Deretter ble blandingen ved +4°C dialysert 2 dager ved fleregangers pufferveksling mot ovennevnte fosfatpuffer. 0.1 mol/l 2 hours at room temperature in the presence of 1 g/l sodium cyanoborohydride. The mixture was then dialysed at +4°C for 2 days by several buffer exchanges against the above-mentioned phosphate buffer.
1.3 l-"fosfatasyl"-l,2,9,lO-tetraaza-3,8-dioksodecan \ 26 m<q>av et 1 V° f i 1 i s a. t av alkalisk fosfatase av kalvé-tarm (100 U/mg lyofilisat tilsvarer ca. 1300 U/mg protein ved 37°C -Boehringer Mannheim, best.-nr. 405639, renhetsgrad I) ble omsatt analogt eksempel 1.2 med natriummetaperjodat og adipinsyredihydrazid med den endring at nevnte fosfatpuffer var blitt innstilt på pH 7,0 og dialysen ble foretatt med en puffer av.50 mmol/1 natriumborat, 10 mmol/1 magnesium-klorid, 0,1 mol/l zinkklorid, innstilt med natronlut på pH 8,0. 1.3 l-"phosphatacyl"-l,2,9,l0-tetraaza-3,8-dioxodecane \ 26 m<q>of a 1 V° f i 1 i s a. t of alkaline phosphatase of calf intestine (100 U/ mg lyophilisate corresponds to approx. 1300 U/mg protein at 37°C - Boehringer Mannheim, order no. 405639, purity grade I) was reacted analogously to example 1.2 with sodium metaperiodate and adipic acid dihydrazide with the change that said phosphate buffer had been adjusted to pH 7, 0 and the dialysis was carried out with a buffer of 50 mmol/l sodium borate, 10 mmol/l magnesium chloride, 0.1 mol/l zinc chloride, adjusted with caustic soda to pH 8.0.
1.4 Binding av l-"peroksidasyl"-l,2,9,10-tetraaza-3,8-dioksodecan og av Streptolysin-0 til lateks. 1.4 Binding of l-"peroxidasyl"-l,2,9,10-tetraaza-3,8-dioxodecane and of Streptolysin-0 to latex.
10 ml av en 1%-ig suspensjon av den ifølge eksempel 1.1 10 ml of a 1% suspension of it according to example 1.1
fremstilte lateks ble blandet med 0,5 ml 1 normal HCl og inkubert 15 minutter ved værelsestemperatur. Deretter ble det tilsatt 0,4 ml 1 normal NaOH, 1 ml av en mettet natriumhydrogenfosfatoppløsning, pH 6,5, 8 ml av en 0,9%-ig NaCl-oppløsning, 200 yl av den prepared latex was mixed with 0.5 ml of 1 normal HCl and incubated for 15 minutes at room temperature. Then 0.4 ml of 1 normal NaOH, 1 ml of a saturated sodium hydrogen phosphate solution, pH 6.5, 8 ml of a 0.9% NaCl solution, 200 µl of the
i eksempel 1.2 dannede oppløsning av en l-"peroksida-syl"-l,2,9,10-tetraaza-3,8-dioksodecan og 1 ml av en oppløsning av 1 g/l natriumcyanoborhydrid og inkubert 30 minutter ved værelsestemperatur. Dertil ble det in example 1.2 formed a solution of a 1-"peroxidasyl"-1,2,9,10-tetraaza-3,8-dioxodecane and 1 ml of a solution of 1 g/l sodium cyanoborohydride and incubated for 30 minutes at room temperature. That was it
satt 0,4 ml av en vandig oppløsning av 10 g/l put 0.4 ml of an aqueous solution of 10 g/l
Streptolysin-0 og 0,5 ml av en vandig oppløsning av 200 g/l polyoksyetylensorbitanmonolaureat, kjent under handelsnavnet "Tween" 20 og inkubert natten over ved værelsestemperatur. Deretter ble det tilsatt 1 ml av en oppløsning av 0,5 mol/l L-asparaginsyre som med natronlut var innstilt på pH 6,5 og 0,5 ml av en opp-løsning av lg/l natriumcyanoborhydrid. Det ble inkubert 1 time ved værelsestemperatur, og blandingen avsentrifugert ved ca. 50.000 x g. Residuet ble re-suspendert i 20 ml 50 mmol/1 tris/HCl, pH 7,4 med tilsetning av 1 g/l humanserumalbumin. Etter gjen-tatt sentrifugering ble residuet igjen opptatt i 20 ml av oppløsningen av tris/HCl, pH 7,4 med til-setningen av humanserumalbumin og homogenisert ved hjelp av ultralyd. Streptolysin-0 and 0.5 ml of an aqueous solution of 200 g/l polyoxyethylene sorbitan monolaurate, known under the trade name "Tween" 20 and incubated overnight at room temperature. Then 1 ml of a solution of 0.5 mol/l L-aspartic acid which had been adjusted to pH 6.5 with caustic soda and 0.5 ml of a solution of 1g/l sodium cyanoborohydride were added. It was incubated for 1 hour at room temperature, and the mixture centrifuged at approx. 50,000 x g. The residue was re-suspended in 20 ml of 50 mmol/l tris/HCl, pH 7.4 with the addition of 1 g/l human serum albumin. After repeated centrifugation, the residue was again taken up in 20 ml of the solution of tris/HCl, pH 7.4 with the addition of human serum albumin and homogenized using ultrasound.
1.5 Fremstilling av en prøveinnretning1.5 Manufacture of a test device
Som inert, vannugjennomtrengelig kunststoffbærer ble det benyttet en polyesterfolie, tykkelse 200 ym, bredde 8 cm. På folien ble det i avstand 2 cm fra de to sidekanter respektivt anbragt et dobbelsidet klebebånd (firma Beiersdorf, Hamburg) med en bredde på 0,8 cm. Denne flate av folien erklæres dermed til forside. På en sidekant ble også baksiden av polyester-folien i lik avstand utstyrt med det dobbeltisidige klebebånd. I disse på begge sider av klebebåndet dekkede strimler av folien ble det deretter stanset runde hull av 0,5 cm diameter med en avstand fra hullmidte til hullmidte på 0,8 cm og på de gjenblivne klebebånddeler på polyesterfoliens forside fastgjort en 0,8 cm bred strimmel av et membranfilter, type RC-55, porestørrelse 0,2 ym fra firmaet Sartorius, Hamburg. På den mot midten rettede side av 2. klebebånd på denne forside ble det fiksert en 0,5 cm bred strimmel av kromatografi-papir nr. 1507 fra firmaet Schleicher&Schuell, Dasssel, hvilket dannet reaksjonssonen og på forhånd fuktet med en oppløsning av 0,2 mg/ml tetrametylbenzidin i etanol og før påklebningen var blitt tørket under anvendelse av en ventilator. Baksideklebebåndet ble likeledes påklebet med en 0,5 cm bred papirstrimmel nr. 1507, som på forhånd var blitt fuktet med en opp-løsning av 10 mmol/1 av et ekvimolart urinstoff.H2O2-addukt i 50 mmol/1 sitronsyre, innstilt på pH 5,0 med en mettet oppløsning av Na2HPO^, og var blitt tørket (deteksjonssone). Med en papirsaks ble foliebanen kuttet på tvers til de påklebede papirbaner i strimler å 8 mm bredde. A polyester foil, thickness 200 ym, width 8 cm, was used as an inert, water-impermeable plastic carrier. A double-sided adhesive tape (company Beiersdorf, Hamburg) with a width of 0.8 cm was respectively placed on the foil at a distance of 2 cm from the two side edges. This surface of the foil is thus declared as the front side. On one side, the back of the polyester foil was also equipped with the double-sided adhesive tape at an equal distance. In these strips of the foil covered on both sides by the adhesive tape, round holes of 0.5 cm diameter were then punched with a distance from hole center to hole center of 0.8 cm and on the remaining adhesive tape parts on the front of the polyester foil a 0.8 cm wide strip of a membrane filter, type RC-55, pore size 0.2 ym from the company Sartorius, Hamburg. A 0.5 cm wide strip of chromatography paper No. 1507 from the company Schleicher&Schuell, Dasssel was fixed on the side facing the center of the 2nd adhesive tape on this front, which formed the reaction zone and was previously moistened with a solution of 0.2 mg/ml tetramethylbenzidine in ethanol and prior to sticking had been dried using a ventilator. The backside adhesive tape was likewise stuck on with a 0.5 cm wide paper strip No. 1507, which had previously been moistened with a solution of 10 mmol/1 of an equimolar urea.H2O2 adduct in 50 mmol/1 citric acid, adjusted to pH 5.0 with a saturated solution of Na2HPO^, and had been dried (detection zone). With paper scissors, the foil web was cut crosswise to the glued paper webs in strips of 8 mm width.
1.6 Bestemmelse av anti-Streptolysin-0 (ASL-0)1.6 Determination of anti-Streptolysin-0 (ASL-0)
Det i eksempel 1.5'omtalte prøveelement ble anvendt til ASL-O-bestemmelse. Derved detekteres antistoffer mot Streptolysin-O, et streptokokk-antigen. Dertil ble et human-immunglobulin-preparat fra Behringwerke, som har handelsnavnet "Beriglobin", ved fortynning med fosfatpuffret fysiologisk koksaltoppløsning innstilt på et innhold på 300 IU/ml, 150 IU/ml, 75 IU/ml osv. anti-Streptclysin-0. Derav blandes respektivt 50 yl på en sort glassplate med 50 yl av den under 1.4 om talte dispersjon av lateks, hvortil det var bundet Streptolysin-0 og POD. Denne blanding ble med en gang oppdelt: 50 yl ble bragt på reaksjonssonen av det i .1.5 omtalte prøveelement og de resterende 50 yl beveget ved roterende vipping av glassplaten i 1 minutt. Agglu-tinasjonsstyrken av .lateksen på glassplaten ble vurdert visuelt på vanlig måte fra 0 - +4. Den på prøveinnret-ningen påførte del ble inkubert 5 minutter i reaksjonssonen, deretter ble strimlene bøyd om og derved reaksjons-, skille- og deteksjonssonen bragt i surbar forbindelse. Den i deteksjonssonen etter 5 minutter dannede blågrønne farging ble bestemt ved refleksjons-fotometri ved hjelp av et rapimat refleksjonsfotometer fra Behringwerke AG Marburg, et prøvestrimmelvurder-ingsapparat. The test element mentioned in example 1.5 was used for ASL-O determination. This detects antibodies against Streptolysin-O, a streptococcal antigen. In addition, a human immunoglobulin preparation from Behringwerke, which has the trade name "Beriglobin", was adjusted by dilution with phosphate-buffered physiological saline solution to a content of 300 IU/ml, 150 IU/ml, 75 IU/ml, etc. anti-Streptclysin-0 . 50 µl of this is respectively mixed on a black glass plate with 50 µl of the dispersion of latex mentioned under 1.4, to which Streptolysin-0 and POD were bound. This mixture was immediately divided: 50 µl was brought to the reaction zone of the test element mentioned in .1.5 and the remaining 50 µl moved by rotary tilting of the glass plate for 1 minute. The agglutination strength of the latex on the glass plate was assessed visually in the usual way from 0 - +4. The part applied to the sample device was incubated for 5 minutes in the reaction zone, then the strips were bent over and thereby the reaction, separation and detection zone were brought into acidic connection. The blue-green coloration formed in the detection zone after 5 minutes was determined by reflectance photometry using a rapid reflectance photometer from Behringwerke AG Marburg, a test strip evaluation apparatus.
De oppnådde resultater er oppstilt i tabell 1. The results obtained are listed in table 1.
Eksemp_el_2Example_el_2
Fremstilling av en lateks-partikkelholdig prøveinnretning til bestemmelse av antistoffer mot Streptolysin-0 og anvendelse av denne prøveinnretning til bestemmelse av anti-stoffene . Production of a latex particle-containing test device for the determination of antibodies against Streptolysin-0 and use of this test device for the determination of the antibodies.
Med den ifølge 1.4 fremstilte dispersjon av lateks, hvortil det var bundet peroksydase og Streptolysin-0, ble på With the dispersion of latex prepared according to 1.4, to which peroxidase and Streptolysin-0 were bound, was
en glassplate fuktet en papirmaskinvire med et masketall på 225/cm 2 (firmaet Kufferrath, Reutlingen) i en mengde på 20 ml/cm 2 og deretter lyofilisert. Under anvendelse av et dobbeltsidig 0,8 cm bredt klebebånd (firmaet Beiersdorf, Hamburg) ble det ved den i 1.5 omtalte prøveinnretning bundet til reaksjonssonen anbragt en 0,8 cm bred strimmel av den lyofiliserte lateksholdige papirmaskinvire. a glass plate moistened a paper machine wire with a mesh number of 225/cm 2 (the company Kufferrath, Reutlingen) in an amount of 20 ml/cm 2 and then lyophilized. Using a double-sided 0.8 cm wide adhesive tape (the company Beiersdorf, Hamburg), a 0.8 cm wide strip of the lyophilized latex-containing paper machine wire was attached to the reaction zone at the test device mentioned in 1.5.
På denne flaten ble det påført respektivt 50 yl av den under 1.6 omtalte anti-Streptolysin-0 fortynningsrekke. Etter at væskefronten hadde nådd enden av reaksjonssonen ble det ombøyning dannet forbindelsen til deteksjonssonen. Den i deteksjonssonen etter 15 minutter dannede farge ble vurdert med det allerede under 1.6 nevnte refleksjonssjons-fotometer. Resultatet er gjengitt i tabell 2. On this surface, respectively, 50 µl of the anti-Streptolysin-0 dilution series mentioned under 1.6 was applied. After the liquid front had reached the end of the reaction zone, a bend formed the connection to the detection zone. The color formed in the detection zone after 15 minutes was assessed with the reflectance photometer already mentioned under 1.6. The result is reproduced in table 2.
Claims (14)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19853511012 DE3511012A1 (en) | 1985-03-27 | 1985-03-27 | METHOD AND TEST DEVICE FOR DETERMINING ANALYTES |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
NO861229L true NO861229L (en) | 1986-09-29 |
Family
ID=6266416
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
NO861229A NO861229L (en) | 1985-03-27 | 1986-03-26 | PROCEDURE AND TESTING DEVICE FOR DETERMINING ANALYSTS. |
Country Status (8)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0196731A1 (en) |
JP (1) | JPS61225657A (en) |
AU (1) | AU5528786A (en) |
DE (1) | DE3511012A1 (en) |
DK (1) | DK142486A (en) |
ES (1) | ES8703021A1 (en) |
FI (1) | FI861269A (en) |
NO (1) | NO861229L (en) |
Families Citing this family (14)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3643516A1 (en) * | 1986-12-19 | 1988-06-30 | Boehringer Mannheim Gmbh | TEST CARRIER FOR THE ANALYTICAL DETERMINATION OF INGREDIENTS OF BODY LIQUIDS |
US4847199A (en) * | 1987-02-27 | 1989-07-11 | Eastman Kodak Company | Agglutination immunoassay and kit for determination of a multivalent immune species using a buffered salt wash solution |
EP0281327B1 (en) * | 1987-02-27 | 1993-06-30 | EASTMAN KODAK COMPANY (a New Jersey corporation) | Immunoreactive reagent, method of preparation and its use to determine an immunoreactive species |
JPS63142755U (en) * | 1987-03-12 | 1988-09-20 | ||
JPS63305251A (en) * | 1987-06-05 | 1988-12-13 | Dai Ichi Pure Chem Co Ltd | Immunoassay utilizing latex aggregation reaction |
JPH0543413Y2 (en) * | 1988-02-02 | 1993-11-01 | ||
DE3814370A1 (en) * | 1988-04-28 | 1989-11-09 | Boehringer Mannheim Gmbh | TEST PROVIDER FOR THE ANALYSIS OF A SAMPLING FLUID, METHOD FOR CARRYING OUT SUCH ANALYSIS AND METHOD OF PRODUCTION |
DE3903114A1 (en) * | 1989-02-02 | 1990-08-09 | Boehringer Mannheim Gmbh | METHOD FOR DETERMINING AN ENZYME FROM AN ISOZYME MIXTURE, AND TEST CARRIER SUITABLE FOR THIS, AND USE THEREOF |
US5252496A (en) * | 1989-12-18 | 1993-10-12 | Princeton Biomeditech Corporation | Carbon black immunochemical label |
JP2690802B2 (en) * | 1990-04-24 | 1997-12-17 | オリンパス光学工業株式会社 | Immunological test |
DE69126142T2 (en) * | 1990-09-26 | 1997-09-11 | Akers Lab Inc | IMPROVED LIGAND DETERMINATION PROCEDURE |
IT1246344B (en) * | 1990-12-13 | 1994-11-17 | Vizia Antonio De | ENZYMOUNMUNOLOGICAL DOSAGE METHOD AND RELATED DOSAGE KIT. |
GB2262986A (en) * | 1992-01-03 | 1993-07-07 | Pall Corp | Particle agglutination assay |
JP2015099094A (en) * | 2013-11-19 | 2015-05-28 | 国立大学法人徳島大学 | Sheet for diabetes examination diagnosis using three-dimensional immunochromatography system, device for diabetes examination diagnosis, and method of detecting myo-inositol |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3210080A1 (en) * | 1982-03-19 | 1983-09-22 | Behringwerke Ag, 3550 Marburg | ANTI-STREPTOLYSIN O-LATEX REAGENT AND METHOD FOR THE PRODUCTION THEREOF |
JPS59170768A (en) * | 1983-03-17 | 1984-09-27 | Fuji Photo Film Co Ltd | Multilayered analyzing element for non-isotope assay and assay method using said element |
-
1985
- 1985-03-27 DE DE19853511012 patent/DE3511012A1/en not_active Withdrawn
-
1986
- 1986-03-19 EP EP19860200566 patent/EP0196731A1/en not_active Withdrawn
- 1986-03-25 FI FI861269A patent/FI861269A/en not_active IP Right Cessation
- 1986-03-25 ES ES553354A patent/ES8703021A1/en not_active Expired
- 1986-03-26 AU AU55287/86A patent/AU5528786A/en not_active Abandoned
- 1986-03-26 JP JP6611986A patent/JPS61225657A/en active Pending
- 1986-03-26 NO NO861229A patent/NO861229L/en unknown
- 1986-03-26 DK DK142486A patent/DK142486A/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
FI861269A0 (en) | 1986-03-25 |
DK142486A (en) | 1986-09-28 |
AU5528786A (en) | 1986-10-02 |
DE3511012A1 (en) | 1986-10-02 |
FI861269A (en) | 1986-09-28 |
JPS61225657A (en) | 1986-10-07 |
ES8703021A1 (en) | 1987-01-16 |
DK142486D0 (en) | 1986-03-26 |
ES553354A0 (en) | 1987-01-16 |
EP0196731A1 (en) | 1986-10-08 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4987085A (en) | Blood filtering metering device | |
US6214570B1 (en) | Method for separating non-HDLs from HDLs, and determining, HDL cholesterol | |
US5358852A (en) | Use of calcium in immunoassay for measurement of C-reactive protein | |
US5132086A (en) | Non-instrumented cholesterol assay | |
US3607093A (en) | Devices for testing biological liquids | |
NL192138C (en) | Apparatus and method for detecting the presence of antigens. | |
US4959324A (en) | Sample pad assay initiation device and method of making | |
NO861229L (en) | PROCEDURE AND TESTING DEVICE FOR DETERMINING ANALYSTS. | |
AU637399B2 (en) | Improved solid assay support systems | |
US4965187A (en) | Method and apparatus for assaying whole blood | |
US5652148A (en) | Method and apparatus for red blood cell separation | |
EP0239318B1 (en) | Assay employing binding pair members on particles and on a filter or membrane | |
JPH01299464A (en) | Solid phase analyzer | |
WO1995006240A9 (en) | Novel disposable electronic assay device | |
AU7465091A (en) | Bioassay device with non-absorbent textured capillary surface | |
US4939096A (en) | Method and apparatus for assaying whole blood | |
CA2473244A1 (en) | High-density lipoprotein assay device and method | |
US5340539A (en) | Non-instrumented cholesterol assay | |
CA2519402A1 (en) | Adhered membranes retaining porosity and biological activity in assay device for measuring serum cholesterol associated with high-density lipoproteins | |
EP0896223B1 (en) | Immunoassay method and immunoassay kit | |
JP2001124772A (en) | Immunochromatographic test piece and chromatograph analyzing method | |
US5314803A (en) | Process and test carrier for the determination of an enzyme from an isoenzyme mixture | |
US5166054A (en) | Method for immunoassay using lactoperoxidase, starch and iodine | |
WO2001069246A1 (en) | Test paper | |
EP0427534B1 (en) | Improvement in non-instrumental diagnostic assay distance determination |