NO324411B1 - Anvendelse av isolerte mulitipotente nervestamceller som prolifererer i et kulturmedium for fremstilling av et cellepreparat for a oppna remyelinering av et demyelinert akson in vivo. - Google Patents

Anvendelse av isolerte mulitipotente nervestamceller som prolifererer i et kulturmedium for fremstilling av et cellepreparat for a oppna remyelinering av et demyelinert akson in vivo. Download PDF

Info

Publication number
NO324411B1
NO324411B1 NO19951378A NO951378A NO324411B1 NO 324411 B1 NO324411 B1 NO 324411B1 NO 19951378 A NO19951378 A NO 19951378A NO 951378 A NO951378 A NO 951378A NO 324411 B1 NO324411 B1 NO 324411B1
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
cells
remyelination
culture medium
cell
stem cells
Prior art date
Application number
NO19951378A
Other languages
English (en)
Other versions
NO951378L (no
NO951378D0 (no
Inventor
Samuel Weiss
Brent A Reynolds
Joseph P Hammang
Original Assignee
Neurospheres Holdings Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Neurospheres Holdings Ltd filed Critical Neurospheres Holdings Ltd
Publication of NO951378L publication Critical patent/NO951378L/no
Publication of NO951378D0 publication Critical patent/NO951378D0/no
Publication of NO324411B1 publication Critical patent/NO324411B1/no

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/30Nerves; Brain; Eyes; Corneal cells; Cerebrospinal fluid; Neuronal stem cells; Neuronal precursor cells; Glial cells; Oligodendrocytes; Schwann cells; Astroglia; Astrocytes; Choroid plexus; Spinal cord tissue
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/46Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
    • C07K14/47Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/475Growth factors; Growth regulators
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/82Translation products from oncogenes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0618Cells of the nervous system
    • C12N5/0623Stem cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0065Oxidoreductases (1.) acting on hydrogen peroxide as acceptor (1.11)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2217/00Genetically modified animals
    • A01K2217/05Animals comprising random inserted nucleic acids (transgenic)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/05Inorganic components
    • C12N2500/10Metals; Metal chelators
    • C12N2500/20Transition metals
    • C12N2500/24Iron; Fe chelators; Transferrin
    • C12N2500/25Insulin-transferrin; Insulin-transferrin-selenium
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30Organic components
    • C12N2500/46Amines, e.g. putrescine
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/90Serum-free medium, which may still contain naturally-sourced components
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/11Epidermal growth factor [EGF]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/30Hormones
    • C12N2501/38Hormones with nuclear receptors
    • C12N2501/39Steroid hormones
    • C12N2501/392Sexual steroids

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Ophthalmology & Optometry (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Foreliggende oppfinnelse vedrører anvendelse av isolerte multipotente neuralstamceller som prolifererer i et kulturmedium inneholdende epidermal vekstfaktor TGFa eller TGF(3 for å produsere forløperceller der cellene høstes fra en donor, for fremstilling av et cellepreparat for å oppnå remyelinering av et demyelinert akson in vivo.
Myelin er et cellulært lag dannet av gliaceller som omgir aksoner og aksonale utløpere som forsterker forskjellige elektrokjemiske egenskaper og gir tropisk støtte til neuronene. Myelin blir dannet av Schwannceller i det perifere nervesystemet og av oligodendrocytter i sentralnervesystemet.
Demyelinering av sentrale og perifere neuroner oppstår i et antall patologier og fører til uriktig signaloverføring innenfor nervesystemene. Blant forskjellige demyelinerende sykdommer er multippel sklerose (MS) den mest betydelige.
I både humane demyelinerende sykdommer og i gnagermodeller er det vesentlig bevis for at demyelinerende neuroner har evne til in situ remyelinering. I MS for eksempel ser det ut som om det ofte er sykluser med de- og remyelinering. Lignende observasjoner fra forsøk med gnageres demyelinering fører til den antagelsen som innbefatter at eksogent tilførte celler kan ha evne til remyelinering av demyelinerte aksoner.
Denne metoden har vist seg å være vellykket i et antall eksperimentelle situasjoner.
[Freidman et al., Brain Research, 378:142-146 (1986), Raine, et al., Laboratory Investigation 59:467-474 (1988); Duncan et al., J. of Neurocytology,17:351-360 (1988)] Kildene til cellene i noen av disse eksperimentene innbefatter dissosierte gliacellesuspensjoner dannet fra ryggmargen (Duncan et al., supra). Schwann
cellekulturer dannet fra sciatisk nerve [Bunge et al., 1992, WO 92/03536; Blackmore og Crang, J. Neurol. Sei., 70:207-223 (1995)]; kulturer fra dissosiert nervevev [Blackmore og Crang, Dev. Neurosci. 10:1-11 (1988)], oligodendrocyttforløperceller [Gumpel et al., Dev. Neurosci. 11:132-139 (1989)], 0-2A celler [Wolswijk et al., Development
109:691-608 (1990); Raff et al., Nature 3030:390-396 (1983; hardy et al., Development 111:1061-1880 (1991)], og udødeliggjorte 0-2A cellelinjer, [Almazan og McKay Brain Res. 579:234-245 (1992)].
0-2A celler er gliale forløperceller som in vitro bare gir opphav til oligodendrocytter og type II astrocytter. Celler som immunfarging in vivo forekommer som 0-2A fenotype har blitt vist å remyelinere demyelinerte neuroner in vivo. Godfraind et al., J. Cell Biol. 109:2405-2416 (1989). Injeksjon av et stort antall 0-2A celler er nødvendig for hensiktsmessig remyelinering av alle målneuronene in vivo siden det ser ut som om 0-
2A celler (som andre glialcellepreparater) ikke fortsetter å dele seg in situ. Til tross for at 0-2A forløperceller kan bli dyrket i kultur utgjør den for tiden eneste tilgjengelige isoleringsteknikken ved anvendelse av den optiske nerve som utgangsmateriale. Dette er en kilde som eksisterer i lavt utbytte og krever mange rensningstrinn. Det er en ytterligere ulempe at 0-2A celler isolert ved tilgjengelige prosedyrer bare har evne til et begrenset antall delinger. Raff Science 243:1450-1455 (1989).
For in vivo remyelinering vil det være fordelaktig å injisere bare et lite antall celler som kan bli delt, migrere til hensiktsmessige mål og differensierer in situ. Det er blitt vist at tilstedeværelse av type I astrocytter er viktig for at remyelinering oppstår med eksogent tilsatte oligodendrocytter. Anvendelse av oligodendrocyttforløpere så som 0-2A celler krever at type I astrocytter også blir injisert, eller alternativt at blodplateavledet vekstfaktor (PDGF) blir gitt til de remyelinerende cellene. PDGF er et potent mitogen for 0-2A forløperen og blir utskilt fra type I astrocytter.
Ubearbeidete cellepreparater og suspensjoner er ikke foretrukket som eksogene kilder for remyelinerende celler på grunn av at de inneholder et ikke forutsigbart antall celler samt store antall både neurale og ikke-neurale celletyper og dette gjør reproduserbarheten til fremgangsmåten vanskelig. Det er også vanskelig å oppnå et egnet antall celler fra disse preparatene.
Transformerte 0-2A cellelinjer er ikke egnet for transplantasjon på grunn av det faktum at transformasjonsprosessen fører til en genetisk (onkogen) kontrollert celledeling i forhold til primære cellelinjer eller neurale stam- eller forløperceller hvor reguleringen av delingen er på et epigenetisk nivå. Ytterligere potensielle problemer innbefatter at cellelinjene er ustabile over lange tidsperioder og viser sviktende differensieirngsmønster og responser overfor vekstfaktorer. Goldman Trends Neuro. Sei. 15:359-362(1992).
Det eksisterer derfor et behov for en pålitelig cellekilde for remyelinerende terapi. Celledeling i slike celler fra en slik kilde er fortrinnsvis epigenetisk regulert og et egnet antall celler kan effektivt bli fremstilt i tilstrekkelig antall for å tilveiebringe remyelinering. Cellene bør være egnet for autograft, xenograft og allograft uten bekymring for tumordannelse.
Det er derfor en hensikt ifølge oppfinnelsen å tilveiebringe en pålitelig kilde for epigenetiske regulerte celler for transplantasjon som har evne til differensiering til oligodendrocytter.
Foreliggende oppfinnelse angår således avendelse av isolerte multipotente neuralstamceller som prolifererer i et kulturmedium inneholdende epidermal vekstfaktor. TGFa eller TGF(3 for å produsere forløperceller der cellene høstes fra en donor, for fremstilling av et cellepreparat for å oppnå remyelinering av et demyelinert akson in vivo.
I en foretrukken utførelsesform inneholder kulturmediet epidermal vekstfaktor.
I en annen utførelsesform er forløpercellene i neurosfærer.
Disse og andre hensikter og trekk ifølge oppfinnelsen vil fremkomme for fagfolk innenfor dette området ut fra den følgende detaljerte beskrivelsen og kravene sett i sammenheng med figurene.
Ingen av de angitte referansene antas å beskrive foreliggende oppfinnelse slik den krever, og antas ikke å være kjent teknikk. Motholdene er gitt som bakgrunnsinformasjon.
Definisjoner
Betegnelsen "stamcelle" angir en udifferensiert celle med evne til å proliferere og gi opphav til flere stamceller som har evne til å danne et stort antall forløperceller som igjen kan gi opphav til differensierte, eller differensierbare datterceller.
Betegnelsen "neural stamcelle" (NSC) refererer til stamceller og avkommet derav innbefatter under hensiktsmessige dyrkningsbetingelser både gliaceller og neuronal forløperceller.
Betegnelsen "forløper celler" refererer til udifferensierte celler, avledet fra neuralstamceller og avkommet derav kan under hensiktsmessige betingelser innbefatte gliaceller og/eller neuronal forløperceller.
Betegnelsen "oligodendrocytt" refererer til en differensiert gliacelle som danner myelinet som omgir aksoner i sentralnervesystemet (CNS). Oligodendrocytter er av fenotype galaktocerebrosid (+), myelin basisk protein (+) og glial fibrillært surt protein
(-) [Gal C(+), MBP(+), GFAP(-)].
Betegnelsen "type I astrocytt" refererer til en differensiert gliacelletype med en flat protoplasma/fibroblastliknende morfologi som er GFAP(+), Gal C(-) og MBP(-).
Betegnelsen "type II astrocytt" refererer til en differensiert gliacelle som utviser en stellatprosess som har morfologien til fenotypen (GFAP(+), Gal C(-), og MBP(-).
Betegnelsen "neuronal forløperceller" refererer til celler som danner datterceller som under hensiktsmessige betingelser blir eller gir opphav til neuroner.
Betegnelsen "oligodendrocyttforløperceller" refererer til celler som gir opphav til oligodendrocytter. Oligodendrocyttforløperceller kan ha fenotypen AsB5(+), 04(+)/Gal C(-), MBP(-) og GFAP (-) [men er ikke begrenset til denne fenotypen].
Betegnelsen "neurosfære" refererer til en sammenhopning av celler avledet fra neuralstamceller og dyrket in vitro. I hverfall noen av cellene er av fenotypen nestin (+). Sammenhopningen består av stamceller og/eller forløperceller og kan men trenger ikke å innbefatte differensierte celler.
Betegnelsen "forløperceller" refererer til levende celler som er avledet fra neuralstamceller proliferert i et kulturmedium inneholdende en vekstfaktor, og innbefatter både forløper- og stamceller. Forløpercellene blir vanligvis dyrket i form av neurosfærer, men kan utvise forskjellige vekstmønstre avhengig av kulturbetingelsene.
Betegnelsen "vekstfaktor" refererer til et protein eller peptid som har en vekst eller trofisk effekt.
Betegnelsen "donor" refererer til mennesket eller dyret som er kilden for neuralstamcellene anvendt ifølge foreliggende oppfinnelse.
Betegnelsen "høsting" refererer til en hvilken som helst fremgangsmåte anvendt for å fremskaffe prolifererte celler i en form egnet for injeksjon eller transplantasjon. Betegnelsen "mottaker" refererer til mennesket eller dyret som har demyelinerte aksoner og hvori forløpercellene eller oligodendrocyttene avledet fra forløpercellene blir transplantert eller injisert.
Figur 1 angir bare en enkelt forløpercelle for oligodendendrocytter og type II astrocytter. Forskjelllige rapporter viser at det kan være mange forløperceller for disse differensierte fenotypene. Goldman, TINS 15:359-262 (1992). Et viktig aspekt av diagrammet er at neuralstamcellene er unike fordi de er de eneste stamcellene som har evne til å gi opphav til både neuroner og gliaceller in vitro.
Fenotypiske karaktertrekk
Neuralstamcellene (NSC) er blitt rapportert og deres potensielle anvendelse beskrevet.
(Reynolds og Weiss, Science 255:1707 (1992)). NSC har blitt vist å gi opphav til minst tre gliafenotyper, inkludert oligodendrocytter og type I og II astrocytter. NSC gir også opphav til neuroblaster. (Reynolds og Weiss, Restorative Neurology & Neuroscience 4:208 (1992)).
Neuralstamcellene kan bli isolert og dyrket ifølge fremgangsmåten til Reynolds og Weiss (supra). Stamceller som responderer på epidermal vekstfaktor (EGF) induseres, når de dyres i et definert serumfritt medium, og i nærvær av et mitogen så som EGF eller lignende, til å dele seg og gi opphav til en samrnenhopning av udifferensierte celler. Sammenhopningen av cellene er ikke immunreaktive for GFAP, neuralfilament (NF), neuronspesifikk enolase (NSE) eller MBP. Forløpercellene innenfor sammenhopningen er immunreaktive for nestin, et mellomliggende filamentprotein som finnes i udifferensierte CNS-celler. Nestinmarkøren ble karakterisert av Lehndahl et al., Cell 60:585-595 (1990) og er inkorporert heri som referanse. Ingen av de modne fenotypene assosiert med de fire celletypene som kan bli differensiert fra avkommet til forløpercellene har nestinfenotypen.
Ved fortsatt tilstedeværelse av et mitogen så som EGF eller lignende fortsetter forløpercellene innenfor neurosfærene å dele seg og resulterer i en økning i størrelse på neurosfæren og antall udifferensierte celler [nestin(+), GFAP(-), NF(-), NSE(-), MBP(-)]- På dette stadium er cellene ikke-adherente og danner fritt-flytende sammenhopninger som er karakteristisk for neurosfærer. Dyrkningsbetingelsene kan derimot bli variert slik at til tross for at forløpercellene fortsatt uttrykker nestinfenotypen så danner de ikke de karakteristiske neurosfærene. Etter fjerning av mitogenet adhererer cellene til substratet (poly-ornithin-behandlet plast eller glass), blir flate og begynner å differensiere til neuroner og gliaceller. På dette stadiet kan kulturmediet inneholde serum så som 0,5-1,0% føtalt bovint serum (FBS). I løpet av 2-3 dager begynner de fleste eller alle forløpercellene å miste immunoreaktivitet for nestin og begynner å uttrykke intermediære filamenter spesifikke for neuroner eller for astrocytter som vist ved immunoreaktiviteten mot henholdsvis NFL eller GFAP. I tillegg begynner et stort antall av cellene som ikke uttrykker noen av disse mellomliggende filamentmarkørene å uttrykke markører spesifikke for oligodendrocytter på en korrekt temporal måte. Cellene blir først immunreaktive for 04 (et celleoverflateantigen), galaktocerebrosid (Gal C, et myelin glykolipid) og til slutt myelin basisk protein (MBP). Disse cellene har også en karakteristisk oligodendrocyttmorfologi. Denne informasjonen betraktet i lys av oligodendrocyttforløpercellene identifisert av Raff, gir opphav til mange mulige cellelinjeslektskap. (Se figur 1).
Fremstilling av neurosfærer
Neurosfærer kan bli dannet fra forskjellige vev inkludert voksent eller føtalt neuralvev fra mennesker eller dyr. Individuelle stamceller blir dannet fra dissosiasjon av neuralvevet. Dissosiasjonen kan bli oppnådd ved anvendelse av en hvilken som helst kjent prosedyre, inkludert behandling med enzymer så som trypsin, kollagenase og lignende, eller ved anvendelse av fysiske metoder for dissosiasjon så som med et butt instrument. Dissosiasjon av føtale celler kan bli utført i vevskulturmedium, mens et foretrukket medium for dissosiasjonen av voksne celler er artifisiell cerebral spinalvæske (aCSF). Vanlig aCSF inneholder 124 mM NaCl, 5 mM KC1,1,3 med mer MgCl2,2 mM CaCl2,26 mM NaHC03 og 10 mM D-glukose. Lav Ca^ aCSF inneholder samme ingredienser med unntakelse av MgCl2 i en konsentrasjon på 3,2 mM og CaCl2 ved en konsentrasjon på 0,1 mM.
De individuelle cellene kan bli plassert i et hvilket som helst kjent kulturmedium som kan understøtte celleveksten og proliferasjonen, inkludert MEM, DMEM, RPMI, F-12 og lignende, inneholdende tilsetningsmidler som er nødvendige for cellulær metabolisme så som glutamin og andre aminosyrer, vitaminer, mineraler og nyttige proteiner så som transferrin og lignende. Mediet kan også inneholde antibiotika for å forhindre kontaminering av gjær, bakterier og sopp så som penicillin, streptomycin, gentamicin og lignende. De dissosierte cellene danner neurosfærer i nærvær av et mitogen så som EGF eller lignende.
Differensiering av gliaceller fra neurosfærer
Astrocytter og oligodendrocytter kan bli differensiert fra forløperceller til neurosfærer ved å plassere neurosfærene i et medium inneholdende 1% føtalt bovint serum i fravær av et mitogen, så som EGF eller lignende, i omtrent 3-4 dager på poly-ornithin behandlet glass eller plast. Disse cellene kan deretter bli opprettholdt i kultur i en egnet tidsperiode for å danne et stort antall differensierte celler. Kulturene kan deretter bli renset til en enkelt celletype ved anvendelse av en hvilken som helst av de kjente fremgangsmåtene innenfor fagområdet for rensing av spesifikke gliacellepopulasjoner. Noen foretrukne metoder i dette henseendet er de immunologiske metodene til Wolswijk et al., Development 109:691-698 (1990) og de til Franklin et al., Neurocytology 20:420-430 (1991).
Anvendelse av differensierte celler
Differensierte celler i form av oligodendrocytter som er avledet fra forløpercellene kan bli injisert inn i demyelinerte målområder hos mottakeren. Hensiktsmessige mengder av type I astrocytter kan også bli injisert. Type I astrocytter er kjent for å utskille PDGF som fremmer både migrering og celledelingen hos oligodendrocytter. [Nobel et al., Nature 333:560-562 (1988); Richardson et al, Cell, 53:309-319 (1988)].
Anvendelse av ikke-differensierte forløperceller
Hcke-differensierte forløperceller er foretrukket for celler til behandling av demyelinerende sykdommer. Neurosfærer dyrket i nærvær av EGF kan bli dissosiert for å oppnå individuelle forløperceller som deretter blir plassert i injeksjonsmediet og injisert direkte inn i den demyelinerte målregionen. Astrocytter kan fremme remyelinering i forskjellige paradigmer. I tilfeller hvor oligodendrocyttproliferasjonen er viktig kan evnen som forløpercellene har til å gi opphav til type I astrocytter være nyttig. I en annen situasjon kan PDGF bli applisert topisk under transplantasjonen, så vel som ved gjentatte doser til implanteirngsetet deretter.
Injeksjon av forløperceller i remyelineirngsterapi tilveiebringer en kilde for umodne type I astrocytter ved implanteirngssetet. Dette er et signifikant trekk på grunn av at umodne astrocytter (i motsetning til modne astrocytter) har et antall spesifikke karaktertrekk som gjør dem spesielt egnede for remyelineirngsterapi. For det første er umodne, i motsetning til modne, type I astrocytter kjent for å migrere bort fra implanteirngssetet [Lindsay et al., Neurosci. 12:513-530 (1984)] når disse implanteres inn i en moden mottaker og blir assosiert med blodårene i mottakerens CNS [Silver et al., WO 91/06631 (1991)]. Dette er i det minste delvis forårsaket av det faktum at umodne astrocytter i seg selv er mer motile enn modne astrocytter. [Duffy et al., Exp Cell Res. 139-145-157 (1982), tabell VII]. Type I astrocytter som differensierer ved eller nære ved forløpercelleimplanteringssetet bør ha maksimal motilitet og derved optimalisere muligheten for oligodendrocyttvekst og deling ved seter som er langt fra implantatet. Lokalisering av astrocyttene nær blodårene er også viktig ut fra et terapeutisk standpunkt på grunn av at (i det minst i MS) de fleste plakkene har et nært anatomisk slektskap med en eller flere vener.
Et annet karaktertrekk til umodne astrocytter som gjør dem spesielt egnede for remyelineringsterapi er at de gjennomgår en mindre grad av celledød enn modne type I astrocytter. (Silver et al., SUPRA).
Implantering
En hvilken som helst egnet fremgangsmåte for implantering av forløpercellene nær demyelinerte mål kan bli anvendt slik at cellene kan bli assosiert med demyelinerte aksoner. Gliaceller er motile og er kjent for å migrere til, langs og tvers over deres neuranale mål for derved å muliggjøre avstand til injeksjonene. En injeksjonsmetode eksemplifisert ved de som blir anvendt av Duncan et al. J. Neurocytology, 17:351-361
(1988), inkorporert heri som referanse, og oppskalert og modifisert for anvendelse i mennesker er foretrukket. Metodene beskrevet av Gage et al., US-PS 5.082.670, inkorporert heri som referanse, for injeksjon av cellesuspensjoner så som fibroblaster inn i CNS kan også bli anvendt for injeksjon av forløpercellene. Ytterligere metoder finnes i Neural Grafting in the Mammalian CNS, Bjorklund og Stenevi, red., (1985), inkorporert heri som referanse.
Autografter
Det kan i noen tilfeller være mulig å fremstille forløperceller fra mottakerens eget nervesystem (for eksempel i tilfeller av tumorfjerningsbiopsier osv.). I slike tilfeller kan forløpercellene bli dannet fra dissosierte vev og dyrket i kultur i nærvær av et mitogen så som EGF eller lignende, eller basisk fibroblastvekstfaktor (bFGF). Ved egnet formering av celleantallet kan forløpercellene bli høstet og gjort klare for direkte injeksjon i mottakerens CNS. Når det gjelder demyelinerende sykdommer med et genetisk grunnlag som direkte påvirker evnen som myelindannende celler har til å myelinere aksoner, vil det generelt ikke være nyttig å remyelinere ved anvendelse av mottakercellene eller donorcellene dersom ikke cellene er blitt modifisert på en måte for å sikre at skaden ikke vil forsette (for eksempel genetisk modifisering av cellene for å helbrede demyelineringsskaden).
Xeno- eller allografter kan kreve anvendelse av immunsuppressive teknikker eller induksjon av toleranse hos verten for å sikre en vedvarende remyelinering. Lokal immunsuppresjon er beskrevet av Gruber, Transplantation 54:1-11 (1992), inkorporert som referanse. Rossini US-PS 5.026.365 beskriver innkapslingsmetoden egnet for lokal immunsuppresjon. Generelle oversikter og sitater for anvendelse av rekombinante metoder for å redusere antigenisiteten til donorcellene er beskrevet av Gruber (ovenfor). Eksempelvise metoder for reduksjon av immunogenisiteten til transplantater ved overflatemodifisering er beskrevet av Faustman WO 92/04022 (1992).
Xenografter
Foreliggende oppfinnelse muliggjør anvendelse av forløperceller dannet fra donorvev som er xenogeneisk for verten. På grunn av CNS er et noe immunpriviligert sete, er immunresponsen betraktelig mindre for xenografter enn eller i kroppen. For at xenograftene skal bli vellykkede er det foretrukket at en fremgangsmåte for redusering eller eliminering av immunresponsen mot implantert vev anvendes. Mottakerene vil derfor ofte være immunsupprimert, enten gjennom anvendelse av immunsuppresive medikamenter så som cyklosporin, eller ved lokal immunsuppresjonstrategier som anvender lokalt påførte immunsuppressive midler. Alternativt kan immunogenisiteten til transplantatet bli redusert ved å danne forløperceller fra en donor med redusert antigenisitet, så som transgene dyr som har endrede eller deleterte MHC antigner.
Allograft
Transplantasjon av forløperceller dannet fra vev som er allogene i forhold til mottakeren vil som oftest kreve vevstyping i et forsøk på å komme nærmest vevstypen til mottakeren. Alderen på donorcellen og alderen til mottakeren er blitt demonstrert å være viktige faktorer når det gjelder å forbedre muligheten for neuronal transplantatoverlevelse. Effektiviteten til transplantasjonen blir redusert med økende alder på mottakercellene. Transplantatet blir letter akseptert av yngre mottakere sammenlignet med eldre mottakere. Disse to faktorene antas å være like viktige for gliatransplantatoverlevelse som der er for neuronaltransplantatoverlevelse.
Implantering i mennesker
Områder med demyelinering hos mennesker er generelt assosiert med plakklignende strukturer. Plakk kan bli visualisert ved magnetisk resonans billeddannelse. Tilgjengelige plakk er målområdene for injeksjon NSC. Standardstereotaktiske néurokirargiske metoder blir anvendt for å injisere cellesuspensjoner, både inn i hjernen og ryggmargen.
Remyelinering ved injeksjonen av forløpercellene er et nyttig terapeutisk middel i mange tilstander med demyelinering. Det er også å bemerke at i noen tilfeller vil remyelinring ved forløpercellene ikke resultere i permanent remyelinering, og gjentatte injeksjoner vil være nødvendig. Slike terapeutiske metoder er fordelaktige i forhold til å la tilstanden forbli ubehandlet og kan spare mottakerens liv.
En liste over humane demyelinerende sykdommer hvor celler anvendes ifølge foreliggende oppfinnelse er som følger: disseminert perivenøs enkefalomyelitt, multippel sklerose (Charot og Marburg typer), neuromyelitis optica, konsentrisk sklerosis, akkutt disseminert enkefalomyelitt, postenkefalomyelitt, postvaksinell enkefalomuelitt, akutt hemorrhagisk leukoenkefalopati, progressiv multifokal leukoenkefalopati, idiopatisk polyneuritt, difterisk neuropati, Pelizaeus-Merzbacher sykdom, neuromyelitt optika, diffus cerebral sklerose, sentral pontine myelinosis, spongiform leukodystrofi (Alexander type).
Eksempler
Eksempel 1
Forming av forløperceller for transplantasjon
Embryo dag 15 (El5) Sprague Dawley rotter blir avlivet og hjernen og striata blir fjernet ved anvendelse av steril prosedyre. Vevet blir mekanisk dissosiert med en flammebehandlet Pasteur pipette i serumfritt medium bestående av en 1:1 blanding av Dulbeccos modifiserte Eale's medium (DMEM) og F-12 næringsblanding (Gibco). Cellene blir sentrifugert ved 800 rpm i 5 minutter, supernatanten suget av og cellene resuspendert i DMEM/F-12 medium for telling.
Cellene blir suspendert i et serumfritt medium bestående av DMEM/F-12 (1:1) inkludert glukose (0.6%), glutamin (2 um), natriumbikarbonat (3 med mer)og HEPES (4-[2-hydroksyetyl]-l-piperazinetansulfonsyre) buffer (5 med mer) alle fra Sigma med unntagelse av glutamin (Gibco)). En definert hormonblanding og saltblanding (Sigma) som innbefatter insulin (25 ug/ml), transferrin (100 u/ml), progesteron (20 nM), putrescin (60 um) og selenklorid (30 nM) blir anvendt i stedet for serum. I tillegg inneholder mediet 16-20 ng/ml EGF (renset fra underkjeve fra mus, Collaborative Research) eller TGFa (human rekombinant, Gibco). Cellene blir sådd ut i en T25 kulturflaske og oppbevart i en inkubator ved 37°C, 100% luftfuktighet, 95% luft/5% CO2. Cellene proliferer i 3-4 dager og forårsaket av mangel på substrat, løsner fra flaskebunnen og fortsetter å proliferere i suspensjonen og danner sammenhopninger av udifferensierte forløperceller kjent som neurosfærer.
Etter 6-8 dager in vitro (DIV) blir neurosfærene fjernet, sentrifugert ved 400 rpm i 2-5 minutter og pelleten mekanisk dissosiert til individuelle celler med en flammebehandlet glass pasteur pipette. Cellene blir sådd ut på ny i vekstmedium hvor proliferasjon av stamcellene og dannelsen av nye neurosfærer på ny blir initiert. Denne prosedyren blir gjentatt hver uke og resulterer i en logaritmisk økning i antall levedyktige celler for hver passasje. Prosedyren blir gjentatt helt til det ønskede antall forløperceller er oppnådd.
Eksempel 2
Remyelinering av myelinreduserte rotter
Avkom fra første dags postnatalmyelinreduserte rotter blir bedøvet ved anvendelse av is for å danne hypotermi. Myelin reduksjon er en X-koblet egenskap og dermed er bare halvparten av hannene i all kull påvirket. Derfor er det bare hannene som blir anvendt i disse studiene. Når de er bedøvet blir et lite rostral-til caudal innsnitt dannet på nivået med lumbar forstørring. Muskel- og bindevevet blir fjernet for å eksponere den vertebrale lamina. Ved anvendelse av en fin rottetann pinsett blir en lamina ved lumbar forstørringen fjernet og et lite kutt blir i laget i dura mater for å eksponere ryggmargen.
En stereotaktisk innretning som holder en glasspipette blir anvendt for å inisiere en 1 ul alikvot av cellesuspensjonen (omtrent 50.000 celler/ul) beskrevet ovenfor. Suspensjonen blir sakte injisert på ett sted (til tross for at flere kan bli utført) i dorsal kolonne av ryggmargen. Som kontroller blir noen av dyrene narre-injisert med sterilt saltvann. Dyrene blir merket ved klipping av enten tær eller ører for å skjelne mellom de eksperimentelle gruppene. Etter injeksjon av cellesuspensjonen blir såret lukket ved anvendelse av sting eller klemmer av rustfritt stål og dyrene blir restituert ved oppvarming på et kirurgisk varmeteppe og deretter brakt tilbake til deres mødre.
Dyrene far overleve i 3 uker etter injeksjonen og blir deretter sterkt bedøvet med nembutal (150 mg/kg) og perfusert gjennom venstre ventrikkel. Vevene blir deretter dissekert fra dyret og fiksert i 1-3 dager med 4% paraformaldehyd i PBS og 95% etanol/5% eddiksyre og deretter bearbeidet for epoksyinnstøpning. En mikron plastsnitt blir skåret med et ultramikrotom og varmeforseglet på glassmikroskopbiter og enten farget med alkalisk toluidin blå (en histologisk farge for myelin) eller bearbeidet for immuncytokjemi for hovedmyelinproteiner. På grunn av at ryggmargen til myelinreduserte rotter nesten fullstendig mangler myelin vil myelin dannet ved eller nære ved injeksjonssetet være oppnådd fra implanterte celler. Det er mulig at injeksjonsprosessen kan føre til introduksjon av Schwan celler (myelinerende celler til det perifere nervesystemet) i ryggmargen. Disse cellene har evne til å danne myelin innenfor sentralnervesystemet, men kan lett bli skjelnet fra oligodendrocytter ved anvendelse av enten lysmikroskopi eller immuncytokjemi for CNS myelinelementer. Som angitt ovenfor er det vanligvis en liten mengde CNS myelin i ryggmargen hos myelinredusert rotte. Dette myelinet kan bli sjelnet fra normalt donormyelin basert på mutasjon innenfor genet for hoved CNS myelinprotein, proteolipidprotein (PLP).
Myelinet hos muelinreduserte rotter er ikke imunreaktivt for PLP, men det er donormyelin.
Myelinerte aksoner finnes ikke bare ved injeksjonsseter, men også i ved siden av liggende vertebraldeler som indikerer at de injiserte forløpercellene både migrerer bort fra injeksjonsstedet og differensierer til oligodendrocytter for å danne myelin.
Eksempel 3
Remyelinering i human neuromyelitis optika
Neuromyelitis optika er en tilstand som involverer demyelinering av hovedsakelig ryggmargen og den optiske nerve. Begynnelsen er vanligvis akutt og i 50% av tilfellene inntrer døden i løpet av måneder. Alvorligheten av demyelineringen samt lesjonssetene kan bli bekreftet ved magnetisk resonans billeddannelse (MRI).
Forløpercellene blir dannet fra føtalt humant vev ifølge fremgangsmåten beskrevet i eksempel 1. Cellene blir injisert stereotaktisk i den hvite substansen i ryggmargen i nærheten av plakk visualisert ved MRI. Celler blir også injisert rundt den optiske nerven om nødvendig. Boosterinjeksjoner kan bli utført etter behov.
Eksempel 4
Remyelinering i human Plizaeus-Merzbacher sykdom Pelizaeus-Merzbacher sykdom er en tilstand som involverer demyelinering av CNS. Alvorlighetsgraden til demyelineringen samt lesjonssetene kan bli bekreftet ved magnetisk resonansbilleddannelse (MRI).
Forløperceller blir dannet fra føtalt humant vev ifølge fremgangsmåten beskrevet i eksempel 1. Cellene blir stereotaktisk injisert i den hvite substansen til ryggmargen i nærheten av plakk visualisert ved MRI. Celler blir også injisert rundt den optiske nerven etter behov. Boosterinjeksjoner kan bli utført etter behov.

Claims (5)

1. Anvendelse av isolerte multipotente neuralstamceller som prolifererer i et kulturmedium inneholdende epidermal vekstfaktor TGFcc eller TGFp for å produsere forløperceller der cellene høstes fra en donor, for fremstilling av et cellepreparat for å oppnå remyelinering av et demyelinert akson in vivo.
2. Anvendelse ifølge krav 1, der kulturmediet inneholder epidermal vekstfaktor.
3. Anvendelse ifølge krav 1, der forløpercellene er i neurosfærer.
4. Anvendelse ifølge krav 1 eller 2, der remyelinering effektueres hos en pasient som har en demyelinerende sykdom.
5. Anvendelse ifølge krav 4 der sykdommen er valgt fra gruppen bestående av multippel sklerose, disseminert perivenøs enkefalomyelitt, neuromyelitis optika, konsentrisk sklerose, akutt disseminert enkefalomyelitides, post enkefalomyelitt, akutt hemorragisk leukoenkefalopati, progressiv multifokal leukoenkefalopati, idiopatisk polyneuritt, difterisk neuropati Pelizaeus-Merzbauer sykdom, neuromyelitis optika, diffus cerebral sklerose, sentral pontine myelinosis og leukodystrofi.
NO19951378A 1992-10-16 1995-04-07 Anvendelse av isolerte mulitipotente nervestamceller som prolifererer i et kulturmedium for fremstilling av et cellepreparat for a oppna remyelinering av et demyelinert akson in vivo. NO324411B1 (no)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US96181392A 1992-10-16 1992-10-16
PCT/CA1993/000428 WO1994009119A1 (en) 1992-10-16 1993-10-15 Remyelination using neural stem cells

Publications (3)

Publication Number Publication Date
NO951378L NO951378L (no) 1995-04-07
NO951378D0 NO951378D0 (no) 1995-04-07
NO324411B1 true NO324411B1 (no) 2007-10-08

Family

ID=25505054

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO19951378A NO324411B1 (no) 1992-10-16 1995-04-07 Anvendelse av isolerte mulitipotente nervestamceller som prolifererer i et kulturmedium for fremstilling av et cellepreparat for a oppna remyelinering av et demyelinert akson in vivo.

Country Status (13)

Country Link
EP (1) EP0664832B1 (no)
JP (1) JPH08502172A (no)
KR (1) KR950703639A (no)
AT (1) ATE221117T1 (no)
AU (1) AU683023B2 (no)
CA (1) CA2147162C (no)
DE (1) DE69332147T2 (no)
DK (1) DK0664832T3 (no)
ES (1) ES2180547T3 (no)
FI (1) FI951677A (no)
NO (1) NO324411B1 (no)
PT (1) PT664832E (no)
WO (1) WO1994009119A1 (no)

Families Citing this family (43)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5849553A (en) * 1992-07-27 1998-12-15 California Institute Of Technology Mammalian multipotent neural stem cells
US5928947A (en) * 1992-07-27 1999-07-27 California Institute Of Technology Mammalian multipotent neural stem cells
US6001654A (en) * 1994-01-28 1999-12-14 California Institute Of Technology Methods for differentiating neural stem cells to neurons or smooth muscle cells using TGT-β super family growth factors
AU3338595A (en) * 1994-07-29 1996-03-04 Dalhousie University Propagation and inducible differentiation of human fetal central nervous system progenitor cells
GB9422643D0 (en) * 1994-11-08 1995-01-04 Stringer Bradley M J Neural cell lines
CN1170435A (zh) * 1994-11-14 1998-01-14 纽罗斯菲里斯控股有限公司 神经干细胞增殖的调节
US6969608B1 (en) 1996-08-26 2005-11-29 Mcgill University Pharmaceuticals containing multipotential precursor cells from tissues containing sensory receptors
US6787355B1 (en) 1996-08-26 2004-09-07 Mcgill University Multipotent neural stem cells from peripheral tissues and uses thereof
US6713247B1 (en) 1996-09-03 2004-03-30 Signal Pharmaceuticials, Inc. Human CNS cell lines and methods of use therefor
CA2216439A1 (en) * 1996-09-25 1998-03-25 Derek Van Der Kooy Pharmaceuticals containing retinal stem cells
US20020123143A1 (en) 1997-08-22 2002-09-05 Jean Toma Multipotent stem cells from peripheral tissues and uses thereof
US5968829A (en) * 1997-09-05 1999-10-19 Cytotherapeutics, Inc. Human CNS neural stem cells
US8263402B1 (en) * 1998-10-19 2012-09-11 Cornell Research Foundation, Inc. Method for isolating and purifying oligodendrocytes and oligodendrocyte progenitor cells
US6238922B1 (en) * 1999-02-26 2001-05-29 Stemcells, Inc. Use of collagenase in the preparation of neural stem cell cultures
WO2001053503A1 (en) 2000-01-18 2001-07-26 Cornell Research Foundation, Inc. Neural progenitor cells from hippocampal tissue and a method for isolating and purifying them
US7544509B2 (en) 2000-01-24 2009-06-09 Mcgill University Method for preparing stem cell preparations
JP2003521910A (ja) 2000-02-11 2003-07-22 ザ スキーペンズ アイ リサーチ インスティテュート インコーポレイテッド 網膜幹細胞の分離及び移植
US6683108B1 (en) 2000-03-30 2004-01-27 Curis, Inc. Agonists of hedgehog signaling pathways and uses related thereto
US7115653B2 (en) 2000-03-30 2006-10-03 Curis, Inc. Small organic molecule regulators of cell proliferation
US8852937B2 (en) 2000-03-30 2014-10-07 Curis, Inc. Small organic molecule regulators of cell proliferation
US6613798B1 (en) 2000-03-30 2003-09-02 Curis, Inc. Small organic molecule regulators of cell proliferation
AU2001283504A1 (en) * 2000-07-27 2002-02-13 The Mclean Hospital Corporation Cell implantation therapy for neurological diseases or disorders
US6908732B2 (en) 2000-10-13 2005-06-21 President & Fellows Of Harvard College Compounds and methods for regulating cell differentiation
JP2002204691A (ja) * 2001-01-09 2002-07-23 Japan Science & Technology Corp 神経細胞再髄鞘化のための移植用細胞キット
WO2002069975A1 (en) * 2001-03-02 2002-09-12 Stem Cell Therapeutics Inc. Use of estrogen to induce neural stem cell increase
JP3993560B2 (ja) * 2001-08-30 2007-10-17 ステム セル セラピューティクス インコーポレイテッド 神経幹細胞の分化およびその治療用途
EP1430114B1 (en) 2001-09-14 2012-01-18 Stem Cell Therapeutics Inc. Prolactin induced increase in neural stem cell numbers and therapeutical use thereof
WO2003027247A2 (en) 2001-09-24 2003-04-03 Sangamo Biosciences, Inc. Modulation of stem cells using zinc finger proteins
US20050019910A1 (en) * 2001-12-13 2005-01-27 Mutsumi Takagi Human cell culture medium and culture method
US7687505B2 (en) * 2002-01-14 2010-03-30 Board Of Trustees Of The University Of Illinois Use of modified pyrimidine compounds to promote stem cell migration and proliferation
ATE404200T1 (de) 2002-04-22 2008-08-15 Univ Johns Hopkins Med Modulatoren von hedgehog signalpfaden, zusammensetzungen und verwandte verwendungen
CA2492542A1 (en) * 2002-07-30 2004-02-05 Stem Cell Therapeutics Inc. Oligodendrocyte production from multipotent neural stem cells
WO2004053084A2 (en) 2002-12-09 2004-06-24 The Mclean Hospital Corporation Dopaminergic neurons differentiated from embryonic cells for treating neurodegenerative diseases
ATE493504T1 (de) 2003-09-12 2011-01-15 Stemcell Technologies Inc Test für neurale koloniebildung
CA2556266A1 (en) 2004-02-13 2005-08-25 Stem Cell Therapeutics Corp. Use of luteinizing hormone (lh), and chorionic gonadotropin (hcg) for proliferation of neural stem cells and neurogenesis
GB0509748D0 (en) * 2005-05-13 2005-06-22 Univ Glasgow Materials and methods relating to cell based therapies
AU2006297041A1 (en) 2005-09-27 2007-04-05 Stem Cell Therapeutics Corp. Oligodendrocyte precursor cell proliferation regulated by prolactin
WO2007106986A1 (en) 2006-03-17 2007-09-27 Stem Cell Therapeutics Corp. Dosing regimes for lh or hcg and epo for treatment of neurological disorders
US20110218176A1 (en) 2006-11-01 2011-09-08 Barbara Brooke Jennings-Spring Compounds, methods, and treatments for abnormal signaling pathways for prenatal and postnatal development
EP3187581A1 (en) 2008-12-23 2017-07-05 BOCO Silicon Valley, Inc. Target populations of oligodendrocyte precursor cells and methods of making and using same
EP2380972B1 (en) 2010-04-19 2012-09-19 Technische Universität Dresden Methods and compositions for the expansion of somatic stem cells and progenitor cells
US10758572B2 (en) 2012-02-17 2020-09-01 The Schepens Eye Research Institute Phenotype profile of human retinal progenitor cells
WO2017172976A1 (en) * 2016-03-29 2017-10-05 The Regents Of The University Of California Methods for promoting oligodendrocyte regeneration and remyelination

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1991002003A1 (en) * 1989-08-04 1991-02-21 Board Of Regents, The University Of Texas System Methods and compositions; purified preparation of neural progenitor regulatory factor
WO1991009936A1 (en) * 1989-12-26 1991-07-11 Hana Biologics, Inc. Proliferated neuron progenitor cell product and process
ES2198404T5 (es) * 1991-07-08 2008-05-01 Neurospheres Holdings Ltd. Celulas progenitoras neurales que responden a factor de crecimiento y que se pueden hacer proliferar in vitro.

Also Published As

Publication number Publication date
JPH08502172A (ja) 1996-03-12
WO1994009119A1 (en) 1994-04-28
ES2180547T3 (es) 2003-02-16
EP0664832A1 (en) 1995-08-02
AU683023B2 (en) 1997-10-30
CA2147162A1 (en) 1994-04-28
PT664832E (pt) 2002-12-31
DE69332147D1 (de) 2002-08-29
DE69332147T2 (de) 2002-12-12
AU5147493A (en) 1994-05-09
NO951378L (no) 1995-04-07
ATE221117T1 (de) 2002-08-15
KR950703639A (ko) 1995-09-20
DK0664832T3 (da) 2002-11-11
EP0664832B1 (en) 2002-07-24
FI951677A0 (fi) 1995-04-07
NO951378D0 (no) 1995-04-07
FI951677A (fi) 1995-04-07
CA2147162C (en) 2002-04-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU683023B2 (en) Remyelination using neural stem cells
EP0594669B9 (en) Growth factor-responsive neural progenitor cells which can be proliferated in vitro.
JP4023822B2 (ja) ドーパミン作動性細胞のインビトロ誘導
AU716811B2 (en) Regulation of neural stem cell proliferation
ES2194016T5 (es) Factores biologicos y celulas germinales neurales.
Lachapelle et al. Transplantation of CNS fragments into the brain of shiverer mutant mice: Extensive myelination by implanted oligodendrocytes: I. Immunohistochemical studies
EP1261357B1 (en) Isolation and transplantation of retinal stem cells
US20020098585A1 (en) Hypoxia-mediated neurogenesis
AU2001234998A1 (en) Isolation and transplantation of retinal stem cells
Sakaguchi et al. Transplantation of neural progenitor cells into the developing retina of the Brazilian opossum: an in vivo system for studying stem/progenitor cell plasticity
WO1991009936A1 (en) Proliferated neuron progenitor cell product and process
WO2001076507A2 (en) Use of oxygen carriers to improve grafted cell survival in neural transplantation
Madarász et al. In vitro formation of type 2 astrocytes derived from postnatal rat hypothalamus or cerebral cortex
Hammang et al. Transplantation of epidermal growth factor-responsive neural stem cell progeny into the murine central nervous system
WO1999055838A1 (en) Compositions and methods for the characterization and transplantation of mammalian retinal stem cells
CA2399589A1 (en) Novel growth factor-responsive progenitor cells which can be proliferated in vitro
Dobrenis Preparation of fetal rat hindbrain neuronal cultures and effects of an astrocyte-derived trophic factor
MXPA97003493A (en) In vitro induction of dopaminergi cells