NO20130955A1 - Metode for detektering av varianter av infeksiøs pankreas nekrosevirus i akvatiske dyr, assosiert deteksjonskit og anvendelse av metoden for akvatiske dyr - Google Patents

Metode for detektering av varianter av infeksiøs pankreas nekrosevirus i akvatiske dyr, assosiert deteksjonskit og anvendelse av metoden for akvatiske dyr Download PDF

Info

Publication number
NO20130955A1
NO20130955A1 NO20130955A NO20130955A NO20130955A1 NO 20130955 A1 NO20130955 A1 NO 20130955A1 NO 20130955 A NO20130955 A NO 20130955A NO 20130955 A NO20130955 A NO 20130955A NO 20130955 A1 NO20130955 A1 NO 20130955A1
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
virus
cells
ipnv
pancreatic necrosis
fragment
Prior art date
Application number
NO20130955A
Other languages
English (en)
Inventor
David Farcas Guendelman
Jaime Tobar Rubio
Sofia Jerez Ortega
Mario Caruffo Madrid
Original Assignee
Ct Veterinario Y Agricola Limitada
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ct Veterinario Y Agricola Limitada filed Critical Ct Veterinario Y Agricola Limitada
Publication of NO20130955A1 publication Critical patent/NO20130955A1/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/70Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
    • C12Q1/701Specific hybridization probes

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Den foreliggende oppfinnelsen vedrører en rimelig, rask, spesifikk, sensitiv og egnet for rutinebruk ved overvåkning av aktiviteter, fremgangsmåte for bestemmelse av varianter av infeksiøs pankreasnekrose-virus (IPNV) i prøver med ulik opprinnelse; og assosiert sett.

Description

Den foreliggende oppfinnelsen vedrører en fremgangsmåte for å bestemme varianter av infeksiøs pankreasnekrose-virus (IPNV) for bekjempelse av virusinfeksjoner i akvatiske dyr, spesielt med tanke på fisk, og nærmere bestemt en fremgangsmåte for å bestemme IPNV-variantene i en blanding, for eksempel en vaksine, en cellekultur eller en feltprøve. Oppfinnelsen omfatter settet og en operativ fremgangsmåte for detektering av IPNV, som er viktig i utviklingen innenfor internasjonal havbruksnæring. Oppfinnelsen har stor sensitivitet og spesifisitet, er enkel og rask å anvende og har stor effektivitet.
BAKGRUNN FOR OPPFINNELSEN
Økende betydning av akvakultur i den globale matforsyningen Med den stadige befolkningsøkningen over hele verden har den globale matforsyningen fra akvakultursektoren hatt en økning. Dette representerer en utfordring for sektoren, og det er derfor nødvendig å se på behovet for forbedring av havbruksnæringens produktivitet over hele verden. En av de viktige faktorene for å oppnå bærekraftig utvikling i denne sektoren er sykdomshåndtering. Sykdommer hos fisk skyldes ulike faktorer, og sykdommer som skyldes virus, er de sykdommene som er særlig viktig for havbruksnæringen over hele verden.
Viktigheten av sykdomshåndtering ved sykdommer som skyldes virus i akvakultur Infeksjonssykdommer truer stadig bærekraften innen havbruksnæringen, siden sykdommer med virusopprinnelse er vanskeligst å håndtere. For eksempel fører sykdommer som skyldes pankreassykdomsviruset (PDV), infeksiøs lakseanemi-viruset (ISAV) og infeksiøs pankreasnekrose-viruset (IPDV) til store tap for havbruksnæringen i Chile samt i resten av verden.
Betydningen av infeksiøs pankreasnekrose-virus i akvakultur
Det ble først rapportert om infeksiøs pankreasnekrose i et oppdrettsanlegg for bekkerøye i 1941 (McGonigle, Trans. Am. Fish. Soc. 70: 297, 1941), og i 1960 ble det bekreftet at det skyldtes et virus (Wolf et al, Proe. Soc. Exp. Biol. Med. 104: 105-110, 1960).
Infeksiøs pankreasnekrose-virus (IPNV) forårsaker infeksiøs pankreasnekrose (IPN), en svært smittsom og ødeleggende sykdom, som fremkaller nekrose og betennelse i bukspyttkjertelen, og som påvirker en variert gruppe verter over hele verden, slik som regnbueørret, bekkerøye, atlanterhavslaks, karper, bløtdyr og krepsdyr (Pilcher and Fryer, Crit. Rev. Microbiol. 7: 287-364, 1980; Wolf, Fish vimses andfish viral diseases, 1988; Hill and Way, Annu. Rev. Fish Dis. 5, 55- 77, 1995). Kliniske tegn på syk fisk inkluderer utspilt buk, unormal svømming, mørkere pigmentering i skinnet og lokale neokritiske skader i eksokrint pankreasvev, og ved undersøkelse av innsiden av en berørt fisk, er hvitt mukus observert i patognomisk mage av sykdommen (McKnight and Roberts, Br. Vet. J. 132:76-86,1976). Ungfisk, fra to til fire måneder gammel, ser ut til å være mer ømfintlig overfor en IPNV-infeksjon, noe som resulterer i høy dødelighet (Wolf et al, U. S. Dept. Int. Bur. Sport Fish and Wildlife; Fish Disease Leaflet 1:14, 1966; Frantsi and Savan,J. Wildlife Dis. 7:249-255, 1971). Når det gjelder ørret, angriper IPNV yngre fisk rundt fem til seks uker etter startforing.
IPNV kan forårsake store utbrudd i produksjonssystemer, der smittsomme stammer av IPNV kan forårsake en dødelighet på mer enn 90 % for fisk som er yngre enn fire måneder, og kan forårsake en alvorlig forsinkelse i veksten til fisk som overlever infeksjonen, som forblir asymptomatiske bærere/verter for resten av livet, og som på den måten fungerer som smittereservoarer og sprer IPNV i mediet (Mangunwiryo and Aguis, J. Fish Dis. 11,125- 132, 1988; Reno et al, J. Fish. Res. Board Can. 35, 145-1456,1978; McAllister et al, Dis. Aquat. Org. 2: 235-237,1987; McKnight and Roberts, Br. Ven. J. 132: 76-86,1976 ; Billi and Wolf, J. Fish. Res. Bd. Can. 26:1459-1465, 1969; Yamamoto, Can. J. Micro. 21:1343-1347, 1975; Hedrick, Ph.D. Doktoravhandling, " Persistent Infections of Salmonid Cell Lines With Infectious Pancreatic Necrosis Virus: A Model for the Carrier State in Trout," Oregon steg University, 1980).
Syk fisk samt asymptomatisk IPNV-bærerfisk representerer derfor et alvorlig problem i havbruksnæringen, siden den eneste nåværende tilgjengelige bekjempelsesmetoden for viruseliminering i bærer-/vertsfisk, er eliminering av disse fiskene. Følgelig er IPNV-virus en sykdomsagens av stor økonomisk betydning for havbruksnæringen i Chile og i resten av verden.
Klassifisering av IPNV
IPNV tilhører Aquabirnavims-genuset fra Birnaviridae-familien (Dobos, Ann. Rev. Fish Dis. 5: 24-54, 1995; Van Regenmortel et al, Virus Taxonomy, Vllth Report of the /C7T:481-486, 2000).
Klassifisering av IPNV-serogrupper og -genogrupper
Aquabirnavirus, slik som IPNV, kan klassifiseres i to serogrupper, kalt A og B, basert på resultatene av kryss-nøytralisering med antistoffer (Hill and Way, Annu. Rev. Fish Dis. 5, 55- 77, 1995). Serogruppe A har 9 serotyper, inkludert flertallet av IPNV-isolater assosiert med sykdom i salmonider og serogruppe B med bare én serotype (Hill and Way, Annu. Rev. Fish Dis. 5, 55- 77, 1995).
Bortsett fra tradisjonell serologisk klassifisering, finnes det en nyere klassifisering av Aquabirnavirus på et genetisk nivå, basert på den fylogenetiske analysen av hovedkapsidproteinet fra viruset (VP2) (Blake et al, Dis. Aquat. Org. 45, 89-102,2001; Cutrin et al, Applied and Environmental Microbiology 70,1059-1067,2004; Zhang and Suzuki, Journal of Fish Diseases 27, 633-643, 2004; Nishizawa et al, Journal of General Virology 86, 1973-1978, 2005; Bain et al, Journal of Fish Diseases, 31, 37-47, 2008).
IPNV-virion
IPNV-virionet er cirka 60 nm i diameter, har ingen kappe og har et enkelt ikosaedrisk kapsid (Dobos, Nucl Acids Res. 3:1903-1919,1976; Dobos, J Virol. 21:242-258, 1977; Fauquet et al, Virus Taxonomy: Classification and Nomenclature of Vimses: Eighth Report of the International Committee on the Taxonomy of Vimses, 561-569, 2005). De strukturelle hovedproteinene i virionet er klassifisert som VP1 (4 % av den totale mengden virion), VP2 (62 %), VP3 (28 %) og VP3a (6 %) (Dobos, Annu. Rev. Fish Dis. 5:24-54,1995).
IPNV-genom
IPNV er prototypeviruset for Birnaviridae- familien, som er en dobbelt-trådet, bisegmentert RNA-genomfamilie (Dobos, Nucl. Acids Res. 3:1903-1919, 1976; Dobos, J. Virol. 21:242-258, 1977; Van Regenmortel et al, Vims Taxonomy, Vllth Report of the ICTVASl- 486,2000). Det minste genomiske segmentet, kalt segment B av 2784 bp, er monocistronisk og koder for et 94 kDa-protein kalt VP1, som er den putative RNA-avhengige RNA-polymerasen (figur IB) (Duncan et al, Virology 181, 541- 552,1991; Duncan et al, J. Virol. 61, 3655- 3664, 1987; Dobos, Virology 208: 19-25,1995). Det lange genomiske segmentet, kalt segment A av 3097 bp, er bicistronisk. En stor åpen leseramme finnes i dette segmentet, og det koder for et 107 kDa-polyprotein (NH2-preVP2-VP4-VP3-COOH) som er kuttet på en kotranslasjonell måte for proteaseaktiviteten til protein VP4 (27.5 kDa), som frembringer kapsideproteinene VP2 (54 kDa) og VP3 (31 kDa) (figur IA) (Chang et al, Can. J. Microbiol. 24:19-27,1978; Huang et al, J. Virol. 60:1002-1011, 1986; Dobos,./. Virol. 21: 242-258, 1977; Duncan et al, J. Virol. 61: 3655-3664, 1987). Polyproteinet presenterer kutteseter for proteasen mellom aminosyre 508 og 509 i sammenføyningen mellom VP2 og VP4 og mellom aminosyre 734 og 735 i sammenføyningen mellom VP4 og VP3 (Dobos, J. Virol. 21:242-258,1977; Duncan et al, J. Virol. 61,3655- 3664,1987; Petit et al, J. Virol. 74:2057-2066,2000). Den andre åpne leserammen i segment A går forut for og overlapper delvis den i det første polyproteinet og koder for et ikke-strukturelt, arginin-rikt 15 kDa-protein kalt VP5 (figur IA). Selv om dette proteinet ikke er til stede i virionet, er det oppdaget i infiserte celler (Heppell et al, J. Gen. Virol. 76, 2091- 2096, 1995; Magyar and Dobos, Virology 204: 580-589, 1994).
Virulensdeterminanter for IPNV og VP2-kapsidprotein
IPNV-genom har stor variasjon når det sammenlignes med andre virus (Heppell et al, Virology 214, 40—49, 1995) og har ulike grader av virulens i isolater fra den samme serotypen (Bruslind and Reno, J. Aquat. Anim. Health 12, 301-315, 2000; Shivappa et al, Dis. Aquat Org. 61:23-32, 2003).
Genet som koder for VP2, hovedproteinbestanddelen av eksternt viralt kapsid, har to hypervariable korte segmenter i midten av kodeområdet. Endringer i nukleotider i disse variable genetiske områdene korrelerer med forskjeller i virulensen til IPNV observert i kontrollerte forhold og i virulente og avirulente isolater som finnes i villfisk. På et proteinnivå har VP2 flertallet av epitoper av nøytraliserende antistoffer. (Frost et al, J. Gen. Virol. 76, 1165- 1172, 1995; Tarrab et al, J. Gen. Virol. 76, 551-558,1995; Heppell et al, Virology 214,40-49, 1995). I denne korresponderer mer variable rester med posisjonene 217,221,247 og 500 (Blake et al, Dis. Aquat. Org. 45, 89-102,2001), der posisjonene 217 og 221 er ansvarlig for forskjeller i virulens i stammer av IPNV av samme serotype, spesielt resten i posisjon 221. Høyvirulente isolater har treoninrester i posisjon 217 og alanin i posisjon 221, og avirulente isolater har i stedet treonin i posisjon 221 (Bruslind and Reno, J. Aquat. Anim. Health 12, 301-315, 2000; Santi et al, Virology 322:31^0, 2003; Shivappa et al, Dis. Aquat Org. 61:23-32, 2003; Santi et al, Virology 322:31^10,2004; Song et al, J. Virology, Aug: 10289-10299,2005). Endring av aminosyre i posisjon 221 fra treonin til alanin er korrelert i forhold til endringen i den virulente fenotypen til svekket i feltisolater holdt i kultur i CHSE-214-celler, og den samme svekkelsen og endringen i aminosyre forekommer i bærerfisk (Munro et al, J. Fish Dis., 29, 43^18, 2006).
Nåværende diagnostiske metoder for IPNV-infeksjon
Siden IPNV kan være opphav til store utbrudd i ørret- og lakseoppdrettsanlegg, noe som fører til høy morbiditet og dødelighet i kulturer og som en konsekvens, store økonomiske tap for akvakultursektoren, er det nødvendig med en hurtig storskalaovervåkning for å redusere sannsynligheten for utbrudd. På bakgrunn av dette er det blitt utviklet ulike metoder for detektering av IPNV-virus (Winton, Ann Rev Fish Dis:S3- 93, 1991). Disse fremgangsmåtene inkluderer isolering av virus fra utvalgt fisk i etablerte CHSE-214-cellelinjer og bekrefter virusets identitet. Dette gjøres ved serumnøytralisering, ELISA-assayer, in situ hybridiseirngsassayer ved hjelp av biotinylerte primere, immunogullmerkingsassayer og immunohistokjemi og konvensjonelle eller sanntids RT-PCR-assayer. Av disse metodene er sanntids RT-PCR den raskeste og mest sensitive metoden for detektering.
IPNV-variantanalyse
Alle metodene som beskrives ovenfor, er nyttige ved diagnostisering av IPNV, men ingen av dem er i stand til å fastslå egenskapene til en IPNV-variant funnet i en prøve. Nå for tiden gjøres IPNV-variantanalysen gjennom cDNA- eller RT-PCR-produktsekvensering, som oppnås fra det ekstraherte RNA fra ulike prøvekilder, der formålet er å oppnå nukleotidsekvensen og dedusere VP2-aminosyresekvensen. Variantanalyse gjennom sekvensering av VP2-gensoner har operative ulemper ved anvendelse som en rutineanalyse for vaksine- eller diagnostikk-kontroll. Metoden er svært kostbar og forutsetter et langt tidsperspektiv for å oppnå resultater. Videre kan sekvensering frembringe tvetydige resultater avhengig av størrelsen på prøven. Fremgangsmåten som foreslås heri, er den første som tillater diagnostisering og variantanalyse i det samme settet. En RT-PCR og videre restriksjonsanalyse er en analyse som er rimelig, rask, spesifikk og har god sensitivitet, som kan benyttes i rutineform for kontroll av immunologiske produkter eller diagnostisering av IPNV, og hovedsaklig ved bestemmelse av hvilke IPNV-varianter som finnes. Tillater overvåkning i vaksineutviklingsanlegg og har stor nytteverdi ved validering av stammen som anvendes for viral spredning i cellekulturer, og som på grunn av de lave kostnadene knyttet til implementering, tillater rutineanvendelse i havbruksnæringen.
GENERELL BESKRIVELSE AV OPPFINNELSEN
Den foreliggende oppfinnelsen vedrører en rimelig, rask, spesifikk, sensitiv og rutinemessig anvendelse av overvåkningsfremgangsmåte for bestemmelse av IPNV-varianter i prøver av ulik opprinnelse. Fremgangsmåten tar for seg infeksjonen av CHSE-214 konfluente celler med IPN-virusisolater og ytterligere kultur derav. Deretter ekstraheres RNA fra infiserte celler og anvendes i en omvendt transkripsjonsreaksjon for syntese av cDNA som vil anvendes som templat under amplifikasjon av et fragment av VP2-protein. Fragmentet er renset og klonet i en vektor som er ytterligere anvendt i transformering av kjemokompetente celler. Koloniene med interessante innskudd, som er positive for et VP2-fragment under amplifikasjon ved hjelp av PCR, er dyrket i flytende medium og utsatt for rensing av plasmid-DNA. Til slutt utsettes DNA-fragmentet amplifisert fra VP2 for en restriksjonsanalyse for evalering av en sekvenskoding for aminosyrer i posisjon 217 og 221 for protein VP2.
Følgelig tilveiebringer den foreliggende oppfinnelsen en fremgangsmåte for å bestemme virusvarianter av infeksiøs pankreasnekrose i vaksiner, cellekulturer og/eller isolatfeltprøver, omfattende de nødvendige bestanddelene for å utføre fremgangsmåten.
DETALJERT BESKRIVELSE AV OPPFINNELSEN
Den foreliggende oppfinnelsen beskriver en fremgangsmåte for å bestemme varianter av infeksiøs pankreasnekrose-virus i prøver av ulik opprinnelse, slik som vaksiner, cellekulturer og feltprøver. Fremgangsmåten omfatter følgende trinn: A. VIRUSSPREDNING. Chinook salmon embryo 214-celler (CHSE-214) klargjøres til de når 100 % konfluens. Disse cellene dyrkes ved 18 °C i plastflasker med 25 cm<2>overflate i MEM (Gibco) medium, supplementert med 0,08 % natriumbikarbonat, 0,238 % HEPES, 1 % fungizone (amfotericin B) (HyClone) og 10 % føtalt bovinserum (HyClone). Celler dyrkes i plastflasker med 25 cm2 overflate.
Konfluente celler infiseres med dyrkingsampuller av IPN-virus fra virulente og avirulente stammer. 1 ampulle for hver 25cm2 av kultur med CHSE-214. Kulturen holdes ved 18 °C til den når 100 % cytopatsk effekt, som oppnås på 5-6 dager.
B. RNA-ekstrahering. 600 ul supernatant fra cellekulturen tas opp og 600 ul TRIzol (Invitrogen) eller TRI Reagent (Ambion) tilsettes. Rysting i 10 sekunder. Deretter tilsettes 200 ul kloroform og rysting i 20 sekunder. Inkubering ved romtemperatur i 10 minutter. Sentrifugering ved 12,000g i 15 minutter ved 4 °C og supernatanten er gjenopprettet. 800 ul isopropanol tilsettes og settes til å presipitere i 15 minutter ved romtemperatur. Sentrifugering ved 16,000g i 15 minutter ved 4aC. Supernatanten er forkastet og presipitatet vaskes med 600 ul 70 % etanol, klargjort med nukleasefritt vann. Precipitatet settes til å tørke i maksimalt 20 minutter og resuspenderes i 50 ul nukleasefritt vann. C. RT-PCR. En omvendt transkripsjon utføres ved hjelp av Improm-II-settet (Promega) i henhold til følgende protokoll: en blanding i 0,2 ml rør av 2 ul viral RNA, 2 ul nukleasefritt vann og 1 ul Random Primers (Promega) 4 u.g/ul. Inkubering ved 70 °C i 5 minutter og avkjøling ved 4 °C i 5 minutter. Reaksjonen stanses og 4 ul RT buffer 5x, 2,4 ul MgCl225 mM, 1 ul dNTPs 10 uM (Promega), 1 ul RT, lul RNAse-inhibitor (RNasin®, Promega), 6,1 ul nukleasefritt vann tilsettes. Deretter følges programmet: 5 minutter ved 25 °C, 1 time ved 45°C, 15 minutter ved 70 °C.
Etterpå utføres PCR-programmet for amplifisering av et VP2-fragment. Til et 0,2 ml rør 4 ul viraltemplat cDNA, 25 ul GoTaq Green Master Mix (Promega), 3 ul oligo VirVp2-R (Sekvens: 5'-TTGTCATTTGTGGCCAGCACGGAGCTGA-3'), 2,3 ul oligo VirVp2-F (Sekvens: 5 '-GTCCTGAATCTACCAACAGGGTTCGAC-3') 16 ul nukleasefritt vann tilsettes. Følgende PCR-program anvendes: initiell denaturering: 3 minutter ved 94 °C, 35 sykluser av: 30 sekunder ved 94 °C, 30 sekunder ved 56 °C, 30 sekunder ved 72 °C og en endelig forlengelse i 5 minutter ved 72 °C.
rensing og kloning. Det amplifiserte produktet kontrolleres ved hjelp av visualisering av amplifikatet i en agarosegel. Etterpå klargjøres en DNA-rensing fra geleen ved å legge hele volumet i en 1 % agarosegel. Geleen kjøres i 35 minutter ved 90 volt. En rensing utføres fra geleen ved hjelp av SV Gel Clean-Up System kit (Promega) eluerende i et endelig volum på 30 ul.
Det amplifiserte fragmentet er innskutt i pGem-T Easy-vektor (Promega) i henhold til produsentens foreslåtte protokoll. Kjemokompetente E. coli JM110-celler klargjøres ved hjelp av kalsiumkloirdmetoden. Cellene transformeres med pGem-T Easy-vektoren inneholdende det klonede fragmentet fra VP2 fra enten den virulente eller avirulente stammen. Cellene sås på LB-agarplater og inkuberes ved 37 °C i 15-18 timer eller til kolonier oppnås.
KONTROLL AV KOLONIER. Et utvalg av transformerte E. coli-kolonier dannes og inokuleres i 5 ml LB medium (1 % Triptone, 0,5 % NaCl, 0,5 % gjærekstrakt, 100 ug/ml ampicillin) inkubering i 20 cirka timer, en PCR utføres for å kontrollere innskuddet anvendt i protokollen og programmet tidligere beskrevet, og som templat anvendes 2 ul av kulturbuljong.
Koloniene med innskuddet, utsettes for plasmid-DNA-ekstrahering ved hjelp av Miniprep-settet (Axygen) og sendes videre til sekvensering.
Hvert av plasmidene sendt til sekvensering utsettes for PCR for amplifisering av det innskutte fragmentet ved hjelp av programmet beskrevet tidligere, og deretter utsettes PCR-produktet for nedbryting (eng.: digestion) med restriksjonsenzymer.
D.-restriksjonsassay.
To restriksjonsassayer utføres, for å kontrollere de to korresponderende setene til aminosyre 217 og 221 av VP2. En direkte nedbryting ved hjelp av 10 ul av PCR-produktet og enzymene Mae III (Roche) for aminosyre 217 og Banll (New England Biolabs) eller dets isoschizomer Eco24 (Fermentas) for aminosyre 221. Nedbrytingen utføres i henhold til protokollene beskrevet av produsenten for hvert enzym og resultatet kontrolleres i en 5 % agarosegel med høy oppløsning ved 70 volt i 1 time.
BESKRIVELSE AV FIGURENE
FIGUR 1 Skjematisk fremstilling av RNA-genom av IPNV, segment A og V og dets proteiner. FIGUR 2 Flytdiagram som viser fremgangsmåtens trinn ifølge oppfinnelsen for å bestemme IPNV-varianter. FIGUR 3 Restriksjonsanalyse av to vaksiner. Nedbryting av et PCR-produkt amplifisert fra cDNA fra vaksinene SRS-IPN SI-22260901 og kvadruppel CU-22290901.1 ett tilfelle er en større mengde IPNV SpThr (spor 2, blandingsvaksine) observert og i det andre en større åpenbar mengde IPNV SpAla (spor 3, kvadruppelvaksine). Det første sporet viser molekylvektmarkøren i basepar (bp). FIGUR 4 Restriksjonsanalyse fra supernatant av en cellekultur infisert med virulent IPN fra ADL Laboratories, passert i CHSE-214 5 ganger (5. passering). Nedbryting genererer kun ett fragment av 365 basepar, som indikerer at IPN-viruset i cellekulturen er svekket. Prøvene ble amplifisert med tilfeldige og spesifikke primere. Det første sporet viser molekylvektmarkøren i basepar (bp). FIGUR 5 Restriksjonsanalyse fra alikvot fra ampulle IPN PM-24619 IPNv Sp-virulent fra ADL Laboratories. Nedbryting genererte to fragmenter (i bildet vises bare det ene siden begge er av lignende størrelse) av cirka 200 basepar, som indikerer at IPN-viruset som er til stede i ampullen, er virulent. cDNA-prøvene anvendt som templat for VirVP2-fragmentsyntesen ble amplifisert med tilfeldige og spesifikke primere. Det første og siste sporet viser molekylvektmarkøren i basepar (bp). FIGUR 6 Analyse av IPN-varianter i fiskeisolater. CM og VQ korresponderer med fisk isolert fra ulike oppdrettsanlegg. SP:Fiskekultur; +R: Kontroll av restriksjonsenzymnedbryting; Ca+ kontroll av alaninnedbryting; Ct+: kontroll av treoninnedbryting. Nedbryting viser nærværet av begge IPN-varianter, virulente og svekkede, siden to størrelser av bånd er til stede, ett av 365 basepar og det andre av cirka 200 basepar. Det første og siste sporet viser molekylvektstandarden (std) i basepar (bp).
ANVENDELSESEKSEMPLER
EKSEMPEL 1
RFLP for validering av svekkede og virulente IPNv- stammer i vaksinepreparat. Restriksjonsfragmentlengdepolymorfisme ( RFLP) ble anvendt til evaluering av nærvær av svekkede og virulente stammer i et preparat med kommersiell vaksine. Direkte RNA-ekstrahering ble utført fra det immunologiske produktet korresponderende med to inaktiverte injiserbare vaksiner (virina) mot IPNV i monovalente formuleringer (SRS-IPN SI-22260901), i tillegg til polyvalente (kvadruppel CU-22290901s) kommersielt tilgjengelige hos Centrovet Ltd. Etterpå ble en DNA-fragmentsekvenskoding for VP2-protein amplifisert, som presenterer molekylære determinanter av virulens, gjennom en RT-PCR-reaksjon. Følgelig ble cDNA-fragmentet amplifisert for en nøkkelregion i VP2 som ble utsatt for restriksjonsenzymnedbryting som tidligere indikert (1 enzymenhet per 1 ug DNA i 60 minutter ved 37 °C), nedbrytingsproduktet ble ytterligere analysert i en 3 % agarosegel ved hjelp av BrEt. Migreringsmønsteret var karakteristisk avhengig av virusstammen, enten virulent (alanin) eller avirulent (treonin), som observert i figur 3.
EKSEMPLER 2,3 og 4.
I likhet med betingelsene i eksempel 1 ble fremgangsmåten ifølge den foreliggende oppfinnelsen anvendt på prøver fra en cellekultur, en ampulle og en vevsprøve fra fisk. Detaljer om disse prøvene av ulik opprinnelse er oppsummert i tabell 1. Fremgangsmåten har vist seg å være sensitiv og effektiv for detektering av IPNV-varianter fra prøver av ulik opprinnelse. Som observert fra restriksjons-/nedbrytingsanalysen i figur 3 til 6.

Claims (15)

1. Fremgangsmåte for detektering av infeksiøs pankreasnekrosevirus (IPNV), omfattende følgende trinn: infisering av vertsceller med virusisolater, inkubering av vertscellene i en dyrkingsmedium, ekstrahering av viralt genetisk materiale fra vertsceller, amplifisering av et cDNA-fragment, rensing av det amplifiserte cDNA-fragmentet, kloning av cDNA-fragmentet i en vektor, transformering av kompetente celler med vektoren omfattende det ønskede innskuddet, screening av transformerte kolonier med vektoren for positiv PCR-amplifikasjon av ønsket innskudd, flytende kultur av utvalgte kolonier positive for PCR-reaksjon av ønsket innskudd, ekstrahering av plasmid-DNA fra kolonier positive for PCR-reaksjonskultur, amplifisering av ønsket DNA-fragment gjennom PCR, nedbryting av amplifisert DNA med restriksjonsenzymer, og utsetting av produktene for elektroforese i nedbrytingen.
2. Fremgangsmåten ifølge krav 1, hvori vertscellene er avledet fra cellekulturene som kan tåle replikering av IPNV-virus, inkludert Chinook Salmon Embryo-celler (CHSE-214), Salmon Head Kidney-celler (SHK-1-celler), Atlantic Salmon Kidney-celler (ASK-1-celler) eller celler fra Epiteliom Papulosum Cyprini (EPC).
3. Fremgangsmåten ifølge krav 1, hvori virusisolatene er hentet fra vaksiner, feltisolater og/eller cellekulturer.
4. Fremgangsmåten ifølge krav 1, hvori amplifiseringen av et virusfragment er utført ved hjelp av VirVP2-F- og VirVP2-R-primere.
5. Fremgangsmåten ifølge krav 1, hvori VirVP2-R-primeren har følgende sekvens: - 5 '-TTGTCATTTGTGGCCAGCACGGAGCTGA-3'
6. Fremgangsmåten ifølge krav 4, hvori VirVP2-F-primeren har følgende sekvens: - 5 '-GTCCTGAATCTACCAACAGGGTTCGAC-3'
7. Fremgangsmåten ifølge krav 1, hvori det amplifiserte cDNA- eller DNA-fragmentet er avledet fra uliker stammer av infeksiøs pankreasnekrose-viruset.
8. Fremgangsmåten ifølge krav 7, hvori virulente og avirulente stammer er inkludert.
9. Fremgangsmåten ifølge krav 1, hvori det i nedbrytingen av det amplifiserte DNA-fragmentet er anvendt et spesifikt restriksjonsenzym som kutter nukleotidsekvensen som korresponderer med posisjon 217 av protein VP2.
10. Fremgangsmåten ifølge krav 1, hvori det i nedbrytingen av det amplifiserte DNA-fragmentet et spesifikt restriksjonsenzym som kutter nukleotidsekvensen som korresponderer med posisjon 221 av protein VP2.
11. Fremgangsmåten ifølge krav 9, hvori restriksjonsenzymet Maelll eller isoschizomere derav er anvendt.
12. Fremgangsmåten ifølge krav 10, hvori restriksjonsenzymet Banll, Eco24 eller isoschizomere derav er anvendt.
13. Anvendelse av fremgangsmåten ifølge krav 1 for diagnostisering av nærværet av infeksiøs pankreasnekrose-virus og bestemmelse av varianter derav i akvatiske dyr.
14. Anvendelse av fremgangsmåten ifølge krav 13, hvori fisk, bløtdyr og krepsdyr anses som akvatiske dyr.
15. Sett for detektering av infeksiøs pankreasnekrose-virus, omfattende elementer nødvendig for utførelse av fremgangsmåten ifølge hvilke som helst av kravene 1 til 12.
NO20130955A 2010-12-10 2013-07-10 Metode for detektering av varianter av infeksiøs pankreas nekrosevirus i akvatiske dyr, assosiert deteksjonskit og anvendelse av metoden for akvatiske dyr NO20130955A1 (no)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CL2010001400A CL2010001400A1 (es) 2010-12-10 2010-12-10 Procedimiento para detectar el virus de la necrosis pancreatica infecciosa (ipnv) que comprende la amplificacion de fragmento codificante de vp2 mediante rt-pcr y digestion con enzimas de restriccion con el fin de detectar cepas atenuadas y virulentas de ipnv.
PCT/IB2011/055593 WO2012077089A2 (es) 2010-12-10 2011-12-09 Procedimiento de determinación de variantes del virus de la necrosis pancreática infecciosa en animales acuáticos; kit de detección asociado; y uso del procedimiento en animales acuáticos

Publications (1)

Publication Number Publication Date
NO20130955A1 true NO20130955A1 (no) 2013-08-27

Family

ID=46207552

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO20130955A NO20130955A1 (no) 2010-12-10 2013-07-10 Metode for detektering av varianter av infeksiøs pankreas nekrosevirus i akvatiske dyr, assosiert deteksjonskit og anvendelse av metoden for akvatiske dyr

Country Status (6)

Country Link
US (1) US20130266933A1 (no)
CA (1) CA2823673A1 (no)
CL (1) CL2010001400A1 (no)
GB (1) GB2500157A (no)
NO (1) NO20130955A1 (no)
WO (1) WO2012077089A2 (no)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2732726C1 (ru) * 2019-09-03 2020-09-22 Александр Юрьевич Михайлов Способ диагностики острого инфицированного панкреонекроза
CN112322789B (zh) * 2020-11-25 2023-04-18 中国水产科学研究院珠江水产研究所 一种检测大口黑鲈双rna病毒巢式pcr试剂盒及方法
CN113583968A (zh) * 2021-07-27 2021-11-02 中国水产科学研究院黑龙江水产研究所 传染性胰脏坏死病疫苗及其病毒在大鳞大麻哈鱼胚胎细胞上扩增的方法
CN118196705B (zh) * 2024-03-15 2024-10-29 浙江大学 鱼类疫苗注射效果动态评估方法,系统与存储介质

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5165925A (en) * 1989-05-02 1992-11-24 State Of Oregon Acting By And Through The State Board Of Higher Education On Behalf Of Oregon State University Vaccine for immunizing fish against infectious pancreatic necrosis virus

Also Published As

Publication number Publication date
CA2823673A1 (en) 2012-06-14
WO2012077089A3 (es) 2012-08-02
US20130266933A1 (en) 2013-10-10
CL2010001400A1 (es) 2011-09-16
GB201311968D0 (en) 2013-08-21
WO2012077089A2 (es) 2012-06-14
GB2500157A (en) 2013-09-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Batten et al. A European field strain of bluetongue virus derived from two parental vaccine strains by genome segment reassortment
Niu et al. Novel goose astrovirus associated gout in Gosling, China
Maan et al. Full genome characterisation of bluetongue virus serotype 6 from the Netherlands 2008 and comparison to other field and vaccine strains
Mahmood et al. Isolation and molecular characterization of Sul/01/09 avian infectious bronchitis virus, indicates the emergence of a new genotype in the Middle East
Cook et al. The long view: 40 years of infectious bronchitis research
Pepin et al. Rift Valley fever virus (Bunyaviridae: Phlebovirus): an update on pathogenesis, molecular epidemiology, vectors, diagnostics and prevention
Cook et al. Detection and differentiation of avian pneumoviruses (metapneumoviruses)
RU2519210C2 (ru) Вакцины, содержащие генетические варианты парвовируса собак
Maclachlan et al. Epizootic haemorrhagic disease
Monaco et al. Differentiation between field and vaccine strain of bluetongue virus serotype 16
Viarouge et al. Identification of bluetongue virus and epizootic hemorrhagic disease virus serotypes in French Guiana in 2011 and 2012
Brnić et al. Porcine astrovirus viremia and high genetic variability in pigs on large holdings in Croatia
Deperasińska et al. Salmonid alphavirus (SAV)
DK179920B1 (en) Nucleic acid sequences of a fish virus and its use
Van Rijn et al. Bluetongue virus with mutated genome segment 10 to differentiate infected from vaccinated animals: a genetic DIVA approach
Falcone et al. Experimental infection of calves with bovine viral diarrhoea virus type-2 (BVDV-2) isolated from a contaminated vaccine
Gao et al. Identification of structure proteins of cyprinid herpesvirus 2
Arias et al. Genetic heterogeneity of bovine viral diarrhoea viruses from Spain
NO20130955A1 (no) Metode for detektering av varianter av infeksiøs pankreas nekrosevirus i akvatiske dyr, assosiert deteksjonskit og anvendelse av metoden for akvatiske dyr
Shi et al. Rapid and sensitive detection of salmonid alphavirus using TaqMan real-time PCR
Bigarré et al. Ranaviruses associated with high mortalities in catfish in France
Hewson et al. The presence of viral subpopulations in an infectious bronchitis virus vaccine with differing pathogenicity–a preliminary study
Mor et al. Phylogenetic analysis, genomic diversity and classification of M class gene segments of turkey reoviruses
Van Rijn et al. Diagnostic DIVA tests accompanying the Disabled Infectious Single Animal (DISA) vaccine platform for African horse sickness
Mittal et al. Detection of infectious bursal disease virus in field outbreaks in broiler chickens by reverse transcription-polymerase chain reaction

Legal Events

Date Code Title Description
FC2A Withdrawal, rejection or dismissal of laid open patent application