NL1018525C2 - Preparing 2,4-dideoxyhexose/2,4,6-trideoxyhexose by reacting optionally substituted carbonyl compound with alpha-hydrogen atom and two carbon atoms and optionally substituted aldehyde at specific carbonyl concentration - Google Patents

Preparing 2,4-dideoxyhexose/2,4,6-trideoxyhexose by reacting optionally substituted carbonyl compound with alpha-hydrogen atom and two carbon atoms and optionally substituted aldehyde at specific carbonyl concentration Download PDF

Info

Publication number
NL1018525C2
NL1018525C2 NL1018525A NL1018525A NL1018525C2 NL 1018525 C2 NL1018525 C2 NL 1018525C2 NL 1018525 A NL1018525 A NL 1018525A NL 1018525 A NL1018525 A NL 1018525A NL 1018525 C2 NL1018525 C2 NL 1018525C2
Authority
NL
Netherlands
Prior art keywords
substituted
trideoxyhexose
unsubstituted
carbon atoms
reaction mixture
Prior art date
Application number
NL1018525A
Other languages
Dutch (nl)
Inventor
Joannes Gerardus Theo Kierkels
Daniel Mink
Franciscus Alphons Mari Lommen
Dennis Heemskerk
Sven Panke
Original Assignee
Dsm Nv
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority to NL1018525A priority Critical patent/NL1018525C2/en
Application filed by Dsm Nv filed Critical Dsm Nv
Priority to DK02746200T priority patent/DK1404844T3/en
Priority to PCT/NL2002/000450 priority patent/WO2003006656A2/en
Priority to AT02746200T priority patent/ATE356215T1/en
Priority to CA002448517A priority patent/CA2448517A1/en
Priority to US10/481,303 priority patent/US6964863B2/en
Priority to HU0401577A priority patent/HU228734B1/en
Priority to JP2003512413A priority patent/JP4248392B2/en
Priority to DE60218678T priority patent/DE60218678T2/en
Priority to MXPA04000310A priority patent/MXPA04000310A/en
Priority to CNB028139429A priority patent/CN1300132C/en
Priority to EP02746200A priority patent/EP1404844B1/en
Priority to ES02746200T priority patent/ES2282433T3/en
Application granted granted Critical
Publication of NL1018525C2 publication Critical patent/NL1018525C2/en
Priority to US11/206,574 priority patent/US7439046B2/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/88Lyases (4.)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/02Monosaccharides

Abstract

Preparing (M) 2,4-dideoxyhexose/2,4,6-trideoxyhexose (I), comprising reacting an optionally substituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one alpha-hydrogen atom and an optionally substituted aldehyde in the presence of aldolase and water, at a carbonyl concentration of at most 6 moles/l of reaction mixture, is new. Preparing (M) 2,4-dideoxyhexose/2,4,6-trideoxyhexose (I), comprising reacting an optionally substituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one alpha-hydrogen atom and an optionally substituted aldehyde in the presence of aldolase and water, at a carbonyl concentration of at most 6 moles/l of reaction mixture, is new. The final concentration of (I) is at least 2 mass% of the reaction mixture. An Independent claim is also included for use of 2,4-dideoxyhexose/2,4,6-trideoxyhexose (I), obtained by (I), in the preparation of a medicine.

Description

- 1 - 5 WERKWIJZE VOOR DE BEREIDING VAN 2.4-DIDEOXYHEXOSEN EN 2.4,6-- 1 - 5 METHOD FOR PREPARING 2,4-DIDEOXYHEXOSES AND 2,4,6-

TRIDEOXYHEXOSENTRIDEOXYHEXOSES

De uitvinding betreft een werkwijze voor de bereiding van een 2,4-dideoxyhexose of een 2,4,6-trideoxyhexose uit een al dan niet 10 gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom en een al dan niet gesubstitueerd aldehyde in aanwezigheid van een aldolase en water.The invention relates to a process for the preparation of a 2,4-dideoxyhexose or a 2,4,6-trideoxyhexose from a substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one alpha-hydrogen atom and a substituted or unsubstituted aldehyde in the presence of an aldolase and water.

Een dergelijke werkwijze is bekend uit US-A-5,795,749, waarin de synthese van 2,4,6-trideoxyhexosen via een 4-gesubstitueerd 3-15 hydroxybutanal-intermediair wordt beschreven. Hierbij worden als reactanten aceetaldehyde en een 2-gesubstitueerd aldehyde toegepast en als katalysator een aldolase.Such a method is known from US-A-5,795,749, in which the synthesis of 2,4,6-trideoxyhexoses via a 4-substituted 3-15 hydroxybutanal intermediary is described. Acetaldehyde and a 2-substituted aldehyde are used as reactants and an aldolase as catalyst.

Een bekend nadeel van dergelijke enzym gekatalyseerde aldolcondensaties is dat de productiecapaciteit laag is. Dit is met name het gevolg 20 van het feit dat dergelijke aldolcondensaties in het algemeen bij lage aldehydeconcentraties worden uitgevoerd, omdat algemeen werd aangenomen dat het gebruikte aldolase bij hogere aldehydeconcentraties in sterke mate geïnactiveerd zou worden. Een ander nadeel van de gebruikte lage concentraties is dat aan het einde van de reactie de concentratie van het 2,4,6-trideoxyhexose 25 in het reactiemengsel laag is, hetgeen de kosten voor bijvoorbeeld opwerking in sterke mate beïnvloedt. Dientengevolge was het niet te verwachten dat het mogelijk zou zijn om op basis van een dergelijke technologie een commercieel aantrekkelijk proces voor de bereiding van 2,4-dideoxyhexosen en 2,4,6-trideoxyhexosen te ontwikkelen.A known drawback of such enzyme catalyzed aldol condensations is that the production capacity is low. This is mainly due to the fact that such aldol condensations are generally performed at low aldehyde concentrations, because it was generally assumed that the aldolase used would be highly inactivated at higher aldehyde concentrations. Another disadvantage of the low concentrations used is that at the end of the reaction the concentration of the 2,4,6-trideoxyhexose in the reaction mixture is low, which strongly influences the costs for, for example, work-up. Consequently, it was not expected that it would be possible to develop a commercially attractive process for the preparation of 2,4-dideoxyhexoses and 2,4,6-trideoxyhexoses based on such a technology.

30 De uitvinding voorziet in een commercieel aantrekkelijk proces voor de bereiding van een 2,4-dideoxyhexose of een 2,4,6-trideoxyhexose met behulp van een enzym gekatalyseerde aldolcondensatie.The invention provides a commercially attractive process for the preparation of a 2,4-dideoxyhexose or a 2,4,6-trideoxyhexose using an enzyme catalyzed aldol condensation.

Dit wordt volgens de uitvinding bewerkstelligd door de reactie tussen de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 35 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom en het al dan niet gesubstitueerde aldehyde uit te voeren bij een carbonylconcentratie van ten hoogste 6 mol/l reactiemengsel, zodanig dat de eindconcentratie van het 1018525i -2- 2,4-dideoxyhexose of het 2,4,6-trideoxyhexose ten minste 2 massa% van het reactiemengsel bedraagt.This is achieved according to the invention by carrying out the reaction between the substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one alpha hydrogen atom and the substituted or unsubstituted aldehyde at a carbonyl concentration of at most 6 mol / l reaction mixture such that the final concentration of the 1018525i -2- 2,4-dideoxyhexose or the 2,4,6-trideoxyhexose is at least 2 mass% of the reaction mixture.

In de bekende werkwijze voor de synthese van 2,4-dideoxyhexosen en 2,4,6-trideoxyhexosen worden carbonylconcentraties van 5 maximaal 0,4 mol per liter reactiemengsel toegepast. Hierbij worden eindconcentraties van het 2,4-dideoxyhexose of het 2,4,6-trideoxyhexose verkregen die maximaal rond 1 massa% van het reactiemengsel liggen. Verrassenderwijs heeft aanvraagster gevonden dat carbonylconcentraties tot 6 mol/l geschikt kunnen worden toegepast, terwijl toch de mate van 10 enzymdeactivatie ondanks de hoge carbonylconcentratie beperkt blijft. Hierdoor kunnen hogere eindconcentraties van het 2,4-dideoxyhexose of het 2,4,6-trideoxyhexose worden verkregen, waardoor de productiecapaciteit wordt verhoogd en de kosten voor o.a. de opwerking van het product worden verlaagd. Als gevolg hiervan bleek het mogelijk te zijn een commercieel aantrekkelijk proces 15 te ontwikkelen.In the known method for the synthesis of 2,4-dideoxyhexoses and 2,4,6-trideoxyhexoses, carbonyl concentrations of at most 0.4 mol per liter of reaction mixture are used. This results in final concentrations of the 2,4-dideoxyhexose or the 2,4,6-trideoxyhexose that are at most around 1 mass% of the reaction mixture. Surprisingly, the applicant has found that carbonyl concentrations up to 6 mol / l can be suitably used, while the degree of enzyme deactivation remains limited despite the high carbonyl concentration. As a result, higher final concentrations of the 2,4-dideoxyhexose or the 2,4,6-trideoxyhexose can be obtained, whereby the production capacity is increased and the costs for, among other things, processing of the product are reduced. As a result, it turned out to be possible to develop a commercially attractive process.

Onder carbonylconcentratie wordt in het kader van de uitvinding verstaan de som van de concentraties van de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één a-waterstofatoom, het al dan niet gesubstitueerde aldehyde en het tussenproduct 20 dat gevormd wordt in de reactie van de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één a-waterstofatoom met het al dan niet gesubstitueerde aldehyde.For the purposes of the invention, carbonyl concentration is understood to be the sum of the concentrations of the substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one α-hydrogen atom, the substituted or unsubstituted aldehyde and the intermediate formed in the reaction of the substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one α-hydrogen atom with the substituted or unsubstituted aldehyde.

De carbonylconcentratie wordt tijdens het syntheseproces is essentie lager dan 6 mol/l gehouden. Het zal voor de deskundige duidelijk zijn dat 25 licht hogere concentraties gedurende (zeer) korte tijd weinig nadelig effect zullen hebben, en derhalve nog binnen het kader van de uitvinding toelaatbaar zijn. Bij voorkeur ligt de carbonylconcentratie tussen 0,1 en 5 mol per liter reactiemengsel, met meer voorkeur tussen 0,6 en 4 mol per liter reactiemengsel.The carbonyl concentration is essentially kept lower than 6 mol / l during the synthesis process. It will be clear to the person skilled in the art that slightly higher concentrations for a (very) short time will have little adverse effect, and are therefore still permissible within the scope of the invention. The carbonyl concentration is preferably between 0.1 and 5 moles per liter of reaction mixture, more preferably between 0.6 and 4 moles per liter of reaction mixture.

De eindconcentratie van het 2,4-dideoxyhexose of het 2,4,6-30 trideoxyhexose ligt in de praktijk meestal tussen 5 en 50 massa-%, bijvoorbeeld tussen 8 en 40 massa-%, in het bijzonder tussen 10 en 35 massa-% berekend ten opzichte van het reactiemengsel aan het einde van de reactie.The final concentration of the 2,4-dideoxyhexose or the 2,4,6-30 trideoxyhexose is in practice usually between 5 and 50 mass%, for example between 8 and 40 mass%, in particular between 10 and 35 mass%. % calculated relative to the reaction mixture at the end of the reaction.

De volgorde van toevoeging van de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één 1018525* -3- α-waterstofatoom, het al dan niet gesubstitueerde aldehyde en het aldolase is niet bijzonder kritisch. Bij voorkeur wordt het aldolase aan het reactiemengsel toegevoegd vóór de toevoeging van de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één a-5 waterstofatoom. Met meer voorkeur wordt het aldolase gemengd met een oplossing van ten minste een deel van het al dan niet gesubstitueerde aldehyde alvorens de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom wordt toegevoegd, met name wanneer het gebruikte al dan niet gesubstitueerde aldehyde onder de gekozen 10 omstandigheden in mindere mate met zichzelf reageert dan de gebruikte al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom. Bij voorkeur wordt meer dan 0,1 mol/l reactiemengsel van het al dan niet gesubstitueerde aldehyde voorgelegd, met meer voorkeur meer dan 0,3 mol per liter reactiemengsel, in het bijzonder meer 15 dan 0,6 mol per liter reactiemengsel. Door deze keuze van de initiële concentratie van het al dan niet gesubstitueerde aldehyde wordt de initiële reactiesnelheid van het enzymatische proces gunstig beïnvloed. Aldolase kan tijdens de reactie in meerdere porties worden toegevoegd of gedoseerd.The order of addition of the substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one 1018525 * -3-alpha hydrogen atom, the unsubstituted or substituted aldehyde and the aldolase is not particularly critical. Preferably the aldolase is added to the reaction mixture before the addition of the substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one α-5 hydrogen atom. More preferably, the aldolase is mixed with a solution of at least a portion of the substituted or unsubstituted aldehyde before the unsubstituted or substituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one alpha hydrogen atom is added, particularly when the al used then unsubstituted aldehyde reacts to a lesser extent with itself under the selected conditions than the used unsubstituted or substituted carbonyl compound having at least 2 carbon atoms and at least one alpha hydrogen atom. Preferably more than 0.1 mol / l of reaction mixture of the substituted or unsubstituted aldehyde is submitted, more preferably more than 0.3 mol per liter of reaction mixture, in particular more than 0.6 mol per liter of reaction mixture. By this choice of the initial concentration of the substituted or unsubstituted aldehyde, the initial reaction rate of the enzymatic process is favorably influenced. Aldolase can be added or dosed in multiple portions during the reaction.

In één uitvoeringsvorm van de uitvinding worden zowel de al dan 20 niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom als het al dan niet gesubstitueerde aldehyde en het aldolase elk in één keer aan het reactiemengsel toegevoegd. Hierbij kunnen de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom, het al dan niet gesubstitueerde aldehyde en het 25 aldolase zowel tegelijk als na elkaar toegevoegd worden. Volgens deze uitvoeringsvorm kan in het algemeen de som van de toegevoegde hoeveelheden al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom en al dan niet gesubstitueerd aldehyde tot 6 mol per liter reactiemengsel bedragen en worden in de praktijk meestal 30 eindproductconcentraties bereikt tussen 7 en 15 massa-% van het reactiemengsel.In one embodiment of the invention, both the unsubstituted or substituted carbonyl compound having at least 2 carbon atoms and at least one alpha hydrogen atom and the unsubstituted or substituted aldehyde and aldolase are each added to the reaction mixture in one go. The carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one alpha-hydrogen atom, the substituted or unsubstituted aldehyde and the aldolase can be added both simultaneously and in succession here. According to this embodiment, in general, the sum of the added amounts of substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one alpha hydrogen atom and substituted or unsubstituted aldehyde can be up to 6 moles per liter of reaction mixture and in practice usually becomes 30 final product concentrations reached between 7 and 15 mass% of the reaction mixture.

In een andere uitvoeringsvorm van de uitvinding wordt de toevoeging van de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom en/of het al dan niet 10185251 - 4 - gesubstitueerde aldehyde in ten minste twee porties uitgevoerd, waarbij elke volgende toevoeging plaatsvindt nadat ten minste een deel van de reactanten uit de voorgaande toevoeging omgezet is. Hiermee wordt bewerkstelligd dat de som van de in de loop van de reactie toegevoegde hoeveelheden al dan niet 5 gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één a-waterstofatoom en al dan niet gesubstitueerd aldehyde meer dan 6 mol per liter reactiemengsel kan bedragen, terwijl tevens de carbonylconcentratie in het reactiemengsel op elk willekeurig tijdstip tijdens de reactie lager is 6 mol/l om inactivering van het enzym te beperken. Het aldolase kan desgewenst in één 10 keer of in ten minste twee porties worden toegevoegd.In another embodiment of the invention, the addition of the substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one alpha-hydrogen atom and / or the substituted or unsubstituted aldehyde is carried out in at least two portions, each subsequent addition occurs after at least a portion of the reactants from the previous addition have been converted. This ensures that the sum of the amounts of substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one α-hydrogen atom and unsubstituted or substituted aldehyde in the course of the reaction can be more than 6 moles per liter of reaction mixture, while the carbonyl concentration in the reaction mixture is also 6 mol / l at any time during the reaction to limit inactivation of the enzyme. The aldolase can, if desired, be added in one 10 times or in at least two portions.

In weer een andere uitvoeringsvorm worden tijdens de reactie de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom en/of het ai dan niet gesubstitueerde aldehyde aan het reactiemengsel gedoseerd in de tijd. Bij 15 voorkeur wordt in deze uitvoeringsvorm ten minste een gedeelte van het al dan niet gesubstitueerde aldehyde tezamen met het aldolase voorgelegd. Het aldolase kan desgewenst in één keer worden toegevoegd, in meerdere porties worden toegevoegd of in de tijd worden gedoseerd.In yet another embodiment, the substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one alpha hydrogen atom and / or the then unsubstituted aldehyde is metered to the reaction mixture over time. Preferably in this embodiment at least a portion of the substituted or unsubstituted aldehyde is presented together with the aldolase. The aldolase can, if desired, be added in one go, added in multiple portions or dosed over time.

De laatste twee uitvoeringsvormen kunnen leiden tot 20 eindconcentraties van het 2,4-dideoxyhexose of het 2,4,6-trideoxyhexose die hoger zijn dan 40 massa-%. Bovendien is gebleken dat het doseren van de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom, het al dan niet gesubstitueerde aldehyde en/of het aldolase aan het reactiemengsel kan leiden tot aanzienlijke besparingen op de 25 enzymkosten.The latter two embodiments can lead to 20 final concentrations of the 2,4-dideoxyhexose or the 2,4,6-trideoxyhexose that are higher than 40% by mass. Moreover, it has been found that dosing the substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one alpha-hydrogen atom, the substituted or unsubstituted aldehyde and / or the aldolase to the reaction mixture can lead to considerable savings in enzyme costs.

Combinaties van de hierboven beschreven uitvoeringsvormen zijn ook mogelijk.Combinations of the embodiments described above are also possible.

De reactietemperatuur en de pH zijn niet bijzonder kritisch en worden beide gekozen in functie van het substraat. Bij voorkeur wordt de reactie 30 in de vloeistoffase uitgevoerd. De reactie kan bijvoorbeeld worden uitgevoerd bij een reactietemperatuur tussen -5 en 45 °C, bij voorkeur tussen 0 en 10 °C en een pH tussen 5,5 en 9, bij voorkeur tussen 6 en 8.The reaction temperature and the pH are not particularly critical and are both selected in function of the substrate. The reaction is preferably carried out in the liquid phase. The reaction can be carried out, for example, at a reaction temperature between -5 and 45 ° C, preferably between 0 and 10 ° C and a pH between 5.5 and 9, preferably between 6 and 8.

De reactie wordt bij voorkeur uitgevoerd bij min of meer constante pH, waarbij bijvoorbeeld gebruik wordt gemaakt van een buffer of van 1018525" -5- automatische titratie. Als buffer kunnen bijvoorbeeld toegepast worden natrium-en kaliumbicarbonaat, natrium- en kaliumfosfaat, triethanolamine/HCI, bis-tris-propaan/HCI en HEPES/KOH. Bij voorkeur wordt een kalium- of natriumbicarbonaatbuffer toegepast, bijvoorbeeld in een concentratie tussen 20 5 en 400 mmol/l reactiemengsel.The reaction is preferably carried out at a more or less constant pH using, for example, a buffer or from 1018525 "-5- automatic titration. The buffer may be, for example, sodium and potassium bicarbonate, sodium and potassium phosphate, triethanolamine / HCl bis-tris-propane / HCl and HEPES / KOH Preferably a potassium or sodium bicarbonate buffer is used, for example in a concentration between 5 and 400 mmol / l reaction mixture.

De molaire verhouding van totaal toegevoegde al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom tot totaal toegevoegde al dan niet gesubstitueerde aldehyde is niet bijzonder kritisch en ligt bij voorkeur tussen 1,5:1 en 4:1, in het 10 bijzonder tussen 1,8:1 en 2,2:1. Andere verhoudingen kunnen ook worden toegepast maar bieden geen voordelen.The molar ratio of total added substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one alpha hydrogen to total added substituted or unsubstituted aldehyde is not particularly critical and is preferably between 1.5: 1 and 4: 1, in particular between 1.8: 1 and 2.2: 1. Other ratios can also be applied but offer no benefits.

In de werkwijze volgens de uitvinding wordt als katalysator een aldolase toegepast, dat de aldolcondensatie tussen twee aldehyden of tussen een aldehyde en een keton katalyseert. Bij voorkeur wordt als aldolase 2-deoxyribose-15 5-fosfaataldolase (DERA, EC 4.1.2.4) of mutanten hiervan toegepast, met meer voorkeur DERA afkomstig van Escherichia coli of mutanten hiervan. De hoeveelheid toe te passen DERA is niet bijzonder kritisch en wordt gekozen als functie van bijvoorbeeld de toegepaste reactanten, de reactantconcentraties, de gewenste reactiesnelheid, de gewenste reactieduur en andere economische 20 factoren. De hoeveelheid toe te passen DERA ligt bijvoorbeeld tussen 50 en 5000 U/mmol van het al dan niet gesubstitueerde aldehyde. Hierin is 1 U (unit) een maat voor de enzymatische activiteit en komt overeen met de omzetting van 1 μηηοΙ 2-deoxyribose-5-fosfaat per minuut bij 37 °C.In the process according to the invention, an aldolase is used as the catalyst, which catalyzes the aldol condensation between two aldehydes or between an aldehyde and a ketone. Preferably 2-deoxyribose-5-phosphate aldolase (DERA, EC 4.1.2.4) or mutants thereof is used as aldolase, more preferably DERA from Escherichia coli or mutants thereof. The amount of DERA to be used is not particularly critical and is selected as a function of, for example, the reactants used, the reactant concentrations, the desired reaction rate, the desired reaction time and other economic factors. The amount of DERA to be used is, for example, between 50 and 5000 U / mmol of the substituted or unsubstituted aldehyde. Herein 1 U (unit) is a measure of enzymatic activity and corresponds to the conversion of 1 μηηοΙ 2-deoxyribose-5-phosphate per minute at 37 ° C.

De al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten 25 minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom heeft bij voorkeur 2-6 koolstofatomen, met meer voorkeur 2-4 koolstofatomen. Bijvoorbeeld kunnen worden gebruikt aldehydes, bijvoorbeeld aceetaldehyde en propanal, en ketonen, bijvoorbeeld aceton en fluoraceton.The substituted or unsubstituted carbonyl compound having at least 2 carbon atoms and at least one alpha hydrogen atom preferably has 2-6 carbon atoms, more preferably 2-4 carbon atoms. For example, aldehydes can be used, for example acetaldehyde and propanal, and ketones, for example acetone and fluoracetone.

Als al dan niet gesubstitueerd aldehyde kunnen bijvoorbeeld 30 worden gebruikt aldehydes met 2-20 koolstofatomen, bijvoorbeeld aceetaldehyde, propanal, butanal, een acetaal beschermde dialdehyde of een gesubstitueerd aldehyde, in het bijzonder een gesubstitueerd aceetaldehyde met de formule HC(0)CH2X waarin X voorstelt een substituent die in een vervolgreactie als ‘leaving group’ afgesplitst kan worden, bijvoorbeeld een halogeen, in het bijzonder 1 01 8525 * -δα, Br of I; een tosylaatgroep; een mesylaatgroep; een acyloxygroep, in het bijzonder een acetoxygroep; een fenacetyloxygroep; een alkyloxygroep of een aryloxygroep, waarbij in het bijzonder chlooraceetaldehyde geschikt is.As substituted or unsubstituted aldehyde, there may be used, for example, aldehydes with 2-20 carbon atoms, for example acetaldehyde, propanal, butanal, an acetally protected dialdehyde or a substituted aldehyde, in particular a substituted acetaldehyde of the formula HC (O) CH 2 X in which X represents a substituent that can be split off as a 'leaving group' in a follow-up reaction, for example a halogen, in particular 1 01 8525 * -δα, Br or I; a tosylate group; a mesylate group; an acyloxy group, in particular an acetoxy group; a phenacetyloxy group; an alkyloxy group or an aryloxy group, with chloroacetaldehyde being particularly suitable.

Het 2,4-dideoxyhexose of 2,4,6-trideoxyhexose met formule 1 is 5 //\^°\γ/°Η (1)The 2,4-dideoxyhexose or 2,4,6-trideoxyhexose of formula 1 is 5/1 (1)

OHOH

bijvoorbeeld een gewenst tussenproduct in de bereiding van diverse 10 geneesmiddelen, in het bijzonder voor de synthese van HMG-CoA reductase inhibitors, meer in het bijzonder voor de synthese van statines, bijvoorbeeld lovastatine, cerivastatine, rosuvastatine, simvastatine, pravastatine en fluvastatine, in het bijzonder voor ZD-4522 zoals beschreven in Drugs of the future, (1999), 24(5), 511-513 van M. Watanabe et al., Bioorg. & Med. Chem.for example a desired intermediate in the preparation of various drugs, in particular for the synthesis of HMG-CoA reductase inhibitors, more particularly for the synthesis of statins, for example lovastatin, cerivastatin, rosuvastatin, simvastatin, pravastatin and fluvastatin, in the particularly for ZD-4522 as described in Drugs of the Future, (1999), 24 (5), 511-513 by M. Watanabe et al., Bioorg. & Med. Chem.

15 (1997), 5(2), 437-444. De uitvinding voorziet derhalve in een nieuwe, economisch aantrekkelijke route naar 2,4-dideoxyhexosen of 2,4,6-trideoxyhexosen, die kunnen worden gebruikt voor de synthese van bijvoorbeeld 2-(6-hydroxymethyl- 1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuur, dat een gewenst tussenproduct is voor de bereiding van geneesmiddelen, in het bijzonder statines.15 (1997), 5 (2), 437-444. The invention therefore provides a new, economically attractive route to 2,4-dideoxyhexoses or 2,4,6-trideoxyhexoses, which can be used for the synthesis of, for example, 2- (6-hydroxymethyl-1,3-dioxane-4- yl) acetic acid, which is a desired intermediate for the preparation of medicines, in particular statins.

20 Het 2,4-dideoxyhexose of 2,4,6-trideoxyhexose met formule 1 kan met behulp van de werkwijze volgens de uitvinding worden bereid uit aceetaldehyde en HC(0)CH2X, waarin X als boven is gedefinieerd, en kan vervolgens bijvoorbeeld via bekende methoden worden omgezet tot het overeenkomstige 4-hydroxy-tetrahydropyran-2-on met formule 2, 25 LJ (2)The 2,4-dideoxyhexose or 2,4,6-trideoxyhexose of formula 1 can be prepared by means of the process according to the invention from acetaldehyde and HC (O) CH 2 X, in which X is defined as above, and can then be used, for example, via known methods are converted to the corresponding 4-hydroxy-tetrahydropyran-2-one of formula 2, 25 LJ (2)

OHOH

waarin X als boven is gedefinieerd. Geschikte reagentia voor deze omzetting zijn 1018525 ’ -7- bijvoorbeeld Br2met als base calciumcarbonaat (Tetrahedron Lett. 30(47), 1989 p.6503), pyridiniumdichromaat in dichloormethaan (Carbohydrate Res. 300 1997 p. 301) en tetra-N-propylammoniumtetra-oxoruthenaat (J. Chem. Soc, Chem. Commun. 1987 p. 1625).wherein X is defined as above. Suitable reagents for this conversion are, for example, Br2 with calcium carbonate as base (Tetrahedron Lett. 30 (47), 1989 p.6503), pyridinium dichromate in dichloromethane (Carbohydrate Res. 300 1997 p. 301) and tetra-N-propylammonium tetra -oxoruthenate (J. Chem. Soc, Chem. Commun. 1987 p. 1625).

5 Vervolgens kan het verkregen 4-hydroxy-tetrahydropyran-2-on desgewenst worden omgezet in een 2-(1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuurderivaat met formule 3, /\ o XA--AA.0Rj (3) 10 waarin X als boven is gedefinieerd en Ri, R2 en R3 elk onafhankelijk een alkylgroep met 1-3 koolstofatomen voorstellen. Deze omzetting kan bijvoorbeeld worden bewerkstelligd in aanwezigheid van een geschikt acetaliseringsmiddel en 15 een zure katalysator.Subsequently, the 4-hydroxy-tetrahydropyran-2-one obtained can, if desired, be converted into a 2- (1,3-dioxan-4-yl) acetic acid derivative of the formula III, XA - AA0R3 (3). wherein X is defined as above and R 1, R 2 and R 3 each independently represent an alkyl group with 1-3 carbon atoms. This conversion can be effected, for example, in the presence of a suitable acetalizing agent and an acid catalyst.

Vervolgens kan het 2-(1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuurderivaat gehydrolyseerd worden in aanwezigheid van een base en water tot een zout met formule 4, A o (4) 20 waarin Y staat voor een alkalimetaal, een aardalkalimetaal, of een al dan niet gesubstitueerde ammoniumgroep, bij voorkeur Na, Ca of een tertraalkylammoniumverbinding en waarin X, R1 en R2 als boven gedefinieerd zijn. 25 De hydrolyse kan gevolgd worden door omzetting tot het overeenkomstige 2-(1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuur volgens formule 4 met Y = H.Then the 2- (1,3-dioxan-4-yl) acetic acid derivative can be hydrolyzed in the presence of a base and water to a salt of formula 4, A 0 (4) wherein Y represents an alkali metal, an alkaline earth metal, or an unsubstituted or substituted ammonium group, preferably Na, Ca or a tertiary alkyl ammonium compound and wherein X, R1 and R2 are as defined above. The hydrolysis can be followed by conversion to the corresponding 2- (1,3-dioxan-4-yl) acetic acid according to formula 4 with Y = H.

Het zout van het 2-(1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuur volgens formule 4 101 8525'i -8- kan worden omgezet in een overeenkomstige ester van het 2-(1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuur volgens formule 3 met X, Ri en R2 als boven gedefinieerd en waarin R3 een alkylgroep met 1-12 koolstofatomen, een arylgroep met 6-12 koolstofatomen of een aralkylgroep met 7-12 koolstofatomen voorstelt op op zich 5 bekende wijze. Bij voorkeur wordt het zout van het 2-(1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuur omgezet in de overeenkomstige t-butylester van het 2-(1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuur.The salt of the 2- (1,3-dioxan-4-yl) acetic acid of formula 4 101 8525'-8- can be converted into a corresponding ester of the 2- (1,3-dioxan-4-yl) acetic acid according to formula 3 with X, R 1 and R 2 as defined above and wherein R 3 represents an alkyl group with 1-12 carbon atoms, an aryl group with 6-12 carbon atoms or an aralkyl group with 7-12 carbon atoms in a manner known per se. Preferably, the salt of the 2- (1,3-dioxan-4-yl) acetic acid is converted to the corresponding t-butyl ester of the 2- (1,3-dioxan-4-yl) acetic acid.

Het2-(1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuurderivaat met formule 3, waarin R3 een alkylgroep met 1-12 koolstofatomen, een arylgroep met 6-12 koolstofatomen of een aralkylgroep met 7-12 koolstofatomen voorstelt kan worden 10 omgezet in het azijnzuurderivaat van het overeenkomstige 2-(6-hydroxymethyl- 1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuur met formule 5, waarin Ri, R2 en R3 als boven zijn gedefinieerd, bijvoorbeeld zoals beschreven in US-A-5594153 rVR2 A, o 15 of in WO-A-200008011, via omzetting naar een verbinding volgens formule 3 met X = acyloxy, bijvoorbeeld een acetoxygroep, en R^ R2 en R3 als boven gedefinieerd, gevolgd door vervanging van de acyloxygroep, op overigens algemeen bekende wijze door een hydroxylgroep.Het 2 - (1,3-dioxan-4-yl) acetic acid derivative of formula 3, wherein R 3 represents an alkyl group with 1-12 carbon atoms, an aryl group with 6-12 carbon atoms or an aralkyl group with 7-12 carbon atoms can be converted to the acetic acid derivative of the corresponding 2- (6-hydroxymethyl-1,3-dioxan-4-yl) acetic acid of formula 5, wherein R1, R2 and R3 are as defined above, for example as described in US-A-5594153 rVR2 A, o Or in WO-A-200008011, via conversion to a compound of formula 3 with X = acyloxy, for example an acetoxy group, and R 1, R 2 and R 3 as defined above, followed by replacement of the acyloxy group in an otherwise generally known manner by hydroxyl group.

20 Het 4-hydroxy-tetrahydropyran-2-on met formule 2 χ/γ'γ0 kJ (2)The 4-hydroxy-tetrahydropyran-2-one of formula 2 χ / γ'γ0 kJ (2)

OHOH

waarin X als boven is gedefinieerd, kan ook worden omgezet in het overeenkomstige dihydroxyhexaanzuur met formule 6 met behulp van een zuur of 25 een base.wherein X is defined as above, can also be converted to the corresponding dihydroxyhexanoic acid of formula 6 with the aid of an acid or a base.

1018525* (6) -9- OH OH 01018525 * (6) -9-OH OH 0

Het dihydroxyhexaanzuur met formule 6 kan vervolgens worden omgezet in een 2-(1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuurderivaat met formule 3, waarin X, Ri 5 en R2 als boven zijn gedefinieerd en R3 een alkylgroep met 1-12 koolstofatomen, een arylgroep met 6-12 koolstofatomen of een aralkylgroep met 7-12 koolstofatomen voorstelt, bijvoorbeeld in aanwezigheid van een geschikt acetaliseringsmiddel en een zure katalysator.The dihydroxyhexanoic acid of formula 6 can then be converted to a 2- (1,3-dioxan-4-yl) acetic acid derivative of formula 3, wherein X, R 5 and R 2 are as defined above and R 3 is an alkyl group with 1-12 carbon atoms, an aryl group with 6-12 carbon atoms or an aralkyl group with 7-12 carbon atoms, for example in the presence of a suitable acetalizing agent and an acid catalyst.

De uitvinding wordt verder toegelicht aan de hand van de 10 voorbeelden, zonder evenwel daardoor te worden beperkt.The invention is further elucidated with reference to the examples, without, however, being limited thereby.

Voorbereiding en meetmethodes 15 1, Bereiding van een hoeveelheid 6-chloro-2A6-trideoxvhexose als referentiemateriaal voor GC-analvsePreparation and measurement methods 15 1, Preparation of a quantity of 6-chloro-2A6-trideoxhexose as reference material for GC analysis

Aan 0,62 L 100 mM NaHC03 oplossing werd bij 10 °C 76 mL (0,60 mol) van een 50% chlooraceetaldehyde-oplossing en 84 mL (1,47 mol) aceetaldehyde toegevoegd waarna de pH m.b.v. 4N NaOH op pH 7,0 werd 20 gebracht. De enzymatische reactie werd gestart door toevoeging van 220 g enzymoplossing (2050 U/g). Na ca. 18 uur roeren werd via GC een maximale conversie tot 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose gemeten. De reactie werd gestopt door toevoegen van 1,7 L aceton. Aan dit mengsel werd 4 g dicalite toegevoegd en na ca. 30 minuten roeren werd het mengsel gefiltreerd. Het filtraat werd 25 gedurende 5 uur bij 40 °C onder vacuüm ingedampt. De zo ontstane olie werd gezuiverd d.m.v. kolomchromatografie op een silicagel-kolom (400 mL) en geëlueerd met een eluent bestaande uit een mengsel van petroleumether (kookpunt: 40-70 °C) en ethylacetaat in een volumeverhouding van 1:2. Na indampen van de fractie met een Rf-waarde van 0,33 werd in totaal 26 g van het 30 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose geïsoleerd. Hierbij is de term Rf-waarde van een fractie bekend bij de vakman en is gedefinieerd als de afstand die een fractie aflegt in de kolom gedeeld door de afstand die het loopmiddel aflegt in de kolom 101 8525 * - 10- of de tijd die een fractie nodig heeft om een bepaalde afstand in de kolom af te leggen gedeeld door de tijd die het loopmiddel nodig heeft om diezelfde afstand in de kolom af te leggen.To 0.62 L of 100 mM NaHCO 3 solution was added at 10 ° C 76 mL (0.60 mol) of a 50% chloroacetaldehyde solution and 84 mL (1.47 mol) of acetaldehyde, after which the pH was measured by e.g. 4N NaOH was adjusted to pH 7.0. The enzymatic reaction was started by adding 220 g of enzyme solution (2050 U / g). After approximately 18 hours of stirring, a maximum conversion to 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose was measured by GC. The reaction was stopped by adding 1.7 L of acetone. To this mixture, 4 g of dicalite was added and after stirring for about 30 minutes, the mixture was filtered. The filtrate was evaporated in vacuo at 40 ° C for 5 hours. The oil thus formed was purified by means of column chromatography on a silica gel column (400 mL) and eluted with an eluent consisting of a mixture of petroleum ether (b.p. 40-70 ° C) and ethyl acetate in a volume ratio of 1: 2. After evaporating the fraction with an Rf value of 0.33, a total of 26 g of the 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose was isolated. Here, the term Rf value of a fraction is known to the person skilled in the art and is defined as the distance that a fraction travels in the column divided by the distance that the running agent travels in the column 101 8525 * 10- 10 or the time that a fraction to travel a certain distance in the column divided by the time it takes for the walking means to travel that same distance in the column.

De zuiverheid van het 6-chloor-2,4,6-trideoxyhexose werd 5 bepaald d.m.v. 1H-NMR volgens een methode beschreven door P.P. Lankhorst in Pharmacopeial Forum, 22, (3), 2414-2422.The purity of the 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose was determined by means of 1 H NMR according to a method described by P.P. Lankhorst in Pharmacopeial Forum, 22, (3), 2414-2422.

2. GC-analvse2. GC analysis

De concentratie van het 6-chloor-2,4,6-trideoxyhexose tijdens de 10 enzymatische reactie werd bepaald d.m.v. gaschromatografische analyse. Hierbij werd gebruik gemaakt van een Hewlett Packard GC met vlam-ionisatiedetector, type HP5890 serie II, voorzien van een Chrompack CP-Sii 5 CB kolom (25 m * 0,25 mm, df 1,2 pm). Concentraties werden bepaald aan de hand van een calibratiecurve van het 6-chloor-2,4,6-trideoxyhexose met bekende chemische 15 zuiverheid (1) in aceton.The concentration of the 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose during the enzymatic reaction was determined by means of gas chromatographic analysis. Use was made of a Hewlett Packard GC with flame ionization detector, type HP5890 series II, equipped with a Chrompack CP-Sii 5 CB column (25 m * 0.25 mm, df 1.2 µm). Concentrations were determined on the basis of a calibration curve of the 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose with known chemical purity (1) in acetone.

3. Bereiding van de DERA-oplossinq3. Preparation of the DERA solution

Standaardtechnieken werden toegepast om het enzym DERA tot overexpressie te brengen in recombinant Escherichia coli cellen. Dergelijke 20 technieken worden beschreven in Sambrook et al., “Molecular Cloning: AStandard techniques were used to overexpress the enzyme DERA in recombinant Escherichia coli cells. Such techniques are described in Sambrook et al., "Molecular Cloning: A

Laboratory Manual”, Cold Spring Harbor, N.Y., 1989. In het onderhavige geval werd het deoC-gen van Escherichia coli W3110 gekloneerd in de commercieel verkrijgbare expressievector pBADMyc-HisB (Invitrogen, Groningen, NL). Het gen (inclusief het stopcodon) werd vermenigvuldigd door middel van een 25 polymerasekettingreactie en ingébracht in de Nco\ en EcoRI plaatsen van de vector op een dusdanige manier dat het ATG-startcodon van deoC gelijk was aan het ATG-codon op de Λ/col-plaats van de vector (translatie fusie). Doordat het deoC stopcodon meegekloneerd werd, werd voorkomen dat een fusie-eiwit met de His-tag, die ook op de vector wordt gecodeerd, gevormd werd. Escherichia coli 30 DH10B cellen (Life Technologies, Breda, NL) met het resulterende plasmide pBAD_DERA2.2 werden gekweekt in een 10 L beluchte en geroerde tankreactor op een complex Luria Bertani medium met 100 pg/mL carbenicilline en geïnduceerd door toevoeging van arabinose tot 0,01%. Om de celdichtheid te vergroten werden, nadat de cellen het LB-medium hadden geconsumeerd, twee io 1 8525^ -11 - extra waterige oplossingen toegevoegd die pure glycerol (voeding 1) en 13% gistextract en 1,3% trypton (Difco, Michigan, US) (voeding 2) bevatten. Op deze manier werden uit een 10 L cultuur ca. 350 g natte cellen verkregen, die door middel van centrifugeren gewonnen werden, opnieuw in een kaliumfosfaatbuffer 5 van pH 7,2 werden gesuspendeerd en nogmaals werden gecentrifugeerd. Het supernatant werd verwijderd waarna de pellet werd opgeslagen bij -20°C.Laboratory Manual, Cold Spring Harbor, N.Y., 1989. In the present case, the deoC gene from Escherichia coli W3110 was cloned into the commercially available expression vector pBADMyc-HisB (Invitrogen, Groningen, NL). The gene (including the stop codon) was multiplied by a polymerase chain reaction and introduced into the Nco and Eco RI sites of the vector in such a way that the ATG start codon of deoC was equal to the ATG codon on the Λ / col location of the vector (translation fusion). Because the deoC stop codon was co-cloned, a His-tag fusion protein, which is also encoded on the vector, was prevented. Escherichia coli DH10B cells (Life Technologies, Breda, NL) with the resulting plasmid pBAD_DERA2.2 were grown in a 10 L aerated and stirred tank reactor on a complex Luria Bertani medium with 100 pg / mL carbenicillin and induced by adding arabinose to 0 , 01%. To increase the cell density, after the cells had consumed the LB medium, two additional aqueous solutions were added containing pure glycerol (feed 1) and 13% yeast extract and 1.3% trypton (Difco, Michigan). , US) (feed 2). In this way, approximately 350 g of wet cells were obtained from a 10 L culture, which were recovered by centrifugation, resuspended in a potassium phosphate buffer of pH 7.2 and centrifuged again. The supernatant was removed and the pellet was stored at -20 ° C.

In de literatuur zijn verschillende werkwijzen beschreven voor de zuivering van DERA uit recombinant E. coli cellen, bijvoorbeeld in Chen et al, J. Am. Chem.Various methods have been described in the literature for the purification of DERA from recombinant E. coli cells, for example in Chen et al, J. Am. Chem.

Soc. Vol 114, 1992, 741-748 en Wong et al., J. Am. Chem. Soc. Vol 117,1995,Soc. Vol 114, 1992, 741-748 and Wong et al., J. Am. Chem. Soc. Vol 117.1995,

10 3333-3339). Zuivering is echter geen voorwaarde voor efficiënt gebruik van DERA10 3333-3339). However, purification is not a condition for the efficient use of DERA

in aldolreacties, zie bijvoorbeeld Wong et al., J. Am. Chem. Soc. Vol 117, 1995, 3333-3339. Voor het gedeeltelijk zuiveren van DERA werden standaardtechnieken toegepast. Bevroren pellets werden gesuspendeerd in een 100 mM kaliumfosfaatbuffer bij pH 7,2 (1 gewichtsdeel natte cellen en 2 15 gewichtsdelen buffer), waarna de celwanden door middel van continue ultrasonificatie werden vernietigd. Het heldere ruwe extract werd verkregen door middel van centrifugeren en direct gebruikt of opgeslagen bij -20°C. De oplossing kan indien gewenst verder geconcentreerd worden door middel van ultrafiltratie, bijvoorbeeld met behulp van Millipore ultrafiltratiemembranen met een cut-off 20 waarde van 10.000 Dalton (Millipore, Bedford, USA). Typische specifieke activiteiten die door middel van deze werkwijze verkregen werden liggen tussen 1400 and 5300 units per g oplossing.in aldol reactions, see, for example, Wong et al., J. Am. Chem. Soc. Vol 117, 1995, 3333-3339. Standard techniques were used for the partial purification of DERA. Frozen pellets were suspended in a 100 mM potassium phosphate buffer at pH 7.2 (1 part by weight of wet cells and 2 parts by weight of buffer), after which the cell walls were destroyed by continuous ultrasonification. The clear crude extract was obtained by centrifugation and used directly or stored at -20 ° C. The solution can be further concentrated if desired by ultrafiltration, for example with the aid of Millipore ultrafiltration membranes with a cut-off value of 10,000 Dalton (Millipore, Bedford, USA). Typical specific activities obtained by this method are between 1400 and 5300 units per g of solution.

4.Bepaling van de aktiviteit van DERA4. Determining the activity of DERA

25 Recombinant E. coli cellen die DERA synthetiseren werden onderworpen aan sonificatie in een 50 mM kaliumfosfaatbuffer en gecentrifugeerd (18.500 rpm, 30 min) om het celmateriaal te verwijderen. Het resulterende vrije celextract werd verdund en gebruikt in een gekoppelde spectrofotometrische test. Hierbij werd 2-deoxyribose-5-fosfaat omgezet in D-glyceraldehyde-3-fosfaat en 30 aceetaldehyde, waarna het D-glyceraldehyde-3-fosfaat werd omgezet in dihydroxyacetonfosfaat in aanwezigheid van triosefosfaat isomerase (TiM, EC 5.3.1.1). Dihydroxyacetonfosfaat werd vervolgens omgezet in glycerol-3-fosfaat in aanwezigheid van glycerolfosfaat dehydrogenase (GDH, EC 1.1.1.8). In de laatste stap werd nicotineamineadenine dinucleotide in gereduceerde vorm (NADH) 35 geconsumeerd, wat spectrofotometrisch gevolgd werd via bepaling van de 1 o 1 85 2 5 * -12- afname in absorptie bij 340 nm. Typisch werd een totaal volume van 3 ml toegepast, bevattende 2878,5 μΜ van een 50 mM triethanolaminebuffer met pH 7,2, 30 μΙ van een 12 mM oplossing van NADH in water, 11,5 μΙ van een enzymsuspensie bevattende 30 eenheden GDH en 500 eenheden TIM in 3,2M 5 waterig ammoniumfosfaat, en 30 μΙ van een 50 mM oplossing van 2-deoxyribose-5-fosfaat in water. De reactie werd opgestart door toevoeging van 50 μΙ vrij celextract. De temperatuur bedroeg 37 °C. De activiteit, uitgedrukt in U(nits), waarin 1 unit gelijk is aan de enzymatische activiteit die overeenkomt met de omzetting van 1 μίτιοΙ 2-deoxyribose-5-fosfaat per minuut bij 37 °C, werd 10 berekend uit de lineaire afname van de absorptie bij 340 nm.Recombinant E. coli cells synthesizing DERA were sonicated in a 50 mM potassium phosphate buffer and centrifuged (18,500 rpm, 30 min) to remove the cell material. The resulting free cell extract was diluted and used in a coupled spectrophotometric test. Here, 2-deoxyribose-5-phosphate was converted to D-glyceraldehyde-3-phosphate and acetaldehyde, after which the D-glyceraldehyde-3-phosphate was converted to dihydroxyacetone phosphate in the presence of triosephosphate isomerase (TiM, EC 5.3.1.1). Dihydroxyacetone phosphate was then converted to glycerol-3-phosphate in the presence of glycerol phosphate dehydrogenase (GDH, EC 1.1.1.8). In the final step, nicotine amin adenine dinucleotide in reduced form (NADH) was consumed, which was followed spectrophotometrically by determining the 1 -12 85 decrease in absorbance at 340 nm. Typically a total volume of 3 ml was used, containing 2878.5 μΜ of a 50 mM triethanolamine buffer with pH 7.2, 30 μΙ of a 12 mM solution of NADH in water, 11.5 μΙ of an enzyme suspension containing 30 units of GDH and 500 units of TIM in 3.2 M aqueous ammonium phosphate, and 30 μΙ of a 50 mM solution of 2-deoxyribose-5-phosphate in water. The reaction was started by the addition of 50 μΙ free cell extract. The temperature was 37 ° C. The activity, expressed in U (nits), in which 1 unit equals the enzymatic activity corresponding to the conversion of 1 μίτιοΙ 2-deoxyribose-5-phosphate per minute at 37 ° C, was calculated from the linear decrease of the absorbance at 340 nm.

VoorbeeldenExamples

Voorbeeld IEXAMPLE 1

15 Bereiding van 6-chloro-2.4.6-trideoxvhexose in een batch experimentPreparation of 6-chloro-2,4,6-trideoxhexose in a batch experiment

Aan 37 mL van een 100 mM buffer-oplossing van NaHC03 werd bij een temperatuur van 4 °C 4,3 mL (0,03 mol) van een 45% oplossing van chlooraceetaldehyde en 3,4 mL (0,06 mol) aceetaldehyde toegevoegd. De pH van dit mengsel bedroeg 7,3. De enzymatische reactie werd gestart door toevoeging 20 van 6,3 mL (5270 U/g) enzymoplossing. De reactie werd bij een constante pH van 7,5 uitgevoerd. Op regelmatige tijdstippen werd het mengsel geanalyseerd d.m.v. GC. De reactie werd gestopt door toevoeging van 100 mL aceton nadat een concentratie van het 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose van ongeveer 80 g/L (8 massa%) was bereikt.To 37 mL of a 100 mM buffer solution of NaHCO 3 was added 4.3 mL (0.03 mol) of a 45% solution of chloroacetaldehyde and 3.4 mL (0.06 mol) of acetaldehyde at a temperature of 4 ° C . The pH of this mixture was 7.3. The enzymatic reaction was started by adding 6.3 mL (5270 U / g) enzyme solution. The reaction was carried out at a constant pH of 7.5. The mixture was analyzed at regular intervals by means of GC. The reaction was stopped by adding 100 mL of acetone after a 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose concentration of about 80 g / L (8 mass%) was reached.

2525

Voorbeeld IIEXAMPLE II

Bereiding van 6-chloro-2,4,6-trideoxvhexose in een repetitief batchexperimentPreparation of 6-chloro-2,4,6-trideoxhexose in a repetitive batch experiment

Het experiment uit voorbeeld I werd herhaald. Echter nadat een concentratie van het 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose van ongeveer 80 g/L werd 30 bereikt werd nogmaals 4,3 mL (0,03 mol) van een 45% oplossing van chlooraceetaldehyde, 3,4 mL (0,06 mol) aceetaldehyde en 6,3 mL (5270 U/g) enzymoplossing toegevoegd. Dit werd nog drie maal herhaald, steeds nadat de conversie een constante waarde had bereikt en niet verder toenam. Op deze manier werd in totaal 0,15 mol van een 45% oplossing van chlooraceetaldehyde 101 8525 ' - 13- en 0,30 mol aceetaldehyde toegevoegd. De reactie werd bij een constante pH van 7,5 uitgevoerd. Monsters uit het reactiemengsel werden geanalyseerd m.b.v. GC. De uiteindelijke concentratie 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose bedroeg circa 240 g/L (24 massa%).The experiment from example I was repeated. However, after a concentration of the 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose of about 80 g / L was reached, another 4.3 mL (0.03 mol) of a 45% solution of chloroacetaldehyde, 3.4 mL (0.06 mol) acetaldehyde and 6.3 mL (5270 U / g) enzyme solution added. This was repeated three more times, each time the conversion had reached a constant value and did not increase further. In this way a total of 0.15 mole of a 45% solution of chloroacetaldehyde 101 8525 - 13- and 0.30 mole acetaldehyde was added. The reaction was carried out at a constant pH of 7.5. Samples from the reaction mixture were analyzed using. GC. The final concentration of 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose was approximately 240 g / L (24 mass%).

55

Voorbeeld IIIEXAMPLE III

Bereiding van 6-chloro-2,4,6-trideoxvhexose d.m.v. doseren van de reactiecomponenten.Preparation of 6-chloro-2,4,6-trideoxhexose by means of dosing of the reaction components.

Aan 6,2 L gedemineraliseerd water werd 84 g (1,0 mol) NaHC03 10 toegevoegd waarna de oplossing werd gekoeld tot circa 2 °C. Vervolgens werd hieraan 72,3 mL (0,4 mol) van een 45 % oplossing van chlooraceetaldehyde toegevoegd waarna de oplossing met behulp van 32 % HCI op pH 7,3 werd gebracht. Aan dit mengsel werd een enzymoplossing (6,8x106 U) toegevoegd waarna het volume werd aangevuld tot 7,5 L. Gedurende 2 uur werd aan dit 15 mengsel in totaal 1,3 L (9,5 mol) van een 45% chlooraceetaldehyde oplossing en 0,9 L (9,9 mol) van een 50% aceetaldehyde oplossing gedoseerd. Hierna werd gedurende 5 uur 0,86 L (9,5 mol) van een 50% aceetaldehyde oplossing toegevoegd. Het reactiemengsel werd overnacht geroerd bij 2 °C en een constante pH van 7,5. Het totale gewicht van het reactiemengsel bedroeg 10,9 kg. 20 Het gehalte aan 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose werd bepaald d.m.v. gaschromatografie en bedroeg 126 g/L (12,6 massa%).To 6.2 L of demineralized water was added 84 g (1.0 mol) of NaHCO 3, after which the solution was cooled to approximately 2 ° C. Then 72.3 mL (0.4 mol) of a 45% solution of chloroacetaldehyde was added thereto, after which the solution was adjusted to pH 7.3 with the aid of 32% HCl. An enzyme solution (6.8 x 10 6 U) was added to this mixture, after which the volume was made up to 7.5 L. A total of 1.3 L (9.5 mol) of a 45% chloroacetaldehyde solution was added to this mixture for 2 hours. and 0.9 L (9.9 mol) of a 50% acetaldehyde solution dosed. After this, 0.86 L (9.5 mol) of a 50% acetaldehyde solution was added for 5 hours. The reaction mixture was stirred overnight at 2 ° C and a constant pH of 7.5. The total weight of the reaction mixture was 10.9 kg. The content of 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose was determined by means of gas chromatography and was 126 g / L (12.6 mass%).

Voorbeeld IVEXAMPLE IV

Bereiding van 6-chloro-2,4,6-trideoxvhexose d.m.v. doseren van de 25 reactiecomponenten.Preparation of 6-chloro-2,4,6-trideoxhexose by means of dosing of the reaction components.

Aan 0,44 L gedemineraliseerd water werd 11,8 g (0,14 mol) NaHC03 toegevoegd waarna de oplossing werd gekoeld tot circa 2 °C.To 0.44 L of demineralized water was added 11.8 g (0.14 mol) of NaHCO 3, after which the solution was cooled to approximately 2 ° C.

Vervolgens werd hieraan 10 mL (0,07 mol) van een 45% oplossing van chlooraceetaldehyde toegevoegd waarna de oplossing met behulp van 32 % HCI 30 op pH 7,3 werd gebracht. Aan dit mengsel werd een enzymoplossing (1,03 x 106 U) toegevoegd. Gedurende 2 uur werd aan dit mengsel 0,193 L (1,35 mol) van een 45% chlooraceetaldehyde oplossing en 0,127 L (1,40 mol) van een 50% aceetaldehyde oplossing gedoseerd. Hierna werd gedurende 5 uur 0,134 L (1,46 mol) van een 50 % aceetaldehyde oplossing toegevoegd. Het reactiemengsel 101 8525 ' - 14- werd overnacht geroerd bij 2 °C een constante pH van 7,5. Het gehalte aan 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose werd bepaald d.m.v. gaschromatografie en bedroeg 180 g/L (18,0 massa%).Subsequently, 10 ml (0.07 mol) of a 45% solution of chloroacetaldehyde was added thereto, after which the solution was adjusted to pH 7.3 with the aid of 32% HCl. An enzyme solution (1.03 x 10 6 U) was added to this mixture. 0.93 L (1.35 mol) of a 45% chloroacetaldehyde solution and 0.127 L (1.40 mol) of a 50% acetaldehyde solution were added to this mixture for 2 hours. After this, 0.134 L (1.46 mol) of a 50% acetaldehyde solution was added for 5 hours. The reaction mixture 101 8525 '- 14 - was stirred overnight at 2 ° C at a constant pH of 7.5. The content of 6-chloro-2,4,6-trideoxyhexose was determined by means of gas chromatography and was 180 g / L (18.0 mass%).

5 101 8525"5 101 8525 "

Claims (19)

1. Werkwijze voor de bereiding van een 2,4-dideoxyhexose of een 2,4,6-trideoxyhexose uit een al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding 5 met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom en een al dan niet gesubstitueerd aldehyde in aanwezigheid van een aldolase en water, met het kenmerk, dat de reactie tussen de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom en het al dan niet gesubstitueerde 10 aldehyde wordt uitgevoerd bij een carbonylconcentratie van ten hoogste 6 mol/l reactiemengsel en de eindconcentratie van het 2,4-dideoxyhexose of het 2,4,6-trideoxyhexose ten minste 2 massa% van het reactiemengsel bedraagt.Process for the preparation of a 2,4-dideoxyhexose or a 2,4,6-trideoxyhexose from a substituted or unsubstituted carbonyl compound having at least 2 carbon atoms and at least one alpha hydrogen atom and a substituted or unsubstituted aldehyde in presence of an aldolase and water, characterized in that the reaction between the substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one alpha hydrogen atom and the unsubstituted or substituted aldehyde is carried out at a carbonyl concentration of at most 6 mol / l reaction mixture and the final concentration of the 2,4-dideoxyhexose or the 2,4,6-trideoxyhexose is at least 2 mass% of the reaction mixture. 2. Werkwijze volgens conclusie 1, met het kenmerk, dat de eindconcentratie 15 van het 2,4-dideoxyhexose of het 2,4,6-trideoxyhexose tussen 5 en 50 massa% van het reactiemengsel ligt.2. Process according to claim 1, characterized in that the final concentration of the 2,4-dideoxyhexose or the 2,4,6-trideoxyhexose is between 5 and 50 mass% of the reaction mixture. 3. Werkwijze volgens conclusie 2, met het kenmerk, dat de eindconcentratie van het 2,4-dideoxyhexose of het 2,4,6-trideoxyhexose tussen 10 en 35 massa% van het reactiemengsel ligt.Process according to claim 2, characterized in that the final concentration of the 2,4-dideoxyhexose or the 2,4,6-trideoxyhexose is between 10 and 35 mass% of the reaction mixture. 4. Werkwijze volgens één der conclusies 1-3, met het kenmerk, dat de carbonylconcentratie in het reactiemengsel tijdens het syntheseproces tussen 0,6 en 4 mol/l reactiemengsel ligt.Process according to any one of claims 1-3, characterized in that the carbonyl concentration in the reaction mixture during the synthesis process is between 0.6 and 4 mol / l of reaction mixture. 5. Werkwijze volgens één der conclusies 1-4, met het kenmerk, dat ten minste 0,1 mol/l van het al dan niet gesubstitueerde aldehyde wordt 25 voorgelegd.5. A method according to any one of claims 1-4, characterized in that at least 0.1 mol / l of the substituted or unsubstituted aldehyde is submitted. 6. Werkwijze volgens één der conclusies 1-5, met het kenmerk, dat de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom en/of het al dan niet gesubstitueerde aldehyde in ten minste twee porties worden toegevoegd 30 aan het reactiemengsel.Process according to one of claims 1 to 5, characterized in that the carbonyl compound, whether or not substituted, with at least 2 carbon atoms and at least one alpha hydrogen atom and / or the aldehyde, whether or not substituted, is added in at least two portions 30 to the reaction mixture. 7. Werkwijze volgens één der conclusies 1-5, met het kenmerk, dat de al dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom en/of het al dan niet 1 01 852 5'' - 16- gesubstitueerde aldehyde in de tijd worden gedoseerd aan het reactiemengsel.Process according to any one of claims 1 to 5, characterized in that the carbonyl compound, whether or not substituted, with at least 2 carbon atoms and at least one alpha hydrogen atom and / or the optionally substituted aldehyde are dosed over time to the reaction mixture. 8. Werkwijze volgens één der conclusies 1-7 met het kenmerk, dat de molaire verhouding van totaal toegevoegde al dan niet gesubstitueerde 5 carbonylverbinding met ten minste 2 koolstofatomen en ten minste één α-waterstofatoom tot totaal toegevoegd al dan niet gesubstitueerd aldehyde tussen 1,5:1 en 4:1 ligt.8. A method according to any one of claims 1-7, characterized in that the molar ratio of total added substituted or unsubstituted carbonyl compound with at least 2 carbon atoms and at least one α-hydrogen atom to total added substituted or unsubstituted aldehyde between 1, 5: 1 and 4: 1. 9. Werkwijze volgens één der conclusies 1-8, met het kenmerk, dat als de aldolase een 2-deoxyribose-5-fosfaataldolase wordt toegepast.The method according to any one of claims 1-8, characterized in that a 2-deoxyribose-5-phosphate aldolase is used as the aldolase. 10. Werkwijze volgens conclusie 9, met het kenmerk, dat de 2-deoxyribose- 5-fosfaataldolase afkomstig is uit Escherichia coli.The method according to claim 9, characterized in that the 2-deoxyribose-5-phosphate aldolase is from Escherichia coli. 11. Werkwijze volgens één der conclusies 1-10, met het kenmerk, dat ais al dan niet gesubstitueerd aldehyde een gesubstitueerd aceetaidehyde met de formule HC(0)CH2X wordt toegepast, waarin X voorstelt een 15 halogeen, een tosylaatgroep, een mesylaatgroep, een acyloxygroep, een fenacetyloxygroep, een alkyloxygroep of een aryloxygroep.11. A method according to any one of claims 1-10, characterized in that a substituted acetaldehyde of the formula HC (O) CH 2 X is used as a substituted or unsubstituted aldehyde, wherein X represents a halogen, a tosylate group, a mesylate group, a acyloxy group, a phenacetyloxy group, an alkyloxy group or an aryloxy group. 12. Werkwijze volgens conclusie 11, met het kenmerk, dat het gesubstitueerde aceetaidehyde chlooraceetaldehyde is.12. The method of claim 11 wherein the substituted acetaldehyde is chloroacetaldehyde. 13. Werkwijze volgens één der conclusies 1-12, met het kenmerk, dat als al 20 dan niet gesubstitueerde carbonylverbinding aceetaidehyde wordt toegepast.A method according to any one of claims 1 to 12, characterized in that acetaldehyde is used as the carbonyl compound substituted or unsubstituted. 14. Werkwijze volgens conclusies 11 en 13, waarin het verkregen 2,4-dideoxyhexose of het verkregen 2,4,6-trideoxyhexose vervolgens wordt omgezet in het overeenkomstige 4-hydroxy-tetrahydropyran-2-on.The method according to claims 11 and 13, wherein the 2,4-dideoxyhexose or 2,4,6-trideoxyhexose obtained is subsequently converted to the corresponding 4-hydroxy-tetrahydropyran-2-one. 15. Werkwijze volgens conclusie 14, waarin het 4-hydroxy-tetrahydropyran-2- on vervolgens wordt omgezet in een 2-(1,3-dioxaan-4-yljazijnzuurderivaat.The method of claim 14, wherein the 4-hydroxy-tetrahydropyran-2-one is subsequently converted to a 2- (1,3-dioxan-4-yl] acetic acid derivative. 16. Werkwijze volgens conclusie 15, waarin 2-(1,3-dioxaan-4-yljazijnzuurderivaat vervolgens wordt omgezet in het overeenkomstige 2- 30 (6-hydroxymethyl-1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuurderivaat.The method of claim 15, wherein 2- (1,3-dioxan-4-yl-acetic acid derivative) is subsequently converted to the corresponding 2- (6-hydroxymethyl-1,3-dioxan-4-yl) acetic acid derivative. 17. Werkwijze volgens conclusies 15 of conclusie 16, waarin het 2-(1,3-dioxaan-4-yl)azijnzuurderivaat de t-butylester van het 2-(1,3-dioxaan-4-yljazijnzuur is. 1 o 1 85 2 5"! - 17-A method according to claim 15 or claim 16, wherein the 2- (1,3-dioxan-4-yl) acetic acid derivative is the t-butyl ester of the 2- (1,3-dioxan-4-yl-acetic acid). 2 5 "! - 17- 18. Toepassing van een 2,4-dideoxyhexose of een 2,4,6-trideoxyhexose, verkregen door middel van een werkwijze volgens één der conclusies 1-13 in de bereiding van een geneesmiddel.Use of a 2,4-dideoxyhexose or a 2,4,6-trideoxyhexose obtained by a method according to any one of claims 1-13 in the preparation of a medicament. 19. Toepassing volgens conclusie 17, met het kenmerk, dat het 5 geneesmiddel een HMG-CoA reductase inhibitor is, bij voorkeur een statine. 1 01 85 2 5 119. Use according to claim 17, characterized in that the drug is an HMG-CoA reductase inhibitor, preferably a statin. 1 01 85 2 5 1
NL1018525A 2001-07-12 2001-07-12 Preparing 2,4-dideoxyhexose/2,4,6-trideoxyhexose by reacting optionally substituted carbonyl compound with alpha-hydrogen atom and two carbon atoms and optionally substituted aldehyde at specific carbonyl concentration NL1018525C2 (en)

Priority Applications (14)

Application Number Priority Date Filing Date Title
NL1018525A NL1018525C2 (en) 2001-07-12 2001-07-12 Preparing 2,4-dideoxyhexose/2,4,6-trideoxyhexose by reacting optionally substituted carbonyl compound with alpha-hydrogen atom and two carbon atoms and optionally substituted aldehyde at specific carbonyl concentration
DE60218678T DE60218678T2 (en) 2001-07-12 2002-07-09 PROCESS FOR THE PREPARATION OF 2,4-DIDESOXYEXE AND 2,4,6-TRIDESOXYEXE
AT02746200T ATE356215T1 (en) 2001-07-12 2002-07-09 METHOD FOR PRODUCING 2,4-DIDESOXYHEXOSES AND 2,4,6-TRIDESOXYHEXOSES
CA002448517A CA2448517A1 (en) 2001-07-12 2002-07-09 Process for the preparation of 2,4-dideoxyhexoses and 2,4,6-trideoxyhexoses
US10/481,303 US6964863B2 (en) 2001-07-12 2002-07-09 Process for the preparation of 2,4-dideoxyhexoses and 2,4,6-trideoxyhexoses
HU0401577A HU228734B1 (en) 2001-07-12 2002-07-09 Process for the preparation of 2,4-didezoxyhexoses and 2,4,6-tridezoxyhexoses
DK02746200T DK1404844T3 (en) 2001-07-12 2002-07-09 Process for Preparation of 2,4-Dideoxy Hexoses and 2,4,6-Trideoxy Hyxoses
PCT/NL2002/000450 WO2003006656A2 (en) 2001-07-12 2002-07-09 Process for the preparation of 2,4-dideoxyhexoses and 2,4,6-trideoxyhexoses
MXPA04000310A MXPA04000310A (en) 2001-07-12 2002-07-09 Process for the preparation of 2,4-dideoxyhexoses and 2,4,6-trideoxyhexoses.
CNB028139429A CN1300132C (en) 2001-07-12 2002-07-09 Process for the preparation of 2,4-dideoxyhexoses and 2,4,6-trideoxyhexoses
EP02746200A EP1404844B1 (en) 2001-07-12 2002-07-09 Process for the preparation of 2,4-dideoxyhexoses and 2,4,6-trideoxyhexoses
ES02746200T ES2282433T3 (en) 2001-07-12 2002-07-09 PROCEDURE FOR THE PREPARATION OF 2,4-DIDESOXIHEXOSAS AND 2,4,6-TRIDESOXIHEXOSAS.
JP2003512413A JP4248392B2 (en) 2001-07-12 2002-07-09 Method for producing 2,4-dideoxyhexose and 2,4,6-trideoxyhexose
US11/206,574 US7439046B2 (en) 2001-07-12 2005-08-17 Process for the preparation of 2,4-dideoxyhexoses and 2,4,6-trideoxyhexoses

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
NL1018525A NL1018525C2 (en) 2001-07-12 2001-07-12 Preparing 2,4-dideoxyhexose/2,4,6-trideoxyhexose by reacting optionally substituted carbonyl compound with alpha-hydrogen atom and two carbon atoms and optionally substituted aldehyde at specific carbonyl concentration
NL1018525 2001-07-12

Publications (1)

Publication Number Publication Date
NL1018525C2 true NL1018525C2 (en) 2003-01-16

Family

ID=19773714

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NL1018525A NL1018525C2 (en) 2001-07-12 2001-07-12 Preparing 2,4-dideoxyhexose/2,4,6-trideoxyhexose by reacting optionally substituted carbonyl compound with alpha-hydrogen atom and two carbon atoms and optionally substituted aldehyde at specific carbonyl concentration

Country Status (1)

Country Link
NL (1) NL1018525C2 (en)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5594153A (en) * 1992-03-27 1997-01-14 E. R. Squibb & Sons, Inc. Process for the preparation of 1,3-dioxane derivatives useful in the preparation of HMG-COA reductase inhibitors
US5795749A (en) * 1995-04-05 1998-08-18 The Scripps Research Institution Use of 2-deoxyribose-5-phosphate aldolase to prepare 2-deoxyfucose, analogues and derivatives

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5594153A (en) * 1992-03-27 1997-01-14 E. R. Squibb & Sons, Inc. Process for the preparation of 1,3-dioxane derivatives useful in the preparation of HMG-COA reductase inhibitors
US5795749A (en) * 1995-04-05 1998-08-18 The Scripps Research Institution Use of 2-deoxyribose-5-phosphate aldolase to prepare 2-deoxyfucose, analogues and derivatives

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BARBAS III C F ET AL.: "Deoxyribose-5-phosphate aldolase as a synthetic catalyst", JOURNAL OF THE AMERICAN CHEMICAL SOCIETY, vol. 112, no. 5, 28 February 1990 (1990-02-28), pages 2013 - 2014, XP002049679, ISSN: 0002-7863 *
CHEN L ET AL.: "Deoxyribose 5- phosphate aldolase as a catalyst in asymmetric aldol condensation", JOURNAL OF THE AMERICAN CHEMICAL SOCIETY, vol. 114, no. 2, 1992, pages 741 - 748, XP002195227 *
GIJSEN H J M ET AL.: "Sequential three- and four-substrate aldol reactions catalyzed by aldolases", JOURNAL OF THE AMERICAN CHEMICAL SOCIETY, vol. 117, no. 29, 26 July 1995 (1995-07-26), pages 7585 - 7591, XP002195226 *
GIJSEN H J M ET AL.: "Unprecedented Asymmetric Aldol Reactions with Three Aldehyde Substrates Catalyzed by 2-deoxyribose-5-phosphate Aldolase", JOURNAL OF THE AMERICAN CHEMICAL SOCIETY, vol. 116, no. 18, 1994, pages 8422 - 8423, XP002128323, ISSN: 0002-7863 *
TAKAYAMA S ET AL.: "Microbial aldolases and transketolases: New biocatalytic approaches to simple and complex sugars", ANNUAL REVIEW OF MICROBIOLOGY, vol. 51, 1 October 1997 (1997-10-01), pages 285 - 310, XP008002133 *
WONG C-H ET AL.: "Recombinant 2-deoxyribose-5-phosphate aldolase in organic synthesis: use of sequential two-substrate and three-substrate aldol reactions", JOURNAL OF THE AMERICAN CHEMICAL SOCIETY, vol. 117, no. 11, 22 March 1995 (1995-03-22), pages 3333 - 3339, XP002138190, ISSN: 0002-7863 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7439046B2 (en) Process for the preparation of 2,4-dideoxyhexoses and 2,4,6-trideoxyhexoses
US7132267B2 (en) Enzymatic processes for the production of 4-substituted 3-hydroxybutyric acid derivatives and vicinal cyano, hydroxy substituted carboxylic acid esters
US7125693B2 (en) Enzymatic processes for the production of 4-substituted 3-hydroxybutyric acid derivatives
US20110046375A1 (en) ((2s,4r)-4,6-dihydroxytetrahydro-2h-pyran-2-yl)methyl carboxylate and process for the production thereof
Švarc et al. An innovative route for the production of atorvastatin side-chain precursor by DERA-catalysed double aldol addition
NL1018525C2 (en) Preparing 2,4-dideoxyhexose/2,4,6-trideoxyhexose by reacting optionally substituted carbonyl compound with alpha-hydrogen atom and two carbon atoms and optionally substituted aldehyde at specific carbonyl concentration
Isobe et al. A new enzymatic method for glycolaldehyde production from ethylene glycol
NL1019622C2 (en) Preparing 2,4-dideoxyhexose/2,4,6-trideoxyhexose by reacting optionally substituted carbonyl compound with alpha-hydrogen atom and two carbon atoms and optionally substituted aldehyde at specific carbonyl concentration
David Pyruvate decarboxylase: a new enzyme for the production of acyloins by biotransformation
US4503153A (en) Method for producing aldehydes from primary alcohols
EP1945785A1 (en) Process for preparing 1,1,1-trifluoroisopropanol predominantly comprising one enantiomer
CA1190875A (en) Method for producing aldehydes from primary alcohols
Costes et al. Stability and stabilization of hydroxynitrile lyase in organic solvents
US7148055B2 (en) Process for production of optically active 3-hydroxypentanenitrile
Dinkelbach et al. Fructose-1, 6-bisphosphate aldolases from Staphylococcus carnosus: stereoselective enzymatic synthesis of ketose-1-phosphates and successive reaction to 1, 3-dioxanes
EP1468101B1 (en) Process for preparing chiral aromatic alpha-hydroxy ketones using 2-hydroxy-3-oxoacid synthase
US11396666B2 (en) Method for producing (1R,3R)-3-(trifluoromethyl)cyclohexan-1-ol and intermediate thereof
Kreuzman et al. Enzymatic synthesis of diastereospecific carbacephem intermediates using serine hydroxymethyltransferase
WO2006087266A1 (en) PROCESS FOR PREPARING ENANTIOMERICALLY ENRICHED α-HYDROXYKETONES
WO1999032638A1 (en) Process for producing dihydroxyacetone 3-phosphate
EP2017267A1 (en) Synthesis of statins

Legal Events

Date Code Title Description
PD2B A search report has been drawn up
VD1 Lapsed due to non-payment of the annual fee

Effective date: 20060201