MXPA99001171A - Material biologico inmerso en hidrogeles, un proceso para la inmersion de tal material, asi como suuso como semilla artificial - Google Patents

Abstract

La invención se relaciona con un hidrogel completamente biodegradable que comprende poliéster poliuretano poliurea que contiene grupos urea asícomo polisacáridos y/o sus derivados, el hidrogel contiene material de planta capaz de dividirse. La invención también se relaciona con un proceso para la inmersión del material biológica y la fabricación y formación de los hidrogeles a partir de soluciones acuosas. Los hidrogeles de acuerdo a la invención pueden ser utilizados como material de recubrimiento para la inmersión de un material biológico capaz de dividirse, especialmente material de planta, de manera preferible células de planta, protoplastos, tejidos de planta yórganos de planta, asícomo embriones de planta cigóticos o somáticos, bajo condiciones estériles con el propósito de proteger el material durante el almacenamiento, transporte y manipulación. Los hidrogeles de acuerdo a la invención también pueden contener aditivos adicionales, por ejemplo agentes de protección de la planta o nutrientes. El material biológico de planta inmersa de acuerdo a la invención puede ser utilizado como semilla artificial.

Description

MATERIAL BIOLÓGICO INMERSO EN HIDRQGELES, UN PROCESO PARA LA INMERSIÓN DE TAL MATERIAL, ASI COMO SU USO COMO SEMILLA ARTIFICIAL DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN La presente invención se relaciona con un hidrogel completamente biodegradable que comprende poliéster poliuretano poliurea así como polisacáridos y/o sus derivados, y el material de plantas capaz de dividirse. La invención también se relaciona con un proceso p*ara la inmersión del material biológico y para producir y formar los hidrogeles a partir de soluciones acuosas, así como con el uso del material biológico inmerso en hidrogeles como semilla artificial. Las plantas se propagan sexualmente vía semillas y asexualmente o vegetativamente vía los meristemos de las plantas. Ambos tipos de propagación son de gran importancia económica. Mientras que la siembra de semillas naturales se lleva a cabo en gran medida mecánicamente, la propagación vegetativa implica mucho trabajo manual y por lo tanto consume más tiempo, es de trabajo intensivo y en consecuencia más caro que la propagación por semillas. Las especies, cepas, cultivos y linajes de plantas, en las cuales una constitución genética específica es REF. 29374 importante (por ejemplo propagación clonal de planta élite) se propagan vegetativamente. A propagación vegetativa también se utiliza para plantas que forman semillas únicamente después de un largo periodo de vegetación, que forman únicamente unas cuantas semillas, o la capacidad de germinación de aquellas semillas dañadas. Para simplificar la propagación vegetativa de las plantas, además del desarrollo de proceso automatizados para el cultivo a gran escala, también son deseables sustancias y procesos para encapsular el material frágil, el cual además actúa como el estuche de la semilla. En el caso de algunos tipos de plantas, ahora es posible producir plantas (tejidos) miniaturizados y regenerables capaces de dividirse en procesos de cultivo a gran escala (por ejemplo WO95/19102, US 5 294 549, US 5 334 530) . Sin protección mecánica y/o protección contra la desecación, esas plantas pueden ser transportadas y almacenadas únicamente en un grado limitado. Por lo tanto es deseable encapsular o cubrir partes de la planta como unidades discretas, de modo que puedan ser almacenadas y/o transportadas, adecuadamente dosificadas y utilizadas como semillas de plantas naturales. Las DE 2 103 873, EP 141 374, EP 107 141, US 4 562 663, WO 8502972, US 4 779 376, WO 9207457 describen la inmersión de material de plantas en hidrogeles, los cuales han sido producidos a partir de polisacáridos reticulables iónicamente tales como el alginato, gelatinas, carrageninas y goma de algarrobo. Los materiales, combinaciones de materiales y procesos mencionados anteriormente de acuerdo a la técnica anterior hasta ahora no habían sido completamente satisfactorios, puesto que en algunos casos no imparten estabilidad mecánica suficiente a las estructuras recubiertas, ni protegen el tejido de la planta contra una pérdida muy rápida o muy extensa de agua bajo las condiciones de uso. Esto es cierto en particular para los derivados de polisacáridos mencionados anteriormente. Durante la desecación se observa también una marcada contracción de los materiales, la cual puede afectar seriamente la función protectora del estuche de la semilla. Un problema más que involucra específicamente a los recubrimientos empleados hasta ahora basados en polisacáridos tales como el ácido algínico o sus sales, o derivados de polisacáridos iónicos adicionales, es el grado insuficiente de rehidratación después de un periodo de desecación. Esos materiales pueden por lo tanto ser preservados únicamente bajo niveles de humedad atmosféricos apropiados. Los recubrimientos de grasas, aceites, ceras o polímeros insolubles en agua aplicados posteriormente para retardar la hidratación y estabilización mecánica, como se describe por ejemplo en las US 4 562 663, WO 9217422, US 5 190 787, son también adecuados si tienen que ser procesado bajo temperaturas no fisiológicamente altas, se requiere el uso de solventes orgánicos, o si afectan de manera adversa el suministro de oxígeno del material biológico encerrado. Además de los hidrogeles basados en polisacáridos, también han sido descritos hidrogeles de poliuretano (PU) . La DE 3312578 y la DE 4 217 891 describen el uso de poliuretanos para inmovilizar células capaces de dividirse. En esta solicitud los hidrogeles de PU sirven como material portador de células y biocatalizadores en suspensiones acuosas, aunque los hidrogeles de PU descritos para este propósito no son biodegradables . El objetivo de la presente invención es proporcionar una forma de encapsulación/empacado de material biológico capaz de dividirse para los propósitos de proteger el material durante el almacenamiento, transporte y manipulación, el cual retarda en gran medida la desecación, es dimensionalmente estable, es rehinchable en un grado suficiente después de la desecación parcial, es biodegradable y fácil de producir. La adición de aditivos tales como nutrientes o sustancias activas y protectoras deberá también ser posible.

El material requisito debe ser capaz de ser manejado bajo condiciones estériles y evitar el uso de solventes tóxicos o condiciones fisiológicamente inaceptables . Los objetos descritos anteriormente se alcanzan de manera sorprendente mediante el uso de poliéster poliuretano poliureas completamente biodegradables en combinación con polisacáridos o derivados de polisacáridos, las cuales pueden ser utilizadas como dispersiones en agua o soluciones acuosas. Se ha encontrado de manera sorprendente que las poliéster poliuretano poliureas son adecuadas para recubrir materiales biológicos y pueden ser utilizadas en combinación con polisacáridos biodegradables u otros derivados para la inmersión de acuerdo con la invención dentro del contexto del objeto de la invención descrito anteriormente. La presente invención se relaciona con hidrogeles biodegradables que contienen al menos A) una poliéster poliuretano poliurea, así como B) polisacáridos y/o derivados de polisacárido, y C) material biológico, de manera preferible material de plantas capaz de dividirse, especialmente células de plantas, tejidos callosos, protoplastos, tejidos de plantas u órganos de plantas, por ejemplo brotes adventicios, micronódulos, yemas auxiliares, yemas apicales, repollos, así como embriones zigóticos o somáticos o análogos de protobulbos. El material de planta puede derivarse de las siguientes plantas: plantas que proporcionan materiales nutricionales y crudos, por ejemplo cereales (arroz, maíz, trigo, cebada, centeno, mijo) , papas, legumbres (por ejemplo alfalfa y frijoles) , semilla de colza, girasoles, palmas de aceite, caña de azúcar, remolacha azucarera, henequén, algodón, miscantos y tabaco; vegetales y plantas de raíz (por ejemplo tomates, variedades de colágeno, lechuga, zanahorias, berenjena, melones, pepinillos, espárragos, cebollas, perejil, jengibre); plantas medicinales tales como el gingseng, belladona, digitales; frutas (por ejemplo, manzanas, peras, cerezas, uvas, fresas, frutas cítricas, mango, papaya, plátano, nueces) ; té, cacao, arbustos de café; árboles de bosque, por ejemplo coniferas tales como picea, abeto, pino, alerce; árboles de follaje, por ejemplo, álamo, hayucos, roble; plantas de ornato, por ejemplo, rosas, crisantemos, lilas, amarilis, orquídeas, geranios, begonias, claveles, anturio. Además, pueden utilizarse de manera preferible materiales biológicos capaces de dividirse, los cuales se derivan de manera preferible particularmente de plantas transgénicas, en las cuales la propagación a través de semillas o a través de órganos vegetativos no es muy posible o posible únicamente con dificultad tomando en cuenta la naturaleza de las alteraciones hechas por la tecnología genética, por ejemplo, a través de la expresión específica de la semilla o específica del nodulo de los productos. Aquí posteriormente el término "inmersión" describe todos los procesos de encapsulación, recubrimiento, revestimiento, empaque, etc., posibles del material biológico de acuerdo a la invención. La biodegradabilidad de los materiales está orientada a los requerimientos bajo condiciones estándar (véase el Ejemplo 6) . De acuerdo a la invención, las poliéster poliuretano poliureas pueden ser utilizadas mezcladas con polisacáridos biodegradables iónicos o neutros y sus derivados en un proceso de una etapa o etapas múltiples, para formar cuerpos formados, por ejemplo, esferas, fibras, hojas, revestimientos o similares. Se forma una matriz que contiene agua (hidrogel) por los polisacáridos, y las propiedades mecánicas del hidrogel son mejoradas de manera sorprendente hasta un grado tal por la poliéster poliuretano poliurea que permite la producción de cuerpos de forma sencilla, por ejemplo, esferas, y la pérdida de agua del hidrogel así como del material biológico de acuerdo a la invención pueden ser controladas.

Las poliéster poliuretano poliureas utilizadas de acuerdo a la invención son conocidas de la DE 19 517 185. Las poliureas mencionadas anteriormente se preparan haciendo reaccionar los siguientes, manteniendo a la vez una relación equivalente de grupos isocianato a grupos reactivos con grupos isocianato, de 1:1 a 2:1. a) un componente de diisocianato que comprende al) diisocianato de hexametileno o a2) mezclas de diisocianato de hexametileno con un total de hasta 60% en peso, con referencia a la mezcla de l-isocianato-3, 3, 5-trimetil-5-isocianatometil-ciclohexano y/o 4, 4' -diisocianatodiciclohexilmetano y/o l-metil-2, 4 (6) -diisocianatociclohexano con b) un componente de diol que comprende bl) al menos un diol de poliéster que tiene un peso molecular, calculado a partir del contenido del grupo hidroxilo, de 500 a 10 000, de (i) ácido adípico y/o ácido succínico y (ii) al menos un diol de alcano con 2 a 6 átomos de carbono, o b2) una mezcla de tales dioles de poliéster que tiene hasta 32% en peso, con referencia al peso total del componente de. b) , de dioles de alcano que opcionalmente tienen grupos éter y que contienen de 2 a 6 átomos de carbono, c) un componente de diamina en una cantidad de 2 a 50 equivalentes %, con referencia a la cantidad total de los grupos, grupos que reaccionan con el diisocianato, presentes en los componentes de b) y e), que comprende cl) diaminosulfonatos de la fórmula general H2N- (-CH2-) n-NH- (-CH2-)m-S03Me o c2) mezclas de diaminosulfonatos de cl) con hasta 70% en peso, con referencia al peso total del componente de c) , de etilendiamina, d) opcionalmente alcoholes de poliéter hidrofílicos de la fórmula general H-X-O-R en una cantidad de hasta el 10% en peso, con referencia al peso total de los componentes de b) , c) y d) , así como e) opcionalmente agua, la cual no se incluyó en el cálculo de la relación de equivalentes de grupos isocianato a grupos reactivos con los grupos isocianato, en donde en las fórmulas generales mencionadas anteriormente m y n denotan independientemente números enteros de 2 a 6, Me denota potasio o sodio, R denota un radical de hidrocarburo monovalente con 1 a 12 átomos, y X denota una cadena de óxido de polialquileno en el intervalo de peso molecular de 88 a 4000, cuyas unidades de óxido de alquileno comprenden al menos 40% de unidades de óxido de etileno y el resto unidades de óxido de propileno. De este modo se obtienen dispersiones acuosas de poliéster poliuretano poliureas. El término "dispersión acuosa" pretende incluir las soluciones acuosas que pueden estar presentes si la concentración de centro hidrofílicos en los poliuretanos que comprenden grupos urea es suficientemente alta para asegurar la solubilidad en el agua. Con frecuencias esas dispersiones son sistemas acuosos que contienen poliuretano que tiene grupos urea dispersos y disueltos. Para preparar las dispersiones acuosas, los materiales de partida anteriormente mencionados a) , b) , c) y opcionalmente d) y/o opcionalmente e) se mezclan en las relaciones cuantitativas mencionadas anteriormente. El componente de diisocianato de a) consiste de manera exclusiva preferiblemente de diisocianato de hexametileno o de una mezcla de diisocianato de hexametileno con un total de hasta 60% en peso de l-isocianato-3, 3, 5-trimetil-5-isocianatometilciclohexano y/o 4, 4' -diisocianato-diciclohexilmetano y/o l-metil-2, 4 (6) -diisocianato-ciclohexano. El componente de diol de b) comprende ya sea bl) al menos un diol de poliéster o b2) una mezcla de al menos un diol de poliéster de bl) con hasta el 32% en peso, de manera preferible de hasta 10% en peso, de al menos un diol de alcano que opcionalmente comprende grupos éter y que tiene de 2 a 6 átomos de carbono. Los dioles de poliéster adecuados de bl) son aquellos que tienen un peso molecular, calculado a partir del contenido de grupo hidroxilo, de 500 a 10 000, de manera preferible de 1000 a 2500 en base a (i) ácido adípico y/o ácido succínico y (ii) dioles de alcano que contienen opcionalmente éter y que contienen de 2 a 6 átomos de carbono, por ejemplo etilen glicol, dietilen glicol, 1,4-butandiol, neopentil glicol y/o 1, 6-hexandiol . Los particularmente preferidos son los dioles de poliéster en cuya preparación el etilen glicol y/o 1,4-butano han sido utilizados exclusivamente como diol. Los dioles de alcano que contienen grupos éter opcionalmente con 2 a 6 átomos de carbono que se utilizaron opcionalmente como agentes de extensión de cadena que contienen grupos hidroxilo son aquéllos del tipo mencionado anteriormente a manera de ejemplo. El componente de diamina de c) comprende ya sea cl) diaminosulfonatos de las fórmulas generales mencionadas anteriormente o c2) mezclas de tales diaminosulfonatos con etilendiamina, las cuales si se utilizan del todo, se emplean en cantidades de hasta 90 equivalentes %, de manera preferible hasta 70 equivalentes %, con referencia a los grupos amino del componente de c) , que puede reaccionar con los grupos isocianato. Los diaminosulfonatos particularmente preferidos son las sales de potasio o sodio del ácido N-(2-aminoetil) -2-aminoetansulfónico. El componente de diamina de c) se utiliza de manera general en una cantidad del 1 al 10% en peso, de manera preferible del 2 al 5% en peso, con referencia al peso del componente de b) . El componente estructural de d) que se utiliza opcionalmente es un alcohol de poliéter hidrofílico, monohídrico de la fórmula general H-X-O-R en la cual R y X tienen los significados mencionados anteriormente.

R denota un radical hidrocarburo alifático con 1 a 4 átomos de carbono, y X denota una cadena de óxido de polialquileno en el intervalo de peso molecular de 500 a 4000, en la cual al menos el 40%, en particular al menos 70% y de manera particularmente preferible 100% de las unidades de óxido de alquileno presentes son unidades de óxido de alquileno, siendo el resto de las unidades de óxido de alquileno unidades de óxido de propileno. La formación en inmersión simultánea del material biológico se efectúa por una coacervación inducida iónicamente de la poliéster poliuretano poliurea, en la cual se encierra el componente polisacárido. El proceso de inmersión puede llevarse a cabo en un paso, o también en un proceso de etapas múltiples. En un proceso de un paso, el material biológico y la poliéster poliuretano poliurea se mezclan juntos y coacervan agregándolos a una solución salina acuosa. Este proceso de inclusión es determinado básicamente por la viscosidad de la mezcla de poliéster poliuretano poliurea/polisacárido, utilizada en el solvente que es empleado . En un proceso de dos etapas, pueden, antes que todo, producirse esferas de hidrogel que comprenden un polisacárido eligiendo un polisacárido adecuado, por ejemplo, alginato. Esas partículas de hidrogel pueden ser provistas con un recubrimiento mecánicamente estable por inmersión en una solución acuosa de la poliéster poliuretano poliurea. Todos los polisacáridos biodegradables o sus derivados pueden ser utilizados individualmente o como una mezcla como componente polisacárido del hidrogel de acuerdo a la invención. Los polisacáridos adecuados son, por ejemplo, almidones nativos y solubles obtenidos de cualquier fuente adecuada, amilasas, amilopectina, ácidos algínicos, alginatos, carragenina, quitina, quitosan, dextran, glicogen, guar, aceite de semilla de algarrobo, laevan, pectina, pululan, harina de semilla de tamarindo, xantana e hilan, así como celulosa obtenida de cualquier fuente adecuada. También son adecuados los derivados de celulosa, por ejemplo, éteres de celulosa, esteres de celulosa y carbamatos de celulosa. Particularmente adecuados son, por ejemplo, los éteres de celulosa tales como la metil celulosa, etil celulosa o bencil celulosa con grados promedio de sustitución de menos o igual a 2.5, hidroxietil celulosa, hidroxipropil celulosa, dihidroxipropil celulusa, hidroxibutil celulosa, metilhidroxietil celulosa, metilhidroxipropil celulosa, metilhidroxibutil celulosa, etilhidroxipropil celulosa, etilhidroxietil celulosa, carboxialquil celulosa, sulfoalquil celulosa, cianoetil celulosa y sus éteres mezclados. Particularmente preferidas son la metil celulosa, hidroxietil celulosa o hidroxipropil celulosa. También son adecuados los derivados de polisacárido, en particular derivados de celulosa con mezclas arbitrarias de sustituyentes éter, éster y carbamato. Las combinaciones de poliuretano y polisacárido de acuerdo a la invención, aquí posteriormente llamadas "mezclas", pueden ser esterilizadas en autoclave y ser completamente biodegradables. Esas mezclas también permiten verificar y ajustar propiedades adicionales, a saber el contenido y equilibrio de agua, estabilidad dimensional, permeabilidad al oxígeno y nutrientes, ajuste de las condiciones fisiológicas, rompimiento mecánico, por ejemplo, por plantas en retoño, así como la incorporación y permeabilidad de nutrientes, agentes protectores, y constituyentes activos. Puede considerarse sorprendente que las mezclas poseen combinaciones de propiedades que sean ventajosas para su uso inmediato, a saber la encapsulación de un material biológico capaz de dividirse. Tales combinaciones de propiedades incluyen: - las mezclas pueden ser procesadas en solventes acuosos. las mezclas pueden ser procesadas a temperaturas fisiológicas (18°-30°C) . las mezclas pueden ser esterilizadas con autoclaves sin perder sus propiedades. las mezclas pueden son completamente biodegradables, y pueden ser convertidas en composta. las mezclas pueden ser utilizadas en procesos sencillos, económicos para la encapsulación. - las mezclas no son tóxicas a la plantas. las mezclas pueden ser procesadas para asegurar el intercambio de agua y gas. las mezclas dan como resultado tasas de germinación satisfactorias . La presente invención también proporciona composiciones de inmersión que contienen agua para el material biológico que contiene una poliéster poliuretano poliurea completamente biodegradable y al menos un polisacárido o derivado de polisacárido iónico o neutro completamente biodegradable. La composición de inmersión preferiblemente comprende al menos 20% en peso de la poliéster poliuretano poliurea anteriormente descrita y al menos 0.1% en peso de un componente de polisacárido, por ejemplo almidón, un derivado de almidón, celulosa, un éter de celulosa, o mezclas arbitrarias de los mismos. Se prefieren los derivados de polisacárido solubles t en agua o al menos fácilmente hinchables, por ejemplo, almidón, éteres de almidón o éteres de celulosa, así como dispersiones acuosas de 5-50% en peso de la poliéster poliuretano poliurea. Se prefieren de manera particular los almidones solubles, alginatos, metil celulosa, hidroxietil celulosa, metilhidroxipropil celulosa, metilhidroxietil celulosa y/o hidroxipropil celulosa. La invención también también proporciona un proceso para la inmersión de material biológico, en el cual el material biológico se mezcla en presencia de una dispersión acuosa de una poliéster poliuretano poliurea con un polisacárido y/o derivado de polisacárido y esta mezcla se coacerva por contacto con una solución salina acuosa. El componente de polisacárido y el material biológico agregado son encerrados por medio de esta coacervación inducida iónicamente de la poliéster poliuretano poliurea, este proceso de inclusión básicamente también es determinado por la viscosidad de la mezcla de poliéster poliuretano poliurea/polisacárido empleada en el solvente que es utilizado. La viscosidad cinemática de la solución a ser reticulada iónicamente, es preferiblemente mayor de l.lxlO6 m2/seg. El proceso de inmersión puede llevarse a cabo en un paso, así como en un proceso de etapas múltiples. En el caso de un proceso de una etapa el material biológico, poliéster poliuretano poliurea y el componente polisacárido se mezclan juntos y la mezcla se coacerva mediante la adición de una solución salina acuosa. Se forman partículas de hidrogel, las cuales, dependiendo del proceso, pueden ser producidas en forma de esferas, tubos, etc. El material de inmersión de hidrogel comprende una mezcla de polisacárido y poliéster poliuretano poliurea. En un proceso de dos etapas, primero se producen todas las esferas de hidrogel que consisten de un polisacárido eligiendo un polisacárido adecuado, por ejemplo alginato, . Esas esferas de hidrogel, se obtienen agregando una mezcla de polisacárido y material biológico por goteo a una solución de sal. Las partículas de hidrogel también contienen cantidades suficientes de iones para la coaservación de la poliéster poliuretano poliurea. Esas partículas de hidrogel pueden, en consecuencia, ser provistas con recubrimientos mecánicamente estables por inmersión en una solución acuosa de la poliéster poliuretano poliurea. En principio, por lo tanto, existen al menos 2 formas posibles de llevar a cabo el proceso de inmersión del material biológico en hidrogeles de polisacárido/poliéster poliuretano poliurea. En general, este proceso puede hacerse variar alternando la mezcla combinada del material biológico, polisacárido, poliéster poliuretano poliurea e iones, la interacción de la poliéster poliuretano poliurea e iones, siempre resulta en la coaservación y de este modo, la inmersión y formación, con el resultado de que esta etapa tiene que llevarse a cabo al menos, aunque pueden utilizarse mezclas arbitrarias de A y B, en donde la mezcla A puede comprender polisacárido, poliéster poliuretano poliurea y/o material biológico, y la mezcla B puede comprender iones, material biológico y polisacárido. En una modalidad de una etapa particularmente preferida del proceso, el componente polisacárido es hinchado o disuelto en una dispersión acuosa de la poliéster poliuretano poliurea, se agrega el material biológico, y la mezcla resultante se coacerva agregando iones, de manera preferible iones polivalentes, especialmente Ca2*, Mg2+ o Al3+, en forma de sus cloruros en un intervalo de concentración de 10 - 1000 mM, y se forman en esferas, fibras, hojas u otros cuerpos moldeados que sean capaces de ser obtenidos por este procedimiento. Los resultados son hidrogeles que comprenden una mezcla de polisacáridos y poliéster políuretano poliurea. En una modalidad de dos etapas preferida adicional del proceso el material biológico se mezcla con iones y polisacárido en un solvente acuoso, y se incluye en un hidrogel de polisacárido, el cual a su vez es envuelto por un recubrimiento de poliuretano poliurea, llevado a cabo mediante la adición de la mezcla a una dispersión de poliuretano poliurea. En el proceso de inmersión pueden agregarse nutrientes de proceso, sustancias protectoras y agentes activos que promueven el crecimiento o metabolismo del material biológico a ser inmerso, y también protegen este último contra influencias peligrosas, a las composiciones de inmersión. En una modalidad preferida la composición de inmersión puede preparase en un medio nutriente semiconcentrado que tiene la composición especificada por Murashige y S oog (publicada en Physiol. Plant. 15, 473, 1962), a la cual se han agregado 5-20 g/1 de sucrosa, pero de manera preferible 10 g/1 de sucrosa. También pueden utilizarse cualesquier mezclas de sales nutrientes que estén por ejemplo comercialmente disponibles, así como azúcar, dependiendo del material de planta inmerso. El medio nutriente puede contener fitohormonas conocidas por un experto en la técnica para influir sobre el desarrollo. Dependiendo del material de planta, los nutrientes incluyen las mezclas de sales nutrientes y mezclas de vitaminas convencionales y comercialmente disponibles así como, opcionalmente, fitohormonas naturales o sintéticas igualmente comercialmente disponibles, por ejemplo de la clase de las auxinas, citocininas, giberelinas, ácido abscísico, así como sustancias que formen etileno. Además, también pueden utilizarse compuestos que tengan efectos similares a las vitaminas o similares a las fitohormonas, por ejemplo cloruro de clorocolina, lipooligosacáridos, derivados de ácido salicílico . En una modalidad particular también pueden agregarse propiedades bactericidas, fungicidas, insecticidas, acaricidas, nematocidas y, en el caso de tolerancia natural apropiada o tolerancia inducida por tecnología genética, también pueden agregarse sustancias herbicidas activas al material de inmersión para proteger al material de planta en división. Las sustancias protectoras incluyen por ejemplo insecticidas, por ejemplo de la clase de los esteres de ácido fosfórico, carbamatos, especialmente Imidacloprod, o por ejemplo fungicidas de la clase de los azoles, especialmente Triadimenol y Tebuconazol. Los siguientes pueden mencionarse como ejemplos de fungicidas: 2-Aminobutano; 2-A ili o-4-metil- 6-ciclo-propil-pirimidina; 2, 6' -Dibromo-2-metil-4' -trifluoro-metoxi-4' -triflurometil-1 , 3-tiazol-5-carboxanilida; 2, 6-Dicloro-N- ( 4-trifluorometilbencil ) -benzamida; (E)-2-Metoximino-N-metil-2- (2-fenoxifenil) -acetamida; Sulfato de 8-hidroxiquinolina; Acrilato de (E)-2-{2-[6-(2-cianofenoxi ) -pirimidin-4-iloxi] -fenil } -3-metoxi metilo; Acetato de (E ) metoximino [alfa- (o-toliloxi ) -o-tolil] -metilo; 2-Fenilfenol (OPP) , Aldimorf, Ampropilfos, Anilacina, Azaconazol, Benalaxil, Benodanil, Benomil, Binapracil, Bifenil, Bitertanol, Blasticidina-S, Bromuconazol, Bupírimato, Butiobato, Polisulfuro de calcio, Captafol, Captan, Carbendazim, Carboxin, Metionato de quinona (Quinometionato) , Cloroneb, Cloropicrin, Clorotalonil, Chlozolinat, Cufraneb, Cimomanil, Ciproconazol, Ciprofuram, Diclorofen, Diclobutrazol, Diclofluanid, Diclomezin, Dicloran, Dietofencarb, Difenoconazol, Dimetirimol, Dimetomorf, Diniconazol, Dinocap, Difenilamine, Dipirition, Ditalimfos, Ditianon, Dodina, Drazoxolon, Edifenfos, Epoxiconazol, Etirimol, Etridiazol, Fenarimol, Fenbuconazol, Fenfuram, Fenitropan, Fenpiclonil, Fenpropidin, Fenpropimorf, Acetato de Fentin, Hidróxido de Fentin, Ferbam, Ferimzona, Fluazinam, Fludioxonil, Fluoromida, Fluquinconazol, Flusilazol, Flusulfamida, Flutolanil, Flutriafol, Folpet, Fosetil-Aluminio, Ftalida, Fuberidazol, Furalaxil, Furmeciclox, Guazatina, Hexaclorobenceno, Hexaconazol, Himexazol, Imazalil, Immibenconazol, Iminoctadin, Iprobenfos (IBP), Iprodion, Isoprotiolan, Kasugamicin, preparaciones de cobre, tales como: hidróxido de cobre, naftelato de cobre, oxicloruro de cobre, sulfato de cobre, óxido de cobre, Oxin-cobre y mezcla de Bordeaux, Mancobre, Mancozeb, Maneb, Mepanipirim, Mepronil, Metalaxil, Metconazol, Metasulfocarb, Metfuroxam, Metiram, Metsulfovax, Miclobutanil, Dimetilditiocarbamato de níquel, nitrotal-isopropilo, Nuarimol, Ofurace, Oxadixilo, Oxamocarb, Oxicarboxin, Pefurazoato, Penconazol, Pencicuron, Fosdifen, Pimaricin, Piperalina, Polioxin, Probenazol, Procloraz, Procimidon, Propamocarb, Propiconazol, Propineb, Pirazofos, Pirifenox, Pirimetanil, Piroquilon, Quintozen (PCNB) , Azufre y preparaciones de azufre, Tebuconazol, Tecloftalam, Tecnazen, Tetraconazol, Tiabendazol, Ticiofen, Tiofanato- etilo, Tiram, Tolclofos-metil , Tolil fluanida, Triadimefon, Triadimenol, Triazoxid, Triclamid, Triciclazol, Tridemorf, Triflumizol, Triforin, Triticonazol, Validamicina A, Vinclozolin, Zineb, Ziram, 8-tert-Butil-2- (N-etil-N-n-propil-amino ) -metil-1, 4-dioxa-espiro- [4, 5] decano, Acido N(R)-(l-(4-clorofenil)-etil)-2, 2-dicloro-l-etil-3t-metil-lr-ciclo-propancarboxílico amida (mezclas de los diastereómeros o isómeros individuales), Ester 1-metiletílico [2-metil-l-[ [ [1- (4-metilfenil) -etil] -amino] -carbonil] -propil] del ácido carbá ico y Acido (2, 3-dicloro-4-hidroxi) -anilída del 1-metil-ciclohexil-l-carboxílico .

Los siguientes pueden mencionarse como ejemplos de bactericidas: Bronopol, Diclorofen, Nitrapirin, Dimetilditio carbamato de níquel, Kasugamicin, Octilinon, Acido Furanecarboxílico, Oxitetraciclina, Probenazol, Estreptomicina, Tecloftalam, sulfato de cobre y otras preparaciones de cobre. Los siguientes pueden mencionarse como ejemplos de insecticidas, acaricidas y nematocidas: Abamectin, Acefato, Acrinatrin, Alanicarb, Aldicarb, Alfametrin, Amitraz, Avermectin, AZ 60541, Azadiractin, Azinfos A, Azinfos M, Azociclotin, Bacill us thuringiensi s, 4-Bromo-2- (4-clorofenil) -1- (etoximetil) -5- (trifluorometil) -lH-pirrol-3-carbonitrilo, Bendiocarb, Benfuracarb, Bensultap, Betaciflutrin, Bifentrin, BPMC, Brofenprox, Bromofos A, Bufencarb, Buprofezin, Butocarboxin, Butilpiridaben, Cadusafos, Carbaril, Carbofuran, Carbofenotion, Carbosulfan, Cartap, Cloetocarb, Cloretoxifos , Clorfenvinfos , Clorfluazuron, Clormefos, N- [( 6-Cloro-3-piridinil) -metil ] -N' -ciano-N-metil-etanimidamida, lorpirifos, Clorpirifos M, cis-Resmetrin, Clocitrin, Clofentezin, Cianofos, Cicloprotrin, Ciflutrin, Cihalotrin, Cihexatin, Cipermetrin, Ciromazin, Deltametrin, Demeton-M, Demeton-S, Demeton-S-metil, Diafentiuron, Diazinon, Diclofention, Diclorvos, Diclifos, Dicrotofos, Dietion, Diflubenzuron, Dimetoato, Dimetilvinfos, Dioxation, Disulfoton, Edifenfos, Emamectin, Esfenvalerato, Etiofencarb, Etion, Etofenprox, Etoprofos, Etrimfos, Fenamifos, Fenazaquin, Fenbutatinóxido, Fenitrotion, Fenobucarb, Fenotiocarb, Fenoxicarb, Fenpropatrin, Fenpirad, Fenpiroximat, Fention, Fenvalerato, Fipronil, Fluazinam, Fluazuron, Flucicloxiron, Flucitrinat, Flufenoxuron, Flufenprox, Fluvalinato, Fonofos, Formotion, Fostiazat, Fubfenprox, Furatiocarb, HCH, Heptenofos, Hexaflumuron, Hexitiazox, Imidacloprid, Iprobenfos, Isazofos, Isofenfos, Isoprocarb, Isoxation, Ivermectin, Lambda-cihalotrin, Lufenuron, Malation, Mecarbam, Mevinfos, Mesulfenfos, Metaldehído, Metacrifos, Metamidofos, Metidation, Metiocarb, Metomil, Metolcarb, Milbemectin, Monocrotofos, Moxidectin, Naled, NC 184, Nitenpiram, Ometoato, Oxamil, Oxidemeton M, Oxideprofos, Paration A, Paration M, Permetrin, Fentoato, Forato, Fosalon, Fosmet, Fosfamidon, Foxi , Pirimicarb, Pirimifos M, Pirimifos A, Profenofos, Promecarb, Propafos, Propoxur, Protiofos, Protoato, Pimetrozin, Piraclofos, Piridafention, Piresmetrin, Piretrum, Piridaben, Pirimidifen, Piriproxifen, Quinalfos, Salition, Sebufos, Silafluofen, Sulfotep, Sulprofos, Tebufenozida, Tebufenpirad, Tebupiri ifos, Teflubenzuron, Teflutrin, Temefos, Terbam, Terbufos, Tetraclorvinfos, Tiafenox, Tiodicarb, Tiofanox, Tiometon, Tionazin, Turingiensin, Tralometrin, Truaraten, Triazofos, Triazuron, Triclorfon, Triflumuron, Trimetacarb, Vamidotion, XMC, Xililcarb, Zetametrin. También pueden utilizarse agentes químicos o biológicos que induzcan resistencia y que protejan las plantas contra microorganismos fitopatógenos tales como hongos, bacterias, virus o viroides como sustancias protectoras. Muchos compuestos con una acción inductora de resistencia proporcionan protección contra insectos o nemátodos. Los ejemplos de clases de sustancias que tienen una acción inductora de resistencia incluyen al benzotiadiazol y sus derivados, ácidos mono- y dicloroisonicotínicos y sus derivados, dicloroisotiazol y sus derivados, ácidos dibromotiofencarboxí lieos y sus derivados, ácido salicílico y sus derivados, así como el Probenazole. Los agentes inductores de resistencia biológica incluyen microorganismos, por ejemplo hongos, bacterias o virus útiles a la planta, y que proporcionan protección a la planta contra organismos patógenos, por ejemplo contra hongos, bacterias, virus o nemátodos peligrosos. Además de tales microorganismos, también pueden utilizarse en las semillas artificiales de acuerdo a la invención organismos que actúen como organismos sinbióticos, por ejemplo hongos micorrhizales, oque promueven el crecimiento de la planta, tales como por ejemplo rhizobias en conexión con la fijación de nitrógeno. También, por la formación de productos metabólicos específicos por microorganismos que son utilizados en combinación con el material de planta, la germinación y crecimiento de las plantas puede mejorar si las plantas pueden ser protegidas contra patógenos y ataques por plagas. Las composiciones de inmersión de hidrogel de acuerdo a la invención pueden ser utilizadas como una forma de almacenamiento o transporte del material biológico . La invención también proporciona el uso de los materiales biológicos inmersos resultantes como semillas artificiales. La biodegradabilidad de las poliéster poliuretano poliureas de acuerdo a la invención así como las mezclas con los derivados de polisacárido de acuerdo a la invención fue demostrada como se describió aquí anteriormente. La biodegradabilidad de las composiciones inmersas formadas de los materiales de acuerdo a la invención también se demostró en composta y suelo. El material fue completamente degradado después de a lo más cuatro semanas, un experimento control con una sustancia inactiva biológicamente no mostró ninguna descomposición, y en consecuencia puede excluirse una desintegración de la composición inmersa por hidrólisis o influencias mecánicas. La degradación también ocurrió en presencia de los aditivos específicos de acuerdo a la invención, por ejemplo constituyentes activos, nutrientes, etc. Los compuestos a ser probados fueron enmascarados en una mezcla de 2 cm de altura de composta completamente putrefacta de una unidad de producción de composta, grado de putrefacción IV, en una caja adecuada. Las cajas llenas se incubaron en un gabinete de incubación en cada caso de 4 semanas en sucesión a 60°, 50° y 37°C. Las pérdidas de agua se determinaron a partir de la pérdida de peso y se reabasteció. Durante la incubación el pH de la composta se midió regularmente. Si el valor medido se desviaba en más de 1 unidad de pH 7, el pH se ajustó a 7.0 agregando fosfato de potasio 100 mM. A intervalos semanales se descontinuó la incubación de un lote, se removieron los materiales, se purificaron, se secaron a peso constante a 80°C, y se fotografiaron. Inmediatamente después de secar se determinó la pérdida de peso del material pesando nuevamente. En el control contaminado, el lote de incubación se secó completamente a 105°C y el agua evaporada se reemplazó entonces con una solución de HgCl2 al 0.1%. Las muestras para el control contaminado se colocaron en la solución de HgCl2 y a continuación se secaron, antes de ser agregadas a la mezcla de composta. El lote de control se incubó exactamente de la misma manera que los lotes a ser probados. Una sustancia se clasificó como biodegradable así, después de cuatro semanas, las sustancias de la muestra no pueden ya ser detectadas en el lote no contaminado mientras que la muestra en el lote contaminado permanece sin cambios. La invención será ahora ilustrada con más detalle con la ayuda de los siguientes ejemplos, aunque sin ser restringida por éstos últimos.

Ejemplos En los ejemplos la poliéster poliuretano poliurea de acuerdo a la DE 19 517 185 se utilizó como la poliéster poliuretano poliurea. Se utilizaron éteres de hidroxialquil celulosa biodegradables, solubles en agua, con un peso molecular promedio (promedio numérico) de ca. 10 000 a 200 000 g/mol y un grado de sustitución con respecto a los grupos éter de ca. 0.5 a 1.5 como la hidroxietil celulosa o hidroxipropil celulosa en los ejemplos.

Ejemplo 1 Se propagaron plantas de papa ( Solanum tuberosum) in vi tro. Para este propósito se colocaron cortes de brotes con 2 a 6 hojas pequeñas en medio BM líquido con un contenido de 20 g/1 de sucrosa y se incubaron en un gabinete para plantas bajo un ritmo de luz/oscuridad de 12 horas cada uno a 22°C durante las horas del día y 19°C durante las horas de la» noche. El medio BM consistió de sales de acuerdo a Murashige/Skoog (véase Murashige T., Skoog, Physiol. Plant. 15, 473-479, 1962) y vitaminas que correspondiente al Medio de Ga borg B5 (Gamborg O.L., Miller R.A., Ojima K., Expansión. Cell. Res. 50, 151, 1968, Gamborg O.L., Murashige T., Thorpe T.A., Vasil I.K., In Vi tro 12 473, 1976). Después de 3 a 4 semanas se tomaron cortes de brotes de esas plantas y se utilizaron para experimentos de encapsulación. Los cortes de brotes se suspendieron bajo condiciones estériles en una dispersión al 3% de hidroxipropil celulosa (HPC; con la adición de CaCl2 0.2 N en solución nutriente semiconcentrada de acuerdo a Murashige-Skoog) y se agregó por " goteo mientras se agitaba a una solución de alginato al 1%. Las esferas fueron a continuación lavadas, mientras se agitaba, con solución de CaCl2 0.2 M. Las esferas fueron entonces agregadas mientras se agitaba lentamente a una dispersión acuosa al 5% de poliéster poliuretano poliurea, formándose un recubrimiento delgado de poliéster poliuretano poliurea sobre la superficie de las esferas. Después de 5 minutos, las esferas las cuales tenían un diámetro de ca. 5 mm, fueron removidas de la solución y lavadas con solución de CaCl2 0.2 M. Las esferas fueron entonces colocadas para su germinación sobre placas de agar que contenían medio nutriente de Murashige-Skoog semiconcentrado. La incubación se llevó a cabo a 20°C bajo 12 horas de luz por día en un gabinete para plantas. Después de ca. 2 a 3 semanas, crecieron pequeñas plantas sobre las esferas de polímero. El porcentaje de germinación fue de 66%.

Ejemplo 2 El material biológico a ser encapsulado y derivado de plantas de papa (cultivadas de acuerdo al Ejemplo 1) se suspendió bajo condiciones estériles en una solución al 3% de alginato de sodio. La suspensión se agregó por goteo a una solución de CaCl2 0.2 M, dando como resultado la formación de esferas de alginato. 30 minutos después, las esferas se succionaron y agregaron con agitación suave a una dispersión acuosa al 5% de poliéster poliuretano poliurea. Se formó un recubrimiento elástico delgado de poliéster poliuretano poliurea sobre la superficie de los hidrogeles de alginato. 5 minutos después las esferas fueron removidas de la solución y sí era necesario, se lavaron una vez más en una solución de CaCl2 0.1 M. Para la germinación, las semillas, las cuales tuvieron un diámetro de ca. 5 mm, fueron colocadas sobre placas de agar con medio nutriente de Murashige-Skoog semiconcentrado. Se llevó a cabo la incubación, como se describió en el Ejemplo 1, en el gabinete para plantas.

Ejemplo 3 75 mi de una dispersión al 40% de una poliéster poliuretano poliurea y 75 mi de una dispersión al 2% de hidroxietil celulosa se pusieron en un autoclave cada una individualmente a una temperatura de 121 °C durante 20 minutos y a continuación se mezclaron bajo condiciones estériles a una relación de 1:1. Los cortes de brotes de papa se aplicaron bajo condiciones estériles a la superficie de esta mezcla de hídroxietil celulosa y poliéster poliuretano poliurea y se succionaron individualmente por medio de una pipeta. Los cortes de brotes, junto con la mezcla circundante de hidroxietil celulosa y poliéster poliuretano políurea se agregaron entonces por goteo a una solución de CaCl2 0.2 M. Después de un tiempo de residencia de 10 minutos las esferas, las cuales tenían un diámetro de ca. 5 mm, fueron removidas y colocadas sobre agar, con medio MS semiconcentrado. La incubación se llevó a cabo a 20°C bajo 12 horas de iluminación por día en un gabinete para plantas. El porcentaje de germinación fue de 90% dentro de 2 a 3 semanas .

Ejemplo 4 75 mi de una dispersión al 40% de una poliéster poliuretano poliurea y 75 mi de una dispersión al 2% de hidroxipropil celulosa se colocaron cada una en un autoclave individualmente a una temperatura de 121 °C durante 20 minutos, y a continuación se mezclaron bajo condiciones estériles a una relación de 1:1. Las plantas de papa fueron propagadas in vitro (véase el Ejemplo 1) . Después de 3 a 4 semanas, se tomaron cortes de brotes de esas plantas y se utilizaron para experimentos de encapsulación. Los cortes de brotes se colocaron bajo condiciones estériles sobre la superficie de la mezcla de hidroxipropil celulosa y poliéster poliuretano poliurea y se succionaron individualmente por medio de una pipeta. Los cortes de brotes, junto con la mezcla circundante de hidroxipropil celulosa y poliéster poliuretano poliurea se agregaron entonces por goteo a una solución de CaCl2 0.2 M. Después de un tiempo de residencia de 10 minutos las esferas, las cuales tenían un diámetro de ca. 5 mm, fueron removidas y colocadas sobre agar con medio MS semiconcentrado . Se llevó a cabo una incubación a 20°C bajo 12 horas de iluminación por día en el gabinete para plantas. El porcentaje de germinación fue de entre 90% y 100% dentro de 2 a 3 semanas.

Ejemplo 5 Se incubó una suspensión celular de zanahoria (Daucus carota) en 50 mi de medio de Murashige-Skoog con hormona (medio MS, véase Murashige T., Skoog, F., Physiol.

Plant. 15, 473-479, 1962) a 25°C y 100 revoluciones por minuto en un agitador mecánico en la oscuridad. 8 días después se tamizaron 150 mi de suspensión celular a través de un tamiz de ancho de malla de 500 µm, 75 µm y 30 µm. La fracción celular de 30 µm a 75 µm se enjuagó con medio libre de hormona, se sedimentó por centrifugación a 100 g, se lavó dos veces con medio MS libre de hormona y, después de centrifugar nuevamente, se extrajo en 20 mi del medio MS libre de hormona. El conteo celular fue como regla de 0.5 x 104 a 105 células/ml.

Esas células se utilizaron para inducir la embriogénesis . Las células tamizadas, lavadas, como se describió anteriormente, fueron incubadas adicionalmente en el agitador mecánico; después de 2 días y 5 días hubo un cambio de medio, las células se centrifugaron y resuspendieron en medio MS libre de hormona. Las células se incubaron a continuación durante 9 días adicionales. Después de un total de 14 días, la suspensión contenía de 10 a 100 embrioides/ml . Los embriones somáticos de zanahoria de las etapas "torpedo" y "cotelidonaria" se aplicaron a la superficie de una mezcla de hidroxipropil celulosa y poliéster poliuretano poliurea. Los embriones se succionaron individualmente utilizando una pipeta y se agregaron por goteo junto con la mezcla polimérica circundante a una solución de CaCl2 0.2 M. Después de un tiempo de residencia de 10 minutos, las esferas, las cuales tenían un diámetro de ca. 5 mm, fueron removidas y colocadas sobre agar con medio MS semiconcentrado. La incubación se llevó a cabo a 20°C bajo una iluminación de 12 horas por día en el gabinete para plantas. 2 semanas después el 20% de las esferas habían germinado .

Ejemplo 6 Examen de la biodegradabilidad de las encapsulaciones . Las encapsulaciones obtenidas de los Ejemplos 1-5 fueron, como se describió aquí anteriormente, probadas en un experimento de producción de composta con respecto a su biodegradabilidad completa. La degradación se verificó a intervalos de unos cuantos días. El experimento control en la composta contaminada mostró que toma lugar la descomposición microbiana.

Ejemplo 7 75 mi de una dispersión al 40% de poliéster poliuretano poliurea y 75 mi de una dispersión al 2% de hidroxipropil celulosa la cual adicionalmente contenía 2% de Imidacloprid fueron cada una puestas en un autoclave individualmente a una temperatura de 121 °C durante 20 minutos y a continuación se mezclaron bajo condiciones estériles en una relación de 1:1. Esta mezcla se agregó por goteo a una solución de CaCl2 0.2 M. Las esferas grandes de ca. 5 mm resultanes contenían ca. 30 mg/g de constituyente activo.

Ejemplo 8 Secado/rehidratación. Las esferas preparadas en los Ejemplos 1 a 5 se secaron durante 7 días bajo condiciones atmosféricas normales y a continuación se pesaron. Después de almacenar 24 horas en agua, se midió un incremento de peso de aproximadamente el 45%, el cual no se incrementó aún más después de un almacenamiento prolongado en agua.

Ejemplo 9 Combinación con componentes activos. 75 mm de una dispersión al 40% de una poliuretano poliurea y 75 mi de una dispersión al 2% de hidroxipropil celulosa se colocaron cada uno en un - autoclave individualmente a una temperatura de 121° 'C durante 20 minutos y a continuación se mezclaron bajo condiciones estériles en una relación de 1:1. Una solución del herbicida Imidacloprid (1 mol/l de DMF) se filtró en forma estéril a través de un filtro de membrana (ancho de poro de 0.2 µm) y a continuación se diluyó 1:10 con agua estéril. La suspensión patrón resultante de Imidacloprid se agrego a la mezcla de poliuretano poliurea e hidroxipropil celulosa para dar una concentración final de, 0.1 mM/1. Una solución de CaCl2 0.2 M estéril contiene Imidacloprid a la misma concentración final. Los cortes de brotes de papa (véase el Ejemplo 1) se colocaron bajo condiciones estériles sobre la superficie de la mezcla de hidroxipropil celulosa y poliuretano poliurea y se succionaron individualmente por medio de una pipeta. Los cortes de brotes junto con la mezcla circundante de hidroxipropil celulosa y poliuretano poliurea se agregaron entonces por goteo a una solución de CaCl20.2 M. Los cortes de brote de papa sin Imidacloprid se encapsularon como una prueba control. Después de un tiempo de residencia de 10 minutos las esferas se removieron y colocaron sobre agar con medio MS semiconcentrado. La incubación se llevo a cabo a 20°C bajo 12 horas de iluminación por día y una humedad atmosférica del 70% en un gabinete para plantas.

El porcentaje de germinación fue del 64% dentro de 4 semanas; el control sin Imidacloprid mostró un porcentaje de germinación del 57%. Se hace constar que con relación a esta fecha, el mejor método conocido por la solicitante para llevar a la práctica la citada invención, es el que resulta claro de la presente descripción de la invención.

Claims (13)

1. REIVINDICACIONES
2. Habiéndose descrito la invención como antecede, se reclama como propiedad lo contenido en las siguientes: 1. Hidrogeles, caracterizados porque contienen al menos una poliéster poliuretano poliurea, polisacáridos y/o derivados de polisacárido, así como material biológico. 2. Los hidrogeles de conformidad con la reivindicación 1, caracterizados porque contienen como material biológico un material de planta capaz de dividirse, especialmente material de planta del grupo que comprende células de planta, tejido calloso, protoplastos, tejidos de planta, órganos de planta, embriones cigóticos, embriones somáticos, análogos protocórmicos.
3. 3. Los hidrogeles 'de conformidad con la reivindicación 2, caracterizados porque contienen como órganos de la planta brotes adventicios, micronódulos, yemas auxiliares, yemas apicales o retoños.
4. 4. Los hidrogeles de conformidad con la reivindicación 1, caracterizados porque contienen como material biológico un material capaz de dividirse, a partir de plantas transgénicas.
5. 5. Los hidrogeles de conformidad con la cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizados porque contienen una poliéster poliuretano poliurea formada a partir de la reacción de un componente de diisocianato a) con un componente de diol b) , un componente de diamina c) , alcoholes de poliéter opcionalmente hidrofílico d) opcionalmente en presencia de agua e) , la cual no se incluye en el cálculo de la relación equivalente de los grupos isocianato a grupos que reaccionan con los grupos isoacianato.
6. 6. Los hidrogeles de conformidad con la reivindicación 5, caracterizados porque contienen una poliéster poliuretano poliurea formada a partir de una reacción en la cual .se utilizó diisocianato de hexametileno o una mezcla de diisocianato de hexametileno con un total de. hasta 60% en peso de l-isocianto-3, 3, 5-trimetil-5-isocianatometil-ciclohexano y/o 4, 4' -diisocianatodiciclo-hexil etano y/o l-m.etil-2, 4 (6) -diisocianato-ciclohexano como componente de diisocianto a) .
7. 7. Los hidrogeles de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizados porque contienen como polisacáridos y/o derivados de polisacárido, almidón soluble, alginatos, metil celulosa, hidroxietil celulosa, metilhidroxipropil celulosa, metilhidroxietil celulosa y/o hidroxipropil celulosa.
8. 8. Los hidrogeles de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizados porque contienen mezclas de sales nutrientes adecuadas para cultivar plantas, bactericida, fungicida, insecticida, acaricida, cematicida y constituyentes que inducen resistencia y/o actividad herbicida.
9. 9. Composiciones de inmersión, adecuadas para materiales biológicos, caracterizadas porque contienen una poliéster poliuretano poliurea y polisacáridos y/o derivados de polisacárido.
10. 10. Las composiciones de inmersión, de conformidad con la reivindicación 9, caracterizadas porque las composiciones de inmersión contienen una dispersión acuosa de la poliéster poliuretano políurea en una cantidad del 5 al 50% en peso y un polisacárido y/o derivado de polisacárido en una cantidad de al menos el 0.1% en peso.
11. 11. Un proceso para producir material biológico inmerso en hidrogeles, caracterizado porque el material biológico se mezcla en presencia de una dispersión acuosa de una poliéster poliuretano poliurea con un polisacárido y/o derivado de polisacárido, y la mezcla se coacerva por contacto con una solución salina.
12. 12. El proceso de conformidad con la reivindicación 10, caracterizado porque se utiliza una solución salina de iones polivalentes.
13. 13. El uso del material biológico que contiene hidrogeles de conformidad con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 8 como semilla artificial.