MD1568Z - Method for collecting ectoparasites from alive Galliformes - Google Patents
Method for collecting ectoparasites from alive Galliformes Download PDFInfo
- Publication number
- MD1568Z MD1568Z MDS20210001A MDS20210001A MD1568Z MD 1568 Z MD1568 Z MD 1568Z MD S20210001 A MDS20210001 A MD S20210001A MD S20210001 A MDS20210001 A MD S20210001A MD 1568 Z MD1568 Z MD 1568Z
- Authority
- MD
- Moldova
- Prior art keywords
- ectoparasites
- bird
- bag
- collecting
- galliformes
- Prior art date
Links
- 244000078703 ectoparasite Species 0.000 title claims abstract description 47
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 13
- 241000272496 Galliformes Species 0.000 title abstract description 7
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 10
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims abstract description 8
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 claims abstract description 7
- 239000000284 extract Substances 0.000 claims abstract description 7
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 claims abstract description 7
- 241000250966 Tanacetum cinerariifolium Species 0.000 claims abstract description 6
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims abstract description 6
- 210000003323 beak Anatomy 0.000 claims abstract description 5
- 210000003128 head Anatomy 0.000 claims abstract description 5
- 238000005507 spraying Methods 0.000 claims abstract description 5
- 239000004033 plastic Substances 0.000 claims abstract description 4
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 claims abstract description 4
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 claims description 15
- 235000013330 chicken meat Nutrition 0.000 claims description 13
- 235000007866 Chamaemelum nobile Nutrition 0.000 claims description 5
- 244000042664 Matricaria chamomilla Species 0.000 claims description 5
- 235000007232 Matricaria chamomilla Nutrition 0.000 claims description 5
- 235000019441 ethanol Nutrition 0.000 claims description 5
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 2
- 241000271566 Aves Species 0.000 description 14
- 241000894007 species Species 0.000 description 9
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 8
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 7
- 241000322637 Goniocotes Species 0.000 description 6
- 206010061217 Infestation Diseases 0.000 description 6
- 241000286209 Phasianidae Species 0.000 description 6
- 241000322611 Cuclotogaster Species 0.000 description 4
- 241001481695 Dermanyssus gallinae Species 0.000 description 4
- 241000176299 Dermanyssus hirundinis Species 0.000 description 4
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N Diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 241000322653 Goniodes Species 0.000 description 4
- 241000660280 Lipeurus caponis Species 0.000 description 4
- 241000292449 Menacanthus stramineus Species 0.000 description 4
- 241000035435 Menopon gallinae Species 0.000 description 4
- 238000011160 research Methods 0.000 description 4
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 241000258242 Siphonaptera Species 0.000 description 3
- 238000011835 investigation Methods 0.000 description 3
- 244000045947 parasite Species 0.000 description 3
- 241000322443 Amyrsidea Species 0.000 description 2
- 241000498856 Ceratophyllidae Species 0.000 description 2
- 241000024550 Ceratophyllus hirundinis Species 0.000 description 2
- HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N Chloroform Chemical compound ClC(Cl)Cl HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000364461 Cuclotogaster cinereus Species 0.000 description 2
- 241001198708 Goniocotes chrysocephalus Species 0.000 description 2
- 241001198711 Goniodes colchici Species 0.000 description 2
- 241000322738 Menacanthus Species 0.000 description 2
- 241000292447 Menacanthus cornutus Species 0.000 description 2
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 description 2
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 2
- -1 polyethylene Polymers 0.000 description 2
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 2
- 229920001059 synthetic polymer Polymers 0.000 description 2
- 241000238876 Acari Species 0.000 description 1
- 241001459819 Carassius gibelio Species 0.000 description 1
- 241001481702 Dermanyssidae Species 0.000 description 1
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 1
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 description 1
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 1
- 241000501409 Menoponidae Species 0.000 description 1
- 241000238886 Parasitiformes Species 0.000 description 1
- 241000932963 Philopteridae Species 0.000 description 1
- 239000004952 Polyamide Substances 0.000 description 1
- 210000000078 claw Anatomy 0.000 description 1
- 229960004132 diethyl ether Drugs 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 210000003746 feather Anatomy 0.000 description 1
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 238000002372 labelling Methods 0.000 description 1
- 244000144972 livestock Species 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 230000003108 parasitologic effect Effects 0.000 description 1
- 229920002647 polyamide Polymers 0.000 description 1
- 230000000069 prophylactic effect Effects 0.000 description 1
- 238000011321 prophylaxis Methods 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 238000005057 refrigeration Methods 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 239000007921 spray Substances 0.000 description 1
- 238000006467 substitution reaction Methods 0.000 description 1
- 230000009897 systematic effect Effects 0.000 description 1
- 239000004753 textile Substances 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 238000004809 thin layer chromatography Methods 0.000 description 1
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Sampling And Sample Adjustment (AREA)
Abstract
Description
Invenţia se referă la medicina veterinară, în special la parazitologie şi poate fi utilizată pentru colectarea ectoparaziţilor de la galinaceele vii din diverse biotopuri naturale şi antropizate. The invention relates to veterinary medicine, in particular to parasitology and can be used for collecting ectoparasites from live chickens from various natural and anthropized biotopes.
Păsările sunt afectate de o serie de specii de ectoparaziţi, care parazitează în pene, puf, piele şi solzi. Spre exemplu, la găini mai frecvent au fost înregistrate următoarele specii de ectoparaziţi permanenţi: Cuclotogaster heterographus, Eomenacanthus stramineus, Goniocotes gallinae, Goniocotes maculatus, Goniodes dissimilis, Lipeurus caponis, Menopon gallinae, Menacanthus cornutus, Menacanthus pallidulus şi ectoparaziţi temporari - purici Ceratophylus gallinae, C. hirundinis, acarieni gamazizi - Dermanyssus gallinae, D. hirundinis. Birds are affected by a number of species of ectoparasites, which parasitize in feathers, down, skin and scales. For example, the following species of permanent ectoparasites have been recorded more frequently in chickens: Cuclotogaster heterographus, Eomenacanthus stramineus, Goniocotes gallinae, Goniocotes maculatus, Goniodes dissimilis, Lipeurus caponis, Menopon gallinae, Menacanthus cornutus, Menacanthus pallidulus and temporary ectoparasites - fleas Ceratophylus gallinae, C. hirundinis, gamazid mites - Dermanyssus gallinae, D. hirundinis.
Aceşti paraziţi duc la scăderea considerabilă a sporului zilnic în masă corporală, scăderea productivităţii, provoacă prejudicii considerabile sectorului zootehnic şi economiei naţionale. These parasites lead to a considerable decrease in daily body mass gain, a decrease in productivity, and cause considerable damage to the livestock sector and the national economy.
Este cunoscut procedeul de colectare manuală a ectoparaziţilor de la mamiferele mici şi păsările moarte sau vânate, care constă în colectarea ectoparaziţilor cu ajutorul pensetei şi a bisturiului [1]. Acest procedeu necesită un volum mare de lucru, este anevoios şi nu permite colectarea totală a ectoparaziţilor, deoarece după moartea păsării-gazdă majoritatea speciilor de ectoparaziţi o părăsesc în căutarea alteia vii. Pe lângă aceasta procedeul nu poate fi aplicat în cazul examinării speciilor rare şi pe cale de dispariţie, vânatul cărora este interzis. The manual collection of ectoparasites from small mammals and dead or hunted birds is known, which consists of collecting ectoparasites using tweezers and a scalpel [1]. This procedure requires a large amount of work, is laborious and does not allow for the total collection of ectoparasites, because after the death of the host bird, most ectoparasite species leave it in search of another living one. In addition, the procedure cannot be applied in the case of examining rare and endangered species, the hunting of which is prohibited.
Este cunoscut procedeul de colectare a ectoparaziţilor de la păsări, care constă în introducerea păsării vii într-o pungă cu dimensiunile de 20-25x30-35 cm sau 30-35x40-55 cm şi fixarea sub fiecare aripă a 3-4 tampoane îmbibate cu o soluţie mortifiantă pentru ectoparaziţi, strângerea gurii pungii în jurul capului păsării astfel, ca ochii şi ciocul să fie în afara pungii. Apoi, pasărea se plasează pe o suprafaţă plană şi se menţine timp de 5-10 min până la imobilizarea ectoparaziţilor, după care se scoate pasărea din pungă, se scutură ectoparaziţii şi se introduc în eprubete cu alcool etilic rectificat de 70% [2]. The procedure for collecting ectoparasites from birds is known, which consists of placing the live bird in a bag measuring 20-25x30-35 cm or 30-35x40-55 cm and fixing 3-4 pads soaked in a mortifying solution for ectoparasites under each wing, tightening the mouth of the bag around the bird's head so that the eyes and beak are outside the bag. Then, the bird is placed on a flat surface and held for 5-10 min until the ectoparasites are immobilized, after which the bird is removed from the bag, the ectoparasites are shaken off and placed in test tubes with 70% rectified ethyl alcohol [2].
Procedeul respectiv are şi unele neajunsuri. Unul din ele este că în calitate de soluţie mortifiantă pentru ectoparaziţi este folosită soluţia de eter (etoxietan, CH3-CH2-O-CH2-CH3), care este volatil şi evaporând-se rapid, acţionează toxic, atât pentru personalul care efectuează colectarea ectoparaziţilor, cât şi pentru pasărea supusă investigării. The respective procedure also has some drawbacks. One of them is that the solution used as a mortifying solution for ectoparasites is ether (ethoxyethane, CH3-CH2-O-CH2-CH3), which is volatile and evaporates quickly, acting toxically, both for the personnel collecting the ectoparasites and for the bird being investigated.
Un alt neajuns al acestui procedeu constă în faptul că păsările vii de diverse dimensiuni se introduc în pungi de polietilenă, care sunt uşor şi rapid deteriorate prin intermediul ghearelor păsării supuse diagnosticului. Another drawback of this procedure is that live birds of various sizes are placed in polyethylene bags, which are easily and quickly damaged by the claws of the bird undergoing diagnosis.
Un alt neajuns este şi faptul că paraziţii, care sunt colectaţi în pungă de pe corpul păsării, sunt apoi scuturaţi pe o coală de hârtie albă sau o peliculă cu dimensiunile de 1,5x1,5 m, şi în condiţii de teren pot fi uşor luaţi de vânt. Another drawback is that the parasites, which are collected in a bag from the bird's body, are then shaken onto a sheet of white paper or a film measuring 1.5x1.5 m, and in field conditions can easily be blown away by the wind.
Este cunoscut un procedeu de profilaxie şi tratament al ectoparazitozei la găini, ce constă în combaterea ectoparaziţilor la găini cu soluţie apoasă de 3% de extract din părţile aeriene uscate de romaniţă dalmaţiană Pyrethrum cinerariifolium Trev. (preparatul Ectogalimol), administrată găinilor prin aspersare în doză de 50 ml la fiecare pasăre în două reprize cu interval de 14 zile, iar măsurile profilactice se efectuează prin aspersarea păsărilor într-o singură repriză (MD 408 Y 2011.08.31). A procedure for the prophylaxis and treatment of ectoparasitosis in chickens is known, which consists of combating ectoparasites in chickens with a 3% aqueous solution of extract from the dried aerial parts of Dalmatian chamomile Pyrethrum cinerariifolium Trev. (the preparation Ectogalimol), administered to chickens by spraying in a dose of 50 ml to each bird in two doses with an interval of 14 days, and prophylactic measures are carried out by spraying the birds in a single dose (MD 408 Y 2011.08.31).
Problema pe care o rezolvă invenţia constă în colectarea ectoparaziţilor de la galinaceele vii cu menţinerea integrităţii a însuşi ectoparaziţilor, care să permită păstrarea componenţei numerice şi specifice a acestora, determinarea mai exactă a gradului şi specificului de infestare a păsărilor cu ectoparaziţi din diferite grupe sistematice, fără a provoca daune sănătăţii atât persoanei care aplică procedeul, cât şi păsărilor diagnosticate. The problem solved by the invention consists in collecting ectoparasites from live chickens while maintaining the integrity of the ectoparasites themselves, which allows preserving their numerical and specific composition, more accurately determining the degree and specificity of infestation of birds with ectoparasites from different systematic groups, without causing damage to the health of both the person applying the procedure and the diagnosed birds.
Procedeul propus de colectare a ectoparaziţilor de la galinaceele vii include pulverizarea păsării cu soluţie apoasă de 5% de extract din părţile aeriene de romaniţă dalmaţiană Pyrethrum cinerariifolium Trev., în doză de 50 ml la pasăre, şi introducerea ei într-o pungă de nailon cu dimensiunile de 20-25x30-35 cm sau 30-35x40-55 cm, strângerea gurii pungii în jurul capului păsării, ochii şi ciocul lăsându-le în afara pungii, aşezarea orizontală a păsării pe o suprafaţă plană şi menţinerea ei timp de 5-10 minute până la imobilizarea ectoparaziţilor, scoaterea păsării din pungă, scuturarea ectoparaziţilor într-un vas din masă plastică, de culoare albă în interior, cu diametrul de 35-40 cm, înălţimea de 40-50 cm, şi introducerea ectoparaziţilor colectaţi în eprubete cu alcool etilic rectificat de 70%. The proposed procedure for collecting ectoparasites from live chickens includes spraying the bird with a 5% aqueous solution of extract from the aerial parts of the Dalmatian chamomile Pyrethrum cinerariifolium Trev., in a dose of 50 ml per bird, and placing it in a nylon bag measuring 20-25x30-35 cm or 30-35x40-55 cm, tightening the mouth of the bag around the bird's head, leaving the eyes and beak outside the bag, placing the bird horizontally on a flat surface and keeping it there for 5-10 minutes until the ectoparasites are immobilized, removing the bird from the bag, shaking the ectoparasites into a plastic container, white inside, with a diameter of 35-40 cm, height of 40-50 cm, and placing the collected ectoparasites in test tubes with ethyl alcohol. rectified by 70%.
În rezultat, procedeul propus nu este periculos nici pentru persoana care efectuează investigarea şi nici pentru pasărea supusă investigării, deoarece în calitate de soluţie mortifiantă pentru ectoparaziţi este utilizată soluţia de Ectogalimol de 5%, care este un extract natural biologic activ obţinut din materia primă vegetală, care posedă o înaltă eficacitate mortifiantă asupra diverselor specii de ectoparaziţi la găini (malofagi - Cuclotogaster heterographus, Eomenacanthus stramineus, Goniocotes gallinae, Goniocotes maculatus, Goniodes dissimilis, Lipeurus caponis, Menopon gallinae, Menacanthus cornutus, Menacanthus pallidulus; purici - Ceratophylus gallinae, C. hirundinis şi acarieni-gamazizi - Dermanyssus gallinae, D. hirundinis). As a result, the proposed procedure is not dangerous either for the person carrying out the investigation or for the bird under investigation, because as a mortifying solution for ectoparasites, the 5% Ectogalimol solution is used, which is a biologically active natural extract obtained from plant raw material, which has a high mortifying efficacy on various species of ectoparasites in chickens (malophagous - Cuclotogaster heterographus, Eomenacanthus stramineus, Goniocotes gallinae, Goniocotes maculatus, Goniodes dissimilis, Lipeurus caponis, Menopon gallinae, Menacanthus cornutus, Menacanthus pallidulus; fleas - Ceratophylus gallinae, C. hirundinis and mites-gamazizis - Dermanyssus gallinae, D. hirundinis).
Un alt avantaj constă în substituirea pungilor din polietilenă cu pungi de nailon, care contribuie la menţinerea izolată şi în siguranţă atât a păsării, cât şi a ectoparaziţilor pe parcursul diagnosticului, precum şi faptul că vasul, în care se plasează şi se scutură punga, permite ca ectoparaziţii care cad sa fie vizibili şi să nu fie suflaţi de vânt, asigurând astfel obţinerea rezultatului scontat de determinare mai exactă a gradului şi specificului de infestare a păsării. Another advantage is the substitution of polyethylene bags with nylon bags, which contribute to keeping both the bird and the ectoparasites isolated and safe during the diagnosis, as well as the fact that the vessel in which the bag is placed and shaken allows the ectoparasites that fall to be visible and not blown away by the wind, thus ensuring the expected result of a more accurate determination of the degree and specificity of the bird's infestation.
Preparatul Ectogalimol este obţinut de colaboratorii laboratorului Parazitologie şi Helmintologie al Institutului de Zoologie. Experienţele referitor la determinarea eficacităţii terapeutice împotriva ectoparaziţilor la galinacee au fost realizate pe parcursul anilor 2016 - 2019 în laboratorul de Parazitologie şi Helmintologie al Institutului de Zoologie. Preparatul se obţine prin următorul procedeu: 500 g de părţi aeriene uscate de romaniţă dalmaţiană Pyrethrum cinerariifolium Trev. au fost supuse extragerii cu soluţie alcoolico-apoasă de 60% în raport de 1:4 pe baia de apă cu refrigerent invers timp de 8 ore. Operaţia s-a repetat de 3 ori, extrasele după filtrare s-au unit şi s-au distilat până la uscare la evaporatorul cu vid la 50°C. S-a obţinut 38,7 g de rest uscat. Controlul s-a realizat cu ajutorul cromatografiei în strat subţire pe plăci de Silufol în sistemul de solvenţi cloroform:metanol 75:25 (v/v). Au fost utilizate pentru cercetare soluţiile apoase în concentraţie de 3%, 4%, 5% şi 6%. The Ectogalimol preparation is obtained by the collaborators of the Parasitology and Helminthology laboratory of the Institute of Zoology. The experiments on determining the therapeutic efficacy against ectoparasites in chickens were carried out during the years 2016 - 2019 in the Parasitology and Helminthology laboratory of the Institute of Zoology. The preparation is obtained by the following procedure: 500 g of dried aerial parts of Dalmatian chamomile Pyrethrum cinerariifolium Trev. were subjected to extraction with a 60% alcoholic-aqueous solution in a ratio of 1:4 on a water bath with reverse refrigeration for 8 hours. The operation was repeated 3 times, the extracts after filtration were combined and distilled to dryness in a vacuum evaporator at 50°C. 38.7 g of dry residue was obtained. The control was performed using thin layer chromatography on Silufol plates in the solvent system chloroform:methanol 75:25 (v/v). Aqueous solutions in concentrations of 3%, 4%, 5% and 6% were used for the research.
Exemple de realizare a invenţiei Examples of embodiments of the invention
Exemplul 1 Example 1
Iniţial galinaceele domestice (găini, curci) şi sălbatice (fazani, prepeliţe) au fost investigate la prezenţa ectoparaziţilor (Tabelul 1). Initially, domestic (chickens, turkeys) and wild (pheasants, quails) gallinaceous birds were investigated for the presence of ectoparasites (Table 1).
Studiul diversităţii ectoparazitofaunei la galinaceele domestice şi sălbatice din diverse biotopuri naturale şi antropizate a Republicii Moldova au permis de a stabili la acestea o gamă bogată de ectoparaziţi din următoarele familii: Familia Philopteridae - (Cuclotogaster cinereus, Cuclotogaster heterographus, Goniocotes chrysocephalus, Goniocotes microthorax, Goniodes colchici, Goniodes dissimilsis, Lipeurus caponis); Familia Menoponidae (Amyrsidea perdicis, Menacanthus stramineus, Menopon gallinae); Familia Ceratophyllidae (Ceratophylus gallinae, Ceratophylus hirundinis) şi Familia Dermanyssidae (Dermanyssus gallinae, Dermanyssus hirundinis). The study of the diversity of ectoparasitofauna in domestic and wild gallinaceous birds from various natural and anthropized biotopes of the Republic of Moldova allowed to establish a rich range of ectoparasites from the following families: Family Philopteridae - (Cuclotogaster cinereus, Cuclotogaster heterographus, Goniocotes chrysocephalus, Goniocotes microthorax, Goniodes colchici, Goniodes dissimilsis, Lipeurus caponis); Family Menoponidae (Amyrsidea perdicis, Menacanthus stramineus, Menopon gallinae); Family Ceratophyllidae (Ceratophylus gallinae, Ceratophylus hirundinis) and Family Dermanyssidae (Dermanyssus gallinae, Dermanyssus hirundinis).
După determinarea ectoparazitofaunei are loc formarea loturilor experimentale. Din fiecare specie de pasăre investigată şi depistată cu înalt nivel de infestare cu ectoparaziţi s-au format loturi a câte 10 păsări în fiecare lot. After determining the ectoparasitic fauna, experimental batches are formed. From each bird species investigated and detected with a high level of ectoparasite infestation, batches of 10 birds were formed in each batch.
Tabelul 1 Table 1
Diversitatea ectoparazitofaunei la galinaceele domestice şi sălbatice din diverse biotopuri naturale şi antropizate ale Republicii Moldova Diversity of ectoparasitofauna in domestic and wild gallinaceous birds from various natural and anthropized biotopes of the Republic of Moldova
Specii de paraziţi Specia investigată Găini Curci Fazani Prepeliţe CLASA INSECTA Familia Philopteridae Cuclotogaster cinereus (Nitzsch,1866) +++ +++ +++ ++ Cuclotogaster heterographus (Nitzsch, 1866) + ++ +++ ++ Goniocotes chrysocephalus (Giebel,1874) ++ + ++ ++ Goniocotes microthorax (Stephens,1829) +++ ++ ++ + Goniodes colchici (Denny, H. 1842) ++ + +++ ++ Goniodes dissimilsis (Denny, 1842) +++ ++ +++ ++ Lipeurus caponis (Linné. 1758) + +++ ++ +++ Familia Menoponidae Amyrsidea perdicis (Denny,1842) ++ +++ +++ ++ Menacanthus stramineus (Nitzsch,1818) +++ ++ ++ +++ Menopon gallinae (Linnaeus, 1758) +++ ++ ++ + Purici Familia Ceratophyllidae Ceratophylus gallinae (Schrank, 1803) +++ +++ +++ ++ Ceratophylus hirundinis (Curtis, 1826) +++ ++ +++ +++ Acarieni parazitiformi Familia Dermanyssidae Dermanyssus gallinae (Degeer, 1778) +++ ++ +++ ++ Dermanyssus hirundinis (Dugès, 1834) +++ +++ +++ +++ Parasite species Investigated species Chickens Rabbits Pheasants Quail CLASS INSECTS Family Philopteridae Cuclotogaster cinereus (Nitzsch,1866) +++ +++ +++ ++ Cuclotogaster heterographus (Nitzsch, 1866) + ++ +++ ++ Goniocotes chrysocephalus (Giebel,1874) ++ + ++ ++ Goniocotes microthorax (Stephens,1829) +++ ++ ++ + Goniodes colchici (Denny, H. 1842) ++ + +++ ++ Goniodes dissimilsis (Denny, 1842) +++ ++ +++ ++ Lipeurus caponis (Linné. 1758) + +++ ++ +++ Family Menoponidae Amyrsidea perdicis (Denny, 1842) ++ +++ +++ ++ Menacanthus stramineus (Nitzsch, 1818) +++ ++ ++ +++ Menopon gallinae (Linnaeus, 1758) +++ ++ ++ + Fleas Family Ceratophyllidae Ceratophylus gallinae (Schrank, 1803) +++ +++ +++ ++ Ceratophylus hirundinis (Curtis, 1826) +++ ++ +++ +++ Parasitiform mites Family Dermanyssidae Dermanyssus gallinae (Degeer, 1778) +++ ++ +++ ++ Dermanyssus hirundinis (Dugès, 1834) +++ +++ +++ +++
Legendă: Legend:
+ - nivel mic de infestare (1-5 exemplare); ++ - nivel mediu de infestare (5-15 exemplare); +++ - nivel înalt de infestare (15 > exemplare). + - low level of infestation (1-5 specimens); ++ - medium level of infestation (5-15 specimens); +++ - high level of infestation (15 > specimens).
Exemplul 2 Example 2
După formarea loturilor experimentale se pregăteşte soluţia de Ectogalimol, de diverse concentraţii. Pentru cercetare au fost utilizate soluţii apoase în concentraţii de 1- 5% (Tabelul 2). After the experimental groups were formed, Ectogalimol solutions of various concentrations were prepared. For the research, aqueous solutions in concentrations of 1-5% were used (Table 2).
Apoi, efectuăm pulverizarea păsărilor cu soluţie apoasă de extract din părţile aeriene uscate de romaniţă dalmaţiană Pyrethrum cinerariifolium Trev. în concentraţiile indicate mai sus (preparatul Ectogalimol), în doză de 50 ml la fiecare pasăre. După care, pasărea pulverizată se plasează într-o pungă de nailon, corespunzătoare mărimii ei, a cărei gură se strânge în jurul capului, lăsând libere doar ochii şi ciocul păsării. Se plasează pasărea orizontal pe o suprafaţă plană, de exemplu pe o masă şi se menţine în această poziţie timp de 5-10 min la o temperatură a mediului de 20-30°C. Acest timp este suficient pentru imobilizarea ectoparaziţilor. Apoi se scoate pasărea din pungă şi se scutură aparte ectoparaziţii de pe fiecare pasăre într-un vas pregătit din timp - un vas din masă plastică, de culoare albă în interior, cu diametrul de 35-40 cm şi înălţimea de 40-50 cm. Then, we spray the birds with an aqueous solution of extract from the dried aerial parts of Dalmatian chamomile Pyrethrum cinerariifolium Trev. in the concentrations indicated above (Ectogalimol preparation), in a dose of 50 ml for each bird. After that, the sprayed bird is placed in a nylon bag, corresponding to its size, the mouth of which is tightened around the head, leaving only the eyes and beak of the bird free. The bird is placed horizontally on a flat surface, for example on a table, and maintained in this position for 5-10 min at an ambient temperature of 20-30°C. This time is sufficient to immobilize the ectoparasites. Then the bird is removed from the bag and the ectoparasites are shaken off separately from each bird into a previously prepared container - a plastic container, white inside, with a diameter of 35-40 cm and a height of 40-50 cm.
Tabelul 2 Table 2
Eficacitatea preparatului Ectogalimol în variate perioade de timp, concentraţii The effectiveness of the Ectogalimol preparation in various time periods, concentrations
şi la diverse specii de păsări and various species of birds
Nr. lotului Specia investigată Concentraţia preparatu-lui, % Eficacitatea preparatului după administrare (%) Găini Curci Fazani Prepeliţe 3 min 5 min 7 min 10 min I 10 10 10 10 martor - - - - II 10 10 10 10 1 0 0 0 5 III 10 10 10 10 2 10 20 30 40 IV 10 10 10 10 3 60 70 80 85 V 10 10 10 10 4 90 100 100 100 VI 10 10 10 10 5 100 100 100 100Batch No. Species investigated Concentration of the preparation, % Efficacy of the preparation after administration (%) Chickens Turkeys Pheasants Quails 3 min 5 min 7 min 10 min I 10 10 10 10 control - - - - II 10 10 10 10 1 0 0 0 5 III 10 10 10 10 2 10 20 30 40 IV 10 10 10 10 10 3 60 70 80 85 V 10 10 10 10 4 90 100 100 100 VI 10 10 10 10 5 100 100 100 100
Punga de nailon este compusă dintr-un grup de fibre textile din polimeri sintetici, cunoscuţi sub numele de poliamide - primul polimer sintetic care a avut succes comercial, datorită faptului că este ieftin, uşor, fin şi tare. Dimensiunile pungii de nailon depind de mărimea păsărilor. Pentru păsările mici: găini, prepeliţe - 20-25x30-35 cm; pentru cele mai mari: cocoşi, curci - 30-35x40-55 cm. The nylon bag is composed of a group of textile fibers made of synthetic polymers, known as polyamides - the first synthetic polymer to be commercially successful, due to the fact that it is cheap, light, fine and strong. The dimensions of the nylon bag depend on the size of the birds. For small birds: chickens, quails - 20-25x30-35 cm; for larger ones: roosters, turkeys - 30-35x40-55 cm.
Studiul eficacităţii preparatului Ectogalimol în diverse perioade de timp, concentraţii şi specii de păsări a permis să selectăm şi să recomandăm pentru colectarea ectoparaziţilor de la galinaceele vii soluţia de Ectogalimol în concentrţie de 5%, care permite imobilizarea ectoparaziţilor în 100% în decurs de 5-10 minute. The study of the effectiveness of the Ectogalimol preparation in various time periods, concentrations and bird species allowed us to select and recommend for the collection of ectoparasites from live chickens the Ectogalimol solution in a concentration of 5%, which allows for the immobilization of ectoparasites in 100% within 5-10 minutes.
Ectoparaziţii colectaţi de la fiecare pasăre se pun în eprubete aparte, care conţin alcool etilic rectificat de 70%, etichetând fiecare eprubetă. Pe etichetă se indică specia păsării, data investigaţiei, denumirea gospodăriei sau localităţii, numele specialistului care a efectuat colectarea ectoparaziţilor. Pentru efectuarea cercetărilor în condiţii de câmp, se prind în prealabil galinaceele sălbatice cu plase subţiri. Se selectează dimensiunile pungilor în conformitate cu mărimea păsărilor prinse şi în mod similar se colectează ectoparaziţii. Ectoparasites collected from each bird are placed in separate test tubes containing 70% rectified ethyl alcohol, labeling each test tube. The label indicates the bird species, the date of the investigation, the name of the household or locality, and the name of the specialist who collected the ectoparasites. For field research, wild gallinaceous birds are first caught with thin nets. The bag sizes are selected according to the size of the birds caught, and the ectoparasites are collected in a similar manner.
1. Дубинина М.Н. Паразитологическое исследование птиц. Наука, Ленинград, 1971, p. 23, 41 1. Dubinina M.N. Parasitological research of birds. Nauka, Leningrad, 1971, p. 23, 41
2. MD 3441 F1 2007.12.31 2. MD 3441 F1 2007.12.31
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| MDS20210001A MD1568Z (en) | 2021-01-05 | 2021-01-05 | Method for collecting ectoparasites from alive Galliformes |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| MDS20210001A MD1568Z (en) | 2021-01-05 | 2021-01-05 | Method for collecting ectoparasites from alive Galliformes |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| MD1568Y MD1568Y (en) | 2021-10-31 |
| MD1568Z true MD1568Z (en) | 2022-05-31 |
Family
ID=78401899
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| MDS20210001A MD1568Z (en) | 2021-01-05 | 2021-01-05 | Method for collecting ectoparasites from alive Galliformes |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| MD (1) | MD1568Z (en) |
-
2021
- 2021-01-05 MD MDS20210001A patent/MD1568Z/en active IP Right Grant
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| MD1568Y (en) | 2021-10-31 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Lawyer et al. | Laboratory colonization and mass rearing of phlebotomine sand flies (Diptera, Psychodidae) | |
| Alten et al. | Sampling strategies for phlebotomine sand flies (Diptera: Psychodidae) in Europe | |
| Dhooria | Fundamentals of applied acarology | |
| Ragsdale et al. | Quantitative assessment of the predators of Nezara viridula eggs and nymphs within a soybean agroecosystem using an ELISA | |
| Langhammer et al. | Susceptibility to the amphibian chytrid fungus varies with ontogeny in the direct-developing frog, Eleutherodactylus coqui | |
| Murray | Livestock productivity and trypanotolerance: network training manual | |
| Cornwell | Movements of the vectors of virus diseases of cacao in Ghana. I.—Canopy movement in and between trees | |
| Lakhdari et al. | Acaricidal Activity of Aqueous Extracts against the mite of date palm Oligonychus afrasiaticus Meg (Acari: Tetranychidae) | |
| Bamaiyi et al. | The prevalence of Cryptosporidium oocysts in birds in Zaria, Nigeria | |
| Townson | The anopheles vector | |
| Caicedo et al. | Cryptococcus neoformans in bird excreta in the city zoo of Cali, Colombia | |
| Kansal et al. | Incidence of ectoparasites in broiler chicken in Meerut | |
| MD1568Z (en) | Method for collecting ectoparasites from alive Galliformes | |
| Nicholas | The bionomics of Culicoides austeni, vector of Acanthocheilonema perstans in the rain-forest of the British Cameroons, together with notes on C. grahamii and other species which may be vectors in the same area | |
| Banda | Ectoparasites of indigenous Malawi chickens | |
| CN104059888B (en) | Noctuid granulosis virus, and preparation method and application of preparation containing virus | |
| CN110250113A (en) | A method of using Eupatorium adenophorum to cultivate root-knot nematode northern | |
| Cornwell | Some aspects of mealybug behaviour in relation to the efficiency of measures for the control of virus diseases of cacao in the Gold Coast | |
| Raveling | Survival of Canada Geese unaffected by withdrawing blood samples | |
| Kaydan et al. | Descriptions of all female stages of the maple mealybug, Phenacoccus aceris (Hemiptera: Coccoidea: Pseudococcidae), with notes on its biology | |
| GOL'BERG | Influence of temperature and relative humidity on survival and fecundity of pauridia peregrin a, a parasite of mealybugs and its interactions with planococcus citri | |
| Kainoh et al. | Host moth scales; a cue for host location for Ascogaster reticulatus Watanabe: Hymenoptera: Braconidae | |
| Rao | The insecticidal property of petals of several common plants of India | |
| CN112913496B (en) | Rapid detection method for Sang Bai resistance of kiwi fruit germplasm material | |
| Kramer | Experimental studies on the phycomycosis of muscoid flies caused by Entomophthora muscae (Cohn) |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| FG9Y | Short term patent issued |