KR20240007765A - 표적 핵산을 농축하는 방법, 오프-타겟을 식별하고 유전자 편집 효율성을 평가하는 방법 - Google Patents

표적 핵산을 농축하는 방법, 오프-타겟을 식별하고 유전자 편집 효율성을 평가하는 방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 샘플에서 핵산을 농축하는 기술에 관한 것이다. 일부 실시예에서, 본 발명은 복수의 단일 가닥 핵산 단편을 포함하는 샘플로부터 적어도 하나의 표적 핵산을 농축하고, 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하며, 유전자 편집 효율을 평가하는 방법을 제공한다. 본 명세서에는 다른 예시적인 실시예도 설명되어 있다.

Description

표적 핵산을 농축하는 방법, 오프-타겟을 식별하고 유전자 편집 효율성을 평가하는 방법
관련 출원의 교차 참조
본 출원은 2021 년 05 월 16일자로 미국에 가출원된 제63/201,861호 및 2021년 11월 10일에 출원된 미국 가출원된 제63/277,782호의 우선권을 주장하며 그 전체 내용은 여기에 참조로 포함된다.
ZFN, 탈렌(TALEN), CRISPR(CRISPR)와 같은 게놈 표적, 프로그래밍이 가능한 뉴클레아제는 유전공학 및 정밀 유전자 치료 커뮤니티에 큰 혁신을 불러일으키고 있다. 그러나 게놈 내에서 원치 않는 편집(즉, 오프-타겟 효과)은 연구에서 예측할 수 없는 혼란스러운 결과를 초래하고 유전자 치료에서 심각한 부작용을 일으킬 수 있다. 따라서 오프-타겟을 탐지하는 것은 게놈 편집의 정밀도를 확보하기 위한 필수적인 체크 포인트이다. 현재의 오프-타겟 프로파일링 방법은 생체 내 편집과 호환되지 않고, 많은 양의 샘플 입력이 필요하며, 검증하려면 많은 시간이 소요되는 등 여러 가지 단점이 있다. 또한 현재 방법의 민감도와 특이성은 결과를 통제할 수 없을 정도로 변동될 수 있다.
현재의 일부 방법은 순방향 및 역방향 프라이머를 사용하는 멀티플렉스 표적 농축을 사용한다. 이러한 방법의 단점은 타겟 서열에 인접한 알려지지 않은 서열을 농축할 수 없다는 것이다. 순방향 및 역방향 프라이머로 생성된 데이터는 시작과 끝 위치가 동일하기 때문에 분자 복합체 수 계산, 시퀀싱 오류 제어, 복제 수 및 효율성을 계산하는 데이터 분석에 상당한 어려움이 있다.
일 실시예에서, 본 명세서는 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플에서 적어도 하나의 표적 핵산을 농축하는 방법을 제공하며, 상기 방법은, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플과 접촉시켜 결합 생성물을 생성하는 단계로서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성되는 단계 (a); 제1 표적-특이적 프라이머 및 선택적으로 제1 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머로 제1 PCR을 수행하여 결합 생성물을 증폭하여 제1 PCR 생성물을 형성하는 단계 (b); 및 제2 표적-특이적 프라이머 및 제2 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터로 제2 PCR을 통해 제1 PCR 생성물을 증폭하여 제2 PCR 생성물을 형성하는 단계 (c)를 포함하며, 여기서, 제2 표적-특이적 프라이머는 제1 표적-특이적 프라이머에 상대적으로 중첩된다.
일부 실시예에서, 단계 (a) 전에, 상기 방법은 단일 가닥 핵산 단편의 3' 말단 을 차단하는 단계; 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단을 인산화하는 단계; 또는 핵산을 아데닐화하여 단일 가닥 핵산 단편에 3'-아데노신 돌출부를 생성하는 단계 중 적어도 한 단계를 추가로 포함한다.
일부 실시예에서, 상기 제1 PCR은 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 얻기 위해 제1 표적-특이적 프라이머로 결합 생성물을 선형 증폭하는 것이다. 일부 실시예에서, 상기 제1 PCR은 제1 표적-특이적 프라이머 및 제1 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머를 사용하여 표적 핵산을 기하급수적으로 증폭하는 것이다. 일부 실시예에서, 상기 제1 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머와 상기 제2 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머는 동일하다. 다른 실시예에서, 상기 제1 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머와 상기 제2 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머는 상이하다.
일부 실시예에서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는, 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된 3' 열성 말단; 및/또는 랜덤 또는 퇴행성 뉴클레오티드의 3~20개의 염기를 포함하는 5' 돌출 말단를 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터의 듀플렉스 일부은 단계 (a)에서 듀플렉스 형태를 유지되기에 충분한 길이를 갖는다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 듀플렉스 형태의 일부를 연결하는 헤어핀 루프를 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 개별 원본 분자를 추적하기 위한 고유 분자 인덱스(UMI)로서 3~20개의 랜덤 뉴클레오티드를 포함하는 단일 가닥 단편으로 구성된다.
일부 실시예에서, 단계 (c)는 시퀀싱 특이적 어댑터 쌍이 있는 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 실시예에서, 단계 (c) 후에, 시퀀싱 프라이머 쌍을 사용하여 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계를 추가로 포함하며, 여기서 상기 시퀀싱 프라이머 쌍은 각각 제2 PCR 생성물의 반대 가닥에 적어도 부분적으로 상호 보완적이다.
일부 실시예에서, 샘플은 고분자량 DNA로부터 제조된 복수의 DNA 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 복수의 단일 가닥 핵산 단편은 이중 가닥 DNA 단편의 변성으로부터 제조된다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 RNA 단편의 역전사로부터 제조된 단일 가닥cDNA 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 복수의 핵산 단편을 분석하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 제1 PCR 및/또는 제2 PCR은 멀티플렉싱 PCR이다.
일부 실시예에서, 상기 샘플은 포유류에서 유래한 것이고, 선택적으로 상기 샘플은 인간으로부터 유래한 것이다. 일부 특별한 실시예에서, 상기 인간은 질병이 있거나 질병이 의심되는 것으로 알려진 개인이고, 선택적으로 상기 질병은 암 또는 유전적 질환이다. 일부 실시예에서, 상기 표적 핵산 중 하나 이상이 상기 암에 대한 하나 이상의 마커를 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 인간은 태아이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 혈액 샘플로부터 유래한 것이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 혈액 샘플에서 추출된 무세포 핵산을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 순환 종양 세포로부터 추출된 핵산을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 T-세포 및 B-세포 수용체 프로파일링을 위한 혈액 샘플의 림프구에서 추출된 핵산을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 편집된 CRISPR 유전자 샘플이다. 일부 특정 실시예에서, 상기 샘플은 편집된 메가 뉴클레아제, 편집된 아연 핑거 뉴클레아제(ZFN) 또는 편집된 전사 활성화제 유사 이펙터 뉴클레아제(TALEN)이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 CAR-T, CAR-NK, TCR-T, 불멸화 세포주(예를 들어, 조작된 신경 줄기세포주 CTX) 또는 치료용 조혈 줄기세포로부터 유래한 것이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 유전자 조작 세포(생체 외 또는 생체 내)로부터 유래한 것이며, 여기서 상기 세포는 섬유아세포, 연골세포, 각질세포, 간세포, 췌장 섬 세포, 줄기세포(예를 들어, 조혈 줄기세포, 중간엽 줄기세포 또는 피부 줄기세포) 및 면역 세포(예를 들어, 종양 침윤 림프구, 바이러스 재구성 T 세포, 수지상 세포, γδ T 세포, 조절 T 세포(Treg) 및 대식세포)가 포함되나 이에 제한되지 않는다.
다른 실시예에서, 본 명세서는 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플에서 적어도 하나의 표적 핵산을 농축하는 방법을 제공한다. 상기 방법은, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합하는 단계 (a); 제1 표적-특이적 프라이머를 표적 서열 부근의 단일 가닥 핵산 단편에 어닐링하는 단계 (b); DNA중합 효소를 사용하여 단일 가닥 핵산 단편 위로 제1 표적-특이적 프라이머를 연장하는 단계 (c); 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 얻는 단계 (d); 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 단일 가닥으로 해리하는 단계 (e); 및 초기 프라이머 연장 듀플렉스의 단일 가닥의 일부를 제2 표적-특이적 프라이머 및 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머로 증폭하는 단계 (f)를 포함한다.
일부 실시예에서, 단계 (a) 전에 상기 방법은, 단일 가닥 핵산 단편의 3' 말단을 차단하는 단계; 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단을 인산화하는 단계; 또는 핵산을 아데닐화하여 단일 가닥 핵산 단편에 3-아데노신 돌출부를 생성하는 단계를 추가로 포함한다.
일부 실시예에서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는, 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된 3' 열성 단부; 및/또는 랜덤 또는 퇴행성 뉴클레오티드의 3~20개의 염기를 포함하는 5' 돌출 단부를 포함하며, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터의 듀플렉스 부분은 단계 (a)에서 듀플렉스 형태로 유지되기에 충분한 길이를 갖는다. 일부 실시예에서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 상기 듀플렉스 형태의 일부를 연결하는 헤어핀 루프를 포함한다. 일부 실시예에서, 단계 (f)는 시퀀싱 특정 어댑터 쌍이 있는 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 단계 (f) 후에, 시퀀싱 프라이머 쌍을 사용하여 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계를 추가로 포함하며, 상기 시퀀싱 프라이머 쌍은 각각 제2 PCR 생성물의 반대 가닥에 적어도 부분적으로 상호 보완적이다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 하나 이상의 사이클 동안 단계 (b) 내지 단계 (f)를 반복하는 단계를 추가로 포함한다.
일부 실시예에서, 상기 샘플은 고분자량 DNA로부터 제조된 복수의 DNA 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 복수의 단일 가닥 핵산 단편은 이중 가닥 DNA 단편의 변성으로부터 제조된다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 RNA 단편의 역전사로부터 제조된 단일 가닥 cDNA 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 개별 원본 분자를 추적하기 위한 고유 분자 인덱스(UMI)로서 3~20개의 랜덤 뉴클레오티드를 포함하는 단일 가닥 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 복수의 핵산 단편을 분석하는 단계를 추가로 포함한다.
일부 실시예에서, 상기 샘플은 포유류로부터 유래하고, 선택적으로 상기 포유류는 인간이다. 일부 실시예에서, 상기 인간은 질병이 있거나 질병이 의심되는 것으로 알려진 개인이고, 선택적으로 상기 질병은 암 또는 유전적 질환이다. 일부 실시예에서, 상기 인간은 태아이다.
일부 실시예에서, 상기 샘플은 혈액 샘플에서 유래한 것이다. 다른 실시예에서, 상기 샘플은 혈액 샘플로부터 추출된 무세포 핵산을 포함한다. 다른 실시예에서, 상기 샘플은 순환 종양 세포로부터 추출된 핵산을 포함한다. 다른 실시예에서, 상기 샘플은 T-세포 및 B-세포 수용체 프로파일링을 위한 혈액 샘플의 림프구에서 추출된 핵산을 포함한다. 다른 실시예에서, 상기 샘플은 편집된 CRISPR 유전자 샘플이다. 일부 특별한 실시예에서, 상기 샘플은 편집된 메가 뉴클레아제, 편집된 아연 핑거 뉴클레아제(ZFN) 또는 편집된 전사 활성화제 유사 이펙터 뉴클레아제(TALEN)이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 CAR-T, CAR-NK, TCR-T, 불멸화 세포주(예를 들어, 조작된 신경 줄기세포주 CTX) 또는 치료용 조혈 줄기세포로부터 유래한다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 유전자 조작 세포(생체 외 또는 생체 내)로부터 유래한다. 여기서, 상기 세포는 섬유아세포, 연골세포, 각질세포, 간세포, 췌장 섬 세포, 줄기세포(예를 들어, 조혈 줄기세포, 중간엽 줄기세포 또는 피부 줄기세포) 및 면역 세포(예를 들어, 종양 침윤 림프구, 바이러스 재구성 T 세포, 수지상 세포, γδ T 세포, 조절 T 세포(Treg) 및 대식세포)를 포함하지만 이에 한정되지 않는다.
다른 실시예에서, 본 명세서에 제공되는 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플에서 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 방법은, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플과 접촉시켜 결합 생성물을 생성하는 단계로서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성되는 단계 (a); 제1 표적-특이적 프라이머로 제1 PCR을 수행하여 제1 PCR 생성물을 형성함으로써 결합 생성물을 증폭하는 단계 (b); 시퀀싱 라이브러리를 형성하기 위해 시퀀싱 특이적 어댑터 프라이머 및 제1 표적 특이적 프라이머에 중첩 된 제2 표적 특이적 프라이머로 제2 PCR을 통해 제1 PCR 생성물을 증폭하는 단계 (c); 시퀀싱 결과를 얻기 위해 상기 시퀀싱 라이브러리를 정량화하고 판독하는 단계 (d); 및 시퀀싱 결과를 참조 게놈에 매핑하는 단계 (e)를 포함한다.
다른 실시예에서, 본 명세서에서 제공되는 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플로부터 유전자 편집 효율을 평가하는 방법은, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 상기 샘플과 접촉시켜 결합 생성물을 생성하는 단계로서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성되는 단계 (a); 제1 표적-특이적 프라이머로 제1 PCR을 수행하여 제1 PCR 생성물을 형성함으로써 결합 생성물을 증폭하는 단계로서, 제1 표적-특이적 프라이머는 바람직하게는 온-타겟, 예측된 오프-타겟 또는 알려진 오프-타겟에서 단일 가닥 핵산 단편을 어닐링하도록 구성되는 단계 (b); 시퀀싱 라이브러리를 형성하기 위해, 시퀀싱 특이적 어댑터 프라이머 및 제1 표적 특이적 프라이머에 상대적으로 중첩된 제2 표적 특이적 프라이머로 제2 PCR을 통해 제1 PCR 생성물을 증폭하는 단계 (c); 상기 시퀀싱 라이브러리를 정량화하고 판독하여 시퀀싱 결과를 형성하는 단계 (d); 및 상기 시퀀싱 결과를 참조 게놈에 매핑하고 유전자 편집 효율을 평가하는 단계 (e)를 포함한다.
다른 실시예에서, 상기 예측된 오프-타겟은 E-CRISP, Cas-OFFinder 및/또는 CRISPRscan으로 구성된 소프트웨어를 기반으로 실리코에서 예측된다. 일부 실시예에서, 상기 E-CRISP는 부정합(mismatch) 컷오프가 <= 10, 9, 8, 7 또는 6이고, 상기 Cas-OFFinder는 부정합이 <= 6, 5, 4, 3 또는 2이며 벌지가 <= 3, 2 또는 1이고, 상기 CRISPRscan은 임계값이 없다. 일부 실시예에서, 단계 (e)는, 분할 판독 및 불일치 판독을 획득하여 전위를 검출하는 단계; 또는 삽입 및 삭제(indel) 빈도를 결정하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 특정 실시예에서, 상기 분할 판독 및 불일치 판독은, 잠재적 후보 전위를 식별하는 단계; 및 온-타겟 스페이서 및 절단 빈도 결정자(CFD)에 대한 프로토스페이서 유사성을 추정하는 단계에 의해 얻어진다. 일부 특정 실시예에서, 상기 인델 빈도는, 매핑된 결과를 GATK-리얼라이너에 의해 정렬하여 정렬된 결과를 형성하는 단계 (a); 상기 정렬된 결과를 대응하는 스페이서 영역에 걸치지 않도록 필터링하는 단계 (b); 절단 부위의 상류 또는 하류 약 5-bp 주변에서 발생하는 삽입 및 삭제를 예측하는 단계 (c); 및 음성 대조군의 상응하는 값에 의해 제거된 상기 샘플의 인델 값에 의해 신뢰할 수 있는 인델 빈도를 결정하는 단계 (d)에 의해 얻어진다.
다른 실시예에서, 본 명세서에 제공되는 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 방법은, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플과 접촉시켜 결합 생성물을 생성하는 단계로서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성되는 단계 (a); 상기 제1 표적-특이적 프라이머 세트로 제1 PCR을 통해 결합 생성물을 증폭하는 단계로서, 상기 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 온-타겟 및 하나 이상의 예측 및/또는 공지된 오프-타겟의 단일 가닥 핵산 단편 5'을 어닐링하도록 구성되는 단계 (b); 제2 표적-특이적 프라이머 세트 및 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머로 제2 PCR을 통해 상기 제1 PCR 생성물을 증폭하여 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계로서, 상기 제2 표적-특이적 프라이머 세트의 각각은 상기 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 대응하는 프라이머에 대해 중첩되는 단계 (c); 및 오프-타겟을 식별하기 위해 상기 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계 (d)를 포함한다.
일부 실시예에서, 단계 (b)에서 상기 예측된 오프-타겟은 컴퓨터로 예측된 오프-타겟이다. 일부 실시예에서, 상기 컴퓨터로 예측된 오프-타겟은 E-CRISP, Cas-OFFinder 또는 CRISPRscan을 포함하는 소프트웨어에 기초하여 예측된 상부 100, 90, 80, 70, 60, 50, 40, 30, 20 또는 10개의 오프-타겟이다. 일부 특정 실시예에서, 상기 E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 10, 9, 8, 7, 또는 6이고, 상기Cas-OFFinder는 부정합이 <= 6, 5, 4, 3, 또는 2이며 벌지가 <= 3, 2, 또는 1이고, 상기 CRISPRscan은 임계값이 없다.
일부 실시예에서, 상기 방법은, 분할 판독 및 불일치 판독을 획득하여 전위를 검출하는 단계; 또는 삽입 및 삭제(인델) 빈도를 결정하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 특정 실시예에서, 상기 분할 판독 및 불일치 판독은, 잠재적 후보 전위를 식별하는 단계; 및 온-타겟 스페이서 및 절단 빈도 결정자(CFD)에 대한 프로토스페이서 유사성을 추정하는 단계에 의해 얻어진다. 일부 특정 실시예에서, 상기 인델 빈도는, 매핑된 결과를 GATK-리얼라이너에 의해 정렬하여 정렬된 결과를 형성하고; 상기 정렬된 결과를 해당 스페이서 영역에 걸치지 않도록 필터링하며; 절단 부위의 상류 또는 하류에서 5-bp 주위에서 발생하는 삽입 및 삭제를 예측하고; 및 음성 대조군의 상응하는 값에 의해 제거된 상기 샘플의 인델 값에 의해 신뢰할 수 있는 인델 빈도를 결정하는 것을 통해 얻어진다.
일부 실시예에서, 단계 (a) 전에 상기 방법은, 상기 단일 가닥 핵산 단편의 3' 말단을 차단하는 단계; 상기 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단을 인산화하는 단계; 또는 상기 핵산을 아데닐화하여 상기 단일 가닥 핵산 단편에 3'-아데노신 돌출부를 생성하는 단계 중 적어도 하나를 추가로 포함한다.
일부 실시예에서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는, 상기 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된 3' 열성 단부; 및/또는 랜덤 또는 퇴행성 뉴클레오티드의 3~20개의 염기를 포함하는 5' 돌출 단부를 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터의 듀플렉스 부분은 단계 (a)에서 듀플렉스 형태로 유지되기에 충분한 길이를 갖는다. 일부 특정 실시예에서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 듀플렉스 형태의 일부를 연결하는 헤어핀 루프를 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 개별 원본 분자를 추적하기 위한 고유 분자 인덱스(UMI)로서 3~20개의 랜덤 뉴클레오티드를 포함하는 단일 가닥 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 단계 (c)는 시퀀싱 특이적 어댑터 쌍이 있는 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 단계 (c) 후에, 시퀀싱 프라이머 쌍을 사용하여 상기 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계를 추가 포함하며, 상기 시퀀싱 프라이머 쌍은 각각 상기 제2 PCR 생성물의 반대 가닥에 적어도 부분적으로 상호 보완적이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 고분자량 DNA로부터 제조된 복수의 DNA 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 복수의 단일 가닥 핵산 단편은 이중 가닥 DNA 단편의 변성으로부터 제조된다.
일부 실시예에서, 상기 샘플은 RNA 단편의 역전사로부터 제조된 단일 가닥 cDNA 단편을 포함한다.
일부 실시예에서, 상기 방법은 상기 복수의 핵산 단편을 분석하는 단계를 추가로 포함한다.
일부 실시예에서, 상기 샘플은 포유류로부터 유래하고, 선택적으로 상기 포유류는 인간이다. 일부 특정 실시예에서, 상기 인간은 질병이 있거나 질병이 의심되는 것으로 알려진 개인이고, 선택적으로 상기 질병은 암 또는 유전적 질환이다. 일부 실시예에서, 상기 표적 핵산 중 하나 이상이 상기 암에 대한 하나 이상의 마커를 포함한다. 일부 특정 실시예에서, 상기 인간은 태아이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 혈액 샘플로부터 유래된 것이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 혈액 샘플로부터 추출된 무세포 핵산을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 순환 종양 세포로부터 추출된 핵산을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 T-세포 및 B-세포 수용체 프로파일링을 위한 혈액 샘플의 림프구로부터 추출된 핵산을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 편집된 CRISPR 유전자 샘플이다. 일부 특정 실시예에서, 샘플은 편집된 메가 뉴클레아제, 편집된 아연 핑거 뉴클레아제(ZFN) 또는 편집된 전사 활성화제 유사 이펙터 뉴클레아제(TALEN)이다. 일부 실시예에서, 샘플은 CAR-T, CAR-NK, TCR-T, 불멸화 세포주(예를 들어, 조작된 신경 줄기세포주 CTX) 또는 치료용 조혈 줄기세포로부터 유래한다. 일부 실시예에서, 샘플은 유전자 조작 세포(생체 외 또는 생체 내)로부터 유래하며, 여기서, 세포는 섬유아세포, 연골세포, 각질세포, 간세포, 췌장 섬 세포, 줄기세포(예를 들어, 조혈 줄기세포, 중간엽 줄기세포 또는 피부 줄기세포) 및 면역 세포(예를 들어, 종양 침윤 림프구, 바이러스 재구성 T 세포, 수지상 세포, γδ T 세포, 조절 T 세포(Treg) 및 대식세포)를 포함하지만 이에 한정되지 않는다.
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도 1a는 예시적인 실시예에 따른 샘플로부터 표적 핵산을 증폭하기 위한 워크플로우를 설명하는 개략도이다.
도 1b는 다른 예시적인 실시예에 따른 샘플로부터 표적 핵산을 증폭하기 위한 워크플로우를 설먕하는 개략도이다.
도 2a 및 도 2b는 예시적인 실시예에 따른, 본 발명에 설명된 예시적인 기술, 즉 편집-서열(EDITED-Seq)을 사용하여 CRISPR-Cas9에 의해 편집된 VEGFA 2 로커스에서의 오프-타겟 식별 및 검증을 나타내는 도면이다.
도 2c는 도 2a 및 도 2b의 동일한 예시적 실시예에 따른, 편집-서열 스코어(Escore)와 인델 빈도(%) 사이의 상관 관계를 나타내는 도면이다.
도 2d는 도 2a 및 도 2b의 동일한 예시적 실시예에 따른, VEGFA 2 로커스에서 입력 유전체 DNA의 검출 적정도를 나타내는 도면이다.
도 2e는 도 2a 및 도 2b의 동일한 예시적 실시예에 따른, 염색체 좌표 내에서 VEGFA 2의 전위 서커스 플롯을 나타내는 도면이다.
도 3a는 도 2a-2e의 예시적인 실시예에 따른, VEGFA 2 로커스에서 오프-타겟을 검출할 때, EDITED-Seq 오프-타겟 프로파일과 GUIDE-Seq 및 DISCOVER-Seq에 대한 비교를 나타내는 벤 다이어그램이다.
도 3b는 도 3a의 동일한 예시적인 실시예에 따른, 상응하는 스코어 값, 예를 들어, 에스코어, GUIDE-Seq 카운트, DISCOVER 스코어에 기초하여 일반적으로 식별되는 35개 부위의 순위에 대한 비교를 나타내는 도면이다.
도 3c는 도 3a의 동일한 예시적 실시예에 따른, GUIDE-Seq 및 DISCOVER-Seq와 비교하여, EDITED-Seq의 식별된(참) 및 누락된(거짓) 오프-타겟의 파라날(Paranal) 분포를 나타내는 도면이다.
도 3d는 통합 게놈 뷰어에 도시된 딥 앰플리콘 시퀀싱의 예시적인 결과로서, 10번 염색체에서 추가적인 오프-타겟 삽입("I"로 도시됨) 및 삭제가 EDITED-Seq에 의해 검출되었으나, DISCOVER-Seq 또는 GUIDE-Seq에 의해 검출되지 않았음을 나타내는 도이다.
도 3e는 통합 게놈 뷰어에 도시된 딥 앰플리콘 시퀀싱의 예시적인 결과로서, 17번 염색체에서 추가적인 오프-타겟 삽입("I"로 도시됨) 및 삭제가 EDITED-Seq에 의해 검출되었으나, DISCOVER-Seq 또는 GUIDE-Seq에 의해 검출되지 않았음을 나타내는 도이다.
도 3f는 통합 게놈 뷰어에 도시된 딥 앰플리콘 시퀀싱의 예시적인 결과로서, 22번 염색체에서 추가적인 오프-타겟 삽입("I"로 도시됨) 및 삭제가 EDITED-Seq에 의해 검출되었으나, DISCOVER-Seq 또는 GUIDE-Seq에 의해 검출되지 않았음을 나타내는 도이다.
도 3g는 통합 게놈 뷰어에 표시된 딥 앰플리콘 시퀀싱의 예시적인 결과로서, 11번 염색체에서 추가적인 오프-타겟 삽입("I"로 표시됨) 및 삭제가 EDITED-Seq에 의해 검출되었지만 DISOVER-Seq 또는 GUIDE-Seq에 의해 검출되지 않았음을 나타내는 도이다.
도 3h는 통합 게놈 뷰어에 도시된 딥 앰플리콘 시퀀싱의 예시적인 결과로서, 12번 염색체에서 추가적인 오프-타겟 삽입("I"로 도시됨) 및 삭제가 EDITED-Seq에 의해 검출되었으나, DISCOVER-Seq 또는 GUIDE-Seq에 의해 검출되지 않았음을 나타내는 도이다.
도 3i는 통합 게놈 뷰어에 표시된 딥 앰플리콘 시퀀싱의 예시적인 결과로서, 7번 염색체에서 추가적인 전위가 EDITED-Seq에 의해 검출되었지만, DISCOVER-Seq 또는 GUIDE-Seq에 의해 검출되지 않았음을 나타내는 도이다.
도 3j는 VEGFA 2의 온-타겟 부위에 대한 하나의 프라이머 세트에 의해 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3k는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 1개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3l는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 2개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3m는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 3개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3n는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 4개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3o는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 5개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3p는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 6개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3q는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 7개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3r는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 8개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3s는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 9개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3t는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 10개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3u는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 11개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3v는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 12개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3w는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 13개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3x는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 14개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3y는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 15개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3z는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 16개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3aa는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 17개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3ab는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 18개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3ac는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 19개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 3ad는 VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9에서 실리콘 내에서 예측된 20개의 오프-타겟 부위에서 검출된 전위 이벤트를 나타내는 크리코스 플롯이다.
도 4a는 예시적인 실시예에 따른, CRISPR- Cas9에 의한 iPSC 편집의 워크플로우를 나타내는 개략도이다.
도 4b는 예시적인 실시예에 따른, CRISPR- Cas9에 의한 초기 T-세포 편집의 워크플로우를 나타내는 개략도이다.
도 4c는 도 4a의 동일한 예시적 실시예에 따른, GAPDH 및 HBB 부위에서 iPSC의 오프-타겟을 나타내는 차트이다.
도 4d는 도 4b의 동일한 실시예에 따른, TRAC 및 PD-1 부위에서 T-세포의 오프-타겟을 나타내는 차트이다.
도 5a는 예시적인 실시예에 따른, 마우스에서 수행되는 EDITED-Seq의 워크플로우를 설명하는 개략도이다.
도 5b 및 도 5c는 각각 도 5a의 동일한 일 실시예에 따른, ALB 부위에서 15일 또는 60일 후에 마우스의 오프-타겟을 나타내는 차트이다.
도 6은 렌티 CRISPR(lentiCRISPR) 벡터의 토폴로지를 예시하는 개략도이다.
개요
본 명세서에 설명된 양태는 적어도 하나의 표적 핵산을 농축하거나 식별하는 방법이다. 일부 양태에서, 이 방법은 적어도 하나의 표적 핵산을 농축하거나 식별하는 감도를 증가시킨다. 일부 양태에서, 방법은 적어도 하나의 표적 핵산을 농축하거나 식별하는 특이성을 증가시킨다. 일부 양태에서, 방법은 적어도 하나의 어댑터를 적어도 하나의 표적 핵산에 결합하는 단계를 포함한다. 일부 양태에서, 방법은 적어도 하나의 PCR을 수행하여 적어도 하나의 PCR 생성물을 얻는 단계를 포함한다. 일부 양태에서, 방법은 제1 PCR을 수행하여 제1 PCR 생성물을 얻은 다음, 제2 PCR을 수행하여 제2 PCR 생성물을 얻는 단계를 포함하고, 여기서 적어도 하나의 어댑터는 적어도 하나의 표적 핵산 또는 PCR 생성물에 결합된다.
일부 실시예에서, 방법은 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플에 접촉시켜 결합 생성물을 생성함으로써 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플로부터 적어도 하나의 표적 핵산을 농축하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합하도록 구성된다. 일부 실시예에서, 방법은 제 1 PCR에 의해 제1 PCR 생성물을 증폭하여 제1 PCR 생성물을 형성하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 제2 표적 -특이적 프라이머 및 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머로 제2 PCR을 통해 1 PCR 생성물을 증폭하여 제2 PCR 생성물을 형성하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 제1 표적-특이적 프라이머에 중첩된다. 일부 실시예에서, 방법은 복수의 단일 가닥 핵산 단편을 포함하는 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합시켜 적어도 하나의 표적 핵산을 농축하는 단계; 제1 표적-특이적 프라이머를 표적 서열 부근의 단일 가닥 핵산 단편에 어닐링하는 단계; DNA중합 효소를 사용하여 단일 가닥 핵산 단편 위로 제1 표적-특이적 프라이머를 연장하는 단계; 초기 프라이머 확장 듀플렉스를 얻는 단계; 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 단일 가닥으로 해리하는 단계; 및 제2 표적-특이적 프라이머 및 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머로 초기 프라이머 연장 듀플렉스의 단일 가닥의 일부를 증폭하는 단계를 포함한다.
일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플과 접촉시켜 결합 생성물을 형성함으로써 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 단계로서, 여기서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성되는 단계; 제1 표적-특이적 프라이머로 제1 PCR을 수행하여 결합 생성물을 증폭하여 제1 PCR 생성물을 형성하는 단계; 시퀀싱 라이브러리를 형성하기 위해 시퀀싱 특이적 어댑터 프라이머 및 제1 표적-특이적 프라이머에 상대적으로 중첩된 제2 표적-특이적 프라이머로 제2 PCR을 통해 제1 PCR 생성물을 증폭하는 단계; 시퀀싱 라이브러리를 정량화하고 판독하여 시퀀싱 결과를 얻는 단계; 및 시퀀싱 결과를 참조 게놈에 매핑하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플에 접촉시켜 결합 생성물을 생성함으로써 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플로부터 유전자 편집 효율을 평가하는 단계로서, 여기서 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 -가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성되는 단계; 제1 표적-특이적 프라이머로 제1 PCR를 수행하여 제1 결합 생성물을 증폭하여 제1 PCR 생성물을 형성하는 단계; 시퀀싱 라이브러리를 형성하기 위해 시퀀싱 특이적 어댑터 프라이머 및 제1 표적-특이적 프라이머에 상대적으로 중첩된 제2 표적-특이적 프라이머로 제2 PCR을 통해 제1 PCR 생성물을 증폭하는 단계; 시퀀싱 라이브러리를 정량화하고 판독하여 시퀀싱 결과를 형성하는 단계; 및 시퀀싱 결과를 참조 게놈에 매핑하고 유전자 편집 효율을 평가하는 단계를 포함한다. 일부 양태에서, 유전자 편집 효율 평가는 전위 또는 인델 빈도를 평가하는 데 적용될 수 있다.
일부 양태에서, 본 명세서에 설명된 방법은 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플과 접촉시켜 결합 생성물을 생성함으로써 적어도 하나의 표적 핵산을 포함하는 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 단계로서, 여기서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성되는 단계; 제1 표적-특이적 프라이머 세트로 제1 PCR을 통해 결합 생성물을 증폭하는 단계로서, 여기서 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 온-타겟 및 하나 이상의 예측 및/또는 공지된 오프-타겟의 단일 -가닥 핵산 단편 5'을 어닐링하도록 구성되는 단계; 제2 표적-특이적 프라이머 세트 및 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머로 제2 PCR을 통해 제1 PCR 생성물을 증폭하여 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계로서, 여기서 제2 표적-특이적 프라이머 세트 각각은 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 대응하는 프라이머에 중첩되는 단계; 및 오프-타겟을 식별하기 위해 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 오프-타겟을 식별하기 위한 계산 예측과 결합될 수 있다.
농축
특정 실시예에서, 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플로부터 적어도 하나의 표적 핵산을 농축하는 방법이 제공되며, 상기 방법은, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플에 접촉시켜 결합 생성물을 생성하는 단계로서, 여기서 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된다. 일부 실시예에서, 방법은 제1 표적-특이적 프라이머로 제1 PCR을 통해 결합 생성물을 증폭하여 제1 PCR 생성물을 형성하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 제2 표적-특이적 프라이머 및 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머로 제2 PCR을 통해 제1 PCR 생성물을 증폭하여 제2 PCR 생성물을 형성하는 단계를 포함하며, 여기서 제2 표적-특이적 프라이머는 제1 표적 -특이적 프라이머에 중첩된 것이다. 일부 실시예에서, 샘플은 고분자량 DNA (예를 들어, 유전체 DNA)로부터 제조된 복수의 DNA 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 효소 기반 처리에 의해 제조된다. 다른 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 단파장, 고주파 음향 에너지에 노출됨으로써 제조된다. 다른 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 100℃ 내지 105℃에서 DNA를 가열함으로써 제조된다. 다른 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 원심 전단에 의해 제조된다. 다른 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 수력학 전단력(hydrodynamic shear forces)에 의해 제조된다. 일부 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 초음파 처리에 노출됨으로써 제조된다. 일부 특정 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 Bioruptor® Pico 또는 Diagenode One에 의해 제조된다. 다른 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 하이드로포어의 형성에 의해 생성된 난류에 의해 제조된다. 일부 특정 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 Megaruptor®, Nebulizer® 및/또는 Covaris®에 의해 제조된다. 일부 실시예에서, 복수의 DNA 단편의 준비는 아가로스 겔 전기 영동에 의해 분석 및 확인된다. 일부 실시예에서, 복수의 DNA 단편의 준비는 Fragment Analyzer™에 의해 분석 및 확인된다. 일부 실시예에서, 복수의 DNA 단편의 준비는 LabChip® GX Touch™ 핵산 분석기에 의해 분석 및 확인된다.
일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 복수의 DNA 단편은 길이가 약 50bp 내지 약 5000bp이다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 복수의 DNA 단편은 길이가 약 50bp 내지 약 200bp, 약 50bp 내지 약 300bp, 약 50bp 내지 약400bp, 약 50bp 내지 약 500bp, 약 50bp 내지 약 600bp, 약 50bp 내지 약 700bp, 약 50bp 내지 약 800bp, 약 50bp 내지 약 900bp, 약 50bp 내지 약 500bp 길이, 약 50bp 내지 약 2000bp 길이, 약 50bp 내지 약 3000bp, 약 50bp 내지 약 4000bp 또는 약 50bp 내지 약 5000bp이다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 복수의 DNA 단편은 길이가 약 100bp 내지 약 200bp, 약 100bp 내지 약 300bp, 약 100bp 내지 약 400bp, 약 100bp 내지 약 500bp, 약 100bp 내지 약 600bp, 약 100bp 내지 약 700bp, 약 100bp 내지 약 800bp, 약 100bp 내지 약 900bp, 약 100bp 내지 약 1000bp, 약 100bp 내지 약 2000bp, 약 100bp 내지 약 3000bp, 약 100bp 내지 약 4000bp 또는 약 100bp 내지 약 5000bp이다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 복수의 DNA 단편은 길이가 약 300bp 내지 약400bp, 약 300bp 내지 약 500bp, 약 300bp 내지 약 600bp, 약 300bp 내지 약 700bp, 약 300bp 내지 약 800bp, 약 300bp 내지 약 900bp, 약 300bp 내지 약 l000bp, 약 300bp 내지 약 2000bp, 약 300bp 내지 약 3000bp, 약 300bp 내지 약 4000bp 또는 약 300bp 내지 약 5000bp이다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 복수의 DNA 단편은 길이가 약 600bp 내지 약 700bp, 약 600bp 내지 약 800bp, 약 600bp 내지 약 900bp, 약 600bp 내지 약 l000bp, 약 600bp 내지 약 2000bp, 약 600bp 내지 약 3000bp, 약 600bp 내지 약 4000bp 또는 약 600bp 내지 약 5000bp이다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 복수의 DNA 단편은 길이가 약 1000bp 내지 약 2000bp, 약 1000bp 내지 약 3000bp, 약 1000bp 내지 약 4000bp 또는 약 1000bp 내지 약5000bp이다.
일부 실시예에서, 복수의 단일 가닥 핵산 단편은 이중 가닥 DNA 단편의 변성으로부터 제조된다. 일부 특정 실시예에서, 이중 -가닥 DNA 단편은 95℃에서 1, 5, 10, 20 또는 30분 동안 가열된다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 95℃에서 1, 5, 10, 20 또는 30분 동안 가열된 후 1분 동안 얼음 위에 놓인다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 유리 비드(Disruptor Beads™; Scientific Industries, Bohemia, NY, USA)로 1, 5, 10, 20 또는 30분 동안 2,500 rpm에서 Disruptor Genie 비드-비터(Scientific Industries)를 사용하여 파괴한 다음, 3,000 rpm에서 30초 동안 원심분리하여 비드를 침전시킨다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 10W에서 30, 60, 90, 120, 150, 200, 250 또는 300초 동안 직접 초음파 처리된다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 10 W, 22.4 kHz에서 1, 5, 10, 20 또는 30분 동안 간접 초음파 처리된다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 튜브에 첨가하고 40 kHz에서 1, 5, 10, 20 또는 30분 동안 초음파 수조의 물에 침지된다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 연속 피펫팅을 통해 0.01, 0.1 또는 1 mol/L NaOH에서 균질화되고 상온에서 1, 2, 5, 10, 20 또는 30분 동안 배양된다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 25% 및 50% 포름아미드 용액에서 피펫으로 부드럽게 균질화되고 실온에서 배양된다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 25%, 50%, 및 60% DMSO 용액에서 피펫으로 부드럽게 균질화되고 실온에서 배양된다. 일부 실시예에서, 복수의 단일 -가닥 핵산 단편의 준비는 260 nm에서 DNA 단편의 흡광도를 측정함으로써 확인된다.
일부 실시예에서, 방법은 단일 가닥 핵산 단편의 3' 말단을 차단하는 단계; 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단을 인산화하는 단계; 또는 핵산을 아데닐화하여 단일 -가닥 핵산 단편에 3'-아데노신 돌출부를 생성하는 단계 중 적어도 하나를 추가로 포함한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥이다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 이중 가닥이다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는, 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된 3' 열성 말단; 및 랜덤 또는 퇴행성 뉴클레오티드의 3~20개의 염기를 포함하는 5' 돌출 말단을 포함한다. 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터의 듀플렉스 부분은 듀플렉스 형태를 유지하기에 충분한 길이를 갖는다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 듀플렉스 형태의 일부를 연결하는 헤어핀 루프를 포함한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 Y 모양을 포함한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 바코드를 포함한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 개별 원본 분자를 추적하기 위한 고유 분자 인덱스(UMI)로서 3~20개의 랜덤 뉴클레오티드를 포함하는 단일 가닥 단편을 포함한다.
일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합된다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 3' 말단에 결합된다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단 및 3' 말단에 결합된다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 리가제를 통해 결합된다. 본 명세서에 설명된 샘플이 표적 유전자 편집 샘플인 경우, 본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머의 표적은 미리 결정된다. 일부 실시예에서, 표적은 CRISPR 유전자를 편집하는 온-타겟 부위를 포함한다. 다른 실시예에서, 표적은 CRISPR 유전자를 편집하는 예측된 오프-타겟 부위를 포함한다. 다른 실시예에서, 표적은 자발적인 이중 가닥 중단점을 포함한다.
본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 전산적으로 예측된다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 E-CRISP에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 Cas-OFFinder에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CRISPRscan에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CRISPRitz에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CRISPOR에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CRISPR Design 웹 사이트(http://crispr.mit.edu)에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 Ecrisp에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 Crispr2vec에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 Hsu-Zhang 스코어에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CHOPCHOP에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CFD에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CRISTA에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 Elevation에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 DeepCrispr에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 DeepSpCas9에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CALITAS에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 심층 컨볼루션 신경망 또는 심층 피드포워드 신경망을 갖는 알고리즘에 의해 예측된다. 일부 실시예에서, 전술한 예측 알고리즘 중 하나 이상에서 설정되는 컷오프는 시드 내부 및/또는 외부에서 부정합이 10, 9, 8, 7, 6, 5, 4, 3, 2 또는 1 이하이다. 일부 실시예에서, 전술한 예측 알고리즘 중 하나 이상에서 설정되는 컷오프는 프로토스페이서 인접 모티프(PAM)의 내부 및/또는 외부에서 부정합이 10, 9, 8, 7, 6, 5, 4, 3, 2 또는 1 이하이다. 다른 실시예에서, 전술한 예측 알고리즘 중 하나 이상의 컷오프는 시드 내부 및/또는 외부에서 벌지(DNA 벌지로 삽입 또는 RNA 벌지로 삭제)가 각각 4, 3, 2 또는 1 이하로 설정된다. 다른 실시예에서, 전술한 예측 알고리즘 중 하나 이상의 컷오프는 PAM 내부 및/또는 외부에서 벌지(DNA 벌지로 삽입 또는 RNA 벌지로 삭제)가 각각 4, 3, 2, 또는 1 이하로 설정된다.
일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 자발적 이중 가닥의 중단점은 게놈 취약 부위이다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 자발적 이중 가닥의 중단점은 Chr 1: 89231183 및 Chr 1: 109838221로 구성된다.
본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머는 본 명세서에 설명된 표적의 부근에 위치하도록 설계된다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머는 본 명세서에 설명된 표적의 하류에 있는 모든 가닥의 DNA 단편과 역방향으로 상호 보완적이다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에서 약 5bp 내지 약 l000bp에 위치한다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에서 약 5bp 내지 약 500bp에 위치한다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적의 하류에서 약 5bp 내지 약 l0bp, 약 l0bp 내지 약 30bp, 약 30bp 내지 약 50bp, 약 50bp 내지 약 70bp, 약 70bp 내지 약 90bp 또는 약 90bp 내지 약 l00bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적의 하류에서 약 l00bp 내지 약 120bp, 약 120bp 내지 약 140bp, 약 140bp 내지 약 160bp, 약 160bp 내지 약 180bp, 약 180bp 내지 약 200bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적의 하류에서 약 200bp 내지 약 220bp, 약 220bp 내지 약 240bp, 약 240bp 내지 약 260bp, 약 260bp 내지 약 280bp, 약 280bp 내지 약 300bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적의 하류에서 약 300bp 내지 약 400bp, 약 400bp 내지 약 500bp, 약 500bp 내지 약 600bp, 약 600bp 내지 약 700bp, 약 700bp 내지 약 800bp, 약 800bp 내지 약 900bp, 약 900bp 내지 약 l00bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에서 적어도 10, 50, 100, 150, 200, 250, 300, 350, 400, 450, 500, 550, 600, 650, 700, 750, 800, 850, 900, 950 또는 1000bp에 위치한다.
일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 제2 표적-특이적 프라이머는 본 명세서에 설명된 표적의 부근에 위치하도록 설계된다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 제2 표적-특이적 프라이머는 본 명세서에 설명된 표적의 하류에 있는 DNA 단편의 모든 가닥에 역방향으로 상호 보완적이다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에서 약 3bp 내지 약 l000bp에 위치한다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에서 약 3bp 내지 약 300bp에 위치한다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적의 하류에서 약 3bp 내지 약 l0bp, l0bp 내지 약 30bp, 약 30bp 내지 약 50bp, 약 50bp 내지 약 70bp, 약 70bp 내지 약 90bp 또는 약 90bp 내지 약 l00bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적의 하류에서 약 l00bp 내지 약 120bp, 약 120bp 내지 약 140bp, 약 140bp 내지 약 160bp, 약 160bp 내지 약 180bp, 약 180bp 내지 약 200bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적의 하류에서 약 200bp 내지 약 220bp, 약 220bp 내지 약 240bp, 약 240bp 내지 약 260bp, 약 260bp 내지 약 280bp, 약 280bp 내지 약 300bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적의 하류에서 약 300bp 내지 약 400bp, 약 400bp 내지 약 500bp, 약 500bp 내지 약 600bp, 약 600bp 내지 약 700bp, 약 700bp 내지 약 800bp, 약 800bp 내지 약 900bp, 약 900bp 내지 약 l00bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적의 하류에서 적어도 10, 50, 100, 150, 200, 250, 300, 350, 400, 450, 500, 550, 600, 650, 700, 750, 800, 850, 900, 950 또는 1000bp에 위치한다.
본 명세서에 설명된 제2 표적-특이적 프라이머는 본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머의 부근에 위치하도록 설계된다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 제2 표적-특이적 프라이머는 본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머의 하류에 있는 모든 가닥의 DNA 단편에 역방향으로 상호 보완적이다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 약3bp 내지 약l000bp 하류에 위치한다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머의 하류에서 약 3bp 내지 약 300bp에 위치한다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머의 하류에서 약 l0bp 내지 약 30bp, 약 30bp 내지 약 50bp, 약 50bp 내지 약 70bp, 약 70bp 내지 약 90bp 또는 약 90bp 내지 약 l00bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머의 하류에서 약 l00bp 내지 약 120bp, 약 120bp 내지 약 140bp, 약 140bp 내지 약 160bp, 약 160bp 내지 약 180bp, 약 180bp 내지 약 200bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머의 하류에서 약 200bp 내지 약 220bp, 약 220bp 내지 약 240bp, 약 240bp 내지 약 260bp, 약 260bp 내지 약 280bp, 약 280bp 내지 약 300bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머의 하류에서 약 300bp 내지 약 400bp, 약 400bp 내지 약 500bp, 약 500bp 내지 약 600bp, 약 600bp 내지 약 700bp, 약 700bp 내지 약 800bp, 약 800bp 내지 약 900bp, 약 900bp 내지 약 l00bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머의 하류에서 적어도 10, 50, 100, 150, 200, 250, 300, 350, 400, 450, 500, 550, 600, 650, 700, 750, 800, 850, 900, 950 또는 1000bp에 위치한다.
프라이머 설계
제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 16-32bp이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 16bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 17bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 18bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 19bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 20bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 21bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 22bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 23bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 24bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 25bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 26bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 27bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 28bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 29bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 30bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 31bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 길이가 32bp이다.
제1 표적-특이적 프라이머는 GC 함량이 약 40% 내지 약 60%이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 GC 함량이 약 40%이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 GC 함량이 약 45%이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 GC 함량이 약 50%이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 GC 함량이 약 55%이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 GC 함량이 약 60%이다.
제1 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 55℃ 내지 약 72℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 55℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 56℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 57℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 58℃이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 59℃이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 60℃이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 65℃이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 70℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 71℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 72℃이다.
제1 표적-특이적 프라이머의 서열은 임의의 이차 구조가 최소화되도록 결정된다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 헤어핀 구조를 형성하지 않는다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 제1 표적-특이적 프라이머의 두 분자 사이에 이량체를 형성하지 않는다.
제1 표적-특이적 프라이머의 3' 말단에 있는 마지막 5개의 염기는 너무 많은 G 또는 C 염기를 포함하지 않는다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머의 3' 말단에 있는 마지막 5개의 염기는 G 또는 C 염기를 포함하지 않는다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머의 3' 말단에 있는 마지막 5개의 염기는 단 하나의 G 또는 C 염기를 포함한다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머의 3' 말단에 있는 마지막 5개의 염기는 두 개의 G 또는/및 C 염기만을 포함한다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머의 3' 말단에 있는 마지막 5개의 염기는 세 개의 G 또는/및 C 염기만을 포함한다.
제1 표적-특이적 프라이머의 서열은 하나의 염기 또는 디뉴클레오티드 반복이 제한된 반복으로 구성된다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머의 서열은 하나의 염기 또는 디뉴클레오티드 반복의 반복을 포함하지 않는다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머의 서열은 하나의 염기의 하나 이상의 반복을 포함하지만 디뉴클레오티드 반복은 포함하지 않으며, 여기서 하나의 염기의 하나 이상의 반복은 동일한 염기가 단지 두 번, 단지 세 번 또는 단지 네 번만 나타나는 반복이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머의 서열은 하나의 염기의 반복을 포함하지 않고 하나 이상의 디뉴클레오티드 반복을 포함하며, 여기서 하나 이상의 디뉴클레오티드 반복은 동일한 디뉴클레오티드가 단지 두 번, 단지 세 번 또는 단지 네 번만 나타나는 반복이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머의 서열은 하나의 염기 및 하나 이상의 디뉴클레오티드의 하나 이상의 반복을 포함하며, 여기서 하나의 염기의 하나 이상의 반복은 동일한 염기가 단지 두 번, 단지 세 번 또는 단지 네 번만 나타나는 반복이고, 여기서 하나 이상의 디뉴클레오티드 반복은 동일한 디뉴클레오티드가 단지 두 번, 단지 세 번 또는 단지 네 번만 나타나는 반복이다.
제1 표적-특이적 프라이머의 서열은 SNP-함유 게놈 데이터베스를 포함하는Primer-BLAST를 사용하여 추가적인(비특이적) PCR 앰플리콘을 생성하지 않도록 설계된다. 일부 실시예에서, 상부 비특이적 PCR 앰플리콘은 제1 표적-특이적 프라이머와의 부정합이 적어도 4 개이다. 다른 실시예에서, 상부 비-특이적 PCR 앰플리콘은 제1 표적-특이적 프라이머와의 부정합이 적어도 5개, 적어도 6개, 적어도 7개, 적어도 8개, 적어도 9개, 적어도 10개이다.
제1 표적-특이적 프라이머는 이용 가능한 알고리즘에 의해 자동으로 설계될 수 있다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 IDT에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 유로핀(Eurofin) 유전체학에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 Primer-BLAST에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 Primer 3에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 NetPrimer에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 PerlPrimer에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머는 Primer Premier에 의해 설계된다.
일부 실시예에서, 제1 PCR은 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 얻기 위해결합 생성물을 선형 증폭한다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 초기 프라이머 연장 듀플렉스의 중첩 증폭을 수행하는 단계를 추가로 포함한다. 다른 예시적인 실시예에서, 제1 PCR은 제1 표적-특이적 프라이머 및 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머를 사용하여 표적 핵산을 기하급수적으로 증폭하는 것이다. 일부 실시예에서, 제1 PCR은 제1 표적-특이적 프라이머를 단일-가닥 핵산 단편으로 어닐링하는 단계를 포함한다. 어닐링 온도는 제1 표적-특이적 프라이머의 용융 온도에 의해 결정된다. 일부 실시예에서, 어닐링 온도는 약 55℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 58℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 60℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 58℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 65℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 70℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 75℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 78℃이다. 일부 실시예에서, 어닐링은 약 0.5분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 1분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 1.5분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 2분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 3분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 4분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 5분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 6분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 7분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 8분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 9분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 10분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 11분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 12분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 13분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 14분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 15분 동안 지속된다.
일부 실시예에서, 제1 PCR은 연장 단계를 포함한다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 20초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 30초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 40초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 50초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 60초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 70초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 80초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 90초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 100초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 110초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 120초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 3분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 4분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 5분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 6분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 7분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 8분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 9분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 10분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 11분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 12분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 13분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 14분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 15분 동안 지속된다.
제1 PCR은 샘플 사이에서 표적을 여러 번 검색할 수 있도록 전술한 PCR 단계(어닐링, 연장 및 변성)를 복수 사이클 포함한다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 3이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 4이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 5이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 10이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 15이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 20이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 25이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 30이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 35이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 40이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 45이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 50이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 55이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 65이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 70이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 75이다.
일부 실시예에서, 방법은 적어도 하나의 제2 표적 특이적 프라이머를 사용하여 제2 PCR(예를 들어, 중첩 PCR)을 수행하는 것을 포함한다. 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 16-32bp이다. 일부 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 16bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 17bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 18bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 19bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 20bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 21bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 22bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 23bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 24bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 25bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 26bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 27bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 28bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 29bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 30bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 31bp이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 길이가 32bp이다.
제2 표적-특이적 프라이머는 GC 함량이 약 40% 내지 약 60%이다. 일부 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 GC 함량이 약 40%이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 GC 함량이 약 45%이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 GC 함량이 약 50%이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 GC 함량이 약 55%이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 GC 함량이 약 60%이다.
제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 55℃ 내지 약 80℃이다. 일부 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 55℃이다. 일부 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 56℃이다. 일부 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 57℃이다. 일부 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 58℃이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 59℃이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 60℃이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 65℃이다. 다른 실시예에서, 제2 표적 -특이적 프라이머는 용융 온도가 약 70℃이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 75℃이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 76℃이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 77℃이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 78℃이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 79℃이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 용융 온도가 약 80℃이다.
제2 표적-특이적 프라이머의 서열은 임의의 2차 구조가 최소화되도록 결정된다. 일부 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 헤어핀 구조를 형성하지 않는다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 제2 표적-특이적 프라이머의 두 분자 사이에 이량체를 형성하지 않는다.
제2 표적-특이적 프라이머의 3' 말단에 있는 마지막 5개 염기는 너무 많은 G 또는 C 염기를 포함하지 않는다. 일부 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머의 3' 말단에 있는 마지막 5개 염기는 G 또는 C 염기를 포함하지 않는다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머의 3' 말단에 있는 마지막 5개 염기는 단 하나의 G 또는 C 염기로만 구성된다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머의 3' 말단에 있는 마지막 5개 염기는 2개의 G 또는/및 C 염기만을 포함한다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머의 3' 말단에 있는 마지막 5개 염기는 3개의 G 또는/및 C 염기만을 포함한다.
제2 표적-특이적 프라이머의 서열은 하나의 염기 또는 디뉴클레오티드 반복이 제한된 반복을 포함한다. 일부 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머의 서열은 하나의 염기 또는 디뉴클레오티드 반복의 반복을 포함하지 않는다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머의 서열은 하나의 염기의 하나 이상의 반복을 포함하지만 디뉴클레오티드 반복은 포함하지 않으며, 여기서 하나의 염기의 하나 이상의 반복은 동일한 염기가 단지 두 번, 단지 세 번 또는 단지 네 번만 나타나는 반복이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머의 서열은 하나의 염기의 반복을 포함하지 않고 하나 이상의 디뉴클레오티드 반복을 포함하며, 여기서 하나 이상의 디뉴클레오티드 반복은 동일한 디뉴클레오티드가 단지 두 번, 단지 세 번 또는 단지 네 번만 나타나는 반복이다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머의 서열은 하나의 염기 및 하나 이상의 디뉴클레오티드 반복의 하나 이상의 반복을 포함한다. 여기서, 하나의 염기의 하나 이상의 반복은 동일한 염기가 단지 두 번, 단지 세 번 또는 단지 네 번만 나타나는 반복이고, 여기서 하나 이상의 디뉴클레오티드 반복은 동일한 디뉴클레오티드가 단지 두 번, 단지 3 번 또는 단지 4 번만 나타나는 반복이다.
제2 표적-특이적 프라이머의 서열은 SNP-함유 게놈 데이터베스를 포함하는프라이머Primer-BLAST를 사용하여 추가적인(비특이적) PCR 앰플리콘을 생성하지 않도록 설계된다. 일부 실시예에서, 상부 비특이적 PCR 앰플리콘은 제2 표적-특이적 프라이머와의 부정합이 적어도 4 개이다. 다른 실시예에서, 상부 비-특이적PCR 앰플리콘은 제2 표적-특이적 프라이머와의 부정합이 적어도 5개, 적어도 6개, 적어도 7개, 적어도 8개, 적어도 9개, 적어도 10개이다.
제2 표적-특이적 프라이머는 이용 가능한 알고리즘에 의해 자동으로 설계될 수 있다. 일부 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 IDT에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 유로핀(Eurofin) 유전체학에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 Primer-BLAST에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 Primer 3에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 NetPrimer에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 PerlPrimer에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머는 PrimerPremier에 의해 설계된다.
일부 실시예에서, 제2 PCR은 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 얻기 위해결합 생성물을 선형 증폭한다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 초기 프라이머 연장 듀플렉스의 중첩 증폭을 수행하는 단계를 추가로 포함한다. 다른 예시적인 실시예에서, 제2 PCR은 제2 표적-특이적 프라이머 및 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머를 사용하여 표적 핵산을 기하급수적으로 증폭하는 것이다. 일부 실시예에서, 제2 PCR은 제2 표적-특이적 프라이머를 단일-가닥 핵산 단편으로 어닐링하는 단계를 포함한다. 어닐링 온도는 제2 표적-특이적 프라이머의 용융 온도에 의해 결정된다. 일부 실시예에서, 어닐링 온도는 약 55℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 58℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 60℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 58℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 65℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 70℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 75℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 78℃이다. 일부 실시예에서, 어닐링은 약 0.5분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 1분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 1.5분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 2분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 3분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 4분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 5분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 6분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 7분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 8분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 9분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 10분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 11분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 12분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 13분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 14분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 15분 동안 지속된다.
일부 실시예에서, 제2 PCR은 연장 단계를 포함한다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 20초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 30초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 40초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 50초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 60초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 70초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 80초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 90초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 100초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 110초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 120초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 3분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 4분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 5분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 6분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 7분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 8분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 9분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 10분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 11분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 12분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 13분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 14분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 15분 동안 지속된다.
제2 PCR은 샘플 사이에서 표적을 여러 번 검색할 수 있도록 전술한 PCR 단계(어닐링, 연장 및 변성)를 복수 사이클 포함한다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 3이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 4이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 5이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 10이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 15이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 20이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 25이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 30이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 35이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 40이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 45이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 50이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 55이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 65이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 70이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 75이다.
일부 실시예에서, 방법은 제 1 프라이머 또는 제 2 프라이머, 또는 본 명세서에 설명된 임의의 다른 추가 프라이머를 갖는 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 시퀀싱 특정 어댑터 쌍이 있는 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 시퀀싱 프라이머 쌍을 사용하여 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계를 포함하며, 여기서, 시퀀싱 프라이머 쌍은 각각 제 2 PCR 생성물의 반대 가닥에 대해 적어도 부분적으로 상호 보완적이다. 일부 실시예에서, 샘플은 RNA 단편의 역전사로부터 제조된 단일 가닥 cDNA 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 복수의 핵산 단편을 분석하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 실시예에서, 제1 PCR 및/또는 제2 PCR은 멀티플렉싱 PCR이다. 일부 실시예에서, 샘플은 포유류(예를 들어, 인간)로부터 유래한다. 일부 실시예에서, 인간은 질병(예를 들어, 암 또는 유전적 질환)이 있거나 질병이 의심되는 것으로 알려진 개인이다. 일부 실시예에서, 표적 서열 중 하나 이상은 암에 대한 하나 이상의 마커를 포함한다. 다른 양태에서, 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플로부터 적어도 하나의 표적 핵산을 농축하는 방법이 제공되며, 이 방법은 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 제1 표적 특이적 프라이머를 표적 서열 부근의 단일 가닥 핵산 단편에 어닐링하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 DNA 중합효소를 사용하여 단일 가닥 핵산 단편 위로 제 1 표적 특이적 프라이머를 연장하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 획득하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 단일 가닥으로 해리하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 하나 이상의 사이클을 반복하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 초기 프라이머 연장 듀플렉스의 단일 가닥의 일부를 제2 표적-특이적 프라이머 및 어댑터 프라이머로 증폭하는 단계를 포함한다.
일부 실시예에서, 방법은 단일 가닥 핵산 단편의 3' 말단을 차단하는 단계; 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단을 인산화하는 단계; 또는 핵산을 아데닐화하여 단일 -가닥 핵산 단편에 3'-아데노신 돌출부를 생성하는 단계 중 적어도 하나를 추가로 포함한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는, 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된 3' 열성 말단; 및 랜덤 또는 퇴행성 뉴클레오티드의 3~20개의 염기를 포함하는 5' 돌출 말단을 포함한다. 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터의 듀플렉스 부분은 듀플렉스 형태를 유지하기에 충분한 길이를 갖는다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 듀플렉스 형태의 일부를 연결하는 헤어핀 루프를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 시퀀싱 특정 어댑터 쌍을 갖는 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 시퀀싱 프라이머 쌍을 사용하여 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계를 포함하며, 여기서, 시퀀싱 프라이머 쌍은 각각 제 2 PCR 생성물의 반대 가닥에 대해 적어도 부분적으로 상호 보완적이다. 일부 실시예에서, 샘플은 고분자량 DNA(예를 들어, 유전체 DNA)로부터 제조된 복수의 DNA 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 복수의 단일 가닥 핵산 단편은 이중 가닥 DNA 단편의 변성으로부터 제조된다. 일부 실시예에서, 샘플은 RNA 단편의 역전사로부터 제조된 단일 가닥 cDNA 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머는 표적 서열을 기하급수적으로 증폭하기 위해 첨가된다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 개별 원본 분자를 추적하기 위한 고유 분자 인덱스(UMI)로서 3~20개의 랜덤 뉴클레오티드를 포함하는 단일 가닥 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 복수의 핵산 단편을 분석하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 실시예에서, 제 1 PCR 및/또는 제 2 PCR은 멀티플렉싱 PCR이다.
일부 실시예에서, 샘플은 포유류(예를 들어, 인간)로부터 유래한다. 일부 실시예에서, 인간은 질병(예를 들어, 암 또는 유전적 질환)이 있거나 질병이 의심되는 것으로 알려진 개인이다. 일부 실시예에서, 상기 표적 핵산 중 하나 이상이 상기 암에 대한 하나 이상의 마커를 포함한다. 일부 특정 실시예에서, 상기 인간은 태아이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 혈액 샘플로부터 유래된 것이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 혈액 샘플로부터 추출된 무세포 핵산이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 순환 종양 세포로부터 추출된 핵산이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 T-세포 및 B-세포 수용체 프로파일링을 위한 혈액 샘플의 림프구로부터 추출된 핵산이다. 일부 실시예에서, 상기 샘플은 편집된 CRISPR 유전자 샘플이다. 일부 특정 실시예에서, 샘플은 편집된 메가 뉴클레아제, 편집된 아연 핑거 뉴클레아제(ZFN) 또는 편집된 전사 활성화제 유사 이펙터 뉴클레아제(TALEN)이다. 일부 실시예에서, 샘플은 CAR-T, CAR-NK, TCR-T, 불멸화 세포주(예를 들어, 조작된 신경 줄기세포주 CTX) 또는 치료용 조혈 줄기세포로부터 유래한다. 일부 실시예에서, 샘플은 유전자 조작 세포(생체 외 또는 생체 내)로부터 유래하며, 여기서, 세포는 섬유아세포, 연골세포, 각질세포, 간세포, 췌장 섬 세포, 줄기세포(예를 들어, 조혈 줄기세포, 중간엽 줄기세포 또는 피부 줄기세포) 및 면역 세포(예를 들어, 종양 침윤 림프구, 바이러스 재구성 T 세포, 수지상 세포, γδ T 세포, 조절 T 세포(Treg) 및 대식세포)를 포함하지만 이에 한정되지 않는다.
다른 양태에서, 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 방법이 제공되며, 이 방법은 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플에 결합하여 결합 생성물을 생성하는 단계를 포함한다. 여기서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 제1 표적-특이적 프라이머로 제1 PCR을 수행하여 제1 PCR 생성물을 형성함으로써 결합 생성물을 증폭하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 시퀀싱 라이브러리를 형성하기 위해, 시퀀싱 특이적 어댑터 프라이머 및 제1 표적 특이적 프라이머에 상대적으로 중첩된 제2 표적 특이적 프라이머로 제2 PCR을 통해 제1 PCR 생성물을 증폭하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 시퀀싱 결과를 얻기 위해 시퀀싱 라이브러리를 정량화하고 판독하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 방법은 시퀀싱 결과를 참조 게놈에 매핑하는 단계를 포함한다.
다른 실시예에서, 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플로부터 유전자 편집 효율을 평가하는 방법이 제공하며, 상기 방법은 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플에 결합하여 결합 생성물을 생성하는 단계를 포함한다. 여기서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 제1 표적-특이적 프라이머로 제1 PCR을 수행함으로써 제1 결합 생성물을 증폭하여 제1 PCR 생성물을 형성하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 시퀀싱 라이브러리를 형성하기 위해, 시퀀싱 특이적 어댑터 프라이머 및 제1 표적 특이적 프라이머에 상대적으로 중첩된 제2 표적 특이적 프라이머로 제2 PCR을 통해 제1 PCR 산물을 증폭하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 시퀀싱 라이브러리를 정량화하고 판독하여 시퀀싱 결과를 형성하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 시퀀싱 결과를 참조 게놈에 매핑하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 오프-타겟 부위에서의 유전자 편집 효율이 결정되도록 전산적으로 예측된 오프-타겟을 검증하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 예측된 오프-타겟은 소프트웨어(예를 들어, E-CRISP, Cas-OFFinder 및/또는 CRISPRscan)에 기초하여 실리코에서 예측된다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 10이다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 9이다. 일부 실시예에서, E- CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 8이다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 7이다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 6이다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 5이다. 일부 실시예에서, Cas- OFFinder는 부정합이 <= 6이다. 일부 실시예에서, Cas-OFFinder는 부정합이 <= 5이다. 일부 실시예에서, Cas-OFFinder는 부정합이 <= 4이다. 일부 실시예에서, Cas- OFFinder는 부정합이 <= 3이다. 일부 실시예에서, Cas-OFFinder는 부정합이 <= 2이다. 일부 실시예에서, Cas-OFFinder는 벌지가 <= 3이다. 일부 실시예에서, Cas-OFFinder는 벌지가 <= 2이다. 일부 실시예에서, Cas-OFFinder는 벌지가 <= 1이다. 일부 실시예에서, CRISPRscan은 임계값이 없다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가<= 7이고, Cas-OFFinder는 부정합이 <= 4이며 벌지가 <= 2이고, CRISPRscan은 임계값이 없다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 분할 판독 및 불일치 판독을 획득하여 전위를 검출하는 단계; 및/또는 삽입 및 삭제(인델) 빈도를 결정하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 실시예에서, 분할 판독 및 불일치 판독은, 잠재적 후보 전위를 식별하고; 및 온-타겟 스페이서 및 절단 빈도 결정자(CFD)에 대한 프로토스페이서 유사성을 추정함으로써 얻어진다. 일부 실시예에서, 인델 빈도는, GATK-리얼라이너에 의해 매핑된 결과를 정렬하여 정렬된 결과를 형성하고; 정렬된 결과를 해당 스페이서 영역에 걸치지 않도록 필터링하며; 절단 부위의 상류 또는 하류에서 5-bp 주변에서 발생하는 삽입 및 삭제를 예측하고; 및 음성 대조군의 상응하는 값에 의해 제거된 샘플의 인델 값에 의해 신뢰할 수 있는 인델 빈도를 결정하는 것에 의해 얻어진다.
일부 실시예에서, 유전자 편집 뉴클레아제는, CRISPR-Cas9, CRISPR-Cas12, CRISPR 베이스 편집기, CRISPR 프라임 편집기, 트랜스포존 기반 유전자 편집기 및 라이터, 전사 활성화제 유사 이펙터 뉴클레아제(TALEN), 메가 뉴클레아제, 아연 핑거 뉴클레아제(ZFN)와 같은 유형을 포함하지만, 다른 유형이 배제되는 것은 아니다.
오프-타겟 식별
다른 양태에서, 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 방법이 제공되며, 상기 방법은 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플에 접촉시켜 결합 생성물을 생성하는 단계를 포함한다. 여기서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 제1 표적-특이적 프라이머 세트로 제1 PCR을 수행하여 결합 생성물을 증폭하는 단계를 포함하며, 여기서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 온-타겟 및 하나 이상의 예측 및/또는 공지된 오프-타겟의 단일 가닥 핵산 단편 5'을 어닐링하도록 구성된다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 시퀀싱 라이브러리를 형성하기 위해 제2 표적 특이적 프라이머 세트 및 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머로 제2 PCR을 수행하여 제1 PCR 생성물을 증폭하는 단계를 포함한다. 여기서, 제2 표적-특이적 프라이머 세트의 각각은 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 대응하는 프라이머에 중첩된다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 오프-타겟을 식별하기 위해 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 단계 (b)에서 예측된 오프-타겟은 전산적으로 예측된 오프-타겟이다.
일부 실시예에서, 전산적으로 예측된 오프-타겟은 E-CRISP, Cas- OFFinder 또는 CRISPRscan을 포함하는 소프트웨어에 기초하여 예측된 상부 100, 90, 80, 70, 60, 50, 40, 30, 20 또는 10개의 오프-타겟이다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 10이다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 9이다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 8이다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 7이다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 6이다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 5이다. 일부 실시예에서, Cas- OFFinder는 부정합이 <= 6이다. 일부 실시예에서, Cas- OFFinder는 부정합이 <= 5이다. 일부 실시예에서, Cas- OFFinder는 부정합이 <= 4이다. 일부 실시예에서, Cas- OFFinder는 부정합이 <= 3이다. 일부 실시예에서, Cas- OFFinder는 부정합이 <= 2이다. 일부 실시예에서, Cas-OFFinder는 벌지가 <= 3이다. 일부 실시예에서, Cas-OFFinder는 벌지가 <= 2이다. 일부 실시예에서, Cas-OFFinder는 벌지가 <= 1이다. 일부 실시예에서, CRISPRscan은 임계값이 없다. 일부 실시예에서, E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 7이고, Cas-OFFinder는 부정합이 <= 4이며 벌지가 <= 2이고, CRISPRscan은 임계값이 없다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 분할 판독 및 불일치 판독을 획득하여 전위를 검출하는 단계; 또는 삽입 및 삭제(인델) 빈도를 결정하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 분할 판독 및 불일치 판독은, 잠재적 후보 전위를 식별하고; 및 온-타겟 스페이서 및 절단 빈도 결정자(CFD)에 대한 프로토스페이서 유사성을 추정함으로써 얻을 수 있다. 일부 실시예에서, 인델 빈도는 GATK-리얼라이너에 의해 매핑된 결과를 정렬하여 정렬된 결과를 형성함으로써 얻어진다. 일부 실시예에서, 인델 빈도는 해당 스페이서 영역에 걸쳐 있지 않은 정렬된 결과를 필터링하고; 절단 부위의 상류 또는 하류 약 5-bp 주변에서 발생하는 삽입 및 삭제를 예측함으로써 얻어진다. 일부 실시예에서, 인델 빈도는 음성 대조군의 상응하는 값에 의해 제거된 샘플의 인델 값에 의해 신뢰할 수 있는 인델 빈도를 결정함으로써 얻어진다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 단일 가닥 핵산 단편의 3' 말단을 차단하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단을 인산화하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 단일 가닥 핵산 단편에 3'-아데노신 돌출부를 생성하기 위해 핵산을 아데닐화하는 단계를 포함한다.
일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된 3' 열성 말단을 포함한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 랜덤 또는 퇴행성 뉴클레오티드의 3개 내지 20개의 염기를 포함하는 5' 돌출 말단을 포함하며, 여기서 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터의 듀플렉스 부분은 듀플렉스 형태로 유지되기에 충분한 길이를 갖는다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 듀플렉스 형태의 일부를 연결하는 헤어핀 루프를 포함한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 개별 원본 분자를 추적하기 위한 고유 분자 인덱스(UMI)로서 3개 내지 20개의 랜덤 뉴클레오티드를 포함하는 단일 가닥 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 시퀀싱 특정 어댑터 쌍이 있는 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계를 포함한다. 일부 실시예에서, 상기 방법은 시퀀싱 프라이머 쌍을 사용하여 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계를 포함하며, 여기서 시퀀싱 프라이머 쌍은 각각 제2 PCR 생성물의 반대 가닥에 대해 적어도 부분적으로 상호 보완적이다.
핵산 단편
일부 실시예에서, 샘플은 고분자량 DNA(예를 들어, 유전체 DNA)로부터 제조된 복수의 DNA 단편을 포함한다. 일부 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 효소 기반 처리에 의해 제조된다. 다른 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 단파장, 고주파 음향 에너지에 노출됨으로써 제조된다. 다른 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 원심 전단에 의해 제조된다. 다른 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 100℃ 내지 105℃에서 DNA를 가열함으로써 제조된다. 다른 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 수력학 전단력에 의해 제조된다. 일부 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 초음파 처리에 노출됨으로써 제조된다. 일부 특정 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 Bioruptor® Pico 또는 Diagenode One에 의해 제조된다. 다른 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 하이드로포어의 형성에 의해 생성된 난류에 의해 제조된다. 일부 특정 실시예에서, 복수의 DNA 단편은 Megaruptor®, Nebulizer® 및/또는 Covaris®에 의해 제조된다. 일부 실시예에서, 복수의 DNA 단편의 준비는 아가로스 겔 전기 영동에 의해 분석되고 확인된다. 일부 실시예에서, 복수의 DNA 단편의 준비는 단편 분석기(Fragment Analyzer)에 의해 분석되고 확인된다. 일부 실시예에서, 복수의 DNA 단편의 준비는 LabChip® GX Touch 핵산 분석기에 의해 분석되고 확인된다.
일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 복수의 DNA 단편은 길이가 약 50bp 내지 약 5000bp이다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 복수의 DNA 단편은 길이가 약 50bp 내지 약 200bp, 약 50bp 내지 약 300bp, 약 50bp 내지 약 400bp, 약 50bp 내지 약 500bp, 약 50bp 내지 약 600bp, 약 50bp 내지 약 700bp, 약 50bp 내지 약 800bp, 약 50bp 내지 약 900bp, 약 50bp 내지 약 500bp, 약 50bp 내지 약 2000bp, 약 50bp 내지 약 3000bp, 약 50bp 내지 약 4000bp 또는 약 50bp 내지 약 5000bp이다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 복수의 DNA 단편은 길이가 약 100bp 내지 약 200bp, 약 100bp 내지 약 300bp, 약 100bp 내지 약 400bp, 약 100bp 내지 약 500bp, 약 100bp 내지 약 600bp, 약 100bp 내지 약 700bp, 약 100bp 내지 약 800bp, 약 100bp 내지 약 900bp, 약 100bp 내지 약 l000bp, 약 100bp 내지 약 2000bp, 약 100bp 내지 약 3000bp, 약 100bp 내지 약 4000bp 또는 약 100bp 내지 약 5000bp이다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 복수의 DNA 단편은 길이가 약 300bp 내지 약 400bp, 약 300bp 내지 약 500bp, 약 300bp 내지 약 600bp, 약 300bp 내지 약 700bp, 약 300bp 내지 약 800bp, 약 300bp 내지 약 900bp, 약 300bp 내지 약 l000bp, 약 300bp 내지 약 2000bp, 약 300bp 내지 약 3000bp, 약 300bp 내지 약 4000bp 또는 약 300bp 내지 약 5000bp이다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 복수의 DNA 단편은 길이가 약 600bp 내지 약 700bp, 약 600bp 내지 약 800bp, 약 600bp 내지 약 900bp, 약 600bp 내지 약 l000bp, 약 600bp 내지 약 2000bp, 약 600bp 내지 약 3000bp, 약 600bp 내지 약 4000bp 또는 약 600bp 내지 약 5000bp이다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 복수의 DNA 단편은 길이가 약 1000bp 내지 약 2000bp, 약 1000bp 내지 약 3000bp, 약 1000bp 내지 약 4000bp 또는 약 1000bp 내지 약 5000이다.
일부 실시예에서, 복수의 단일 가닥 핵산 단편은 이중 가닥 DNA 단편의 변성으로부터 제조된다. 일부 특정 실시예에서, 이중 -가닥 DNA 단편은 95℃에서 1, 5, 10, 20 또는 30분 동안 가열된다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 95℃에서 1, 5, 10, 20 또는 30분 동안 가열된 후, 1분 동안 얼음 위에 놓인다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 유리 비드(Disruptor Beads™; Scientific Industries, Bohemia, NY, USA)로 1, 5, 10, 20 또는 30분 동안 2,500 rpm에서 Disruptor Genie 비드 비터(Scientific Industries)를 사용하여 파괴된 다음, 비드를 침전시키기 위해 3,000 rpm에서 30초 동안 원심분리 한다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 10W에서 30, 60, 90, 120, 150, 200, 250 또는 300초 동안 직접 초음파 처리된다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 10 W, 22.4 kHz에서 1, 5, 10, 20 또는 30분 동안 간접 초음파 처리된다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 튜브에 배치되고 40 kHz에서 1, 5, 10, 20 또는 30분 동안 초음파 수조의 물에 침지된다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 연속적인 피펫팅을 통해 0.01, 0.1 또는 1 mol/L NaOH에서 균질화되고 주변 온도에서 1, 2, 5, 10, 20 또는 30분 동안 배양된다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 25% 및 50% 포름아미드 용액에서 피펫으로 부드럽게 균질화되고 실온에서 배양된다. 다른 특정 실시예에서, 이중 가닥 DNA 단편은 25%, 50%, 및 60% DMSO 용액에서 피펫으로 부드럽게 균질화되고 실온에서 배양된다. 일부 실시예에서, 복수의 단일- 가닥 핵산 단편의 제조는 260 nm에서 DNA 단편의 흡광도를 측정함으로써 확인된다.
일부 실시예에서, 단계 (a) 전에, 상기 방법은 단일 가닥 핵산 단편의 3' 말단을 차단하는 단계 (i); 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단을 인산화하는 단계 (ii); 또는 핵산을 아데닐화하여 단일 가닥 핵산 단편에 3'-아데노신 돌출부를 생성하는 단계 (iii) 중 적어도 하나를 추가로 포함한다.
일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥이다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 이중 가닥이다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는, 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된 3' 열성 단부; 및 랜덤 또는 퇴행성 뉴클레오티드의 3~20개의 염기를 포함하는 5' 돌출 말단을 포함한다. 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터의 듀플렉스 부분은 단계 (a)에서 이중 형태로 유지되기에 충분한 길이를 갖는다.
일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 듀플렉스 형태의 일부를 연결하는 헤어핀 루프를 포함한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 Y 모양으로 구성된다.
일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 바코드를 포함한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 개별 원본 분자를 추적하기 위한 고유 분자 인덱스(UMI)로서 3 내지 20개의 랜덤 뉴클레오티드를 포함하는 단일 가닥 단편을 포함한다.
일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합된다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 3' 말단에 결합된다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단 및 3' 말단에 결합된다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 리가제를 통해 결합된다.
본 명세서에 설명된 샘플이 표적 유전자 편집 샘플인 경우, 본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 표적은 미리 결정된다. 일부 실시예에서, 표적은 CRISPR 유전자 편집의 온-타겟 부위를 포함한다. 다른 실시예에서, 표적은 CRISPR 유전자 편집의 하나 이상의 예측된 오프-타겟 부위를 포함한다. 다른 실시예에서, 표적은 CRISPR 유전자 편집의 하나 이상의 예측된 오프-타겟 부위를 포함한다. 다른 실시예에서, 표적은 하나 이상의 자발적인 이중 가닥 중단점을 포함한다. 다른 실시예에서, 표적은 위에서 설명한 부위의 일부 또는 전부의 조합을 포함한다.
계산 예측
본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 전산적으로 예측된다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 E-CRISP에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 Cas-OFFinder에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CRISPRscan에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CRISPRitz에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CRISPOR에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CRISPR CRISPR Design 웹사이트(http://crispr.mit.edu)에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 Ecrisp에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 Crispr2vec에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 Hsu-Zhang 스코어에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CHOPCHOP에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CFD에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CRISTA에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 Elevation에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 DeepCrispr에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 DeepSpCas9에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 CALITAS에 의해 예측된다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 예측된 오프-타겟 부위는 심층 컨볼루션 신경망 또는 심층 피드포워드 신경망이 있는 알고리즘에 의해 예측된다.
일부 실시예에서, 상기 설명된 예측 알고리즘 중 하나 이상에서 설정되는 컷오프는 시드 내부 및/또는 외부에서 부정합이 10, 9, 8, 7, 6, 5, 4, 3, 2 또는 1 이하이다. 상기 설명된 예측 알고리즘 중 하나 이상에서 설정되는 컷오프는 프로토스페이서 인접 모티프(PAM)의 내부 및/또는 외부에서 부정합이 10, 9, 8, 7, 6, 5, 4, 3, 2 또는 1 이하이다. 다른 실시예에서, 상기 설명된 예측 알고리즘 중 하나 이상에서 컷오프는 시드 내부 및/또는 외부에서 벌지(DNA 벌지로서 삽입 또는 RNA 벌지로 삭제)가 각각 4, 3, 2 또는 1 이하로 설정된다. 다른 실시예에서, 상기 설명된 예측 알고리즘 중 하나 이상에서 컷오프는 PAM 내부 및/또는 외부에서 벌지(DNA 벌지로서 삽입 또는 RNA 벌지로 삭제)가 각각 4, 3, 2 또는 1 이하로 설정된다.
본 명세서에 설명된 하나 이상의 선택된 알고리즘에서 적절한 컷오프를 설정한 후, 일부 실시예에서, 약 100개의 예측된 오프-타겟이 제1 표적 특이적 프라이머 세트를 설계하기 위해 선택된다. 다른 실시예에서, 약 상부 90개의 예측된 오프-타겟이 제1 표적-특이적 프라이머 세트를 설계하기 위해 선택된다. 다른 실시예에서, 약 상부 80개의 예측된 오프-타겟이 제1 표적-특이적 프라이머 세트를 설계하기 위해 선택된다. 다른 실시예에서, 약 상부 70개의 예측된 오프-타겟이 제1 표적-특이적 프라이머 세트를 설계하기 위해 선택된다. 다른 실시예에서, 약 상부 60개의 예측된 오프-타겟이 제1 표적-특이적 프라이머 세트를 설계하기 위해 선택된다. 다른 실시예에서, 약 상부 50, 40, 30, 20 또는 10개의 예측된 오프-타겟이 제1 표적-특이적 프라이머 세트를 설계하기 위해 선택된다.
일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 자발적 이중 가닥 중단점은 게놈 취약 부위이다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 자발적 이중 가닥 중단점은 Chr 1: 89231183, Chr 1: 109838221을 포함한다.
본 명세서에 설명된 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 본 명세서에 설명된 표적의 부근에 위치하도록 설계된다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 제1 표적 -특이적 프라이머 세트는 각각은 센스 또는 안티센스 가닥 상에서 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에 있는 DNA 단편에 역방향으로 상호 보완적이다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에서 약 5bp 내지 약 l000bp에 위치한다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에서 약 5bp 내지 약 500bp에 위치한다. 일부 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에서 약 5bp 내지 약 l0bp, 약 l0bp 내지 약 30bp, 약 30bp 내지 약 50bp, 약 50bp 내지 약 70bp, 약 70bp 내지 약 90bp 또는 약 90bp 내지 약 l00bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에서 약 l00bp 내지 약 120bp, 약 120bp 내지 약 140bp, 약 140bp 내지 약 160bp, 약 160bp 내지 약 180bp, 약 180bp 내지 약 200bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에서 약 200bp 내지 약 220bp, 약 220bp 내지 약 240bp, 약 240bp 내지 약 260bp, 약 260bp 내지 약 280bp, 약 280bp 내지 약 300bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에서 약 300bp 내지 약 400bp, 약 400bp 내지 약 500bp, 약 500bp 내지 약 600bp, 약 600bp 내지 약 700bp, 약 700bp 내지 약 800bp, 약 800bp 내지 약 900bp, 약 900bp 내지 약 l00bp에 위치한다. 다른 특정 실시예에서, 본 명세서에 설명된 DNA 단편은 본 명세서에 설명된 표적 중 하나의 하류에서 적어도 10, 50, 100, 150, 200, 250, 300, 350, 400, 450, 500, 550, 600, 650, 700, 750, 800, 850, 900, 950 또는 1000bp에 위치한다.
제1 표적 특이적 프라이머 세트는 길이가 비교적 균일하다. 일부 실시예에서, 제1 표적 특이적 프라이머 세트는 길이는 약 13-16bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적 특이적 프라이머 세트는 길이는 약 l6-19bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적 특이적 프라이머 세트는 길이는 약 19-22bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적 특이적 프라이머 세트는 길이는 약 22-25bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적 특이적 프라이머 세트는 길이는 약 25-28bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적 특이적 프라이머 세트는 길이는 약 28-31bp이다. 다른 실시예에서, 제1 표적 특이적 프라이머 세트는 길이는 약 31-34bp이다.
제1 표적-특이적 프라이머 세트는 GC 함량이 비교적 균일하며 약 40% 내지 약 60%이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 GC 함량이 비교적 균일하며 약 40%이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 GC 함량이 비교적 균일하며 약 45%이다. 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 GC 함량이 비교적 균일하며 약 50%이다. 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 GC 함량이 비교적 균일하며 약 55%이다. 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 GC 함량이 비교적 균일하며 약 60%이다.
제1 표적-특이적 프라이머 세트는 용융 온도가 비교적 균일하며 약 55℃ 내지 약 80℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 용융 온도가 비교적 균일하며 약 55℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 용융 온도가 비교적 균일하며 약 56℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 용융 온도가 비교적 균일하며 약 57℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 용융 온도가 비교적 균일하며 약 58℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 용융 온도가 비교적 균일하며 약 60℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 용융 온도가 비교적 균일하며 약 65℃이다.일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 용융 온도가 비교적 균일하며 약 70℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 용융 온도가 비교적 균일하며 약 75℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 용융 온도가 비교적 균일하며 약 78℃이다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 용융 온도가 비교적 균일하며 약 80℃이다.
제1 표적-특이적 프라이머 세트의 서열은 이차 구조가 최소화되도록 결정된다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 헤어핀 구조를 형성하지 않는다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 동일한 표적-특이적 프라이머의 두 분자 사이에 이량체를 형성하지 않는다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 상이한 표적-특이적 프라이머 사이에 이량체를 형성하지 않는다.
제1 표적-특이적 프라이머 세트의 3' 말단에 있는 마지막 5개 염기는 너무 많은 G 또는 C 염기를 포함하지 않는다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 3' 말단에 있는 마지막 5개 염기는 G 또는 C 염기를 포함하지 않는다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 3' 말단에 있는 마지막 5개 염기는 하나의 G 또는 C 염기만을 포함한다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 3' 말단에 있는 마지막 5개 염기는 2개의 G 또는/및 C 염기만을 포함한다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 3' 말단에 있는 마지막 5개 염기는 3개의 G 또는/및 C 염기만을 포함한다.
제1 표적-특이적 프라이머 세트의 서열은 하나의 염기 또는 디뉴클레오티드 반복이 제한된 반복을 포함한다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 서열은 하나의 염기 또는 디뉴클레오티드 반복의 반복을 포함하지 않는다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 서열은 하나의 염기의 하나 이상의 반복을 포함하지만 디뉴클레오티드 반복은 포함하지 않는다. 여기서, 하나의 염기의 하나 이상의 반복은 동일한 염기가 단지 두 번, 단지 세 번 또는 단지 네 번만 나타나는 반복이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 서열은 하나의 염기의 반복이 없고 하나 이상의 디뉴클레오티드 반복을 포함한다. 여기서, 하나 이상의 디뉴클레오티드 반복은 동일한 디뉴클레오티드가 단지 두 번, 단지 세 번 또는 단지 네 번만 나타나는 반복이다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 서열은 하나의 염기 및 하나 이상의 디뉴클레오티드 반복의 하나 이상의 반복을 포함한다. 여기서, 하나의 염기의 하나 이상의 반복은 동일한 염기가 단지 두 번, 단지 세 번 또는 단지 네 번만 나타나는 반복이다. 또한, 여기서 하나 이상의 디뉴클레오티드 반복은 동일한 디뉴클레오티드가 단지 두 번, 단지 세 번 또는 단지 네 번만 나타나는 반복이다.
제1 표적-특이적 프라이머 세트의 서열은, SNP-함유 게놈 데이터베이스를 포함하는 프라이머-블래스트(Primer-BLAST)를 사용하여 추가(비특이적) PCR 앰플리콘을 생성하지 않도록 설계된다. 일부 실시예에서, 상부 비특이적 PCR 앰플리콘은 제1 표적 특이적 프라이머 세트와의 부정합이 적어도 4개이다. 다른 실시예에서, 상부 비특이적 PCR 앰클리콘은 제1 표적-특이적 프라이머 세트와의 부정합이 적어도 5개, 적어도 6개, 적어도 7개, 적어도 8개, 적어도 9개, 적어도 10개이다.
제1 표적-특이적 프라이머 세트는 이용 가능한 알고리즘에 의해 자동으로 설계될 수 있다. 일부 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 NGS- 프라이머플렉스(PrimerPlex)에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 프라이머플렉스(PrimerPlex)에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 MPD에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 MPprimer에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 PRIMEval에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 오픈프라임R(openPrimeR)에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 Visual OMP에 의해 설계된다. 다른 실시예에서, 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 Oli2go에 의해 설계된다.
일부 실시예에서, 제 1 PCR은 제 1 표적-특이적 프라이머 세트를 단일 가닥 핵산 단편에 어닐링하는 단계를 포함한다. 어닐링 온도는 제1 표적-특이적 프라이머 세트 중 가장 낮은 용융 온도에 의해 결정된다. 일부 실시예에서, 어닐링 온도는 약 55℃이다. 일부 실시예에서, 어닐링 온도는 약 56℃이다. 일부 실시예에서, 어닐링 온도는 약 57℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 58℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 60℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 65℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 70℃이다. 다른 실시예에서, 어닐링 온도는 약 75℃이다. 일부 실시예에서, 어닐링은 약 0.5분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 1분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 1.5분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 2분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 3분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 4분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 5분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 6분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 7분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 8분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 9분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 10분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 11분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 12분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 13분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 14분 동안 지속된다. 다른 실시예에서, 어닐링은 약 15분 동안 지속된다.
일부 실시예에서, 제 1 PCR은 연장 단계를 포함한다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 20초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 30초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 40초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 50초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 60초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 70초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 80초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 90초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 100초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 110초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 120초 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 3분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 4분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 5분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 6분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 7분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 8분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 9분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 10분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 11분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 12분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 13분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 14분 동안 지속된다. 일부 특정 실시예에서, 연장은 약 15분 동안 지속된다.
제1 PCR은 샘플 사이에서 표적을 여러 번 검색할 수 있도록 전술한 PCR(어닐링, 연장 및 변성)를 복수 사이클 수행하도록 구성된다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 3이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 4이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 5이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 10이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 15이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 20이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 25이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 30이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 35이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 40이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 45이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 50이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 55이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 65이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 70이다. 일부 실시예에서, 사이클 수는 적어도 75이다.
일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 CRISPR-Cas9에 의해 편집된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 데 사용될 수 있다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 CRISPR-Cas12에 의해 편집된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 데 사용될 수 있다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 CRISPR-Cas9 또는 CRISPR-Cas12 이외의 CRISPR-Cas 시스템에 의해 편집된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 데 사용될 수 있다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 CRISPR 베이스 편집기에 의해 편집된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 데 사용될 수 있다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 CRISPR 프라임 편집기에 의해 편집된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 데 사용될 수 있다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 트랜스포존 기반 유전자 편집기에 의해 편집된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 데 사용될 수 있다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 전사 활성화제 유사 이펙터 뉴클레아제(TALEN)에 의해 편집된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 데 사용될 수 있다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 아연 핑거 뉴클레아제(ZFN)에 의해 편집된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 데 사용될 수 있다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 메가뉴클레아제에 의해 편집된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 데 사용될 수 있다.
일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 바이러스-벡터 전달의 랜덤 삽입 부위를 검출하는 데 사용될 수 있다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 트랜스포존의 랜덤 삽입 부위를 검출하는 데 사용될 수 있다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 공여체 DNA의 삽입 부위를 검출하는 데 사용될 수 있다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 B형 간염 바이러스 및 인유두종 바이러스와 같은 바이러스의 삽입 부위를 검출하는 데 사용될 수 있다. 일부 실시예에서, 본 명세서에 설명된 방법은 공지된 서열에 인접한 서열을 검출하는 데 사용될 수 있다.
본 명세서 및 청구범위에 사용되는 바와 같이, "포함하는"(또는 "포함하다" 및 "포함하고" 등 임의의 관련 형태), "함유하는"(또는 "함유하다" 또는 "함유하고" 등 임의의 관련 형태), "포괄하는"(또는 "포괄하다" 또는 "포괄하고" 등 임의의 관련 형태) 용어는 다음 요소를 포함하지만 다른 요소를 배제하지 않는다는 것을 의미한다. "포함하는"(또는 "포함하다" 및 "포함하고" 등 임의의 관련 형태), "함유하는"(또는 "함유하다" 또는 "함유하고" 등 임의의 관련 형태), "포괄하는"(또는 "포괄하다" 또는 "포괄하고" 등 임의의 관련 형태) 용어가 사용되는 모든 실시예에 대해, 본 발명/출원은 또한 "포함하다", "함유하다" 또는 "포괄하다"라는 용어가 "본질적으로 구성하는" 또는 "구성하는"으로 대체되는 대체 실시예를 포함함을 이해해야 한다. "포함하는" 또는 "본질적으로 포함하는"을 사용하는 이러한 대체 실시예는 "포함하는", "함유하는" 또는 "포괄하는" 실시예의 좁은 의미의 실시예로 이해된다.
예를 들어, "~할 것이다", "~하지 않을 것이다", "~하여야 한다", "~해서는 안 된다", "~해야 한다", "~해서는 안 된다", "먼저", "처음에", "다음에", "이후에", "전에", "후에", "마지막으로" 및 "최종적으로"와 같은 절대적 또는 순차적 용어의 사용은 본 명세서에 개시된 실시예의 범위를 제한하려는 것이 아니라 예시적 의미로 사용된다.
본 명세서에서 사용되는 단수 형태는 문맥에서 달리 명시되지 않는 한, 복수 형태도 포함하는 것으로 의도된다. 또한, 상세한 설명 및/또는 청구범위에서 "포함하다", "포함하는", "갖는", "가진", "와 함께" 또는 이들의 변형된 용어가 사용되는 범위 내에서, 이러한 용어는 "포함하는"이라는 용어와 유사한 방식으로 포괄적인 것으로 의도된다.
본 명세서에서 사용되는 "적어도 하나", "하나 이상" 및 "및/또는"이라는 문구는 접속사 및 분리사로 모두 사용할 수 있는 개방형 표현이다. 예를 들어, "A, B 및 C 중 적어도 하나", "A, B 또는 C 중 적어도 하나", "A, B 및 C 중 하나 이상", "A, B 또는 C 중 하나 이상" 및 "A, B 및/또는 C"의 각 표현은 단독 A, 단독 B, 단독 C, A 및 B와 함께, A 및 C와 함께, B 및 C와 함께 또는 A, B 및 C와 함께를 의미한다.
본 명세서에서 사용되는 "또는"은 "및", "또는" 또는 "및/또는"을 지칭할 수 있으며, 배타적으로 또는 포괄적으로 사용될 수 있다. 예를 들어, "A 또는 B"라는 용어는 "A 또는 B", "A이지만 B는 아닌", "B이지만 A는 아닌" 및 "A 및 B"를 지칭할 수 있다. 어떤 경우에는, 문맥이 특정 의미를 지시할 수 있다.
본 명세서에 설명된 모든 시스템, 방법, 소프트웨어 및 플랫폼은 모듈화되어 있다. 따라서, "제1" 및 "제2"와 같은 용어는 반드시 우선순위, 중요도 또는 행위의 순서를 의미하는 것은 아니다.
숫자 또는 수치 범위를 지칭할 때 "약"이라는 용어는 언급된 숫자 또는 수치 범위가 실험적 변동성(또는 통계적 실험 오차) 내의 근사치이며, 숫자 또는 수치 범위는 예를 들어, 명시된 숫자 또는 수치 범위의 1%에서 15%까지 다양할 수 있다는 것을 의미한다. 예에서 "약"이라는 용어는 명시된 숫자 또는 값의 ±10%를 의미한다.
"증가된", "증가하는" 또는 "증가하다"라는 용어는 본 명세서에서 일반적으로 통계적으로 유의미한 양의 증가를 의미하기 위해 사용된다. 일부 양태에서, "증가된" 또는 "증가하다"라는 용어는 기준 수준과 비교하여 적어도 10%의 증가, 예를 들어 적어도 약 10%, 적어도 약 20%, 또는 적어도 약 30%, 또는 적어도 약 40%, 또는 적어도 약 50%, 또는 적어도 약 60%, 또는 적어도 약 70%, 또는 적어도 약 80%, 또는 적어도 약 90% 또는 최대 100% 증가 또는 기준 수준, 표준 또는 대조군과 비교하여 10~100% 사이의 증가를 의미한다. "증가하다"의 다른 예로는, 기준 수준과 비교하여 적어도 2배, 적어도 5배, 적어도 10배, 적어도 20배, 적어도 50배, 적어도 100배, 적어도 1000배 이상의 증가를 포함한다.
본 명세서에서 "감소된", "감소되는" 또는 "감소되다"라는 용어는 일반적으로 통계적으로 유의미한 양의 감소를 의미하기 위해 사용된다. 일부 양태에서, "감소된" 또는 "감소되다"는 기준 수준과 비교하여 적어도 10%의 감소, 예를 들어 적어도 약 20%, 또는 적어도 약 30%, 또는 적어도 약 40%, 또는 적어도 약 50%, 또는 적어도 약 60%, 또는 적어도 약 70%, 또는 적어도 약 80%, 또는 적어도 약 90% 또는 최대 100%의 감소(예를 들어, 기준 수준과 비교하여 없는 수준 또는 검출할 수 없는 수준) 또는 기준 수준과 비교하여 10-100% 사이의 감소를 의미할 수 있다. 마커 또는 증상의 맥락에서 이러한 용어는 해당 수준이 통계적으로 유의미하게 감소하는 것을 의미한다. 예를 들어, 감소는 적어도 10%, 적어도 20%, 적어도 30%, 적어도 40% 이상이 될 수 있으며, 특정 질병이 없는 개인에게 정상적인 범위 내로 인정되는 수준까지 감소하는 것이 바람직하다.
명확성을 위해, "에 의해 특징된" 또는 "을 특징으로 하는"(위에서 설명한 바와 같이 이들의 관련 형태와 함께)은 그 뒤에 따르는 용어 목록이 개방형인지 폐쇄형인지 여부에 대한 성질을 제한하거나 변경하지 않는다. 예를 들어, "A, B, C를 포함하며, D, E 및 F을 특징으로 하는 조성물"에 대한 청구항에서, 요소 D, E 및 F는 여전히 개방형 용어이며, 청구항 앞부분에 "포함하는"이라는 단어의 사용으로 인해 청구항은 다른 요소를 포함하도록 의도된다.
본 명세서 및 청구범위에 사용된 바와 같이, 문맥에서 달리 명시되지 않는 한, 단수 형태는 복수 형태도 포함하도록 의도된다. 명세서에서 범위가 언급되는 경우, 범위는 범위 내의 각 개별 지점을 포함하는 것으로 이해된다. 예를 들어, 1-7은 1, 2, 3, 4, 5, 6, 및 7을 의미한다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용된 바와 같이, "약" 또는 "대략"이라는 용어는 당업계에서 통상적인 허용오차 범위 내에 있고 명시된 값의 ±10%를 넘지 않는 것으로 이해된다. 예를 들어, 약 50은 45에서 55까지의 그 사이에 있는 모든 값을 포함하는 것을 의미한다. 본 명세서에서 사용되는 바와 같이, 특정 값에 대한 "약"이라는 문구는 특정 값도 포함하며, 예를 들어, 약 50은 50을 포함한다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "농축"은 샘플로부터의 모든 분자 중에서 관심 있는 분자 표적의 비율을 증가시키는 것을 의미한다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "핵산 단편"은 핵산이 더 짧은 조각으로 단편화되었음을 의미한다. 특정 실시예에서, 핵산은 길이가 약 50bp 내지 l000bp로 정점에 이르는 전형적인 크기로 단편화된다. 특정 실시예에서, 핵산은 약 20 내지 50bp, 51 내지 100bp, 101 내지 300bp, 301 내지 500 및 501 내지 1000bp로 정점에 이르는 전형적인 크기로 단편화된다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "고분자량 DNA"는 더 짧은 조각으로 단편화되지 않은 DNA를 지칭한다. 특정 실시예에서, 고분자량 DNA는 약 300bp 이상일 수 있다. 특정 실시예에서, 고분자량 DNA는 약 500bp 이상일 수 있다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "인델"은 유기체의 게놈에서 염기의 삽입 또는 삭제를 의미한다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용된 바와 같이, "오프-타겟 게놈 편집"은 CRISPR-Cas9, CRISPR-Cas12 및 기타 CRISPR-Cas 시스템, CRISPR 염기 편집기, CRISPR 프라임 편집기, 트랜스포존 기반 유전자 편집기 및 라이터, 전사 활성화 유사 이펙터 뉴클레아제(TALEN), 메가뉴클레아제 및 아연 핑거 핵산(ZFN) 등의 공학적인 뉴클레아제 기술을 사용하여 발생할 수 있는 의도치 않은 유전자 변형을 의미한다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "오프-타겟" 또는 "오프-타겟"은 오프-타겟 게놈 편집에 의해 유전적 변형을 받는 주어진 게놈 또는 사용자 정의 서열 집합의 하나 이상의 부위를 지칭한다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "온-타겟 게놈 편집"은 CRISPR-Cas9, CRISPR-Cas12 및 기타 CRISPR-Cas 시스템, CRISPR 베이스 편집기, CRISPR 프라임 편집기, 트랜스포존 기반 유전자 편집기 및 라이터, 전사 활성화제 유사 이펙터 뉴클레아제(TALEN), 메가뉴클레아제 및 아연 핑거 뉴클레아제(ZFN) 등의 공학적인 뉴클레아제 기술을 사용함으로써 발생할 수 있는 의도되거나 예상되는 유전자 변형을 지칭한다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "범용 올리고뉴클레오티드 어댑터"는 두 가닥(상부 가닥 및 하부 가닥)으로 구성되고, 제1 결합 가능한 5' 돌출 말단 및 제2 결합 불가능한 말단을 포함하는 핵산 분자를 지칭한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터의 상부 가닥은 5' 듀플렉스 부분을 포함하고, 하부 가닥은 쌍이 없는 5' 부분, 3' 듀플렉스 부분 및 제1 및 제2 시퀀싱 프라이머와 동일한 핵산 서열을 포함한다. 어댑터의 듀플렉스 부분은 실질적으로 상호 보완적일 수 있으며, 듀플렉스 부분은 결합 온도에서 듀플렉스 형태로 유지되기에 충분한 길이를 갖는다. 특정 실시예에서, 상부 가닥과 하부 가닥은 서로 연결되어 헤어핀 루프를 형성한다. "충분하다"라는 용어는 듀플렉스 부분의 염기 수가 충분히 길어 그 사이의 결합이 결합 온도에서 듀플렉스 형태를 유지할 수 있다는 것을 의미한다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "게놈 편집", 또는 "게놈 공학", 또는 "유전자 편집"은 살아있는 유기체의 게놈에 DNA를 삽입, 삭제, 변형 또는 대체되는 유전공학의 일종이다. 예를 들어, 게놈 편집은 특정 위치에 삽입하는 것을 표적으로 한다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용된 바와 같이, "CRISPR(클러스터, 규칙적으로 간격을 두고 짧은 팔린드로믹 반복) 유전자 편집"은 분자 생물학 분야의 유전공학 기술로, 살아있는 유기체의 게놈을 조작된 Cas(클러스터, 규칙적으로 간격을 두고 짧은 팔린드로믹 반복-관련 단백질) 뉴클레아제에 의해 변형될 수 있다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "GUIDE-Seq(게놈 전체, 시퀀싱에 의해 활성화된 DSB의 편향되지 않은 식별)"은 살아있는 세포에서 CRISPR/Cas 뉴클레아제 및 기타 RNA 유도 뉴클레아제에 의해 야기된 DNA의 오프-타겟 게놈 편집 이벤트를 시험관 및 세포 기반에서 편향되지 않은 검출을 허용하는 분자 생물학 기술이다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "DISCOVER-Seq(현장 Cas 오프-타겟의 발견 및 시퀀싱에 의한 검증)"은 세포 및 조직에서 편향되지 않은 CRISPR-Cas 오프-타겟 식별을 가능하게 하는 분자생물학 기술이다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "EDITED-Seq(시퀀싱에 의한 편집 이벤트 검출)"은 본 발명에 설명된 바와 같이, 오프-타겟의 검출 및/또는 평가를 허용하는 분자생물학 기술이다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "고정 중합효소 연쇄반응" 또는 "고정 PCR"은 적어도 하나의 고정 프라이머를 사용하여 핵산 단편의 적어도 하나의 말단으로부터 연장되는 PCR을 지칭한다. 특정 실시예에서, 고정 PCR은 고정 프라이머를 사용하여 핵산 단편의 단일 단부로부터 연장되는 PCR일 수 있다. 특정 실시예에서, 고정 PCR은 두개의 고정 프라이머를 사용하여 핵산 단편의 양단으로부터 연장되는 PCR일 수 있다.
본 명세서 및 청구범위에서 사용되는 바와 같이, "범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머"는 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 서열의 일부에 어닐링할 수 있는 프라이머를 지칭한다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 헤어핀 구조와 같은 적어도 하나의 이차 구조를 포함한다.
본 명세서에서 사용되는 "중첩", "중첩 증폭" 또는 "중첩 PCR"은 예기치 않은 프라이머 결합 부위의 증폭으로 인한 생성물의 비특이적 결합을 감소시키는 중합효소 연쇄 반응을 의미한다. 중첩 PCR은 적어도 두 개의 프라이머 세트로 구성되며, 제2 PCR이 제1 PCR 생성물 내에서 이차 표적을 증폭하는 적어도 두 개의 연속적인 PCR 실행에 사용된다. 이러한 배열은 제1 PCR에서 적은 수의 실행에 대한 증폭을 허용하여 비특이적 생성물을 제한한다. 제2 중첩 프라이머 세트는 제1 PCR에서 의도한 생성물을 증폭할 수 있다. 적어도 하나의 표적 핵산은 제1 프라이머 세트를 사용하여 제1 PCR을 거친다. 그런 다음, 제 1 PCR로부터의 PCR 생성물은 제 2 프라이머 세트와 함께 제 2 PCR에 의해 증폭될 수 있다.
본 명세서에서 사용되는 바와 같이, "고유 분자 인덱스"는 핵산을 식별하기 위한 핵산 라이브러리 준비 중에 적어도 하나의 표적 핵산 또는 본 명세서에 설명된 임의의 핵산 단편에 첨가되는 핵산 서열을 지칭한다. 고유 분자 인덱스는 본 명세서에 설명된 PCR의 임의의 라운드(예를 들어, PCR의 제1 라운드, PCR의 제2 라운드 등) 전에 첨가될 수 있고, 증폭에 의해 도입된 오류 및 정량적 편향을 감소시키는 데 사용될 수 있다.
본 발명의 바람직한 실시예가 본 명세서에 도시되고 설명되었지만, 이러한 실시예는 단지 예시로서만 제공된다는 것은 당업자에게 명백할 것이다. 본 발명이 본 명세서 내에 제공되는 특정 실시예에 의해 제한되는 것을 의도하는 것은 아니다. 본 발명은 전술한 명세서를 참조하여 설명되었지만, 본 명세서에 기재된 실시예의 설명 및 도면은 제한적인 의미로 해석되어서는 안 된다. 당업자에게는 본 발명을 벗어나지 않는 범위 내에서 수많은 변형, 변경 및 대체가 이루어질 수 있다. 또한, 본 발명의 모든 양태는 다양한 조건 및 변수에 따라 달라지는 본 명세서에 기재된 특정 실시예, 구성 또는 상대적 비율에 한정되지 않는다는 것을 이해해야 한다. 본 명세서에 설명된 본 발명의 실시예에 대한 다양한 대안이 본 발명을 실시함에 있어서 사용될 수 있음을 이해해야 한다. 따라서 본 발명은 이러한 대체, 수정, 변형 또는 균등물도 포함하는 것으로 간주되어야 한다. 다음의 청구범위는 본 발명의 범위를 정의하고, 이러한 청구범위와 이에 대응하는 청구범위 내의 방법 및 구조가 이에 커퍼되는 것을 의도한다.
실시예
본 명세서에 제공되는 실시예는 본 발명의 특정 실시예를 보다 상세하게 설명하는 예이다. 본 명세서에 제공되는 실시예는 단지 예시적인 목적에 불과하며, 본 발명의 범위를 어떠한 방식으로든 제한하기 위한 것은 아니다.
실시예 1 - 예시적인 워크플로우
도 1a는 샘플로부터 표적 핵산을 증폭하기 위한 예시적인 방법(100)의 워크플로우를 나타낸다. 이 예에서, 샘플은 표적 핵산 서열을 포함하는 단일 가닥 핵산 단편(1002)을 포함한다. 예를 들어, 샘플은 포유류(예를 들어, 인간)에서 유래한 것이다. 예를 들어, 인간은 태아이다. 예를 들어, 인간은 질병(예를 들어, 암 또는 유전적 질환)이 있거나 질병이 의심되는 것으로 알려진 개인이다. 예를 들어, 표적 서열 중 하나 이상이 질병(예를 들어, 암)에 대한 하나 이상의 마커를 포함한다. 예를 들어, 샘플은 혈액 샘플에서 유래한다. 예를 들어, 샘플은 혈액 샘플에서 추출된 무세포 핵산이다. 예를 들어, 샘플은 순환 종양 세포에서 추출된 핵산이다. 예를 들어, 샘플 내의 단일 가닥 핵산(1002)은 이중 가닥 DNA 단편의 변성으로부터 제조된 단일 가닥 DNA 단편이다. 예를 들어, 샘플 내의 단일 가닥 핵산(1002)은 RNA 단편의 역전사로부터 제조된 단일 가닥 cDNA 단편이다. 예를 들어, 샘플은 T-세포 및 B-세포 수용체 프로파일링을 위해 혈액 샘플의 림프구에서 추출된 핵산이다. 예를 들어, 샘플은 편집된 CRISPR 유전자 샘플이다. 예를 들어, 샘플은 편집된 메가뉴클레아제, 편집된 아연 핑거 뉴클레아제(ZFN), 또는 편집된 전사 활성화제 유사 이펙터 뉴클레아제(TALEN)이다. 예를 들어, 샘플은 CAR-T, CAR-NK, TCR-T, 불멸화 세포주(예를 들어, 조작된 신경 줄기세포주 CTX) 또는 치료용 조혈 줄기세포에서 추출된 것이다. 예를 들어, 샘플은 유전자 조작 세포(생체 외 또는 생체 내)에서 유래하며, 여기서 세포는 섬유아세포, 연골세포, 각질세포, 간세포, 췌장 섬세포, 줄기세포(예를 들어, 조혈 줄기세포, 중간 엽 줄기세포 또는 피부 줄기세포) 및 면역 세포(예를 들어, 종양 침윤 림프구, 바이러스 재구성 T 세포, 수지상 세포, γδ T 세포, 조절 T 세포(Treg) 및 대식세포)가 포함되나 이에 제한되지 않는다.
여전히 도 1a를 참조하면, 120에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터(또는 범용 어댑터)(1202)는 5' 말단에서 단일 가닥 핵산 단편(1002)과 결합하여 결합 생성물(1204)을 형성한다. 이 예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터(1202)는 단일 가닥 핵산 단편(1002)의 5' 말단에 결합되도록 구성된 3' 열성 단부를 갖는 상부 가닥(1202A) 및 랜덤 또는 퇴행성 뉴클레오티드의 복수의 수 염기, 예를 들어 3 내지 20개의 염기를 포함하는 5' 돌출 단부를 갖는 하부 가닥(1202B)을 포함한다. 이 예에서, 랜덤 뉴클레오티드의 염기 수는 4개이다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터(1202)의 상부 가닥(1202A)은 5' 듀플렉스 부분을 포함하고, 하부 가닥(1202B)은 3' 듀플렉스 부분을 포함한다. 어댑터의 듀플렉스 부분은 실질적으로 상호 보완적일 수 있고, 듀플렉스 부분은 결합 온도에서 듀플렉스 형태를 유지하기에 충분한 길이를 갖는다. 일부 실시예에서, 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터(1202)는 개별 원본 분자를 추적하기 위한 고유 분자 인덱스(UMI)로서 듀플렉스 부분 또는 상부 가닥(1202A)의 5' 말단에 통합된 3~20개의 랜덤 뉴클레오티드를 더 포함할 수 있다. 140에서, 결합 생성물(1204)은 이어서 제1 표적-특이적 프라이머(1402)를 사용한 제1 PCR에 의해 증폭되어 제1 PCR 생성물(1404)을 형성한다. 이 예에서, 제 1 PCR은 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 얻기 위한 결합 생성물의 선형 증폭이다. 예를 들어, 제1 PCR은, 표적 서열 부근의 단일 가닥 핵산 단편(1002)에 제1 표적 특이적 프라이머(1402)를 어닐링하는 단계 (1), DNA 중합효소를 사용하여 제1 표적 특이적 프라이머(1402)를 단일 가닥 핵산 단편(1002) 위에 연장하는 단계 (2), 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 획득하는 단계 (3) 및 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 단일 가닥으로 해리하는 단계 (4)를 포함한다. 예를 들어, 제1 PCR은 하나 이상의 사이클에서 단계 (1)-(4)를 더 반복할 수 있다. 다른 예시적인 실시예에서, 140의 제1 PCR은 제1 표적-특이적 프라이머(1402) 및 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머를 사용하여 표적 핵산을 기하급수적으로 증폭하는 것이다. 예를 들어, 제1 PCR 생성물은 후속 단계 전에 제1 표적-특이적 프라이머(1402)를 제거하기 위해 선택적으로 세척된다. 160에서, 제1 PCR 생성물(1404)은 제1 표적-특이적 프라이머(1402) 및 시퀀싱 어댑터 역방향 프라이머(1606)(일부 실시예에서 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머라고도 함)에 상대적으로 중첩된 제2 표적-특이적 프라이머(1602)를 사용한 제2 PCR에 의해 증폭된다. 제 2 표적 특이적 프라이머(1602) 및 시퀀싱 어댑터 역 프라이머(1606)는 제 2 PCR 생성물(1608)을 형성하기 위해 제 1 PCR 생성물(1404)의 증폭에 사용된다. 예를 들어, 제 1 PCR은 선형 PCR이다. 예를 들어, 제 1 PCR은 유전자 특이적 프라이머(GSP) PCR이다. 예를 들어, 제 1 PCR 및/또는 제 2 PCR은 멀티플렉싱 PCR이다. 예를 들어, 160은 초기 프라이머 연장 듀플렉스의 중첩 증폭을 수행하는 단계를 더 포함할 수 있다. 선택적으로, 시퀀싱 어댑터 포워드 프라이머(1604)가 제공되어, 제 2 PCR 생성물(1608)을 시퀀싱 라이브러리로 사용할 수 있다. 예를 들어, 시퀀싱 어댑터 프라이머(1604)는 1604와 동일한 시퀀싱 프라이머를 사용하여 복수의 1602가 브리지 및 시퀀싱될 수 있도록 제공된다. 예를 들어, 시퀀싱 어댑터 포워드 프라이머(1604) 및 시퀀싱 어댑터 리버스 프라이머(1606)는 일루미나 시퀀싱 프라이머이다. 예를 들어, 시퀀싱 어댑터 포워드 프라이머(1604)는 제공되지 않는다. 예를 들어, 시퀀싱 라이브러리는 제2 PCR 생성물(1608)의 반대 가닥에 각각 적어도 부분적으로 상호 보완적인 시퀀싱 프라이머 쌍(도시되지 않음)과 함께 후속 시퀀싱을 위해 사용될 수 있다. 다른 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머(1602)는 시퀀싱 어댑터 포워드 프라이머(1604)의 서열을 포함한다.
이제 도 1b를 참조하면, 샘플로부터 표적 핵산을 증폭하기 위한 대체 예시 방법(100')의 워크플로우를 나타낸다. 명확성을 위해, 이 예의 추가 단계 또는 대체 단계 중 하나 이상의 단계를 방법(100)(도 1a)의 해당 단계에 각각 추가하거나 대체할 수 있다. 이 예에서, 핵산의 출발 물질은 표적 DNA 서열을 포함하는 이중 가닥 DNA(101)이다. 예를 들어, 샘플은 게놈 DNA와 같은 고분자량 DNA로부터 제조된 복수의 DNA 단편을 포함한다. 추가 110'에서, 이중 가닥 DNA(101)는 단편화되고 변성되어 단일 가닥 DNA 단편(1002')을 형성한다. 선택적 112'에서, 단일 가닥 DNA 단편(1002')의 3' 말단은 선택적으로 차단되어 3' 말단이 차단된 단일 가닥 DNA 단편(1122')을 형성할 수 있다. 선택적 114'에서, 단일 가닥 DNA 단편(1002' 또는 1122')의 5' 말단은 선택적으로 인산화되어 5' 말단이 인산화된 단일 가닥 DNA 단편(1142')을 형성할 수 있다. 그런 다음, 5' 말단 인산화 단일 가닥 DNA 단편(1142')은 후속 120'(또는 120)을 위해 준비된다. 선택적으로, 전술된 바와 같이, 단일 가닥 핵산 단편은 결합 120' 전에 단일 가닥 핵산 단편에 3'-아데노신 오버행을 생성하기 위해 추가로 아데닐화될 수 있다. 대안 120'에서, 듀플렉스 형태의 일부를 연결하는 헤어핀 루프를 포함하는 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터(1202')(도 1b의 상자에 도시된 바와 같이)는 5' 말단에서 5' 말단 인산화 단일 가닥 DNA 단편(1142')에 결합하여 결합 생성물(1204')을 형성하기 위해 사용된다. 예를 들어, 결합을 위한 단일 가닥 DNA 단편은 단일 가닥 DNA 단편(1002') 또는 3' 말단이 차단된 단일 가닥 DNA 단편(1122')일 수 있다. 대안 140'에서, 결합 생성물(1204')은 이어서 제1 표적 특이적 프라이머(1402') 및 제1 범용 어댑터 특이적 프라이머(1406')를 사용하는 제1 PCR에 의해 증폭되어 제1 PCR 생성물(1404')을 형성한다. 160'에서, 제1 PCR 생성물(1404')은 제2 표적 특이적 프라이머(1602') 및 시퀀싱 어댑터 역 프라이머(1606')(일부 실시예에서 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머라고도 함)를 사용하는 제2 PCR에 의해 증폭되어, 시퀀싱 어댑터 프라이머 서열이 있는 표적 DNA 서열을 포함하는 이중 가닥 DNA 생성물인 시퀀싱 라이브러리(1608')를 형성한다. 제2 표적-특이적 프라이머(1602')는 제1 표적-특이적 프라이머(1402')에 상대적으로 중첩된다. 선택적으로, 시퀀싱 어댑터 포워드 프라이머(1604')가 제공된다. 다른 예시적인 실시예에서, 제2 표적-특이적 프라이머(1602')는 시퀀싱 어댑터 포워드 프라이머(1604')의 서열을 포함한다.
실시예 2. 플라스미드 구성
파링 프로토스페이서 올리고(Paring protospacer oligos)를 어닐링하여 렌티(lenti) CRISPR 벡터(Addgene #42230)의 두 BsmI 절단 부위 사이에 삽입하였다. 렌티 CRISPR 벡터의 토폴로지는 도 6에 도시되어 있다. 각 벡터의 염기서열 진위 여부는 Sanger 시퀀싱을 통해 확인하였다. 파링 프로토스페이서 올리고의 서열은 아래 표 1에 표시되었다.
파링 프로토스페이서 올리고의 서열
프라이머 명칭/ID 서열 사용법/비고
sgVEGFA4-F caccgGACCCCCTCCACCCCGCCTC sgRNA 클로닝
sgVEGFA4-R aaacGAGGCGGGGTGGAGGGGGTCc sgRNA 클로닝
sgHBB-F caccgCTTGCCCCACAGGGCAGTAA sgRNA 클로닝
sgHBB-R aaacTTACTGCCCTGTGGGGCAAGc sgRNA 클로닝
sgPD1-F caccgGGGCGGTGCTACAACTGGGC sgRNA 클로닝
sgPD1-R aaacGCCCAGTTGTAGCACCGCCCc sgRNA 클로닝
sgTRAC-F caccgCTTCAAGAGCAACAGTGCTG sgRNA 클로닝
sgTRAC-R aaacCAGCACTGTTGCTCTTGAAGc sgRNA클로닝
sgALB-F caccgGGTGTAAAATCAACACCCTA sgRNA클로닝
sgALB-R aaacTAGGGTGTTGATTTTACACCc sgRNA클로닝
sgALB-F caccgGGTGTAAAATCAACACCCTA sgRNA클로닝
sgALB-R aaacTAGGGTGTTGATTTTACACCc sgRNA클로닝
sgGAPDH-F caccgAGCCCCAGCAAGAGCACAAG sgRNA클로닝
sgGAPDH-R aaacCTTGTGCTCTTGCTGGGGCTc sgRNA클로닝
일루미나. Y어댑터. 프라이머 AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACNNNNNNNNACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT 일루미나 어댑터
일루미나.i7.어댑터. 프라이머 CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATNNNNNNNNGTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATC 일루미나 어댑터
실시예 3. 오프-타겟 예측 및 고정 멀티플렉스 프라이머 설계
잠재적 오프-타겟은 처음에 세 가지 전문 도구인 E-CRISP, Cas-OFFinder 및 CRISPRscan을 기반으로 실리코에서 예측되었다. 다음 컷오프는 각각 E-CRISP의 경우 부정합이 <= 7이고, Cas-OFFinder의 경우 부정합이 <= 4이고 벌지가 <= 2이며, CRISPRsan의 경우 임계값이 없다. 위양성 및 계산 편향(computational bias)을 줄이기 위해 적어도 두 가지 방법으로 발견한 부위를 추가 프라이머 설계에 적용하는 조합적 전략을 사용하였다.
실시예 4. 세포 배양 및 형질전환
K562 세포를 15 mL의 로즈웰 파크 메모리얼 인스티튜트(Roswell Park Memorial Institute) 1640 배지를 포함하는 플라스크에 접종하였다(RPMI 1640; Thermo Fisher Scientific, 미국 매사추세츠주 월섬), 10%의 열 불활성화 태아 소 혈청(FBS, Thermo Fisher Scientific)을 보충하고, 37℃에서 5%의 이산화탄소(CO2) 내에서 배양하였다. 20~24시간 동안 배양하여 70~90%의 합류를 얻은 후, 네온 형질전환을 위해 세포를 채취하였다. 네온 형질전환은 제조업체의 지침에 따라 네온 형질전환 플랫폼(Thermo Fisher Scientific)을 사용하여 수행하였다. 간단히 말해서, 테스트당 2Х106개의 세포를 전해질 버퍼에 5μg의 렌티CRSIPR-sgRNA 플라스미드와 혼합하여 최종 부피를 100μL까지 현탁시켰다. 그런 다음 세포/DNA 혼합물을 전압 = 1600V, 폭 = 10ms, 숫자 = 3의 파라미터로 네온 머신으로 펄싱하였다. 일반적으로 72시간 동안 세포를 계속 배양한 후 DNA와 mRNA를 추출하였다. GUIDE-Seq의 경우, 200 pmol의 어닐링된 이중 가닥 올리고뉴클레오티드(dsODN)를 원하는 플라스미드와 혼합한 후 위에서 설명한 네온 형질전환 과정과 동일하게 진행하였다.
HEK293 또는 NIH 3T3 세포를 12웰 플레이트에 1.5Х105 세포/웰의 밀도로 접종하고, 둘베코(Dulbecco)의 수정된 이글(Eagle's) 배지(DMEM; Life Technologies)에서 37℃, 5% CO2 내에서 배양한 후, 10%의 FBS, 1%의 페니실린 및 1%의 스트렙토마이신을 보충하였다. 24시간 동안 배양한 후 제조업체의 지침에 따라 리포펙트민3000(Lipofectmin3000, Thermo Fisher Scientific)을 사용하여 형질전환을 실시하였다. 간단히 말해서, 1pg의 렌티CRSIPR-sgRNA 벡터, 2μL의 P3000 및 2.5μL의 리포펙트민3000을 FBS가 없는 DMEM과 부드럽게 혼합하여 최종 100μL의 부피로 교반하고 실온에서 15분간 배양한 후 배지에 첨가하였다. 세포는 DNA 추출을 위해 형질전환 후 72시간 후에 추출하였다. GUIDE-Seq 실험을 위해, 어닐링된 10 pmol의 dsODN을 Lipofectmin3000과 혼합하여 공동 배양한 후 위와 동일한 프로토콜로 진행하였다.
실시예 5. DNA 및 총 RNA 추출
제조업체의 지침에 따라 AllPrep DNA/RNA 키트(QIAGEN, 독일 힐덴)를 사용하여 총 DNA와 RNA를 개별적으로 추출하였다. 간단히 말해서, 세포/조직을 버퍼 RLT Plus(107개 미만의 세포 또는 30mg 조직에 대해 테스트당 350μL)로 용해시켰다. 용해된 혼합물을 AllPrep DNA 컬럼으로 여과한 후 컬럼에 결합된 유전체 DNA를 세척 및 용출하였다. 컬럼에서 흘러나온 용출물은 AllPrep RNA 컬럼을 통해 mRNA 추출하는 RNA 오리진으로 사용하였다. 추출된 DNA/RNA는 해당 DNA/RNA 큐비트 분석(Qubit Assay) 키트(Thermo Fisher Scientific)를 사용하여 정량화했으며, 사용할 때까지 -80℃에서 보관하였다.
실시예 6. 1차 세포 및 iPSC에서의 게놈 편집
도 4a는 일 예시적인 실시예에 따른, CRISPR- Cas9에 의한 iPSC 편집의 예시적인 방법 410의 워크플로우를 나타낸다. 섬유아세포에 대한 배양을 유지하고, 배양이 iPSC로 구분되도록 하였다. 그런 다음, 제조업체의 지침에 따라 Amaxa 핵융합(미국 뉴저지 주 앨렌데일 소재 론자)을 사용하여 iPSC를 형질전환하였다. 간단히 말해, 먼저 TrypLE을 사용하여 세포를 단일 세포로 해리하였다. 각 형질전환에 대해 5Х106 세포를 미리 예열된 100 μL의 핵융합 시약(82 μL 용액-1 및 18 μL 용액-B)과 혼합한 다음, 10μg DNA(6μg Cas9 + 4μg sgRNA)를 현탁액에 첨가하고 전기 천공하였다. 전기 천공된 iPSC를 비활성화된 MEF 공급기에서 배양하고 4~5일 동안 매일 신선한 배지로 교체한 다음 DNA 분리를 위해 수확하였다. 세포는 형질전환한 후 지정된 날짜에 수확하였다.
도 4b는 일 예시적인 실시예에 따른 CRISPR- Cas9에 의한 T-세포 편집의 예시적인 방법(420)의 워크플로우를 나타낸다. 본 예시적 실시예에서, T-세포는 앞에서 iPSC에 대해 설명한 것과 유사하게 형질전환되었다(도 4a).
실시예 7. 마우스에서의 게놈 편집
도 5a는 일 예시적인 실시예에 따른, 마우스에서 수행된 EDITED-Seq의 예시적인 방법(510)의 워크플로우를 나타낸다. 총 107-108개의 TU AAV8 바이러스(511)를 5-7초 내에 꼬리 정맥을 통해 9-11주령 수컷 C57BL/6 마우스(512)(실험 전 체중 측정)에 주입하였다. 마우스(희생 전 체중 측정)를 15일, 30일 및 60일 후에 심장 천자로 안락사시켰다. EDTA 코팅 모세관 튜브에 혈액을 채취하여 얼음 위에 최대 2시간 동안 보관한 후 4℃에서 20분간 10,000rpm으로 원심분리하여 추출하였다. 간 기관(513)을 해부하여 액체 질소로 급속 냉동한 후 사용할 때까지 -80℃에서 보관하였다. 그라운드 조직을 버퍼 RLT Plus(20mg 조직당 350μL)로 용해시키고 제조업체의 지침에 따라 AllPrep DNA/RNA 키트(Qiagen)로 추출하였다. DNA와 RNA는 EDITED-Seq, 암플리콘-NGS 및 qRT-PCR을 수행할 때까지 -80℃에서 보관하였다.
실시예 8. EDITED-Seq 파이프라인
게놈 DNA 및 고정된 단일 말단 멀티플렉스 프라이머는 실시예 1에 설명된 바와 같이 실시예 방법 100 또는 100' 에 따라 2 라운드 유전자 특이적 프라이머(GSP) PCR, 하나의 고정된 PCR 및 하나의 중첩 고정된 플러스 인덱싱 PCR을 통해 EDITED-Seq 라이브러리를 생성하기 위한 입력으로 사용되었다. 간단히 설명하면, 표시된 양의 DNA를 300-500bp에서 정점에 이르는 일반적인 크기로 단편화한 다음 단일 가닥 어댑터를 사용하여 이러한 DNA 단편의 3- 말단을 차단하였다. 인덱싱된 단일 가닥 어댑터를 T4 폴리뉴클레오티드 키나아제(T4 PNK; 뉴잉글랜드 바이오랩스, 미국 매사추세츠주 입스위치)로 인산화한 후 5-말단에 결합하여 결합 효율성을 개선한 다음, 모든 잠재적 오프-타겟을 포착하기 위해 1차 선형 GSP PCR을 수행하였다. 제2 라운드 중첩 GSP PCR은 제1 라운드에서 프라이머를 세척한 후 수행하였다. 최종 시퀀싱 라이브러리는 겔 전기영동으로 확인하고 일루미나 시퀀싱 프라이머를 사용하여 정량적 PCR(qPCR)로 정량화한 후, Next-Seq/MiSeq(일루미나, 미국 캘리포니아주 샌디에이고)을 정량화하였다.
실시예 9. 유전자 전위 검출 및 잠재적 오프-타깃 편집
적격 판독은 버로우즈-휠러 정렬 도구(BWA mem)(버전 0.7.17-r1188)를 사용하여 인간 게놈(GRCh38)에 매핑하였다. 전위는 하나의 판독이 다른 유전자좌로 분할되거나(분할 판독), 하나의 고정된 판독의 짝이 새로운 유전자좌에 매핑될 때(불일치 판독) 관찰될 수 있다. 분할/불일치 판독을 식별하기 위해 Breakmer(버전 0.0.7, 매개변수: trl_sr_thresh 1, rearr_sr_thresh 1 및 discread_only_thresh 1)를 사용하여 잠재적인 후보 전위를 프로파일링한 다음, 온-타겟 스페이서와의 프로토스페이서 유사성 및 절단 빈도 결정자(CFD)를 추정하였다. CFD가 0.01 이상인 오프-타겟 후보를 각 해당 유전자좌의 분할/불일치 판독 방향과 음성 대조군에 따라 추가로 필터링하여 잘못된 증폭 및 핫스팟 DSB 부위에 의한 비특이적 융합을 최소화하였다.
인델 빈도 측정을 위해, 매핑된 판독은 GATK-재조정기(버전 3.8.0)에 의해 다시 정렬된 다음, 해당 스페이서 영역에 걸쳐 있지 않은 판독을 필터링하였다. 그런 다음 결과 판독은 사용자 지정 스크립트를 사용하여 절단 부위의 상/하류에서 5-bp 주변에서 발생하는 삽입 및 삭제를 추정하였다. 신뢰할 수 있는 인델 빈도는 음성 대조군의 해당 값에 의한 제거와 함께 처리 샘플의 인델 값으로 결정되었다.
실시예 10. EDITED-Seq 전략
본 예시적인 실시예에서, 시퀀싱(EDITED-Seq)에 의한 편집 이벤트 검출 방법은 실시예 8 및 9에 설명된 절차에 따라 수행하여, 공지된 또는in-silico예측된 오프-타겟 부위를 신규로 검출하고 동시에 검증할 수 있다.
일부 실시예에서, 온-타겟뿐만 아니라 매우 잠재적인 오프-타겟을 시드로 사용함으로써, 새로운 CRISPR-편집된 오프-타겟 부위는 CRISPR 편집에 의해 유도되는 이중 가닥 단절 사이의 융합으로 인해 표적 프라이머를 사용하는 선형 증폭을 통해 광범위하게 연결될 수 있다. 고정된 중합효소 연쇄 반응은 오프-타겟 프로파일링을 시작하기 전에 예비 실험 과정 없이 모든 잠재적인 편집된 오프-타겟을 포착하고 또한 검증하기 위해 구현되었다.
본 예시적인 실시예에서, EDITED-Seq은 실시예 8 및 9에 따라 K562 세포의 VEGFA 2에 대해 수행되었다. 본 예시적인 실시예에서 EDITED-Seq에 사용된 VEGFA 2용 고정 프라이머의 서열은 아래 표 2에 표시되어 있다.
VEGFA 2용 고정된 프라이머의 서열
제1 PCR 프라이머 명칭 서열 제2 PCR 프라이머 명칭 서열
ABLIM1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCAACTGCCATATGCCCTGGGT ABLIM1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCCTGGGTCTCTGAAGAAGCT
ABLIM1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCGGCGGGTGGGTCACAAA ABLIM1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCGGGTGGGTCACAAAATAAAATGT
ACLY_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCACAGGACAGGGTCAGCGT ACLY_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACAGGACAGGGTCAGCGTTTAAGA
ACLY_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCCCCTACAATACTATCTTGACCCT ACLY_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAAGTTTGCTGGCCCTGGTTTAGA
ATL3-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGAGAGACAGGGTCTTGCTGTTG ATL3-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGCAGTACAGTGATGGGACCGT
B4GALNT4_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCAACTTGGTGGGGGTAGAGTG B4GALNT4_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTTAGGGGGCCAGCAGTG
CALY_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCACGCAGACGCCCCCAT CALY_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCAGACGCCCCCATCAAGCC
CALY_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCCTGGAGTTAAGGGTGTCTCC CALY_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGGAGTTAAGGGTGTCTCCGAGGTG
CDC42SE1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCCAGGAGCGTGGATGACTAC CDC42SE1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCGCGCACCCCTTTCCCA
CDC42SE1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCAGGTGAGGCCGTGCAG CDC42SE1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGTGAGGCCGTGCAGTTGGTC
CDKN2C-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGAGTTATGTGGTCCCCTCTAGGAA CDKN2C-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAAGCCTCTTGAACATGCCGAAATGTA
CDKN2C-NC_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCGTCGTCTCCTGGAGCTC CDKN2C-NC_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCGTCTCCTGGAGCTCTGGACAC
Chr4-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGATGGCATCAAAATGTGTGTCCAGT Chr4-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCACCTGTGGCTGATAGTGACGTCT
Chr4-NC_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGAGGTGGCTTCACTTAGGAGGTC Chr4-NC_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGTCTGGGGAGCGGAGTCC
Chr6-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCAAGGCTGACACCAGGTG Chr6-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACCGCCTCCACCCCCAAGG
Chr6-NC_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCTGGGATCTGGGGAGAGAG Chr6-NC_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGATCTGGGGAGAGAGGTGACC
CLYBL_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAATCATCAGGTGCAAGGCAAGACTG CLYBL_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGTATGTATGCAAAGCCCCGTCACG
CLYBL_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCTGACTGGAGTTCCCTTCACCA CLYBL_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGACTGGAGTTCCCTTCACCATTTCAA
CRB2_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGAGGAGCCTGGACAGACGAAG CRB2_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTGGACAGACGAAGGCAGCA
CRB2_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCTGCCAGAAGCCTGTAGAGAT CRB2_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCTGTAGAGATCAAGGCTGCTC
CXXC5_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCTCGGGGGTGATTAGTTGC CXXC5_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCGGGGGTGATTAGTTGCTTTTTGTT
CXXC5_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCCGTGGCCCGACACCTA CXXC5_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCGACACCTACCGGCTCTCC
DOLK-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTAAGAAGGGCCCCTTGATGAGGTC DOLK-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGTCCTGGTGCTGTTCAGCCCATCTT
DOLK-NC_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGAGAGGTGGGTCAACTTTGG DOLK-NC_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGTGGGTCAACTTTGGCAGGGT
ELL-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGAGGGTGGGCGTGGCTATGTA ELL-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGTGGGCGTGGCTATGTAAACGGA
ELL-NC_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCATGAAGCTGGACTGCACCATCG ELL-NC_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTGGACTGCACCATCGCTCAGG
EXD3_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGGGGAGGGGCGAAGGTC EXD3_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAAGGGAGTCTCAGGCCCGTGAG
EXD3_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCGGGTCCTGCGTCCCTT EXD3_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTCCTGCGTCCCTTCCCCTGA
FAM83H_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCGCAGCCTCCAGATGCA FAM83H_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCACCGGCAGCCACCTGT
FAM83H_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTGAGGCTCTTATCAAACAACTGCCA FAM83H_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAACTGCCACTACTCCCGTCCTCAG
FBXO2_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCGAGTCCCGGCGCTGTCC FBXO2_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGTCCGCGTCTGTGTCGGT
FBXO2_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTCCTCGGTCCGCTGAG FBXO2_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCGGGCCTCGAGCAGAC
FMN1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCAATCTCTGACTTGGACAGCTGCA FMN1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTTGGACAGCTGCAGTACTCCCT
FMN1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCGATGATGGCCTATGGGTTGAAAA FMN1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGTGCGGTGGAGAAAGGCAAG
FSTL4_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGTGCTTCTTCCAAGCTGCGT FSTL4_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCGTCTCTTTGGACCCGTACTTGC
FSTL4_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGTGATTTTCCTGGCTTTAGCGCTA FSTL4_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCCTGGCTTTAGCGCTATACGTTTGA
HDLBP_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCTACAACCAAGCCCATTTGTCCA HDLBP_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCATTTGTCCAGGAACCCCTAGCC
HDLBP_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCCTCTCTACCATTTGTGCTGA HDLBP_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACCATTTGTGCTGATCTGTGGGTATC
HMX1-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTGCCAGGGTTGCATGGG HMX1-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCAGGGTTGCATGGGAACTTCCTCTG
HMX1-NC_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTGTCCCCACCCTCGTCACTC HMX1-NC_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCACCCTCGTCACTCTCTGACC
IL27RA_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCAGGGACCCGGCGACA IL27RA_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCGGCGACACTGGGGAATG
IL27RA_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGAAGGGAGGCGCTAGGCA IL27RA_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCGGGCTCCGTGCAAAC
INPPL1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCTGGGCCTGCACGCTCA INPPL1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGCCCCCTGGAGCTGCA
INPPL1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGACAGCCACCCTGCTCCAC INPPL1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCACCCTGCTCCACACACCT
IUQB-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTAGCAACGGCCCTGGCA IUQB-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACGGCCCTGGCACCACCT
IUQB-NC_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCTACCCTGCCGCGCTCCT IUQB-NC_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTGCCGCGCTCCTCCTTCC
JAKMIP3_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCACCTCATTGGGGACGT JAKMIP3_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTCATTGGGGACGTCTGTTGTGAAA
JAKMIP3_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGCTCTGAACCGAGGCCTTG JAKMIP3_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGTCCCCAGTTACGGAGACAAATCT
KCNQ1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCAGGGCCCCAGAGAGGT KCNQ1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCCCCAGAGAGGTGAGGTCACTATA
KCNQ1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCAGCGACGCCACTCTTTATCT KCNQ1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGTACCCCGTGCCTCAGCT
KLHL23_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCGCGCTGACAGCTGTTGC KLHL23_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCAGGTTGTTTATCTGGGCCTCT
KLHL23_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGAGTTTCATGCTCAGTCCCTGCA KLHL23_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCAGGACACAGCACAGGTAAGGGA
LAMA3_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGGGCTCTGGGGTGACTCC LAMA3_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTGGGGTGACTCCAAGGCTTTTCG
LAMA3_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTCCCTACTCAACCCCGAGCCCTCCT LAMA3_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCCGAGCCCTCCTCTCTTG
LINC00415_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCGCCAGACCAGCTCCGA LINC00415_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGCTCCGACTCCGCTCGCT
LINC00415_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTCCTTGCCCGGGGTAGG LINC00415_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTTGCCCGGGGTAGGAAAGTGA
LINC01258_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTTCTCATCCTTGTATCAGCTGCCTT LINC01258_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTATCAGCTGCCTTCTCATCACAAGA
LINC01258_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGAGAGTGCCATTCTCAGCCTAA LINC01258_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTGCCATTCTCAGCCTAAAAGGTAGA
LUC7L2_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGTGGATCACGCAGTCGGA LUC7L2_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACGCAGTCGGAGGCCATCC
MIR3681-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCATGAGCACACCCACCACCA MIR3681-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGCACACCCACCACCACTCCTA
MIR3681-NC_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCCTTGTCCCACATCACAGCA MIR3681-NC_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTTGTCCCACATCACAGCAAACTCT
MIR4647-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCGCCTGGGACTACTTCTCGTTTGAAA MIR4647-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCGGGGCTGCGGAAGGATCC
MIR4647-NC_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCCCAACGTGGCCTCAG MIR4647-NC_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCAACGTGGCCTCAGCTGCTC
MOB3B_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCACAGCTGTCCAAACGAGGCT MOB3B_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACGAGGCTGGCTCCCCACT
MOB3B_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGATGCAACTGAGGGCTCCTTA MOB3B_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTCCTTAGAAAGTCATGCCCCAGGAG
MSI2_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGAAGGTCGCTGGGAAGCC MSI2_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGCTGGGAGGGGATTGGC
MSI2_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGCCCAGCCTCCCTGCAG MSI2_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCTCCCTGCAGGATGATTGGC
MTMR1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCTCCTCTGTGTGACATGCC MTMR1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTATGCCACAGATGACTATTGCACACCT
MTMR1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACCAACCAGCTAACACTGCTATGCA MTMR1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACCTCAGGGGCCGCTGCA
NC-Chr12_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACTCAGGTGTGCTGGCACTGAT NC-Chr12_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCTGGCACTGATCTGTGGTCCCA
NC-Chr12_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACATACAACCAGTTCACCCAGTTAC NC-Chr12_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAACCAGTTCACCCAGTTACAGTAGAC
NFIX_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGTGTGTGTTTGCTGTTACCGCTTA NFIX_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACCGCTTAAATTAACCCTGAGTGACG
NFIX_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTGGAGCGAAGGCCTGGAG NFIX_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTAGCGTGCGGCCCGAGCT
NoName1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTACTGATGGGGGTGAGCTCCA NoName1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGGGTGAGCTCCAACTCTG
NoName1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGTGTCTCTGCTTTCTGTTGGCA NoName1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTATGTATCTGGCATTACAGCTGAGCAG
NoName10_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCTTCAAGCAGCCCACCTTCTG NoName10_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCAGCCACTGCACCGACTTCA
NoName10_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACTCCCGCCGGTTCCAAG NoName10_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCGGTTCCAAGTTATCGGAGTGAGCCA
NoName11_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCAAAGCACAGGTGGGGACT NoName11_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGACTCATAGCCTGGGGGTAAATGTT
NoName11_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCAGCTGCTTGGGCTCCGTTG NoName11_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGCTTGGGCTCCGTTGCAATCC
NoName12_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCCAGGCCACAGGAAACC NoName12_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAAACCAGGGGAGAGGGCCATAGAG
NoName12_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCTAGGGTGGCTGTGACTCAG NoName12_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCTGTGACTCAGAGCCATGGC
NoName13_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTCTGGCTTCCCATGGGTGAG NoName13_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCTTCCCATGGGTGAGTCCTGT
NoName13_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTCCCTGAGAAGAGCTGAACATAGC NoName13_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGAAGAGCTGAACATAGCCAGGCAATT
NoName14_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCAACCCTTCCCATGACTGAGGTG NoName14_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGACTGAGGTGGATGAACCCCTAAGC
NoName14_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCAACCCCCTGCAGCTG NoName14_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAACCCCCTGCAGCTGCTCACAA
NoName15_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCAAAATCCCAAGGGCATTGTTC NoName15_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAAATCCCAAGGGCATTGTTCACATAA
NoName15_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCATTGTGTCTTCTTGGTACCCTTTTT NoName15_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACCCTTTTTGAAAATTAGTTGCCCAT
NoName16_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGATCACACGAGGCAGAGGGAA NoName16_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGAGGCAGAGGGAACTACAGGTGCA
NoName16_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCAATCTCACCTCCTCCCTCTC NoName16_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTCCCTCTCCTACCAACTTCATCC
NoName2_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCCAAACACAGAAAGGCC NoName2_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCAAACACAGAAAGGCCATTTATTGT
NoName2_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGTGAGCCATGATCGTGCACTC NoName2_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCATGATCGTGCACTCTAGCCT
NoName3_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACTACATTGGAGGAGTGTGTACC NoName3_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGAGTGTGTACCATTTAAGGATGTG
NoName4_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTCTGCTTTCCCCTCCCACCT NoName4_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCACCTGGCCCTGCAAGA
NoName4_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTGCCCTGTTGGATAACCCTTCT NoName4_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCTCTGCCCCTGGACAGATTCTATAG
NoName5_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTTGGAAAGGGATGCTCTGAATACCT NoName5_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGCCCTGCTGCACTATGATCAA
NoName5_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCTGCACTTTCTCCCGGACAA NoName5_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGCCAGCTTCATGACCTGAAACC
NoName6_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGTTGTTAAGGCTGTTGGCATCTGT NoName6_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGCACCTGGCTGCACCAC
NoName6_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGGAAAACACGGTTGCATCCTGA NoName6_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCATCCTGAATGCTCGTTGAGTGGATG
NoName7_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCACCAGCTCTTCGGCCAAG NoName7_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCCAAGCCCATGTAGTACTGCAG
NoName7_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCCGTGTGTTTGACTCCCTCAAC NoName7_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCTCAACTACTTGCCCAACATGC
NoName8_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCGGTGTCAGCAAAGCTAGG NoName8_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCGGTGTCAGCAAAGCTAGGTAAGGAG
NoName8_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCACCGATGAGGCATGGG NoName8_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCGATGAGGCATGGGTTATGAAGTA
NoName9_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGTGCTGCCTCCCCCTCTGGTA NoName9_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCCTCTGGTATGCCCCCTCAT
NoName9_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGAGTGACTGGATGCTGGGTT NoName9_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGACTGGATGCTGGGTTGTGGAAA
nr-HERPUD1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGAGAGGGGCCTGGAAGATTCTC nr-HERPUD1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTTCTCCCCCGAGGCCTCAGAA
nr-HERPUD1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGTAGACTTGACATAAGCACCA nr-HERPUD1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGACTTGACATAAGCACCATACTTCGG
PAPD7_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAAGAAAAGGGGCTGCTGGGT PAPD7_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGCTGCTGGGTAGGACCTG
PAPD7_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGACGTGATTCGAGTTCCTGGCA PAPD7_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCGTGATTCGAGTTCCTGGCAATGCTA
PAX6_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGTCTGGGGTCCTGAAATGAC PAX6_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGTCCTGAAATGACCCCCAAGG
PAX6_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCACTAGATCCTGTCACAATTCCC PAX6_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCGCAGCCTATTGTCTCCTGGT
PLPPR1-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGTGCTCCCGCTCCCATGAG PLPPR1-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCACGCCGTGGCCGAACA
PLPPR1-NC_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGCACAAGAACCTGCTGTCTAAACTT PLPPR1-NC_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAACTTCCATACCAGCAGCAGTTCC
PRR19_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACGACGGCCGCACAGTGG PRR19_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCGCTCGGGCCGCTGACT
PRR19_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCGCCCACTCTCGACTCTT PRR19_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCGCCCACTCTCGACTCTTCAGGTAG
SAMD11_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCAGGACTCCCCAGGTGCT SAMD11_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACTCCCCAGGTGCTGAAGAGACG
SAMD11_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTCTAGCCCGAAAAGCCAAGCT SAMD11_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCAGGGGGTCCGAGTGCA
SBF1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTCTGCCAGATGCTGCTCGT SBF1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGCTGCTCGTTGCCTGGCA
SBF1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCTGTTGCAGGTCCAGAGGACAC SBF1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCACTTGAGGTGGACGTCAGTTTCTGG
SLC22A1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGAAGACGTGGGTTCTGGCAGA SLC22A1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTGGGTTCTGGCAGAAGTTCCTATGT
SLC22A1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCCCGTCCCCTCTGCCA SLC22A1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCCTCTGCCACCCCCAT
SPNS3_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGCCTGTGTCCGGAGCTGT SPNS3_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTGTGTCCGGAGCTGTTTCTGC
SPNS3_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTACCGGGGCAAGACAGC SPNS3_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTGGCTGGAAAGGCAACCC
SRPK2_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGGTGACAACTACCACTCTAGAATTT SRPK2_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACCACTCTAGAATTTGGCAAGATGT
TBATA_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGTCCTAAAACCCCTGCTTGGATTT TBATA_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTATTTCTCCACCTAGGTGTGCTCTCTC
TBATA_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGCGGAACACAGGAGCTAGTCT TBATA_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGAACACAGGAGCTAGTCTGGGAAGA
TRIM42_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCAGTAGCTCCCCAACGTTACTGT TRIM42_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCGTTACTGTGCATTGAAGTCACCTGA
TRIM42_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTGTCTCCCAAAATCAGGCCTGT TRIM42_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCTGTTCTTGCACCTGGATTCTTAC
TSKU_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTTGTGCGCCCTGCCCTT TSKU_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCGCCCTGCCCTTCGGATAA
TSKU_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGGAGGAGGGTGTTTACGG TSKU_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACGGTTATCTTTGCGACTTAGGCTCA
UTP14A_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGGCAGTGCAGGCGTTATAAACT UTP14A_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCGTTATAAACTCCCCGAATCTTGGA
UTP14A_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCACTTTCCCTGGGGCTTGCTTA UTP14A_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCCCTGGGGCTTGCTTAGTAAAGTAG
UTP4_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGAAGGGGCGTGGGAAGCG UTP4_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGTGGCCGGCCCAGGGT
UTP4_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCGCAGACAGAGCAAGCGCGTT UTP4_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCGGGCCGGGGCGTCTGA
VEGFA_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCCCCAGCTACCACCTCCTC VEGFA_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCGGCGGCGGACAGTGGAC
VEGFA_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCGCGGACCACGGCTCCTC VEGFA_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCGAAGCGAGAACAGCCCAGAAGTT
이제 도 2a 및 도 2b를 참조하면, 차트 210 및 210'는 각각 CRISPR-Cas9에 의해 편집된 VEGFA 2 로커스에서 EDITED-Seq을 사용하여 오프-타겟 식별 및 검증을 나타낸다. 차트 210 및 210'에 표시된 바와 같이, 분할 융합 검출에 의해 밝혀진 바와 같이, in silico예측 오프-타겟에 의해 포착된 오프-타겟의 일부 (94 개 중 64 개)가 있었다. 또한, 융합 이벤트가 발견된 부위의 대다수(92%)에서도 EDITED-Seq에 의해 검출된 인델이 있었기 때문에 검증되었다.
이제 도 2c를 참조하면, 다이어그램 220은 도 2a 및 도 2b의 동일한 실시예에 따른 EDITED-Seq 스코어(Escore)와 인델 빈도(%) 사이의 상관관계를 나타낸다. EDITED-Seq 스코어(Escore)는 동일한 시퀀싱 데이터에서 동시에 추정된 인델 빈도와 강한 상관관계를 나타냈다. 도 2e는 염색체 좌표 내에서 VEGFA 2의 전위 서커스 플롯 370을 나타내며, 약 48 %의 부위가 하나 이상의 융합 파트너와 연결되었음을 나타낸다. 이제 도 2를 참조하면, 도 2a 및 도 2b의 동일한 실시예에 따라, 다이어그램 230은 VEGFA 2 로커스에서 입력 유전체 DNA의 검출 적정법을 나타낸다. EDITED-Seq은 오프-타겟 수와 총 전위 파트너를 검출하는 포화 상태에 도달하기 위해 약 30,000~70,000개의 총 입력 세포가 필요하다. 이러한 결과는 EDITED-Seq이 인간 게놈에서 Cas 유도 DSB 간의 전위를 포착하여 현장에서 편집된 후 오프-타겟을 쉽고 민감하게 검출할 수 있음을 나타낸다.
실시예 11. EDITED-Seq과 DISCOVER-Seq 및 GUIDE-Seq의 비교
이제 도 3a를 참조하면, 본 예시적인 실시예에서 EDITED-Seq의 성능과 DISCOVER- Seq 및 GUIDE-Seq의 성능을 비교하였다. 벤 다이어그램(310)에 도시된 바와 같이, VEFGA 2 로커스에서 오프-타겟을 검출할 때 세 가지 방법(EDITED-Seq, GUIDE-Seq 및 DISCOVER-Seq)을 비교한 벤 다이어그램(310)이 도시되어 있다. 그 결과 EDITED-Seq, DISCOVER-Seq, GUIDE-Seq을 통해 각각 94개, 90개, 57개의 오프-타겟이 VEFGA 2 로커스에서 검출되어 EDITED-Seq이 더 많은 오프-타겟을 식별할 수 있음을 나타낸다. EDITED-Seq에 의해 확인된 GUIDE-Seq 또는 DISCOVER-Seq의 부위는 약 45.6%와 61.4%였다(도 3a). 반면, EDITED-Seq의 절반 이상(약 56.4%)의 사이트가 GUIDE-Seq 또는 DISCOVER-Seq에서 확인되지 않은 것으로 나타나, EDITED-Seq은 놀랍게도 한 번도 확인되지 않은 대부분의 고유한 오프-타겟을 식별할 수 있음을 알 수 있다. 따라서 EDITED-Seq은 가장 많은 고유한 오프-타겟을 보여 주었으며, 여기서 92.3%가 NGS 앰플리콘으로 확인되었다. EDITED-Seq에 의해 확인되지 않은 오프-타겟은 검출될 가능성이 거의 없거나 인델 빈도가 0.001% 미만인 것이었다(도 2a 및 도 2b).
이제 도 3b를 참조하면, 다이어그램 320은 도 3a의 동일한 예시적 실시예에 따른, EDITED-Seq, GUIDE-Seq 및 DISCOVER-Seq의 해당 스코어 값(예를 들어, 에스코어(Escore))에 기초하여 일반적으로 식별된 35개 부위의 순위 비교를 나타내었다. 여러 방법에서 일관된 순위를 보이는 최고 스코어를 받은 여러 사이트 외에, 대부분의 EDITED-Seq은 각각 DISCOVER-Seq 또는 GUIDE-Seq의 데이터 세트에서 동일한 수준에 있지 않았다.
이제 도 3c를 참조하면, 다이아그램 330은 도 3a의 동일한 예시적 실시예에 따른, GUIDE-Seq 및 DISCOVER-Seq에 비해, EDITED-Seq의 확인된(즉, 참) 및 누락된(즉, 거짓) 오프-타겟의 파라널 분포를 나타낸다. 앰플리콘 NGS로 발견한 인델이 있는 부위 중 전위에서 검출되지 않은 부위는 거의 없었다. EDITED- Seq은 앰플리콘 NGS(위음성)에 의해 검증된 실제 부위 수를 가장 적게 놓쳤다. GUIDE-Seq이 발견한 일부 높은 순위의 부위에서는 전위가 거의 발견되지 않았다. 이는 프로토스페이서 서열 컨텍스트가 두 DSB 말단 사이의 재조합을 촉발할 수 있다고 추정된다. 그 결과, 실제 오프-타겟에 대한 EDITED-Seq의 거짓 오프-타겟의 상대적 비율은 DISCOVER-Seq 또는 GUIDE-Seq의 동일한 비율보다 현저히 낮은 것으로 나타났다. EDITED-Seq은 거짓 오프-타겟의 비율이 현저히 낮기 때문에, DISCOVER-Seq 및 GUIDE-Seq에 비해 더 정확한 방법이다.
또한, DISCOVER-seq 및 GUIDE-seq에서 놓쳤지만 EDITED-seq에서 확인된 표적은 딥 앰플리콘 시퀀싱을 통해 확인되었다. 통합 게놈 뷰어의 6개의 예시적인 뷰어(Integrated Genome Viewer)는 낮은 수준의 삽입 및 삭제(도 3e 내지 도 3h 참조) 또는 전위(도 3i 참조)를 나타낸다.
또한, 전위에 대한 상세한 분석이 수행되었다. VEGFA 2 로커스를 표적으로 하는 CRISPR-Cas9의 온-타겟 부위에 대해 단 하나의 프라이머 세트만을 사용하여 8개의 오프-타겟 부위를 확인하였다(도 3j 참조). 간단히 설명하면, 도 3j에서 붉은색으로 표시되고 6번 염색체에 위치한 온-타겟 부위 VEGFA 2는 8개의 오프-타겟 부위와 전위를 형성하는 것으로 나타났다.
또한, 인실리코 예측 오프-타겟 부위에서 파생된 프라이머의 수를 증가하는 것을 이용하여 온-타겟과 오프-타겟 사이, 오프-타겟과 오프-타겟 사이 전위를 통해 점점 더 많은 수의 새로운 오프-타겟 부위를 검출하였다. 구체적으로, VEGFA2를 표적으로 하고 EDITED-seq을 사용했을 때 게놈 전체 오프-타겟 부위에 대한 포괄적인 식별을 도 3k 내지 도 3ad에 나타내었다. 데이터 분석에서 1~20개의 오프-타겟 부위(실리콘 내 예측에서)에 대한 숫자를 증가시켰을 때, 식별된 총 표적 부위의 수는 각각 23, 36, 43, 52, 54, 58, 61, 66, 68, 79, 81, 91, 93, 101, 107, 110, 113, 119, 122, 125 및 132개 로 나타났다.
실시예 12. EDITED-Seq을 사용한 iPSC 및 일차 세포에서의 오프-타겟 프로파일링
EDITED-Seq이 다양한 종류의 세포에서 다용도로 작용할 수 있는지 여부를 테스트하기 위해, 기능적으로 중요한 4개의 유전자 좌위, 즉 GAPDH, HBB, PD1 및 TRAC에 대해 각각 iPSC(실시예 6에 따라) 및 일차 세포(실시예 7에 따라)에서 유전자 편집을 수행하였다. 본 예시적인 실시예에서 EDITED-Seq에 사용되는 GAPDH, HBB, PD1 및 TRAC에 대한 고정 프라이머의 서열은 아래 표 3-6에 각각 표시되었다.
GA PDH용 고정된 프라이머의 서열
제1 PCR 프라이머 명칭 서열 제2 PCR 프라이머 명칭 서열
NoName1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTGGCATGACCCAGGTCCATAC NoName1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGTCCATACCAGGGCTGACC
NoName1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAAGAGTCTGGGTGAATCAGCAGTC NoName1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGTCAGGCAGGCGAGGAACA
NoName10_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGGGGCCAGCAGCAAGGT NoName10_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGTGAAGAATTTCATGCTGGCACAT
NoName11_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGAGTCAGGAGGCAGAGATCCTC NoName11_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCAAGACCCAGCGACCGACTCC
NoName12_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAAATCCCGTTGGCCCTCCTG NoName12_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTCCTGCTCAGCTGGCTCATGTC
NoName12_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGGCGTTGTGGGTCTGA NoName12_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTTAAAGATCCTCCGGCCACCATGTG
NoName13_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTAGGCCCCTCCCCTCT NoName13_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCCCTCCCCTCTTCAAGG
NoName13_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCAGGTGGTCTCCTCCGACT NoName13_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCAACAGCAACACCCACTCTTCC
NoName14_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGGGGAGATGCTCAGTGTGGT NoName14_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTGTGGTGGGGGCTGAGC
NoName14_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGAGCACAAGGTCGTCTCCTCT NoName14_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTCTGACTTTGACAGTGACACCCATT
NoName15_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGGCAGATGAATAAGGCTCACTCCT NoName15_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCTCACTCCTTCTCTTGTAGGTACT
NoName15_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCCCTACAGAGATAAACAGACGCACA NoName15_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGAGAGAGAGTAAGGTCAGGCATGTGG
NoName16_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCAGTTCTTTGGGTCCTCATCACAGT NoName16_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCATCACAGTTAATGTTGCAGCGGAA
NoName16_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCAACATACAGATGGGGTGGGA NoName16_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCTGGAGCTGTGGGGGCAA
NoName17_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGATGCTTAGCTTCCGTTGGGTT NoName17_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCTTAGCTTCCGTTGGGTTGATGAGG
NoName17_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTGGGCACGGTGGACAGC NoName17_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCACGGTGGACAGCAGTGCA
NoName18_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTCTTCAAGTGGTCTGCATGGAA NoName18_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCATGGAAACTGTGAGGAGGGGAGT
NoName18_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGTGGTCTCCTCCGATTTCAACA NoName18_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGTGACACCCCCTCCTCCA
NoName19_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTGCGGGGAGGGGAGATTCT NoName19_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGGAACTGGACACGTCAGGGA
NoName19_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCTACCTCACCGCCAATGTTT NoName19_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACTTTGGTGGGCGTATAAGCAGTTT
NoName2_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGAGGAGGGGAGAGTCTCAGTGTT NoName2_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGGGAGAGTCTCAGTGTTGTGGAG
NoName2_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACTTTAACAGCATCACCCACTCTTCC NoName2_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCTACAGCAACAGGGTAGTAGACC
NoName20_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTTCCTGTATTGCTTTTGCCTTGAGC NoName20_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGCCTTGAGCTTCTTACCCCAGTGAG
NoName20_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGAGCCTGGACCACTAAGTCAC NoName20_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTTCCAACCAAGGTACCTGTATTGGAC
NoName21_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCGTGGAGGTGAGCTCATGTAG NoName21_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCTGCTCACTGGAGAAGTTTTCCG
NoName21_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGCGCTCAGTAGGTGTGC NoName21_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCGCTCAGTAGGTGTGCAAGCAG
NoName22_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTGTGGGCCATCTTCAAGTTCAGTCC NoName22_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCTCATTTCTGGACCTAGGCTGATGG
NoName22_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAAAAACCTCCACCCTTATGAAGCCT NoName22_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCCACCCTTATGAAGCCTCCTTCTAG
NoName23_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCTCTGCTGTGTGCTGTCCAC NoName23_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTCCACTCACAGGGGTAGAACATGTT
NoName23_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCCCCTCCCTCTCCAGGA NoName23_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGTGGGGGACTGAGTGTGAC
NoName24_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGATGCTGGGGCTGGCACT NoName24_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCAACAGGGTGGTGGAACTCATGT
NoName24_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACTGTGTCCAGGGGAGATTCTCA NoName24_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCAGTGTGGTAAGGGACTGAGTGCGT
NoName25_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACTTACGCTTAGGTGTGATTTGCGAA NoName25_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACACATTGCTGCCATGATCTGTCGTA
NoName26_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCAGGCAAGGCTGAATGGAAGCG NoName26_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCTGAATGGAAGCGAGTGAAGTGAGC
NoName26_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTGGGGAAGGGCCATTCA NoName26_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGCCATTCACCCTTGATATCATCA
NoName27_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGAGACGGTGCAGGAGCTC NoName27_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTGAGCAGCGGGGAGGCT
NoName27_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGGACCCTCCTCACGGGATAC NoName27_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACCCAGCTTTCAGCCAGACC
NoName28_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGTGTGGTGGGGGACTGAGC NoName28_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTGGGGGACTGAGCATGGCA
NoName28_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGATGCTGGGGCTGCCATTG NoName28_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCTGCCATTGCCCTCAGT
NoName29_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTCCTCACCACCCCCAAGG NoName29_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGTGGGGGCACAGTCCTG
NoName29_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCCAAAGTCCGCCCCAAG NoName29_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCAAAGTCCGCCCCAAGGTCAAAA
NoName3_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGAGGCCCCAGGAACTTTCA NoName3_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGAGGAGAACGAGGCATGTCTTAC
NoName3_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTCGGGAGGTGGGTAGTGT NoName3_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTCGGGAGGTGGGTAGTGTATGGTT
NoName30_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGACCAGCTTGTTGAGGACCCTA NoName30_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCAGCTTGTTGAGGACCCTAAAGGCT
NoName30_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGAGCCTCATCAGTTGACCCCAA NoName30_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTTGACCCCAATGTCCTGCATGTACTA
NoName31_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGGTGCAGCCTGGAGAGA NoName31_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGAGAGAGCTGGGTTGGCTGACAGA
NoName31_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCTTTGCTGGGGTAACAGGACAC NoName31_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGTAACAGGACACATTGGCTGGGA
NoName32_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGAAACTATGAAACTACCAGGAGAAGT NoName32_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCAGGAGAAGTTTCCAGTGGGA
NoName33_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGTTCAAAGCATCATCTGTGAATCAA NoName33_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGCATCATCTGTGAATCAAAAGTTTT
NoName33_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCTGAGGCCAGCAAAACCTTGA NoName33_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCCAGCAAAACCTTGACATGTAAAC
NoName34_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACTGACACCTGGAGGCCTGA NoName34_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACCTGGAGGCCTGACTTGCAG
NoName34_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTGGAGGGTGTATGCGTGCT NoName34_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGGTGTATGCGTGCTCTCTGA
NoName35_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTGGGGTTGGCGTCACCT NoName35_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCGTCACCTTGAACGACCACTTTGT
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NoName4_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCGTGCACAGGGGACAGAAGC NoName4_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACAGGGGACAGAAGCCATGGG
NoName4_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCAGGAGCTACGCCTCTG NoName4_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTACGCCTCTGCCCCATACACG
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NoName40_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCATGACGAGGTCAGGCTCCCTAGGC NoName40_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCTAGGCCCCTCCGTCTTCAG
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GAPDH_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGGGGTCTACATGGCAACTGTG GAPDH_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGAGGAGGGGAGATTCAGTGTGGT
HBB용 고정 프라이머 서열
제1 PCR 프라이머 명칭 서열 제2 PCR 프라이머 명칭 서열
NoName10_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGGTGTGACTCCTTTCCCAGATCA NoName10_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTGACTCCTTTCCCAGATCAGATAGC
NoName10_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGAAGTCCTGGGTATGGAGGCTTTG NoName10_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTGGGTATGGAGGCTTTGGCATTC
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NoName12_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCAAGGGTAACACCTGAGAAGGT NoName12_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTGTGGGGTAAGGGGAGCTG
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NoName18_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCTCTGGAGTCCCATCATCAC NoName18_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTATCACCATCTGGCATCCCTTCAC
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NoName39_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCCCGGCAATCGTTTTCTAGGG NoName39_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCAATCGTTTTCTAGGGCACGACTTA
NoName39_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACCCCCAGGTCAGCAAGC NoName39_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTCAGCAAGCACTTGATCAGAGCATT
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NoName40_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAATGCAGAGGCCAGGACACC NoName40_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCCAGGACACCACCATCCC
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NoName44_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGTGGCTCAGAAGTGGTTCC NoName44_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCTCAGAAGTGGTTCCAGCCAAG
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NoName48_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGGGCTGATATGGGTCAACC NoName48_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAACTGGGTTGCCATGAATCTGCTG
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NoName7_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCTAGTCTTTCCAGGCCACCCT NoName7_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCACCCTCTCCGAGCCACCT
NoName7_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTGGCAAGCACTCCTCAATGGC NoName7_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCAGCTTACAGGCAGGGCTGT
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OT1-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTTTCCCGTTCTCCACCCAA OT1-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCGTTCTCCACCCAATAGCTATGG
OT1-NC_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCAGTATGTCCAACTCCCAAATTG OT1-NC_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCCAACTCCCAAATTGAAAGCACAGC
OT2-NC_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACACAGGTTTTCTCCTCTCAGCCTA OT2-NC_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTTCCCTTCCCTAGACCTGCCT
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HBB_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCAGGGCTGGGCATAAAAGTCAG HBB_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTTCACTAGCAACCTCAAACAGACACC
PD1용 고정 프라이머 서열
제1 PCR 프라이머 명칭 서열 제2 PCR 프라이머 명칭 서열
NoName1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGGGCTGAGAGCTAGCTTTATGTGA NoName1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCAGTCACCACACTGGGTAACTCCT
NoName1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGGAGGCAGGGACGTGAAAC NoName1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTGAAACGCTGGGGTGCAATTTC
NoName10_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGGTGACTCCCTGGCTTTGC NoName10_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCCTCTTCCCCCAAGCTGGCTT
NoName10_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGATCTGAGGGGCTTGGCAGA NoName10_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCAGAGAGGCACCCCAA
NoName11_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCACATGTGGTACGTCTGGTCCAGT NoName11_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCGTCTGGTCCAGTCAGCCTTGC
NoName11_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACGACGGGTGTGTGGGTGA NoName11_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCGGGTGTGTGGGTGACAAGCG
NoName12_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCAGCTGGGGCGACATAGTGA NoName12_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGGAGTTAATGTAAGGGAGGCAACA
NoName12_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGTAACTGTAATATAGAGCCCACCA NoName12_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGAGCCCACCACTCAGCTTT
NoName14_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGGAGGGACAGGTTGTGAG NoName14_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGGGCTTGGAGTTAAGGGGCCTA
NoName14_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGAATCACCAACTGCCAAACACGTG NoName14_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCAACTGCCAAACACGTGAATGAGGT
NoName15_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCCCCCAGTGAATCACCAATTG NoName15_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTATGAGGTCATCTGAGGCCATCCC
NoName16_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCAGAATCAAGCCAGAGCATGC NoName16_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGCCAGAGCATGCCAAGCA
NoName16_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGAGGTGAGGGCGAGCTAGA NoName16_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCGAGCTAGAGTAGAAGGTGCCCCAT
NoName17_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGCCAGTGATCTTTCCTTTCCCTCTG NoName17_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTCTGATGTGTCGATGCCAGCCTT
NoName17_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCAACAGTCGGTGTCCTGATGGT NoName17_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGTCGGTGTCCTGATGGTAGAAAAC
NoName18_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCCTGTGCCATGACCTTCACAC NoName18_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGCCAGTGATGAAAGGTGCCTCAA
NoName18_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCATGGGGAGGCGGCAGTGA NoName18_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGCACAGGAGAGGGCCTCTG
NoName19_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGGCTGGGCAGTCACTC NoName19_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCCCCCAGCTCCCAAATCAATCAA
NoName19_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCAGACTGCGGGTATGAGAGG NoName19_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCAGCCTTTCCTTTTCACAGATG
NoName2_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCTCCGACGCTCCACAG NoName2_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCGACGCTCCACAGCCTGTC
NoName2_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCCTAGCGGCCCAGGCT NoName2_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCGGCCCAGGCTCGGACTG
NoName20_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCAGGCTCTAGCAGTCCCAGTA NoName20_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGCTCTAGCAGTCCCAGTAATAAGT
NoName20_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCATGGTGAAGAAAGAATGCTAC NoName20_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTATGCTACACATACTTCACCTTAAGGG
NoName21_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGGTTCTTGCTTAGAGGCATGATGAC NoName21_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCAACTGTGGAGACTGACTGGCT
NoName21_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCCCATGCTGTTCTTATAGCGGTA NoName21_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGAGCCATACCTGAGAAGGAGA
NoName22_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGTGCATACTCAGCTACTGTGCTCTA NoName22_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGAGCTTGAGGATCTGTCAGGCAA
NoName22_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGCAGATGATCTGGCTGATGGAC NoName22_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTATGATCTGGCTGATGGACCAAACATC
NoName23_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCAGATTCCCTGCTCAGCAAAGTA NoName23_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACAGCGGCTGTTGCTCTTCC
NoName23_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCAACCACTGTGTAATAAGCCGCTTGT NoName23_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCGCTTGTACAACGGTCTTTCCTCAA
NoName24_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCTAAACTTGGCACTGGCTTTCAC NoName24_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTATTTGCAGCTTCCTCTACACTTCCTG
NoName25_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAAACCCCACACACCACACGTAT NoName25_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCACACCACACACGTCACAGAAACC
NoName25_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGGCTCCTGAGGGTGGA NoName25_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGAAGGGGTGGGAGGCCAA
NoName26_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGTCTGCAGTCACCTGTCCAC NoName26_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCACCTGTCCACTCACAGCAC
NoName26_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCACTCCCAGGCGCTCGAGTT NoName26_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCGCTCGAGTTACAGGGCCACT
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NoName28_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTTAACCTTCTTAGTAGCCAGGGAAT NoName28_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGCATTACACAACCCCTAGAAAGTC
NoName28_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGCACATATTCCACGTGGGCATA NoName28_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCACTGTGTCATATTGCCTGCATGTCT
NoName29_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCACAGACATCAGAGCAGACACA NoName29_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCCCAGCCCTAGTCCACA
NoName29_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACACCTGGTGAGGGCAACTG NoName29_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTGAGGGCAACTGACAAAAGCAATT
NoName3_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGAGGCCAGGTCCTACATTGAGC NoName3_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCCAGGTCCTACATTGAGCAATCAT
NoName3_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCTTTCTGTCAGAGGCAATGGT NoName3_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCAATGGTGTCCACTTTGGA
NoName30_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCTGTCTGCCACCTGTTGTC NoName30_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTGTCTGCCACCTGTTGTCATTAAC
NoName30_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCCTCTTCTCAATCCCAGTGC NoName30_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTCTTCTCAATCCCAGTGCCTACTC
NoName31_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCATCCCTGACAGCAATGACTCACTC NoName31_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTGACAGCAATGACTCACTCCCCTTG
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NoName32_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTGGACCTCCCCTGCGTGA NoName32_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACCTCCCCTGCGTGAAACTGTTCTA
NoName32_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACTATGTGGACTGTGGGACTCTATGA NoName32_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGGACTGTGGGACTCTATGAATGTGG
NoName33_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTTCAAAGGGGAATGTACTACCGT NoName33_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGGGAATGTACTACCGTCACTTT
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NoName34_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCTAGGCCCTGGAGATGCTAC NoName34_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCAGGGATCAGGCCAGGTAAAACA
NoName35_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGTCCAGCGTTTGAATCAGATCATGG NoName35_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCATGGAAGATGGCTCTAGAGGAAGCT
NoName35_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCGTGGGCACTGAGAGCACCA NoName35_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGGGCACTGAGAGCACCATCATGG
NoName36_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGATTGCAGGGTATCCACGTCTAAAT NoName36_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTATGCATGAAGGCCAGCACAATGGG
NoName37_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGTGTGTCTCACGTGGTGGGT NoName37_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCACGTGGTGGGTGATTTTTATTCCAG
NoName37_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCTGGAATACCCTTTGTAGTTGGG NoName37_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGGGCTGCCTGTGTGTTA
NoName38_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCAAGGCGTGGCTGGTG NoName38_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCATGGGCAAGAGCATGCTGGTA
NoName38_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCCAGTGCCCTATCAGAGTAATTCCT NoName38_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCATAGCTTCTTTGCTGGCCGACCA
NoName39_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGAGGATGTAAGTAGCGCTTGTGAACA NoName39_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCACAGCCCCAGGTCCTTTGCG
NoName39_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGGAGACAGCGTAAGTGTCCCT NoName39_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGTGTCCCTGTCCTCACGCT
NoName4_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCAATAAACACTGCCTAGAGCCTAT NoName4_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCACTGCCTAGAGCCTATATTGCAAAG
NoName40_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCCTTAAAAATTGCTGCGCAGT NoName40_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTTAAAAATTGCTGCGCAGTGGCTGT
NoName41_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGCTCAAGACAGGCCAAGGAC NoName41_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCTCAAGACAGGCCAAGGACTTAGAA
NoName41_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCTTTTCTACTGGGCCTCCACCT NoName41_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCTGCTCCCTTCCCCTCCAC
NoName42_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCTTCCTTAGCCTGAGGTCACTAAAA NoName42_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGAGGTCACTAAAAATGGCCAGTCTGC
NoName42_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAATCCAACCTAATAAGCACAGGCACT NoName42_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACTGAGTGCTGGCATCAGGATTC
NoName43_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCCTAGGCTTCTTTCCTCTCCCA NoName43_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCAGTAGCCTGTAGTCAGAAAGAGTG
NoName43_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGGCCACTGAGACTCCTCT NoName43_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTCCTCTTAGGACAACCGACCATCCT
NoName44_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACCTTTGGAACGATGGGGGTATTTT NoName44_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACCTCTTGTTTCTCAAAACGCTGTCG
NoName44_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTGGAGCATCGACGAGGGTGA NoName44_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCATCGACGAGGGTGAGCGCATG
NoName45_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGAGCATCGACGAGGGTGAG NoName45_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCGACGAGGGTGAGCGCATG
NoName46_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCCTGCATTCATTCGTCCACAATAC NoName46_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCCTGGGCTTGGCATGAA
NoName46_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGATGCTGAGAGTTTACCCCCTCTAC NoName46_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCCCTCTACCTCCCACCTT
NoName47_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTTTTCTCCCCAAACGTGAGAAGA NoName47_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCCCCAAACGTGAGAAGAAAAGAGA
NoName48_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACTGTTGGGGTGACTAACTGT NoName48_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGACTAACTGTCATGGTTTTCCCACG
NoName48_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTGCTAACAGTGGTGAGTTGTAATA NoName48_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAACAGTGGTGAGTTGTAATACTAGCT
NoName49_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGTTCCTGATCCGGCTCTGGA NoName49_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCCGGCTCTGGATTTGTGCACAG
NoName50_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCGAGAGGCTCCAGGACCATGACT NoName50_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCGCTGCACGGCCTCCAC
NoName50_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGCTGGCGGGGTGGGAA NoName50_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGTGGGAAGGGAGGGTCAG
NoName51_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGTGCTGGCTGAATTAATAGGAGGCA NoName51_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAATAGGAGGCACATCTCATCCATTGC
NoName51_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCAAGGTCTTTCAACTTGGGCCAGAT NoName51_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGAGCACTGCAGGACGTTCAGCA
NoName52_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTTGGGTCCTGTCCTGGCA NoName52_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGCTATGAGCTGCCCCTGGGT
NoName52_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCGGGGTTCACTGGCCCAGA NoName52_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTTCACTGGCCCAGAGCTGTGC
NoName6_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAAGGGAGCGGGGATTATGGC NoName6_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGACCAGGGTCATGACTAGCTAAA
NoName6_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGATCATGCACCCCGTCCTGAC NoName6_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTCCTGACCCTGACGCTGCAC
NoName7_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCAGACCTGCCGTGGACCTT NoName7_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCGTGGACCTTGGCTTCC
NoName7_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCCGGCGCTAAGAGCAG NoName7_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCGCTAAGAGCAGCTGACC
NoName8_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCCTGGATCCCACCCTTGC NoName8_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTGTGGCACAGTGAGGGGTGT
NoName8_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTGGTCCCGCCGCAGCCT NoName8_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCGCCGCAGCCTCGCAGA
NoName9_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCCCTGGCTATTTGCAAACTGCAT NoName9_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTATGCTGTCCCAGTTCTCTCACCACT
NoName9_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACAGAGATGCAGATAGCCAGGTTAGA NoName9_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCAGGGATAGGTGAGCTTCAAA
PD1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGTGGAAGGTCCCTCCAG PD1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCTGGCTCTGGGACACCT
PD1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGTGGAGAAGGCGGCACTC PD1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACTCTGGTGGGGCTGCTCCA
TRAC용 고정 프라이머 서열
제1 PCR 프라이머 명칭 서열 제2 PCR 프라이머 명칭 서열
NoName1_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAAGTAGGGCTCAGGGTCGAAGG NoName1_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCTCAGGGTCGAAGGCTCACT
NoName1_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCAATGGCCGCTGGGAAAAAT NoName1_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCAAACCATCGGGGGAAAAATGACAA
NoName10_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTATCATTGTAGATGGGGCCGGAAA NoName10_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTAGATGGGGCCGGAAAGTAGAAAAG
NoName10_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCCACTGCCACTGTAGCCT NoName10_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCAGCTCCAAGTCCATCTGG
NoName12_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCAACTCCAGGGCTCAAGCAATCG NoName12_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCTACCAAGCCCCACCCT
NoName12_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCAGACATTTGACCACCCTATACCC NoName12_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCACCCTATACCCACCATACTCACGTT
NoName13_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCAGTAGGGAAGGGGCAACT NoName13_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGGAAGGGGCAACTTTTCAAAATCT
NoName13_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGTCTTTCTCTGGCACCAAGCTTTTG NoName13_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCACCAAGCTTTTGTGATGCTCCAAC
NoName14_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGGCACCTGCAGGAAACGGT NoName14_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCACCTGCAGGAAACGGTTGCGTTC
NoName14_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTGGGCCACCTGGTGTCG NoName14_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCTGGGCCGCCTGATCTACC
NoName15_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTTGGGCCAGTCACTGCA NoName15_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCAGTCACTGCAGCTCTCT
NoName15_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGACCACATGTCCACCGTTCAG NoName15_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACATGTCCACCGTTCAGACACAGC
NoName16_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCTTGGGAGGCTGGTACTACTG NoName16_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGAGGCTGGTACTACTGGGCATC
NoName16_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCAGACACTGCTTCCCTGGTA NoName16_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGACACTGCTTCCCTGGTAATGGAC
NoName17_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTCCTCCTGCCAGGGTGCA NoName17_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTGCCAGGGTGCAAGAACT
NoName18_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGTACCATGAATGTTGTGGCGCAT NoName18_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCATGAATGTTGTGGCGCATTTTCAT
NoName18_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGTCTGGGTCAAGTGCTGTGG NoName18_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGCTGTGGGCTCCTTTGCTT
NoName19_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGAACAAAGGACCTACATGTGGCT NoName19_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCAAAGGACCTACATGTGGCTCCAATT
NoName2_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACATAAGCGAAGGATCAGGAGAGT NoName2_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCGAAGGATCAGGAGAGTACTATTAG
NoName20_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCTAGAGAACATCCGGCAATGCC NoName20_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGGGTGGGAGAGTGCTACT
NoName21_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTTAGGCCAAACATCCTTGACCATA NoName21_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGTATGTTGGTTATGCGGGAAGAGAC
NoName21_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCCCCAAAGTCTAAGGAGGCTAAGA NoName21_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGGATTTCCAAAGAGAAGCCCTAGTC
NoName22_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTGAAAAACGGATGAGACTTCAG NoName22_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACGGATGAGACTTCAGTGAGTAC
NoName23_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCATTGTGCTTCAGATCCCGTGACAT NoName23_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGCTTCAGATCCCGTGACATCAGTGT
NoName24_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGTGGGGACTTGCTGCTGGT NoName24_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGTGGGGACTTGCTGCTGGTATCTAC
NoName24_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGCTCTGCTACATTCAGGTAACAT NoName24_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCTACATTCAGGTAACATGTTTCTGC
NoName25_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCCCTCTTTAGCATCGCCAAATCC NoName25_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCAAATCCTCCCAGGTGCA
NoName25_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTGGTGGCCACAACTTAGGTGAGA NoName25_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGCCACAACTTAGGTGAGAGTGACGA
NoName26_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCAGGTGTTGCTCATCAGTTCCTCT NoName26_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTCTGAACTAAGTGGGAGTTTGGC
NoName26_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCATCACTTTCTCAAGGGACATGCCAT NoName26_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTGCCATTTCTCTAATCAAGGGGTGTG
NoName27_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGTCTCACAACTCCCAGTCTTGCTTTA NoName27_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTCCCAGTCTTGCTTTATACTGTGCCT
NoName27_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAACTGGGCTCGTTGGTTACCCT NoName27_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTGGGCTCGTTGGTTACCCTATTCCT
NoName28_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTTTGGTTTGGTTGCTTTGCAGACTAC NoName28_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGAGGAGCTACCAGGGCCCTA
NoName3_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTTTTCTGCTGTCACCCTCAAGGAT NoName3_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACCTCATCATTTCTCAGGCGAAAGG
NoName3_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGAGTGAATGCATGATTGTGTGACCGA NoName3_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCATGATTGTGTGACCGAATGCCTCA
NoName30_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGCTAGTGTCGAGGTTTGCA NoName30_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGTTTGCACCATAGAAAGCTGAG
NoName30_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGTGGAGAAAGTGCTAAACAAGAAAA NoName30_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGTAAACCAGAACTATCTTTCTCTCC
NoName31_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCTCCAGAGTCTATGCTCAACTGAA NoName31_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGAACTTGAAATGCTTACAGCCAGAAT
NoName32_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCATGGCCATAAGTTGAAATTTGCGT NoName32_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCATAAGTTGAAATTTGCGTTTCGGT
NoName33_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGGACCTCAGGTGCTGCTT NoName33_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCTCAGGTGCTGCTTCCTCAA
NoName33_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGATTCAATCTTACATGCGACAGCCT NoName33_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCATGCGACAGCCTGATCCGTTTCT
NoName34_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGAGAAGCCTGTCAGGACCAT NoName34_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCTGTCAGGACCATACAAATCTTAC
NoName34_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCACCGTCTACTTCTCTTGTGTG NoName34_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTTCTCTTGTGTGATCCAGAGTTGACA
NoName35_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCACATGCAAATGAACGACACTGAC NoName35_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAACGACACTGACAGAAAACACTCACG
NoName36_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCAGCAATTTGGTCCCCCATGG NoName36_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGCAATTTGGTCCCCCATGGAGAGAC
NoName36_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCAGACCGTGACTCAGTATGTTG NoName36_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAAAACTTGACTGTTCATTGGGTTCAA
NoName37_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCAGGCCCCTGTCTCTACCATCC NoName37_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCCTGTCTCTACCATCCTAGACACC
NoName37_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGTGGAGAAGGCAGCCTCCCAA NoName37_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGAAGGCAGCCTCCCAAAGCACT
NoName38_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGCCTGGAGTGGTGTCTGGT NoName38_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCTGGAGTGGTGTCTGGTACAATGA
NoName38_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCACAGACCTCAGAGCCCAGTCC NoName38_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGTCCCTGGCCTTAAAGAAATGACAGA
NoName39_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGCACACAGCCAACAAGATGACTCA NoName39_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGCCTTGATTACTGTTCCCACTAGC
NoName39_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCCCTGTTTTTACCTCAACCTTAGGG NoName39_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGGGCTTCCTTGCTTTGGTTACTGT
NoName4_m1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTCACTGCTGCCCCCACAAG NoName4_m2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCACTGCTGCCCCCACAAGCTTAAC
NoName4_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCGGCCAGGCCGGAGTCAGG NoName4_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCGGAGTCAGGGGCATC
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NoName40_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCTGGAACTGTGGGCATAAGCATATGTC NoName40_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCCCATACCCCACTCCCACTACT
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TRAC_p1 CCCCTTAGGGATAACAGGGTAATCCCTGCGAAGGCACCAAAGC TRAC_p2 GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCTGTTGTTGAAGGCGTTTGCA
이제 도 4c 및 도 4d를 참조한다. 도 4c의 차트 411 및 차트 412는 각각 GAPDH 및 HBB 부위에서 실시예 6의 iPSC의 오프-타겟을 나타낸다. 도 4d의 차트 421 및 차트 422는 각각 TRAC 및 PD-1 부위에서 실시예 6의 T 세포 내의 오프-타겟을 나타낸다. 차트 411, 412, 421 및 422에 표시된 바와 같이, 융합 검출을 통해 오프-타겟으로 확인된 부위는 10~26개였으며, 여기서 10~40%는 인델 검출을 통해서도 확인되었다. 또한 여러 부위는 인델 빈도가 0.1% 미만으로 검증되었지만 전위는 여전히 검출할 수 있었다. 일반적으로 차트 412(도 4c)에 표시된 바와 같이, 융합 파트너가 없는 HBB 로커스를 제외하고는 온-타겟이 7~20%의 유전자 융합을 차지하였다. 이는 DSB 말단에 인접한 서열 컨텍스트가 전위 빈도에 영향을 줄 수 있음을 나타낸다.
실시예 13. 생체 내 오프-타겟 프로파일링 및 전위 역학
실시예 7에 따라 편집된 CRISPR-edited 마우스에서 오프-타겟을 스캔하기 위해 EDITED-Seq을 추가로 사용하였다. 도 5b 및 도 5c를 참조하면, 차트 520 및 530은 각각 15일 또는 60일 후 ALB 부위에서 마우스의 오프-타겟을 나타낸다.
실시예 14. 결과 요약
요약하면, 상기 결과는 EDITED-Seq이 여러 인실리코 예측 게놈 유전자좌의 고정된 멀티플렉스 농축을 사용하여 모든 유형의 오프-타겟 이벤트를 캡처할 수 있음을 나타낸다. 인간의 종양, 면역 및 유도 만능성 줄기세포와 마우스 생체 내 실험을 사용하여 본 발명에서 EDITED-Seq은 새로운(전위) 오프-타겟 부위를 식별하고 공지된 오프-타겟 부위(InDels)의 편집 효율성을 정량화할 수 있으며 별도의 세포 조작없이도 치료법 파이프 라인과 호환이 가능하다는 것을 나타내었다. 세포 유형과 게놈 맥락에 따라 전위 빈도가 다르긴 했지만, InDels에 의해 확인된 대부분의 오프-타겟 부위(약 90%)도 EDITED-Seq에 의해 전위된 형태로 나타났다. 또한, DISCOVER-Seq 또는 GUIDE-Seq과 같은 기존의 다른 방법으로는 이전에 발견되지 않았던 새로운 오프-타겟 부위가 30~60% 정도 발견되었다. 본 발명은 EDITED-Seq이 CRISPR 편집 효율성 및 오프-타겟 이벤트를 검출하고 평가하는 데 민감하고 다양한 방법이며 향후 다양한 유전적 질환에 대한 CRISPR 기반 유전자 치료에 호환될 수 있음을 입증한다.
실시예 15. 논의
Cas9에 의해 생성된 유전체 내의 DSB는 DNA 복구 경로를 활성화시킬 수 있으며, 따라서 온-타겟, 오프-타겟 및 배경: 불변, 돌연변이 (삽입/삭제 (인델) 및 염기 돌연변이) 및 염기 돌연변이) 및 변위를 포함하는 다양한 유형의 이중 가닥 단절(DSB) 사이에 세 가지 주요 종류의 밀봉된 DNA 가닥이 형성된다. 단일 프로토스페이서 RNA에 의해 유도되는 Cas9은 원칙적으로 이배체 인간 세포에서 온-타겟 유전자좌에 두 개의 DSB만을 만들 수 있다. 다른 원치 않는 절단이 없다면 유전자 융합을 검출하지 못할 가능성이 높다. 이러한 관점에서, 원하지 않는 절단 부위(즉, 오프-타겟)에서 유전자 융합 또는 염색체 배열을 관찰할 수 있다. 전술한 예시적인 실시예에서, 오프-타겟의 검출에 있어서 EDITED-Seq, DISCOVER-Seq 및 GUIDE-Seq의 성능을 비교하였다.
GUIDE-Seq은 유전체 내 CRISPR 편집 부위에 dsODN 삽입을 생성하기 위해 습식 실험실 과정에서 추가적인 이중가닥 올리고뉴클레오티드(dsODN)를 필요로 하며, 이는 생체 내 편집 상황과 호환되지 않으며 생체 외 편집 상황에서는 원하지 않는 추가 단계이다. ODN 삽입된 게놈은 실제로 뉴클레아제에 의해 생성된 편집된 자연 상태가 아닌 인공물 게놈 유도체이다.
DISCOVER-Seq은 발병 이중 가닥 절단(DSB) 복구의 핵심 포함 요소 중 하나인 MER11의 중간 상태를 스냅샷으로 촬영하여 DSB 말단에 결합하여 Cas9에 의해 생성된 게놈 전체 절단 병변을 캡처한다. 따라서 DISCOVER-Seq의 민감도와 특이도는 MER11 항체의 품질에 크게 좌우되며, 앰플리콘 차세대 시퀀싱(NGS)을 통해 검증을 수행해야 하는 경우 결과의 제어할 수 없는 변동과 시간이 많이 소요되는 절차를 의미한다.
위의 두 가지 방법과 달리, EDITED-Seq은 게놈 편집 뉴클레아제에 의해 유도되는 돌연변이 유발(예를 들어, 돌연변이 및 전위) 진행 중에 어떠한 인위적인 교란 없이 게놈 전체 현장에 편집된 오프-타겟을 검출하는 다용도 접근법이다. 유전자 전위/배열은 뉴클레아제에 의한 돌연변이 유발의 작은 부분을 차지할 뿐이므로 잠재적으로 EDITED-Seq의 민감도를 제한할 수 있다는 우려가 있을 수 있다. 두 단계는 이러한 잠재적 제한을 크게 개선할 수 있다. 비록 전위 빈도는 세포 종류와 유전체 맥락에 따라 다르지만, InDels에 의해 확인된 대부분의 오프-타겟 부위(약 90%)도 EDITED-Seq에 의해 전위의 형태로 나타났다.
DSB를 복구하는 것과 복구 후 사이에는 오프-타겟 결과에 상당한 차이가 있다. DISCOVER-Seq에 의해 확인된 일부 부위는 실제로 최종 돌연변이 유발 편집이 거의 나타나지 않았으며(도 2a 및 도 2b), 이는 구분된 오프-타겟 부위에서 편향된 DSB 복구 수준을 나타낸다. EDITED-Seq은 DSB 복구 후 서열이 변경된 오프-타겟을 직접 판독할 수 있으며, 유전자 편집 시 가장 중요한 관심사는 Cas-뉴클레아제에 의해 절단되거나 결합되는 로커스가 아니라 생검 풀에서 얼마나 많은 유전자좌와 유전체가 변경되었는지에 대한 것이므로 임상적으로 유용한 접근법이다. 이러한 관점에서 EDITED-Seq은 전체 게놈 시퀀싱과 달리 경제적이고 간단한 방식으로 CRISPR에 의해 유도된 현장 염기서열 교체의 게놈 전체에 대한 진실한 정보를 제공한다. iPSC 및 생체 내에서 EDITED-Seq의 성능은 임상 유전자 치료 바이오 제품을 위한 병행 품질 관리 단계로서 그 적용 범위를 더욱 확장한다.
따라서, 본 발명의 예시적인 실시예는 충분히 설명되었다. 비록 설명이 특정 실시예를 언급하였지만, 당업자에게는 본 발명이 이러한 특정 세부 사항의 변형으로 실시될 수 있음이 명백할 것이다. 한 도면에서 논의된 방법/단계는 다른 도면의 방법/단계에 추가되거나 다른 도면의 방법/단계와 교환될 수 있다. 따라서, 본 발명은 본 명세서에 개시된 실시예에 한정되는 것으로 해석되어서는 안 된다.
SEQUENCE LISTING <110> GENEDITBIO LIMITED <120> METHODS OF ENRICHING TARGETED NUCLEIC ACID, IDENTIFYING OFF-TARGET AND EVALUATING GENE EDITING EFFICIENCY <130> 61821-701.601 <140> PCT/IB2022/000278 <141> 2022-05-16 <150> 63/277,782 <151> 2021-11-10 <150> 63/201,861 <151> 2021-05-16 <160> 1136 <170> PatentIn version 3.5 <210> 1 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1 caccggaccc cctccacccc gcctc 25 <210> 2 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 2 aaacgaggcg gggtggaggg ggtcc 25 <210> 3 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 3 caccgcttgc cccacagggc agtaa 25 <210> 4 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 4 aaacttactg ccctgtgggg caagc 25 <210> 5 <211> 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Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 15 ccccttaggg ataacagggt aatccaactg ccatatgccc tgggt 45 <210> 16 <211> 42 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 16 ccccttaggg ataacagggt aatccggcgg gtgggtcaca aa 42 <210> 17 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 17 ccccttaggg ataacagggt aatccacagg acagggtcag cgt 43 <210> 18 <211> 50 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 18 ccccttaggg ataacagggt aatcggcccc tacaatacta tcttgaccct 50 <210> 19 <211> 47 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 19 ccccttaggg ataacagggt aatctgagag acagggtctt gctgttg 47 <210> 20 <211> 46 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide 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Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 36 ccccttaggg ataacagggt aatcgccgtg gcccgacacc ta 42 <210> 37 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 37 ccccttaggg ataacagggt aatctaagaa gggccccttg atgaggtc 48 <210> 38 <211> 46 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 38 ccccttaggg ataacagggt aatcgggaga ggtgggtcaa ctttgg 46 <210> 39 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 39 ccccttaggg ataacagggt aatcgagggt gggcgtggct atgta 45 <210> 40 <211> 46 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 40 ccccttaggg ataacagggt aatcatgaag ctggactgca ccatcg 46 <210> 41 <211> 42 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic 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Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 57 ccccttaggg ataacagggt aatcgctggg cctgcacgct ca 42 <210> 58 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 58 ccccttaggg ataacagggt aatcgacagc caccctgctc cac 43 <210> 59 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 59 ccccttaggg ataacagggt aatccctagc aacggccctg gca 43 <210> 60 <211> 44 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 60 ccccttaggg ataacagggt aatcccctac cctgccgcgc tcct 44 <210> 61 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 61 ccccttaggg ataacagggt aatcggcacc tcattgggga cgt 43 <210> 62 <211> 44 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic 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Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 135 ccccttaggg ataacagggt aatctgcctg tgtccggagc tgt 43 <210> 136 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 136 ccccttaggg ataacagggt aatccctacc ggggcaagac agc 43 <210> 137 <211> 50 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 137 ccccttaggg ataacagggt aatctggtga caactaccac tctagaattt 50 <210> 138 <211> 49 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 138 ccccttaggg ataacagggt aatctgtcct aaaacccctg cttggattt 49 <210> 139 <211> 46 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 139 ccccttaggg ataacagggt aatctgcgga acacaggagc tagtct 46 <210> 140 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 140 ccccttaggg ataacagggt aatctcagta gctccccaac gttactgt 48 <210> 141 <211> 47 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 141 ccccttaggg ataacagggt aatcctgtct cccaaaatca ggcctgt 47 <210> 142 <211> 42 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 142 ccccttaggg ataacagggt aatctttgtg cgccctgccc tt 42 <210> 143 <211> 44 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 143 ccccttaggg ataacagggt aatcggggag gagggtgttt acgg 44 <210> 144 <211> 47 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 144 ccccttaggg ataacagggt aatcaggcag tgcaggcgtt ataaact 47 <210> 145 <211> 46 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 145 ccccttaggg 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oligonucleotide <400> 165 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctggatct ggggagagag gtgacc 56 <210> 166 <211> 59 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 166 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttgtatg tatgcaaagc cccgtcacg 59 <210> 167 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 167 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgactgg agttcccttc accatttcaa 60 <210> 168 <211> 55 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 168 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcctgga cagacgaagg cagca 55 <210> 169 <211> 57 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 169 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgcctgt agagatcaag gctgctc 57 <210> 170 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 170 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttcgggg gtgattagtt gctttttgtt 60 <210> 171 <211> 55 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 171 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcccgac acctaccggc tctcc 55 <210> 172 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 172 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctggtcct ggtgctgttc agcccatctt 60 <210> 173 <211> 56 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 173 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctggtggg tcaactttgg cagggt 56 <210> 174 <211> 58 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 174 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctggtggg cgtggctatg taaacgga 58 <210> 175 <211> 56 <212> DNA <213> Artificial 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Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 209 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctagcaca cccaccacca ctccta 56 <210> 210 <211> 59 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 210 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcttgtc ccacatcaca gcaaactct 59 <210> 211 <211> 53 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 211 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcggggc tgcggaagga tcc 53 <210> 212 <211> 54 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 212 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcaacgt ggcctcagct gctc 54 <210> 213 <211> 53 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 213 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctacgagg ctggctcccc act 53 <210> 214 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 214 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctctcctt agaaagtcat gccccaggag 60 <210> 215 <211> 53 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 215 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgggctg ggaggggatt ggc 53 <210> 216 <211> 56 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 216 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgcctcc ctgcaggatg attggc 56 <210> 217 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 217 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctatgcca cagatgacta ttgcacacct 60 <210> 218 <211> 52 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 218 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctacctca ggggccgctg ca 52 <210> 219 <211> 57 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 219 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgctggc actgatctgt ggtccca 57 <210> 220 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 220 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctaaccag ttcacccagt tacagtagac 60 <210> 221 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 221 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctaccgct taaattaacc ctgagtgacg 60 <210> 222 <211> 52 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 222 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttagcgt gcggcccgag ct 52 <210> 223 <211> 54 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 223 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgggggt gagctccaac tctg 54 <210> 224 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 224 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctatgtat ctggcattac agctgagcag 60 <210> 225 <211> 54 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 225 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcagcca ctgcaccgac ttca 54 <210> 226 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 226 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcggttc caagttatcg gagtgagcca 60 <210> 227 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 227 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctggactc atagcctggg ggtaaatgtt 60 <210> 228 <211> 56 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 228 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttgcttg ggctccgttg caatcc 56 <210> 229 <211> 58 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 229 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctaaacca ggggagaggg ccatagag 58 <210> 230 <211> 55 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 230 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgctgtg actcagagcc atggc 55 <210> 231 <211> 57 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 231 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctggcttc ccatgggtga gtcctgt 57 <210> 232 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 232 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgaagag ctgaacatag ccaggcaatt 60 <210> 233 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 233 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttgactg aggtggatga acccctaagc 60 <210> 234 <211> 56 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 234 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctaacccc ctgcagctgc tcacaa 56 <210> 235 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 235 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctaaatcc caagggcatt gttcacataa 60 <210> 236 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 236 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctaccctt tttgaaaatt agttgcccat 60 <210> 237 <211> 58 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 237 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgaggca gagggaacta caggtgca 58 <210> 238 <211> 59 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 238 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Synthetic oligonucleotide <400> 243 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttctctg cccctggaca gattctatag 60 <210> 244 <211> 57 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 244 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgggccc tgctgcacta tgatcaa 57 <210> 245 <211> 58 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 245 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgggcca gcttcatgac ctgaaacc 58 <210> 246 <211> 52 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 246 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttgcacc tggctgcacc ac 52 <210> 247 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 247 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcatcct gaatgctcgt tgagtggatg 60 <210> 248 <211> 58 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 248 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctggccaa gcccatgtag tactgcag 58 <210> 249 <211> 58 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 249 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctccctca actacttgcc caacatgc 58 <210> 250 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 250 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcggtgt cagcaaagct aggtaaggag 60 <210> 251 <211> 59 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 251 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctccgatg aggcatgggt tatgaagta 59 <210> 252 <211> 56 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 252 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcccctc tggtatgccc cctcat 56 <210> 253 <211> 58 <212> DNA <213> 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<213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 308 ccccttaggg ataacagggt aatcggagcc tggaccacta agtcac 46 <210> 309 <211> 46 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 309 ccccttaggg ataacagggt aatcgcgtgg aggtgagctc atgtag 46 <210> 310 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 310 ccccttaggg ataacagggt aatcgggcgc tcagtaggtg tgc 43 <210> 311 <211> 50 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 311 ccccttaggg ataacagggt aatcctgtgg gccatcttca agttcagtcc 50 <210> 312 <211> 49 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 312 ccccttaggg ataacagggt aatcaaaaac ctccaccctt atgaagcct 49 <210> 313 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> 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Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 318 ccccttaggg ataacagggt aatccaggca aggctgaatg gaagcg 46 <210> 319 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 319 ccccttaggg ataacagggt aatccctggg gaagggccat tca 43 <210> 320 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 320 ccccttaggg ataacagggt aatcggagac ggtgcaggag ctc 43 <210> 321 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 321 ccccttaggg ataacagggt aatcaggacc ctcctcacgg gatac 45 <210> 322 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 322 ccccttaggg ataacagggt aatcgtgtgg tgggggactg agc 43 <210> 323 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 323 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Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 344 ccccttaggg ataacagggt aatcgacaca ggagaaccca ctgaacgc 48 <210> 345 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 345 ccccttaggg ataacagggt aatctctcca cagtacaatg aggccatg 48 <210> 346 <211> 44 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 346 ccccttaggg ataacagggt aatccgtgca caggggacag aagc 44 <210> 347 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 347 ccccttaggg ataacagggt aatccccagg agctacgcct ctg 43 <210> 348 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 348 ccccttaggg ataacagggt aatcggctgg cattgctctc aacga 45 <210> 349 <211> 49 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic 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Synthetic oligonucleotide <400> 408 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctagcatc atctgtgaat caaaagtttt 60 <210> 409 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 409 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctggccag caaaaccttg acatgtaaac 60 <210> 410 <211> 55 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 410 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctacctgg aggcctgact tgcag 55 <210> 411 <211> 56 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 411 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctagggtg tatgcgtgct ctctga 56 <210> 412 <211> 59 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 412 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgcgtca ccttgaacga ccactttgt 59 <210> 413 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 413 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctaggggg tctggcatga aaatgtgtta 60 <210> 414 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 414 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcacacc cacatatacc tgccaaaaga 60 <210> 415 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 415 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctacgccc tactgcccta gattctaatt 60 <210> 416 <211> 53 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 416 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttggggg ctctggggct act 53 <210> 417 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 417 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctacgtgg acatgaggat gcattaaagg 60 <210> 418 <211> 54 <212> DNA <213> 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568 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgtggtg attacaaggc cacatcctac 60 <210> 569 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 569 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcctgga acccatactg cattaggaag 60 <210> 570 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 570 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctagcatg aaaaaggctg atgagtggga 60 <210> 571 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 571 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctccacag ttccagtgca ttcggaagaa 60 <210> 572 <211> 55 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 572 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgcttgc agaaccacga gctga 55 <210> 573 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 573 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttcagct gtgcttctaa tgtacaccct 60 <210> 574 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 574 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgcaatc gttttctagg gcacgactta 60 <210> 575 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 575 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgtcagc aagcacttga tcagagcatt 60 <210> 576 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 576 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgtggtt cgttttgacg tgtctgtttc 60 <210> 577 <211> 57 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 577 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcacgac cgcggcagag ttatcag 57 <210> 578 <211> 59 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 578 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcccagg ccttggcaat gagtttagg 59 <210> 579 <211> 54 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 579 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctggccag gacaccacca tccc 54 <210> 580 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 580 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttgtggt tggaagtgtg gattactggt 60 <210> 581 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 581 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttggacg gagagtggat cacagatgag 60 <210> 582 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 582 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctccaggc cactcaccca atttgacatg 60 <210> 583 <211> 60 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of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 607 ccccttaggg ataacagggt aatctgggct gagagctagc tttatgtga 49 <210> 608 <211> 44 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 608 ccccttaggg ataacagggt aatcaggagg cagggacgtg aaac 44 <210> 609 <211> 44 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 609 ccccttaggg ataacagggt aatcaggtga ctccctggct ttgc 44 <210> 610 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 610 ccccttaggg ataacagggt aatctgatct gaggggcttg gcaga 45 <210> 611 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 611 ccccttaggg ataacagggt aatccacatg tggtacgtct ggtccagt 48 <210> 612 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic 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Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 638 ccccttaggg ataacagggt aatcggggct cctgagggtg ga 42 <210> 639 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 639 ccccttaggg ataacagggt aatctgtctg cagtcacctg tccac 45 <210> 640 <211> 44 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 640 ccccttaggg ataacagggt aatccactcc caggcgctcg agtt 44 <210> 641 <211> 44 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 641 ccccttaggg ataacagggt aatcggacaa acacccaccc aggt 44 <210> 642 <211> 50 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 642 ccccttaggg ataacagggt aatctttaac cttcttagta gccagggaat 50 <210> 643 <211> 47 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic 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ccccttaggg ataacagggt aatcccctgt ctgccacctg ttgtc 45 <210> 649 <211> 46 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 649 ccccttaggg ataacagggt aatcggcctc ttctcaatcc cagtgc 46 <210> 650 <211> 49 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 650 ccccttaggg ataacagggt aatccatccc tgacagcaat gactcactc 49 <210> 651 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 651 ccccttaggg ataacagggt aatctgtgag agtctggcct ttactggt 48 <210> 652 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 652 ccccttaggg ataacagggt aatcttggac ctcccctgcg tga 43 <210> 653 <211> 50 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 653 ccccttaggg ataacagggt aatcactatg 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Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 729 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcacacc acacacgtca cagaaacc 58 <210> 730 <211> 53 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 730 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctagaagg ggtgggaggc caa 53 <210> 731 <211> 55 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 731 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttcacct gtccactcac agcac 55 <210> 732 <211> 56 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 732 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgcgctc gagttacagg gccact 56 <210> 733 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 733 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctaggtga tgtgatcttc ctgcttgctc 60 <210> 734 <211> 59 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> 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<213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 739 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctggcaat ggtgtccact ttgga 55 <210> 740 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 740 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcctgtc tgccacctgt tgtcattaac 60 <210> 741 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 741 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcctctt ctcaatccca gtgcctactc 60 <210> 742 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 742 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctctgaca gcaatgactc actccccttg 60 <210> 743 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 743 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttgaatc aggaggggct 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of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 763 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctactgag tgctggcatc aggattc 57 <210> 764 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 764 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctccagta gcctgtagtc agaaagagtg 60 <210> 765 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 765 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctctcctc ttaggacaac cgaccatcct 60 <210> 766 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 766 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctacctct tgtttctcaa aacgctgtcg 60 <210> 767 <211> 56 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 767 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcatcga cgagggtgag cgcatg 56 <210> 768 <211> 54 <212> DNA <213> Artificial 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Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 813 ccccttaggg ataacagggt aatccctgaa aaacggatga gacttcag 48 <210> 814 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 814 ccccttaggg ataacagggt aatcattgtg cttcagatcc cgtgacat 48 <210> 815 <211> 43 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 815 ccccttaggg ataacagggt aatcgtgggg acttgctgct ggt 43 <210> 816 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 816 ccccttaggg ataacagggt aatcagctct gctacattca ggtaacat 48 <210> 817 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 817 ccccttaggg ataacagggt aatctccctc tttagcatcg ccaaatcc 48 <210> 818 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 818 ccccttaggg ataacagggt aatcttggtg gccacaactt aggtgaga 48 <210> 819 <211> 50 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 819 ccccttaggg ataacagggt aatccccagg tgttgctcat cagttcctct 50 <210> 820 <211> 49 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 820 ccccttaggg ataacagggt aatcatcact ttctcaaggg acatgccat 49 <210> 821 <211> 50 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 821 ccccttaggg ataacagggt aatcgtctca caactcccag tcttgcttta 50 <210> 822 <211> 46 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 822 ccccttaggg ataacagggt aatcaactgg gctcgttggt taccct 46 <210> 823 <211> 50 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 823 ccccttaggg ataacagggt aatctttggt ttggttgctt tgcagactac 50 <210> 824 <211> 49 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 824 ccccttaggg ataacagggt aatccttttc tgctgtcacc ctcaaggat 49 <210> 825 <211> 50 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 825 ccccttaggg ataacagggt aatcgagtga atgcatgatt gtgtgaccga 50 <210> 826 <211> 44 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 826 ccccttaggg ataacagggt aatctgctag tgtcgaggtt tgca 44 <210> 827 <211> 49 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 827 ccccttaggg ataacagggt aatcgtggag aaagtgctaa acaagaaaa 49 <210> 828 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 828 ccccttaggg 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Synthetic oligonucleotide <400> 918 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctttctct tgtgtgatcc agagttgaca 60 <210> 919 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 919 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctaacgac actgacagaa aacactcacg 60 <210> 920 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 920 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctagcaat ttggtccccc atggagagac 60 <210> 921 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 921 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctaaaact tgactgttca ttgggttcaa 60 <210> 922 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 922 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcccctg tctctaccat cctagacacc 60 <210> 923 <211> 57 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> 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Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 947 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctactctg ggtgcggggg aacttatttg 60 <210> 948 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 948 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctccgtgg tggatttaac tcccctattg 60 <210> 949 <211> 54 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 949 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctagcatt ctgcctctga cagg 54 <210> 950 <211> 55 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 950 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atcttccaag gtcagctggc ggaca 55 <210> 951 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 951 gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctacggat tcctgctgta ctggctaaag 60 <210> 952 <211> 60 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> 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oligonucleotide <400> 1003 agccaacccc accccgcctc tgg 23 <210> 1004 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1004 tccacccccc accccgcccc ggg 23 <210> 1005 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1005 caccccccgc accccgcccc agg 23 <210> 1006 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1006 cctcccccac accccgcatc cgg 23 <210> 1007 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1007 ggcagcctcc accacgcctc cgg 23 <210> 1008 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1008 catccccccc accccacccc ggg 23 <210> 1009 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1009 ccaccccccc accccgcccc tgg 23 <210> 1010 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1010 aggcccccac accccgcctc agg 23 <210> 1011 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1011 gtaccccacc accccgcccc agg 23 <210> 1012 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1012 catacccccc accccgcccc ggg 23 <210> 1013 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1013 ccgcccctcc accccgccac tgg 23 <210> 1014 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1014 agtagccccc accccgcctc ggg 23 <210> 1015 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1015 accccccccc cccccgcccc cgg 23 <210> 1016 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1016 gccccgctcc tccccgcctc cgg 23 <210> 1017 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1017 ccacccctcc accctgcttc ggg 23 <210> 1018 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1018 catttcccct accccgcccc tgg 23 <210> 1019 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1019 aacacgcccc accccgcccc agg 23 <210> 1020 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1020 gagccactgt gcccagccta ggg 23 <210> 1021 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial 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Synthetic oligonucleotide <400> 1050 gagccaccac acccagccta aag 23 <210> 1051 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1051 gagccactgc gcccagcccc agg 23 <210> 1052 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1052 gaaccagacc tccccatctc cag 23 <210> 1053 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1053 gagccactgc acctggcctc agg 23 <210> 1054 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1054 gcacaccacc cccccgccac cgg 23 <210> 1055 <211> 91 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1055 tgtgaaaact aagagagagc tccacccctc tgtgccctcc tcctgtcctg agtcggggtg 60 gggggggctg gccttggagg gggcgtcccc t 91 <210> 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oligonucleotide <400> 1077 tgccccaaga acaacaaaaa aag 23 <210> 1078 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1078 tgcctcagtc aaagcacagc agg 23 <210> 1079 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1079 aaaaccaaca acagtacaaa agg 23 <210> 1080 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1080 cactccagcc tgggcaaaag agg 23 <210> 1081 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1081 attctgagga agaaaacaag ggg 23 <210> 1082 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1082 tccccctacc agagcacata cag 23 <210> 1083 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1083 aggcaaatca aaaccacaat gag 23 <210> 1084 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1084 aaaacaagaa agaacaaaag aga 23 <210> 1085 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1085 cttgccccac agggcagtaa cgg 23 <210> 1086 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1086 cttggcctgc agggcagtta tgg 23 <210> 1087 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1087 tctaccccac atggcagtaa tgg 23 <210> 1088 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1088 actgagcctc agggcagtaa tgg 23 <210> 1089 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1089 cctgccccac agggcaatta tgg 23 <210> 1090 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1090 cctctcccac agggcagtaa agg 23 <210> 1091 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1091 gctgccccac agggcagcaa agg 23 <210> 1092 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1092 cctccaatac agggcagtaa agg 23 <210> 1093 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1093 cctgtcccac agggcaggaa ggg 23 <210> 1094 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic oligonucleotide <400> 1094 ctggcaccac agagcagaaa ggg 23 <210> 1095 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial 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Claims (81)

  1. 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플에서 적어도 하나의 표적 핵산을 농축하는 방법에 있어서,
    상기 방법은,
    범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플과 접촉시켜 결합 생성물을 생성하는 단계로서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성되는 단계 (a);
    제1 표적-특이적 프라이머 및 선택적으로 제1 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머로 제1 PCR을 수행하여 결합 생성물을 증폭하여 제1 PCR 생성물을 형성하는 단계 (b); 및
    제2 표적-특이적 프라이머 및 제2 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머로 제2 PCR을 통해 제1 PCR 생성물을 증폭하여 제2 PCR 생성물을 형성하는 단계로서, 상기 제2 표적-특이적 프라이머는 상기 제1 표적-특이적 프라이머에 상대적으로 중첩되는 단계 (c)를 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  2. 제1항에 있어서,
    단계 (a) 전에, 상기 방법은 상기 단일 가닥 핵산 단편의 3' 말단을 차단하는 단계; 상기 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단을 인산화하는 단계; 또는 핵산을 아데닐화하여 상기 단일 가닥 핵산 단편에 3'-아데노신 돌출부를 생성하는 단계 중 적어도 한 단계를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  3. 제1항 또는 제2항에 있어서,
    상기 제1 PCR은 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 얻기 위해 제1 표적-특이적 프라이머로 결합 생성물을 선형 증폭하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  4. 제3항에 있어서,
    단계 (c)는 초기 프라이머 연장 듀플렉스의 중첩 증폭을 수행하는 단계를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  5. 제1항 또는 제2항에 있어서,
    상기 제1 PCR은 상기 제1 표적-특이적 프라이머 및 상기 제1 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머를 사용하여 상기 표적 핵산을 기하급수적으로 증폭하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  6. 제1항 내지 제5항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는, 상기 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된 3' 열성 말단; 및/또는 랜덤 또는 퇴행성 뉴클레오티드의 3~20개의 염기를 포함하는 5' 돌출 말단을 포함하고, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터의 듀플렉스 부분은 단계 (a)에서 듀플렉스 형태를 유지하기에 충분한 길이를 갖는
    것을 특징으로 하는 방법.
  7. 제6항에 있어서,
    상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 듀플렉스 형태의 일부를 연결하는 헤어핀 루프를 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  8. 제1항 내지 제7항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 개별 원본 분자를 추적하기 위한 고유 분자 인덱스(UMI)로서 3~20개의 랜덤 뉴클레오티드를 포함하는 단일 가닥 단편으로 구성되는
    것을 특징으로 하는 방법.
  9. 제1항 내지 제8항 중 어느 한 항에 있어서,
    단계 (c)는 시퀀싱 특이적 어댑터 쌍이 있는 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  10. 제9항에 있어서,
    상기 방법은 단계 (c) 후에, 시퀀싱 프라이머 쌍을 사용하여 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계를 추가로 포함하며, 상기 시퀀싱 프라이머 쌍은 각각 상기 제2 PCR 생성물의 반대 가닥에 적어도 부분적으로 상호 보완적인
    것을 특징으로 하는 방법.
  11. 제1항 내지 제10항 중 어느 한 항에 있어서,
    샘플은 고분자량 DNA로부터 제조된 복수의 DNA 단편을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  12. 제1항 내지 제11항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 복수의 단일 가닥 핵산 단편은 이중 가닥 DNA 단편의 변성으로부터 제조되는
    것을 특징으로 하는 방법.
  13. 제1항 내지 제12항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 RNA 단편의 역전사로부터 제조된 단일 가닥cDNA 단편을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  14. 제1항 내지 제13항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 방법은 상기 복수의 핵산 단편을 분석하는 단계를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  15. 제1항 내지 제14항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 제1 PCR 및/또는 상기 제2 PCR은 멀티플렉싱 PCR인
    것을 특징으로 하는 방법.
  16. 제1항 내지 제15항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 포유류에서 유래한 것이고, 선택적으로 상기 샘플은 인간으로부터 유래한 것인
    것을 특징으로 하는 방법.
  17. 제16항에 있어서,
    상기 인간은 질병이 있거나 질병이 의심되는 것으로 알려진 개인이고, 선택적으로 상기 질병 암 또는 유전적 질환인
    것을 특징으로 하는 방법.
  18. 제17항에 있어서,
    상기 표적 핵산 중 하나 이상이 상기 암에 대한 하나 이상의 마커를 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  19. 제16항에 있어서,
    상기 인간은 태아인
    것을 특징으로 하는 방법.
  20. 제1항 내지 제19항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 혈액 샘플로부터 유래한 것인
    것을 특징으로 하는 방법.
  21. 제1항 내지 제19항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 혈액 샘플에서 추출된 무세포 핵산을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  22. 제1항 내지 제19항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 순환 종양 세포로부터 추출된 핵산을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  23. 제1항 내지 제19항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 T-세포 및 B-세포 수용체 프로파일링을 위한 혈액 샘플의 림프구에서 추출된 핵산을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  24. 제1항 내지 제19항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 CRISPR(CRISPR) 유전자 편집 샘플인
    것을 특징으로 하는 방법.
  25. 제24항에 있어서,
    상기 샘플은 CRISPR 유전자 편집, 변형된 생체 외 CAR-T, CAR-NK, TCR-T 또는 치료용 조혈 줄기세포인
    것을 특징으로 하는 방법.
  26. 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플에서 적어도 하나의 표적 핵산을 농축하는 방법에 있어서,
    상기 방법은,
    범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합하는 단계 (a);
    제1 표적-특이적 프라이머를 표적 서열 부근의 상기 단일 가닥 핵산 단편에 어닐링하는 단계 (b);
    DNA중합 효소를 사용하여 상기 단일 가닥 핵산 단편 위로 상기 제1 표적-특이적 프라이머를 연장하는 단계 (c);
    초기 프라이머 연장 듀플렉스를 얻는 단계 (d);
    상기 초기 프라이머 연장 듀플렉스를 단일 가닥으로 해리하는 단계 (e); 및
    상기 초기 프라이머 연장 듀플렉스의 단일 가닥의 일부를 제2 표적-특이적 프라이머 및 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머로 증폭하는 단계 (f)를 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  27. 제26항에 있어서,
    단계 (a) 전에 상기 방법은,
    상기 단일 가닥 핵산 단편의 3' 말단을 차단하는 단계; 상기 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단을 인산화하는 단계; 또는 핵산을 아데닐화하여 상기 단일 가닥 핵산 단편에 3-아데노신 돌출부를 생성하는 단계를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  28. 제26항 또는 제27항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는, 상기 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된 3' 열성 단부; 및/또는 랜덤 또는 퇴행성 뉴클레오티드의 3~20개의 염기를 포함하는 5' 돌출 단부를 포함하며, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터의 듀플렉스 부분은 단계 (a)에서 듀플렉스 형태로 유지되기에 충분한 길이를 갖는
    것을 특징으로 하는 방법.
  29. 제28항에 있어서,
    상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 듀플렉스 형태의 일부를 연결하는 헤어핀 루프를 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  30. 제26항 내지 제29항 중 어느 한 항에 있어서,
    단계 (f)는 시퀀싱 특정 어댑터 쌍이 있는 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  31. 제30항에 있어서,
    상기 방법은 단계 (f) 후에, 시퀀싱 프라이머 쌍을 사용하여 상기 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계를 추가로 포함하며, 상기 시퀀싱 프라이머 쌍은 각각 제2 PCR 생성물의 반대 가닥에 적어도 부분적으로 상호 보완적인
    것을 특징으로 하는 방법.
  32. 제26항에 있어서,
    상기 방법은 하나 이상의 사이클 동안 단계 (b) 내지 단계 (f)를 반복하는 단계를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  33. 제26항 내지 제32항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 고분자량 DNA로부터 제조된 복수의 DNA 단편을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  34. 제26항 내지 제33항 중 어느 한 항에 있어서,
    복수의 단일 가닥 핵산 단편은 이중 가닥 DNA 단편의 변성으로부터 제조되는
    것을 특징으로 하는 방법.
  35. 제26항 내지 제34항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 RNA 단편의 역전사로부터 제조된 단일 가닥 cDNA 단편을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  36. 제26항 내지 제35항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 개별 원본 분자를 추적하기 위한 고유 분자 인덱스(UMI)로서 3~20개의 랜덤 뉴클레오티드를 포함하는 단일 가닥 단편을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  37. 제26항 내지 제36항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 방법은 복수의 핵산 단편을 분석하는 단계를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  38. 제26항 내지 제37항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 포유류로부터 유래하고, 선택적으로 상기 포유류는 인간인
    것을 특징으로 하는 방법.
  39. 제38항에 있어서,
    상기 인간은 질병이 있거나 질병이 의심되는 것으로 알려진 개인이고, 선택적으로 상기 질병은 암 또는 유전적 질환인
    것을 특징으로 하는 방법.
  40. 제39항에 있어서,
    상기 표적 핵산 중 하나 이상이 상기 암에 대한 하나 이상의 마커를 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  41. 제40항에 있어서,
    상기 인간은 태아인
    것을 특징으로 하는 방법.
  42. 제26항 내지 제41항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 혈액 샘플에서 유래한 것인
    것을 특징으로 하는 방법.
  43. 제26항 내지 제41항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 혈액 샘플로부터 추출된 무세포 핵산을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  44. 제26항 내지 제41항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 순환 종양 세포로부터 추출된 핵산을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  45. 제26항 내지 제41항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 T-세포 및 B-세포 수용체 프로파일링을 위한 혈액 샘플의 림프구에서 추출된 핵산을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  46. 제26항 내지 제41항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 편집된 CRISPR 유전자 샘플인
    것을 특징으로 하는 방법.
  47. 제46항에 있어서,
    상기 샘플은 상기 편집된 CRISPR 유전자 변형된 생체 외 CAR-T, CAR-NK, TCR-T 또는 치료용 조혈 줄기세포에서 추출된 샘플인
    것을 특징으로 하는 방법.
  48. 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플에서 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 방법에 있어서,
    범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플과 접촉시켜 결합 생성물을 생성하는 단계로서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성되는 단계 (a);
    제1 표적-특이적 프라이머로 제1 PCR을 수행하여 제1 PCR 생성물을 형성함으로써 결합 생성물을 증폭하는 단계 (b);
    시퀀싱 라이브러리를 형성하기 위해 시퀀싱 특이적 어댑터 프라이머 및 제1 표적 특이적 프라이머에 중첩된 제2 표적 특이적 프라이머로 제2 PCR을 통해 제1 PCR 생성물을 증폭하는 단계 (c);
    시퀀싱 결과를 얻기 위해 상기 시퀀싱 라이브러리를 정량화하고 판독하는 단계 (d); 및
    시퀀싱 결과를 참조 게놈에 매핑하고 유전자 편집 오프-타겟을 평가하는 단계 (e)를 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  49. 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플로부터 유전자 편집 효율을 평가하는 방법에 있어서,
    범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플과 접촉시켜 결합 생성물을 생성하는 단계로서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 상기 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성되는 단계 (a);
    제1 표적-특이적 프라이머로 제1 PCR을 수행하여 제1 PCR 생성물을 형성함으로써 결합 생성물을 증폭하는 단계로서, 상기 제1 표적-특이적 프라이머는 바람직하게는 온-타겟, 예측된 오프-타겟 또는 알려진 오프-타겟에서 단일 가닥 핵산 단편을 어닐링하도록 구성되는 단계 (b);
    시퀀싱 라이브러리를 형성하기 위해, 시퀀싱 특이적 어댑터 프라이머 및 상기 제1 표적 특이적 프라이머에 상대적으로 중첩된 제2 표적 특이적 프라이머로 제2 PCR을 통해 제1 PCR 생성물을 증폭하는 단계 (c);
    상기 시퀀싱 라이브러리를 정량화하고 판독하여 시퀀싱 결과를 형성하는 단계 (d); 및
    상기 시퀀싱 결과를 참조 게놈에 매핑하고 유전자 편집 효율을 평가하는 단계 (e)를 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  50. 제49항에 있어서,
    상기 예측된 오프-타겟은 E-CRISP, Cas-OFFinder 및/또는 CRISPRscan으로 구성된 소프트웨어를 기반으로 실리코에서 예측되는
    것을 특징으로 하는 방법.
  51. 제49항 또는 제50항에 있어서,
    상기 E-CRISP는 부정합(mismatch) 컷오프가 <= 10, 9, 8, 7 또는 6이고, 상기 Cas-OFFinder는 부정합이 <= 6, 5, 4, 3 또는 2이며 벌지가 <= 3, 2 또는 1이고, 상기 CRISPRscan은 임계값이 없는
    것을 특징으로 하는 방법.
  52. 제49항 내지 제51항 중 어느 한 항에 있어서,
    단계 (e)는, 분할 판독 및 불일치 판독을 획득하여 전위를 검출하는 단계; 또는 삽입 및 삭제(indel) 빈도를 결정하는 단계를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  53. 제52항에 있어서,
    상기 분할 판독 및 불일치 판독은, 잠재적 후보 전위를 식별하는 단계; 및 온-타겟 스페이서 및 절단 빈도 결정자(CFD)에 대한 프로토스페이서 유사성을 추정하는 단계에 의해 얻어지는
    것을 특징으로 하는 방법.
  54. 제52항에 있어서,
    상기 인델 빈도는,
    매핑된 결과를 GATK-리얼라이너에 의해 정렬하여 정렬된 결과를 형성하는 단계 (a);
    상기 정렬된 결과를 대응하는 스페이서 영역에 걸치지 않도록 필터링하는 단계 (b);
    절단 부위의 상류 또는 하류 약 5-bp 주변에서 발생하는 삽입 및 삭제를 예측하는 단계 (c); 및
    음성 대조군의 상응하는 값에 의해 제거된 상기 샘플의 인델 값에 의해 신뢰할 수 있는 인델 빈도를 결정하는 단계 (d)에 의해 얻어지는
    것을 특징으로 하는 방법.
  55. 복수의 단일 가닥 핵산 단편으로 구성된 샘플로부터 게놈 전체 유전자 편집 오프-타겟을 식별하는 방법에 있어서,
    범용 올리고뉴클레오티드 어댑터를 샘플과 접촉시켜 결합 생성물을 생성하는 단계로서, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 상기 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성되는 단계 (a);
    제1 표적-특이적 프라이머 세트로 제1 PCR을 통해 결합 생성물을 증폭하는 단계로서, 상기 제1 표적-특이적 프라이머 세트는 온-타겟 및 하나 이상의 예측 및/또는 공지된 오프-타겟의 단일 가닥 핵산 단편 5'을 어닐링하도록 구성되는 단계 (b);
    제2 표적-특이적 프라이머 세트 및 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터 프라이머로 제2 PCR을 통해 상기 제1 PCR 생성물을 증폭하여 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계로서, 상기 제2 표적-특이적 프라이머 세트의 각각은 상기 제1 표적-특이적 프라이머 세트의 대응하는 프라이머에 대해 중첩되는 단계 (c); 및
    오프-타겟을 식별하기 위해 상기 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계 (d)를 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  56. 제55항에 있어서,
    단계 (b)에서 상기 예측된 오프-타겟은 컴퓨터로 예측된 오프-타겟인
    것을 특징으로 하는 방법.
  57. 제56항에 있어서,
    상기 컴퓨터로 예측된 오프-타겟은 E-CRISP, Cas-OFFinder 또는 CRISPRscan을 포함하는 소프트웨어에 기초하여 예측된 상부 100, 90, 80, 70, 60, 50, 40, 30, 20 또는 10개의 오프-타겟인
    것을 특징으로 하는 방법.
  58. 제57항에 있어서,
    상기 E-CRISP는 부정합의 컷오프가 <= 10, 9, 8, 7, 또는 6이고, 상기Cas-OFFinder는 부정합이 <= 6, 5, 4, 3, 또는 2이며 벌지가 <= 3, 2, 또는 1이고, 상기 CRISPRscan은 임계값이 없는
    것을 특징으로 하는 방법.
  59. 제55항 내지 제58항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 방법은, 분할 판독 및 불일치 판독을 획득하여 전위를 검출하는 단계; 또는 삽입 및 삭제(indel) 빈도를 결정하는 단계를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  60. 제59항에 있어서,
    상기 분할 판독 및 불일치 판독은, 잠재적 후보 전위를 식별하는 단계; 및 온-타겟 스페이서 및 절단 빈도 결정자(CFD)에 대한 프로토스페이서 유사성을 추정하는 단계에 의해 얻어지는
    것을 특징으로 하는 방법.
  61. 제59항에 있어서,
    상기 인델 빈도는, 매핑된 결과를 GATK-리얼라이너에 의해 정렬하여 정렬된 결과를 형성하고; 상기 정렬된 결과를 해당 스페이서 영역에 걸치지 않도록 필터링하며; 절단 부위의 상류 또는 하류에서 5-bp 주변에서 발생하는 삽입 및 삭제를 예측하고; 및 음성 대조군의 상응하는 값에 의해 제거된 상기 샘플의 인델 값에 의해 신뢰할 수 있는 인델 빈도를 결정하는 것을 통해 얻어지는
    것을 특징으로 하는 방법.
  62. 제55항 내지 제61항 중 어느 한 항에 있어서,
    단계 (a) 전에 상기 방법은, 상기 단일 가닥 핵산 단편의 3' 말단을 차단하는 단계; 상기 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단을 인산화하는 단계; 또는 상기 핵산을 아데닐화하여 상기 단일 가닥 핵산 단편에 3'-아데노신 돌출부를 생성하는 단계 중 적어도 하나를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  63. 제55항 내지 제62항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는, 상기 단일 가닥 핵산 단편의 5' 말단에 결합되도록 구성된 3' 열성 단부; 및/또는 랜덤 또는 퇴행성 뉴클레오티드의 3~20개의 염기를 포함하는 5' 돌출 단부를 포함하며, 상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터의 듀플렉스 부분은 단계 (a)에서 듀플렉스 형태로 유지되기에 충분한 길이를 갖는
    것을 특징으로 하는 방법.
  64. 제63항에 있어서,
    상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 듀플렉스 형태의 일부를 연결하는 헤어핀 루프를 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  65. 제55항 내지 제64항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 범용 올리고뉴클레오티드 어댑터는 개별 원본 분자를 추적하기 위한 고유 분자 인덱스(UMI)로서 3~20개의 랜덤 뉴클레오티드를 포함하는 단일 가닥 단편을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  66. 제55항 내지 제65항 중 어느 한 항에 있어서,
    단계 (c)는 시퀀싱 특이적 어댑터 쌍이 있는 시퀀싱 라이브러리를 형성하는 단계를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  67. 제66항에 있어서,
    상기 방법은 단계 (c) 후에, 시퀀싱 프라이머 쌍을 사용하여 상기 시퀀싱 라이브러리를 시퀀싱하는 단계를 추가 포함하며, 상기 시퀀싱 프라이머 쌍은 각각 상기 제2 PCR 생성물의 반대 가닥에 적어도 부분적으로 상호 보완적인
    것을 특징으로 하는 방법.
  68. 제55항 내지 제67항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 고분자량 DNA로부터 제조된 복수의 DNA 단편을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  69. 제55항 내지 제68항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 복수의 단일 가닥 핵산 단편은 이중 가닥 DNA 단편의 변성으로부터 제조되는
    것을 특징으로 하는 방법.
  70. 제55항 내지 제69항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 RNA 단편의 역전사로부터 제조된 단일 가닥 cDNA 단편을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  71. 제55항 내지 제70항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 방법은 상기 복수의 핵산 단편을 분석하는 단계를 추가로 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  72. 제55항 내지 제71항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 포유류로부터 유래하고, 선택적으로 상기 포유류는 인간인
    것을 특징으로 하는 방법.
  73. 제72항에 있어서,
    상기 인간은 질병이 있거나 질병이 의심되는 것으로 알려진 개인이고, 선택적으로 상기 질병은 암 또는 유전적 질환인
    것을 특징으로 하는 방법.
  74. 제73항에 있어서,
    상기 표적 핵산 중 하나 이상이 상기 암에 대한 하나 이상의 마커를 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  75. 제72항에 있어서,
    상기 인간은 태아인
    것을 특징으로 하는 방법.
  76. 제55항 내지 제75항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 혈액 샘플로부터 유래된 것인
    것을 특징으로 하는 방법.
  77. 제55항 내지 제75항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 혈액 샘플로부터 추출된 무세포 핵산을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  78. 제55항 내지 제75항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 순환 종양 세포로부터 추출된 핵산을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  79. 제55항 내지 제75항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 T-세포 및 B-세포 수용체 프로파일링을 위한 혈액 샘플의 림프구로부터 추출된 핵산을 포함하는
    것을 특징으로 하는 방법.
  80. 제55항 내지 제75항 중 어느 한 항에 있어서,
    상기 샘플은 편집된 CRISPR 유전자 샘플인
    것을 특징으로 하는 방법.
  81. 제80항에 있어서,
    상기 샘플은 CRISPR 유전자 편집, 변형된 생체 외 CAR-T, CAR-NK, TCR-T 또는 치료용 조혈 줄기세포인
    것을 특징으로 하는 방법.
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