KR20230011839A - Composition for inhibiting α-synuclein aggregation and method for inhibiting aggregation - Google Patents
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Abstract
Description
본 발명은 알파-시누클레인 응집 억제용 조성물 및 응집억제 방법에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 Nurr1 및 Foxa2 유전자를 도입하여 발현을 유도함으로써 알파-시누클레인 응집 (aggregation) 및 인산화 (phosphorylation)를 억제하는 기술에 관한 것이다.The present invention relates to a composition for inhibiting alpha-synuclein aggregation and a method for inhibiting aggregation, and more particularly, to inhibit alpha-synuclein aggregation and phosphorylation by introducing Nurr1 and Foxa2 genes to induce expression. It's about technology.
파킨슨병 (Parkinson's disease)은 발병 시 근육의 떨리고 근육이 강직되는 등의 운동장애가 나타나는 신경퇴행성질환 중 하나이다. 파킨슨병은 주로 노년층에서 발병하며, 대상 연령이 증가함에 따라 파킨슨병이 발병할 위험이 더 커지는 것은 알려져 있다. 국내의 경우, 인구 1000명 당 1 내지 2명 정도가 발병하는 것으로 추정되며, 노년층에서 발병하는 대부분의 파킨슨병은 유전적인 요소가 영향이 거의 없는 것으로 알려져 있다. 파킨슨병은 중뇌의 흑색질이라 불리는 부위의 도파민세포가 사멸하면서 발병하는 것으로 알려져 있으나, 현재까지 흑색질 부위의 도파민세포가 파괴되는 이유에 대해서는 정확히 알려진 바는 없다. 최근에는 인간의 평균 수명이 증가함에 따라, 파킨슨병의 빈도 역시 증가할 것으로 예상된다. Parkinson's disease (Parkinson's disease) is one of the neurodegenerative diseases that appear movement disorders such as muscle tremors and muscle stiffness at the onset. Parkinson's disease mainly develops in the elderly, and it is known that the risk of developing Parkinson's disease increases as the target age increases. In Korea, it is estimated that about 1 to 2 people per 1000 people are affected, and it is known that most Parkinson's diseases that occur in the elderly have little effect on genetic factors. Parkinson's disease is known to be caused by the death of dopamine cells in a region called the substantia nigra of the midbrain. Recently, as the average lifespan of humans increases, the frequency of Parkinson's disease is also expected to increase.
또한 파킨슨병을 관리하고 치료하는데 막대한 비용이 발생하며, 환자의 정신적 고통 또한 상당하다. 그러므로 효과적인 파킨슨병의 예방 및 치료 방법이 필요한 상황이다.In addition, huge costs are incurred in managing and treating Parkinson's disease, and the patient's mental suffering is also considerable. Therefore, there is a need for an effective method for preventing and treating Parkinson's disease.
최근 파킨슨병과 관련하여 알파-시누클레인 (α-synuclein) 단백질에 많은 연구의 초점이 모아지고 있다. 알파-시누클레인은 인간의 뇌에 풍부한 단백질이며, 시냅스 전말단이라 불리는 특수한 구조의 신경세포의 끝에서 주로 발견된다. 진행된 연구결과에 따르면 파킨슨병은 뉴런 내부의 알파-시누클레인의 생성과 제거 사이의 균형이 붕괴됨에 따라 알파-시누클레인의 응집이 형성되고 루이소체 (Lewy body) 형성과 관련이 있는 것이 밝혀졌다. 루이소체는 뉴런의 막 투과성 (permeability)를 변형시켜 칼슘 이온의 유입, 미토콘드리아 손상으로 인한 산화 스트레스를 유발하고 정상적인 미세소관(microtubule) 형성을 방해하여 뉴런의 사멸을 초래하여 파킨슨병의 발병에 영향을 주는 것으로 알려져 있다. 이러한 배경에서, 알파-시누클레인을 억제하기 위한 시도가 진행되고 있으나, 현재까지는 알파-시누클레인의 응집을 효과적으로 억제할 수 있는 치료제 또는 방법에 대해서는 전혀 개발이 되지 않은 실정이다.Recently, many studies have focused on the alpha-synuclein protein in relation to Parkinson's disease. Alpha-synuclein is a protein abundant in the human brain and is mainly found at the ends of nerve cells with special structures called presynaptic terminals. According to the results of ongoing research, it has been found that Parkinson's disease is related to the formation of Lewy bodies and the formation of aggregation of alpha-synuclein as the balance between the production and removal of alpha-synuclein inside neurons is disrupted. Lewy bodies alter the membrane permeability of neurons, influx calcium ions, induce oxidative stress due to mitochondrial damage, and interfere with normal microtubule formation, leading to neuron death and affecting the pathogenesis of Parkinson's disease. known to give Against this background, attempts have been made to inhibit alpha-synuclein, but until now, no treatment or method capable of effectively inhibiting aggregation of alpha-synuclein has been developed.
본 발명자들은 이에, 전사인자 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입되어 뇌세포에 발현될 때 알파-시누클레인 (α-synuclein) 단백질의 응집을 억제하는 것을 실험적으로 규명함으로써 본 발명을 완성하게 되었다. 특히, Nurr1 발현 단독 효과보다 보조 활성제 (coactivator)인 Foxa2가 병합 발현되었을 때 시너지 효과를 통한 강력한 알파-시누클레인 단백질 집적 억제 효과가 있음을 확인하였다. Accordingly, the present inventors completed the present invention by experimentally identifying that the aggregation of α-synuclein protein is inhibited when the transcription factors Nurr1 and Foxa2 genes are introduced and expressed in brain cells. In particular, it was confirmed that there is a strong alpha-synuclein protein accumulation inhibitory effect through a synergistic effect when Foxa2, a coactivator, is expressed in combination rather than a single expression of Nurr1.
이에, 본 발명의 목적은 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 벡터를 포함하는 알파-시누클레인 (α-synuclein) 단백질 응집 억제용 조성물을 제공하는 것이다.Accordingly, an object of the present invention is to provide a composition for inhibiting α-synuclein protein aggregation comprising a vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes.
본 발명의 다른 목적은 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 벡터를 포함하는 알파-시누클레인 (α-synuclein) 단백질 응집 억제제를 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide an α-synuclein protein aggregation inhibitor comprising a vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes.
본 발명의 또 다른 목적은 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)를 포함하는 알파-시누클레인 단백질 응집 억제용 조성물을 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide a composition for inhibiting alpha-synuclein protein aggregation comprising brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명의 또 다른 목적은 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)를 포함하는 알파-시누클레인 단백질 응집 억제제를 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide an alpha-synuclein protein aggregation inhibitor comprising brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명의 또 다른 목적은 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 벡터를 포함하는 알파-시누클레인 단백질 인산화 억제용 조성물을 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide a composition for inhibiting alpha-synuclein protein phosphorylation comprising a vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes.
본 발명의 또 다른 목적은 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 벡터를 포함하는 알파-시누클레인 단백질 인산화 억제제를 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide an alpha-synuclein protein phosphorylation inhibitor comprising a vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes.
본 발명의 또 다른 목적은 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)를 포함하는 알파-시누클레인 단백질 인산화 억제용 조성물을 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide a composition for inhibiting alpha-synuclein protein phosphorylation comprising brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명의 또 다른 목적은 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)를 포함하는 알파-시누클레인 단백질 인산화 억제제를 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide an alpha-synuclein protein phosphorylation inhibitor comprising brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명의 또 다른 목적은 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 벡터를 포함하는, 알파-시누클레인 단백질 응집으로 인해 발병하는 질환 예방 또는 치료용 조성물을 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide a composition for preventing or treating diseases caused by alpha-synuclein protein aggregation, including vectors loaded with Nurr1 and Foxa2 genes.
본 발명의 또 다른 목적은 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)를 포함하는 알파-시누클레인 단백질 응집으로 인해 발병하는 질환 예방 또는 치료용 조성물을 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide a composition for preventing or treating diseases caused by alpha-synuclein protein aggregation, including brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명자들은 파킨슨병의 주요 원인으로 알려진 알파-시누클레인 (α-synuclein) 단백질 응집 억제를 위한 방법에 대하여 예의 연구 노력하였다. 그 결과 Nurr1 및 Foxa2 유전자를 도입하여 발현한 경우에 Nurr1 유전자 단독으로 도입하여 발현한 경우보다 알파-시누클레인 단백질의 응집 및 인산화를 더 잘 억제할 수 있음을 규명하였다. The present inventors have intensively researched a method for inhibiting α-synuclein protein aggregation, which is known to be a major cause of Parkinson's disease. As a result, it was found that when the Nurr1 and Foxa2 genes were introduced and expressed, the aggregation and phosphorylation of the alpha-synuclein protein could be better inhibited than when the Nurr1 gene was introduced and expressed alone.
본 발명의 일 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 벡터를 포함하는 알파-시누클레인 단백질의 응집 억제용 조성물이다.One aspect of the present invention is a composition for inhibiting aggregation of alpha-synuclein protein, including a vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes.
본 발명의 다른 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 벡터를 포함하는 알파-시누클레인 단백질의 응집 억제제이다.Another aspect of the present invention is an alpha-synuclein protein aggregation inhibitor comprising a vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes.
본 발명의 또 다른 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)를 포함하는 알파-시누클레인 단백질의 응집 억제용 조성물이다.Another aspect of the present invention is a composition for inhibiting aggregation of alpha-synuclein protein, including brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명의 또 다른 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)를 포함하는 알파-시누클레인 단백질의 응집 억제제이다.Another aspect of the present invention is an alpha-synuclein protein aggregation inhibitor comprising brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명의 또 다른 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 벡터; 및 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)로 이루어지는 그룹에서 선택된 어느 하나를 포함하는, 알파-시누클레인 (α-synuclein) 단백질 응집 억제용 조성물이다.Another aspect of the present invention is a vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes; And a composition for inhibiting α-synuclein protein aggregation, comprising any one selected from the group consisting of brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명의 또 다른 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 바이러스 벡터; 및 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포로 이루어지는 그룹에서 선택된 어느 하나를 포함하는, 알파-시누클레인 단백질 응집 억제제이다.Another aspect of the present invention is a viral vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes; And an alpha-synuclein protein aggregation inhibitor comprising any one selected from the group consisting of brain cells into which the Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명의 또 다른 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 벡터를 포함하는 알파-시누클레인 단백질의 인산화 억제용 조성물이다.Another aspect of the present invention is a composition for inhibiting phosphorylation of alpha-synuclein protein, including a vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes.
본 발명의 또 다른 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 벡터를 포함하는 알파-시누클레인 단백질의 인산화 억제제이다.Another aspect of the present invention is an alpha-synuclein protein phosphorylation inhibitor comprising a vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes.
본 발명의 또 다른 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)를 포함하는 알파-시누클레인 단백질의 인산화 억제용 조성물이다.Another aspect of the present invention is a composition for inhibiting phosphorylation of alpha-synuclein protein, including brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명의 또 다른 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)를 포함하는 알파-시누클레인 단백질의 인산화 억제제이다.Another aspect of the present invention is an alpha-synuclein protein phosphorylation inhibitor comprising brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명의 또 다른 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 바이러스 벡터; 및 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포로 이루어지는 그룹에서 선택된 어느 하나를 포함하는, 알파-시누클레인 단백질 인산화 억제용 조성물이다.Another aspect of the present invention is a viral vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes; And a composition for inhibiting alpha-synuclein protein phosphorylation, comprising any one selected from the group consisting of brain cells into which the Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명의 또 다른 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 바이러스 벡터; 및 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포로 이루어지는 그룹에서 선택된 어느 하나를 포함하는, 알파-시누클레인 단백질 인산화 억제제이다.Another aspect of the present invention is a viral vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes; And an alpha-synuclein protein phosphorylation inhibitor comprising any one selected from the group consisting of brain cells into which the Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 명세서 상의 용어 “알파-시누클레인 (α-synuclein) 단백질”은 뇌에 풍부한 단백질 중에 하나로 시냅스 전말단으로 불리는 신경세포의 끝에서 주로 발견된다. 알파-시누클레인은 인지질 및 단백질과 상호 작용하는 것으로 알려져 있으며, 신경전달 물질인 도파민의 방출을 조절하는 것을 돕는 것으로 알려져 있다. 인간의 알파-시누클레인의 경우 140여개의 아미노산으로 이루어지고 SNCA 유전자에 의해 코딩된다.The term "alpha-synuclein protein" in this specification is one of the proteins abundant in the brain and is mainly found at the end of a nerve cell called the presynaptic terminal. Alpha-synuclein is known to interact with phospholipids and proteins and is known to help regulate the release of the neurotransmitter dopamine. In the case of human alpha-synuclein, it consists of about 140 amino acids and is encoded by the SNCA gene.
본 명세서 상의 “알파-시누클레인 단백질 응집”은 2개 이상의 알파-시누클레인 단백질이 응집하는 것을 의미한다. 본 발명의 일 구현예에서, 알파-시누클레인 응집체는 비응집된 알파-시누클레인 단백질에 비해 큰 분자량 및/또는 크기를 갖는 것일 수 있다.“Aggregation of alpha-synuclein proteins” in the present specification means the aggregation of two or more alpha-synuclein proteins. In one embodiment of the present invention, alpha-synuclein aggregates may have a larger molecular weight and/or size than non-aggregated alpha-synuclein proteins.
본 명세서 상의 “알파-시누클레인의 단백질 응집 억제”는 각각의 알파-시누클레인 단백질이 주변의 알파-시누클레인 단백질과 응집하여 응집체를 형성하는 현상을 억제하거나 이미 생성된 응집체를 분해하여 억제하는 것으로 이해될 수 있다. 또는, 알파-시누클레인의 단백질 응집 억제는 응집 억제만을 의미하는 것은 아니고, 알파-시누클레인 단백질 또는 이의 응집체의 분해 속도를 빠르게 하거나, 알파-시누클레인 또는 이의 응집체의 생성과 분해 속도의 균형을 정상적인 상태로 조절하는 것을 모두 포함할 수 있다.“Inhibiting protein aggregation of alpha-synuclein” in the present specification means suppressing the phenomenon of each alpha-synuclein protein aggregating with surrounding alpha-synuclein proteins to form an aggregate or decomposing and inhibiting an aggregate that has already been formed. can be understood Alternatively, inhibition of protein aggregation of alpha-synuclein does not mean only inhibition of aggregation, but either increases the rate of degradation of alpha-synuclein protein or aggregates thereof, or balances the rate of production and degradation of alpha-synuclein or aggregates thereof in a normal manner. It can include all things that are adjusted to the state.
본 명세서 상의 용어 "뇌세포 (brain cells)"는 뇌에 위치한 세포를 의미하고, 뇌세포는 신경세포 (neurons, neuron cells) 및 교질세포 (glia, glial cells)을 포함할 수 있다.The term "brain cells" used herein refers to cells located in the brain, and brain cells may include neurons (neuron cells) and glia cells (glial cells).
본 명세서 상의 용어 "신경세포"는 신경계의 세포이다. 본 명세서 상의 용어 “신경세포”는 "뉴런" 또는 "뉴런 세포"로 서로 바꾸어 사용할 수 있다.The term "nerve cell" used herein is a cell of the nervous system. In this specification, the term “nerve cell” may be used interchangeably with “neuron” or “neuron cell”.
본 명세서 상의 용어 "교질세포"는 뇌에 존재하는 세포 중 가장 많은 부분을 차지하는 세포로서, 교질세포는 성상교세포 (astrocyte) 또는 미세교질 (microglia) 세포를 포함할 수 있다. 성상교세포는 신경세포의 보호 및 영양공급, 염증에 관여하며, 미세교질세포는 뇌에서 염증을 담당하는 세포로서 알츠하이머병과 같은 뇌질환에서 중요한 역할을 하는 세포군으로 알려져 있다.The term "glial cells" in the present specification is a cell that occupies the largest portion of cells present in the brain, and the glial cells may include astrocytes or microglia cells. Astrocytes are involved in nerve cell protection, nutrient supply, and inflammation, and microglial cells are cells responsible for inflammation in the brain and are known to be a cell group that plays an important role in brain diseases such as Alzheimer's disease.
본 명세서 상의 용어 "형질도입 (transduction)" 박테리오파지를 매개로 유전적 형질이 한 세포에서 다른 세포로 옮아가 유전형질이 도입되는 현상으로, 박테리오파지가 어떤 형(型)의 세균에 감염되면 파지 DNA가 숙주 DNA와 결합하고, 용균현상으로 파지가 나올 때 자신의 DNA를 일부 잃는 대신 숙주 DNA의 일부를 갖고 나오는 경우가 있다. 이러한 파지가 다른 세균에 감염되면, 전 숙주의 유전자를 새롭게 도입하는 게 되어 새로운 형질이 나타나게 된다. 생물학적 연구에서 "형질도입"이라는 용어는 일반적으로 바이러스 벡터를 사용하여 표적 세포에서의 특정 외인성 유전자를 도입하여 발현하는 것을 의미한다.The term "transduction" in this specification refers to a phenomenon in which genetic traits are transferred from one cell to another by the medium of a bacteriophage and the genetic traits are introduced. When phages bind to host DNA and come out through lysis, they may come out with part of the host DNA instead of losing part of their own DNA. When these phages infect other bacteria, they introduce new genes from the previous host, resulting in new traits. In biological research, the term "transduction" generally refers to the introduction and expression of a specific exogenous gene in a target cell using a viral vector.
본 명세서 상의 용어 "세포치료제"는 사람으로부터 분리, 배양 및 특수한 저작을 통해 제조된 세포 및 조직으로 치료, 진단 및 예방의 목적으로 사용되는 의약품 (미국 FDA규정)으로서, 세포 혹은 조직의 기능을 복원시키기 위하여 살아있는 자가, 동종, 또는 이종세포를 체외에서 증식, 선별하거나 다른 방법으로 세포의 생물학적 특성을 변화시키는 등의 일련의 행위를 통하여 치료, 진단 및 예방의 목적으로 사용되는 의약품을 지칭한다. 세포치료제는 세포의 분화정도에 따라 크게 체세포치료제, 줄기세포치료제로 분류된다.As used herein, the term "cell therapy product" refers to cells and tissues manufactured from human isolation, culture, and special chewing, which are used for the purpose of treatment, diagnosis, and prevention (according to US FDA regulations), and are used to restore the functions of cells or tissues. It refers to medicines used for the purpose of treatment, diagnosis, and prevention through a series of actions, such as proliferating and selecting living autologous, allogeneic, or heterogeneous cells in vitro, or changing the biological characteristics of cells in other ways. Cell therapy is largely classified into somatic cell therapy and stem cell therapy depending on the degree of cell differentiation.
본 명세서 상의 용어 “Nurr1 및 Foxa2를 도입 (형질도입)한다”는 것은 두 유전자를 암호화하는 핵산을 뇌세포로 함께 도입하는 것을 의미한다. 두 유전자는 각각의 발현 벡터 별도로 또는 하나의 발현 벡터로 동시에 도입될 수 있다.The term “transduction (transduction) of Nurr1 and Foxa2” as used herein means introducing nucleic acids encoding the two genes into brain cells together. The two genes can be introduced separately from each expression vector or simultaneously into one expression vector.
본 발명의 일 실시예에서는 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 모두 도입되는 경우, Nurr1 및 Foxa2 서로 간의 상승효과에 의해 Nurr1 또는 Foxa2 유전자가 단독으로 도입되는 것에 비해 알파-시누클레인 단백질 응집을 억제능이 현저히 우수함을 확인하였다. 구체적으로, Nurr1 및 Foxa2 유전자를 동시에 세포에 도입한 경우에 Nurr1 또는 Foxa2 유전자가 단독 도입된 경우에 비해 알파-시누클레인 단백질 단량체 및 응집체 모두가 현저하게 감소됨을 확인하였다 (도 5 내지 6 참조). In one embodiment of the present invention, when both Nurr1 and Foxa2 genes are introduced, it is confirmed that the ability to inhibit alpha-synuclein protein aggregation is significantly superior to that when Nurr1 or Foxa2 genes are introduced alone due to the synergistic effect between Nurr1 and Foxa2. did Specifically, when the Nurr1 and Foxa2 genes were simultaneously introduced into cells, it was confirmed that both alpha-synuclein protein monomers and aggregates were significantly reduced compared to when the Nurr1 or Foxa2 genes were introduced alone (see FIGS. 5 and 6).
본 명세서 상의 용어 "Nurr1 도입 (형질도입)한다"는 것은 Nurr1 유전자를 암호화하는 핵산을 뇌세포로 도입하는 것을 의미한다.The term "introducing (transducing) Nurr1" as used herein means introducing a nucleic acid encoding the Nurr1 gene into brain cells.
뇌세포에 Nurr1 및/또는 Foxa2를 코딩하는 유전자를 도입하기 위해 아데노 부속 바이러스(AAV), 레트로바이러스, 아데노바이러스를 이용하는 방법 등 당분야에 공지된 유전자의 세포 내 도입기술 방법이 사용될 수 있다.In order to introduce a gene encoding Nurr1 and/or Foxa2 into brain cells, a method known in the art such as a method using an adeno-associated virus (AAV), a retrovirus, or an adenovirus may be used.
Nurr1 및/또는 Foxa2를 탑재할 때 바이러스성 벡터를 사용할 수 있다. 바이러스성 벡터는 아데노 부속 바이러스(AAV), 아데노바이러스, 레트로 바이러스, 및/또는 렌티 바이러스 등이 사용될 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 따라서, 본 발명에 따른 Nurr1 및/또는 Foxa2 도입은, 일 구체예로서 Nurr1 및/또는 Foxa2를 암호화하는 핵산을 각각 별개의 발현 벡터 또는 하나의 발현벡터에 삽입시킨 후, 이를 뇌세포에 도입하는 것을 포함할 수 있다.Viral vectors can be used when loading Nurr1 and/or Foxa2. As the viral vector, adeno-associated virus (AAV), adenovirus, retrovirus, and/or lentivirus may be used, but is not limited thereto. Therefore, the introduction of Nurr1 and/or Foxa2 according to the present invention, in one embodiment, involves inserting nucleic acids encoding Nurr1 and/or Foxa2 into separate expression vectors or into one expression vector and then introducing them into brain cells. can include
Nurr1 및/또는 Foxa2를 암호화하는 각 핵산은 당업계에 공지된 Nurr1 및 Foxa2를 암호화하는 염기서열을 가지는 것이라면 제한 없이 사용될 수 있다. 또한, 핵산은 Nurr1 및/또는 Foxa2의 각 기능적 동등물을 암호화하는 염기서열을 가질 수 있다. 기능적 동등물이란 Nurr1 및/또는 Foxa2의 아미노산서열과 적어도 60% 이상, 70% 이상, 80% 이상의 서열 상동성(즉, 동일성)을 갖는 폴리펩티드를 말한다. 예를 들면, 기능적 동등물은 60%, 61%, 62%, 63%, 64%, 65%, 66%, 67%, 68%, 69%, 70%, 70%, 71%, 72%, 73%, 74%, 75%, 76%, 77%, 78%, 79%, 80%, 81%, 82%, 83%, 84%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%, 100%의 서열 상동성을 갖는 폴리펩티드를 포함한다. 기능적 동등물은 아미노산 서열 중 일부가 부가, 치환 또는 결실의 결과로 생성될 것일 수 있다. 아미노산의 결실 또는 치환은 본 발명의 폴리펩티드의 생리활성에 직접적으로 관련되지 않은 영역에 위치해 있을 수 있다.Each nucleic acid encoding Nurr1 and/or Foxa2 may be used without limitation as long as it has a nucleotide sequence encoding Nurr1 and Foxa2 known in the art. In addition, the nucleic acid may have a nucleotide sequence encoding each functional equivalent of Nurr1 and/or Foxa2. A functional equivalent refers to a polypeptide having at least 60% or more, 70% or more, or 80% or more sequence homology (i.e., identity) to the amino acid sequence of Nurr1 and/or Foxa2. For example, functional equivalents are 60%, 61%, 62%, 63%, 64%, 65%, 66%, 67%, 68%, 69%, 70%, 70%, 71%, 72%, 73%, 74%, 75%, 76%, 77%, 78%, 79%, 80%, 81%, 82%, 83%, 84%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89% , 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%, 100% sequence homology. Functional equivalents may be those that result from additions, substitutions or deletions of some of the amino acid sequences. Amino acid deletion or substitution may be located in a region not directly related to the physiological activity of the polypeptide of the present invention.
또한, Nurr1 및/또는 Foxa2를 암호화하는 핵산은 당업계에 공지된 유전자 재조합 방법에 의하여 제조될 수 있다. 예를 들어, Nurr1 및/또는 Foxa2를 암호화하는 핵산은 게놈으로부터 핵산을 증폭시키기 위한 PCR 증폭, 화학적 합성법 또는 cDNA 서열을 제조하는 기술로 제조될 수 있다.In addition, nucleic acids encoding Nurr1 and/or Foxa2 can be prepared by genetic recombination methods known in the art. For example, nucleic acids encoding Nurr1 and/or Foxa2 can be prepared by PCR amplification to amplify nucleic acids from the genome, chemical synthesis, or techniques to prepare cDNA sequences.
Nurr1 및/또는 Foxa2를 암호화하는 핵산은 발현 조절 서열에 작동 가능하게 연결되어 발현 벡터 내에 삽입될 수 있다. 용어 “작동 가능하게 연결된다(operably linked)”는 것은 하나의 핵산 단편이 다른 핵산 단편과 결합되어 그의 기능 또는 발현이 다른 핵산 단편에 의해 영향을 받는 것을 의미한다. 또한, 발현 조절 서열(expression control sequence)이란 특정한 숙주 세포에서 작동 가능하게 연결된 핵산 서열의 발현을 조절하는 DNA 서열을 의미한다. 그러한 조절 서열은 전사를 개시하기 위한 프로모터, 전사를 조절하기 위한 임의의 오퍼레이터 서열, 적합한 mRNA 리보좀 결합 부위를 코딩하는 서열 및 전사 및 해독의 종결을 조절하는 서열을 포함할 수 있다. 이들을 통틀어 'Nurr1 및/또는 Foxa2를 암호화하는 핵산을 포함하는 DNA 구조물'이라고 표현할 수도 있다.A nucleic acid encoding Nurr1 and/or Foxa2 can be inserted into an expression vector operably linked to an expression control sequence. The term “operably linked” means that one nucleic acid fragment is associated with another nucleic acid fragment so that its function or expression is affected by the other nucleic acid fragment. In addition, expression control sequence (expression control sequence) refers to a DNA sequence that controls the expression of operably linked nucleic acid sequences in a specific host cell. Such regulatory sequences may include promoters to initiate transcription, optional operator sequences to regulate transcription, sequences encoding suitable mRNA ribosome binding sites, and sequences to control termination of transcription and translation. In total, these may be expressed as 'DNA constructs containing nucleic acids encoding Nurr1 and/or Foxa2'.
본 명세서상의 용어 “발현 벡터”는 구조유전자를 암호화하는 핵산이 삽입될 수 있고, 숙주 세포 내에서 핵산을 발현할 수 있는 당업계에 공지된 바이러스 벡터 또는 기타 매개체를 의미한다. The term "expression vector" used herein refers to a viral vector or other vehicle known in the art into which a nucleic acid encoding a structural gene can be inserted and capable of expressing the nucleic acid in a host cell.
본 발명에 있어서 벡터는 바이러스 벡터일 수 있다. 바이러스 벡터는 아데노 부속 바이러스 (AAV) 벡터, 레트로바이러스 벡터, 아데노바이러스 벡터, 렌티바이러스 벡터, 허피스 바이러스 벡터, 아비폭스바이러스 벡터 등일 수 있고, 예를 들어, 아데노 부속 바이러스 벡터일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.In the present invention, the vector may be a viral vector. The viral vector may be an adeno-associated virus (AAV) vector, a retroviral vector, an adenoviral vector, a lentiviral vector, a herpes virus vector, an avipoxvirus vector, and the like, and may be, for example, an adeno-associated viral vector, but is limited thereto It is not.
아데노 부속 바이러스 (AAV) 벡터는 특정 세포에 바이러스를 만들 수 있는 재료들을 도입하여 제작될 수 있다. 렌티 바이러스 벡터 또한 특정 세포주에 바이러스를 생산할 수 있게 여러 단계를 거쳐 제작될 수 있다. Adeno-associated virus (AAV) vectors can be constructed by introducing materials capable of making viruses into specific cells. Lentiviral vectors can also be constructed in several steps to produce viruses in specific cell lines.
본 발명에 따른 핵산을 포함하는 발현 벡터는 당업계에 공지된 방법, 예를 들어, 이에 한정되지는 않으나, 바이러스 형질도입 (transduction), 일시적 형질감염 (transient transfection), 미세주사 등의 방법을 이용하여 핵산을 세포 내로 유입시키기 위한 공지의 방법에 의해 뇌세포 내로 도입할 수 있다. 예를 들어, Nurr1 및/또는 Foxa2를 아데노 부속 바이러스 (AAV) 또는 렌티바이러스 벡터에 유전자 재조합 기술로 삽입하여 발현벡터를 제작한 후, 이 벡터를 포장(packaging) 세포에 형질도입하고, 형질도입된 포장세포를 배양한 후 분리정제하여 AAV 또는 렌티바이러스 용액을 얻을 수 있다. 그리고 이를 이용하여 뇌세포 (신경세포 및/또는 교질세포)를 감염시킴으로써 뇌세포에 Nurr1 및/또는 Foxa2 유전자를 도입할 수 있다. 이어서, AAV 또는 렌티바이러스 벡터에 포함된 선별마커를 이용하여 Nurr1 및/또는 Foxa2를 단독 발현 또는 동시 발현하는 것을 확인 후 원하는 뇌세포를 수득할 수 있다.The expression vector containing the nucleic acid according to the present invention is prepared using methods known in the art, such as, but not limited to, viral transduction, transient transfection, and microinjection. nucleic acids can be introduced into brain cells by known methods for introducing nucleic acids into cells. For example, after constructing an expression vector by inserting Nurr1 and/or Foxa2 into an adeno-associated virus (AAV) or lentiviral vector by genetic recombination technology, the vector is transduced into packaging cells, and the transduced After culturing the pavement cells, an AAV or lentivirus solution may be obtained by separation and purification. In addition, Nurr1 and/or Foxa2 genes can be introduced into brain cells by infecting brain cells (nerve cells and/or glial cells) using the same. Next, after confirming that Nurr1 and/or Foxa2 are expressed singly or simultaneously using a selectable marker included in AAV or lentiviral vector, desired brain cells can be obtained.
본 발명에 따른 Nurr1 및 Foxa2이 도입되어 발현되는 뇌세포는 하기의 단계를 포함하는 제조방법에 의하여 제조될 수 있다:Brain cells in which Nurr1 and Foxa2 are introduced and expressed according to the present invention can be prepared by a manufacturing method comprising the following steps:
Nurr1 및 Foxa2를 암호화하는 핵산을 포함하는 DNA 구조물(construct)을 포함하는 재조합 바이러스 벡터를 제조하는 제조 단계; Preparing a recombinant viral vector containing a DNA construct containing nucleic acids encoding Nurr1 and Foxa2;
재조합 바이러스 벡터를 바이러스 생산 세포주에 형질감염시켜 Nurr1 및 Foxa2 발현 재조합 바이러스를 제조하는 생산 단계; 및A production step of transfecting the recombinant viral vector into a virus-producing cell line to produce Nurr1 and Foxa2 expressing recombinant viruses; and
Nurr1 및 Foxa2 발현 재조합 바이러스로 뇌세포를 감염시키는 형질감염 단계.Transfection step of infecting brain cells with Nurr1 and Foxa2 expressing recombinant viruses.
DNA 구조물을 발현 조절 서열, 예컨대 프로모터에 작동 가능하게 연결하고 당업계에 공지된 바이러스 벡터에 삽입시켜 재조합 바이러스 벡터를 제조할 수 있다. 이후, Nurr1 및/또는 Foxa2를 암호화하는 핵산을 포함하는 재조합 바이러스 벡터를 바이러스 생산 세포주에 도입하여 Nurr1 및/또는 Foxa2를 발현하는 재조합 바이러스를 제조한다. 바이러스 생산 세포주는 사용한 바이러스 벡터에 해당하는 바이러스를 생산하는 세포주를 사용할 수 있다. 이 후, Nurr1 및 Foxa2 또는 Nurr1을 발현하는 재조합 AAV 또는 렌티바이러스를 뇌세포에 감염시킬 수 있다. 상기 과정은 당업계에 공지된 방법에 의해 수행될 수 있다.Recombinant viral vectors can be prepared by operably linking the DNA construct to expression control sequences, such as promoters, and inserting into viral vectors known in the art. Thereafter, a recombinant virus vector containing nucleic acids encoding Nurr1 and/or Foxa2 is introduced into a virus-producing cell line to prepare a recombinant virus expressing Nurr1 and/or Foxa2. Virus producing cell line A cell line producing a virus corresponding to the used viral vector may be used. Then, recombinant AAV or lentivirus expressing Nurr1 and Foxa2 or Nurr1 can be infected with brain cells. This process may be performed by a method known in the art.
본 발명에 따른 Nurr1 및/또는 Foxa2을 발현하는 뇌세포는 당업계에 공지된 방법에 따라 증식 및 배양될 수 있다.Brain cells expressing Nurr1 and/or Foxa2 according to the present invention may be proliferated and cultured according to methods known in the art.
본 발명에 따른 뇌세포는 목적 세포 타입의 생존 또는 증식을 도와주는 배양액 내에서 배양될 수 있다. 뇌세포의 지속적인 배양을 위해 개발된 첨가제를 배양액에 보충할 수 있다. 예를 들어, Gibco 사에서 시판되는 N2 배지 및 B27 첨가제, 소혈청 등이 있다. 배양 시 배지와 세포의 상태를 관찰하면서 배지를 교환하여 뇌세포를 배양할 수 있다. 이때, 뇌세포가 계속 증식하여 서로 뭉쳐서 신경구(neurospheres)를 형성하면 계대배양을 실시할 수 있다. 계대배양은 상황에 따라 약 7-8일 마다 실시할 수 있다.Brain cells according to the present invention can be cultured in a culture medium that helps the survival or proliferation of the target cell type. Additives developed for the continuous culture of brain cells can be supplemented with the culture medium. For example, N2 medium and B27 additive, bovine serum, etc. commercially available from Gibco. Brain cells can be cultured by exchanging the medium while observing the conditions of the medium and the cells during culture. At this time, if the brain cells continue to proliferate and aggregate with each other to form neurospheres, subculture can be performed. Subcultures can be performed approximately every 7-8 days depending on circumstances.
본 발명에 따른 조성물은 알파-시누클레인의 응집 및 인산화를 억제하여 신경세포 및 교질세포를 포함하는 뇌세포를 손상으로부터 보호해주어, 신경세포가 보충 (재생)되거나 다시 구축 (복원)될 수 있게 할 수 있다.The composition according to the present invention inhibits aggregation and phosphorylation of alpha-synuclein to protect brain cells, including nerve cells and glial cells, from damage, so that nerve cells can be replenished (regenerated) or rebuilt (restored). can
본 명세서 상의 용어 "재생(regeneration)"이란 형성된 기관 또는 개체의 일부가 상실되었을 때 그 부분이 보충되는 현상을 의미한다. 또한, "복원"이란 "재구성(reconstitution)"이라고도 할 수 있는데, 이는 조직의 재구축을 의미하는 것으로 일단 해리된 세포나 조직으로부터 조직이나 기관을 다시 구축하는 것을 의미한다.The term "regeneration" in this specification refers to a phenomenon in which a part of a formed organ or object is supplemented when it is lost. In addition, "restoration" may also be referred to as "reconstitution", which means the reconstruction of a tissue, which means reconstructing a tissue or organ from once dissociated cells or tissues.
본 발명의 조성물 또는 세포치료제는 투여 방식에 따라 허용 가능한 담체를 포함하여 적절한 제제로 제조될 수 있다. 투여 방식에 적합한 제제는 공지되어 있으며 전형적으로 막을 통과하는, 이동을 용이하게 하는 제제를 포함할 수 있다.The composition or cell therapy agent of the present invention may be prepared in an appropriate formulation including an acceptable carrier depending on the administration method. Agents suitable for the mode of administration are known and may include agents that facilitate movement, typically across membranes.
또한, 본 발명의 조성물은 일반적인 의약품 제제의 형태로 사용될 수 있다. 비경구용 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제 또는 동결건조제제, 경구 투여 시에는 정제, 트로키, 캡슐, 엘릭시르, 서스펜션, 시럽 또는 웨이퍼 등의 형태로 제조할 수 있으며, 주사제의 경우에는 단위 투약 앰플 또는 다수회 투약 형태로 제조할 수 있다. 또한, 본 발명의 치료용 조성물은 약학적으로 허용되는 담체와 함께 투여될 수 있다. 예를 들어, 경구 투여 시에는 결합체, 활탁제, 붕해제, 부형제, 가용화제, 분산제, 안정화제, 현탁화제, 색소 또는 향료 등을 사용할 수 있다. 주사제의 경우에는 완충제, 보존제, 무통화제, 가용화제, 등장제, 안정화제 등을 혼합하여 사용할 수 있으며, 국소 투여용의 경우에는 기제, 부형제, 윤활제, 보존제 등을 사용할 수 있다.In addition, the composition of the present invention can be used in the form of general pharmaceutical preparations. For parenteral preparations, it can be prepared in the form of sterilized aqueous solutions, non-aqueous solvents, suspensions, emulsions or lyophilized preparations, and for oral administration, tablets, troches, capsules, elixirs, suspensions, syrups or wafers. It can be prepared in unit dose ampoules or multi-dose form. In addition, the therapeutic composition of the present invention may be administered together with a pharmaceutically acceptable carrier. For example, for oral administration, a binder, a lubricant, a disintegrant, an excipient, a solubilizer, a dispersant, a stabilizer, a suspending agent, a colorant or a flavoring agent may be used. In the case of injection, a buffer, preservative, analgesic agent, solubilizer, isotonic agent, stabilizer, etc. may be mixed and used, and in the case of topical administration, a base, excipient, lubricant, preservative, etc. may be used.
본 발명의 또 다른 양태는, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 벡터; 및 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)로 이루어지는 그룹에서 선택된 어느 하나를 포함하는, 알파-시누클레인 (α-synuclein) 단백질 응집으로 인해 발병하는 질환의 예방 또는 치료용 조성물이다.Another aspect of the present invention is a vector loaded with Nurr1 and Foxa2 genes; And a composition for preventing or treating a disease caused by alpha-synuclein protein aggregation, comprising any one selected from the group consisting of brain cells into which the Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 발명의 또 다른 양태는, 다음 단계를 포함하는 알파-시누클레인 단백질 응집으로 인해 발병하는 질환의 치료 또는 완화 방법이다.Another aspect of the present invention is a method for treating or alleviating a disease caused by alpha-synuclein protein aggregation comprising the following steps.
Nurr1 및 Foxa2 유전자가 탑재된 바이러스 벡터; 및 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)로 이루어지는 그룹에서 선택된 어느 하나를 포함하는 조성물을 대상에게 투여하는 단계.Viral vectors loaded with Nurr1 and Foxa2 genes; and administering to a subject a composition comprising any one selected from the group consisting of brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
본 명세서 상의 용어 "대상"은 치료, 관찰 또는 실험의 대상인 척추동물, 예를 들어, 소, 돼지, 말, 염소, 개, 고양이, 쥐, 생쥐, 토끼, 기니아 피그, 인간 등일 수 있다.The term "subject" in the present specification may be a vertebrate animal that is a subject of treatment, observation, or experiment, for example, cow, pig, horse, goat, dog, cat, rat, mouse, rabbit, guinea pig, human, and the like.
본 명세서 상의 용어 "치료"는 이롭거나 바람직한 임상적 결과를 수득하기 위한 접근을 의미한다. 본 발명의 목적을 위해서, 이롭거나 바람직한 임상적 결과는 비제한적으로, 증상의 완화, 질병 범위의 감소, 질병 상태의 안정화 (즉, 악화되지 않음), 질병 진행의 지연 또는 속도의 감소, 질병 상태의 개선 또는 일시적 완화 및 경감 (부분적이거나 전체적으로), 검출 가능하거나 또는 검출되지 않거나의 여부를 포함한다. 또한, "치료"는 치료를 받지 않았을 때 예상되는 생존율과 비교하여 생존율을 늘이는 것을 의미할 수도 있다. "치료"는 치료학적 치료 및 예방적 또는 예방조치 방법 모두를 가리킨다. 치료들은 예방되는 장애뿐만 아니라 이미 발생한 장애에 있어서 요구되는 치료를 포함한다. 질병을 "완화 (Palliating)"하는 것은 치료를 하지 않은 경우와 비교하여, 질병상태의 범위 및/또는 바람직하지 않은 임상적 징후가 감소되거나 및/또는 진행의 시간적 추이 (time course)가 늦춰지거나 길어지는 것을 의미한다.The term "treatment" as used herein refers to an approach to obtain beneficial or desirable clinical results. For purposes of this invention, beneficial or desired clinical results include, but are not limited to, alleviation of symptoms, reduction of disease extent, stabilization of disease state (i.e., not worsening), delay or slowing of disease progression, disease state improvement or palliation and relief (partial or total), detectable or undetectable. "Treatment" can also mean prolonging survival as compared to expected survival if not receiving treatment. “Treatment” refers to both therapeutic treatment and prophylactic or prophylactic methods. Treatments include treatment required for disorders that have already occurred as well as disorders that are prevented. "Palliating" a disease means reducing the extent and/or undesirable clinical signs of the disease state and/or slowing or prolonging the time course of the disease compared to no treatment. means to lose
본 발명의 일 구현예에서, 알파-시누클레인으로 인해 발병된 질환은 파킨슨병 (Parkinson's disease) 및 루이소체 치매 (Dementia with Lewy Bodies)로 이루어지는 군에서 선택된 질환일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.In one embodiment of the present invention, the disease caused by alpha-synuclein may be a disease selected from the group consisting of Parkinson's disease and Dementia with Lewy Bodies, but is not limited thereto.
또한, 본 발명의 치료용 조성물을 이용하여 알파-시누클레인으로 인해 발병된 질환을 치료하는 방법은 적절한 방법으로 대상체 또는 환자에게 소정의 물질이 도입되는 일반적인 경로를 통하여 투여하는 것을 포함할 수 있다. In addition, a method of treating a disease caused by alpha-synuclein using the therapeutic composition of the present invention may include administering to a subject or patient in an appropriate manner through a general route through which a predetermined substance is introduced.
투여방법으로는 뇌 내 투여, 중뇌 투여, 뇌실 내 투여, 척추강 투여, 복강 내 투여, 정맥 내 투여, 근육 내 투여, 피하 투여, 피내 투여, 경구 투여, 국소 투여, 비내 투여, 폐내 투여 및 직장 내 투여가 있으나, 이에 제한되지 않는다. Methods of administration include intracerebral, midbrain, intraventricular, spinal, intraperitoneal, intravenous, intramuscular, subcutaneous, intradermal, oral, topical, intranasal, intrapulmonary, and rectal administration. My administration includes, but is not limited to.
또한, 본 발명에 따른 조성물은 활성 물질이 표적 세포로 이동할 수 있는 임의의 장치에 의해 투여될 수 있다. 투여방식 및 제제는 정위고정기(Stereotactic System)를 이용한 뇌 중뇌 주사제, 뇌 흑색질 주사제, 뇌실 주사제, 뇌척수액 주사제, 정맥 주사제, 피하 주사제, 피내 주사제, 근육 주사제 또는 점적 주사제일 수 있다. 주사제는 생리식염액 또는 링겔액 등의 수성 용제, 식물유, 고급 지방산 에스테르 (예로, 올레인산에칠 등), 알코올류 (예로, 에탄올, 벤질알코올, 프로필렌글리콜 또는 글리세린 등) 등의 비수성 용제 등을 이용하여 제조할 수 있다. 주사제는 변질 방지를 위한 안정화제 (예로, 아스코르빈산, 아황산수소나트륨, 피로아황산나트륨, BHA, 토코페롤, EDTA 등), 유화제, pH 조절을 위한 완충제, 미생물 발육을 저지하기 위한 보존제 (예로, 질산페닐수은, 치메로살, 염화벤잘코늄, 페놀, 크레솔, 벤질알코올 등) 등의 약제학적 담체를 포함할 수 있다. In addition, the composition according to the present invention can be administered by any device capable of transporting an active substance to a target cell. The administration method and formulation may be a brain midbrain injection, brain substantia nigra injection, ventricle injection, cerebrospinal fluid injection, intravenous injection, subcutaneous injection, intradermal injection, intramuscular injection or drip injection using a stereotactic system. Injections are formulated with aqueous solvents such as physiological saline or IV, non-aqueous solvents such as vegetable oils, higher fatty acid esters (eg, oleic acid ethyl, etc.), alcohols (eg, ethanol, benzyl alcohol, propylene glycol or glycerin, etc.). can be produced using Injections contain a stabilizer to prevent deterioration (e.g., ascorbic acid, sodium bisulfite, sodium pyrosulfite, BHA, tocopherol, EDTA, etc.), an emulsifier, a buffer to adjust pH, and a preservative to prevent microbial growth (e.g., nitric acid). phenylmercury, thimerosal, benzalkonium chloride, phenol, cresol, benzyl alcohol, etc.) and the like).
본 발명에 따른 조성물은 대상에게 약학적 유효량으로 투여될 수 있다. 약학적 유효량은 질환의 종류, 대상체(환자)의 연령, 체중, 건강, 성별, 대상체(환자)의 약물에 대한 민감도, 투여 경로, 투여 방법, 투여 횟수, 치료 기간, 배합 또는 동시 사용되는 약물 등 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다.A composition according to the present invention can be administered to a subject in a pharmaceutically effective amount. The pharmaceutically effective amount is the type of disease, the age, weight, health, sex of the subject (patient), the sensitivity of the subject (patient) to the drug, the route of administration, the method of administration, the number of times of administration, the treatment period, drugs used in combination or concurrently, etc. It can be readily determined by a person skilled in the art according to factors well known in the medical arts.
본 발명에 따른 Foxa2 및/또는 Nurr1 유전자가 도입된 뇌세포는 조성물의 형태로 치료학적 유효량에 따라 병변 부위에 직접 이식될 수 있다.The brain cells into which the Foxa2 and/or Nurr1 genes according to the present invention have been introduced can be directly transplanted into the lesion site according to a therapeutically effective amount in the form of a composition.
본 명세서 상의 용어 "치료학적 유효량"은 알파-시누클린의 응집 또는 인산화에 의해 유발되는 대상체 또는 환자의 생리학적 효과를 중지 또는 경감시키기에 충분한 양을 의미한다. 사용된 세포의 치료학적 유효량은 대상체 (환자)의 필요성, 대상체 (환자)의 연령, 생리학적 상태 및 건강, 소정의 치료 효과, 치료에 표적하고자 하는 조직의 크기 및 면적, 병변의 정도 및 선택된 전달 경로에 따라 결정될 수 있다. 또한, 세포는 저 세포 투여량의 다중 소형 이식편으로 소정의 표적 조직 내 한곳 이상의 부위에 투여될 수 있다. 본 발명의 세포는 이식 전에 완전히 분리되어, 예컨대 단일 세포의 현탁액을 형성하거나, 또는 이식 전에 거의 완전히 분리되어, 예컨대 세포의 소형 응집물을 형성할 수 있다. 세포는 이들을 소정의 조직 부위로 이식 또는 이동시키고, 기능적으로 결핍된 영역을 재구성 또는 재생하는 방식으로 투여할 수 있다.As used herein, the term "therapeutically effective amount" means an amount sufficient to stop or alleviate the physiological effects of a subject or patient caused by aggregation or phosphorylation of alpha-synuclein. The therapeutically effective amount of the cells used depends on the need of the subject (patient), the age, physiological state and health of the subject (patient), the desired therapeutic effect, the size and area of the tissue to be targeted for treatment, the extent of the lesion and the selected delivery It can be determined according to the route. Alternatively, the cells can be administered to more than one site in a given target tissue in multiple mini-grafts at low cell doses. The cells of the present invention may be completely isolated prior to transplantation, eg forming a suspension of single cells, or may be almost completely isolated prior to transplantation, eg forming small aggregates of cells. Cells can be administered by transplanting or migrating them to a given tissue site and reconstructing or regenerating functionally deficient areas.
치료학적으로 유효하게 달성하도록 투여할 수 있는 세포의 적당한 범위는 당업자의 통상의 지식 내에서 대상체 또는 환자에 맞추어 적절히 결정될 수 있다. 예를 들어, 본 발명에 따른 조성물에 포함될 수 있는 세포는 약 10 내지 1,000,000,000 일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.An appropriate range of cells that can be administered to achieve a therapeutic effect can be appropriately determined according to the subject or patient within the common knowledge of those skilled in the art. For example, the number of cells that may be included in the composition according to the present invention may be about 10 to 1,000,000,000, but is not limited thereto.
본 발명의 조성물의 적합한 투여량은 제제화 방법, 투여 방식, 대상체 (환자)의 연령, 체중, 성, 질병 증상의 정도, 음식, 투여 시간, 투여 경로, 배설 속도 및 반응 감응성과 같은 요인들에 의해 결정될 수 있다. 보통으로 숙련된 의사는 목적하는 치료에 효과적인 투여량을 용이하게 결정 및 처방할 수 있다. 본 발명의 약제학적 조성물은 1 × 101~ 1 × 1013 virus genome(vg)/㎕, 1 × 102~ 1 × 1013 vg/㎕, 1 × 103~ 1 × 1013 vg/㎕, 1 × 104~ 1 × 1013 vg/㎕, 1 × 105~ 1 × 1013 vg/㎕, 1 × 106~ 1 × 1013 vg/㎕, 1 × 107~ 1 × 1013 vg/㎕, 1 × 108~ 1 × 1013 vg/㎕, 1 × 109~ 1 × 1013 vg/㎕, 1 × 1010~ 1 × 1013 vg/㎕, 1 × 1011~ 1 × 1013 vg/㎕, 1 × 1012~ 1 × 1013 vg/㎕, 1 × 101~ 1 × 1012 vg/㎕, 1 × 101~ 1 × 1011 vg/㎕, 1 × 101~ 1 × 1010 vg/㎕, 1 × 101~ 1 × 109 vg/㎕, 1 × 101~ 1 × 108 vg/㎕, 1 × 101~ 1 × 107 vg/㎕, 1 × 101~ 1 × 106 vg/㎕, 1 × 101~ 1 × 105 vg/㎕, 1 × 101~ 1 × 104 vg/㎕, 1 × 101~ 1 × 103 vg/㎕, 1 × 101~ 1 × 102 vg/㎕, 1 × 102~ 1 × 1012 vg/㎕, 1 × 103~ 1 × 1011 vg/㎕, 1 × 104~ 1 × 1010 vg/㎕, 1 × 105~ 1 × 109 vg/㎕, 1 × 106~ 1 × 108 vg/㎕, 1 × 102~ 1 × 103 vg/㎕, 1 × 103~ 1 × 104 vg/㎕, 1 × 104~ 1 × 105 vg/㎕, 1 × 105~ 1 × 106 vg/㎕, 1 × 106~ 1 × 107 vg/㎕, 1 × 107~ 1 × 108 vg/㎕, 1 × 108~ 1 × 109 vg/㎕, 1 × 109~ 1 × 1010 vg/㎕, 1 × 1010~ 1 × 1011 vg/㎕, 1 × 1011~ 1 × 1012 vg/㎕의 바이러스 벡터, 또는 바이러스 유전자를 포함할 수 있다. 통상적으로 1 × 106 ~ 2 × 1016 vg/dose를 환자에 1회 ~ 5회 주사할 수 있다. 효과의 지속을 위해 수개월 또는 수년 후에 다시 유사한 방법으로 주사할 수 있다.A suitable dosage of the composition of the present invention depends on factors such as formulation method, administration method, subject's (patient's) age, body weight, sex, severity of disease symptoms, food, administration time, administration route, excretion rate and reaction sensitivity. can be determined A ordinarily skilled physician can readily determine and prescribe effective dosages for the desired treatment. The pharmaceutical composition of the present invention contains 1 × 10 1 to 1 × 10 13 virus genome (vg) / μl, 1 × 10 2 to 1 × 10 13 vg / μl, 1 × 10 3 to 1 × 10 13 vg / μl, 1 × 10 4 to 1 × 10 13 vg/µl, 1 × 10 5 to 1 × 10 13 vg/µl, 1 × 10 6 to 1 × 10 13 vg/µl, 1 × 10 7 to 1 × 10 13 vg/µl μl, 1 × 10 8 to 1 × 10 13 vg/μl, 1 × 10 9 to 1 × 10 13 vg/μl, 1 × 10 10 to 1 × 10 13 vg/μl, 1 × 10 11 to 1 × 10 13 vg/μL, 1 × 10 12 to 1 × 10 13 vg/μL, 1 × 10 1 to 1 × 10 12 vg/μL, 1 × 10 1 to 1 × 10 11 vg/μL, 1 × 10 1 to 1 × 10 10 vg/μL, 1 × 10 1 to 1 × 10 9 vg/μL, 1 × 10 1 to 1 × 10 8 vg/μL, 1 × 10 1 to 1 × 10 7 vg/μL, 1 × 10 1 to 1 × 10 6 vg/μL, 1 × 10 1 to 1 × 10 5 vg/μL, 1 × 10 1 to 1 × 10 4 vg/μL, 1 × 10 1 to 1 × 10 3 vg/μL, 1 × 10 1 to 1 × 10 2 vg/μL, 1 × 10 2 to 1 × 10 12 vg/μL, 1 × 10 3 to 1 × 10 11 vg/μL, 1 × 10 4 to 1 × 10 10 vg/μL, 1 × 10 5 to 1 × 10 9 vg/μL, 1 × 10 6 to 1 × 10 8 vg/μL, 1 × 10 2 to 1 × 10 3 vg/μL, 1 × 10 3 to 1 × 10 4 vg/μL , 1 × 10 4 to 1 × 10 5 vg/μL, 1 × 10 5 to 1 × 10 6 vg/μL, 1 × 10 6 to 1 × 10 7 vg/μL, 1 × 10 7 to 1 × 10 8 vg /μl, 1 × 10 8 to 1 × 10 9 vg/μl, 1 × 10 9 to 1 × 10 10 vg/μl, 1 × 10 10 to 1×10 11 vg/μl, 1×10 11 to 1×10 12 vg/μl of a viral vector or viral gene. Typically, 1 × 10 6 to 2 × 10 16 vg/dose can be injected into the patient 1 to 5 times. In order to maintain the effect, it can be injected again in a similar manner after several months or years.
본 발명은 알파-시누클레인 응집 억제용 조성물 및 응집억제 방법에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 Nurr1 및 Foxa2 유전자를 도입하여 발현을 유도함으로써 알파-시누클레인 응집 (aggregation) 및 인산화 (phosphorylation)을 억제하는 기술에 관한 것으로, 본 발명에 따른 조성물은 알파-시누클레인의 응집 및 인산화를 억제하는 효과가 우수하여 파킨슨병의 치료 및 예방에 이용될 수 있다.The present invention relates to a composition for inhibiting alpha-synuclein aggregation and a method for inhibiting aggregation, and more particularly, to inhibit alpha-synuclein aggregation and phosphorylation by introducing Nurr1 and Foxa2 genes to induce expression. Regarding technology, the composition according to the present invention has an excellent effect of inhibiting aggregation and phosphorylation of alpha-synuclein, and thus can be used for the treatment and prevention of Parkinson's disease.
도 1은 일 실시예에 따라 대조군 (Cont)과 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 도파민 뉴런 및 교질세포 (NF)에 알파-시누클레인 PFF (Preformed fibril)를 처리한 후, 웨스턴 블랏을 진행한 결과를 나타낸 사진이다.
도 2는 일 실시예에 따라 웨스턴 블랏을 진행한 후 대조군과 Nurr1 및 Foxa2 유전자를 도입한 군 (NF)의 알파-시누클레인 응집 정도를 비교한 그래프이다.
도 3은 일 실시예에 따라 웨스턴 블랏을 진행한 후 대조군과 Nurr1 및 Foxa2 유전자를 도입한 군 (NF)의 인산화된 알파-시누클레인 단량체 수준을 나타낸 그래프이다.
도 4는 일 실시예에 따라 웨스턴 블랏을 진행한 후 대조군과 Nurr1 및 Foxa2 유전자를 도입한 군 (NF)의 인산화된 알파-시누클레인 응집체 수준을 나타낸 그래프이다.
도 5는 일 실시예에 따라 대조군 (Cont)과 Nurr1 유전자 단독 도입 (N), Foxa2 유전자 단독 도입 (F) 및 Nurr1 및 Foxa2 유전자가 모두 도입 (NF)된 도파민 뉴런 및 교질세포에 알파-시누클레인 PFF (Preformed fibril)를 처리한 후, 웨스턴 블랏을 진행한 결과를 나타낸 사진이다.
도 6는 일 실시예에 따라 웨스턴 블랏을 진행한 후 대조군 (Con), Foxa2 단독 도입군 (F), Nurr1 단독 도입군 (N) 및 Nurr1 및 Foxa2 유전자를 도입한 군 (NF)의 알파-시누클레인 응집체와 단량체의 수준을 비교한 그래프이다.
도 7은 일 실시예에 따라 야생형 (WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (Cont) 및 Nurr1과 Foxa2를 도입한 실험군 (NF)의 폴 테스트 (Pole test) 결과를 나타낸 그래프이다.
도 8은 일 실시예에 따라 야생형 (WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (Cont) 및 Nurr1과 Foxa2를 도입한 실험군 (NF)의 폴 테스트 결과를 나타낸 사진이다.
도 9는 일 실시예에 따라 야생형 (WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (PD) 및 Nurr1과 Foxa2를 도입한 실험군 (NF)의 8주차에서의 빔 테스트 (Beam test) 결과를 나타낸 그래프이다.
도 10은 일 실시예에 따라 야생형 (WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (PD) 및 Nurr1과 Foxa2를 도입한 실험군 (NF)의 12주차에서의 빔 테스트 결과를 나타낸 그래프이다.
도 11은 일 실시예에 따라 야생형 (WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (PD) 및 Nurr1과 Foxa2를 도입한 실험군 (NF)의 빔 테스트 결과를 나타낸 사진이다.
도 12는 일 실시예에 따라 오픈 필드 테스트 (Open Field test; OFT)에 따라 야생형 (WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (PD) 및 Nurr1과 Foxa2를 도입한 실험군 (NF)의 이동한 총 거리 (Total distance)를 나타낸 그래프이다.
도 13은 일 실시예에 따라 오픈 필드 테스트에 따라 야생형 (WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (PD) 및 Nurr1과 Foxa2를 도입한 실험군 (NF)의 평균 속력 (Average speed)를 나타낸 그래프이다.
도 14는 일 실시예에 따라 야생형 (WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (PD) 및 Nurr1과 Foxa2를 도입한 실험군 (NF)의 오픈 필드 테스트 결과를 나타낸 도면이다.
도 15는 일 실시예에 따라 야생형 (WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (PD) 및 Nurr1과 Foxa2를 도입한 실험군 (NF)의 8주차에서의 로타로드 테스트 (Rotarod test) 결과를 나타낸 그래프이다.
도 16은 일 실시예에 따라 야생형 (WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (PD) 및 Nurr1과 Foxa2를 도입한 실험군 (NF)의 12주차에서의 로타로드 테스트 결과를 나타낸 그래프이다.
도 17은 일 실시예에 따라 야생형 (WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (PD) 및 Nurr1과 Foxa2를 도입한 실험군 (NF)의 로타로드 테스트 결과를 나타낸 사진이다.Figure 1 shows the results of western blotting after processing alpha-synuclein PFF (Preformed fibril) to a control group (Cont) and dopamine neurons and glial cells (NF) into which Nurr1 and Foxa2 genes were introduced. This is the picture shown
Figure 2 is a graph comparing the degree of alpha-synuclein aggregation between a control group and a group (NF) into which Nurr1 and Foxa2 genes were introduced after western blotting according to one embodiment.
Figure 3 is a graph showing the levels of phosphorylated alpha-synuclein monomers in a control group and a group (NF) into which Nurr1 and Foxa2 genes were introduced after western blotting according to an embodiment.
Figure 4 is a graph showing the levels of phosphorylated alpha-synuclein aggregates in a control group and a group (NF) into which Nurr1 and Foxa2 genes were introduced after Western blotting according to one embodiment.
5 shows alpha-synuclein in dopaminergic neurons and glial cells in which a control group (Cont), Nurr1 gene alone (N), Foxa2 gene alone (F), and both Nurr1 and Foxa2 genes are introduced (NF) according to an embodiment. After processing PFF (Preformed fibril), it is a photograph showing the result of Western blotting.
Figure 6 shows alpha-Synu of a control group (Con), a Foxa2-only introduction group (F), a Nurr1-only introduction group (N), and a Nurr1 and Foxa2 gene introduction group (NF) after Western blotting according to an embodiment. It is a graph comparing the levels of Klein aggregates and monomers.
7 is a graph showing the results of a pole test of a wild type (WT), a control group (Cont), which is a Parkinson's disease model, and an experimental group (NF) introduced with Nurr1 and Foxa2, according to an embodiment.
8 is a photograph showing the poll test results of a wild type (WT), a control group (Cont), which is a Parkinson's disease model, and an experimental group (NF) introduced with Nurr1 and Foxa2 according to an embodiment.
9 is a graph showing beam test results at
10 is a graph showing beam test results at
11 is a photograph showing the beam test results of a wild type (WT), a control group (PD), which is a Parkinson's disease model, and an experimental group (NF) introduced with Nurr1 and Foxa2 according to an embodiment.
12 is a total distance traveled by a wild type (WT), a control group (PD), which is a Parkinson's disease model, and an experimental group (NF) introduced with Nurr1 and Foxa2 according to an open field test (OFT) according to an embodiment. It is a graph showing Total distance).
13 is a graph showing average speeds of a wild type (WT), a control group (PD), which is a Parkinson's disease model, and an experimental group (NF) introduced with Nurr1 and Foxa2 according to an open field test according to an embodiment.
14 is a view showing open field test results of a wild type (WT), a control group (PD), which is a Parkinson's disease model, and an experimental group (NF) introduced with Nurr1 and Foxa2 according to an embodiment.
15 is a graph showing the results of a Rotarod test at
16 is a graph showing the results of the rotarod test at
17 is a photograph showing the rotarod test results of a wild type (WT), a control group (PD), which is a Parkinson's disease model, and an experimental group (NF) introduced with Nurr1 and Foxa2 according to an embodiment.
이하, 본 발명을 하기의 실시예에 의하여 더욱 상세히 설명한다. 그러나 이들 실시예는 본 발명을 예시하기 위한 것일 뿐이며, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의하여 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, the present invention will be described in more detail by the following examples. However, these examples are only for illustrating the present invention, and the scope of the present invention is not limited by these examples.
실시예 1: 벡터 제조Example 1: Vector Preparation
렌티 바이러스들을 형질 도입하기 위해 제조하였다. Nurr1 또는 Foxa2을 발현하는 렌티바이러스 벡터들은 CMV 촉진유전자 (promoter)의 통제하에 각각의 cDNA를 pCDH (System Biosciences사, Mountain View, CA)의 다중클로닝 부위에 삽입하여 생성하였다. pGIPZ-shNurr1과 pGIPZ-shFoxa2 렌티바이러스 벡터들을 Open Biosystems사 (Rockford, IL)로부터 구입하였다. 빈 (empty) 구조체 (backbone) 벡터들, pCDH 또는 pGIPZ은 음성대조로 사용되었다. 렌티바이러스의 역가는 QuickTiterTM HIV 렌티바이러스 정량 키트 (Cell Biolabs사, San Diego, CA)를 이용하여 측정되었고, 106개의 형질도입 단위 (transducing unit, TU)/ml (60 내지 70ng/ml)을 포함한 200μl/well (24 well 접시) 또는 2ml/6cm 접시가 각각의 형질도입 반응에 사용되었다. Lentiviruses were prepared for transduction. Lentiviral vectors expressing Nurr1 or Foxa2 were generated by inserting each cDNA into the multiple cloning site of pCDH (System Biosciences, Mountain View, CA) under the control of the CMV promoter. The pGIPZ-shNurr1 and pGIPZ-shFoxa2 lentiviral vectors were purchased from Open Biosystems (Rockford, IL). Empty backbone vectors, pCDH or pGIPZ, were used as negative controls. The titer of lentivirus was measured using the QuickTiter™ HIV Lentivirus Quantification Kit (Cell Biolabs, San Diego, CA), and 200 μl containing 106 transducing units (TU)/ml (60 to 70 ng/ml) /well (24 well dish) or 2ml/6cm dish was used for each transduction reaction.
정위방법의 (stereotaxic) 주사에 의해 생체 내 발현을 유도하기 위해, CMV 촉진자의 통제하에 Nurr1 또는 Foxa2를 발현하는 AAV는 각각의 cDNA들을 pAAV-MCS 벡터 (Addgene사, Cambridge, MA)로 서브클로닝함으로써 생성하였다. 전달된 유전자 발현효율을 평가하기 위하여, 녹색 형광 단백질 (Green Fluorescence Protein, GFP)를 발현하는 AAV들도 생성하였다. AAV들(혈청형 9 또는 2)의 생산 및 분리정제는 한국 과학기술연구원(대한민국 서울)에서 수행하였다. AAV 역가는 QuickTiterTM AAV 정량 키트(Cell Biolabs사)로 측정되었다. 공동 발현 연구는 개별 바이러스 제제의 혼합물(1:1, v:v)로 세포를 감염시켜 수행되었다.To induce in vivo expression by stereotaxic injection, AAV expressing Nurr1 or Foxa2 under the control of the CMV promoter was subcloned into the pAAV-MCS vector (Addgene, Cambridge, MA), respectively. Created. To evaluate the efficiency of gene expression delivered, AAVs expressing Green Fluorescence Protein (GFP) were also generated. Production and separation and purification of AAVs (serotype 9 or 2) were performed at the Korea Institute of Science and Technology (Seoul, Korea). AAV titers were measured with the QuickTiterTM AAV Quantification Kit (Cell Biolabs). Co-expression studies were performed by infecting cells with a mixture (1:1, v:v) of individual virus preparations.
실시예 2: 세포 배양Example 2: Cell culture
2-1. 중뇌성 신경줄기세포 (ventral midbrain Neural Progenitor Cell; VM NPC) 배양2-1. Ventral midbrain Neural Progenitor Cell (VM NPC) culture
폴리-L-오르니틴-피브로넥틴 (poly-L-ornitine-fibronectin; PLO-FN)으로 코팅된 6-웰 플레이트 (well plate)에 도파민성 포텐셜 (dopaminergic potential)을 가진 중뇌성 신경줄기세포 (Neural progenitor cell)를 4x105/well로 시딩 (seeding)하였다. 24시간 후 시냅신 (synapsin) 프로모터 통제 하에 Nurr1, Foxa2를 발현하는 렌티 바이러스를 각각 106 transducing unit (TU)/ml (60-70 ng/ml), 1:1 (v:v)로 각각 형질 도입하였다. 대조군으로는 GFP를 발현하는 렌티바이러스를 동일한 용량으로 처리하였다. 이 후, 3일 간 배양하여 뉴런으로 분화시켰다.Neural progenitor cells with dopaminergic potential in 6-well plates coated with poly-L-ornitine-fibronectin (PLO-FN). ) was seeded with 4x10 5 /well. After 24 hours, lentiviruses expressing Nurr1 and Foxa2 under the control of synapsin promoters were transfected at 10 6 transducing unit (TU)/ml (60-70 ng/ml) and 1:1 (v:v), respectively. introduced. As a control group, lentivirus expressing GFP was treated at the same dose. Thereafter, they were cultured for 3 days and differentiated into neurons.
2-2. 중뇌성 교질세포 (Ventral midbrain glia)의 배양2-2. Culture of ventral midbrain glia
중뇌성 교질세포 (Ventral midbrain glia)의 배양을 위해, 폴리-L-오르니틴-피브로넥틴으로 코팅된 100mm x 20mm 배양 접시 (culture dish)에 쥐의 중뇌성 교질세포를 3x106 개로 시딩하고 24시간 후 CMV 프로모터 통제 하에 Nurr1과 Foxa2를 개별적으로 발현하는 렌티 바이러스들을 106 transducing unit (TU)/ml (60-70 ng/ml) 씩, 1:1 (v:v)로 혼합하여 형질 도입하였다. 대조군으로는 대조 바이러스를 동일한 용량으로 처리하였다. 이후, 5일 간 배양하였다.For the culture of ventral midbrain glia, 3x10 6 mice were seeded on a 100 mm x 20 mm culture dish coated with poly-L-ornithine-fibronectin, and after 24 hours Lentiviruses individually expressing Nurr1 and Foxa2 under the control of the CMV promoter were mixed and transduced at a ratio of 1:1 (v:v) at 10 6 transducing unit (TU)/ml (60-70 ng/ml). As a control group, a control virus was treated at the same dose. Thereafter, cultured for 5 days.
2-3. 공동 배양 (co-culture)2-3. co-culture
실시예 2-1에서 배양된 도파민성 중뇌 뉴런 (dopaminergic VM neuron)에 실시예 2-2에서 배양된 교질세포 (VM glia)를 2:1 비율로 시딩하였다 (VM Neuron : VM glia = 2 : 1). 다음 날 알파-시누클레인 PFF (Preformed fibril)를 최종 농도가 2μg/ml이 되게 처리하고 7일 후 알파-시누클레인의 단백질 양을 웨스턴 블랏으로 확인하였다. Dopaminergic VM neurons cultured in Example 2-1 were seeded with VM glia cultured in Example 2-2 at a ratio of 2:1 (VM Neuron : VM glia = 2 : 1 ). The next day, alpha-synuclein PFF (Preformed fibril) was treated to a final concentration of 2 μg/ml, and after 7 days, the protein amount of alpha-synuclein was confirmed by Western blotting.
실시예 3: 웨스턴 블랏Example 3: Western blot
플레이팅 된 세포에 1% Triton X-100/PBS solution에 단백질 분해효소 저해인자 (Protease inhibitor; Roche)와 인산 가수 분해 효소 억제제 칵테일 (phosphatase inhibitor cocktails, Sigma)을 넣어 단백질을 추출하였다. 원심분리 후, 펠렛을 1% SDS 샘플 버퍼로 풀어준 후, 15 μg의 단백질을 SDS-PAGE gel (4-16% gradient gel)에 로딩하였다. 멤브레인에 트랜스퍼 후 5% BSA/TBST에 블로킹 하고 1차 항체를 4℃에서 밤새 인큐베이션하고, 2차 항체를 상온에서 1시간 인큐베이션하였다. 1차 항체는 다음과 같이 사용하였다: α-syn (BD biosciences, 610787); pS129-α-syn (Bio Legend, 825701). 그리고, 웨스턴블랏 실험 결과는 도 1에 나타내었다. 웨스턴블랏 후, ImageJ 프로그램을 이용하여 웨스턴블랏 결과를 정량적으로 측정하였으며, 이를 도 2 내지 4 및 표 1 내지 3에 나타내었다.Protein was extracted by adding protease inhibitor (Roche) and phosphatase inhibitor cocktails (Sigma) to the plated cells in 1% Triton X-100/PBS solution. After centrifugation, the pellet was dissolved in 1% SDS sample buffer, and 15 μg of protein was loaded on an SDS-PAGE gel (4-16% gradient gel). After transfer to the membrane, the membrane was blocked in 5% BSA/TBST, the primary antibody was incubated overnight at 4°C, and the secondary antibody was incubated for 1 hour at room temperature. Primary antibodies were used as follows: α-syn (BD biosciences, 610787); pS129-α-syn (Bio Legend, 825701). And, the western blot test results are shown in FIG. 1 . After Western blotting, Western blotting results were quantitatively measured using the ImageJ program, which are shown in FIGS. 2 to 4 and Tables 1 to 3.
α-syn/β-actinAggregated
α-syn/β-actin
Pα-syn/β-actinMonomeric
Pα-syn/β-actin
Pα-syn/β-actinAggregated
Pα-syn/β-actin
실시예 4: Nurr1 및 Foxa2의 알파-시누클린 응집 및 인산화 억제 확인Example 4: Confirmation of inhibition of alpha-synuclein aggregation and phosphorylation of Nurr1 and Foxa2
웨스턴블랏 결과, 도 1에서 확인할 수 있듯이, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 형질도입된 뉴런 및 교질세포에 알파-시누클레인 PFF를 처리한 경우 Nurr1 및 Foxa2가 처리되지 않은 뉴런 및 교질세포에 비해, 알파-시누클레인 단백질의 응집이 대조군에 비해서 감소된 것을 확인하였다. 또한, 알파-시누클레인 단백질의 인산화된 단량체 및 응집체의 수준도 대조군에 비해서 큰 폭으로 감소한 것을 확인하였다.As a result of western blotting, as can be seen in FIG. 1, when alpha-synuclein PFF was treated in neurons and glial cells transduced with Nurr1 and Foxa2 genes, compared to neurons and glial cells in which Nurr1 and Foxa2 were not treated, alpha-synuclein It was confirmed that the aggregation of the clay protein was reduced compared to the control group. In addition, it was confirmed that the levels of phosphorylated monomers and aggregates of alpha-synuclein protein were significantly reduced compared to the control group.
구체적으로, 도 2 및 표 1에서 확인할 수 있듯이, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 형질도입된 경우 응집된 알파-시누클레인 단백의 양 및 응집이 대조군에 비해 감소하였다. 또한, 도 3 내지 4 및 표 2 내지 3에서 확인할 수 있듯이, Nurr1 및 Foxa2 유전자가 형질도입된 경우 인산화된 알파-시누클레인 응집체의 수준이 대조군의 약 60%의 수준으로 감소하였으며, 단량체 (monomer)의 경우에는 약 30% 수준까지 감소한 것을 확인하였다. Specifically, as can be seen in Figure 2 and Table 1, when the Nurr1 and Foxa2 genes were transduced, the amount and aggregation of aggregated alpha-synuclein protein were reduced compared to the control group. In addition, as can be seen in Figures 3 to 4 and Tables 2 to 3, when the Nurr1 and Foxa2 genes were transduced, the level of phosphorylated alpha-synuclein aggregates was reduced to about 60% of the control group, and the monomers In the case of , it was confirmed that it decreased to about 30% level.
실시예 5: Nurr1 단독 투여와 Nurr1 및 Foxa2 병용투여의 알파-시누클레인 응집체 형성 억제 효과 비교Example 5: Comparison of alpha-synuclein aggregate formation inhibitory effect between single administration of Nurr1 and combined administration of Nurr1 and Foxa2
Nurr1 단독, Foxa2 단독 또는 Nurr1과 Foxa2가 모두 도입된 각각의 뉴런 및 교질세포 세포를 플레이팅하고, 1% Triton X-100/PBS solution에 단백질 분해효소 저해인자 (Protease inhibitor; Roche)와 인산 가수 분해 효소 억제제 칵테일 (phosphatase inhibitor cocktails, Sigma)을 넣어 단백질을 추출하였다.Neurons and glial cells into which Nurr1 alone, Foxa2 alone, or both Nurr1 and Foxa2 were introduced were plated and phosphatized with a protease inhibitor (Roche) in 1% Triton X-100/PBS solution. Enzyme inhibitor cocktails (phosphatase inhibitor cocktails, Sigma) were added to extract proteins.
대조군은 Nurr1 또는 Foxa2를 도입하지 않은 세포를 사용하였다. 원심분리 후, 펠렛을 1% SDS 샘플 버퍼로 풀어준 후, 15 μg의 단백질을 SDS-PAGE gel (4-16% gradient gel)에 로딩하였다. 멤브레인에 트랜스퍼 후 5% BSA/TBST에 블로킹 하고 1차 항체를 4℃에서 밤새 인큐베이션하고, 2차 항체를 상온에서 1시간 인큐베이션하였다. 1차 항체는 다음과 같이 사용하였다: α-syn (BD biosciences, 610787); pS129-α-syn (Bio Legend, 825701). 그리고, 웨스턴블랏 실험 결과는 도 5에 나타내었다. 웨스턴블랏 후, ImageJ 프로그램을 이용하여 웨스턴블랏 결과를 정량적으로 측정하였으며, 이를 도 6 및 표 4에 나타내었다.As a control group, cells not introduced with Nurr1 or Foxa2 were used. After centrifugation, the pellet was dissolved in 1% SDS sample buffer, and 15 μg of protein was loaded on an SDS-PAGE gel (4-16% gradient gel). After transfer to the membrane, the membrane was blocked in 5% BSA/TBST, the primary antibody was incubated overnight at 4°C, and the secondary antibody was incubated for 1 hour at room temperature. Primary antibodies were used as follows: α-syn (BD biosciences, 610787); pS129-α-syn (Bio Legend, 825701). And, the western blot test results are shown in FIG. 5 . After Western blotting, Western blotting results were quantitatively measured using the ImageJ program, which are shown in FIG. 6 and Table 4.
α-syn/β-actinAggregated
α-syn/β-actin
실험결과, 도 6 및 표 4에서 확인할 수 있듯이 Nurr1 및 Foxa2 유전자를 모두 형질도입한 군 (N+F)은 Nurr1 또는 Foxa2를 단독으로 형질도입한 군 (N 또는 F)에 비해서 알파-시누클레인 응집이 현저하게 감소되었음을 확인하였다. 구체적으로, Nurr1 및 Foxa2 유전자를 모두 형질도입한 군은 대조군에 비해 알파-시누클레인 응집을 48 % 이상 감소시켰으며, 특히, Nurr1 단독 투입군에 비해 알파-시누클레인 응집을 32 % 이상 감소시킨 것을 확인하였다. 결과적으로, Nurr1 및 Foxa2 유전자를 모두 형질도입하는 경우, Nurr1을 단독으로 도입하는 경우에 비해 알파-시누클레인 응집을 현저히 감소시킬 수 있는 것이 확인되었으며, 나아가, 파킨슨병 치료에 있어서 Nurr1 및 Foxa2 유전자를 모두 도입하는 것이 더욱 효과적일 것으로 예상된다.Experimental results, as can be seen in Figure 6 and Table 4, the group transduced with both Nurr1 and Foxa2 genes (N+F) was alpha-synuclein aggregation compared to the group transduced with Nurr1 or Foxa2 alone (N or F). It was confirmed that this was significantly reduced. Specifically, the group transduced with both Nurr1 and Foxa2 genes reduced alpha-synuclein aggregation by more than 48% compared to the control group, and in particular, alpha-synuclein aggregation was reduced by more than 32% compared to the Nurr1 alone input group. Confirmed. As a result, when both Nurr1 and Foxa2 genes were transduced, it was confirmed that alpha-synuclein aggregation could be significantly reduced compared to when Nurr1 was introduced alone, and furthermore, Nurr1 and Foxa2 genes were used in the treatment of Parkinson's disease. Incorporating them all is expected to be more effective.
실시예 6: 파킨슨병 모델에서 Nurr1 및 Foxa2 도입에 따른 행동개선 확인Example 6: Confirmation of behavioral improvement according to introduction of Nurr1 and Foxa2 in Parkinson's disease model
6-1. 파킨슨병 모델 (PD model) 마우스의 제작6-1. Construction of Parkinson's disease model (PD model) mouse
ICR 마우스 AAV2-CMV-αsyn-HA와 α-syn PFF 5 μg을 섞어 마우스의 흑질 (substantia nigra; SN)에 주입하였다. 구체적으로, 정위 방법 기계 (stereotaxic instrument)로 마우스를 고정시킨 후, 머리 부위의 피부를 약 1cm 정중절개하여 전정 (bregma)을 확인하였다. 전정을 기준으로 -3.3mm anterior, 1.2mm lateral position에 전기드릴로 두개골을 뚫고 AAV2-CMV-α-syn-HA (1.3 x 1013gc/μL) 2 μL 와 α-syn PFF (5 mg/ mL) 2 μL 을 stereotaxic injector에 loading하여 두개골로부터 4.6mm 깊이로 진입하여 흑질 부위 양측 각각에 2 마이크로리터씩 (양쪽 투여부위별 각 벡터별 투여량은 1.3 x 1013gc/site임) 0.5μl/min 속도로 서서히 투여하였다. 양쪽 흑질 부위에 투여 20분 후 injector를 10분 당 1.5mm 뒤로 빼면서 투여된 혼합물의 유출 (leaking)을 최소화하였다. 의료용 피부 스테이플러를 이용하여 마우스 두개골의 피부를 봉합하고 포비돈으로 소독, 회복 후 케이지에 넣었다.A mixture of 5 μg of ICR mouse AAV2-CMV-αsyn-HA and α-syn PFF was injected into the substantia nigra (SN) of the mouse. Specifically, after fixing the mouse with a stereotaxic instrument, a midline incision of about 1 cm was made in the skin of the head region to confirm the bregma. Based on the vestibule, pierce the skull with an electric drill at -3.3mm anterior and 1.2mm lateral positions, and 2 μL of AAV2-CMV-α-syn-HA (1.3 x 10 13 gc/μL) and α-syn PFF (5 mg/mL) ) Load 2 μL into a stereotaxic injector, enter 4.6 mm deep from the skull, and 2 microliters each on both sides of the substantia nigra (the dose of each vector for both administration sites is 1.3 x 10 13 gc/site) 0.5 μl/min Administered slowly at a rapid rate. After 20 minutes of administration to both substantia nigra regions, the injector was pulled back 1.5 mm per 10 minutes to minimize leakage of the administered mixture. The mouse skull skin was sutured using a medical skin stapler, disinfected with povidone, and placed in a cage after recovery.
투여 4주 후에 Nurr1, Foxa2를 발현하는 바이러스 벡터를 통해 Nurr1 과 Foxa2를 형질도입하였다. 구체적으로, 정위투여 장비 (stereotaxic instrument)로 PD 마우스 모델을 고정시킨 후, 머리 부위의 피부를 약 1cm 정중절개하여 전정 (bregma)을 확인하였다. 전정을 기준으로 -3.3mm anterior, 1.2mm lateral position에 전기드릴로 두개골을 뚫고 AAV9-hNurr1 및 AAV9-hFoxa2를 벡터별 각각의 농도를 1 x 1010gc/μL 농도로 하여 stereotaxic injector에 로딩하였다. 두개골로부터 4.6mm 깊이로 진입하여 흑질 부위 양측 각각에 2 마이크로리터씩 (양쪽 투여부위별 각 벡터별 투여량은 1.0 x 1010gc/site임) 0.5μl/min 속도로 서서히 투여하였다. 양쪽 흑질 부위에 투여 20분 후 injector를 10분 당 1.5mm 뒤로 빼면서 투여된 혼합물의 유출 (leaking)을 최소화하였다. 의료용 피부 스테이플러를 이용하여 두개골의 피부를 봉합하고 포비돈으로 소독, 회복 후 케이지에 넣었다.Four weeks after administration, Nurr1 and Foxa2 were transduced using a viral vector expressing Nurr1 and Foxa2. Specifically, after fixing the PD mouse model with a stereotaxic instrument, a midline incision of about 1 cm was made in the skin of the head region to confirm the bregma. Based on the vestibule, the skull was drilled with an electric drill at -3.3mm anterior and 1.2mm lateral positions, and AAV9-hNurr1 and AAV9-hFoxa2 were loaded into a stereotaxic injector at a concentration of 1 x 10 10 gc/μL for each vector. After entering a depth of 4.6 mm from the skull, 2 microliters were slowly administered to each side of the substantia nigra region (the dose of each vector for both administration sites was 1.0 x 10 10 gc/site) at a rate of 0.5 μl/min. After 20 minutes of administration to both substantia nigra regions, the injector was pulled back 1.5 mm per 10 minutes to minimize leakage of the administered mixture. The skin of the skull was sutured using a medical skin stapler, disinfected with povidone, and placed in a cage after recovery.
6-2. 폴 테스트 (Pole test)6-2. Pole test
Nurr1 및 Foxa2를 형질도입하고 4주, 8주 및 12주 뒤에 pole test를 실시하였다. 테스트는 테스트 2 내지 3일 전에 미리 마우스를 트레이닝 하여 적응시킨 후 진행되었다. 시험 시 야생형 (wild type; WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (Cont) 및 Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 (NF) 군의 마우스가 폴의 상부 끝에서 아래로 내려가는 시간을 측정하였다. 실험 중 폴에서 떨어지거나 미끄러지는 경우는 Negative value 로 설정하여, 해당 주에서 최대값과 같은 값으로 설정하여 데이터를 만들었다. 이때, 야생형 마우스는 6두, 대조군과 Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 마우스는 8두를 실험하였다. 측정된 시간은 일원분산분석 (one-way ANOCA)를 통해 유의한 효과를 결정하였다.A pole test was performed 4 weeks, 8 weeks, and 12 weeks after transduction of Nurr1 and Foxa2. The test was conducted after adapting the mice by training them 2 to 3 days before the test. During the test, the time taken for mice of the wild type (WT), Parkinson's disease model, control group (Cont), and Nurr1 and Foxa2 transduced group (NF) to move down from the upper end of the pole was measured. In the case of falling or slipping from the pole during the experiment, it was set as a negative value, and data was created by setting it to the same value as the maximum value in the state. At this time, 6 wild-type mice and 8 mice of the control and Nurr1 and Foxa2 transduced groups were tested. The measured time determined a significant effect through one-way ANOCA.
실험결과, 도 7 내지 도 8 및 표 5에서 확인할 수 있듯이 대조군 마우스가 야생형 및 Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 (NF) 군의 마우스에 비해 폴을 내려가는 시간이 더 오래 걸렸으며, 폴에서 떨어지거나 미끄러지는 빈도가 높았다. As a result of the experiment, as can be seen in FIGS. 7 to 8 and Table 5, the control mice took longer to go down the poles than the wild-type and mice of the Nurr1 and Foxa2 transduction group (NF) groups, and they did not fall or slip on the poles. frequency was high.
6-3. 빔 테스트 (Beam test)6-3. Beam test
Nurr1 및 Foxa2를 형질도입하고 8주 및 12주 뒤에 빔 테스트를 실시하였다. 테스트는 테스트 2 내지 3일 전에 미리 마우스를 트레이닝 하여 적응시킨 후 진행되었다. 시험에 사용된 Beam은 사각형으로 두께는 10mm였다. 시험 시 야생형 (wild type; WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (PD) 및 Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 (NF) 군의 마우스가 beam의 끝에서 끝으로 이동하는 시간을 2 번씩 측정하였다. 실험 중 빔에서 떨어지거나 미끄러지는 경우는 Negative value 로 설정하여, 해당 주에서 최대값과 같은 값으로 설정하여 데이터를 만들었다. 이때, 야생형 마우스, 대조군 (PD 군), Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 마우스는 모두 6두를 사용하였다. 측정된 시간은 일원분산분석 (one-way ANOCA)를 통해 유의한 효과를 결정하였다.Beam tests were performed 8 and 12 weeks after Nurr1 and Foxa2 were transduced. The test was conducted after adapting the mice by training them 2 to 3 days before the test. The beam used in the test was rectangular and had a thickness of 10 mm. During the test, the time for mice of the wild type (WT), Parkinson's disease model, control group (PD), and Nurr1 and Foxa2 transduced group (NF) groups to move from end to end of the beam was measured twice. In the case of falling or slipping from the beam during the experiment, it was set as a negative value, and data was created by setting it to the same value as the maximum value in the state. At this time, wild-type mice, control group (PD group), and Nurr1 and Foxa2 transduced mice were all 6 mice. The measured time determined a significant effect through one-way ANOCA.
실험결과, 도 7 내지 도 8 및 표 6에서 확인할 수 있듯이 대조군 마우스가 야생형 및 Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 (NF) 군의 마우스에 비해 빔을 지나가는 시간이 더 소요되었다. As a result of the experiment, as can be seen in FIGS. 7 to 8 and Table 6, control mice took more time to pass the beam than mice in the wild type and Nurr1 and Foxa2 transduced groups (NF).
6-4. 오픈 필드 테스트 (Open Field Test; OFT)6-4. Open Field Test (OFT)
Nurr1 및 Foxa2를 형질도입하고 8주 뒤에 오픈 필드 테스트를 실시하였다. 야생형 (wild type; WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (PD) 및 Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 (NF) 군의 마우스를 오픈 필드에 넣은 후 각 군의 마우스가 5분 동안 움직이는 동선, 속도 및 거리 등을 측정하였다. 이때, 야생형 마우스, 대조군 (PD 군), Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 마우스는 모두 6두를 사용하였다. 측정된 시간은 일원분산분석 (one-way ANOCA)를 통해 유의한 효과를 결정하였다.Open field tests were conducted 8 weeks after transduction of Nurr1 and Foxa2. Mice of the wild type (WT), control (PD), and Nurr1 and Foxa2 transduced (NF) groups, which are Parkinson's disease models, were placed in an open field, and the movement, speed, and distance of each group's mice for 5 minutes, etc. was measured. At this time, wild-type mice, control group (PD group), and Nurr1 and Foxa2 transduced mice were all 6 mice. The measured time determined a significant effect through one-way ANOCA.
실험결과, 도 12 내지 도 14 및 표 7 내지 8에서 확인할 수 있듯이, Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 (NF) 군의 마우스는 야생형과 이동한 총 거리 및 평균 속도에서 거의 차이가 없을 정도로 행동이 개선됨을 확인하였다. 또한, Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 (NF) 군의 마우스는 대조군 (PD)에 비해 이동한 총 거리 및 이동 시 평균 속도가 월등하게 상승하였다.As a result of the experiment, as can be seen in FIGS. 12 to 14 and Tables 7 to 8, the behavior of the mice in the Nurr1 and Foxa2 transduction group (NF) groups was improved to the extent that there was almost no difference in the total distance and average speed moved from the wild type. Confirmed. In addition, the total distance traveled and the average movement speed of mice in the Nurr1 and Foxa2 transduced (NF) groups were significantly increased compared to the control group (PD).
6-5. 로타로드 테스트 (Rotarod Test)6-5. Rotarod Test
Nurr1 및 Foxa2를 형질도입하고 8주 및 12주 뒤에 로타로드 테스트를 실시하였다. 테스트는 테스트 2 내지 3일 전에 미리 마우스를 트레이닝 하여 적응시킨 후 진행되었다. 시험은 4 rpm 부터 40 rpm까지 속도를 서서히 증가시키면서 야생형 (wild type; WT), 파킨슨병 모델인 대조군 (PD) 및 Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 (NF) 군 마우스가 원통에서 떨어지는 시간을 2번 측정함에 따라 진행되었다. 이때, 야생형 마우스, 대조군 (PD 군), Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 마우스는 모두 6두를 사용하였다. 측정된 시간은 일원분산분석 (one-way ANOCA)를 통해 유의한 효과를 결정하였다.Rotarod tests were performed 8 weeks and 12 weeks after Nurr1 and Foxa2 were transduced. The test was conducted after adapting the mice by training them 2 to 3 days before the test. In the test, while gradually increasing the speed from 4 rpm to 40 rpm, the time taken for wild type (WT), Parkinson's disease model control (PD), and Nurr1 and Foxa2 transduced (NF) group mice to fall from the cylinder was measured. It was carried out by measuring twice. At this time, wild-type mice, control group (PD group), and Nurr1 and Foxa2 transduced mice were all 6 mice. The measured time determined a significant effect through one-way ANOCA.
실험결과, 도 15 내지 도 17 및 표 9 내지 10에서 확인할 수 있듯이, Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 (NF) 군의 마우스는 8주차와 12주차에서 대조군에 비해 원통에서 떨어진 시간이 훨씬 더 소요되었다.As a result of the experiment, as can be seen in FIGS. 15 to 17 and Tables 9 to 10, the Nurr1 and Foxa2 transduced group (NF) mice spent much more time away from the cylinder than the control group at 8 weeks and 12 weeks.
6-6. 소결6-6. sintering
이와 같이, Nurr1 및 Foxa2 형질도입군 (NF) 군의 마우스는 파킨슨병 모델인 대조군에 비해 폴 테스트, 빔 테스트, 오픈 필드 테스트 및 로타로드 테스트 모두에서 운동능력 및 행동이 현저히 개선됨을 확인하였다. 상기 결과를 통하여 Nurr1 및 Foxa2 유전자 도입은 파킨슨병의 특징적인 경직, 운동완서, 자세불안과 같은 운동능력의 저하를 회복시킬 수 있는 것을 확인하였으며, 이에, Nurr1 및 Foxa2 유전자 도입은 파킨슨병의 치료에 사용될 수 있을 것으로 기대된다.As such, it was confirmed that the mice of the Nurr1 and Foxa2 transduction group (NF) groups had significantly improved motor skills and behavior in all of the pole test, beam test, open field test and rotarod test compared to the control group, which is a Parkinson's disease model. Through the above results, it was confirmed that the introduction of the Nurr1 and Foxa2 genes can restore the decline in exercise capacity such as stiffness, bradykinesia, and postural instability characteristic of Parkinson's disease. expected to be usable.
Claims (10)
Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)로 이루어지는 그룹에서 선택된 어느 하나를 포함하는, 알파-시누클레인 (α-synuclein) 단백질 응집 억제제.Viral vectors loaded with Nurr1 and Foxa2 genes; and
An alpha-synuclein protein aggregation inhibitor comprising any one selected from the group consisting of brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
아데노 부속 바이러스 벡터, 레트로바이러스 벡터 및 아데노바이러스 벡터로 이루어지는 그룹에서 선택된 하나인 것인, 알파-시누클레인 단백질 응집 억제제.The method of claim 1, wherein the viral vector,
An alpha-synuclein protein aggregation inhibitor, which is one selected from the group consisting of an adeno-associated virus vector, a retrovirus vector, and an adenovirus vector.
뉴런 (neurons), 및 성상교세포 (astrocyte) 또는 미세교질세포 (microglia)를 포함하는 교질세포 (glia)인 것인, 알파-시누클레인 단백질 응집 억제제.The method of claim 1, wherein the brain cells,
An alpha-synuclein protein aggregation inhibitor that is neuron, and glia, including astrocytes or microglia.
Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)로 이루어지는 그룹에서 선택된 어느 하나를 포함하는, 알파-시누클레인 (α-synuclein) 단백질 인산화 억제제.Viral vectors loaded with Nurr1 and Foxa2 genes; and
An alpha-synuclein protein phosphorylation inhibitor comprising any one selected from the group consisting of brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
아데노 부속 바이러스 벡터, 레트로바이러스 벡터 및 아데노바이러스 벡터로 이루어지는 그룹에서 선택된 하나인 것인, 알파-시누클레인 단백질 인산화 억제제.The method of claim 4, wherein the viral vector,
An inhibitor of alpha-synuclein protein phosphorylation, which is one selected from the group consisting of an adeno-associated virus vector, a retrovirus vector, and an adenovirus vector.
뉴런 (neurons), 및 성상교세포 (astrocyte) 또는 미세교질세포 (microglia)를 포함하는 교질세포 (glia)인 것인, 알파-시누클레인 단백질 인산화 억제제.The method of claim 4, wherein the brain cells,
Neurons, and glia, including astrocytes or microglia, alpha-synuclein protein phosphorylation inhibitors.
Nurr1 및 Foxa2 유전자가 도입된 뇌세포 (brain cells)로 이루어지는 그룹에서 선택된 어느 하나를 포함하는, 알파-시누클레인 (α-synuclein) 단백질 응집으로 인해 발병하는 질환의 예방 또는 치료용 조성물.Viral vectors loaded with Nurr1 and Foxa2 genes; and
A composition for preventing or treating a disease caused by α-synuclein protein aggregation, comprising any one selected from the group consisting of brain cells into which Nurr1 and Foxa2 genes have been introduced.
아데노 부속 바이러스 벡터, 레트로바이러스 벡터 및 아데노바이러스 벡터로 이루어지는 그룹에서 선택된 하나인 것인, 조성물.The method of claim 7, wherein the viral vector,
One selected from the group consisting of an adeno-associated virus vector, a retroviral vector, and an adenoviral vector, the composition.
뉴런 (neurons), 및 성상교세포 (astrocyte) 또는 미세교질세포 (microglia)를 포함하는 교질세포 (glia)인 것인, 조성물.The method of claim 7, wherein the brain cells,
Neurons, and glial cells including astrocytes or microglia (microglia), the composition.
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