KR20220119611A - Method for producing natural killer cells and composition thereof - Google Patents
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Abstract
자연 살해 세포들의 생산방법이 개시된다. 상기 방법은 혈액 샘플로부터 말초 혈액 단핵세포들(PBMC들)을 분리하는 단계; PBMC들로부터 CD56+ 세포들 및/또는 CD3-/CD56+ 세포들 중 적어도 하나를 분리하는 단계; 및 CD56+ 세포들 및/또는 CD3-/CD56+ 세포들 중 적어도 하나를 사이토카인의 존재 하에 영양 세포들의 조합과 함께 공-배양하는 단계를 포함한다. 상기 방법은 CD56+ 세포들 및/또는 CD3-/CD56+ 세포들을 냉동 및 해동하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 암 치료용 조성물도 개시된다. 조성물은 개시된 방법에 의해 생성된 CD56+ 자연 살해 세포들 및 사이토카인을 포함한다.A method for producing natural killer cells is disclosed. The method comprises isolating peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a blood sample; isolating at least one of CD56+ cells and/or CD3-/CD56+ cells from the PBMCs; and co-culturing at least one of the CD56+ cells and/or the CD3-/CD56+ cells with the combination of feeder cells in the presence of the cytokine. The method may further comprise freezing and thawing CD56+ cells and/or CD3-/CD56+ cells. A composition for treating cancer is also disclosed. The composition comprises CD56+ natural killer cells and a cytokine produced by the disclosed method.
Description
본 출원은 2020년 8월 7일자로 출원된 미국 가출원 제63/062694호 및 2019년 11월 29일자로 출원된 한국 특허 출원 No. KR-10-2019-0157727호의 우선권을 주장하며, 각각의 개시 내용은 그 전체가 참고로 여기에 포함된다.This application is US Provisional Application No. 63/062694, filed on August 7, 2020, and Korean Patent Application No., filed on November 29, 2019. KR-10-2019-0157727 claims priority, the contents of each of which are incorporated herein by reference in their entirety.
본 개시는 자연 살해 세포들의 제조, 저장 및/또는 그 자체에 관한 것이다.The present disclosure relates to the preparation, storage and/or per se of natural killer cells.
자연 살해 세포들(NK 세포)은 선천면역세포들의 일종으로, 비-특이적으로 암을 죽이고, 바이러스, 박테리아 등을 인지 및 사멸시키며, 퍼포린, 그랜자임 등의 효소 또는 Fas-FasL 상호작용에 의해 병원체들을 사멸시키는 것으로 알려져 있다. 암 환자들의 경우, 이러한 NK 세포들의 암세포 세포독성 감소가 폐암(Carrega P, et al., Cancer, 2008: 112: 863-875), 간암(Jinushi M, et al., J Hepatol., 2005: 43; 1013-1020), 유방암(Bauernhofer T, et al., Eur J Immunol., 2003: 33: 119-124), 자궁암(Mocchegiani E., et al., Br j Cancer., 1999: 79: 244-250), 혈액암(Tajima F., et al, Lekemia 1996: 10: 478-482) 등 다양한 유형의 암 발병과 관련이 있는 것으로 보고된 바 있다.Natural killer cells (NK cells) are a type of innate immune cells, non-specifically killing cancer, recognizing and killing viruses, bacteria, etc., enzymes such as perforin, granzyme, or Fas-FasL interaction known to kill pathogens. In cancer patients, the reduction in cancer cell cytotoxicity of these NK cells is associated with lung cancer (Carrega P, et al., Cancer, 2008: 112: 863-875), liver cancer (Jinushi M, et al., J Hepatol., 2005: 43 1013-1020), breast cancer (Bauernhofer T, et al., Eur J Immunol., 2003: 33: 119-124), uterine cancer (Mocchegiani E., et al., Br j Cancer., 1999: 79: 244-) 250) and blood cancer (Tajima F., et al, Lekemia 1996: 10: 478-482), and has been reported to be associated with the development of various types of cancer.
본 출원은 고-순도 자연 살해 세포들의 제조방법들 및 고-순도 자연 살해 세포들과 사이토카인을 포함하는 암 치료용 세포 치료 조성물에 관한 것이다. 본 명세서에 개시된, 임의의 특징들, 구조들 또는 단계들은 본 명세서에 개시된 임의의 다른 특징들, 구조들 또는 단계들과 대체되거나 결합되거나 생략될 수 있다. 더 나아가, 본 개시를 요약할 목적으로, 본 발명의 특정 측면들, 이점들 및 특징들이 본 명세서에 기재되어 있다. 이러한 이점들의 일부 또는 전부가 본 명세서에 개시된 발명들의 임의의 특정 실시예에 따라 반드시 달성되는 것은 아님을 이해해야 한다. 본 개시의 어떠한 개별적인 측면들도 필수적이거나 필수 불가결한 것은 아니다.The present application relates to methods for producing high-purity natural killer cells and to a cell therapy composition for cancer treatment comprising high-purity natural killer cells and cytokines. Any features, structures or steps disclosed herein may be substituted, combined, or omitted with any other features, structures or steps disclosed herein. Furthermore, for the purpose of summarizing the present disclosure, certain aspects, advantages, and features of the present invention have been described herein. It should be understood that some or all of these advantages may not necessarily be achieved in accordance with any particular embodiment of the inventions disclosed herein. No individual aspects of the present disclosure are essential or essential.
일부 실시양태에서, 배양액에서 자연 살해 세포를 증식시키는 방법이 개시된다. 이 방법은 혈액 샘플로부터 CD56+ 세포들을 분리하는 단계; 제1 기간 동안 IL-21 {및 영양 세포들(feeder cells)}의 존재 하에 분리된 CD56+ 세포들을 공-배양하는 단계; 제1 기간 후 공-배양된 CD56+ 세포를 냉동하는 단계; 냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 및 IL-21 (및 영양 세포들)의 존재 하에 해동된 CD56+ 세포들을 제2 기간 동안 공-배양하는 단계를 포함한다.In some embodiments, methods of propagating natural killer cells in culture are disclosed. The method includes isolating CD56+ cells from a blood sample; co-culturing the isolated CD56+ cells in the presence of IL-21 {and feeder cells} for a first period; freezing the co-cultured CD56+ cells after the first period; thawing the frozen CD56+ cells; and co-culturing the thawed CD56+ cells in the presence of IL-21 (and feeder cells) for a second period.
본 명세서에 제공된 임의의 실시양태의 방법 및/또는 본 명세서에 개시된 임의의 방법은 다음 특징들 중 하나 이상을 포함할 수 있다. 상기 방법은 냉동된 CD56+ 세포들을 -100 ℃ 미만의 온도에서 저장하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 상기 방법은 냉동된 CD56+ 세포들을 해동 전 하루 이상 저장하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 분리된 CD56+ 세포들은 냉동 전 13-16일(또는 9-25일) 동안 공-배양될 수 있다. 분리된 CD56+ 세포들은 IL-21의 존재 하에 하나 이상의 방사선 조사된 영양 세포들과 공-배양될 수 있다. 해동된 CD56+ 세포들은 IL-21의 존재 하에 하나 이상의 방사선 조사된 영양 세포들과 공-배양될 수 있다. 하나 이상의 영양 세포들은 방사선 조사된 Jurkat 세포들, 방사선 조사된 엡스테인 바르 바이러스가 형질전환된 림프구 연속 세포주(EBV-LCL) 세포들, K562 세포들 및 PBMC들(예를 들어, 자가 PBMC들 포함)로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상일 수 있다. CD56+ 세포들은 약 1:1-100의 CD56+ 세포들 대 영양 세포들의 비율로 공-배양될 수 있다. 일부 실시양태에서, 임의의 영양 세포가 제1, 제2, 또는 제1 및 제2 증식을 위해 사용될 수 있다 (예: Il-21 사용). CD56+ 세포들은 약 1:1, 1:2, 1:5, 1:10, 1:20, 1:30 또는 1:100의 CD56+ 세포들 대 영양 세포들의 비율로 공-배양될 수 있다. 일부 실시양태에서, 이러한 비율은 KL1/EBVLCL에 대한 것이고 다른 영양 세포들에 대해서는, 예를 들어, 1:1 내지 1:10이 사용될 수 있다. IL-21은 제1 및/또는 제2 기간 동안 10-100 ng/mL 농도로 첨가될 수 있다. IL-21은 제1 및/또는 제2 기간 동안 20-80 ng/mL의 농도로 첨가될 수 있다. IL-21은 제1 및/또는 제2 기간 동안 30-70 ng/mL 농도로 첨가될 수 있다. IL-21은 제1 및/또는 제2 기간 동안 두 번 이상 첨가될 수 있다.A method of any of the embodiments provided herein and/or any method disclosed herein may include one or more of the following features. The method may further comprise storing the frozen CD56+ cells at a temperature of less than -100 °C. The method may further comprise storing the frozen CD56+ cells for at least one day prior to thawing. Isolated CD56+ cells can be co-cultured for 13-16 days (or 9-25 days) prior to freezing. Isolated CD56+ cells can be co-cultured with one or more irradiated feeder cells in the presence of IL-21. Thawed CD56+ cells can be co-cultured with one or more irradiated feeder cells in the presence of IL-21. One or more feeder cells include irradiated Jurkat cells, irradiated Epstein Barr virus-transformed lymphocyte continuous cell line (EBV-LCL) cells, K562 cells and PBMCs (e.g., including autologous PBMCs). It may be one or more selected from the group consisting of. CD56+ cells can be co-cultured at a ratio of CD56+ cells to feeder cells of about 1:1-100. In some embodiments, any feeder cell may be used for first, second, or first and second proliferation (eg, with Il-21). CD56+ cells can be co-cultured at a ratio of CD56+ cells to feeder cells of about 1:1, 1:2, 1:5, 1:10, 1:20, 1:30 or 1:100. In some embodiments, this ratio is for KL1/EBVLCL and for other feeder cells, for example, 1:1 to 1:10 may be used. IL-21 may be added at a concentration of 10-100 ng/mL during the first and/or second period. IL-21 may be added at a concentration of 20-80 ng/mL during the first and/or second period. IL-21 may be added at a concentration of 30-70 ng/mL during the first and/or second period. IL-21 may be added more than once during the first and/or second period.
일부 실시양태에서, 배양액에서 자연 살해 세포들을 증식시키는 방법이 제공된다. 이 방법은 혈액 샘플(예를 들어, PBMC, 신선 또는 냉동, 제대혈, 및/또는 혈액 샘플로부터 CD56+, CD56+CD3- 및 CD3- 세포들을 분리한 혈액)에서 CD56+를 분리하는 단계; IL-21의 존재 하에 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계; CD56+ 세포들을 냉동하는 단계; 냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 및 해동된 CD56+ 세포들을 증식시키는 단계(다시, 임의의 유형의 적절한 영양 세포로).In some embodiments, methods of propagating natural killer cells in culture are provided. The method comprises isolating CD56+ from a blood sample (eg, PBMC, fresh or frozen, umbilical cord blood, and/or blood from which CD56+, CD56+CD3- and CD3- cells have been isolated); co-culturing CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of IL-21; freezing the CD56+ cells; thawing the frozen CD56+ cells; and propagating the thawed CD56+ cells (again, with suitable feeder cells of any type).
임의의 실시양태의 방법 및/또는 본 명세서에 개시된 임의의 방법은 하기 특징들 중 하나 이상을 포함할 수 있다. CD56+ 세포들을 냉동하는 것은 -100 ℃ 미만의 온도에서 수행할 수 있다. 상기 방법은 냉동된 CD56+ 세포들을 하루 초과 10년 미만의 기간 동안 저장하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. CD56+ 세포는 냉동 전 13-16(또는 9-25)일 동안 공-배양될 수 있다. 하나 이상의 영양 세포들은 모든 실시양태에서 한정되는 것은 아니며 다음 중 적어도 하나로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상일 수 있다: 방사선 조사된 Jurkat 세포들, 방사선 조사된 엡스테인 바르 바이러스가 형질전환된 림프구 연속 세포주(EBV-LCL) 세포들, K562 세포들, mb15-k562, mb21-k562 영양 세포들, HuT78, 및/또는 PBMC들. CD56+ 세포들은 약 1:1-100의 CD56+ 세포들 대 영양 세포들의 비율로 공-배양될 수 있다. IL-21은 10-100 ng/mL의 농도로 첨가될 수 있다. IL-21은 두 번 이상 첨가될 수 있다. 일부 실시양태에서, NK 세포들은 냉동 전 IL-21이 사용되는 한, 및 냉동에서 해동된 후 재자극 과정이 뒤따르는 한, 임의의 영양 세포 유형과 함께 사용할 수 있다.The method of any embodiment and/or any method disclosed herein may include one or more of the following features. Freezing CD56+ cells can be performed at a temperature of less than -100 °C. The method may further comprise storing the frozen CD56+ cells for a period of more than one day and less than 10 years. CD56+ cells can be co-cultured for 13-16 (or 9-25) days prior to freezing. The one or more feeder cells are not limited in all embodiments and may be one or more selected from the group consisting of at least one of: irradiated Jurkat cells, irradiated Epstein Barr virus-transformed lymphocyte continuous cell line (EBV) -LCL) cells, K562 cells, mb15-k562, mb21-k562 feeder cells, HuT78, and/or PBMCs. CD56+ cells can be co-cultured at a ratio of CD56+ cells to feeder cells of about 1:1-100. IL-21 may be added at a concentration of 10-100 ng/mL. IL-21 may be added more than once. In some embodiments, NK cells can be used with any feeder cell type as long as IL-21 is used prior to freezing, and as long as it is thawed from freezing followed by a restimulation process.
일부 실시양태에서, 자연 살해 세포들의 세포독성을 증가시키는 방법이 개시된다. 그 방법은 상기 자연 살해 세포들을 제공하는 단계; 상기 자연 살해 세포들을 냉동하는 단계; 냉동된 자연 살해 세포들을 해동하는 단계; 및 IL-21의 존재 하에 해동된 자연 살해 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계를 포함한다. 선택적으로, 자연 살해 세포를 냉동하기 전에 자연 살해 세포들을 영양 세포 및 IL-21과 함께 공-배양(증식)할 수 있다.In some embodiments, methods of increasing the cytotoxicity of natural killer cells are disclosed. The method comprises providing said natural killer cells; freezing the natural killer cells; thawing the frozen natural killer cells; and co-culturing the thawed natural killer cells with one or more feeder cells in the presence of IL-21. Optionally, natural killer cells can be co-cultured (proliferated) with feeder cells and IL-21 prior to freezing the natural killer cells.
상기 단락들 중 임의의 방법 및/또는 본 명세서에 개시된 임의의 방법은 다음 특징들 중 하나 이상을 포함할 수 있다. 상기 방법은 냉동된 자연 살해 세포들을 -100 ℃ 미만의 온도에서 저장하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 상기 방법은 냉동된 자연살해세포를 해동 전 하루 이상 저장하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 하나 이상의 영양 세포들은 방사선 조사된 Jurkat 세포, 방사선 조사된 엡스테인 바르 바이러스가 형질전환된 림프구 연속 세포주가 방사선 조사된 Jurkat 세포들, 방사선 조사된 엡스테인 바르 바이러스가 형질전환된 림프구 연속 세포주(EBV-LCL) 세포들, K562 세포들, mb15-k562, mb21-k562 영양 세포들, HuT78, 및/또는 PBMC들로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상 세포일 수 있다. 해동된 자연 살해 세포들은 약 1:1-100의 CD56+ 세포들 대 영양 세포들의 비율로 공-배양될 수 있다. IL-21은 10-100 ng/mL의 농도로 첨가될 수 있다. IL-21은 두 번 이상 첨가될 수 있다.Any method in any of the preceding paragraphs and/or any method disclosed herein may include one or more of the following features. The method may further comprise the step of storing the frozen natural killer cells at a temperature of less than -100 °C. The method may further comprise the step of storing the frozen natural killer cells for at least one day before thawing. One or more feeder cells may be selected from the irradiated Jurkat cell, the irradiated Epstein-Barr virus-transformed lymphocyte continuous cell line, irradiated Jurkat cells, the irradiated Epstein-Barr virus-transformed lymphocyte continuous cell line (EBV- LCL) cells, K562 cells, mb15-k562, mb21-k562 feeder cells, HuT78, and/or PBMCs. Thawed natural killer cells can be co-cultured at a ratio of about 1:1-100 CD56+ cells to feeder cells. IL-21 may be added at a concentration of 10-100 ng/mL. IL-21 may be added more than once.
일부 실시양태에서, 대상체를 치료하는 방법이 개시된다. 그 방법은 피험자로부터 CD56+ 세포들을 수집하는 단계; IL-21의 존재 하에 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계; 적어도 하루 동안 공-배양된 CD56+ 세포들을 냉동하는 단계; 냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 해동된 CD56+ 세포들을 증식시키는 단계; 및 증식된 CD56+ 세포들을 대상체에게 투여하는 단계를 포함하며, 상기 제2 증식으로부터 수득된 세포들의 세포독성은 냉동 전 공-배양된 CD56+ 세포들의 세포독성의 적어도 X %이다.In some embodiments, a method of treating a subject is disclosed. The method comprises collecting CD56+ cells from a subject; co-culturing CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of IL-21; freezing the co-cultured CD56+ cells for at least one day; thawing the frozen CD56+ cells; propagating thawed CD56+ cells; and administering the proliferated CD56+ cells to the subject, wherein the cytotoxicity of the cells obtained from the second proliferation is at least X% of the cytotoxicity of the co-cultured CD56+ cells prior to freezing.
상기 단락들 중 임의의 방법 및/또는 본 명세서에 개시된 임의의 방법은 다음 특징들 중 하나 이상을 포함할 수 있다. 상기 방법은 냉동된 CD56+ 세포들을 -100 ℃ 미만의 온도에서 저장하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 상기 방법은 냉동된 CD56+ 세포들을 해동 전 하루 이상 저장하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 분리된 CD56+ 세포들은 냉동 전 13-16(또는 9-25)일 동안 공-배양될 수 있다. 해동된 CD56+ 세포들을 증식시키는 것은 IL-21의 존재 하에 해동된 CD56+들을 하나 이상의 방사선 조사된 영양 세포들과 공-배양하는 것을 포함할 수 있다. 하나 이상의 영양 세포들은 방사선 조사된 Jurkat 세포들, 방사선 조사된 엡스테인 바르 바이러스가 형질전환된 림프구 연속 세포주(EBV-LCL) 세포들, K562 세포들, mb15-k562, mb21-k562 영양 세포들, HuT78, 및/또는 PBMC들로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상 세포일 수 있다. CD56+ 세포들은 약 1:1-100의 CD56+ 세포들 대 영양 세포들의 비율로 공-배양될 수 있다. IL-21은 제1 및/또는 제2 기간 동안 10-100 ng/mL의 농도로 첨가될 수 있다. IL-21은 제1 및/또는 제2 기간 동안 두 번 이상 첨가될 수 있다.Any method in any of the preceding paragraphs and/or any method disclosed herein may include one or more of the following features. The method may further comprise storing the frozen CD56+ cells at a temperature of less than -100 °C. The method may further comprise storing the frozen CD56+ cells for at least one day prior to thawing. Isolated CD56+ cells can be co-cultured for 13-16 (or 9-25) days prior to freezing. Proliferating the thawed CD56+ cells may include co-culturing the thawed CD56+ with one or more irradiated feeder cells in the presence of IL-21. One or more feeder cells are irradiated Jurkat cells, irradiated Epstein Barr virus-transformed lymphocyte continuous cell line (EBV-LCL) cells, K562 cells, mb15-k562, mb21-k562 feeder cells, HuT78 , and/or one or more cells selected from the group consisting of PBMCs. CD56+ cells can be co-cultured at a ratio of CD56+ cells to feeder cells of about 1:1-100. IL-21 may be added at a concentration of 10-100 ng/mL during the first and/or second period. IL-21 may be added more than once during the first and/or second period.
일부 실시양태에서, 조성물이 제공된다. 그 조성물은 환자로부터의 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)로부터 유래된 유효량의 CD56+ 세포들을 포함한다. CD56+ 세포들은, 혈액 샘플로부터 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)을 분리하는 단계; PBMC들로부터 CD56+ 세포들을 분리하는 단계; 하나 이상의 사이토카인의 존재 하에 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계; CD56+ 세포들을 냉동하는 단계; 냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 및 하나 이상의 사이토카인의 존재 하에 해동된 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계; 를 통해 준비된다.In some embodiments, a composition is provided. The composition comprises an effective amount of CD56+ cells derived from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a patient. CD56+ cells can be obtained by isolating peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a blood sample; isolating CD56+ cells from PBMCs; co-culturing CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of one or more cytokines; freezing the CD56+ cells; thawing the frozen CD56+ cells; and co-culturing the thawed CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of one or more cytokines; prepared through
일부 실시양태에서, 세포 조성물이 개시된다. 그 세포 조성물은 다음을 포함한다: 환자로부터의 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)로부터 유래된 CD56+ 세포들의 유효량; IL-2; 및 IL-21.In some embodiments, a cell composition is disclosed. The cell composition comprises: an effective amount of CD56+ cells derived from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a patient; IL-2; and IL-21.
일부 실시양태에서, 조성물이 개시된다. 그 조성물은 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)로부터 유래된 CD56+ 세포들의 제1 집단; 얼음; IL-2; 및 IL-21을 포함한다. 해동될 때, CD56+ 세포는 CD56+ 세포들의 제2 집단의 적어도 80 %의 세포독성을 가지며, 상기 CD56+ 세포들의 제2 집단은 냉동되지 않았다.In some embodiments, a composition is disclosed. The composition comprises a first population of CD56+ cells derived from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs); ice; IL-2; and IL-21. When thawed, the CD56+ cells have at least 80% cytotoxicity of the second population of CD56+ cells, the second population of CD56+ cells being unfrozen.
일부 실시양태에서, 배양액에서 자연 살해 세포를 증식시키는 방법이 제공된다. 그 방법은 다음을 포함한다: 혈액 샘플로부터 CD56+ 세포들을 분리하는 단계; 제1 기간 동안 IL-21의 존재 하에 분리된 CD56+ 세포들을 공-배양하는 단계; 제1 기간 후 공-배양된 CD56+ 세포들을 냉동하는 단계; 냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 및 제2 기간 동안 IL-21의 존재 하에 해동된 CD56+ 세포들을 공-배양하는 단계.In some embodiments, methods of propagating natural killer cells in culture are provided. The method comprises: isolating CD56+ cells from a blood sample; co-culturing the isolated CD56+ cells in the presence of IL-21 for a first period; freezing the co-cultured CD56+ cells after the first period; thawing the frozen CD56+ cells; and co-culturing the thawed CD56+ cells in the presence of IL-21 for a second period.
일부 실시양태에서, 배양액에서 자연 살해 세포들을 증식시키는 방법이 제공된다. 그 방법은 다음을 포함한다: 혈액 샘플로부터 CD56+를 분리하는 단계; IL-21의 존재 하에 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계; CD56+ 세포들을 냉동하는 단계; 냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 및 해동된 CD56+ 세포들을 증식시키는 단계.In some embodiments, methods of propagating natural killer cells in culture are provided. The method comprises: isolating CD56+ from a blood sample; co-culturing CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of IL-21; freezing the CD56+ cells; thawing the frozen CD56+ cells; and propagating the thawed CD56+ cells.
일부 실시양태에서, 자연 살해 세포들의 세포독성을 증가시키는 방법이 제공되고, 이는 상기 자연 살해 세포들을 제공하는 단계; 상기 자연 살해 세포들을 냉동하는 단계; 냉동된 자연 살해 세포들을 해동하는 단계; 및 IL-21의 존재 하에 해동된 자연 살해 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계를 포함한다.In some embodiments, a method of increasing the cytotoxicity of natural killer cells is provided, comprising the steps of providing said natural killer cells; freezing the natural killer cells; thawing the frozen natural killer cells; and co-culturing the thawed natural killer cells with one or more feeder cells in the presence of IL-21.
일부 실시양태에서, 대상체를 치료하는 방법이 제공되며, 이는 다음을 포함한다: 대상체로부터 CD56+ 세포들을 수집하는 단계; IL-21의 존재 하에 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계; 적어도 하루 동안 공-배양된 CD56+ 세포를 냉동하는 단계; 냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 해동된 CD56+ 세포들을 증식시키는 단계; 및 증식된 CD56+ 세포들을 대상체에게 투여하는 단계, 상기 제2 증식으로부터 수득된 세포들의 세포독성은 냉동 전 공-배양된 CD56+의 세포독성의 적어도 80 %이다.In some embodiments, a method of treating a subject is provided, comprising: collecting CD56+ cells from the subject; co-culturing CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of IL-21; freezing the co-cultured CD56+ cells for at least one day; thawing the frozen CD56+ cells; propagating thawed CD56+ cells; and administering the proliferated CD56+ cells to the subject, wherein the cytotoxicity of the cells obtained from the second proliferation is at least 80% of the cytotoxicity of the co-cultured CD56+ prior to freezing.
일부 실시양태에서, 조성물이 제공되며 이는 다음을 포함한다: 환자로부터의 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)로부터 유래된 유효량의 CD56+ 세포들, 상기 CD56+ 세포들은 다음을 통해 준비된다: 혈액 샘플로부터 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)을 분리하는 단계; PBMC들로부터 CD56+ 세포들을 분리하는 단계; 하나 이상의 사이토카인의 존재 하에 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계; CD56+ 세포들을 냉동하는 단계; 냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 및 하나 이상의 사이토카인의 존재 하에 해동된 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계.In some embodiments, a composition is provided comprising: an effective amount of CD56+ cells derived from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a patient, the CD56+ cells being prepared by: peripheral from a blood sample isolating blood mononuclear cells (PBMCs); isolating CD56+ cells from PBMCs; co-culturing CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of one or more cytokines; freezing the CD56+ cells; thawing the frozen CD56+ cells; and co-culturing the thawed CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of one or more cytokines.
일부 실시양태에서, 세포 조성물이 제공되며 이는 다음을 포함한다: 환자로부터의 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)로부터 유래된 유효량의 CD56+ 세포들; IL-2; 및 IL-21.In some embodiments, a cell composition is provided comprising: an effective amount of CD56+ cells derived from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a patient; IL-2; and IL-21.
일부 실시양태에서, 조성물이 제공되며 이는 다음을 포함한다: 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)로부터 유래된 CD56+ 세포들의 제1 집단; 얼음; 및 IL-2, IL-21. 해동될 때, CD56+ 세포는 CD56+ 세포들의 제2 집단의 적어도 80 %의 세포독성을 가지며 CD56+ 세포들의 제2 집단은 냉동되지 않았다.In some embodiments, a composition is provided comprising: a first population of CD56+ cells derived from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs); ice; and IL-2, IL-21. When thawed, the CD56+ cells were cytotoxic to at least 80% of the second population of CD56+ cells and the second population of CD56+ cells was not frozen.
일부 실시양태에서, 배양액에서 자연 살해 세포를 증식시키는 방법이 제공되며 이는 다음을 포함한다: PBMC들을 제공하는 단계; 제1 기간 동안 IL-21의 존재 하에 PBMC들을 공-배양하는 단계; 제1 기간 후 공-배양된 PBMC들을 냉동하는 단계; 냉동된 PBMC들을 해동하는 단계; 및 제2 기간 동안 IL-21의 존재 하에 해동된 PBMC들을 공-배양하는 단계.In some embodiments, a method of propagating natural killer cells in culture is provided, comprising: providing PBMCs; co-culturing the PBMCs in the presence of IL-21 for a first period; freezing the co-cultured PBMCs after the first period; thawing frozen PBMCs; and co-culturing the thawed PBMCs in the presence of IL-21 for a second period.
일부 실시양태에서, 조성물은 다음을 포함한다: IL-2; 5-10 % DMSO; 90-95 % FBS; 및 선택적으로 CD56+ 세포들인 NK 세포들. 일부 실시양태에서, 이는 CryoStor 용액을 추가로 포함한다. 일부 실시양태에서, 그 조성물은 재-증식 전 냉동된 세포를 위한 것이다.In some embodiments, the composition comprises: IL-2; 5-10% DMSO; 90-95% FBS; and NK cells, optionally CD56+ cells. In some embodiments, it further comprises a CryoStor solution. In some embodiments, the composition is for frozen cells prior to re-proliferation.
일부 실시양태에서, 그 조성물은 IL-2; 5-10 % DMSO; 80-95 % 하트만 용액(Hartman solution); 1-10 % 인간 혈청 알부민; 및 NK 세포들을 포함한다. 일부 실시양태에서, 이는 CryoStor 용액을 추가로 포함한다. 일부 실시양태에서, 그 조성물은 주사 전 냉동된 세포를 위한 것이다.In some embodiments, the composition comprises IL-2; 5-10% DMSO; 80-95 % Hartman solution; 1-10% human serum albumin; and NK cells. In some embodiments, it further comprises a CryoStor solution. In some embodiments, the composition is for cells frozen prior to injection.
NK 세포들이 냉동보존을 거치고 그로부터 회복되도록 돕는 방법이 본 명세서에서 개발 및 제공되었다. CD56+ 세포들이 초기에(초기 증식 동안) IL-21의 존재 하에 영양 세포들과 공-배양되는 경우, CD56+ 세포들은 냉동 및 해동 후에 성공적으로 증식될 수 있음이 밝혀졌다. IL-21을 사용함으로써, 고-순도 CD56+ NK 세포들이 생성될 수 있으며, 놀랍게도, 그것들은 특히 많은 양의 세포 독성을 유지한다. 게다가, NK 세포들이 해동된 후, 그들은 추가로 증식될 수 있다(IL-21 없이, 또는 훨씬 더 유리하게는, 추가 IL-21의 존재 하에). 따라서, 냉동-전 과정(예를 들어 제1 증식)에서의 IL-21은, 나중에 우수한 재-증식을 허용할 수 있다. 또한, 생성된 생성물은, 2회 증식되고, 1회 냉동된 후에도, 놀라울 정도로 높은 양의 세포독성을 유지하는데, 이는 IL-21을 제1 증식 뿐만 아니라 제2 증식 시에도 사용하는 경우에 더욱 강화된다. 일부 실시양태에서, 이러한 냉동 및 재-증식 과정은 여러 번 반복될 수 있다(매회, 선택적으로 재-증식하는 동안 IL-21의 또 다른 단계와 함께).Methods have been developed and provided herein to help NK cells undergo and recover from cryopreservation. It has been found that CD56+ cells can be successfully propagated after freezing and thawing when CD56+ cells are co-cultured with feeder cells in the presence of IL-21 initially (during initial proliferation). By using IL-21, high-purity CD56+ NK cells can be generated, and surprisingly, they retain a particularly high amount of cytotoxicity. Moreover, after the NK cells have been thawed, they can be further expanded (without IL-21, or even more advantageously, in the presence of additional IL-21). Thus, IL-21 in the pre-freezing process (eg first propagation) may allow good re-proliferation later. In addition, the resulting product, even after being propagated twice and frozen once, retains a surprisingly high amount of cytotoxicity, which is more pronounced when IL-21 is used for the first as well as the second growth. is strengthened In some embodiments, this freezing and re-growth process may be repeated multiple times (each time, optionally with another step of IL-21 during re-proliferation).
일부 실시양태에서, 배양액에서 자연 살해 세포들을 증식시키는 방법이 제공된다. 그 방법은 PBMC들을 제공하는 단계; 제1 기간 동안 IL-21의 존재 하에 PBMC들을 공-배양하는 단계; 제1 기간 후 공-배양된 PBMC들을 냉동하는 단계; 냉동된 PBMC들을 해동하는 단계; 및 제2 기간 동안 IL-21의 존재 하에 해동된 PBMC들을 공-배양하는 단계를 포함한다. 일부 실시양태에서, PBMC 대 영양 세포들의 비는 1:0.5:0.5이다. 일부 실시양태에서, 그 비율은 PBMC의 경우 약 1:0.5:0.5 ~ 1:10:10일 수 있다(예를 들어, CD56+에 대한 대안으로서). 일부 실시양태에서, CD56+ 세포들의 경우: 그 비율은, 예를 들어, 10 또는 20으로 곱해진다(예를 들어, CD56+ 세포들 대 영양 세포들이 1:1-100). 일부 실시양태에서, 증식은 CD56+ 또는 CD56+/CD3- 세포들로부터 발생한다.In some embodiments, methods of propagating natural killer cells in culture are provided. The method includes providing PBMCs; co-culturing the PBMCs in the presence of IL-21 for a first period; freezing the co-cultured PBMCs after the first period; thawing the frozen PBMCs; and co-culturing the thawed PBMCs in the presence of IL-21 for a second period. In some embodiments, the ratio of PBMCs to feeder cells is 1:0.5:0.5. In some embodiments, the ratio may be about 1:0.5:0.5 to 1:10:10 for PBMC (eg, as an alternative to CD56+). In some embodiments, for CD56+ cells: the ratio is multiplied, eg, by 10 or 20 (eg, CD56+ cells to feeder cells 1:1-100). In some embodiments, proliferation occurs from CD56+ or CD56+/CD3- cells.
일부 실시양태에 따르면, 고-순도 NK 세포들을 생산하는 방법은 다음을 포함할 수있다: CD56+ 세포들 및/또는 CD3-/CD56+ 세포들로부터 선택된 세포들을 제1 사이토카인, 예를 들어 IL-21의 존재 하에 영양 세포들과 함께 공-배양하는 단계("제1 배양 단계" 또는 "제1 증식 단계"); 공-배양된 세포들을 냉동하는 단계("냉동 단계"); 냉동된 세포들을 해동하는 단계("해동 단계"); 및 선택적으로 더 많은 IL-21과 함께, 해동된 세포들을 첨가된 영양 세포들과 함께 공-배양하는 단계("제2 배양 단계" 또는 "제2 증식 단계"). 각 단계는 본 명세서에 더 자세히 설명되어 있다. 개시된 방법에 따라 생산된 CD3-/CD56+ 세포들은 더 높은 순도 및 더 높은 항-암 활성을 나타낼 뿐만 아니라, 상이한 표면 마커들 또는 활성화된 수용체들, 예를 들어, CD16, CD25, CD27, CD28, CD69, CD94/NKG2C, CD94/NKG2E, CD266, CD244, NKG2D, KIR2S, KIR3S, Ly94D, NCR, IFN-a, IFN-b, CXCR3, CXCR4, CX3CR1 및 CD577으로부터 하나 이상을 갖는 것과 같은, 다른 구별되는 특징을 나타낼 수 있다. According to some embodiments, a method of producing high-purity NK cells may comprise: administering cells selected from CD56+ cells and/or CD3-/CD56+ cells to a first cytokine, e.g., IL-21 co-culturing with feeder cells in the presence of ("first culture step" or "first proliferation step"); freezing the co-cultured cells (“freezing step”); thawing the frozen cells ("thawing step"); and co-culturing the thawed cells with the added feeder cells, optionally with more IL-21 (“second culture phase” or “second proliferation phase”). Each step is described in more detail herein. CD3-/CD56+ cells produced according to the disclosed method exhibit higher purity and higher anti-cancer activity, as well as different surface markers or activated receptors, e.g., CD16, CD25, CD27, CD28, CD69 , CD94/NKG2C, CD94/NKG2E, CD266, CD244, NKG2D, KIR2S, KIR3S, Ly94D, NCR, IFN-a, IFN-b, CXCR3, CXCR4, CX3CR1 and CD577. can represent
본 명세서에 사용된 "단계"는 과정의 일부이며 다음 "단계"가 시작되기 전에 하나의 "단계"가 완료될 필요가 없다. 명시되지 않는 한, 단계들은, 적절한 경우, 겹치는 기간 또는 동시에 제공될 수 있다. 물론, 한 단계가 이벤트(예를 들어 냉동) 전에 발생하고 다른 단계가 동일한 이벤트 후에 발생하면, 중복이 없다(예를 들어, 제1 IL-21 배양 및 제2 IL-21 배양).As used herein, a “step” is part of a process and one “step” need not be completed before the next “step” begins. Unless otherwise specified, steps may be provided concurrently or in overlapping periods, where appropriate. Of course, if one stage occurs before the event (eg freezing) and the other stage occurs after the same event, there is no overlap (eg, first IL-21 culture and second IL-21 culture).
본 명세서에서, 용어 "CD56+ 세포들(CD56+ 세포)"은 "CD56+ NK 세포들" 또는 "CD56+ 자연 살해 세포들"과 상호교환적으로 사용될 수 있고, 용어 "CD3-/CD56+ 세포들(CD3-/CD56+ 세포)"은 "CD3-/CD56+ NK 세포들"과 상호교환적으로 사용될 수 있다. CD56+ 세포들 또는 CD3-/CD56+ 세포들은 세포 표면의 CD56 당단백질이 발현되는 세포, 또는 추가로, CD56 당단백질이 발현되는 동안 CD3 당단백질이 발현되지 않는 세포를 포함할 수 있다. 같은 종류의 면역 세포라도 세포 표면에 부착되는 CD의 종류와 발현 속도가 다르기 때문에 기능이 다를 수 있다.As used herein, the term “CD56+ cells (CD56+ cells)” may be used interchangeably with “CD56+ NK cells” or “CD56+ natural killer cells”, and the term “CD3-/CD56+ cells (CD3-/ CD56+ cells)" may be used interchangeably with "CD3-/CD56+ NK cells". CD56+ cells or CD3-/CD56+ cells may comprise cells expressing cell surface CD56 glycoprotein, or further, cells in which CD3 glycoprotein is not expressed while CD56 glycoprotein is expressed. Even the same type of immune cell may have different functions because the type and expression rate of CD attached to the cell surface are different.
일부 실시양태에서, CD56+ 세포들 또는 CD3-/CD56+ 세포들은 다음 단계들을 통해 수득된다: 혈액 샘플로부터 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)을 분리하는 단계("제1 분리 단계"); 말초 혈액 단핵 세포들로부터 CD56+ 세포들 및 CD3-/CD56+ 세포들로 이루어진 군으로부터 선택된 세포들을 분리하는 단계("제2 분리 단계").In some embodiments, CD56+ cells or CD3-/CD56+ cells are obtained through the following steps: isolating peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a blood sample ("first isolation step"); isolating cells selected from the group consisting of CD56+ cells and CD3-/CD56+ cells from peripheral blood mononuclear cells (“second isolation step”).
본 명세서에서, "혈액 샘플(blood sample)"은 말초 혈액의 전혈 또는 백혈구성분채집술(leukapheresis)을 이용하여 말초 혈액으로부터 분리한 백혈구일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 게다가, 말초 혈액은 정상인, 암의 위험이 있는 환자, 또는 암환자로부터 채취할 수 있으나, 말초 혈액의 공급원은 이에 한정되지 않는다.As used herein, "blood sample" may be whole blood of peripheral blood or white blood cells isolated from peripheral blood using leukapheresis, but is not limited thereto. In addition, the peripheral blood may be collected from a normal person, a patient at risk of cancer, or a cancer patient, but the source of the peripheral blood is not limited thereto.
본 명세서에서, 용어 " 백혈구성분채집술(leukapheresis)"은 채혈한 혈액에서 백혈구를 선택적으로 제거(분리)한 후 다시 환자에게 수혈하는 방법을 의미할 수 있으며, 일부 실시양태에서, 상기 방법에 의해 분리된 백혈구는 피콜-하이팩 밀도구배 분리법(Ficoll-Hypaque density gradient method)과 같은 추가적인 방법 없이 사용할 수 있다.As used herein, the term "leukapheresis" may refer to a method of selectively removing (separating) leukocytes from the collected blood and then transfusing the blood back to the patient, and in some embodiments, by the method The isolated leukocytes can be used without additional methods such as the Ficoll-Hypaque density gradient method.
본 명세서에서, 용어 "말초 혈액 단핵 세포(peripheral blood mononuclear cell)"는 "PBMC", "단핵 세포"와 상호교환적으로 사용될 수 있으며, 일반적으로 항-암 면역요법에 사용되는 말초 혈액으로부터 분리된 단핵 세포를 의미할 수 있다. 말초 혈액 단핵 세포들은 피콜-하이팩 밀도구배 분리법(Ficoll-Hypaque density gradient method)과 같은 공지된 방법들을 사용하여 수집된 인간 혈액으로부터 수득될 수 있다.As used herein, the term "peripheral blood mononuclear cell" may be used interchangeably with "PBMC", "monocyte", and is generally used for anti-cancer immunotherapy isolated from peripheral blood. It may mean a mononuclear cell. Peripheral blood mononuclear cells can be obtained from human blood collected using known methods such as the Ficoll-Hypaque density gradient method.
일부 실시양태에서, 말초 혈액 단핵 세포들은 자가 유래일 수 있지만, 동종 유래의 말초 혈액 단핵 세포들 또한 본 명세서에 기재된 방법들에 따른 항-암 면역요법을 위한 고-순도 NK 세포들을 생산하는 데 사용될 수 있다. 게다가, 일부 실시양태에서, 말초 혈액 단핵 세포들은 정상인으로부터 수득될 수 있지만, 말초 혈액 단핵 세포들은 또한 암의 위험이 있는 환자 및/또는 암 환자로부터 수득될 수도 있다.In some embodiments, peripheral blood mononuclear cells may be autologous, but allogeneic peripheral blood mononuclear cells may also be used to produce high-purity NK cells for anti-cancer immunotherapy according to the methods described herein. can Moreover, in some embodiments, peripheral blood mononuclear cells may be obtained from a normal person, but peripheral blood mononuclear cells may also be obtained from a patient at risk for cancer and/or a cancer patient.
일부 실시양태에서, 혈액 샘플로부터 CD56+ 자연 살해 세포들을 분리하기 위한 제2 분리 단계는 CD56 마이크로비즈(CD56 microbeads) 및 CD3 마이크로비즈(CD3 microbeads)로 이루어진 군으로부터 선택된 적어도 하나를 사용하거나, 또는 CliniMACS, 유동 세포 측정 세포 선별기(a flow cytometry cell sorter) 또는 MACS 선별기(MACS Separator), 자기 선별 시스템(a magnetic sorting system) 등과 같은 장비를 사용하여 분리하는 방법에 의해 수행될 수 있다.In some embodiments, the second separation step for isolating CD56+ natural killer cells from the blood sample uses at least one selected from the group consisting of CD56 microbeads and CD3 microbeads, or CliniMACS, Separation may be performed by a method of separation using equipment such as a flow cytometry cell sorter, MACS Separator, or a magnetic sorting system.
예를 들어, CD56 마이크로비즈 및/또는 CD3 마이크로비즈를 사용하여 분리하는 방법은 PBMC들에 CD56 마이크로비즈를 첨가한 후 비-특이적 결합을 제거함으로써 수행되거나, PBMC들에 CD3 마이크로비즈를 첨가하여 특이적 결합을 제거한 후 다시 CD56 마이크로비즈를 첨가하여 비-특이적 결합을 제거함으로써 수행될 수 있다. 일부 예에서, PBMC들로부터 CD56+ 세포들 및/또는 CD3-/CD56+ 세포들을 분리함으로써, T 세포들 또는 다른 비-자연 살해 세포들을 제거할 수 있다.For example, a separation method using CD56 microbeads and/or CD3 microbeads is performed by adding CD56 microbeads to PBMCs and then removing non-specific binding, or by adding CD3 microbeads to PBMCs. After removal of specific binding, non-specific binding may be removed by adding CD56 microbeads again. In some examples, T cells or other non-natural killer cells can be eliminated by isolating CD56+ cells and/or CD3-/CD56+ cells from PBMCs.
본 명세서에서, 용어 "영양 세포(feeder cell)"는 분열 및 증식을 하지 않으나 대사 활성이 있어, 다양한 대사물질을 생산함으로써 표적 세포들의 증식을 돕는 세포를 의미할 수 있다.As used herein, the term “feeder cell” may refer to a cell that does not divide and proliferate but has metabolic activity, thereby helping the proliferation of target cells by producing various metabolites.
일부 실시양태에서, 영양 세포들은 방사선 조사된 Jurkat 세포들, 방사선 조사된 엡스테인-바르 바이러스가 형질전환된 림프구 연속 세포주(EBV-LCL) 세포들, PBMC들, HFWT, RPMI 1866, Daudi, MM-170, K562 또는 K562를 표적화하여 유전적으로 변형한 세포들(예를 들어, K562-mbIL-15-41BB 리간드)로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 하나일 수 있다. 예를 들어, 한 실시양태에서, 영양 세포들은 방사선 조사된 Jurkat 세포들 및 EBV-LCL 세포들일 수 있다. 일부 실시양태에서, NK 세포들이 먼저 IL-21의 존재 하에 증식된 다음 냉동되고, 해동된 다음, 재-증식될 때, 본 명세서에 제공된 바와 같이 재-증식을 허용하는 한, 임의의 영양 세포 유형이 사용될 수 있다.In some embodiments, the feeder cells are irradiated Jurkat cells, irradiated Epstein-Barr virus transformed lymphocyte continuous cell line (EBV-LCL) cells, PBMCs, HFWT, RPMI 1866, Daudi, MM- 170, K562 or K562 targeting and genetically modified cells (eg, K562-mbIL-15-41BB ligand) may be at least one selected from the group consisting of. For example, in one embodiment, the feeder cells may be irradiated Jurkat cells and EBV-LCL cells. In some embodiments, when NK cells are first proliferated in the presence of IL-21 and then frozen, thawed, and then re-proliferated, any feeder cell type, as provided herein, allows for re-proliferation. this can be used
본 명세서에서, 용어 "Jurkat 세포(Jurkat cell)" 또는 "Jurkat 세포주(Jurkat cell line)"는, University of California at San Francisco의 Arthur Weiss 박사에 의해 개발된, 혈액암{불멸화 급성 T 세포 백혈병(immortalized acute T cell leukemia)} 세포주를 의미할 수 있다. 다양한 케모카인 수용체들이 발현되고 IL-2를 생성할 수 있는, Jurkat 세포들은, 자연 살해 세포 활성화 억제제인, MHC class I이, 세포 표면에서 높게 발현되기 때문에, 항-암 면역 요법을 위한 영양 세포들의 가능한 후보로 일반적으로 고려되지 않았다. Jurkat 세포들은 ATCC(ATCC TIB-152)에서 수득될 수 있다.As used herein, the term "Jurkat cell" or "Jurkat cell line" is a hematological cancer {immortalized acute T-cell leukemia, developed by Dr. Arthur Weiss of the University of California at San Francisco. acute T cell leukemia)} cell line. Jurkat cells, capable of expressing various chemokine receptors and producing IL-2, are a possible source of feeder cells for anti-cancer immunotherapy because MHC class I, a natural killer cell activation inhibitor, is highly expressed on the cell surface. It was not generally considered as a candidate. Jurkat cells can be obtained from ATCC (ATCC TIB-152).
본 명세서에서 용어 "EBV-LCL 세포(EBV-LCL cell)" 또는 "EBV-LCL 세포주(EBV-LCL cell line)"는 엡스테인-바르 바이러스가 형질전환된 림프구 연속 세포주(EBV-LCL)를 의미하는 것으로(D.M. Koelle et al., J Clin Invest, 1993: 91: 961-968), 시험관 내에서 인간 B 세포들을 엡스테인-바르 바이러스로 감염시켜 만든 B 세포주이다. EBV-LCL 세포들은 PBMC에서 EBV를 감염시키는 과정에서 사이클로스포린 A를 첨가하는 방법으로 일반 실험실에서 직접 제조하여 사용할 수 있다. 일부 실시양태에서, EBV-LCL 세포는 다음 단계에 의해 제조될 수 있다. 30 x 106 PBMC들을 9 mL의 배양 배지에 첨가하고, 혼합물을 T 25 배양 플라스크에 첨가한 다음, 9mL의 EBV 상층액을 첨가한다. 80 μL의 사이클로스포린 A(50 μg/mL)를 첨가한 다음 37 ℃에서 배양한다. 배양 7일 후, 상층액의 반을 제거하고, 새로운 배양 배지를 첨가한 후, 40 μL의 사이클로스포린 A를 첨가한다. 배양 28일까지 동일한 과정을 매 7일에 한 번 반복할 수 있다. 세포주는 배양 28일 후에 사용할 수 있으며, 이때부터, 배양 배지에 사이클로스포린 A를 첨가하지 않고 세포주가 배양될 수 있다.As used herein, the term “EBV-LCL cell” or “EBV-LCL cell line” refers to an Epstein-Barr virus-transformed lymphocyte continuous cell line (EBV-LCL). (DM Koelle et al., J Clin Invest, 1993: 91: 961-968), a B cell line prepared by in vitro infection of human B cells with Epstein-Barr virus. EBV-LCL cells can be directly prepared and used in a general laboratory by adding cyclosporin A during EBV infection in PBMCs. In some embodiments, EBV-LCL cells can be prepared by the following steps. Add 30 x 10 6 PBMCs to 9 mL of culture medium, add the mixture to a
Jurkat 세포들과 EBV-LCL 세포들은 방사선 조사 후 영양 세포들로 사용할 수 있다.Jurkat cells and EBV-LCL cells can be used as feeder cells after irradiation.
일부 실시양태에서, 투여 전, 그 방법은 증식된 세포를 주사-준비 용액에서 제2로 냉동시키는 것을 추가로 포함할 수 있다.In some embodiments, prior to administration, the method may further comprise freezing the proliferated cells a second time in an injection-ready solution.
일부 실시양태에서, 방사선 조사된 Jurkat 세포들 및 방사선 조사된 EBV-LCL 세포들은 1:0.1-5, 1:0.1-4, 1:0.1-3, 1:0.1-2, 1:0.1-1.5, 1:0.5-1.5, 1:0.75-1.25, 0.1-5:1, 0.1-4:1, 0.1-3:1, 0.1-2:1, 0.1-1.5:1, 0.5-1.5:1, 또는 0.75-1.25:1의 함량비로 포함될 수 있다. 예를 들어, 방사선 조사된 Jurkat 세포들과 방사선 조사된 EBV-LCL 세포들은 1:1의 함량비로 포함될 수 있다.In some embodiments, the irradiated Jurkat cells and the irradiated EBV-LCL cells are 1:0.1-5, 1:0.1-4, 1:0.1-3, 1:0.1-2, 1:0.1-1.5, 1:0.5-1.5, 1:0.75-1.25, 0.1-5:1, 0.1-4:1, 0.1-3:1, 0.1-2:1, 0.1-1.5:1, 0.5-1.5:1, or 0.75 It can be included in a content ratio of -1.25:1. For example, irradiated Jurkat cells and irradiated EBV-LCL cells may be included in a content ratio of 1:1.
일부 실시양태에서, 방사선 조사된 Jurkat 세포들 및 방사선 조사된 EBV-LCL 세포들은 50-500, 50-400, 50-300, 50-200, 50-150, 70-130, 80-120 또는 90-110 Gy 방사선을 처리함으로써 수득될 수 있다. 예를 들어, 방사선 조사된 Jurkat 세포들 및/또는 방사선 조사된 EBV-LCL 세포들은 Jurkat 세포들 및/또는 EBV-LCL 세포들을 100 Gy 방사선을 처리함으로써 얻을 수 있다.In some embodiments, the irradiated Jurkat cells and the irradiated EBV-LCL cells are 50-500, 50-400, 50-300, 50-200, 50-150, 70-130, 80-120 or 90- It can be obtained by treatment with 110 Gy radiation. For example, irradiated Jurkat cells and/or irradiated EBV-LCL cells can be obtained by treating Jurkat cells and/or EBV-LCL cells with 100 Gy radiation.
본 명세서에서, 용어 "사이토카인(cytokine)"은 "제1 사이토카인" 또는 "제2 사이토카인"과 상호교환적으로 사용될 수 있으며, 말초 혈액 단핵 세포들의 NK 세포들로의 분화를 유도하는데 사용할 수 있는 면역활성 화합물을 의미할 수 있다. 일부 실시양태에서, 사이토카인은 IL-21이다(제1 및 제2 증식, 및 임의의 추가 증식 단계에 대해).As used herein, the term "cytokine" may be used interchangeably with "a first cytokine" or "a second cytokine", which may be used to induce differentiation of peripheral blood mononuclear cells into NK cells. It may mean an immunoactive compound capable of In some embodiments, the cytokine is IL-21 (for the first and second proliferation, and any further phases of proliferation).
본 명세서에 사용된, 용어 "공-배양(co-culture)" 및 "증식(expansion)"은 상호교환가능하고 NK 세포들이 배양되어 세포들의 집단이 증식되었음을 나타낸다. 용어 "재-증식(re-expansion)"은 NK 세포들에 대해 한 단계의 공-배양 또는 증식이 이미 발생했음을 나타낸다. 일부 실시양태에서, 공-배양 또는 증식은 IL-21과 같은 영양 세포들 및 사이토카인의 존재 하에 일어날 것이다. 본 명세서의 일부 상황에서, 용어 "배양(culture)"은 " 공-배양(co-culture)"의 약어로 사용된다.As used herein, the terms "co-culture" and "expansion" are interchangeable and refer to the proliferation of a population of cells in which NK cells have been cultured. The term “re-expansion” indicates that one stage of co-culture or proliferation has already occurred for NK cells. In some embodiments, co-culture or proliferation will occur in the presence of feeder cells such as IL-21 and cytokines. In some contexts herein, the term “culture” is used as an abbreviation for “co-culture”.
일부 실시양태에서, 사이토카인은 인터류킨-2(IL-2), IL-15, IL-21, FMS-유사 티로신 키나제 3 리간드(Flt3-L), 줄기 세포 인자(SCF), IL-7, IL-18, IL-4, I형 인터페론, 과립구-대식세포 집락-자극 인자(GM-CSF) 및 인슐린-유사 성장 인자 1(IGF 1)일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.In some embodiments, the cytokine is interleukin-2 (IL-2), IL-15, IL-21, FMS-
일부 실시양태에서, 제1 사이토카인은 IL-2, IL-21, IL-15, FMS-유사 티로신 키나제 3 리간드(Flt3-L), 줄기 세포 인자(SCF), IL-7, IL-18, IL-4, I형 인터페론, GM-CSF, 인슐린-유사 성장 인자 1(IGF 1), 또는 이들의 조합일 수 있다. 일부 실시양태에서, 제2 사이토카인은 IL-2, IL-21, IL-15, FMS-유사 티로신 키나제 3 리간드(Flt3-L), 줄기 세포 인자(SCF), IL-7, IL-18, IL-4, I형 인터페론, GM-CSF, 인슐린-유사 성장 인자 1(IGF 1), 또는 이들의 조합일 수 있다. 예를 들어, 제2 사이토카인은 IL-21일 수 있다. 일부 실시양태에서, 하나 이상의 사이토카인이 본 명세서에 제공된 하나 이상의 단계에 걸쳐 존재할 수 있다. 일부 실시양태에서, Il-21 및 IL-2는 둘 다 제1 및 제2 증식 단계(또는 이들의 임의의 후속 단계) 중 적어도 하나에 존재한다. 또한, 본 명세서에 제공된 다양한 실시양태들은 다양한 증식 단계 각각에서 사이토카인(예를 들어 IL-21)의 반복적인 사용을 포함하므로, 이러한 사이토카인은 처음으로(또는 제1 단계 또는 단계 동안) 사용될 수 있고, 제2(예를 들어 재-증식 단계 중) 사용될 수 있다. 따라서, 일부 실시양태에서, 제1 사이토카인(예를 들어 IL-21)은 제1 및 제2 단계의 공-배양 모두에 사용될 수 있다. 이것은 또한 예를 들어, 제1 사이토카인 및 제2 사이토카인으로서, 대안적으로 언급될 수 있으며, 상기 제1 및 제2 사이토카인은 모두 IL-21이다.In some embodiments, the first cytokine is IL-2, IL-21, IL-15, FMS-
NK 세포들의 생산 방법Methods for producing NK cells
도 1은 다양한 예시적인 영양 세포들을 사용하여 NK 세포들을 증식하는 일부 방법을 보여주는 흐름도이다. 일부 실시양태에서, CD56+ 세포들 또는 CD3-/CD56+ 세포들은 IL-21의 존재 하에 영양 세포들과 함께 공-배양함으로써 증식된다. 영양 세포들은 임의의 유형의 영양 세포, 예를 들어, Jurkat 세포들 및 EBV-LCL 세포들("유형 1"), K562 세포들("유형 2") 또는 PBMC들("유형 3")일 수 있다. 일부 실시양태에서, 세포들은 배양 약 17일 경에 (또는 16-21일 또는 9-25일의 어느 곳에서든) 수집되고, 생성된 세포들은 상기 또는 본 명세서의 다른 곳에서 "IL21+"로 지칭될 수 있다. 냉동보존 또는 제2 배양 단계가 없는 이러한 세포 증식 과정은 상기 또는 본 명세서의 다른 곳에서 "원래 과정"으로 지칭될 수 있다. 일부 실시양태에서, 세포들은 약 14일 경에 (또는 14-18일 또는 9-25일의 어느 곳에서든) 수집되고 냉동보존된다. 냉동보존 전의 배양은 상기 또는 본 명세서의 다른 곳에서 "제1 배양 단계" 또는 "제1 증식 단계" 또는 "제1 공-배양 단계"로 지칭될 수 있다. 냉동보존된 세포들은 해동되고 IL-21의 존재("IL-21+/+") 또는 IL-21의 부재("IL-21+/-") 하에 영양 세포들과 함께 공-배양되어 다시 증식될 수 있다. 이러한 제2 증식 과정은 "제2 배양 단계" 또는 "재-자극 과정" 또는 "제2 공-배양 단계" 또는 제2 증식 단계로 지칭될 수 있다. 세포들은 배양 약 17일 경에(또는 16-21일 또는 9-25일의 어느 곳에서든) 수집될 수 있다. 일부 실시양태에서, 추가의 재-증식 또는 재-자극 단계 또는 주기가 수행될 수 있다. 도 14B에 도시된 바와 같이, 일부 실시예에서 제1 자극이 있을 수 있고, 그 다음 두 번 이상의 재-자극 단계들이 있을 수 있다.1 is a flow chart showing some methods of propagating NK cells using various exemplary feeder cells. In some embodiments, CD56+ cells or CD3-/CD56+ cells are proliferated by co-culturing with feeder cells in the presence of IL-21. Feeder cells can be any type of feeder cell, e.g., Jurkat cells and EBV-LCL cells (“
일부 실시양태에서, CD56+ 세포들 또는 CD3-/CD56+ 세포들은 IL-21의 부재 하에 영양 세포들과 함께 공-배양함으로써 증식된다. 일반적으로, 이것은 IL-21을 사용한 초기 배양 단계 이후의 배양 단계들에 적용된다. 영양 세포들은, 예를 들어, Jurkat 세포들 및 EBV-LCL 세포들 ("유형 1"), K562 세포들 ("유형 2") 또는 PBMC들 ("유형 3")을 포함하는, NK 세포들에 대한 임의의 유형의 영양 세포일 수 있다. 일부 실시양태에서, 세포들은 배양 약 17일 경에 (또는 16-21일째) 수집되고, 생성된 세포들은 상기 또는 본 명세서의 다른 곳에서 "IL21-"로 지칭될 수 있다. 일부 실시양태에서, 세포들은 약 14일 경에 (또는 14-18일) 수집되고 냉동보존된다. 냉동보존된 세포들은 해동되고 IL-21의 존재("IL-21-/+") 또는 IL-21의 부재("IL-21-/-") 하에 영양 세포들과 함께 공-배양되어 다시 증식될 수 있다.In some embodiments, CD56+ cells or CD3-/CD56+ cells are proliferated by co-culturing with feeder cells in the absence of IL-21. In general, this applies to culturing steps after the initial culturing step with IL-21. Feeder cells are NK cells, including, for example, Jurkat cells and EBV-LCL cells (“
이러한 제2 증식 과정은 '제2 배양 단계' 또는 '재-자극 과정'으로 지칭될 수 있다. 세포들은 배양 약 17일 경에(또는 16-21일 또는 9-25일) 수집될 수 있다. 본 명세서에 상세히 기술된 바와 같이, 제1 증식에서 IL-21의 사용은, 선택적으로 추가 IL-21(예를 들어, 개선된 세포독성의 이점이 더 있음)과 함께, NK 세포들의 냉동 및 해동 및 후속적인 우수한 증식을 가능하게 한다.This second propagation process may be referred to as a 'second culture step' or a 're-stimulation process'. Cells can be collected at about 17 days of culture (or 16-21 or 9-25 days). As detailed herein, the use of IL-21 in the first proliferation, optionally along with additional IL-21 (eg, further benefits of improved cytotoxicity), is the freezing and thawing of NK cells. and subsequent superior propagation.
제1 배양(증식 또는 공-배양) 단계First culture (proliferation or co-culture) step
제1 배양 단계는 배양 0-6일 사이에 사이토카인을 1회 이상 첨가하는 것을 포함할 수 있다. 하나 이상의 사이토카인을 사용할 수 있다(예를 들어 IL-2도 사용할 수 있음). 예를 들어, 제1 배양 단계는 배양 0일 및 3일에 각각 한 번씩 사이토카인들 중 하나 또는 둘 다를 첨가하는 것을 포함할 수 있다.The first culturing step may include adding cytokines one or more times between culture days 0-6. One or more cytokines may be used (eg IL-2 may also be used). For example, the first culturing step may include adding one or both of the cytokines once each on
영양 세포들 및 제1 사이토카인과 공-배양할 때, 0-6일 동안 1회 이상 다른 사이토카인을 추가로 첨가하여 배양하는 것은 우수한 증식 및/또는 항-암 활성을 나타낼 수 있다. 일부 실시양태에서, 14일 주기로 6일 동안 영양 세포들 및 추가 사이토카인을 첨가하여 배양하는 것은 우수한 증식 및/또는 항-암 활성을 나타낼 수 있다. 일부 실시양태에서, IL-21은 적어도 1회, 선택적으로 냉동 전 및 후 사용된다. 일부 실시양태에서 IL-2는 추가 사이토카인으로서 포함될 수 있다.When co-culturing with feeder cells and the first cytokine, culturing with additional addition of another cytokine one or more times for 0-6 days may exhibit excellent proliferation and/or anti-cancer activity. In some embodiments, culturing with the addition of feeder cells and additional cytokines for 6 days in a 14-day cycle may exhibit superior proliferative and/or anti-cancer activity. In some embodiments, IL-21 is used at least once, optionally before and after freezing. In some embodiments IL-2 may be included as an additional cytokine.
일부 실시양태에서, 제1 사이토카인(예를 들어, IL-21)은 10-1,000, 10-500, 10-100, 20-100, 30-100, 40-100, 50-100, 또는 10-50 ng/mL의 농도로 사용될 수 있다. 일부 실시양태에서, 추가 사이토카인은 50-1,000, 50-900, 50-800, 50-700, 50-600, 50-550, 100-550, 150-550, 200-550, 250-550, 300-550, 350-550, 400-550, 또는 450-550 IU/mL의 농도로 사용될 수 있다. 일부 실시양태에서, 그 농도는 약 50 ng/ml이다.In some embodiments, the first cytokine (eg, IL-21) is 10-1,000, 10-500, 10-100, 20-100, 30-100, 40-100, 50-100, or 10- It can be used at a concentration of 50 ng/mL. In some embodiments, the additional cytokine is 50-1,000, 50-900, 50-800, 50-700, 50-600, 50-550, 100-550, 150-550, 200-550, 250-550, 300 Concentrations of -550, 350-550, 400-550, or 450-550 IU/mL may be used. In some embodiments, the concentration is about 50 ng/ml.
NK 세포들을 증식시키는 기존의 방법은 고농도의 다양한 사이토카인을 사용한다. 역으로, 본 명세서에 기재된 NK 세포들의 증식 방법의 일부 실시양태에서, 고수율 및 고순도의 NK 세포는 낮은 농도의 하나의 사이토카인만을 사용하여 증식될 수 있다.Existing methods for proliferating NK cells use high concentrations of various cytokines. Conversely, in some embodiments of the methods of propagating NK cells described herein, NK cells in high yield and high purity can be propagated using only a low concentration of one cytokine.
일부 실시양태에서, 그 공-배양(배양, 증식(재-증식 포함))은 말초 혈액 단핵 세포들과 영양 세포들(예를 들어, Jurkat 세포들 및 EBV-LCL 세포들)을 1:1-100, 1:1-90, 1:1-80, 1:1-70, 1:10-65, 1:20-65, 1:30-65, 1:40-65, 1:50-65 또는 1:55-65의 비율로 혼합하여 수행할 수 있다. 일부 실시양태에서, 공-배양은 말초 혈액 단핵 세포들 및 영양 세포들(예를 들어, Jurkat 세포들 및 EBV-LCL 세포들)을 다양한 혼합비로 포함함으로써 수행될 수 있다. 일부 실시양태에서, 그 비율은 PBMC에 대해 약 1:0.5:0.5 ~ 1:10:10일 수 있다(예를 들어, CD56+에 대한 대안으로서). 일부 실시양태에서, CD56+ 세포의 경우: 그 비율은 예를 들어 10 또는 20으로 곱해진다(예를 들어, CD56+ 세포들 대 영양 세포들이 1:1-100).In some embodiments, the co-culturing (culturing, propagation (including re-proliferation)) comprises 1:1- culturing peripheral blood mononuclear cells and feeder cells (eg, Jurkat cells and EBV-LCL cells). 100, 1:1-90, 1:1-80, 1:1-70, 1:10-65, 1:20-65, 1:30-65, 1:40-65, 1:50-65 or It can be carried out by mixing in a ratio of 1:55-65. In some embodiments, co-culture can be performed by including peripheral blood mononuclear cells and feeder cells (eg, Jurkat cells and EBV-LCL cells) in various mixing ratios. In some embodiments, the ratio may be about 1:0.5:0.5 to 1:10:10 for PBMC (eg, as an alternative to CD56+). In some embodiments, for CD56+ cells: the ratio is multiplied by, for example, 10 or 20 (eg, 1:1-100 of CD56+ cells to feeder cells).
공-배양은 배지에서 수행될 수 있으며 이러한 배지로는 당업계에서 말초 혈액 단핵 세포들의 NK 세포들로의 유도 및 증식에 일반적으로 사용되는 적절한 배지를 제한 없이 사용할 수 있다. 예를 들어, RPMI-1640, DMEM, x-vivo10, x-vivo20 또는 cellgro SCGM 배지가 이러한 배지로 사용될 수 있다. 또한, 온도와 같은 배양 조건은 당업계에 공지된 말초 혈액 단핵 세포들의 적절한 배양 조건을 따를 수 있다.The co-culture may be performed in a medium, and as the medium, an appropriate medium generally used for induction and proliferation of peripheral blood mononuclear cells into NK cells in the art may be used without limitation. For example, RPMI-1640, DMEM, x-vivo10, x-vivo20 or cellgro SCGM medium can be used as such medium. In addition, culture conditions such as temperature may follow appropriate culture conditions of peripheral blood mononuclear cells known in the art.
일부 실시양태에서, 제1 배양 단계는 0-45, 0-42, 0-40, 0-30, 0-20, 0-19, 0-18, 0-17, 0-16, 0- 15 또는 0-14일 동안 수행될 수 있다.In some embodiments, the first culturing step is 0-45, 0-42, 0-40, 0-30, 0-20, 0-19, 0-18, 0-17, 0-16, 0-15 or It can be performed for 0-14 days.
냉동 단계freezing stage
제1 배양 단계에서 배양되어 제공되는 자연 살해 세포들은 배지에 회수하여 현탁시킨 후 냉동 및 냉동보존될 수 있다. 일부 실시양태에서, 배지는 FBS 및/또는 DMSO를 포함할 수 있다. 예를 들어, 배지는 90 % FBS 및 10 % DMSO, 또는 90-95 % FBS 및 5-10 % DMSO를 포함할 수 있다. 일부 실시양태에서, CryoStor 용액(CS10, CS5) 등과 같은 다른 허용가능한 냉동-보존제들 또는 수크로스 또는 글리세롤과 같은 기타 성분들이 포함될 수 있다. 일부 실시양태에서, 적합한 방부제들은 DMSO, 글리세롤, 에틸렌 글리콜, 수크로스, 트레할로스, 덱스트로스, 폴리비닐피롤리돈 등을 포함한다. 일부 실시양태에서, IL-2 및/또는 인간 혈청 알부민(Human Serum Albumin)이 존재할 수 있다.Natural killer cells cultured and provided in the first culture step may be recovered and suspended in a medium and then frozen and cryopreserved. In some embodiments, the medium may comprise FBS and/or DMSO. For example, the medium may comprise 90% FBS and 10% DMSO, or 90-95% FBS and 5-10% DMSO. In some embodiments, other acceptable cryo-preservatives such as CryoStor solutions (CS10, CS5) or the like or other ingredients such as sucrose or glycerol may be included. In some embodiments, suitable preservatives include DMSO, glycerol, ethylene glycol, sucrose, trehalose, dextrose, polyvinylpyrrolidone, and the like. In some embodiments, IL-2 and/or Human Serum Albumin may be present.
일부 실시양태에서, 냉동보존은 제공된 자연 살해 세포들을 이소프로필 알코올과 함께 냉동보존 용기에 옮기고, 냉동보존 용기 내의 자연 살해 세포들을 초저온 냉동고에서 밤새 냉동시키고, 자연 살해 세포들을 -192 ℃이하에서 보존하는 것을 포함할 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 자연 살해 세포는 -10 ℃ 이하, -20 ℃ 이하, -50 ℃ 이하, -70 ℃ 이하, -100 ℃ 이하, -150 ℃ 이하, -192 ℃ 이하, 또는 -200 ℃ 이하에서 냉동된 것으로 보존될 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 자연 살해 세포들은, 다음 값들 중 임의의 2개 사이의 임의의 범위를 포함하여, 1일 이상, 2일 이상, 3일 이상, 7일 이상, 14일 이상, 30일 이상, 60일 이상, 또는 180일 이상 동안, 보존될 수 있다. 일부 실시양태에서, 온도는 -135 ℃내지 -196 ℃이다. 일부 실시양태에서, 세포들은, 다음 값들 중 임의의 2개 사이의 임의의 범위를 포함하여, 0.5, 1, 2, 3, 4 또는 5년 동안, 저장된다.In some embodiments, cryopreservation involves transferring the provided natural killer cells to a cryopreservation container with isopropyl alcohol, freezing the natural killer cells in the cryopreservation container overnight in a cryogenic freezer, and preserving the natural killer cells at -192 °C or less. may include In some embodiments, the frozen natural killer cells are -10 °C or lower, -20 °C or lower, -50 °C or lower, -70 °C or lower, -100 °C or lower, -150 °C or lower, -192 °C or lower, or -200 °C or lower. It can be preserved as frozen below. In some embodiments, the frozen natural killer cells are at least 1 day, at least 2 days, at least 3 days, at least 7 days, at least 14 days, at least 30 days, including any range between any two of the following values: It may be preserved for at least 60 days, or at least 180 days. In some embodiments, the temperature is between -135 °C and -196 °C. In some embodiments, the cells are stored for 0.5, 1, 2, 3, 4, or 5 years, inclusive of any range between any two of the following values.
일부 실시양태에서, 제공된 자연 살해 세포들은 제어 속도 냉동기(CRF)를 사용하여 냉각 및/또는 냉동될 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 자연 살해 세포들은 액체 질소 하에 보존될 수 있다.In some embodiments, provided natural killer cells may be cooled and/or frozen using a controlled rate freezer (CRF). In some embodiments, frozen natural killer cells can be preserved under liquid nitrogen.
일부 실시양태에서, 제공된 자연 살해 세포들은 제어 속도 냉동기(CRF)를 사용하여 냉각 및/또는 냉동될 수 있다. 일부 실시양태에서, 이는 느린 속도(예를 들어, 1-8시간, 예를 들어, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7 또는 8시간 이상)로 수행될 수 있다. NK 세포들의 바이알들이 저온-용기들(예를 들어, Nalgene Mr. Frosty)에 보관된 이소프로필 알코올을 이용하여, 수동으로 천천히 냉동하고, -70 ℃에서 밤새 보관할 수 있다. 다음날 세포들은 액체 질소(LN2)로 옮겨진다.In some embodiments, provided natural killer cells may be cooled and/or frozen using a controlled rate freezer (CRF). In some embodiments, this can be done at a slow rate (eg, 1-8 hours, eg, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, or 8 hours or more). Vials of NK cells can be manually frozen slowly using isopropyl alcohol stored in cryo-containers (eg, Nalgene Mr. Frosty) and stored at -70°C overnight. The next day the cells are transferred to liquid nitrogen (LN2).
해동 단계thawing phase
냉동된 자연 살해 세포들은 적절한 방법을 사용하여 냉동 보존 후 해동될 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동/냉동보존된 자연 살해 세포는, 예를 들어 37 ℃에서, 수조를 사용하여 해동될 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 자연 살해 세포는 1시간 이상, 2시간 이상, 5시간 이상, 또는 10시간 동안 해동될 수 있다. 일부 실시양태에서, 그 과정은 물 또는 비드 배스에서 수행된다. 일부 실시양태에서, 해동 과정은 가능한 한 빨리 또는 냉동 상태(예를 들어, 액체 질소)에서 가져온 직후에 수행된다.Frozen natural killer cells can be thawed after cryopreservation using an appropriate method. In some embodiments, cryopreserved natural killer cells can be thawed using a water bath, eg, at 37°C. In some embodiments, frozen natural killer cells can be thawed for at least 1 hour, at least 2 hours, at least 5 hours, or for 10 hours. In some embodiments, the process is performed in a water or bead bath. In some embodiments, the thawing process is performed as soon as possible or immediately after being brought from a frozen state (eg, liquid nitrogen).
일부 실시양태에서, 냉동된 자연 살해 세포들은 37 ℃ 수조에서 10분 이내에 해동될 수 있으며, 여기서 냉동된 바이알 또는 백은 해동 과정을 가속화하기 위해 흔들 수 있다. 일부 실시양태에서, 세포들은 또한 가열 블록(Heat block), 바이알용 자동 세포 해동 기기(예를 들어, ThawStar, Biocision), 또는 백용 해동 기기(예를 들어, VIA Thaw, GE Healthcare)와 같은 기기를 사용하여 해동될 수 있다.In some embodiments, frozen natural killer cells can be thawed in a 37°C water bath within 10 minutes, wherein the frozen vial or bag can be shaken to speed up the thawing process. In some embodiments, the cells are also subjected to an instrument such as a heat block, an automatic cell thawing device for vials (eg, ThawStar, Biocision), or a thawing device for bags (eg, VIA Thaw, GE Healthcare). It can be thawed using
제2 배양(제2 공-배양, 제2 증식, 또는 재-증식, 또는 임의의 후속 배양 단계) 단계a second culturing (second co-culturing, second propagation, or re-proliferation, or any subsequent culturing step) step
세포들은 제1 배양 단계에서 초기에 IL-21와 함께 처리되기 때문에, 제2 증식 단계가 가능해진다. 따라서, 방법은 하나의 증식 단계뿐만 아니라, 두 개의 증식 단계(예를 들어, 하나 이상의 재-증식 단계)를 포함할 수 있다. 바람직하게는, 제2 증식 단계는 샘플이 냉동되고, 일정 기간 동안 보관된 다음, 해동된 후에, 발생한다.Since the cells are initially treated with IL-21 in the first culture step, a second proliferation step is possible. Thus, the method may include not only one propagation step, but two propagation steps (eg, one or more re-proliferation steps). Preferably, the second growth phase occurs after the sample is frozen, stored for a period of time, and then thawed.
제2 배양 단계 동안, 해동된 자연 살해 세포들은 1회 이상 영양 세포들을 첨가하여 배양될 수 있다.During the second culturing step, thawed natural killer cells may be cultured by adding feeder cells one or more times.
일부 실시양태에서, 영양 세포들은 배양의 14일 주기(또는 9-25일 주기) 동안 1회 이상 첨가될 수 있다.In some embodiments, feeder cells may be added one or more times during a 14 day cycle (or 9-25 day cycle) of culture.
일부 실시양태에서, 14일 주기 동안 1회 이상 영양 세포들을 첨가하여 배양하는 것은 우수한 증식 및/또는 항-암 활성을 나타낼 뿐만 아니라, 냉동 및 해동 후에도 지속적인 세포 성장을 유지하여, 자연 살해 세포들이 임상에서 사용하기에 충분한 양으로 생산되게 한다.In some embodiments, culturing with the addition of feeder cells one or more times during a 14-day cycle not only exhibits superior proliferative and/or anti-cancer activity, but also maintains sustained cell growth even after freezing and thawing, so that natural killer cells are clinically to be produced in sufficient quantities for use in
일부 실시양태에서, 제2 배양 단계는 제2 단계의 사이토카인(예를 들어, 추가의 IL-21 또는 IL-21에 더하여 다른 사이토카인들)을 첨가하는 것을 포함할 수 있다.In some embodiments, the second culturing step can include adding a cytokine from the second step (eg, additional IL-21 or other cytokines in addition to IL-21).
일부 실시양태에서, 제2 배양 단계는 배양 0-6일 동안 1회 이상 후속 단계의 사이토카인을 첨가하는 것을 포함할 수 있다.In some embodiments, the second culturing step may comprise adding the cytokine of the subsequent step one or more times during days 0-6 of culturing.
본 명세서의 다른 곳에 있는 사이토카인에 대한 설명은 제2 배양 단계를 위한 사이토카인들에 적용될 수 있다.Descriptions of cytokines elsewhere herein can be applied to cytokines for the second culturing step.
예를 들어, 일부 실시양태에서, 제2 사이토카인은 10-1,000, 10-500, 10-100, 20-100, 30-100, 40-100, 50-100, 또는 10-50 ng/mL의 농도로 사용될 수 있고 및/또는 추가 사이토카인은 50-1,000, 50-900, 50-800, 50-700, 50-600, 50-550, 100-550, 150-550, 200-550, 250-550, 300-550, 350-550, 400-550, 또는 450-550 IU/mL의 농도에서 사용될 수 있다. 제2 증식에 사용되는 사이토카인은 바람직하게는 IL-21이다.For example, in some embodiments, the second cytokine is at a concentration of 10-1,000, 10-500, 10-100, 20-100, 30-100, 40-100, 50-100, or 10-50 ng/mL. concentrations and/or additional cytokines may be 50-1,000, 50-900, 50-800, 50-700, 50-600, 50-550, 100-550, 150-550, 200-550, 250- 550, 300-550, 350-550, 400-550, or 450-550 IU/mL. The cytokine used for the second proliferation is preferably IL-21.
일부 실시양태에서, 조성물은, 다음을 포함할 수 있는, 재-증식 전에 냉동된 세포들 중 하나이다: IL-2; 5-10 % DMSO; 90-95 % FBS; 및 선택적으로 CD56+ 세포들인 NK 세포들. 일부 실시양태에서, 조성물은 냉동된 고체이다. 일부 실시양태에서, NK 세포들은 조성물의 세포 집단의 적어도 90%이다. 일부 실시양태에서, 이는 CryoStor 용액션을 추가로 포함한다. 일부 실시양태에서, 조성물은 재-증식 전 냉동된 세포들을 위한 것이다.In some embodiments, the composition is one of the cells frozen prior to re-proliferation, which may comprise: IL-2; 5-10% DMSO; 90-95% FBS; and NK cells, optionally CD56+ cells. In some embodiments, the composition is a frozen solid. In some embodiments, the NK cells are at least 90% of the cell population of the composition. In some embodiments, it further comprises a CryoStor solution. In some embodiments, the composition is for frozen cells prior to re-proliferation.
일부 실시양태에서, 조성물은, 다음을 포함할 수 있는, 재-증식 전 냉동된 세포들을 위한 것이다: IL-2; 5-10 % DMSO; 80-95 % 하트만 용액; 1-10% 인간 혈청 알부민; 및 NK 세포들. 일부 실시양태에서, 이는 CryoStor 용액을 추가로 포함한다. 일부 실시양태에서, 조성물은 주사 전 냉동된 세포들을 위한 것이다.In some embodiments, the composition is for cells frozen prior to re-proliferation, which may comprise: IL-2; 5-10% DMSO; 80-95% Hartmann's solution; 1-10% human serum albumin; and NK cells. In some embodiments, it further comprises a CryoStor solution. In some embodiments, the composition is for cells frozen prior to injection.
일부 실시양태에서, 배양액에서 자연 살해 세포들을 증식시키는 방법은 혈액 샘플로부터 CD56+ 세포들을 분리하는 단계; 제1 기간 동안 IL-21의 존재 하에 분리된 CD56+ 세포들을 공-배양하는 단계; 제1 기간 후 공-배양된 CD56+ 세포들을 냉동하는 단계; 냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 및 제2 기간 동안 IL-21의 존재 하에 해동된 CD56+ 세포들을 공-배양하는 단계를 포함한다.In some embodiments, a method of propagating natural killer cells in culture comprises isolating CD56+ cells from a blood sample; co-culturing the isolated CD56+ cells in the presence of IL-21 for a first period; freezing the co-cultured CD56+ cells after the first period; thawing the frozen CD56+ cells; and co-culturing the thawed CD56+ cells in the presence of IL-21 for a second period.
일부 실시양태에서, 방법은 냉동된 CD56+ 세포들을 -100 ℃ 미만의 온도에서 저장하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 CD56+ 세포들은 -10 ℃ 이하, -20 ℃ 이하, -50 ℃ 이하, -70 ℃ 이하, -150 ℃ 이하, -192 ℃ 이하, 또는 -200 ℃ 이하의 온도에서 저장될 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 CD56+ 세포는 해동 전 하루 이상 동안 보관될 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 CD56+ 세포들은, 다음 값들 중 임의의 2개 사이의 임의의 범위를 포함하여, 1일 이상, 2일 이상, 3일 이상, 7일 이상, 14일 이상, 30일 이상, 60일 이상, 또는 180일 이상 동안, 저장될 수 있다. 일부 실시양태에서, 세포들은 해동됐을 때 생존할 수 있는 한 냉동될 수 있다.In some embodiments, the method can further comprise storing the frozen CD56+ cells at a temperature of less than -100 °C. In some embodiments, the frozen CD56+ cells are stored at a temperature of -10 °C or less, -20 °C or less, -50 °C or less, -70 °C or less, -150 °C or less, -192 °C or less, or -200 °C or less. can In some embodiments, frozen CD56+ cells may be stored for at least one day prior to thawing. In some embodiments, the frozen CD56+ cells are at least 1 day, at least 2 days, at least 3 days, at least 7 days, at least 14 days, at least 30 days, including any range between any two of the following values: , for at least 60 days, or for at least 180 days. In some embodiments, cells can be frozen as long as they are viable when thawed.
일부 실시양태에서, 분리된 CD56+ 세포들은 냉동 전 13-16일 동안 공-배양될 수 있다. 예를 들어, 분리된 CD56+ 세포들은 냉동 전 14일 또는 15일 동안 공-배양될 수 있다. 일부 실시양태에서, 공-배양 또는 증식은 적절한 시간 동안 진행될 수 있다. 일부 실시양태에서, 공-배양 또는 증식(재-증식 포함)은 9-25일, 예를 들어, 10-24, 11-23, 13-22, 14-21, 14-18, 14-16일, 등 동안일 수 있다. 이러한 시간 프레임들은 본 명세서에 제공된 증식 및/또는 재-증식 기간 중 임의의 것에 적용될 수 있다 (다른 세포들에 대한 실시예들 포함).In some embodiments, isolated CD56+ cells can be co-cultured for 13-16 days prior to freezing. For example, isolated CD56+ cells can be co-cultured for 14 or 15 days prior to freezing. In some embodiments, co-culture or propagation may proceed for an appropriate amount of time. In some embodiments, co-culturing or propagation (including re-proliferation) is 9-25 days, e.g., 10-24, 11-23, 13-22, 14-21, 14-18, 14-16 days. , and so on. These time frames can be applied to any of the proliferation and/or re-proliferation periods provided herein (including examples for other cells).
일부 실시양태에서, 분리된 CD56+ 세포들은 IL-21의 존재 하에 하나 이상의 방사선 조사된 영양 세포들과 공-배양될 수 있다. 일부 실시양태에서, 해동된 CD56+ 세포는 IL-21의 존재 하에 하나 이상의 방사선 조사된 영양 세포들과 공-배양될 수 있다. 하나 이상의 영양 세포들은 방사선 조사된 Jurkat 세포들, 방사선 조사된 엡스타인-바르 바이러스가 형질전환된 림프구 연속 세포주(EBV-LCL) 세포들, K562 세포들, mb15-k562, mb21-k562 영양 세포들, HuT78 및/또는 PBMC로 이루어진 군으로부터 선택된 하나 이상을 포함할 수 있지만, 이에 한정되지는 않는다. 일부 실시양태에서, 증식은 PBMC, CD56+ 및/또는 CD56+CD3- 세포들로 수행된다. 일부 실시양태에서, CD56+ 세포들은 약 1:1-100의 CD56+ 세포들 대 영양 세포들의 비율로 공-배양될 수 있다. 예를 들어, CD56+ 세포들은 약 1:2, 1:5, 1:10, 1:30 또는 1:100의 CD56+ 세포들 대 영양 세포들의 비율로 공-배양될 수 있다.In some embodiments, isolated CD56+ cells can be co-cultured with one or more irradiated feeder cells in the presence of IL-21. In some embodiments, thawed CD56+ cells can be co-cultured with one or more irradiated feeder cells in the presence of IL-21. One or more feeder cells are irradiated Jurkat cells, irradiated Epstein-Barr virus transformed lymphocyte continuous cell line (EBV-LCL) cells, K562 cells, mb15-k562, mb21-k562 feeder cells, HuT78 And/or may include one or more selected from the group consisting of PBMC, but is not limited thereto. In some embodiments, propagation is performed with PBMC, CD56+ and/or CD56+CD3- cells. In some embodiments, CD56+ cells may be co-cultured at a ratio of CD56+ cells to feeder cells of about 1:1-100. For example, CD56+ cells can be co-cultured at a ratio of CD56+ cells to feeder cells of about 1:2, 1:5, 1:10, 1:30 or 1:100.
일부 실시양태에서, IL-21은 제1 및/또는 제2 기간 동안 10-100 ng/mL의 농도로 첨가될 수 있다. 예를 들어, IL-21은 제1 및/또는 제2 기간 동안 20-80 ng/mL, 30-70 ng/mL 또는 40-60 ng/mL의 농도로 첨가될 수 있다. 일부 실시양태에서, IL-21은 제1 및/또는 제2 기간 동안 1회 이상 첨가될 수 있다.In some embodiments, IL-21 may be added at a concentration of 10-100 ng/mL during the first and/or second period. For example, IL-21 may be added at a concentration of 20-80 ng/mL, 30-70 ng/mL or 40-60 ng/mL during the first and/or second period. In some embodiments, IL-21 may be added one or more times during the first and/or second period.
일부 실시양태에서, 배양액에서 자연 살해 세포들을 증식하는 방법은 혈액 샘플로부터 CD56+를 분리하는 단계; IL-21의 존재 하에 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계; CD56+ 세포들을 냉동하는 단계; 냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 및 해동된 CD56+ 세포들을 증식시키는 단계를 포함할 수 있다.In some embodiments, a method of propagating natural killer cells in culture comprises isolating CD56+ from a blood sample; co-culturing CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of IL-21; freezing the CD56+ cells; thawing the frozen CD56+ cells; and propagating the thawed CD56+ cells.
일부 실시양태에서, CD56+ 세포들은 -100 ℃ 미만의 온도에서 냉동될 수 있다. 일부 실시양태에서 CD56+ 세포들은 -10 ℃ 이하, -20 ℃ 이하, -50 ℃ 이하, -70 ℃ 이하, -150 ℃ 이하, -192 ℃ 이하, 또는 -200 ℃ 이하의 온도에서 냉동될 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 CD56+ 세포들은 해동 전 하루 이상 동안 저장될 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 CD56+ 세포들은 다음 값들 중 임의의 2개 사이의 임의의 범위를 포함하여, 2일 이상, 3일 이상, 7일 이상, 14일 이상, 30일 이상, 60일 이상, 또는 180일 이상 동안, 저장될 수 있다. 예를 들어, 냉동된 CD56+ 세포들은 하루 초과 10년 미만의 기간 동안 저장될 수 있다.In some embodiments, CD56+ cells may be frozen at a temperature of less than -100 °C. In some embodiments CD56+ cells can be frozen at a temperature of -10 °C or less, -20 °C or less, -50 °C or less, -70 °C or less, -150 °C or less, -192 °C or less, or -200 °C or less. In some embodiments, frozen CD56+ cells may be stored for one or more days prior to thawing. In some embodiments, the frozen CD56+ cells are at least 2 days, at least 3 days, at least 7 days, at least 14 days, at least 30 days, at least 60 days, inclusive of any range between any two of the following values; or for 180 days or more. For example, frozen CD56+ cells can be stored for a period of more than one day and less than 10 years.
일부 실시양태에서, CD56+ 세포들은 냉동 전 13-16일 동안 공-배양될 수 있다. 예를 들어, CD56+ 세포들은 냉동 전 14일 또는 15일 동안 공-배양될 수 있다. 일부 실시양태에서, 공-배양 또는 증식(재-증식 포함)은 9-25일, 예를 들어, 10-24, 11-23, 13-22, 14-21, 14-18, 14-16일 등, 동안일 수 있다. 이러한 시간 프레임들은 본 명세서에 제공된 증식 및/또는 재-증식 기간 중 임의의 것에 적용될 수 있다 (다른 세포들에 대한 실시예들 포함).In some embodiments, CD56+ cells can be co-cultured for 13-16 days prior to freezing. For example, CD56+ cells can be co-cultured for 14 or 15 days prior to freezing. In some embodiments, co-culture or propagation (including re-proliferation) is 9-25 days, e.g., 10-24, 11-23, 13-22, 14-21, 14-18, 14-16 days. etc., may be during. These time frames can be applied to any of the proliferation and/or re-proliferation periods provided herein (including examples for other cells).
일부 실시양태에서, 하나 이상의 영양 세포들은 방사선 조사된 Jurkat 세포들, 방사선 조사된 엡스타인-바르 바이러스가 형질전환된 림프구 연속 세포주(EBV-LCL) 세포들, K562 세포들 및 PBMC들로 이루어진 군으로부터 선택된 하나 이상일 수 있다. CD56+ 세포들은 약 1:1-100의 CD56+ 세포들 대 영양 세포들의 비율로 공-배양될 수 있다. 예를 들어, CD56+ 세포들은 약 1:2, 1:5, 1:10, 1:30 또는 1:100의 CD56+ 세포들 대 영양 세포들의 비율로 공-배양될 수 있다.In some embodiments, the one or more feeder cells are selected from the group consisting of irradiated Jurkat cells, irradiated Epstein-Barr virus transformed lymphocyte continuous cell line (EBV-LCL) cells, K562 cells, and PBMCs. There may be more than one. CD56+ cells can be co-cultured at a ratio of CD56+ cells to feeder cells of about 1:1-100. For example, CD56+ cells can be co-cultured at a ratio of CD56+ cells to feeder cells of about 1:2, 1:5, 1:10, 1:30 or 1:100.
일부 실시양태에서, IL-21은 10-100 ng/mL의 농도로 첨가될 수 있다. 예를 들어, IL-21은 20-80 ng/mL, 30-70 ng/mL 또는 40-60 ng/mL의 농도로 첨가될 수 있다. 일부 실시양태에서, IL-21은 1회 이상 첨가될 수 있다.In some embodiments, IL-21 may be added at a concentration of 10-100 ng/mL. For example, IL-21 may be added at a concentration of 20-80 ng/mL, 30-70 ng/mL or 40-60 ng/mL. In some embodiments, IL-21 may be added one or more times.
일부 실시양태에서, 자연 살해 세포들의 세포독성을 증가시키는 방법은 상기 자연 살해 세포들을 제공하는 단계; 상기 자연 살해 세포를 냉동하는 단계; 냉동된 자연 살해 세포들을 해동하는 단계; 및 IL-21의 존재 하에 해동된 자연 살해 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계를 포함한다.In some embodiments, a method of increasing the cytotoxicity of natural killer cells comprises providing said natural killer cells; freezing the natural killer cells; thawing the frozen natural killer cells; and co-culturing the thawed natural killer cells with one or more feeder cells in the presence of IL-21.
일부 실시양태에서, 방법은 냉동된 자연 살해 세포들을 -100 ℃ 미만의 온도에서 저장하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 자연 살해 세포들은 -10 ℃ 이하, -20 ℃ 이하, -50 ℃ 이하, -70 ℃ 이하, -150 ℃ 이하, -192 ℃ 이하 또는 -200 ℃ 이하의 온도에서 저장될 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 자연 살해 세포들은 해동 전 하루 이상 동안 저장될 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 자연 살해 세포들은 다음 값들 중 임의의 2개 사이의 임의의 범위를 포함하여, 2일 이상, 3일 이상, 7일 이상, 14일 이상, 30일 이상, 60일 이상, 또는 180일 이상 동안, 저장될 수 있다. 일부 실시양태에서, 세포들은 일단 해동된 후 생존할 수 있는 세포가 있는 한 저장된다.In some embodiments, the method may further comprise storing the frozen natural killer cells at a temperature of less than -100 °C. In some embodiments, the frozen natural killer cells are stored at a temperature of -10 °C or lower, -20 °C or lower, -50 °C or lower, -70 °C or lower, -150 °C or lower, -192 °C or lower, or -200 °C or lower. can In some embodiments, frozen natural killer cells may be stored for one or more days prior to thawing. In some embodiments, the frozen natural killer cells are at least 2 days, at least 3 days, at least 7 days, at least 14 days, at least 30 days, at least 60 days, inclusive of any range between any two of the following values: , or for 180 days or more. In some embodiments, once thawed, cells are stored as long as there are viable cells.
일부 실시양태에서, 하나 이상의 영양 세포들은 방사선 조사된 Jurkat 세포들, 방사선 조사된 엡스타인-바르 바이러스가 형질전환된 림프구 연속 세포주(EBV-LCL) 세포들, K562 세포들 및 PBMC들로 이루어진 군으로부터 선택된 하나 이상일 수 있다. 일부 실시양태에서, 해동된 자연 살해 세포들은 약 1:1-100의 자연 살해 세포들 대 영양 세포들의 비율로 공-배양될 수 있다. In some embodiments, the one or more feeder cells are selected from the group consisting of irradiated Jurkat cells, irradiated Epstein-Barr virus transformed lymphocyte continuous cell line (EBV-LCL) cells, K562 cells, and PBMCs. There may be more than one. In some embodiments, thawed natural killer cells can be co-cultured at a ratio of natural killer cells to feeder cells of about 1:1-100.
일부 실시양태에서, IL-21은 10-100 ng/mL의 농도로 첨가될 수 있다. 예를 들어, IL-21은 20-80 ng/mL, 30-70 ng/mL 또는 40-60 ng/mL의 농도로 첨가될 수 있다. 일부 실시양태에서, IL-21은 1회 이상 첨가될 수 있다.In some embodiments, IL-21 may be added at a concentration of 10-100 ng/mL. For example, IL-21 may be added at a concentration of 20-80 ng/mL, 30-70 ng/mL or 40-60 ng/mL. In some embodiments, IL-21 may be added one or more times.
일부 실시양태에서, 자연 살해 세포들을 생산하는 방법은 다음 단계를 반복하는 것을 포함할 수 있다: 냉동 단계; 해동 단계; 및 영양 세포들을 첨가하여 공-배양하는 것을 포함하는 제2 배양 단계.In some embodiments, a method of producing natural killer cells may comprise repeating the following steps: freezing; thawing step; and a second culturing step comprising co-culturing by adding feeder cells.
일부 실시예에서, 도 14A (데이터 곡선 위의 막대 시점에서)에 도시된 바와 같이, 재-자극 또는 재-증식의 1회 이상의 사이클이 적용될 수 있다. 일부 실시양태에서, 제1 자극, 이어서 세포 배양, 이어서 냉동(선택적), 이어서 제2 자극(재-자극), 이어서 제2 세포 배양 단계, 이어서 냉동(선택적), 이어서 제3 자극(제2 재-자극)에 이어서 또 다른 배양 단계가 있다. IL-21은 본 명세서에 제공된 각 자극 단계에서 사용할 수 있다. 선택적 냉동 단계는 세포들 전체, 또는 세포들의 일부에 적용될 수 있다. 일부 실시양태에서, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10회 이상의 자극이 있다(예를 들어, 한 번의 자극 후 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9회 이상의 재-자극). 각각의 재-자극 후에는, 또 다른 세포 배양/증식 단계가 있을 수 있다. 일부 실시양태에서, 각각의 세포 배양 또는 재-증식은 9-25일 동안 진행될 수 있다. 각 세포 배양 단계 다음에 냉동 단계가 있을 수 있다. 일부 실시양태에서, 그 과정은 다음으로 이루어지는 사이클일 수 있다: a) 자극(또는 재-자극), 이어서 b) 세포 배양, 이어서 c) 냉동(선택적), 이어서 d) 해동(선택적), 원하는 만큼 반복. 원하는 만큼. 일부 실시양태에서, IL-21의 양은 10 내지 100 ng/mL, 예를 들어 50 ng/mL이다. 도 14A 의 자극/재자극은 세포들에 IL-21을 첨가한 것을 나타낸다.In some embodiments, one or more cycles of re-stimulation or re-proliferation may be applied, as shown in FIG. 14A (at bar time points above the data curve). In some embodiments, a first stimulation followed by cell culture followed by freezing (selective), followed by a second stimulation (re-stimulation), followed by a second cell culture step, followed by freezing (selective), followed by a third stimulation (second re-stimulation) -stimulation) followed by another incubation step. IL-21 can be used in each of the stimulation steps provided herein. The optional freezing step can be applied to all of the cells, or to some of the cells. In some embodiments, there are 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 or more stimulations (e.g., 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 or more re-stimulations). After each re-stimulation, there may be another cell culture/proliferation step. In some embodiments, each cell culture or re-proliferation can proceed for 9-25 days. Each cell culture step may be followed by a freezing step. In some embodiments, the process may be a cycle consisting of: a) stimulation (or re-stimulation) followed by b) cell culture followed by c) freezing (optional) followed by d) thawing (optional), as desired. repeat. as much as you want. In some embodiments, the amount of IL-21 is between 10 and 100 ng/mL, such as 50 ng/mL. The stimulation/restimulation of Figure 14A shows the addition of IL-21 to the cells.
일부 실시양태에서, 본 명세서에 제공된 임의의 과정은 하나 이상의 냉동 단계를 포함할 수 있다.In some embodiments, any of the processes provided herein can include one or more freezing steps.
일부 실시양태에서, 본 명세서에 제공된 NK 세포들에 관한 임의의 실시양태는 천연 NK 세포들 및 유전적으로 변형된 NK 세포들을 포함할 수 있다.In some embodiments, any of the embodiments of NK cells provided herein may include native NK cells and genetically modified NK cells.
암 치료용 세포 치료 조성물Cell therapy composition for cancer treatment
일부 실시양태에 따르면, 암 치료를 위한 세포 치료 조성물은 말초 혈액 유래 CD56+ NK 세포들을 포함할 수 있다. 세포들은 적어도 2 단계의 증식을 거쳤거나 그 결과일 것이며, 적어도 제1 단계는 IL-21이 있는 상태에서 진행된다.According to some embodiments, a cell therapy composition for the treatment of cancer may comprise peripheral blood derived CD56+ NK cells. The cells have undergone or will be the result of at least two stages of proliferation, with at least the first stage proceeding in the presence of IL-21.
본 명세서에 있어서, 용어 "말초 혈액-유래(peripheral blood-derived)"는, "말초 혈액의 전혈" 또는 "백혈구성분채집술(leukapheresis)을 이용하여 말초 혈액으로부터 분리한 백혈구"로부터 세포들이 유래됨을 의미할 수 있다. 말초 혈액 유래 CD56+ NK 세포들은 말초 혈액 단핵 세포(PBMC) 유래 CD56+ NK 세포들과 상호교환적으로 사용될 수 있다.As used herein, the term "peripheral blood-derived" means that cells are derived from "whole blood from peripheral blood" or "leukocytes isolated from peripheral blood using leukapheresis". can mean Peripheral blood-derived CD56+ NK cells can be used interchangeably with peripheral blood mononuclear cell (PBMC)-derived CD56+ NK cells.
일부 실시양태에서, 사이토카인은 18-180,000, 20-100,000, 50-50,000, 50-1,000, 50-900, 50-800, 50-700, 50-600, 50-550, 100-550, 150-550, 200-550, 250-550, 300-550, 350-550, 400-550, 450-550 IU/mL의 농도로 사용될 수 있다. 사이토카인이 상기 범위들로 사용될 때, 암 치료 조성물에 포함된 NK 세포들의 세포자살을 억제하고, NK 세포들의 항-암 활성을 증가시킬 수 있다.In some embodiments, the cytokine is 18-180,000, 20-100,000, 50-50,000, 50-1,000, 50-900, 50-800, 50-700, 50-600, 50-550, 100-550, 150- Concentrations of 550, 200-550, 250-550, 300-550, 350-550, 400-550, 450-550 IU/mL may be used. When the cytokine is used in the above ranges, it is possible to inhibit apoptosis of NK cells included in the cancer treatment composition and increase the anti-cancer activity of NK cells.
일부 실시양태에서, 조성물은 추가 사이토카인으로서(예를 들어, IL-21에 추가하여) IL-2를 포함할 수 있다.In some embodiments, the composition can include IL-2 as an additional cytokine (eg, in addition to IL-21).
일부 실시양태에서, CD56+ NK 세포들은 본 명세서의 다른 곳에서 기재된 바와 같이 수득될 수 있다. 예를 들어, CD56+ NK 세포들은 영양 세포들(예를 들어, 방사선 조사된 Jurkat 세포들 및 방사선 조사된 EBV-LCL 세포들)과 공 배양하여 수득될 수 있다. 일부 실시양태에서, 전체 세포들에 대한 CD56+ NK 세포들의 비율(순도)은 85 % 이상, 90 % 이상, 95 % 이상, 또는 98 % 이상일 수 있다.In some embodiments, CD56+ NK cells can be obtained as described elsewhere herein. For example, CD56+ NK cells can be obtained by co-culture with feeder cells (eg, irradiated Jurkat cells and irradiated EBV-LCL cells). In some embodiments, the ratio (purity) of CD56+ NK cells to total cells may be at least 85%, at least 90%, at least 95%, or at least 98%.
일부 실시양태에서, 암은 혈액암, 위암, 췌장암, 담관암종, 결장암, 유방암, 간암, 난소암, 폐암, 신장암, 전립선암 또는 신경모세포종일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 일부 실시양태에서, 그 과정은, 예를 들어, 신경퇴행성 질환 및 급성 감염에서, 동종 NK 세포 요법에 적용될 수 있다.In some embodiments, the cancer can be, but is not limited to, blood cancer, stomach cancer, pancreatic cancer, cholangiocarcinoma, colon cancer, breast cancer, liver cancer, ovarian cancer, lung cancer, kidney cancer, prostate cancer, or neuroblastoma. In some embodiments, the process may be applied to allogeneic NK cell therapy, eg, in neurodegenerative diseases and acute infections.
일부 실시양태에서, 조성물은 T 세포들을 포함하지 않을 수 있거나, 미량의 T 세포들만을 포함할 수 있다. 예를 들어, 조성물에서 전체 세포들에 대한 T 세포들의 비율은 15 % 미만, 10 % 미만, 5 % 미만, 2 % 미만, 1 % 미만 또는 그 미만일 수 있다.In some embodiments, the composition may contain no T cells, or may contain only trace amounts of T cells. For example, the ratio of T cells to total cells in the composition may be less than 15%, less than 10%, less than 5%, less than 2%, less than 1% or less.
본 명세서에서, 용어 "T 세포(T cell)"는 흉선에서 유래한 림프구를 의미하며, 이는 이전에 접한 항원들을 "기억(memorize)"하여 B 세포들에 정보를 제공함으로써, 항체 생산을 촉진하고 세포 면역계에서 중요한 역할을 한다. 이러한 T 세포들은 다른 항원들 간의 아주 작은 차이들을 구별하여 동종 항원들에 대한 면역 반응을 유도할 수 있으므로, 자가 치료는 가능하나, 동종 치료에 사용하기에는 한계가 있을 수 있다. 따라서, T 세포들이 없는 세포 치료 조성물은 동종이식에 적합할 수 있다.As used herein, the term "T cell (T cell)" refers to a lymphocyte derived from the thymus, which "memorizes" previously encountered antigens and provides information to B cells, thereby promoting antibody production and It plays an important role in the cellular immune system. Since these T cells can induce an immune response to allogeneic antigens by discriminating very small differences between different antigens, self-treatment is possible, but there may be limitations in using it for allogeneic treatment. Thus, a cell therapy composition free of T cells may be suitable for allograft.
본 명세서에서, 용어 "세포 치료제(cell therapeutic agent)"는, 세포들 및 조직들의 기능을 회복시키거나 다른 방법들로 세포들의 생물학적 특성들을 변화시키기 위해 시험관 내에서 자가, 동종 및 이종의 살아있는 세포들을 증식 및 스크리닝하는 등의, 일련의 작용을 통해 치료, 진단 및 예방에 사용되는 의약품을 의미한다. 세포 치료제들은 미국에서 1993년, 한국에서 2002년부터 의약품들로 규제되었다. 이러한 세포 치료제들은 크게 두 가지 분야로 나눌 수 있는데, 첫번째는, 조직 재생 또는 장기 기능들의 회복을 위한 줄기세포 치료제들이고, 두번째는, 면역 반응의 억제 또는 생체 내 면역 반응의 향상과 같은, 면역 반응들을 조절하는 면역 세포 치료제들이다.As used herein, the term "cell therapeutic agent" refers to autologous, allogeneic and xenogeneic living cells in vitro to restore the function of cells and tissues or otherwise change the biological properties of the cells. It refers to a drug used for treatment, diagnosis and prevention through a series of actions, such as proliferation and screening. Cell therapies have been regulated as pharmaceuticals since 1993 in the United States and 2002 in Korea. These cell therapeutics can be broadly divided into two fields: first, stem cell therapeutics for tissue regeneration or restoration of organ functions, and second, immune responses such as suppression of immune response or enhancement of immune response in vivo. Regulating immune cell therapies.
본 명세서에 기재된 세포 치료 조성물들의 투여 경로는 조성물이 표적 조직에 도달하는 한 임의의 적합한 경로일 수 있다. 투여는 비경구 투여, 예를 들어, 복강내 투여, 정맥내 투여, 근육내 투여, 피하 투여, 또는 피내 투여일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.The route of administration of the cell therapy compositions described herein can be any suitable route so long as the composition reaches the target tissue. Administration may be parenteral administration, for example, intraperitoneal administration, intravenous administration, intramuscular administration, subcutaneous administration, or intradermal administration, but is not limited thereto.
본 명세서에 기재된 세포 치료 조성물은 세포 치료에 적합하거나 일반적으로 사용되는 약제학적으로 허용되는 담체와 함께 적합한 형태로 제형화될 수 있다. "약제학적으로 허용되는(pharmaceutically acceptable)"은, 생리학적으로 허용되며, 인체에 투여시, 일반적으로 위장 장애, 현기증 등의 알레르기 반응, 또는 이와 유사한 반응을 일으키지 않는 조성물을 의미한다. 약학적으로 허용가능한 담체는, 예를 들어, 물, 적합한 오일, 식염수, 수성 글루코스 및 글리콜 등과 같은 비경구 투여용 담체들을 포함할 수 있고, 안정제들 및 방부제들을 추가로 포함할 수 있다. 적합한 안정제는 아황산수소나트륨, 아황산나트륨 또는 아스코르브산, 수크로스, 알부민 등과 같은 항산화제를 포함한다. 적합한 방부제는 DMSO, 글리세롤, 에틸렌 글리콜, 수크로스, 트레할로스, 덱스트로스, 폴리비닐피롤리돈 등을 포함한다.The cell therapy compositions described herein may be formulated in a suitable form with a pharmaceutically acceptable carrier suitable for cell therapy or commonly used. "Pharmaceutically acceptable" refers to a composition that is physiologically acceptable and does not generally cause gastrointestinal disorders, allergic reactions such as dizziness, or similar reactions when administered to the human body. Pharmaceutically acceptable carriers may include carriers for parenteral administration, such as, for example, water, suitable oils, saline, aqueous glucose and glycol, and may further contain stabilizers and preservatives. Suitable stabilizers include sodium bisulfite, sodium sulfite or antioxidants such as ascorbic acid, sucrose, albumin and the like. Suitable preservatives include DMSO, glycerol, ethylene glycol, sucrose, trehalose, dextrose, polyvinylpyrrolidone, and the like.
세포 치료 조성물은 또한 세포 치료제가 표적 세포로 이동할 수 있는 임의의 장치에 의해 투여될 수 있다.The cell therapy composition may also be administered by any device capable of delivering the cell therapy to the target cell.
세포 치료 조성물은 질병의 치료를 위한 치료적 유효량의 세포 치료제를 포함할 수 있다. 용어 "치료적 유효량(therapeutically effective amount)"은, 연구자, 수의사, 의사 또는 기타 임상의가 고려하는 조직 시스템들, 동물들 또는 인간들에서 생물학적 또는 의학적 반응들을 유도하는 활성 성분 또는 세포 치료 조성물의 양을 의미하며, 치료할 질병들 또는 장애들의 증상들의 완화를 유도하는 양을 포함한다. 세포 치료 조성물에 포함되는 세포 치료제는 원하는 효과에 따라 변경될 수 있음은 당업자에게 자명할 것이다. 따라서, 세포 치료제의 최적 함량은 당해 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자가 용이하게 결정할 수 있으며, 질병의 종류, 질병의 중증도, 조성물에 포함된 기타 성분의 함량, 제형의 종류, 연령, 체중, 일반적인 건강상태, 성별, 환자의 식이, 투여 시간, 투여 경로, 조성물의 분비율, 치료 기간, 동시 사용 약제들 등을 포함하는 다양한 요인들에 따라 조절될 수 있다. 모든 요인들을 고려하여 부작용들 없이 최소량으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 포함시키는 것이 중요하다. 예를 들어, 세포 치료 조성물은 체중 kg당 1 x 106 내지 5 x 108 세포의 세포 치료제를 포함할 수 있다.A cell therapy composition may comprise a therapeutically effective amount of a cell therapeutic agent for the treatment of a disease. The term “therapeutically effective amount” refers to the amount of an active ingredient or cell therapy composition that elicits a biological or medical response in tissue systems, animals or humans under consideration by a researcher, veterinarian, physician or other clinician. is meant and includes an amount that induces alleviation of the symptoms of the diseases or disorders to be treated. It will be apparent to those skilled in the art that the cell therapeutic agent included in the cell therapy composition may be changed according to a desired effect. Therefore, the optimal content of the cell therapeutic can be easily determined by a person of ordinary skill in the art, and the type of disease, the severity of the disease, the content of other components included in the composition, the type of formulation, age, weight, general It can be adjusted according to various factors including health status, sex, patient's diet, administration time, administration route, secretion rate of the composition, treatment period, and concurrently used drugs. Considering all factors, it is important to include the amount that can achieve the maximum effect with the minimum amount without side effects. For example, the cell therapy composition may comprise 1 x 10 6 to 5 x 10 8 cells per kg body weight of the cell therapy.
일부 실시양태에서, 세포 치료 조성물의 NK 세포들은 그의 사전-냉동된 집단과 비교하여 50 % 이상, 60 % 이상, 70 % 이상, 80 % 이상, 85 % 이상, 90 % 이상, 93 % 이상, 95 % 이상, 또는 98 % 이상의 세포독성을 가질 수 있다.In some embodiments, the NK cells of the cell therapy composition are 50% or more, 60% or more, 70% or more, 80% or more, 85% or more, 90% or more, 93% or more, 95% or more compared to a pre-frozen population thereof. % or greater, or 98% or greater cytotoxicity.
일부 실시양태에서, 조성물은 환자로부터의 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)로부터 유래된 유효량의 CD56+ 세포들을 포함할 수 있다. CD56+ 세포들은, 혈액 샘플에서 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)을 분리하는 단계; PBMC들로부터 CD56+ 세포들을 분리하는 단계; 하나 이상의 사이토카인의 존재 하에 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계; CD56+ 세포들을 냉동하는 단계; 냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 및 하나 이상의 사이토카인의 존재 하에 해동된 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계를 통해 준비될 수 있다.In some embodiments, the composition may comprise an effective amount of CD56+ cells derived from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a patient. CD56+ cells can be obtained by isolating peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a blood sample; isolating CD56+ cells from PBMCs; co-culturing CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of one or more cytokines; freezing the CD56+ cells; thawing the frozen CD56+ cells; and co-culturing the thawed CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of one or more cytokines.
일부 실시양태에서, CD56+ 세포들의 유효량은 체중 kg당 1 x 106 내지 5 x 108 세포일 수 있다.In some embodiments, an effective amount of CD56+ cells can be 1 x 10 6 to 5 x 10 8 cells per kg body weight.
일부 실시양태에서, 세포 조성물은 환자로부터의 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)로부터 유래된 유효량의 CD56+ 세포들; IL-2; 및 IL-21을 포함할 수 있다.In some embodiments, the cell composition comprises an effective amount of CD56+ cells derived from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a patient; IL-2; and IL-21.
일부 실시양태에서, 조성물은 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)로부터 유래된 CD56+ 세포들의 제1 집단; 얼음; IL-2 및 IL-21을 포함할 수 있다. 해동될 때, CD56+ 세포들은 CD56+ 세포들의 제2 집단의 적어도 80 %의 세포독성을 가지며, 여기서 CD56+ 세포들의 제2 집단은 냉동되지 않았다. 일부 실시양태에서, 세포독성은 85, 90, 95, 96, 97, 98, 또는 99 % 이상이다.In some embodiments, the composition comprises a first population of CD56+ cells derived from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs); ice; IL-2 and IL-21. When thawed, CD56+ cells have at least 80% cytotoxicity of a second population of CD56+ cells, wherein the second population of CD56+ cells has not been frozen. In some embodiments, the cytotoxicity is at least 85, 90, 95, 96, 97, 98, or 99%.
일부 실시양태에서, 비-냉동된 증식(IL21, IL21+ 또는 IL21-의 존재 및 부재 하)과 냉동되었지만 제1 단계에서 IL21+와 공 배양된 증식을 비교하면, 냉동된 증식의 평균 세포독성은 비-냉동의 97.7 %였다(표 3: 범위 83 %-131 %). 일부 실시양태에서, 비-냉동된 증식(IL21, IL21+ 또는 IL21-의 존재 및 부재 하)과 냉동되었지만 제1 단계에서 IL21+와 공 배양되지 않은 증식(IL21--, IL21-+)을 비교할 때, 냉동된 증식의 평균 세포독성은 비-냉동 증식의 최소 81.4 %일 수 있다(표 4 범위 61 %-83 %). IL21이 냉동 증식의 두 단계들 모두에 추가되었을 때(IL21++), 평균 세포독성은 비-냉동된 증식의 114 %였다(표 3 값 98 %-131 %). 따라서, 일부 실시양태에서, IL21+/+(72 %) 대 IL21-/+(45 %)는 IL21과 함께 제1 증식할 때 및 제2 단계에서 또한 세포독성이 제1 단계에서 Il21이 없는 경우보다 60 % 더 높다는 것을 나타낸다. 따라서, 일부 실시양태에서, 제1 증식에서 IL21의 존재는 60 % 더 높은 냉동 후, 제2 증식을 허용한다. IL21+/-(62 %) 대 IL21 -/-(46.1 %)의 경우, 이는 제1 단계에서는 IL21와 함께 제1 증식하지만 제2 단계에서는 함께 증식하지 않을 때, 세포 독성은 제1 단계에서 Il21이 없는 경우보다 35 % 이상 더 높을 수 있음을 의미한다.In some embodiments, when comparing non-frozen proliferation (in the presence and absence of IL21, IL21+, or IL21-) to proliferation frozen but co-cultured with IL21+ in a first step, the mean cytotoxicity of the frozen proliferation is non- 97.7% of frozen (Table 3: Range 83%-131%). In some embodiments, when comparing non-frozen proliferation (in the presence and absence of IL21, IL21+ or IL21-) to proliferation that is frozen but not co-cultured with IL21+ in a first step (IL21--, IL21-+), The average cytotoxicity of frozen proliferations can be at least 81.4% of non-frozen proliferations (Table 4 range 61%-83%). When IL21 was added to both stages of frozen proliferation (IL21++), the mean cytotoxicity was 114% of non-frozen proliferation (Table 3 values 98%-131%). Thus, in some embodiments, IL21+/+ (72%) versus IL21 −/+ (45%) is less cytotoxic in the first phase when proliferating with IL21 and in the second phase than without Il21 in the first phase. indicates that it is 60% higher. Thus, in some embodiments, the presence of IL21 in the first proliferation allows for a second proliferation after freezing that is 60% higher. For IL21+/- (62%) versus IL21 −/- (46.1%), when it first proliferates with IL21 in the first phase but not in the second phase, cytotoxicity is This means that it can be 35% or more higher than without.
일부 실시양태에서, 세포독성은 비-냉동된 증식(IL21의 존재 또는 부재 하) 대 냉동되었지만 제1 단계에서 IL21+와 공 배양된 증식을 비교하는 것이며, 상기 냉동된 증식의 평균 세포독성은 비-냉동된 증식의 97.7 %이다. 일부 실시양태에서, 세포독성은 비-냉동된 증식(IL21의 존재 또는 부재 하) 대 냉동되었지만 제1 단계에서 IL21+와 공 배양되지 않은 증식을 비교하는 것이며, 상기 냉동된 증식의 평균 세포독성은 비-냉동 증식의 81.4 %이다. 일부 실시양태에서, IL21은 냉동 전 및 후에 모두 첨가되고, 상기 평균 세포독성은 비-냉동된 증식의 114 %이다.In some embodiments, the cytotoxicity is a comparison of non-frozen proliferation (with or without IL21) versus frozen but co-cultured with IL21+ in a first step, wherein the mean cytotoxicity of the frozen proliferation is non- It is 97.7% of frozen growths. In some embodiments, the cytotoxicity is a comparison of non-frozen proliferation (in the presence or absence of IL21) versus proliferation that has been frozen but not co-cultured with IL21+ in a first stage, wherein the mean cytotoxicity of the frozen proliferation is the ratio - 81.4% of frozen propagation. In some embodiments, IL21 is added both before and after freezing, and the mean cytotoxicity is 114% of non-frozen proliferation.
일부 실시양태에서, 후속적인 재-증식을 허용하기 위한 공동-증식 동안 초기 IL21 처리의 우수한 특성은 하기 표 1-4의 결과들과 일치할 수 있다:In some embodiments, the superior properties of initial IL21 treatment during co-proliferation to allow for subsequent re-proliferation may be consistent with the results in Tables 1-4 below:
NK 세포들을 배양, 증식(재-증식 포함)하기 위한 임의의 실시양태에서, 공-배양(배양, 증식(재-증식 포함)) 시작 시 배양액 중 말초 혈액 단핵 세포들의 수는 1x104 내지 1x1015 세포의 범위이다. 일부 실시양태에서, 공-배양 시작 시 배양액 중 말초 혈액 단핵 세포들의 수는 1x104 내지 5x104 세포, 5x104 내지 1x105 세포, 1x105 내지 5x105 세포, 5x105 내지 1x106 세포, 1x106 내지 1x107 세포, 1x107 내지 1x108 세포, 1x108 내지 1x109 세포, 1x109 내지 1x1010 세포, 1x1011 내지 1x1012 세포, 1x1012 내지 1x1013 세포, 1x1013 내지 1x1014 세포, or 1x1014 내지 1x1015 세포의 범위이다. 일부 실시양태에서, 제1 또는 초기 증식의 시작 시 배양액에서 말초 혈액 단핵 세포들의 수는 1x104 내지 5x104 세포, 5x104 내지 1x105 세포, 1x105 내지 5x105 세포, 5x105 내지 1x106 세포, 1x106 내지 1x107 세포, 1x107 내지 1x108 세포, 1x108 내지 1x109 세포, 1x109 내지 1x1010 세포, 1x1011 내지 1x1012 세포, 1x1012 내지 1x1013 세포, 1x1013 내지 1x1014 세포, or 1x1014 내지 1x1015 세포의 범위이다. 일부 실시양태에서, 재-증식 시작 시 배양액 중 말초 혈액 단핵 세포들의 수는 1x104 내지 5x104 세포, 5x104 내지 1x105 세포, 1x105 내지 5x105 세포, 5x105 내지 1x106 세포, 1x106 내지 1x107 세포, 1x107 내지 1x108 세포, 1x108 내지 1x109 세포, 1x109 내지 1x1010 세포, 1x1011 내지 1x1012 세포, 1x1012 내지 1x1013 세포, 1x1013 내지 1x1014 세포, or 1x1014 내지 1x1015 세포의 범위이다. 본 방법들은 기존의 접근 방식들보다 NK 세포들의 더 큰 증식을 제공할 수 있다. 따라서, 상기 실시양태들 중 어느 하나에서, 공-배양(배양, 증식(재-증식 포함))의 시작시 배양액에서 말초 혈액 단핵 세포들의 수는, NK 세포들을 증식(예: IL-21 및/또는 IL-2와 같은 사이토카인 없이 증식)하여 유사한 수의 NK 세포를 제공하기 위한(예: 치료 용도 및/또는 냉동보존) 기존의 접근 방식에서는 사용하기 어려웠던 세포의 수이다.본 명세서에 개시된 바와 같이, 일부 실시양태에서 본 개시의 방법들은 치료 용도, 예를 들어 면역요법에 적합한 NK 세포들을 제공한다. 일부 실시양태에서, 본 개시의 방법들은 후속적으로 해동될 수 있고 치료 용도를 위해 효과적으로 증식될 수 있는 NK 세포들의 냉동보존을 제공한다. 따라서, NK 세포들을 배양 또는 증식(재-증식 포함)하기 위한 임의의 실시양태에서, NK 세포들은 치료 용도를 위한 증식된 NK 세포들의 하나의 집단 및 냉동보존을 위한 또 다른 집단을 생성하도록 증식된다. 일부 실시양태에서, 냉동보존된 NK 세포들은 치료 용도 및/또는 추가 냉동보존을 위해 나중에 해동되고 재-증식된다.In any embodiment for culturing, proliferating (including re-proliferation) NK cells, the number of peripheral blood mononuclear cells in the culture at the start of the co-culture (cultivation, proliferation (including re-proliferation)) is between 1x10 4 and 1x10 15 range of cells. In some embodiments, the number of peripheral blood mononuclear cells in the culture medium at the start of the co-culture is 1x10 4 to 5x10 4 cells, 5x10 4 to 1x10 5 cells, 1x10 5 to 5x10 5 cells, 5x10 5 to 1x10 6 cells, 1x10 6 to 1x10 7 cells, 1x10 7 to 1x10 8 cells, 1x10 8 to 1x10 9 cells, 1x10 9 to 1x10 10 cells, 1x10 11 to 1x10 12 cells, 1x10 12 to 1x10 13 cells, 1x10 13 to 1x10 14 cells, or 1x10 14 to It is in the range of 1x10 15 cells. In some embodiments, the number of peripheral blood mononuclear cells in the culture at the beginning of the first or initial proliferation is 1x10 4 to 5x10 4 cells, 5x10 4 to 1x10 5 cells, 1x10 5 to 5x10 5 cells, 5x10 5 to 1x10 6 cells, 1x10 6 to 1x10 7 cells, 1x10 7 to 1x10 8 cells, 1x10 8 to 1x10 9 cells, 1x10 9 to 1x10 10 cells, 1x10 11 to 1x10 12 cells, 1x10 12 to 1x10 13 cells, 1x10 13 to 1x10 14 cells, or It ranges from 1x10 14 to 1x10 15 cells. In some embodiments, the number of peripheral blood mononuclear cells in the culture at the start of re-proliferation is 1x10 4 to 5x10 4 cells, 5x10 4 to 1x10 5 cells, 1x10 5 to 5x10 5 cells, 5x10 5 to 1x10 6 cells, 1x10 6 to
NK 세포들을 배양 또는 증식(재-증식 포함)하기 위한 임의의 실시양태에서, 증식 또는 재-증식 종료 시 NK 세포들의 수는 치료 용도에 효과적인 NK 세포들의 수보다 더 많다. 일부 실시양태에서, 과량의 NK 세포들은 향후 사용, 예를 들어, 향후 해동, 증식 및 이를 필요로 하는 환자에 대한 투여를 위해 냉동보존된다. 일부 실시양태에서, NK 세포들은 세포 수에 있어서 적어도 10 %, 20 %, 30 %, 40 %, 50 %, 60 %, 70 %, 80 %, 90 %, 100 %, 150 %, 200 %, 또는 그 이상, 또는 이전 값들 중 임의의 2개 사이의 범위의 백분율로, 치료, 예를 들어 면역요법에 사용되거나 사용될 NK 세포들의 수보다 더 큰 정도로 증식 또는 재-증식된다.In any embodiment for culturing or proliferating (including re-proliferating) NK cells, the number of NK cells at the end of proliferation or re-proliferation is greater than the number of NK cells effective for therapeutic use. In some embodiments, excess NK cells are cryopreserved for future use, eg, for future thawing, proliferation, and administration to a patient in need thereof. In some embodiments, the NK cells are at least 10%, 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80%, 90%, 100%, 150%, 200%, or proliferate or re-proliferate to a greater extent than the number of NK cells to be used or to be used in treatment, eg, immunotherapy, above, or as a percentage in the range between any two of the previous values.
NK 세포들을 배양 또는 증식(재-증식 포함)하기 위한 임의의 실시양태에서, 그 방법은 냉동-해동-증식 주기를 반복하는 것을 포함할 수 있다. 일부 실시양태에서, 그 방법은 냉동-해동-증식 주기를 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8회 또는 그 이상 반복하는 것을 포함한다.In any embodiment for culturing or propagating (including re-proliferation) NK cells, the method may comprise repeating a freeze-thaw-proliferation cycle. In some embodiments, the method comprises repeating the freeze-thaw-
또한 본 명세서에 냉동보존된 NK 세포들의 조성물이 제공되며, 여기서 NK 세포들은 해동 후에도 생물학적 활성, 예를 들어 세포독성을 유지한다. 일부 실시양태에서, 냉동보존된 NK 세포들은 해동 및 재-증식 후에 그의 생물학적 활성, 예를 들어 세포독성을 유지한다. 일부 실시양태에서, 냉동보존된 NK 세포들의 조성물은, 본 명세서에 개시된 바와 같이, NK 세포들을 배양 또는 증식(재-증식 포함)하기 위한 임의의 방법들에 의해 제조된다. 일부 실시양태에서, 조성물은 적어도 80 %, 85 %, 90 %, 95 %, 97 % 또는 그 이상의 NK 세포들인 면역 세포들의 집단을 포함한다. 조성물은 적합한 냉동보존 매질을 함유할 수 있다. 일부 실시양태에서, 조성물은 디메틸술폭시드(DMSO) 및 혈청(예를 들어, FBS, 인간 혈청)을 포함한다. 일부 실시양태에서, 조성물은 DMSO를 1-15 %, 2-15 %, 5-15 %, 5-10 %, 또는 약 10 %로 포함한다. 일부 실시양태에서, 조성물은 90 % 이상의 NK 세포들, 10 % DMSO 및 90 % FBS를 포함하는 냉동보존된 면역 세포들의 집단을 포함 또는 이로 이루어져 있다. 일부 실시양태에서, NK 세포들은 대상체로부터 수득된 PBMC로부터 유래된다. 일부 실시양태에서, 조성물은 90 % 이상의 NK 세포들, 5-10 % DMSO 및 90-95 % FBS를 포함하는 냉동보존된 면역 세포들의 집단을 포함 또는 이로 이루어져 있다. 일부 실시양태에서, NK 세포들은 대상체로부터 수득된 PBMC로부터 유래된다. 일부 실시양태에서, 이는 CryoStor 용액을 추가로 포함한다.Also provided herein is a composition of cryopreserved NK cells, wherein the NK cells retain biological activity, eg, cytotoxicity, even after thawing. In some embodiments, cryopreserved NK cells retain their biological activity, eg, cytotoxicity, after thawing and re-proliferation. In some embodiments, the composition of cryopreserved NK cells is prepared by any of the methods for culturing or propagating (including re-proliferating) NK cells, as disclosed herein. In some embodiments, the composition comprises a population of immune cells that are at least 80%, 85%, 90%, 95%, 97% or more NK cells. The composition may contain a suitable cryopreservation medium. In some embodiments, the composition comprises dimethylsulfoxide (DMSO) and serum (eg, FBS, human serum). In some embodiments, the composition comprises 1-15%, 2-15%, 5-15%, 5-10%, or about 10% DMSO. In some embodiments, the composition comprises or consists of a population of cryopreserved immune cells comprising at least 90% NK cells, 10% DMSO and 90% FBS. In some embodiments, the NK cells are derived from PBMCs obtained from a subject. In some embodiments, the composition comprises or consists of a population of cryopreserved immune cells comprising at least 90% NK cells, 5-10% DMSO and 90-95% FBS. In some embodiments, the NK cells are derived from PBMCs obtained from a subject. In some embodiments, it further comprises a CryoStor solution.
암의 예방 또는 치료 방법How to prevent or treat cancer
일부 실시양태에서, 암을 예방 또는 치료하는 방법이 제공된다. 상기 방법은 말초 혈액-유래 CD56+ 자연 살해 세포들 및 사이토카인을 포함하는 항-암용 세포치료 조성물을 대상체에 투여하는 단계를 포함한다. 일부 실시양태에서, 세포는 이-중 증식 과정의 결과이며, 그 중 적어도 첫 번째는 IL-21의 존재 하에 발생한다.In some embodiments, methods of preventing or treating cancer are provided. The method comprises administering to a subject an anti-cancer cell therapy composition comprising peripheral blood-derived CD56+ natural killer cells and cytokines. In some embodiments, the cell is the result of a dual-proliferative process, at least the first of which occurs in the presence of IL-21.
용어 "대상체(subject)"는 치료, 관찰 또는 테스트를 위한 대상체인 포유동물, 바람직하게는, 인간을 지칭한다. 대상체는 혈액암, 위암, 췌장암, 담관암종, 결장암, 유방암, 간암, 난소암, 폐암, 신장암, 전립선암 또는 신경모세포종의 환자일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.The term “subject” refers to a mammal, preferably a human, that is a subject for treatment, observation or testing. The subject may be a patient with blood cancer, stomach cancer, pancreatic cancer, cholangiocarcinoma, colon cancer, breast cancer, liver cancer, ovarian cancer, lung cancer, kidney cancer, prostate cancer, or neuroblastoma, but is not limited thereto.
일부 실시양태에서, 성인의 경우, 세포 치료 조성물은 하루에 1회 내지 수회 투여될 수 있다. 세포 치료 조성물은 매일 또는 2-180일 간격으로 투여될 수 있다. 조성물에 포함된 세포 치료제는 1 x 106 내지 1 x 1011 말초 혈액-유래 CD56+ 자연 살해 세포들, 예를 들어, 체중 kg당 약 1 x 106 내지 1 x 108 NK 세포들을 포함할 수 있다. 일부 실시양태에서, 세포 치료 조성물 중 말초 혈액-유래 CD56+ 자연 살해 세포들은 약 90% 이상 순수하다. 일부 실시양태에서, 사이토카인은 약 50 - 50,000 IU/ml 범위의 농도의 IL-2이다.In some embodiments, for adults, the cell therapy composition may be administered from once to several times a day. The cell therapy composition may be administered daily or at 2-180 day intervals. The cell therapeutic agent included in the composition may comprise 1 x 10 6 to 1 x 10 11 peripheral blood-derived CD56+ natural killer cells, eg, about 1 x 10 6 to 1 x 10 8 NK cells per kg body weight. . In some embodiments, the peripheral blood-derived CD56+ natural killer cells in the cell therapy composition are at least about 90% pure. In some embodiments, the cytokine is IL-2 at a concentration ranging from about 50 - 50,000 IU/ml.
일부 실시양태에서, 세포 치료 조성물은 세포 요법에 적합하거나 일반적으로 사용되는 약제학적으로 허용되는 담체와 함께 적합한 형태로 제제화될 수 있다. "약제학적으로 허용되는"은, 생리학적으로 허용되며, 인체에 투여시, 일반적으로 위장 장애, 현기증 등의 알레르기 반응, 또는 이와 유사한 반응을 일으키지 않는 조성물을 의미한다. 약제학적으로 허용되는 담체는, 예를 들어, 물, 적합한 오일, 식염수, 수성 글루코오스, 글리콜, Hartman 용액과 같은 염기 화합물, 또는 일반 식염수 용액, 혈장 전해질 A 등과 같은 대체재와 같은 비경구 투여 담체들을 포함할 수 있으며, 안정제들 및 방부제들을 추가로 포함할 수 있다. 적합한 안정제는 아황산수소나트륨, 아황산나트륨, 또는 아스코르브산, 수크로스, 알부민, 인간 혈청 알부민 등과 같은 항산화제를 포함한다. 적합한 방부제는 DMSO, 글리세롤, 에틸렌 글리콜, 수크로스, 트레할로스, 덱스트로스, 폴리비닐피롤리돈 등을 포함한다.In some embodiments, cell therapy compositions may be formulated in a suitable form with a pharmaceutically acceptable carrier suitable for or commonly used in cell therapy. “Pharmaceutically acceptable” refers to a composition that is physiologically acceptable and does not generally cause gastrointestinal disorders, allergic reactions such as dizziness, or similar reactions when administered to the human body. Pharmaceutically acceptable carriers include, for example, carriers for parenteral administration such as water, suitable oils, saline, aqueous glucose, glycols, basic compounds such as Hartman's solution, or alternatives such as common saline solution, plasma electrolyte A and the like. and may further include stabilizers and preservatives. Suitable stabilizers include sodium bisulfite, sodium sulfite, or antioxidants such as ascorbic acid, sucrose, albumin, human serum albumin, and the like. Suitable preservatives include DMSO, glycerol, ethylene glycol, sucrose, trehalose, dextrose, polyvinylpyrrolidone, and the like.
일부 실시양태에서, 세포 치료 조성물은 직장, 정맥내, 동맥내, 복강내, 근육내, 흉골내, 경피, 국소, 안내 또는 피내 경로를 통한 투여와 같은 임의의 적합한 방법에 의해 투여될 수 있다. 일부 실시양태에서, 조성물에 포함된 NK 세포들은 동종이형(allogenic), 즉 치료 대상이 아닌 다른 사람으로부터 수득될 수 있다. 일부 실시양태에서, 사람은 정상인 또는 암 환자일 수 있다. 일부 실시양태에서, 조성물에 포함된 NK 세포들은 자가유래(autologous), 즉 치료되는 대상체로부터 수득될 수 있다.In some embodiments, the cell therapy composition can be administered by any suitable method, such as administration via rectal, intravenous, intraarterial, intraperitoneal, intramuscular, intrasternal, transdermal, topical, intraocular, or intradermal routes. In some embodiments, the NK cells comprised in the composition may be allogeneic, i.e., obtained from a person other than the subject of treatment. In some embodiments, the human may be a normal person or a cancer patient. In some embodiments, the NK cells included in the composition may be autologous, ie, obtained from the subject being treated.
일부 실시양태에서, 본 명세서에 개시된 NK 세포들 및 본 명세서에 개시된 NK 세포들을 포함하는 세포 치료 조성물은 암 이외의 질병 또는 병태를 치료하기 위해 사용될 수 있다. NK 세포들은, 예를 들어, T-세포를 조절함으로써, 면역계의 조절에 중요한 역할을 하는 것으로 보고되어 있으며, 따라서 NK 세포들을 포함하는 세포 치료 조성물은 면역계와 관련된 상태들을 치료하기 위해 투여될 수 있다. 예를 들어, 세포 치료 조성물은 신경퇴행성 장애들(예를 들어, 알츠하이머병 및 파킨슨병) 또는 자가면역 질환들(예를 들어, 류마티스 관절염, 다발성 경화증, 건선, 척추관절병증, SLE, 쇼그렌 증후군, 전신 경화증)을 치료하기 위해 투여될 수 있다.In some embodiments, the NK cells disclosed herein and a cell therapy composition comprising the NK cells disclosed herein may be used to treat a disease or condition other than cancer. NK cells have been reported to play an important role in the regulation of the immune system, for example by modulating T-cells, and thus a cell therapy composition comprising NK cells can be administered to treat conditions associated with the immune system. . For example, the cell therapy composition may be used for neurodegenerative disorders (eg, Alzheimer's disease and Parkinson's disease) or autoimmune diseases (eg rheumatoid arthritis, multiple sclerosis, psoriasis, spondyloarthropathies, SLE, Sjogren's syndrome, systemic sclerosis).
일부 실시양태에서, 대상체를 치료하는 방법은 대상체로부터 CD56+ 세포들을 수집하는 단계; IL-21의 존재 하에 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계; 적어도 하루 동안 공-배양된 CD56+ 세포들을 냉동하는 단계; 냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 해동된 CD56+ 세포들을 증식시키는 단계; 및 증식된 CD56+ 세포들을 대상체에게 투여하는 단계를 포함하며, 상기 제2 증식으로부터의 세포들의 세포독성은 냉동 전 공-배양된 CD56+의 세포독성의 80 % 이상(예를 들어, 80, 85, 90, 95, 또는 97 % 이상)이다.In some embodiments, a method of treating a subject comprises collecting CD56+ cells from the subject; co-culturing CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of IL-21; freezing the co-cultured CD56+ cells for at least one day; thawing the frozen CD56+ cells; propagating thawed CD56+ cells; and administering the proliferated CD56+ cells to the subject, wherein the cytotoxicity of the cells from the second proliferation is at least 80% (eg, 80, 85, 90 ) of the cytotoxicity of the co-cultured CD56+ prior to freezing. , 95, or 97% or more).
일부 실시양태에서, 그 방법은 냉동된 CD56+ 세포들을 -100 ℃ 미만의 온도에서 저장하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 CD56+ 세포들은 -10 ℃ 이하, -20 ℃ 이하, -50 ℃ 이하, -70 ℃ 이하, -150 ℃ 이하, -192 ℃ 이하, 또는 -200 ℃ 이하의 온도에서 저장될 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 CD56+ 세포들은 해동 전 하루 이상 동안 저장될 수 있다. 일부 실시양태에서, 냉동된 CD56+ 세포들은 다음 값들 중 임의의 2개 사이의 임의의 범위를 포함하여, 2일 이상, 3일 이상, 7일 이상, 14일 이상, 30일 이상, 60일 이상, 또는 180일 이상 동안, 저장될 수 있다. In some embodiments, the method may further comprise storing the frozen CD56+ cells at a temperature of less than -100 °C. In some embodiments, the frozen CD56+ cells are stored at a temperature of -10 °C or less, -20 °C or less, -50 °C or less, -70 °C or less, -150 °C or less, -192 °C or less, or -200 °C or less. can In some embodiments, frozen CD56+ cells may be stored for one or more days prior to thawing. In some embodiments, the frozen CD56+ cells are at least 2 days, at least 3 days, at least 7 days, at least 14 days, at least 30 days, at least 60 days, inclusive of any range between any two of the following values; or for 180 days or more.
일부 실시양태에서, CD56+ 세포들은 냉동 전 13-16일 동안 공-배양될 수 있다. 예를 들어, CD56+ 세포들은 냉동 전 14일 또는 15일 동안 공-배양될 수 있다. 일부 실시양태에서, 공-배양 또는 증식(재-증식 포함)은 9-25일, 예를 들어, 10-24, 11-23, 13-22, 14-21, 14-18, 14-16일, 등 동안일 수 있다. 이러한 시간 프레임들은 본 명세서에 제공된 증식 및/또는 재-증식 기간 중 임의의 것에 적용될 수 있다(다른 세포들에 대한 실시예들 포함).In some embodiments, CD56+ cells can be co-cultured for 13-16 days prior to freezing. For example, CD56+ cells can be co-cultured for 14 or 15 days prior to freezing. In some embodiments, co-culturing or propagation (including re-proliferation) is 9-25 days, e.g., 10-24, 11-23, 13-22, 14-21, 14-18, 14-16 days. , and so on. These time frames can be applied to any of the proliferation and/or re-proliferation periods provided herein (including examples for other cells).
일부 실시양태에서, 해동된 CD56+ 세포들을 증식하는 것은 해동된 CD56+를 IL-21의 존재 하에 하나 이상의 방사선 조사된 영양 세포들과 공-배양하는 것을 포함한다. 하나 이상의 영양 세포들은 방사선 조사된 Jurkat 세포들, 방사선 조사된 Epstein-Barr 바이러스가 형질전환된 림프구 연속 세포주(EBV-LCL) 세포들, K562 세포들 및 PBMC들로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상이다. 일부 실시양태에서, CD56+ 세포들은 약 1:1-100의 CD56+ 세포들 대 영양 세포들의 비율로 공-배양될 수 있다. 예를 들어, CD56+ 세포들은 약 1:2, 1:5, 1:10, 1:30 또는 1:100의 CD56+ 세포들 대 영양 세포들의 비율로 공-배양될 수 있다.In some embodiments, propagating the thawed CD56+ cells comprises co-culturing the thawed CD56+ with one or more irradiated feeder cells in the presence of IL-21. The one or more feeder cells are one or more selected from the group consisting of irradiated Jurkat cells, irradiated Epstein-Barr virus transformed lymphocyte continuous cell line (EBV-LCL) cells, K562 cells and PBMCs. In some embodiments, CD56+ cells may be co-cultured at a ratio of CD56+ cells to feeder cells of about 1:1-100. For example, CD56+ cells can be co-cultured at a ratio of CD56+ cells to feeder cells of about 1:2, 1:5, 1:10, 1:30 or 1:100.
일부 실시양태에서, IL-21은 제1 및/또는 제2 기간 동안 10-100 ng/mL의 농도로 첨가될 수 있다. 예를 들어, IL-21은 제1 및/또는 제2 기간 동안 20-80 ng/mL, 30-70 ng/mL 또는 40-60 ng/mL의 농도로 첨가될 수 있다. 일부 실시양태에서, IL-21은 제1 및/또는 제2 기간 동안 1회 이상 첨가될 수 있다.In some embodiments, IL-21 may be added at a concentration of 10-100 ng/mL during the first and/or second period. For example, IL-21 may be added at a concentration of 20-80 ng/mL, 30-70 ng/mL or 40-60 ng/mL during the first and/or second period. In some embodiments, IL-21 may be added one or more times during the first and/or second period.
일부 실시양태에서, IL-21은 인간 NK 세포들에 대한 인간 IL-21이다.In some embodiments, the IL-21 is human IL-21 on human NK cells.
본 명세서에 제공된 일부 실시양태는 다음과 같은 특징들 및 이점들을 포함한다:Some embodiments provided herein include the following features and advantages:
(a) 자연 살해 세포들을 생산하는 방법.(a) A method of producing natural killer cells.
(b) 냉동보존 후에도 자연 살해 세포들을 임상용으로 충분한 양만큼 생산할 수 있어, 암의 예방 및 치료, 특히, 자연 살해 세포들을 이용한 동종 요법(allogenic therapy)의 효과를 높일 수 있다.(b) Even after cryopreservation, natural killer cells can be produced in a sufficient amount for clinical use, thereby increasing the effectiveness of cancer prevention and treatment, in particular, allopathic therapy using natural killer cells.
(c) 두 번 증식된(적어도 첫 번재에는 IL-21을 사용, 및 선택적으로 두 번째 증식에서도) 결과물 세포들의 세포독성은 IL-21 없이(1번, 훨씬 더 큰 두 번) 증식된 세포들보다 훨씬 우수하다. 일부 실시양태에서, 세포들은 1-50mL 냉동-바이알, 또는 10-100mL 냉동-백에 들어있다.(c) the cytotoxicity of the resulting cells proliferated twice (at least the first with IL-21, and optionally in the second propagation) was compared to cells propagated without IL-21 (first, much larger twice). much better than In some embodiments, the cells are in 1-50 mL cryo-vials, or in 10-100 mL cryo-bags.
NK 세포들이 냉동보존을 거치고 그로부터 회복되도록 돕는 방법이 본 명세서에서 개발 및 제공되었다. CD56+ 세포들이 초기에(초기 증식 동안) IL-21의 존재 하에 영양 세포들과 공-배양되는 경우, CD56+ 세포들은 냉동 및 해동 후에 성공적으로 증식될 수 있음이 밝혀졌다. IL-21을 사용함으로써, 고-순도 CD56+ NK 세포들이 생성될 수 있으며, 놀랍게도, 그것들은 특히 많은 양의 세포 독성을 유지한다. 게다가, NK 세포들이 해동된 후, 그들은 추가로 증식될 수 있다(IL-21 없이, 또는 훨씬 더 유리하게는, 추가 IL-21의 존재 하에). 따라서, 냉동-전 과정(예를 들어 제1 증식)에서의 IL-21은, 나중에 우수한 재-증식을 허용할 수 있다. 또한, 생성된 생성물은, 2회 증식되고, 1회 냉동된 후에도, 놀라울 정도로 높은 양의 세포독성을 유지하는데, 이는 IL-21을 제1 증식 뿐만 아니라 제2 증식 시에도 사용하는 경우에 더욱 강화된다. 일부 실시양태에서, 이러한 냉동 및 재-증식 과정은 여러 번 반복될 수 있다(매회, 선택적으로 재-증식하는 동안 IL-21의 또 다른 단계와 함께).Methods have been developed and provided herein to help NK cells undergo and recover from cryopreservation. It has been found that CD56+ cells can be successfully propagated after freezing and thawing when CD56+ cells are co-cultured with feeder cells in the presence of IL-21 initially (during initial proliferation). By using IL-21, high-purity CD56+ NK cells can be generated, and surprisingly, they retain a particularly high amount of cytotoxicity. Moreover, after the NK cells have been thawed, they can be further expanded (without IL-21, or even more advantageously, in the presence of additional IL-21). Thus, IL-21 in the pre-freezing process (eg first propagation) may allow good re-proliferation later. In addition, the resulting product, even after being propagated twice and frozen once, retains a surprisingly high amount of cytotoxicity, which is more pronounced when IL-21 is used for the first as well as the second growth. is strengthened In some embodiments, this freezing and re-growth process may be repeated multiple times (each time, optionally with another step of IL-21 during re-proliferation).
다양한 실시예들은 예시의 목적으로 첨부 도면에 도시되어 있으며, 실시예들의 범위를 한정하는 것으로 해석되어서는 안 된다. 게다가, 개시된 상이한 실시예들의 다양한 특징들은, 본 개시의 일부인, 추가 실시예들을 형성하기 위해 결합될 수 있다.
도 1은 재-증식 실험 설계 및 (냉동-전 및 선택적으로 냉동-후) IL21 처리 후 세포 증식을 위한 실시양태들을 나타낸다.
도 2a 및 2b는 IL21이 있는 세포와 없는 세포의 세포 증식 간의 집단 배가 수준(PDL)의 비교를 나타낸다 (도 2a) 기증자 1, (도 2b) 기증자 2.
도 3a 및 3b는 IL21이 있는 세포와 없는 세포의 세포 증식 간의 증식 배수의 비교를 나타낸다 (그림 3a) 기증자 1, (그림 3b) 기증자 2.
도 4a 및 4b는 IL21이 있는 세포와 없는 세포의 세포 재-자극 방법들 간의 집단 배가 수준(PDL)의 비교를 나타낸다 (도 4a) 기증자 1, (도 4b) 기증자 2.
도 5a 및 5b는 IL21이 있는 세포와 없는 세포의 세포 재-자극 방법들 간의 증식 배수의 비교를 나타낸다 (도 5a) 기증자 1, (도 5b) 기증자 2.
도 6은 IL-21와 함께 증식된 (IL-21+) K562 세포들에 대한 NK 세포들의 세포독성 활성을 나타낸다.
도 7은 IL-21 없이 증식된 (IL-21-) K562 세포들에 대한 NK 세포들의 세포독성 활성을 나타낸다.
도 8은 IL-21와 함께 증식되고 IL-21와 함께 재-자극된 (IL-21+/+) K562 세포들에 대한 NK 세포들의 세포독성 활성을 나타낸다.
도 9는 IL-21와 함께 증식되고 IL-21 없이 재-자극된 (IL-21+/-) K562 세포들에 대한 NK 세포들의 세포독성 활성을 나타낸다.
도 10은 IL-21 없이 증식되고 IL-21와 함께 재-자극된 (IL-21-/+) K562 세포들에 대한 NK 세포들의 세포독성 활성을 나타낸다.
도 11은 IL-21 없이 증식되고 IL-21 없이 재-자극된 (IL-21-/-) K562 세포들에 대한 NK 세포들의 세포독성 활성을 나타낸다.
`도 12a는 NK 세포들의 활성화 수용체들의 표현형 비교를 나타낸다.
도 12b는 NK 세포들의 억제 및 케모카인 수용체들의 표현형 비교를 나타낸다.
도 13a는 IL-21와 함께 증식되고 IL-21와 함께 재-증식된 (IL-21+/+) NK 세포들 및 IL-21 없이 증식되고 IL-21 없이 재-증식된 (IL-21-/-) NK 세포들의 집단 배가 수준(PDL)의 그래프를 나타낸다.
도 13b는 IL-21와 함께 증식되고 IL-21와 함께 재-증식된 (IL-21+/+) NK 세포들 및 IL-21와 함께 증식되고 IL-21 없이 재-증식된 (IL-21+/-) NK 세포들의 집단 배가 수준(PDL)의 그래프를 나타낸다.
도 14a는 IL-21와 함께 증식되고(제1 자극) 2회 이상 재-증식된(제2 및 제3 자극) NK 세포들의 집단 배가 수준(PDL)의 그래프를 나타낸다.
도 14b는 도 14a에서의 결과에 대응하는 증식 배수의 그래프를 나타낸다.Various embodiments are shown in the accompanying drawings for purposes of illustration, and should not be construed as limiting the scope of the embodiments. Moreover, various features of the different disclosed embodiments may be combined to form further embodiments, which are part of the present disclosure.
1 shows the design of a re-proliferation experiment and embodiments for cell proliferation after IL21 treatment (pre-frozen and optionally post-frozen).
2A and 2B show a comparison of the population doubling level (PDL) between cell proliferation of cells with and without IL21 ( FIG. 2A )
Figures 3a and 3b show a comparison of proliferation folds between cell proliferation in cells with and without IL21 (Figure 3a)
4A and 4B show a comparison of population doubling levels (PDL) between cell re-stimulation methods of cells with and without IL21 ( FIG. 4A )
5a and 5b show a comparison of proliferation fold between cell re-stimulation methods of cells with and without IL21 ( FIG. 5a )
6 shows the cytotoxic activity of NK cells against (IL-21+) K562 cells proliferated with IL-21.
7 shows the cytotoxic activity of NK cells against (IL-21-) K562 cells proliferated without IL-21.
Figure 8 shows the cytotoxic activity of NK cells against (IL-21+/+) K562 cells proliferated with IL-21 and re-stimulated with IL-21.
Figure 9 shows the cytotoxic activity of NK cells against (IL-21+/-) K562 cells proliferated with IL-21 and re-stimulated without IL-21.
Figure 10 shows the cytotoxic activity of NK cells against (IL-21-/+) K562 cells proliferated without IL-21 and re-stimulated with IL-21.
11 shows the cytotoxic activity of NK cells against (IL-21-/-) K562 cells proliferated without IL-21 and re-stimulated without IL-21.
` FIG. 12A shows a phenotypic comparison of activating receptors of NK cells.
12B shows a comparison of phenotypic inhibition of NK cells and chemokine receptors.
13A shows NK cells proliferated with IL-21 and re-proliferated with IL-21 (IL-21+/+) and without IL-21 and re-proliferated without IL-21 (IL-21- //) shows a graph of the population doubling level (PDL) of NK cells.
13B shows NK cells proliferated with IL-21 and re-proliferated with IL-21 (IL-21+/+) and proliferated with IL-21 and re-proliferated without IL-21 (IL-21). +/-) A graph of the population doubling level (PDL) of NK cells is shown.
14A shows a graph of the population doubling level (PDL) of NK cells proliferated with IL-21 (first stimulation) and re-proliferated two or more times (second and third stimulation).
FIG. 14B shows a graph of proliferation folds corresponding to the results in FIG. 14A .
다음 예들은 특정 특징들 및/또는 실시예들을 설명하기 위해 제공된다. 이러한 예들은 설명된 특정 특징들 또는 실시예들로 본 개시를 제한하는 것으로 해석되어서는 안 된다.The following examples are provided to illustrate certain features and/or embodiments. These examples should not be construed as limiting the disclosure to the specific features or embodiments described.
고-순도 NK 세포 제조 방법에 대한 비교 시험은 IL-21 처리 유무에 따른 LCL+KL-1 유형의 영양 세포를 이용하여 수행하였다. 본 예에서 논의된 다른 영양 세포들은 예언적 예로서 제공된다.A comparative test for the method for producing high-purity NK cells was performed using LCL+KL-1 type feeder cells with or without IL-21 treatment. The other feeder cells discussed in this example are provided as prophetic examples.
두 가지 제조 방법들에서 IL-21의 효과가 검증될 것이다: 1) 분리된 CD56+ 세포들을 14-17일 동안 IL-21의 처리 또는 비-처리 하에서 다른 유형의 영양 세포들과 함께 배양하는, 오리지널 방법(그러나 후속 재-증식 없음). 2) IL-21의 처리 또는 비-처리 하에서 다른 유형의 영양 세포들과 함께 오리지널 방법에서 냉동보존된 증식된 NK 세포들을 배양하는, 재-자극 방법. 다른 유형의 영양 세포들 및 제조 방법들을 표 5 및 도 1에 나타냈고 도 1은 일반적으로 NK 세포 증식을 위한 영양 세포들을 대표하는 것으로 이해된다.The effect of IL-21 will be verified in two production methods: 1) original , incubating isolated CD56+ cells with other types of feeder cells under treatment or non-treatment with IL-21 for 14-17 days method (but no subsequent re-proliferation). 2) A re-stimulation method , culturing the cryopreserved proliferated NK cells in the original method with other types of feeder cells under treatment or non-treatment with IL-21. Different types of feeder cells and preparation methods are shown in Table 5 and FIG. 1 , which is generally understood to be representative of feeder cells for NK cell proliferation.
본 실시예에 의해 제공된 결과는 일반적으로 Il-21이 존재하는 한 다양한 비율들, 저장 시간들 및 추가 성분들(예를 들어 추가 사이토카인)에 걸쳐 영양 세포들을 대표하는 것으로 이해된다.It is understood that the results provided by this example are generally representative of feeder cells across various ratios, storage times and additional components (eg additional cytokines) as long as Il-21 is present.
실시예 1: 출발 물질의 분리 및 오리지널 방법Example 1: Separation of starting materials and original method
말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)은 인간 혈액에서 얻었다. 분리된 PBMC들을 CD56+ 세포 선택에 사용하였다. PBMC들을 1.077 g/mL Ficoll을 사용한 밀도 구배 원심분리에 의해 분리하고, PBS로 여러 번 세척하고, CD56 마이크로비드 시약이 포함된 AutoMACS Rinsing Solution(Miltenyi Biotec, Germany)으로 재현탁하였다. CD56+ 세포들은 제조업체의 지침(Miltenyi Biotec, Germany)에 따라 자기 활성 세포 분류(MACS) 시스템을 사용하여 선택되었다. CD56+ 선택된 세포들을 50 ng/mL IL-21이 있거나 없는 초기 NK 세포 배양 배지에 재현탁하였다. 부유 세포들을 100 Gy 방사선 조사된 영양 세포들, LCL+KL-1, K562 또는 PBMC들을 첨가한 후 배양 플라스크들에 접종한 후, 37 ℃ 5 % CO2에서 6일 또는 7일 동안 배양하였다. 각 영양 유형별 세포 배양의 구체적인 조건은 하기 표와 같다.Peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) were obtained from human blood. Isolated PBMCs were used for CD56+ cell selection. PBMCs were isolated by density gradient centrifugation using 1.077 g/mL Ficoll, washed several times with PBS, and resuspended in AutoMACS Rinsing Solution (Miltenyi Biotec, Germany) containing CD56 microbead reagent. CD56+ cells were selected using a magnetically activated cell sorting (MACS) system according to the manufacturer's instructions (Miltenyi Biotec, Germany). CD56+ selected cells were resuspended in initial NK cell culture medium with or without 50 ng/mL IL-21. Floating cells were inoculated into culture flasks after addition of 100 Gy irradiated feeder cells, LCL+KL-1, K562 or PBMCs, and then cultured at 37° C. 5% CO 2 for 6 or 7 days. Specific conditions of cell culture for each trophic type are shown in the table below.
참조: Immune Netw. 2018 Aug;18(4):e31배양 6일 또는 7일에, 원심분리에 의해 배양 플라스크로부터 세포들을 수집하고, 세포 수를 평가하였다. 세포들을 NK 세포 배양 배지로 재현탁하고, 배양 백에 접종한 다음, 최대 17일 또는 18일 동안 5 % CO2에서 37 ℃에서 배양하였다. 3일 또는 4일마다, 세포를 새로운 배지로 계대-배양하였다.See: Immune Network. 2018 Aug;18(4):e31 On
실시예 2: D14 세포들의 냉동보존Example 2: Cryopreservation of D14 cells
배양 14일 또는 15일에, 원심분리에 의해 배양 백에서 세포들을 수확하고 세포 수를 평가하였다. 세포들을 500 IU/mL IL-2가 있거나 없는 90 % FBS, 10 % DMSO를 함유하는 배지에 재현탁하였고, 5.0 - 10.0 x 106 세포/mL의 농도로 바이알들에 넣고, 그 다음 세포들을 -196 ℃ 액체 질소 탱크에서 1주, 1, 3, 6, 12, 24개월 이상 동안 냉동보존하였다.On
실시예 3: 냉동 세포 해동 및 재-자극 방법의 세포 배양Example 3: Cell Culture of Frozen Cell Thaw and Re-stimulation Method
오리지널 방법의 냉동-보존된 세포들을 37 ℃ 수조에서 해동하였고 50 ng/mL IL-21이 있거나 없는 각 영양 세포 조건에 대한 보충제를 포함하는 초기 NK 세포 배양 배지에 재현탁하였다. 부유 세포들을 LCL+KL-1, K562 또는 자가 PBMC들에서 100 Gy 방사선 조사된 영양 세포들을 첨가한 후 배양 플라스크에 파종한 다음, 6 또는 7일 동안 5 % CO2에서 37 ℃에서 배양하였다. 이 과정을 재-자극법이라고 한다. 배양 6일 또는 7일에, 원심분리에 의해 배양 플라스크들로부터 세포들을 수집하고, 세포 수를 평가하였다. 세포들을 NK 세포 배양 배지로 재현탁하고, 배양 백에 접종한 다음, 최대 17일 또는 18일 동안 5 % CO2에서 37 ℃에서 배양하였다. 3일 또는 4일마다, 세포를 새로운 배지로 계대-배양하였다. 총 세포 배양 기간은 D0의 오리지널 방법에서 재-자극 과정을 거쳐 최종 수확까지 31~33일이 소요되었다.The cryopreserved cells of the original method were thawed in a 37°C water bath and resuspended in initial NK cell culture medium containing supplements for each feeder cell condition with or without 50 ng/mL IL-21. Floating cells were seeded in culture flasks after addition of 100 Gy irradiated feeder cells in LCL+KL-1, K562 or autologous PBMCs, and then incubated at 37° C. in 5% CO 2 for 6 or 7 days. This process is called re-stimulation. On
실시예 4: 개체군 2배 수준 및 세포 성장Example 4: Population Doubling Levels and Cell Growth
6가지 다른 조건들에 따른 NK 세포 배양은 도 1 및 표 7에 예시된 바와 같은 실험 설계에 기초한 CD56+ 세포들을 사용하여 수행하였다. 이는 영양 세포들로서 방사선 조사된 LCL 및 KL-1과 함께 공-배양된 NK 세포들로서, 실험 설계 유형 1의 결과를 나타낸다. 과정에 대한 특정 조건들은, 표 7에 표시된 대로이다.NK cell culture according to 6 different conditions was performed using CD56+ cells based on the experimental design as exemplified in FIG. 1 and Table 7. This represents the results of
NK 세포들의 세포 증식 속도는 파종 세포 수에 대한 증식 배수 및 각 계대-배양일의 집단 배가 수준(PDL)에 의해 평가되었으며, 3.32(log N - log No)로 계산되었으며, 상기 N은 각 계대의 끝에서 세포들의 수이고 No는 초기에 플레이트된 세포의 수이다. 모든 배양 단계에서 NK 세포들의 수는 세포들을 트립판 블루로 염색하여 평가하였다.The cell proliferation rate of NK cells was evaluated by the proliferation fold relative to the number of seeded cells and the population doubling level (PDL) of each passage-culture day, calculated as 3.32 (log N - log No), where N is the number of cells in each passage. Number of cells at the end and No is the number of cells initially plated. The number of NK cells in all culture steps was assessed by staining the cells with trypan blue.
2개의 다른 공여자들로부터의 생산 배치들을 PDL 및 증식 배수를 비교하였다. 표 8, 9, 및 도 2A-3B에 도시된 바와 같이, IL-21을 사용한 오리지널 방법에 의한 한 기증자로부터의 NK 세포들의 PDL 및 증식 배수는 IL-21이 없는 경우보다 높은 성장률을 나타냈다. 그러나, 다른 기증자로부터의 배치는 두 조건들 모두에서 유사한 성장률을 보였다.Production batches from two different donors were compared for PDL and fold fold. As shown in Tables 8, 9, and Figures 2A-3B, the PDL and proliferation folds of NK cells from one donor by the original method using IL-21 showed higher growth rates than those in the absence of IL-21. However, batches from different donors showed similar growth rates in both conditions.
오리지널 방법으로 D14에 냉동보존된 세포들을 IL-21 처리 또는 비-처리에 의해 영양 세포들로 재-자극하여, 최대 17일 또는 18일까지 배양하였다. 총 세포 배양 기간은 D0의 오리지널 방법에서 재-자극 과정을 거쳐 최종 수확까지 31~33일 소요되었다(도 1 참조).Cells cryopreserved at D14 in the original method were re-stimulated with feeder cells with or without IL-21 treatment and cultured for up to 17 or 18 days. The total cell culture period took 31-33 days from the original method of D0 through the re-stimulation process to the final harvest (see Fig. 1).
두 기증자의 여러 생산 배치들을 PDL과 증식 배수를 비교하였다. 표 10, 11 및 도 4A-5B에 도시된 바와 같이, IL-21을 사용한 재-자극 방법의 PDL 및 NK 세포들의 증식 배수는 IL-21 조건이 없는 경우보다 더 높은 성장률을 제공하였다. 따라서, IL-21은, 특히 첫 번째 증식 단계에서, 보다 효과적인 후속 증식 단계들을 허용하는 데 매우 유용하다.Different production batches from both donors were compared for PDL and proliferation folds. As shown in Tables 10, 11 and Figures 4A-5B, the fold proliferation of PDL and NK cells of the re-stimulation method with IL-21 gave higher growth rates than those without the IL-21 condition. Therefore, IL-21 is very useful, especially in the first stage of proliferation, to allow for more effective subsequent stages of propagation.
기증자 2의 NK 세포들은 오리지널 방법에서 IL-21이 있는 경우와 없는 경우의 성장률에 차이가 없었지만, 31일째에 재-자극 방법에 의한 IL-21 조건에서 IL-21이 없는 조건보다 성장률이 더 높게 나타났다.NK cells from
실시예 5: NK 세포들의 순도Example 5: Purity of NK cells
NK 세포들은 CD56을 발현하고 CD3가 없는 것으로 알려져 있다. 오리지널 및 재-자극 방법에 의한 증식 전과 증식 후 NK 세포들의 순도를 조사하기 위해, 유세포 분석을 적용하였다. NK 세포들을 항-CD56-FITC 및 항-CD3-PE의 형광색소-표지된 항체들로 염색한 후, 유세포 분석기를 사용하여 분석하였다.NK cells are known to express CD56 and lack CD3. To investigate the purity of NK cells before and after proliferation by the original and re-stimulation methods, flow cytometry was applied. NK cells were stained with fluorochrome-labeled antibodies of anti-CD56-FITC and anti-CD3-PE, and then analyzed using flow cytometry.
두 조건(IL-21 처리 유무)에서 오리지널 및 재-자극 방법으로 NK 세포 배양이 진행됨에 따라, 2명의 다른 기증자들로부터 증식된 NK 세포들에서 NK 세포들(CD56+CD3-)의 비율이 31일째에 99 % 이상으로 급격히 증가하였다(표 11). CD3+, CD20+ 및 CD14+와 같은, 다른 세포 유형의 세포 표면 마커는, 최종 배양 단계에서 매우 낮은 모집단으로 나타났다(표 12).As NK cell culture proceeded with the original and re-stimulation method in both conditions (with or without IL-21 treatment), the proportion of NK cells (CD56+CD3-) in the NK cells proliferated from two different donors was 31 It increased rapidly to over 99% on day one (Table 11). Cell surface markers of other cell types, such as CD3+, CD20+ and CD14+, appeared in very low populations at the final culture stage (Table 12).
실시예 6 NK 세포들의 세포독성 기능Example 6 Cytotoxic function of NK cells
종양 표적 세포주들에 대한 NK 세포들의 세포독성을 형광측정 세포독성 검정에 의해 평가하였다. NK 세포들은 10:1, 3:1, 1:1, 및 0.5:1의 E:T 비율로 Calcein AM으로 염색된 K-562 세포와 4시간 동안 빛 보호 하에 공-배양되었다. 10 % FBS 또는 2 % 트리톤 X100을 포함하는 RPMI1640을 표적 세포들에 추가하여 자연 방출 및 최대 방출을 제공하였다. Calcein 방출 분석을 위해, 표적 세포들과 NK 세포들의 인큐베이션 후 상청액을 회수하였고, SpectraMax M2 마이크로플레이트 판독기(Molecular devices, San Jose, CA)를 사용하여 형광을 평가하였다. 퍼센트 특이적 용해는 공식 [(시험 방출-자연 방출)/(최대 방출-자연 방출)] x 100을 사용하여 계산하였다.Cytotoxicity of NK cells against tumor target cell lines was assessed by a fluorometric cytotoxicity assay. NK cells were co-cultured with K-562 cells stained with Calcein AM at E:T ratios of 10:1, 3:1, 1:1, and 0.5:1 under light protection for 4 hours. RPMI1640 containing 10% FBS or 2% Triton X100 was added to target cells to provide spontaneous and maximal release. For calcein release assays, the supernatant was harvested after incubation of target cells and NK cells, and fluorescence was assessed using a SpectraMax M2 microplate reader (Molecular devices, San Jose, CA). The percent specific dissolution was calculated using the formula [(test release-spontaneous release)/(maximum release-spontaneous release)] x 100.
NK 감수성 표적인, 표준 K-562 세포주를 이용하여 오리지널 및 재-자극 방법으로 배양된 NK 세포들의 세포독성을 시험하였다. IL-21이 있거나 없는 조건의 오리지널 방법에서 증식된 세포들은 낮은 E:T 비율(1:1 및 0.5:1)에서도 K-562에 대해 강한 세포독성 활성을 나타냈다(도 6-7). 그러나, 재-자극 방법에 의한 NK 세포들의 세포독성 활성은 IL-21 처리 유무에 따라 다른 수준으로 나타났다. 오리지널 방법과 재-자극 방법 모두에 대한 IL-21 처리에 의한 NK 세포들은 다른 조건들보다 더 강한 세포독성 활성을 나타냈다(도 8-11).The cytotoxicity of NK cells cultured by the original and re-stimulation method was tested using the standard K-562 cell line, an NK sensitive target. Cells proliferated in the original method with and without IL-21 showed strong cytotoxic activity against K-562 even at low E:T ratios (1:1 and 0.5:1) ( FIGS. 6-7 ). However, the cytotoxic activity of NK cells by the re-stimulation method was different depending on the presence or absence of IL-21 treatment. NK cells treated with IL-21 for both the original method and the re-stimulation method showed stronger cytotoxic activity than the other conditions ( FIGS. 8-11 ).
그러나 오리지널 및 재-자극 조건 모두에서 IL-21 비-처리한 조건의 NK 세포들은 0.05:1 내지 3:1의 E:T 비율에서 세포독성 활성이 감소하였다. 또한, IL-21 처리 조건보다 E:T 비율 10:1에서 낮은 수준의 세포독성을 나타냈다.However, in both the original and re-stimulation conditions, NK cells in the non-IL-21 condition showed decreased cytotoxic activity at an E:T ratio of 0.05:1 to 3:1. In addition, it showed a lower level of cytotoxicity in the E:T ratio of 10:1 than in the IL-21 treatment condition.
IL-21 처리와 함께 증식된 NK 세포들은 K-562 세포주에 대해 매우 강력한 세포독성을 나타냈고, 오리지널 및 재-자극 방법에 의해 제조된 NK 세포들 모두에서 유사한 세포독성을 나타냈다(도 6-11). 도 6은 IL-21와 함께 증식된(IL-21+) K562 세포들에 대한 NK 세포들의 세포독성 활성을 나타낸다. 도 7은 IL-21 없이 증식된(IL-21-) K562 세포들에 대한 NK 세포들의 세포독성 활성을 나타낸다. 도 8은 IL-21 와 함께 증식되고 IL-21와 함께 재-자극된(IL-21+/+) K562 세포들에 대한 NK 세포들의 세포독성 활성을 나타낸다. 도 9는 IL-21와 함께 증식되고 IL-21 없이 재-자극된(IL-21+/-) K562 세포들에 대한 NK 세포들의 세포독성 활성을 나타낸다. 도 10은 IL-21 없이 증식되고 IL-21와 함께 재-자극된(IL-21-/+) K562 세포들에 대한 NK 세포들의 세포독성 활성을 나타낸다. 도 11은 IL-21 없이 증식되고 IL-21 없이 재-자극된(IL-21-/-) K562 세포들에 대한 NK 세포들의 세포독성 활성을 나타낸다. 그림 12A는 NK 세포들의 활성화 수용체들의 표현형 비교를 나타낸다. 도 12B는 NK 세포들의 억제 및 케모카인 수용체들의 표현형 비교를 나타낸다.NK cells proliferated with IL-21 treatment showed very strong cytotoxicity against the K-562 cell line, and similar cytotoxicity to both NK cells prepared by the original and re-stimulation method (Figs. 6-11). ). 6 shows the cytotoxic activity of NK cells against IL-21 co-proliferated (IL-21+) K562 cells. 7 shows the cytotoxic activity of NK cells against (IL-21-) K562 cells proliferated without IL-21. 8 shows the cytotoxic activity of NK cells against K562 cells proliferated with IL-21 and re-stimulated with IL-21 (IL-21+/+). 9 shows the cytotoxic activity of NK cells against K562 cells proliferated with IL-21 and re-stimulated without IL-21 (IL-21+/-). Figure 10 shows the cytotoxic activity of NK cells against K562 cells proliferated without IL-21 and re-stimulated with IL-21 (IL-21-/+). 11 shows the cytotoxic activity of NK cells against K562 cells proliferated without IL-21 and re-stimulated without IL-21 (IL-21-/-). Figure 12A shows a phenotypic comparison of the activating receptors of NK cells. 12B shows a phenotypic comparison of inhibition of NK cells and chemokine receptors.
표면 마커 표현surface marker expression
NK 세포 기능은 표면에 발현되는 활성화 수용체들과 억제 수용체들 사이의 균형에 의해 미세하게 조절된다. 활성화 [CD16, NKp30, NKp46, NKp44, NKG2D, 2B4 (CD244), NKG2C, CRACC] 또는 억제성 NK 수용체들 [NKG2A, KIR: CD158a (KIR2DL1), CD158b (KIR2DL2/L3), CD158e (KIR3DL1)]의 발현 수준을 표현형으로 특성화하기 위해 케모카인 수용체들 (CXCR3, CXCR4), 또는 접착 분자 (CD62L)는 17-18일 동안 IL-21 처리로 오리지널 (Old) 과정 및 재-자극 과정에 의해 증식 전(Day 0; D0) 및 증식 후 게이트된 CD56+ NK 세포들에서 분석되었다. 표면 수용체 발현 수준은 샘플들에서 NK 세포들의 수용체-양성 하위 집합들의 백분율로 계산되었다. 오리지널 및 재-자극 과정의 각 단계에서 NK 세포들을 각 마커의 형광색소-표지된 항체들로 염색한 후, 유세포 분석기를 이용하여 분석하였다.NK cell function is finely regulated by a balance between surface-expressed activating and inhibitory receptors. Activation of [CD16, NKp30, NKp46, NKp44, NKG2D, 2B4 (CD244), NKG2C, CRACC] or inhibitory NK receptors [NKG2A, KIR: CD158a (KIR2DL1), CD158b (KIR2DL2/L3), CD158e (KIR3DL1)] To phenotypically characterize expression levels, chemokine receptors (CXCR3, CXCR4), or adhesion molecules (CD62L) were pre-proliferated (Day) by the original (Old) process and re-stimulation process with IL-21 treatment for 17-18 days. 0; DO) and post-proliferation gated CD56+ NK cells. Surface receptor expression levels were calculated as the percentage of receptor-positive subsets of NK cells in the samples. At each stage of the original and re-stimulation process, NK cells were stained with fluorochrome-labeled antibodies of each marker, and then analyzed using a flow cytometer.
표면 수용체 발현 수준은 4명의 다른 기증자에 대한 type 1 실험에서 IL-21 처리와 함께 오리지널 및 재-자극 과정으로 배양된 시작 및 마지막 단계(D0, D17 및 D32)의 세포들을 분석하였다. 표면 수용체 발현 수준은 샘플들에서 NK 세포들의 수용체-양성 하위 집합들의 백분율로 계산되었다.Surface receptor expression levels were analyzed in cells at the beginning and end stages (D0, D17 and D32) incubated with the original and re-stimulation procedures with IL-21 treatment in
활성화 수용체들 중, CD16, NKp30, NKp46, NKp44, NKG2D 및 CRACC의 발현 수준은 오리지널 과정 (Old)에 의해 제조된 NK 세포들의 증식 동안 증가되었고 재-자극 과정 (New)에 의해 증식된 NK 세포들과 유사하였으며, 반면에 NKG2C 및 2B4는 두 방법 모두에 의한 배양 증식 후에 변화가 없었다(도 6). 억제 수용체들인, CD158a 및 CD158e의 발현은 두 과정 (Old and New)에 의한 배양 시 크게 변하지 않은 채로 유지되는 반면, NKG2A 및 CD158b의 비율은 유의하게 증가하였다(도 12A-B). 분석된 모든 억제 수용체 발현 수준은 두 방법에 의해 제조된 NK 세포들에서 유사하였다. CXCR3 및 CXCR4와 같은 케모카인 수용체들의 발현도 평가되었다.Among the activating receptors, the expression levels of CD16, NKp30, NKp46, NKp44, NKG2D and CRACC were increased during proliferation of NK cells prepared by the original process (Old) and NK cells proliferated by the re-stimulation process (New) was similar to, whereas NKG2C and 2B4 did not change after culture proliferation by both methods (FIG. 6). The expression of inhibitory receptors, CD158a and CD158e, remained largely unchanged upon incubation by both procedures (Old and New), whereas the ratios of NKG2A and CD158b were significantly increased ( FIGS. 12A-B ). All inhibitory receptor expression levels analyzed were similar in NK cells prepared by both methods. Expression of chemokine receptors such as CXCR3 and CXCR4 was also evaluated.
CXCR3+ NK 세포들의 빈도는 유사한 발현 수준으로 두 방법 (Old and New) 모두에 의해 NK 세포 증식 동안 유의하게 증가한 반면, CXCR4 + NK 세포들의 빈도는 두 방법 모두에 의해 배양 증식 후에 감소했으며, 새로운 방법 (new method)에 의해 제조된 NK 세포들에서 약간 더 감소하였다(도 12A-B). CD62L의 발현 수준은 두 방법 모두에 의해 증식된 NK 세포들에서 약간 증가하였다.The frequency of CXCR3+ NK cells was significantly increased during NK cell proliferation by both methods (Old and New) with similar expression levels, whereas the frequency of CXCR4+ NK cells decreased after culture proliferation by both methods, and the new method ( new method) was slightly more decreased in NK cells prepared by (Fig. 12A-B). The expression level of CD62L was slightly increased in NK cells proliferated by both methods.
이러한 결과에서 알 수 있듯이, IL21+ 및 IL21+/+ 증식된 세포들의 특성은, 한 세트가 재-증식 절차를 거쳤다는 사실에도 불구하고, 유사하다.As can be seen from these results, the properties of IL21+ and IL21+/+ proliferated cells are similar, despite the fact that one set underwent a re-proliferation procedure.
실시예 7: IL-21 농도Example 7: IL-21 Concentration
다양한 IL-21 농도의 경우, 분리된 CD56+ 세포들을 유형 1 실험 설계의 10, 30, 50, 및 100 ng/mL IL-21 이 포함된 RPMI 배지에서 10 % FBS, 500 IU/mL IL-2, 20 μg/mL 겐타마이신을 포함하는 초기 NK 세포 배양 배지에 재현탁하였다(IL21+만 해당, 재-자극은 수행되지 않음).For various IL-21 concentrations, isolated CD56+ cells were treated with 10% FBS, 500 IU/mL IL-2, 10% FBS, 500 IU/mL IL-2 in RPMI medium containing 10, 30, 50, and 100 ng/mL IL-21 of
실시예 8: IL-21 농도Example 8: IL-21 Concentration
유형 1에서 실험은 1:10:10(CD56+ 세포들: LCL: KL-1), 및 1:20:20, 1:30:30(IL21+만, 재-자극은 수행되지 않음)에서 서로 다른 비율의 영양 세포들로 수행되었다.Experiments in
실시예 9 Example 9
이 비-제한적인 예는 냉동-해동으로 CD56+ 및 CD3-/CD56+ NK 세포들의 증식을 향상시키는 IL-21을 보여준다.This non-limiting example shows IL-21 that freeze-thaw enhances proliferation of CD56+ and CD3-/CD56+ NK cells.
(1) CD56+ 자연 살해 세포들(NK cells) -1의 제조(1) Preparation of CD56+ natural killer cells (NK cells) -1
먼저, Ficoll 밀도 구배 [피콜-하이팩 밀도 구배 분리법(Ficoll-Hypaque density gradient method)]를 사용하여 혈액 PBMC를 분리하였다. PBMC를 하기 1-1 또는 1-2에 따라 추가로 처리하였다.First, blood PBMCs were isolated using a Ficoll density gradient (Ficoll-Hypaque density gradient method). PBMCs were further treated according to the following 1-1 or 1-2.
1-1. CD56+ 세포 분리1-1. CD56+ cell isolation
MACS 완충액(1x PBS + 0.5% HSA)을 첨가하여 PBMC를 현탁시키고 CD56 마이크로비즈(Miltenyi Biotec)를 첨가하여 1.0 x107 PBMC당 1-20 μL를 수득하고 2-8 ℃에서 5-30분 동안 인큐베이션하였다. 인큐베이션 후, MACS 완충액을 첨가하고 혼합하고, 혼합물을 원심분리(600xg)하여 세포들을 침전시켰다. 원심분리 후, 상층액을 제거하고 MACS 완충액을 첨가하여 세포들을 재현탁시키고, 세포들을 컬럼에 결합된 MACS 분리기에 첨가하였다. MACS 완충액을 컬럼에 통과시켜 비-특이적 결합을 제거하였다. 컬럼을 MACS 분리기에서 분리하고 15 mL 원뿔형 튜브로 옮기고, MACS 완충액을 첨가하여 컬럼에 부착된 CD56+ 세포들을 분리하였다.Add MACS buffer (1x PBS + 0.5% HSA) to suspend PBMCs and add CD56 microbeads (Miltenyi Biotec) to obtain 1-20 μL per 1.0 x 10 7 PBMCs and incubate at 2-8 °C for 5-30 min. did. After incubation, MACS buffer was added and mixed, and the mixture was centrifuged (600xg) to precipitate the cells. After centrifugation, the supernatant was removed and the cells were resuspended by addition of MACS buffer, and the cells were added to a MACS separator coupled to the column. MACS buffer was passed through the column to remove non-specific binding. The column was removed from the MACS separator, transferred to a 15 mL conical tube, and MACS buffer was added to separate the CD56+ cells attached to the column.
1-2. CD3-/CD56+ 세포 분리1-2. CD3-/CD56+ cell isolation
CD3-/CD56+ 세포들을 다음과 같이 분리하였다. MACS 완충액(1x PBS + 0.5% HSA)을 첨가하여 PBMC를 현탁시키고 CD3 마이크로비즈(Miltenyi Biotec)를 첨가하여 1.0 x107 PBMC당 1-20 μL를 수득하고 2-8 ℃에서 5-30분 동안 인큐베이션하였다. 인큐베이션 후, MACS 완충액을 첨가하고 혼합하고, 혼합물을 원심분리(600xg)하여 세포들을 침전시켰다. 원심분리 후, 상층액을 제거하고 MACS 완충액을 첨가하여 세포들을 재현탁시키고, 세포들을 컬럼에 결합된 MACS 분리기에 첨가하였다. MACS 완충액을 컬럼에 통과시켜 CD3-세포들을 회수하였다.CD3-/CD56+ cells were isolated as follows. Add MACS buffer (1x PBS + 0.5% HSA) to suspend PBMCs and add CD3 microbeads (Miltenyi Biotec) to yield 1-20 μL per 1.0 x 10 7 PBMCs and incubate at 2-8 °C for 5-30 min. did. After incubation, MACS buffer was added and mixed, and the mixture was centrifuged (600xg) to precipitate the cells. After centrifugation, the supernatant was removed and the cells were resuspended by addition of MACS buffer, and the cells were added to a MACS separator coupled to the column. CD3-cells were recovered by passing MACS buffer through the column.
MACS 완충액(1x PBS + 0.5% HSA)을 회수된 CD3-세포들에 첨가하여 CD3- 세포들을 재현탁시키고 CD56 마이크로비즈(Miltenyi Biotec)를 첨가하여 1.0x107 CD3- 세포당 1-20 μL를 수득하고 2-8 ℃에서 5-30분 동안 인큐베이션하였다. 인큐베이션 후, MACS 완충액을 첨가하고 혼합하고, 혼합물을 원심분리(600xg)하여 세포들을 침전시켰다. 원심분리 후, 상층액을 제거하고 MACS 완충액을 첨가하여 세포들을 재현탁시키고, 세포들을 컬럼에 결합된 MACS 분리기에 첨가하였다. MACS 완충액을 컬럼에 통과시켜 비-특이적 결합을 제거하였다. 컬럼을 MACS 분리기에서 분리하고, 15 mL 원뿔형 튜브로 옮기고 MACS 완충액을 첨가하여 컬럼에 부착된 CD3-/CD56+ 세포들을 분리하였다.MACS buffer (1x PBS + 0.5% HSA) was added to the recovered CD3-cells to resuspend the CD3-cells, and CD56 microbeads (Miltenyi Biotec) were added to obtain 1-20 μL per 1.0x10 7 CD3-cells. and incubated at 2-8 °C for 5-30 minutes. After incubation, MACS buffer was added and mixed, and the mixture was centrifuged (600xg) to precipitate the cells. After centrifugation, the supernatant was removed and the cells were resuspended by addition of MACS buffer, and the cells were added to a MACS separator coupled to the column. MACS buffer was passed through the column to remove non-specific binding. The column was removed from the MACS separator, transferred to a 15 mL conical tube, and MACS buffer was added to separate the CD3-/CD56+ cells attached to the column.
1-3. 초대 배양1-3. Invitational culture
1-1 및 1-2로부터 분리된 CD56 + 세포들 또는 CD3-/CD56 + 세포들을, 37 ℃ 5 % CO2에서 10 % FBS가 포함된 RPMI-1640 배지에서, 각각, 500 IU/mL 및 50 ng/mL 농도의 IL-2 및 IL-21의 존재 하에, 100 Gy 방사선 조사에 의해 미리 제조된 영양 세포들(Jurkat 세포들, 및 EBV-LCL 세포들)과 함께 인큐베이터에서 공-배양하였다.CD56 + cells or CD3-/CD56 + cells isolated from 1-1 and 1-2 in RPMI-1640 medium containing 10% FBS at 37 °
6일째에, 세포들을 350 mL 표준 백에 1.0 x 105 - 2.0 x 106 /mL로 접종하여 4일 더 배양하였고, 10일에 1.0 x 105 - 2.0 x 106 cells/mL로 세포들을 접종하였고, 1L 백에 넣고 4일 더 배양하였다. 이때, 인큐베이션 동안 비율(CD56+ 세포들 또는 CD3-/CD56+ 세포들):(Jurkat 세포):(EBV-LCL 세포)는 1:30:30이다.On
1-4. 냉동 및 해동 후 2차 배양1-4. Secondary culture after freezing and thawing
배양 1(1-3)의 14일째에, 배양된 세포들을 90 % FBS 및 10 % DMSO를 포함하는 용액에 현탁하였고, -192 ℃이하에서 냉동 보관하였고, 배양 스케쥴에 따라 37 ℃ 항온수에서 해동시켰다.On the 14th day of culture 1(1-3), the cultured cells were suspended in a solution containing 90% FBS and 10% DMSO, stored frozen at -192°C or lower, and thawed in constant temperature water at 37°C according to the culture schedule. did it
그 다음, IL-2 및 IL-21이, 각각, 500 IU/mL 및 50 ng/mL의 농도로 첨가된, 10% FBS를 함유하는 RPMI-1640를, 100 Gy 방사선 조사된 영양 세포들(Jurkat 세포들 및 EBV-LCL 세포들)과 함께 배지에 넣은 후, 37 ℃ 5 % CO2 인큐베이터에서 공-배양하였다.Then, RPMI-1640 containing 10% FBS with IL-2 and IL-21 added at concentrations of 500 IU/mL and 50 ng/mL, respectively, was applied to 100 Gy irradiated feeder cells (Jurkat). cells and EBV-LCL cells), and then co-cultured in a 37° C. 5% CO 2 incubator.
해동 및 배양 후 6일째에, 세포들을 350 mL 백에 1.0x105 -2.0x106 cells/mL로 접종하고 추가로 4일 동안 인큐베이션하였고, 10일째에 1L 표준 백에 1.0 x105 - 2.0x106 cells/mL으로 세포들을 접종하고 4일 동안 추가 배양하였다.On
해동 후 14일까지 배양 중 세포들의 성장을 유지하기 위해, 세포들을 100 Gy 방사선 조사된 영양 세포들(Jurkat 세포들 및 EBV-LCL 세포들)과 함께, 각각, 500 IU/mL 및 50 ng/mL의 농도의 IL-2 및 IL-21의 존재 하에 공-배양하였다. 세포들을, 37 ℃ 5 % CO2의 인큐베이터에서, 10 % 첨가된 FBS를 함유하는 RPMI-1640 배지에서 배양하였다.To maintain the growth of cells in culture up to 14 days after thawing, cells were treated with 100 Gy irradiated feeder cells (Jurkat cells and EBV-LCL cells), 500 IU/mL and 50 ng/mL, respectively. co-cultured in the presence of IL-2 and IL-21 at a concentration of Cells were cultured in RPMI-1640 medium containing 10% FBS added in an incubator at 37° C. 5% CO 2 .
해동 후 20일째에, 세포들을 1L 백에 1.0x105 -2.0x106 cells/mL로 접종한 후, 4일간 추가 배양하고, 해동 후 배양 24일째에, 세포들을 1L 백에 1.0x105 -2.0x106 cells/mL로 접종하고 4일 동안 추가 배양하였다.On the 20th day after thawing, the cells were inoculated into a 1L bag at 1.0x10 5 -2.0x10 6 cells/mL, then incubated for 4 more days, and on the 24th day after thawing, the cells were inoculated into a 1L bag at 1.0x10 5 -2.0x10 It was inoculated at 6 cells/mL and further cultured for 4 days.
마지막으로, 해동 후 배양 28일째에, 세포들을 1L 백에 1.0x105 -2.0x106 cells/mL로 접종하고, 3-6일 동안 추가 배양하였다. 이때, (CD56+ 세포들 또는 CD3-/CD56+ 세포들):(Jurkat 세포들):(EBV-LCL 세포들)은 1:30:30의 비율로 배양하였다.Finally, on the 28th day of culture after thawing, the cells were inoculated into a 1L bag at 1.0x10 5 -2.0x10 6 cells/mL, and further cultured for 3-6 days. At this time, (CD56+ cells or CD3-/CD56+ cells):(Jurkat cells):(EBV-LCL cells) were cultured at a ratio of 1:30:30.
(2) CD56+ 자연 살해 세포들 -2의 제조(2) Preparation of CD56+ Natural Killer Cells-2
1-4에서 사이토카인을 첨가하는 단계를 제외하고는, (1)과 동일한 방법으로 자연 살해 세포들을 제조하였다.Except for the step of adding cytokines in 1-4, natural killer cells were prepared in the same manner as in (1).
(3) 비교예. 사이토카인 처리 단계들을 제외한 자연 살해 세포들의 제조(3) Comparative example. Preparation of Natural Killer Cells Excluding Cytokine Processing Steps
1-3 및 1-4에서 사이토카인(IL-21)을 첨가하는 단계를 제외하고는, (1)과 동일한 방법으로 자연 살해 세포들을 제조하였다.Natural killer cells were prepared in the same manner as in (1), except for the step of adding cytokine (IL-21) in 1-3 and 1-4.
(4) NK 세포 증식능 확인(4) Confirmation of NK cell proliferation ability
(1)~(3)의 방법들로 배양한 NK 세포들의 증식능을 측정하였다. 도 13A에서 알 수 있는 바와 같이, 1차 배양 동안 사이토카인을 처리하지 않은 경우{(IL-21 -/-); 상기 (3) 참조}, 냉동 및 해동 과정 후에 임상 적용을 위한 충분한 양의 NK 세포들이 생성되지 않았음을 발견하였다(도 13A). 한편, 세포들에 사이토카인을 처리한 경우{(IL-21 +/+), 상기 (1) 참조}에는, 냉동 및 해동 후에도 임상 적용을 위한 충분한 양의 NK 세포들이 생성되었으며, 이러한 결과는 냉동 및 해동 과정을 거친 후 사이토카인을 처리했을 때만이 아니었다. 냉동 및 해동 후 사이토카인을 처리하지 않은 경우{(IL-21 +/-); 상기 (2) 참조}, 냉동 및 해동 후 사이토카인을 처리한 세포들과 마찬가지로 NK 세포들이 증식하였다(도 13B).The proliferative capacity of NK cells cultured by the methods of (1) to (3) was measured. As can be seen in FIG. 13A , when cytokines were not treated during the primary culture {(IL-21 -/-); See (3) above}, it was found that sufficient amounts of NK cells for clinical application were not generated after the freezing and thawing process (FIG. 13A). On the other hand, when the cells were treated with cytokines {(IL-21 +/+), see (1) above), sufficient amounts of NK cells for clinical application were generated even after freezing and thawing, and these results were frozen and cytokine treatment after thawing. Without cytokine treatment after freezing and thawing {(IL-21 +/-); See (2) above}, NK cells proliferated like cytokine-treated cells after freezing and thawing (FIG. 13B).
실시예 10Example 10
다양한 증식 및 냉동 및 재-냉동 과정의 일부 실시양태들의 추가 결과들이 도 14A 및 도 14B에 도시되어 있다. 도 14A는 결과적인 PDL(집단 배가 수준)을 보여주고 증식 동안 상이한 기간들의 일부 실시양태들을 도시한다. 도 14B는 실시예에 대한 결과적인 증식 배수를 도시한다.Further results of some embodiments of various propagation and freezing and re-freezing procedures are shown in FIGS. 14A and 14B . 14A shows the resulting PDL (population doubling level) and depicts some embodiments of different periods of time during proliferation. 14B shows the resulting multiplication fold for the example.
본 실시예에서는 NK 세포들을 1회 이상 냉동시킨 후 여러 번 자극 또는 증식할 수 있는지, 및NK 세포들의 증식이 단순히 유지되는 것이 아니라, 정지 및 재개될 수 있는지 여부를 분석한다. NK 세포들을 14일 동안 처음 배양하였다. NK 세포들을, 처음 6-일 기간(0-6일) 동안, 3일 간격으로 2회 IL-21 (50 ng/mL) 및 영양 세포들로 처리하였다.In this example, it is analyzed whether NK cells can be stimulated or proliferated several times after freezing one or more times, and whether proliferation of NK cells can be stopped and resumed, rather than simply maintained. NK cells were initially cultured for 14 days. NK cells were treated with IL-21 (50 ng/mL) and feeder cells twice at 3-day intervals during the first 6-day period (0-6 days).
이 첫 번째 14-일 증식 후 세포들을 90일 동안 냉동한 다음, 해동하여 또 다른 14일 동안 배양하였다. NK 세포들을, 이 두 번째 증식 동안 처음 6-일 기간(0-6일) 동안, 3일 간격으로 2회 IL-21 (50 ng/mL) 및 영양 세포들로 다시 처리하였다.After this first 14-day proliferation, cells were frozen for 90 days, then thawed and cultured for another 14 days. NK cells were re-treated with IL-21 (50 ng/mL) and feeder cells twice at 3-day intervals during the first 6-day period (days 0-6) during this second proliferation.
세포들을, 이 두 번째 증식 동안 처음 6-일 기간(Day 0-6) 동안, 3일 간격으로 2회 IL-21 (50 ng/mL) 및 영양 세포들로 세 번째 재-자극하여 18일 동안 최종적으로 재-배양하였다.Cells were re-stimulated a third time with IL-21 (50 ng/mL) and feeder cells twice at 3-day intervals during the first 6-day period (Day 0-6) during this second proliferation for 18 days. Finally re-cultured.
NK 세포들의 증식을 배양 46일 동안 모니터링하였다. 도 14A 및 14B에 도시된 바와 같이, 영양 세포들과 IL-21을 2회 이상 처리한 경우, 세포들을 냉동시킨 후에도, NK 세포들은 각 자극 후 유의한 증식을 나타냈다.Proliferation of NK cells was monitored for 46 days of culture. As shown in Figures 14A and 14B, when feeder cells and IL-21 were treated twice or more, even after freezing the cells, NK cells showed significant proliferation after each stimulation.
용어Terms
예시적인 실시양태들의 전술한 설명은 예시 및 설명의 목적으로만 제시되었으며, 본 발명을 개시된 정확한 형태로 완전하게 제한하거나 제한하려는 의도가 아니다. 상기 교시에 비추어 많은 수정 및 변형이 가능하다. 위에 개시된 실시양태들의 특정 특징들 및 측면들의 다양한 조합들 또는 하위 조합들이 만들어질 수 있고 여전히 하나 이상의 본 발명에 속하는 것으로 고려된다. 게다가, 실시양태와 관련된 임의의 특정 특징, 측면, 방법, 속성, 특성, 품질, 속성, 요소 등에 대한 본 명세서의 개시는 본 명세서에 기재된 다른 모든 실시양태에서 사용될 수 있다. 따라서, 개시된 실시양태들의 다양한 특징들 및 측면들은 개시된 발명의 다양한 모드들을 형성하기 위해 서로 결합되거나 대체될 수 있음을 이해해야 한다. 따라서, 여기에 개시된 본 발명의 범위는 위에서 설명된 특정 개시된 실시양태들에 의해 제한되어서는 안 되는 것으로 의도된다. 더욱이, 본 발명은 다양한 수정들, 및 대안적 형태들이 가능하지만, 그 특정 예들이 도면에 도시되어 있고 여기에 상세히 설명되어 있다. 그러나, 본 발명은 개시된 특정 형태들 또는 방법들로 제한되어서는 안 되며, 반대로, 본 발명은 설명된 다양한 실시양태들 및 첨부된 청구범위들의 사상 및 범위 내에 속하는 모든 수정들, 균등물들 및 대안들을 포괄하는 것으로 이해되어야 한다. 여기에 공개된 모든 방법들은 인용된 순서대로 수행할 필요는 없다. 여기에 공개된 방법들에는 의사가 취한 특정 조치가 포함된다; 그러나, 명시적이든 묵시적이든, 그러한 조치에 대한 제3-자의 지시를 포함할 수도 있다. 본 명세서에 개시된 범위는 또한 임의의 및 모든 중첩, 하위-범위 및 이들의 조합을 포함한다.The foregoing description of exemplary embodiments has been presented for purposes of illustration and description only, and is not intended to be exhaustive or to limit the invention to the precise form disclosed. Many modifications and variations are possible in light of the above teachings. Various combinations or subcombinations of the specific features and aspects of the embodiments disclosed above can be made and are still considered to be within one or more of the inventions. Moreover, the disclosure herein of any particular feature, aspect, method, attribute, characteristic, quality, attribute, element, etc., relating to an embodiment may be used in all other embodiments described herein. Accordingly, it should be understood that various features and aspects of the disclosed embodiments may be combined or substituted for each other to form various modes of the disclosed invention. Accordingly, it is intended that the scope of the invention disclosed herein should not be limited by the specific disclosed embodiments set forth above. Moreover, the present invention is susceptible to various modifications and alternative forms, specific examples of which are shown in the drawings and described in detail herein. However, this invention is not to be limited to the specific forms or methods disclosed, on the contrary, the invention is intended to cover all modifications, equivalents and alternatives falling within the spirit and scope of the various embodiments described and the appended claims. should be understood as inclusive. Not all methods disclosed herein need to be performed in the order in which they are recited. Methods disclosed herein include specific actions taken by physicians; However, it may also include third-party instructions for such action, whether express or implied. The ranges disclosed herein also include any and all overlaps, sub-ranges, and combinations thereof.
실시양태들은 본 발명의 원리들 및 그들의 실제 적용을 설명하기 위해 선택되고 설명되어, 당업자가 본 발명 및 다양한 실시양태들을 활용하고 고려되는 특정 용도에 적합한 다양한 수정을 활성화할 수 있다. 대안적인 실시양태들은 전술한 설명 및 여기에 설명된 예시적인 실시양태들보다는 첨부된 청구범위에 의해 본 발명이 정의되는 기술 분야의 숙련자에게 명백할 것이다.The embodiments were chosen and described in order to explain the principles of the invention and its practical application, so that those skilled in the art can utilize the invention and various embodiments and activate various modifications as are suited to the particular use contemplated. Alternative embodiments will be apparent to those skilled in the art, wherein the invention is defined by the appended claims rather than by the foregoing description and the exemplary embodiments set forth herein.
"~할 수 있다(can)", "~할 수 있다(could)", "~할 수 있다(might)" 또는 "~할 수 있다(may)"와 같은, 조건부 언어는, 달리 명시되지 않거나, 사용된 문맥 내에서 달리 이해되지 않는 한, 일반적으로 특정 실시양태들은 특정 기능들, 요소들 및/또는 단계들을 포함하는 반면, 다른 실시양태들은 포함하지 않는다는 것을 전달하기 위한 것이다. 따라서, 그러한 조건부 언어는 일반적으로 기능들, 요소들 및/또는 단계들이 하나 이상의 실시양태들에 대해 어떤 방식으로든 필요하다는 것을 의미하도록 의도되지 않는다.Conditional language, such as "can," "could," "might," or "may," Unless otherwise understood within the context in which it is used, it is generally intended to convey that certain embodiments include certain functions, elements and/or steps, whereas other embodiments do not. Accordingly, such conditional language is not generally intended to mean that functions, elements, and/or steps are required in any way for one or more embodiments.
용어 "포함하는(comprising)", "포함하는(including)", "가지는(having)"은 동의어이며 포괄적으로, 개방-형 방식으로 사용되며, 추가 요소들, 기능들, 행위들, 작업들 등을 배제하지 않는다. 또한 용어 "또는(or)"은 포괄적인 의미로 사용되므로(배타적인 의미가 아님), 예를 들어, 요소 목록을 연결하는 데 사용되는 경우, 용어 "또는(or)"은 목록의 요소들 중 하나, 일부 또는 전체를 의미합니다.The terms “comprising”, “including”, “having” are synonymous and are used in an inclusive, open-ended manner, and include additional elements, functions, acts, operations, etc. do not exclude Also, since the term "or" is used in an inclusive (but not exclusive) sense, for example, when used to link a list of elements, the term "or" means any of the elements of the list. means one, some or all.
본 명세서에 개시된 범위는 또한 임의의 및 모든 중첩, 하위-범위 및 이들의 조합을 포함한다. "~까지(up to)", "적어도(at least)", "보다 큼(greater than)", "보다 작음(less than)", "사이에(between)" 등과 같은 언어에는 인용된 숫자가 포함된다.The ranges disclosed herein also include any and all overlaps, sub-ranges, and combinations thereof. In languages such as "up to," "at least," "greater than," "less than," "between," Included.
여기에 사용된 "대략(approximately)", "약(about)" 및 "실질적으로(substantially)"와 같은 용어는 앞에 오는 숫자들은 인용된 숫자들(예를 들어, 약 10% = 10%)를 포함하고, 또한 여전히 원하는 기능을 수행하거나 원하는 결과를 달성하는 명시된 금액에 가까운 금액을 나타낸다. 예를 들어, 용어 "대략", "약" 및 "실질적으로"는 명시된 금액의 10% 이내, 5% 이내, 1% 이내, 0.1% 이내, 0.01% 이내의 양을 의미할 수 있다.As used herein, terms such as "approximately," "about," and "substantially" refer to the preceding numbers as referring to the recited numbers (e.g., about 10% = 10%). includes, and still represents an amount close to the stated amount that performs a desired function or achieves a desired result. For example, the terms “approximately,” “about,” and “substantially” can mean an amount within 10%, within 5%, within 1%, within 0.1%, within 0.01% of a specified amount.
본 명세서에 사용된 용어 "일반적으로(generally)"는 특정 값, 양 또는 특성을 주로 포함하거나 경향이 있는 값, 양 또는 특성을 나타낸다. 예를 들어, 특정 실시양태에서, 용어 "일반적으로 균일한(generally uniform)"은 20% 미만, 15% 미만, 10% 미만, 5% 미만, 1% 미만, 0.1% 미만 및 0.01% 미만으로 정확히 균일한 값, 양 또는 특성을 나타낸다.As used herein, the term “generally” refers to a value, amount, or characteristic that predominantly includes or tends to include a particular value, amount, or characteristic. For example, in certain embodiments, the term "generally uniform" means exactly less than 20%, less than 15%, less than 10%, less than 5%, less than 1%, less than 0.1%, and less than 0.01%. Represents a uniform value, amount, or property.
본 명세서에 개시된 범위는 또한 임의의 및 모든 중첩, 하위-범위 및 이들의 조합을 포함한다. "~까지(up to)", "적어도(at least)", "보다 큰(greater than)", "보다 작은(less than)", "사이에(between)" 등과 같은 언어에는 인용된 숫자가 포함된다. "약(about)" 또는 "대략(approximately)"과 같은 용어가 앞에 오는 숫자에는 인용된 숫자가 포함된다. 예를 들어, "약 5.0 cm"는 "5.0 cm"를 포함한다.The ranges disclosed herein also include any and all overlaps, sub-ranges, and combinations thereof. In languages such as "up to," "at least," "greater than," "less than," "between," Included. Numbers preceded by terms such as "about" or "approximately" include the recited number. For example, “about 5.0 cm” includes “5.0 cm”.
일부 실시양태들은 개략도와 관련하여 설명되었다. 그러나, 개략도는 축척에 맞게 그려진 것이 아님을 이해해야 한다. 거리는 단지 예시일 뿐이며 실제 치수 및 예시된 장치의 레이아웃과 반드시 정확한 관계를 나타내지는 않는다.Some embodiments have been described with reference to schematic diagrams. However, it should be understood that the schematic drawings are not drawn to scale. The distances are illustrative only and do not necessarily represent an exact relationship with the actual dimensions and layout of the illustrated device.
본 개시의 목적을 위해, 특정 측면들, 이점들 및 신규 특징들이 본 명세서에 설명된다. 이러한 모든 이점들이 반드시 임의의 특정 실시양태에 따라 달성될 수 있는 것은 아님을 이해해야 한다. 따라서, 예를 들어, 당업자는 본 개시가 본 명세서에서 교시되거나 제안될 수 있는 다른 이점들을 반드시 달성하지 않고 본 명세서에서 교시된 바와 같은 하나의 이점 또는 이점들의 그룹을 달성하는 방식으로 구현되거나 수행될 수 있음을 인식할 것이다.For purposes of the present disclosure, certain aspects, advantages, and novel features are described herein. It should be understood that not all of these advantages may necessarily be achieved in accordance with any particular embodiment. Thus, for example, one of ordinary skill in the art would appreciate that this disclosure may be implemented or carried out in a manner that achieves one advantage or group of advantages as taught herein without necessarily achieving other advantages that may be taught or suggested herein. you will realize that you can
더욱이, 예시적인 실시양태들이 본 명세서에 설명되었지만, 동등한 요소들, 수정들, 생략들, 조합들(예를 들어, 다양한 실시양태들에 걸친 측면들의), 적응들 및/또는 변경들을 갖는 임의의 모든 실시예의 범위는 본 개시에 기초하여 당업자에 의해 인식될 것이다. 청구범위들의 제한들은 청구범위들에 사용된 언어에 기초하여 광범위하게 해석되어야 하며, 본 명세서에 기술된 또는 출원을 진행하는 동안의 실시예들에 제한되지 않으며, 이러한 실시예들은 비-배타적인 것으로 해석되어야 한다. 게다가, 개시된 과정들 및 방법들의 동작들은 동작들을 재정렬 및/또는 추가 동작들을 삽입 및/또는 동작들을 삭제하는 것을 포함하여, 임의의 방식으로 수정될 수 있다. 그러므로, 명세서 및 실시예들은 단지 예시적인 것으로 간주되어야 하며, 진정한 범위 및 사상은 청구범위들 및 그 균등물들의 전체 범위에 의해 표시된다.Moreover, while exemplary embodiments have been described herein, any of them having equivalent elements, modifications, omissions, combinations (eg, aspects of aspects spanning various embodiments), adaptations and/or changes. The scope of all embodiments will be recognized by those skilled in the art based on the present disclosure. The limitations of the claims are to be construed broadly based on the language used in the claims, and are not limited to the embodiments described herein or during the filing of the application, which embodiments are to be considered non-exclusive. should be interpreted Moreover, the operations of the disclosed processes and methods may be modified in any way, including reordering operations and/or inserting additional operations and/or deleting operations. Therefore, the specification and examples are to be regarded as illustrative only, with the true scope and spirit being indicated by the full scope of the claims and their equivalents.
Claims (56)
혈액 샘플로부터 CD56+ 세포들을 분리하는 단계;
제1 기간 동안 IL-21의 존재 하에 분리된 CD56+ 세포들을 공-배양하는 단계;
제1 기간 후 공-배양된 CD56+ 세포들을 냉동하는 단계;
냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 및
IL-21의 존재 하에 해동된 CD56+ 세포들을 제2 기간 동안 공-배양하는 단계.A method of propagating natural killer cells in culture, comprising:
isolating CD56+ cells from the blood sample;
co-culturing the isolated CD56+ cells in the presence of IL-21 for a first period;
freezing the co-cultured CD56+ cells after the first period;
thawing the frozen CD56+ cells; and
co-culturing the thawed CD56+ cells in the presence of IL-21 for a second period.
혈액 샘플로부터 CD56+를 분리하는 단계;
IL-21의 존재 하에 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계;
CD56+ 세포들을 냉동하는 단계;
냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 및
해동된 CD56+ 세포들을 증식시키는 단계.A method of propagating natural killer cells in culture, comprising:
isolating CD56+ from the blood sample;
co-culturing CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of IL-21;
freezing the CD56+ cells;
thawing the frozen CD56+ cells; and
Proliferating the thawed CD56+ cells.
상기 자연 살해 세포들을 제공하는 단계;
상기 자연 살해 세포들을 냉동하는 단계;
냉동된 자연 살해 세포들을 해동하는 단계; 및
IL-21의 존재 하에 해동된 자연 살해 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계.A method of increasing the cytotoxicity of natural killer cells, comprising:
providing said natural killer cells;
freezing the natural killer cells;
thawing the frozen natural killer cells; and
co-culturing the thawed natural killer cells with one or more feeder cells in the presence of IL-21.
대상체로부터 CD56+ 세포들을 수집하는 단계;
IL-21의 존재 하에 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계;
적어도 하루 동안 공-배양된 CD56+ 세포들을 냉동하는 단계;
냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계;
해동된 CD56+ 세포들을 증식시키는 단계; 및
증식된 CD56+ 세포들을 대상체에게 투여하는 단계, 상기 제2 증식으로부터 수득된 세포들의 세포독성은 냉동 전 공-배양된 CD56+ 세포들의 세포독성의 적어도 80 %이다.A method of treating a subject, comprising:
collecting CD56+ cells from the subject;
co-culturing CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of IL-21;
freezing the co-cultured CD56+ cells for at least one day;
thawing the frozen CD56+ cells;
propagating thawed CD56+ cells; and
administering the proliferated CD56+ cells to the subject, wherein the cytotoxicity of the cells obtained from the second proliferation is at least 80% of the cytotoxicity of the co-cultured CD56+ cells prior to freezing.
환자로부터의 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)로부터 유래된 유효량의 CD56+ 세포들, 상기 CD56+ 세포들은 다음을 통해 준비된다:
혈액 샘플로부터 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)을 분리하는 단계;
PBMC들로부터 CD56+ 세포들을 분리하는 단계;
하나 이상의 사이토카인의 존재 하에 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계;
CD56+ 세포들을 냉동하는 단계;
냉동된 CD56+ 세포들을 해동하는 단계; 및
하나 이상의 사이토카인의 존재 하에 해동된 CD56+ 세포들을 하나 이상의 영양 세포들과 공-배양하는 단계.A composition comprising:
An effective amount of CD56+ cells derived from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a patient, the CD56+ cells are prepared by:
isolating peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from the blood sample;
isolating CD56+ cells from PBMCs;
co-culturing CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of one or more cytokines;
freezing the CD56+ cells;
thawing the frozen CD56+ cells; and
co-culturing the thawed CD56+ cells with one or more feeder cells in the presence of one or more cytokines.
환자로부터의 말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)로부터 유래된 유효량의 CD56+ 세포들;
IL-2; 및
IL-21.A cell composition comprising:
an effective amount of CD56+ cells derived from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a patient;
IL-2; and
IL-21.
말초 혈액 단핵 세포들(PBMC들)로부터 유래된 CD56+ 세포들의 제1 집단;
얼음; 및
IL-2
IL-21,
상기, 해동될 때, CD56+ 세포들은 CD56+ 세포들의 제2 집단의 적어도 80 %의 세포독성을 가지며, 상기 CD56+ 세포들의 제2 집단은 냉동되지 않음.A composition comprising:
a first population of CD56+ cells derived from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs);
ice; and
IL-2
IL-21,
wherein, when thawed, the CD56+ cells are cytotoxic to at least 80% of the second population of CD56+ cells, wherein the second population of CD56+ cells is not frozen.
PBMC들을 제공하는 단계;
제1 기간 동안 IL-21의 존재 하에 PBMC들을 공-배양하는 단계;
제1 기간 후 공-배양된 PBMC를 냉동하는 단계;
냉동된 PBMC들을 해동하는 단계; 및
제2 기간 동안 IL-21의 존재 하에 해동된 PBMC들을 공-배양하는 단계.A method of propagating natural killer cells in culture, comprising:
providing PBMCs;
co-culturing the PBMCs in the presence of IL-21 for a first period;
freezing the co-cultured PBMCs after the first period;
thawing frozen PBMCs; and
co-culturing the thawed PBMCs in the presence of IL-21 for a second period.
IL-2;
5-10 % DMSO;
90-95 % FBS; 및
선택적으로 CD56+ 세포들인 NK 세포들.A composition comprising:
IL-2;
5-10% DMSO;
90-95% FBS; and
NK cells, optionally CD56+ cells.
IL-2;
5-10 % DMSO;
80-95 % 하트만 용액(Hartman solution);
1-10 % 인간 혈청 알부민; 및
NK 세포들.A composition comprising:
IL-2;
5-10% DMSO;
80-95 % Hartman solution;
1-10% human serum albumin; and
NK cells.
56. The composition of any one of claims 52-55, further comprising a CryoStor solution.
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