KR20210045513A - 줄기 세포-기반 장기 및 조직 생성 방법 - Google Patents

줄기 세포-기반 장기 및 조직 생성 방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 비-인간 동물에서 인간 조직을 생성시키는 방법으로서,
(i) 인간 나이브 상태 줄기 세포를 생성시키고, 이들을 비-인간 동물의 배반포 또는 배아에 주입하여, 키메라 동물이 생성되도록 하는 단계;
(ii) 인간 조직 또는 키메라 동물의 세포에 의해 분비되거나 이로 제조된 인간 조직, 장기, 세포 또는 인자를 수확하는 단계; 및
(iii) 상기 수확된 물질을 인간에게 이식 또는 투여하여, 비-인간 동물에 인간 조직을 생성하는 단계를 포함하는, 방법에 관한 것이다.

Description

줄기 세포-기반 장기 및 조직 생성 방법{METHOD OF STEM CELL-BASED ORGAN AND TISSUE GENERATION}
본 출원은 비-인간 동물에서 인간 조직을 생성시키는 방법에 관한 것이다. 본 출원은 또한 비-인간 동물에 존재하는 인간 조직과 관련된 비-인간 동물에 대한 약물 시험에 관한 것이다. 본 출원은 또한 비-인간 동물로부터 수득된 인간 조직 또는 장기를 갖는 환자를 치료하는 방법에 관한 것이다. 본 출원은 또한 인간 세포 및 조직의 혼입을 가능하게하는 형질전환 동물을 생성하는 방법에 관한 것이다.
현재, 발달중인 배아 또는 배반포에 줄기 세포를 삽입하여 키메라 동물을 제조하는 분야에 대한 상당한 연구가 있다. 최종 목표는 소, 양 또는 돼지와 같은 동물에서 인간의 장기 또는 조직을 생성할 수 있는 것이며, 이로 인해 생성된 장기 또는 조직은 인간에게 이식하는데 사용된다. 공여자 줄기 세포는 새로운 간, 심장 등을 필요로 하는 환자로부터 유래될 수 있다. 성공할 경우, 기술은 장기 공여자의 필요를 대체할 것이며; 현재는 적절한 장기 공여자가 확인되기 전에 대부분의 환자가 사망한다.
기술은 다음과 같은 이유로: 1) 심장, 췌장, 폐 또는 다른 장기 또는 조직을 발달시키지 않을 녹아웃 동물을 제조하기 위해; 2) 공여자 줄기 세포를 다른 것의 상실배 또는 배반포에 주입하여 키메라 동물을 제조하기 위해; 3) 수정란 또는 수정되지 않은 난자가 특정 장기 또는 조직을 형성하는 능력을 더 이상 갖지 않도록 유전자(들) 녹아웃된 키메라 동물을 제조하기 위해 존재하지만, 공여자 줄기 세포가 그 특정 장기 또는 조직을 형성할 수 있는 능력을 갖는 경우, 키메라 동물은 표적 장기의 공여자 줄기 세포 DNA를 100%까지 가질 수 있다. 이 기술은 마우스에서 래트로, 및 래트에서 마우스로와 같은 종 용도에 걸쳐 작동하는 것으로 보였다. 생성된 장기의 크기는 수혜자 동물의 크기에 따라 다르다. 그러나, 래트와 마우스는 가까운 종이다.
윤리적 문제는 비-인간 영장류-인간 키메라의 생성을 방해할 수 있다. 더 먼 포유동물-인간 키메라가 특정 윤리적 문제를 극복할 수도 있지만, 비-영장류 종-인간 키메라를 생성하려는 시도는 지금까지 실패했다.
한 가지 문제점은, 적어도 설치류 예에서, 단지 나이브(naive) 상태 줄기 세포만이 상실배 또는 내부세포괴로 통합되어 키메라를 형성할 수 있다는 것이다. 프라임드(primed) 상태 줄기 세포는 할 수 없었다.
본 발명은 비인간-인간 키메라 동물의 생성을 위한 나이브 상태의 인간 줄기 세포를 생성시키는 방법을 제공함과 동시에 비-인간 환경에서 다능성 인간 줄기 세포의 성장에 적합한 환경을 제공하는 방법을 제공함으로써 상기 문제점을 해결한다. 본 발명은 비-인간 숙주 동물에서 인간 세포의 성장 및 확대를 가능하게하는 인간 인자를 발현하도록 유전적으로 변형시킴으로써 숙주 동물을 "인간화"하는 방법을 제공함으로써 상기 문제점을 해결한다.
I. 일 양태에서, 본 발명은 일부 인간 DNA 또는 일부 인간 조직을 발현하는 키메라 동물에서 잠재적인 약물 제제의 효능 또는 독성을 시험하는 방법에 관한 것이다. 이 방법에서, 일부 인간 DNA 또는 조직을 발현하는 동물은 인간 나이브 상태의 줄기 세포를 비-인간 세포 또는 세포들에 도입하여 생성된다. 일 양태에서, 비-인간 세포는 난이고, 다른 양태에서는 수정란이며, 또다른 양태에서, 세포는 상실배, 배반포 또는 배아이다. 윤리적인 우려 또는 다른 이유로 인해, 통합적인 나이브 상태 줄기 세포가 비-인간이지만, 수혜자 세포, 세포들, 상실배, 배반포 또는 배아와 다른 종의 세포인 키메라 동물을 생성하는 것이 유리할 수 있다. 상기 방법에서, 줄기 세포를 나이브 상태로 유지하거나 프라임드 줄기 세포를 나이브 상태로 되돌리는 제제는 NME 단백질, 2i, 5i, 또는 억제제, 화학 물질 또는 핵산의 다른 칵테일일 수 있다. NME 단백질은 NME1 이량체, NME7 단량체, NME7-AB, NME7-X1, NME6 이량체 또는 박테리아 NME일 수 있다.
비-인간 포유동물은 설치류, 예컨대 마우스 또는 래트, 짧은꼬리 원숭이(macaque), 붉은털 원숭이(rhesus monkey), 유인원, 침팬지, 보노보 등을 포함하는 영장류, 또는 돼지, 양, 소, 등을 포함하는 가축일 수 있다. 키메라 동물은 유전 질환을 가질 수 있거나, 인간으로부터 유래된 세포로부터 자발적으로 생성되거나 이식될 수 있는 암 또는 유발된 질병을 가질 수 있다.
상기 방법에 있어서, 상기 비-인간 동물은 형질전환 동물일 수 있으며, 여기서 상기 동물은 생식 세포 또는 체세포에서 인간 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 단백질을 발현하며, 생식 세포 및 체세포는 재조합 인간 MUC1 또는 MUC1* 또는 상기 동물에게 도입된 NME 유전자 서열을 함유한다. 인간 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 단백질을 발현하는 유전자는 유도성 프로모터의 제어하에 있을 수 있다. 프로모터는 비-인간 동물의 자연 발생 단백질 또는 발달 전후, 또는 발달 중에 동물에게 투여될 수 있는 제제에 대해 유도적으로 반응할 수 있다. 대안적으로는, 비-인간 동물은 형질전환 동물일 수 있으며, 여기서 동물은 생식 세포 또는 체세포에서 천연 서열 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 단백질을 발현하며, 상기 생식 세포 및 체세포는 상기 포유동물에 도입된 재조합 천연 종 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 유전자 서열을 함유한다. NME 종은 NME7, NME7-X1, NME1, NME6 또는 박테리아 NME일 수 있다.
상기 방법에서, 줄기 세포를 나이브 상태로 유지하거나 프라임드 줄기 세포를 나이브 상태로 되돌리는 제제는 NME 단백질, 2i, 5i 또는 억제제, 화학 물질 또는 핵산의 다른 칵테일일 수 있다. NME 단백질은 NME1 이량체, NME7 단량체, NME7-AB, NME7-X1, NME6 이량체 또는 박테리아 NME일 수 있다.
이 방법에서, 상기 제제는 MBD3, CHD4, BRD4 또는 JMJD6의 발현을 억제할 수 있다. 상기 제제는 MBD3, CHD4, BRD4 또는 JMJD6에 대해 제조된 siRNA, 또는 MBD3, CHD4, BRD4 또는 JMJD6의 발현을 상향 조절하는 단백질을 코딩하는 임의의 유전자에 대해 제조된 siRNA일 수 있다. 암 줄기 세포는 암 세포 또는 정상 세포와 비교하여 CXCR4 또는 E-캐드헤린(CDH1)의 발현이 증가하는 특징이 있을 수 있다.
또 다른 양태에서, 본 발명은 (i) 형질전환 비-인간 포유동물을 생성하는 단계로서, 포유동물이 생식 세포 및 체세포에서 인간 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 단백질을 발현하고, 생식 세포 및 체세포가 상기 포유동물에 도입된 재조합 인간 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 유전자 서열을 함유하고, 상기 유전자 서열의 발현이 유도성 및 억제성 조절 서열의 제어하에 있을 수 있는 단계; (ii) 기원이 이종인 줄기 세포 또는 전구 세포를 비-인간 포유동물에 전이시켜, 유전자가 줄기 세포 또는 전구 세포의 수를 증가시키도록 발현되도록 유도할 수 있는 단계; 및 (iii) 이종이식된 줄기 세포로부터 조직을 생성하도록 유전자 발현을 억제하는 단계를 포함하는, 비-인간 포유동물에서 이종이식으로부터 조직을 생성하는 방법에 관한 것이다.
이 방법에서, 단계 (iii)에서, 줄기 세포를 조직 분화 인자와 접촉시킴으로써 유전자 발현 억제가 수행될 수 있으며, 또는, 단계 (iii)에서 자연적으로 생성된 숙주 조직 분화 인자에 반응하여, 유전자 발현 억제가 포유동물에서 자연적으로 수행될 수 있다. 전이된 세포는 인간일 수 있다. 조직은 장기일 수 있다. NME 단백질은 NME7, NME7-AB, NME7-X1, NME1, NME6 또는 박테리아 NME일 수 있다. 동물은 포유동물, 설치류, 영장류 또는 돼지, 양 또는 소 종과 같은 가축일 수 있다.
II. 다른 양태에서, 본 발명은 적어도 일부 인간 세포 또는, DNA의 적어도 일부가 인간 기원인 세포를 갖는 동물을 제조하는 것에 관한 것이다. 상기 동물은 인간 조직, 일부 인간 세포 또는, 인간 또는 인간-유사 조직의 생성을 위한 일부 인간 DNA를 함유하는 세포를 함유하는 조직을 성장시킬 것이다. 다른 경우, 상기 동물은 적어도 일부 인간 세포를 포함하는 장기를 성장시킬 것이다. 다른 경우, 상기 동물은 인간 세포로만 구성된 장기를 성장시킬 것이다. 또다른 경우, 숙주 동물은 발달 후에도 인간의 사지를 성장시키기 위해 유전적으로 또는 분자적으로 조작될 수 있다. 사지, 신경, 혈관, 조직, 장기, 또는 이들내에서 제조되거나 이들로부터 분비된 인자는 동물로부터 수확되어, 다음을 포함하는 다수의 목적으로 사용되지만, 이에 한정되지 않는다: 1) 인간으로의 이식; 2) 노화-방지를 포함한 의료적 이익을 위해 인간에게 투여; 3) 약물 검사 및 질병 모델링을 포함한 과학 실험.
일 양태에서, 본 발명은 비-인간 동물에서 인간 조직을 생성시키는 방법에 관한 것으로서, 상기 방법은 (i) 인간 나이브 상태 줄기 세포를 생성시키고, 이들을 비-인간 동물의 수정란, 상실배, 배반포 또는 배아에 주입하여, 키메라 동물이 생성되도록 하는 단계; (ii) 키메라 동물의 인간 조직 또는 세포에 의해 분비되거나 이로 제조된 인간 조직, 장기, 세포 또는 인자를 수확하는 단계; 및 (iii) 상기 수확된 물질을 인간에게 이식 또는 투여하는 단계를 포함한다. 나이브 상태 줄기 세포는 NME7, NME7-AB, NME7-X1 또는 이량체 NME1을 사용하여 생성될 수 있다. 나이브 줄기 세포는 NME7, NME7-AB, NME7-X1 또는 이량체 NME1을 함유하는 배지에서 재프로그래밍된 iPS 세포일 수 있다. 또는, 나이브 줄기 세포는 NME7, NME7-AB, NME7-X1 또는 이량체 NME1을 함유하는 배지에서 배양된 배아 줄기 세포일 수 있다. 배반포 또는 배아의 비-인간 세포는 유전적으로 변형되었을 수 있다. 그리고 유전자 변형은 숙주 동물이 특정 조직이나 장기를 생성하지 못하게 할 수 있다. 유전자 변형은 비-인간 숙주 동물에서 인간 줄기 세포 또는 전구 세포의 혼입 또는 성장을 촉진 또는 강화시키는 인간 분자를 비-인간 동물이 발현하게 할 수 있다. 또한, 줄기 세포를 나이브 상태로 유지하거나 프라임드 줄기 세포를 나이브 상태로 되돌리는 제제는 NME 단백질, 2i, 5i, 화학물질 또는 핵산일 수 있다. NME 단백질은 NME1 이량체, NME7 단량체, NME7-AB, NME6 이량체 또는 박테리아 NME 또는 NME7-X1일 수 있다. 비-인간 동물은 설치류, 마우스, 래트, 돼지, 양, 비-인간 영장류, 짧은 꼬리 원숭이, 침팬지, 보노보, 고릴라 또는 임의의 비-인간 포유동물일 수 있다. 본 발명의 일 양태에서, 비-인간 동물은 인간 NME 단백질, 특히 인간 NME7-AB 또는 NME7-X1에 대한 높은 서열 상동성 또는 인간 MUC1* 세포외 도메인에 대한 높은 서열 상동성을 위해 선택된다. 어떤 경우에는, NME 단백질은 무혈청 배지에 단일 성장 인자로서 존재할 수 있다.
키메라 동물이 생성될 수 있는지 여부에 대한 한가지 시험은 제1 종으로부터의 줄기 세포가 제2 종의 내부세포괴(ICM)에 혼입될 수 있는지 여부이다. 키메라 동물은 2개의 다른 종, 예를 들어 두 설치류들이 밀접하게 관련되어 있을 때 더 쉽게 생성된다. 본 발명자들은 인간의 나이브 상태 줄기 세포를 마우스 상실배에 주사하여 이들이 내부세포괴에 혼입되었음을 보여주었다. 특정 예에서, 인간 NME7-AB에서 생성된 후 인간에서 배양된 인간 나이브 상태 줄기 세포를, 난자를 수정한지 2.5일 후에 마우스 상실배에 주입하였다. 이것은 내부세포괴가 형성하기 이전이다. 48시간 후, 상실배를 분석하였으며, 상기 분석은 인간 줄기 세포가 내부세포괴에 혼입되어 키메라 동물이 발생한다는 것을 보여주었다.
본 발명은 비인간-인간 키메라 동물의 생성을 위한 나이브 상태의 인간 줄기 세포를 생성시키는 방법을 제공함과 동시에 비-인간 환경에서 다능성 인간 줄기 세포의 성장에 적합한 환경을 제공한다.
또한, 본 발명은 비-인간 숙주 동물에서 인간 세포의 성장 및 확대를 가능하게하는 인간 인자를 발현하도록 유전적으로 변형시킴으로써 숙주 동물을 "인간화"하는 방법을 제공한다.
본 발명은 이하에 주어진 상세한 설명 및 단지 설명을 위해 제공된 첨부 도면으로부터 보다 충분히 이해될 것이며, 따라서 본 발명을 제한하지 않는다;
도 1은 정상 섬유아세포 성장 배지, 또는 NME1 이량체, NME7-AB 또는 HSP593 박테리아 NME1 이량체로도 불리는 인간 재조합 NM23을 첨가한 무혈청 최소 배지에서 배양된 체세포 섬유아세포, 'fbb' 세포에서의 마스터 다능성 조절 유전자 Oct4 및 Nanog의 발현에 대한 RT-PCR 측정의 그래프를 도시한다. '+ROCi'는 일부 세포에 첨가되어, 표면에 부착시키는 Rho 키나아제 억제제를 지칭한다.
도 2는 정상 섬유아세포 성장 배지, 또는 NME1 이량체, NME7-AB 또는 HSP593 박테리아 NME1 이량체로도 불리는 인간 재조합 NM23을 첨가한 무혈청 최소 배지에서 배양된 체세포 섬유아세포, 'fbb' 세포에서의 염색질 재배열 인자 BRD4, JMJD6, MBD3 및 CHD4를 코딩하는 유전자의 발현에 대한 RT-PCR 측정의 그래프를 도시한다. '+ROCi'는 일부 세포에 첨가되어, 표면에 부착시키는 Rho 키나아제 억제제를 지칭한다.
도 3은 정상 섬유아세포 성장 배지, 또는 NME1 이량체, NME7-AB 또는 HSP593 박테리아 NME1 이량체로도 불리는 인간 재조합 NM23을 첨가한 무혈청 최소 배지에서 배양된 체세포 섬유아세포, 'fbb' 세포에서의 다능성 유전자 OCT4 및 NANOG, 염색질 재배열 인자 BRD4, JMJD6, MBD3 및 CHD4, 및 NME1 및 NME7의 발현에 대한 RT-PCR 측정의 그래프를 도시한다. '+ROCi'는 일부 세포에 첨가되어, 표면에 부착시키는 Rho 키나아제 억제제를 지칭한다.
도 4(4A-4B)는 첨가된 유일한 성장 인자로서 재조합 인간 NME1 이량체를 갖는 무혈청 최소 배지에서 줄기 세포가 배양된 다능성 형태를 갖는 인간 배아 줄기 세포의 사진을 도시한다. 도 4의 4A는 4X 배율로 촬영한 사진을 도시하며, 도 4의 4B는 20X 배율로 촬영한 사진을 도시한다.
도 5(5A-5C)는 첨가된 유일한 성장 인자로서 재조합 인간 NME7-AB를 갖는 무혈청 최소 배지에서 줄기 세포가 배양된 다능성 형태를 갖는 인간 배아 줄기 세포의 사진을 도시한다. 도 5의 5A는 4X 배율로 촬영한 사진을 도시하며, 도 5의 5B는 20X 배율로 촬영한 사진을 도시한다.
도 6(6A-6B)는 ELISA 샌드위치 분석으로부터의 HRP 신호 그래프로서, NME7-AB가 MUC1* 세포외 도메인 펩타이드를 이량화하는 것을 보여준다. 도 6의 6A는 MUC1* 세포외 도메인 펩타이드 PSMGFR로 코팅된 표면에 결합된 NME7-AB의 양을 도시하고, 도 6의 6B는 결합된 NME7-AB 상의 제2 부위에 결합하는 제2 MUC1* 펩타이드를 도시한다.
도 7은 후기 단계의 프라임드 줄기 세포와 비교하여 가장 초기 단계의 나이브 인간 줄기 세포에서의 전사 인자 BRD4 및 공동-인자 JMJD6의 발현 수준의 RT-PCR 측정 그래프를 나타낸다.
도 8은 4X 배율에서 이량체 형태의 인간 NME1을 함유하는 무혈청 배지에서 18일 배양 후의 인간 섬유아세포 세포의 사진을 나타낸다.
도 9는 20X 배율에서 이량체 형태의 인간 NME1을 함유하는 무혈청 배지에서 18일 배양 후의 인간 섬유아세포 세포의 사진을 나타낸다.
도 10은 4X 배율에서 인간 NME7-AB를 함유하는 무혈청 배지에서 18일 배양 후의 인간 섬유아세포 세포의 사진을 나타낸다.
도 11은 20X 배율에서 인간 NME7-AB를 함유하는 무혈청 배지에서 18일 배양 후의 인간 섬유아세포 세포의 사진을 나타낸다.
도 12는 4X 배율에서 NME 단백질이 없는 표준 배지에서 18일 후의 인간 섬유아세포 세포의 사진을 나타낸다.
도 13은 20X 배율에서 NME 단백질이 없는 표준 배지에서 18일 후의 인간 섬유아세포 세포의 사진을 나타낸다.
도 14(14A-14C)는 인간 줄기 세포가 자기-복제를 제한하는 방법을 발명가가 발견한 기계론적 모델의 만화를 도시한다. 도 14의 14A는 나이브 줄기 세포로부터 NME7-AB가 분비되고, NME7-AB가 단량체로서 MUC1* 성장 인자 수용체를 이량화하는 방법을 나타내지만, 나중에 BRD4에 의해 억제되는 반면 공동-인자 JMJD6은 NME1을 상향조절함을 보여주며, 도 14의 14B는 NME1이 후기 나이브 상태의 줄기 세포에 의해 분비되지만 이량체로서 MUC1*에만 결합하는 것을 보여주며, 도 14의 14C는 줄기 세포의 수가 증가함에 따라 NME1의 농도가 MUC1*에 결합하지 않는 헥사머를 형성시키고 분화를 유도한다는 것을 보여준다.
도 15(15A-15B)는 NME7-AB 및 NME7-X1을 인식하는 본 발명자가 개발한 항체로 염색된 인간 배반포의 사진을 나타낸 것이다. 도 15의 15A는 NME7-AB 또는 NME7-X1의 존재에 대해 모든 세포가 양성으로 염색되는 3일 배반포를 나타내며, 도 15의 15B는 NME7-AB 또는 NME7-X1의 존재에 대해 내세포괴의 나이브 세포만 양성으로 염색되는 5일 배반포를 나타낸다.
도 16(16A-16B)는 인간 나이브 상태 유도 다능성 줄기(iPS) 세포 및 배아 줄기(ES) 세포가 용해되고, MUC1의 세포질 꼬리에 대한 항체(Ab5)를 사용하여 MUC1에 결합하는 종을 동시-면역침전시키는 동시-면역침전 실험에서의 웨스턴 블롯 겔의 사진을 나타낸다. 이어서, 면역침전물을 웨스턴 블롯으로 분석하였다. 도 16의 16A는 항-MNE7 항체로 프로빙되고, 분자량 30kDa 및 다른 하나 33kDa를 갖고, MUC1에 결합되는 반면, 조 세포 용해물내 전장 NME7은 분자량 42 kDa를 가지는 2개의 NME7 종을 나타내는 웨스턴 블롯의 사진을 나타내며, 도 16의 16B는 도 16A의 겔을 항-MUC1* 세포외 도메인 항체로 박리 및 재프로빙한 웨스턴 블롯의 사진으로, MUC1*으로 불리는, MUC1의 절단된 형태에 결합된 NME7-AB 또는 NME7-X1은 글리코실화에 따라 17-25 kDa의 분자량으로 동작하는 것을 보여준다.
도 17은 MNC3 항-MUC1* 세포외 도메인 항체의 접착 표면상의 유일한 성장 인자로서 NME7-AB를 사용하여 나이브 상태의 인간 줄기 세포를 성장시키는 본 발명의 방법의 만화를 도시한다. 분화를 유도하고자 하는 경우, 합성 MUC1* 세포외 도메인 펩타이드를 첨가하여 모든 NME7-AB를 결합시킨다.
도 18(18A-18C)는 FGF에서 유래된, 프라임드 상태에서, 인간 배아 줄기(ES) 세포가 NME7-AB 또는 NME1 이량체에서 배양함으로써 덜 성숙된 나이브 상태로 되돌아가는, RNA SEQ 실험으로부터의 열지도를 나타낸다. 도 18의 18A는 모 FGF-배양된 ES 세포의 열지도를 도시하고, 도 18B는 NME7-AB에서 10 계대 배양된 모 세포의 열지도를 도시하고, 도 18C는 NME1 이량체에서 10 계대 배양된 모 세포의 열지도를 도시한다.
도 19(19A-19B)는 히스톤 3상의 트리메틸화 리신 27에 결합하는 항체로 염색된 인간 배아 줄기(ES) 세포의 사진을 도시하며, 붉은 초점의 존재는 암(female) 공급원 줄기 세포의 두번째 X 염색체가 불활성화되었으며(XaXi), 이것이 세포가 프라임드 상태이고 조기 분화를 시작했으며 일부 세포 운명 결정을 내렸음을 나타내는 신호임을 나타내며; 레드 클라우드(red cloud)의 존재 또는 적색 염색의 부재는 X 염색체가 여전히 활성임을 나타내므로(XaXa) 아직 분화 결정이 이루어지지 않았으며, 그래서 나이브하다. 도 19의 19A는 FGF 배지에서 적어도 10 계대 배양된 암 공급원 줄기 세포의 사진을 나타내고, 도 19B는 NME7-AB 배지에서 10 계대 배양된 동일한 세포의 사진을 나타낸다.
도 20(20A-20B)는 프라임드 상태 줄기 세포보다 훨씬 빠른 성장 속도이며 NME7-AB에서 배양된 줄기 세포가 나이브 상태임을 나타내는 또다른 지표인, 4일 동안 10-20배의 팽창 속도를 나타내는 두 시점에서 MNC3 항-MUC1* 항체 표면상에서 NME7-AB 배지에서 배양된 인간 다능성 줄기 세포의 사진을 보여준다. 도 20A는 4일째의 줄기 세포를 나타내고, 도 20B는 4일째의 줄기 세포를 나타낸다.
도 21(21A-21C)는 센다이 바이러스 형질도입을 사용하여 전달된 야마나카(Yamanaka) 마스터 재프로그래밍 인자 OCT4, NANOG, KLF4 및 c-Myc를 사용하여 다능성 줄기 세포가 되도록 재프로그래밍된 섬유아세포의 사진을 나타내며, 새로 재프로그래밍된 유도된 다능성 줄기 세포는 알칼리성 포스파타제에 의한 염색을 통해 가시화된다. 도 21A는 MEF 피더 세포 상에서 FGF 배지에서 수행된 재프로그래밍을 나타내고, 도 21B는 마트리겔(Matrigel) 상에서 mTeSR 배지에서 수행된 재프로그래밍을 나타내며, 도 21C는 MNC3 항-MUC1* 항체 표면 상에서 NME7-AB 배지에서 수행된 재프로그래밍을 나타낸다.
도 22(22A-22D)는 NME7-AB에서 유도되고 배양된 형광성 마커인 황색 세포를 갖고, 마우스 배반포에 2.5일에 주사한 다음, 48시간 후에 4.5일에 이미징한 인간 iPS 세포의 사진을 나타내며, 이는 NME7-AB에서 배양된 인간 iPS 세포가 마우스 배아의 내부세포괴로 통합할 수 있는 능력을 가짐을 보여준다. 도 22A는 나이브 줄기 세포를 함유하는 마우스 배아의 내부세포괴 안으로의 경로가 발견된 클론 E 인간 iPS 세포(황색)의 형광 현미경 사진을 도시하고, 도 22B는 동일한 사진이지만 모든 세포를 보여주고 NME7-AB 세포가 태반으로 발달될 영양외배엽(trophectoderm)에서 내부세포괴 플러스 휘프(whiff)에 오로지 통합되어 있음을 보여주는 DAPI를 영상화(청색)하도록 열린 다른 형광 채널을 가진 사진을 나타내며, 도 22C는 나이브 줄기 세포를 함유하는 마우스 배아의 내부세포괴로의 경로를 발견한 클론 R 인간 iPS 세포(노란색)의 형광 현미경 사진을 나타내고, 도 22D는 동일한 사진이지만 모든 세포를 보여주고 NME7-AB 세포가 태반으로 발달될 영양외배엽에서 내부세포괴 플러스 휘프에 오로지 통합되어 있음을 보여주는 DAPI를 영상화하도록 열린 다른 형광 채널을 가진 사진을 나타낸다.
도 23(23A-23J)는 2.5일 마우스 상실배에 주사된, NME7-AB 생성된 인간 iPS 세포, 클론 E의 공초점 이미지를 보여준다. 48시간 후에 인간 Tra 1-81에 대한 염색(적색)은 NME7-AB 인간 줄기 세포가 마우스 상실배의 내부세포괴에 혼입되었음을 보여준다. 도 23A, 도 23C, 도 23E, 도 23G 및 도 23I는 형광 이미지이다. 도 23B, 도 23D, 도 23F, 도 23H 및 도 23J는 명 시야 이미지이다.
도 24(24A-24J)는 2.5일 마우스 상실배에 주사된 NME7-AB 생성된 인간 iPS 세포, 클론 R의 공초점 이미지를 도시한다. 48시간 후에 인간 Tra 1-81에 대한 염색(적색)은 NME7-AB 인간 줄기 세포가 마우스 상실배의 내부세포괴에 혼입되었음을 보여준다. 도 24A, 도 24C, 도 24E, 도 24G 및 도 24I는 형광 이미지이다. 화살표는 나이브 상태 NME7-AB 인간 줄기 세포를 마우스 상실배에 혼입하는 것을 가리키며, 이는 키메라 동물의 형성을 나타낸다. 도 24B, 도 24D, 도 24F, 도 24H 및 도 24J는 명 시야 이미지이다.
도 25(25A-25D)는 2.5일 마우스 상실배에 주사된 FGF 생성된 인간 iPS 세포의 공초점 이미지를 도시한다. 48시간 후에 인간 Tra 1-81에 대한 염색(적색) 및 영양외배엽에 대한 염색(녹색)은 일부 흩어져있는 인간 줄기 세포를 보여주지만, 마우스 상실배의 내부세포괴에 프라임드 상태 인간 줄기 세포가 혼입되지 않아 키메라 동물을 형성하기 시작하는데 실패함을 보여준다. 도 25A 및 도 25C는 형광 이미지이며, 도 25B 및 도 25D는 명 시야 이미지이다.
도 26(26A-26D)는 50% NME7-AB 배지 및 50% KSOM, 칼륨 심플렉스 최적화 배지에서 배양한 다음, 2.5일째 마우스 상실배에 주사된 인간 iPS 세포의 공초점 이미지를 나타낸다. 48시간 후에 형광 이미지 뿐만 아니라 명 시야 이미지를 촬영했다. 48시간 후에 인간 Tra 1-81에 대한 염색(적색) 및 영양외배엽에 대한 염색(녹색)은 필요하다면, 프라임드 상태 인간 줄기 세포가 마우스 상실배의 내부세포괴 내로 혼입되는, 및 혼입되지않는 최소 개수의 인간 세포를 나타내며, 이는 키메라 동물을 형성하기 시작하는데 실패함을 나타낸다. 도 26A, 26C, 26E 및 26G는 형광 이미지이고, 도 26B, 26D, 26F 및 26H는 DAP 염색을 포함한다.
도 27(27A-27F)는 형광 라벨, tdtomato로 트랜스펙션되어 적색을 자가-형광화하는 NME7-AB 생성된 인간 iPS 세포, 클론 E의 공초점 형광 이미지를 나타낸다. 그들은 2.5일째 마우스 상실배에 주사되었다. 48시간 후에 이미지를 촬영하고, NME7-AB 인간 세포를 마우스 상실배의 내부세포괴로 통합하는 것을 보여준다. 도 27A, 도 27B 및 도 27C는 DAPI 염색에서 적색의 NME7-AB 인간 세포, 녹색의 마우스 세포의 영양외배엽을 나타내며, 및 도 27D, 27E 및 27F는 DAPI 염색에서 적색의 NME7-AB 인간 세포, 녹색의 마우스 세포의 영양외배엽 및 청색의 모든 세포핵을 나타낸다.
도 28(28A-28J)는 형광 라벨, tdtomato로 트랜스펙션되어 적색을 자가-형광화하는 NME7-AB 생성된 인간 iPS 세포, 클론 E의 공초점 형광 이미지를 나타낸다. 그들은 2.5일째 마우스 상실배에 주사되고, 48시간 후에 이미지를 촬영하였다. 상기 사진은 NME7-AB 인간 세포를 마우스 상실배의 내부세포괴로 통합하는 것을 보여준다. 도 28A, 28C, 28E, 28G 및 28I는 적색의 NME7-AB 인간 세포, 녹색의 마우스 세포의 영양외배엽을 나타내고, 도 28B, 28D, 28F 및 28H는 DAPI 염색에서 적색의 NME7-AB 인간 세포, 녹색의 마우스 세포의 영양외배엽, 및 청색의 모든 세포핵을 나타낸다.
도 29(29A-29J)는 형광 라벨, tdtomato로 트랜스펙션되어 적색을 자가-형광화하는 NME7-AB 생성된 인간 iPS 세포, 클론 R의 공초점 형광 이미지를 나타낸다. 그들은 2.5일째 마우스 상실배에 주사되고, 48시간 후에 이미지를 촬영하였다. 상기 사진은 NME7-AB 인간 세포를 마우스 상실배의 내부세포괴로 통합하는 것을 보여준다. 화살표는 인간 세포가 마우스 내부세포괴에 혼입된 것을 가리킨다. 도 29A, 29C, 29E, 29G 및 29I는 적색의 NME7-AB 인간 세포, 녹색의 마우스 세포의 영양외배엽을 나타내고, 도 29B, 29D, 29F 및 29H는 DAPI 염색에서 적색의 NME7-AB 인간 세포, 녹색의 마우스 세포의 영양외배엽, 및 청색의 모든 세포핵을 나타낸다.
도 30(30A-30J)는 형광 라벨, tdtomato로 트랜스펙션되어 적색을 자가-형광화하는 NME7-AB 생성된 인간 iPS 세포, 클론 R의 공초점 형광 이미지를 나타낸다. 그들은 2.5일째 마우스 상실배에 주사된다. 48시간 후에 이미지를 촬영하였다. 상기 사진은 NME7-AB 인간 세포를 마우스 상실배의 내부세포괴로 통합하는 것을 보여준다. 화살표는 인간 세포가 마우스 내부세포괴에 혼입된 것을 가리킨다. 도 30A, 30C, 30E, 30G 및 30I는 적색의 NME7-AB 인간 세포, 녹색의 마우스 세포의 영양외배엽을 나타내고, 도 30B, 30D, 30F 및 30H는 DAPI 염색에서 적색의 NME7-AB 인간 세포, 녹색의 마우스 세포의 영양외배엽, 및 청색의 모든 세포핵을 나타낸다.
도 31(31A-31F)는 비-인간 영장류 유도된 다능성 줄기 세포의 생성을 입증하는 실험용 대조군 플레이트의 사진을 나타낸 것이다. 상기 대조군 실험에서, 필리핀 원숭이(crab-eating macaques)의 섬유아세포가 배양되었지만 코어 다능성 유전자는 형질도입되지 않았다. 이미지는 줄기 세포가 아닌 섬유아세포의 형태를 보여준다. 도 31A 및 도 31D는 4X 배율로 촬영하고, 도 31B 및 31E는 10X 배율로 촬영하고, 도 31C 및 31F는 20X 배율로 촬영하였다.
도 32(32A-32C)는 NME7 배지, 이 경우에는 NME7-AB에서 항-MUC1* 항체, 이 경우에는 MN-C3의 표면 상에서 배양하고, 코어 다능성 유전자, 이 경우에는 Oct4, Sox2, Klf4 및 c-Myc로 세포를 형질도입하여, 유도된 다능성 줄기(iPS) 세포로 재프로그래밍한 필리핀 원숭이로부터의 섬유아세포의 6일 사진을 나타낸 것이다. 필리핀 원숭이의 섬유아세포 50,000개를 6-웰 플레이트의 웰마다 플레이팅하였다. 줄기 모양의 형태를 가진 신흥 콜로니는 원형이다. 도 32A는 4X 배율로 촬영하고, 도 32B는 10X 배율로 촬영하고, 도 32C는 20X 배율로 촬영했다.
도 33(33A-33F)는 NME7 배지, 이 경우에는 NME7-AB에서 항-MUC1* 항체, 이 경우에는 MN-C3의 표면 상에서 배양하고, 코어 다능성 유전자, 이 경우에는 Oct4, Sox2, Klf4 및 c-Myc로 세포를 형질도입하여, 유도된 다능성 줄기(iPS) 세포로 재프로그래밍한 필리핀 원숭이로부터의 섬유아세포의 6일 사진을 나타낸 것이다. 필리핀 원숭이의 섬유아세포 100,000개를 6-웰 플레이트의 웰마다 플레이팅하였다. 줄기 모양의 형태를 가진 신흥 콜로니는 원형이다. 도 33A 및 33D는 4X 배율로 촬영하고, 도 33B 및 33E는 10X 배율로 촬영하고, 도 33C 및 33F는 20X 배율로 촬영했다.
도 34(34A-34F)는 NME7 배지, 이 경우에는 NME7-AB에서 항-MUC1* 항체, 이 경우에는 MN-C3의 표면 상에서 배양하고, 코어 다능성 유전자, 이 경우에는 Oct4, Sox2, Klf4 및 c-Myc로 세포를 형질도입하여, 유도된 다능성 줄기(iPS) 세포로 재프로그래밍한 필리핀 원숭이로부터의 섬유아세포의 14일 사진을 나타낸 것이다. 줄기 세포 콜로니가 명확하게 보인다. 도 34A, 34B 및 34C는 10X 배율로 촬영하고, 도 34D, 34E 및 34F는 20X 배율로 촬영하고, 도 34A 및 34D는 24,000개의 원숭이(macaque) 섬유아세포를 플레이팅한 결과이며, 도 34B 및 34E는 6,000개의 원숭이 섬유아세포를 플레이팅한 결과이며, 도 34C 및 34F는 12,000개의 원숭이 섬유아세포를 플레이팅한 결과를 나타낸다.
도 35(35A-35D)는 항-MUC1* 항체 표면 상에서 NME7-AB 배지에서 2차 계대 배양 1일째에 유일한 성장 인자로서 NME7-AB를 함유하는 무혈청 배지에서 증식된 붉은털 원숭이 배아 줄기(ES) 세포의 사진을 나타낸다. 배아 줄기 세포 콜로니가 명확하게 보인다. 도 35A 및 도 35B는 4X 배율로 촬영하고, 도 35C 및 35D는 10X 배율로 촬영하였다.
도 36(36A-36D)는 항-MUC1* 항체 표면 상에서 NME7-AB 배지에서 2차 계대 배양 3일째에 유일한 성장 인자로서 NME7-AB를 함유하는 무혈청 배지에서 증식된 붉은털 원숭이 배아 줄기(ES) 세포의 사진을 나타낸다. 배아 줄기 세포 콜로니가 명확하게 보인다. 도 36A 및 도 36B는 4X 배율로 촬영하고, 도 36C 및 36D는 10X 배율로 촬영하였다.
도 37(37A-37B)는 계대배양 3, 1일째에 유일한 성장 인자로서 NME7-AB를 함유하는 무혈청 배지에서 증식된 붉은털 원숭이 배아 줄기(ES) 세포의 사진을 나타낸다. 도 37A는 1000um에서의 축척 막대(scale bar)를 나타내고, 및 도 37B는 400um에서의 축척 막대를 나타낸다.
도 38(38A-38H)는 계대배양 3, 4일째에 유일한 성장 인자로서 NME7-AB를 함유하는 무혈청 배지에서 증식된 붉은털 원숭이 배아 줄기(ES) 세포의 사진을 나타낸다. 도 38A, 38C 및 38F는 4X 배율로 촬영하고, 도 38B, 38D 및 38G는 10X 배율로 촬영하고, 도 38E 및 38H는 20X 배율로 촬영하였다.
도 39(39A-39C)는 NME7 배지, 이 경우에는 NME7-AB내에서 항-MUC1* 항체, 이 경우에는 MN-C3의 표면에서 배양하고, 코어 다능성 유전자, 이 경우에는 Oct4, Sox2, Klf4 및 c-Myc로 세포를 형질도입함으로써 유도된 다능성 줄기(iPS) 세포로 재프로그래밍된 붉은털 원숭이로부터의 섬유아세포의 14일 사진으로서, 다능성 유전자 형질도입후 14일 후 사진을 나타낸다. 도 39A는 4X에서 촬영되었고, 도 39B는 10X에서 촬영되었고, 도 39C는 20X에서 촬영되었다.
도 40(40A-40C)는 NME7 배지, 이 경우에는 NME7-AB에서 항-MUC1* 항체, 이 경우에는 MN-C3의 표면 상에서 배양하고, 코어 다능성 유전자, 이 경우에는 Oct4, Sox2, Klf4 및 c-Myc로 세포를 형질도입하여, 유도된 다능성 줄기(iPS) 세포로 재프로그래밍한 붉은털 원숭이로부터의 섬유아세포의 연속 계대배양 사진을 나타낸 것이다. 도 40A는 4X에서 촬영했고, 도 40B는 10X에서 촬영했으며, 도 40C는 20X에서 촬영했다.
도 41(41A-41D)는 하나의 경우에는 원숭이 섬유아세포를 MNC3 항-MUC1* 항체 표면에, 및 다른 경우에는 마우스 배아 피더 세포, MEF 상에 플레이팅한 것을 제외하고는 동일한 조건하에, 코어 다능성 유전자, 이 경우에는 Oct4, Sox2, Klf4 및 c-Myc를 갖는 세포를 형질도입함으로써, NMDA7-AB 배지에서 원숭이 iPS 세포를 16일 유도한 사진을 나타낸다. 마우스 피더 세포의 부재하에 플레이팅될때 비-인간 영장류의 iPS 유도가 더욱 효율적임이 분명하게 관찰되었다. 도 41A 및 41B는 MNC3 항체 표면 상에 플레이팅한 것이며, 도 41C 및 41D는 마우스 피더 세포 상에 플레이팅한 것이다.
도 42(42A-42B)는 NME7 배지, 이 경우 NME7-AB에서, MEF의 표면 상에서 배양하고, 및 코어 다능성 유전자, 이 경우 Oct4, Sox2, Klf4 및 c-Myc에 의해 세포를 형질도입하여, 유도된 다능성 줄기(iPS) 세포로 재프로그래밍한 붉은털 원숭이로부터의 섬유아세포의 14일 사진을 나타낸다. 도 42A는 10X 배율로 촬영하고, 도 42B는 20X 배율로 촬영하였다.
도 43(43A-43E)는 3일째 계대배양 1에서, 항-MUC1* 항체, 이 경우 MN-C3의 표면 상에서, 붉은털 원숭이로부터의 NME7-AB 유도된 다능성 줄기 세포의 사진을 나타낸다. 도 43A는 4X 배율로 촬영되었으며, 도 43B는 10X 배율로 촬영되었으며, 도 43C는 20X 배율로 촬영되었고, 도 43D 및 43E는 40X 배율로 촬영했다.
도 44(44A-44F)는 1일째 계대배양 2에서, 항-MUC1* 항체, 이 경우 MN-C3의 표면 상에서, 붉은털 원숭이로부터의 NME7-AB 유도된 다능성 줄기 세포의 연속 계대 사진을 나타낸다. 명확하게 볼 수 있는 바와 같이, 줄기 세포 콜로니가 존재한다. 도 44A 및 44D는 10X 배율로 촬영하고, 도 44B 및 44E는 20X 배율로 촬영하고, 도 44C 및 44F는 40X 배율로 촬영했다.
도 45(45A-45H)는 2일째 계대배양 2에서, 마우스 피더 세포, MEF의 표면 상에서, 붉은털 원숭이 섬유아세포로부터의 NME7-AB 유도된 다능성 줄기 세포의 연속 계대 사진을 나타낸다. 도 45A 및 45E는 4X 배율로 촬영하고, 도 45B 및 45F는 10X 배율로 촬영하고, 도 45C 및 45G는 20X 배율로 촬영하고, 도 45D 및 45H는 40X 배율로 촬영하였다.
도 46(46A-46H)는 3일째 계대배양 2에서, 마우스 피더 세포, MEF의 표면 상에서, 붉은털 원숭이로부터의 NME7-AB 유도된 다능성 줄기 세포의 연속 계대 사진을 나타낸다. 도 46A 및 46E는 4X 배율로 촬영하였으며, 도 46B 및 46F는 10X 배율로 촬영하고, 도 46C 및 46G는 20X 배율로 촬영하고, 도 46D 및 46H는 40X 배율로 촬영하였다.
도 47(47A-47G)는 2일째 계대배양 3에서, 마우스 피더 세포, MEF의 표면 상에서, 붉은털 원숭이로부터의 NME7-AB 유도된 다능성 줄기 세포의 연속 계대 사진을 나타낸다. 도 47A, 47B, 47C 및 47D는 1일째 계대배양 3에 촬영되었으며, 도 47E, 47F 및 47G는 2일째 계대배양 3에 촬영되었으며, 도 47A 및 47E는 4X 배율로 촬영되었으며, 도 47B 및 47F는 10X 배율로 촬영되었으며, 도 47C 및 47G는 20X 배율로 촬영되고, 도 47D는 40X 배율로 촬영되었다.
도 48(48A-48D)는 3일째 계대배양 4에서, 붉은털 원숭이 마우스 피더 세포, MEF로부터의 NME7-AB 유도된 다능성 줄기 세포의 연속 계대 사진을 나타낸다. 도 48A는 4X 배율로 촬영되었으며, 도 48B 및 도 48C는 10X 배율로 촬영되었으며, 도 48D는 20X 배율로 촬영되었다.
정의
본원에서 사용된 "MUC1*" 세포외 도메인은 주로 PSMGFR 서열(
Figure pat00001
(SEQ ID NO: 6))에 의해 정의된다. MUCl 절단의 정확한 부위는 그것을 절단하는 효소에 의존하고, 절단 효소는 세포 유형, 조직 유형 또는 세포의 진화시간에 따라 다양하기 때문에, MUC1* 세포외 도메인의 정확한 서열은 N-말단에서 다양할 수 있다.
본원에 사용된 용어 "PSMGFR"은
Figure pat00002
(SEQ ID NO: 6)으로 개시된 바와 같이, MUC1 성장 인자 수용체의 1차 서열에 대한 약어이다. 이와 관련하여, "N-10 PSMGFR", "N-15 PSMGFR" 또는 "N-20 PSMGFR"에서와 같은 "N- 숫자"는 PSMGFR의 N-말단에서 결실된 아미노산 잔기의 수를 지칭한다. 마찬가지로, "C-10 PSMGFR", "C-15 PSMGFR" 또는 "C-20 PSMGFR"에서와 같은 "C-숫자"는 PSMGFR의 C-말단에서 결실된 아미노산 잔기의 수를 지칭한다.
본원에서 사용된 "MUC1*의 세포외 도메인"은 탠덤 반복 도메인이 없는 MUC1 단백질의 세포외 부분을 지칭한다. 대부분의 경우, MUC1*은 MUC1* 부분이 탠덤 반복이 없는 짧은 세포외 도메인, 막관통 도메인 및 세포질 꼬리로 구성되는 분열 생성물이다. MUCl의 정확한 절단 위치는 아마도 그것이 하나 이상의 효소에 의해 절단될 수 있는 것으로 여겨지기 때문에 알려져 있지 않다. MUC1*의 세포외 도메인은 대부분의 PSMGFR 서열을 포함할 것이지만, 추가적인 10-20개의 N-말단 아미노산을 가질 수 있다.
본원에서 사용된, 번호 1-10인 "NME 계통의 단백질" 또는 "NME 계통의 구성원 단백질"은 모두 하나 이상의 NDPK(뉴클레오타이드 디포스페이트 키나아제) 도메인을 가지기 때문에 함께 그룹화된 단백질이다. 일부의 경우, NDPK 도메인은 ATP의 ADP로의 전환을 촉매할 수 있다는 측면에서 기능적이지 않다. NME 단백질은 공식적으로 H1, H2 등으로 넘버링된 NM23 단백질로 알려져 있다. 여기서, 용어 NM23 및 NME는 상호교환가능하다. 본 명세서에서, 용어 NME1, NME2, NME6 및 NME7은 천연 단백질뿐만 아니라 NME 변이체를 지칭하는데 사용된다. 일부의 경우, 상기 변이체는 대장균(E. coli)에서 보다 용해성이거나, 더 잘 발현되거나, 천연 서열 단백질보다 가용성이다. 예를 들어, 본 명세서에서 사용되는 NME7은 천연 단백질 또는 변이체, 예컨대 변이가 대장균(E. coli)에서 적절히 폴딩된 가용성 단백질의 고수율 발현을 허용하기 때문에 우수한 상업적 응용성을 갖는 NME7-AB를 의미할 수 있다. 본원에서 언급된 "NME1"은 "NM23-H1"과 상호 교환 가능하다. 또한, 본 발명은 NME 단백질의 정확한 서열에 의해 제한되지 않는 것으로 의도된다. NM23-S120G로도 불리우는 돌연변이체 NME1-S120G는 본원 전체적으로 서로 바꾸어 사용할 수 있다. S120G 돌연변이체 및 P96S 돌연변이체는 이량체 형성에 대한 선호때문에 바람직하지만, 본원에서는 NM23 이량체 또는 NME1 이량체로 지칭될 수 있다.
인위적으로 생성된 다양한 NME1 이량체는 "Genetically Growth Factor Variants"라는 발명의 명칭으로 2012년 5월 8일자로 출원된 PCT/US2012/036975에 개시되어 있으며, 이의 내용은 본원에 개시된 이량체 성장 인자와 관련된 참고문헌으로 통합된다.
본원에 언급된 NME7은 약 42kDa의 분자량을 갖는 천연 NME7, 25 내지 33kDa의 분자량을 갖는 분열된 형태, DM10 리더 서열이 없는 변이체, NME7-AB 또는 재조합 NME7 단백질, 또는 효율적으로 발현하도록 변경되거나, NME7을 보다 효과적으로 또는 상업적으로 더 실용적으로 만드는 수율, 용해도 또는 다른 특성을 증가시키는 그의 변이체를 의미하는 것으로 의도된다.
본원에 사용된 바와 같이, "NM23-H1 이량체"로도 알려진 "NME1 이량체"는 서로 공유 결합되지 않은 2개의 NME1 단백질, 서로 공유 결합된 2개의 NME1 단백질 또는 링커를 통해, 함께 유전적으로 융합된 2개의 NME1 단백질일 수 있다. NME1 이량체는 플렉서블 링커에 의해 분리될 수 있는, 2개의 NME1 단백질로 구성된 DNA 구조물을 제조함으로써 유전적으로 조작될 수 있다. 2개의 NME 단백질은 전체 단백질 또는 천연 서열일 필요는 없다. 예를 들어, 이량체 형성 및 안정성을 촉진하는 C-말단 결실이 사용될 수 있다. 이량체 형성 및 안정성을 촉진하는 S120G 및/또는 P96S와 같은 돌연변이가 사용될 수 있다. NME2 또는 NME6 이량체와 같은 다른 NME 계통의 구성원 이량체는 서로 공유 결합되지 않은 유사하게, 2개의 NME 단백질, 서로 공유 결합된 2개의 NME 단백질, 또는 링커를 통해 유전적으로 융합된 2개의 NME 단백질이다.
본원에 사용된 바와 같이, "나이브 상태에서 줄기 세포를 유지하거나 프라임드 줄기 세포를 나이브 상태로 되돌리는 제제"는 배아의 내부세포괴의 세포를 닮은, 나이브 상태에서 줄기 세포를 단독으로 또는 조합하여 유지하는 단백질, 소분자 또는 핵산을 지칭한다. 예로는 MBD3, CHD4, BRD4 또는 JMJD6의 발현을 억제하는 siRNA와 같은, NME1 이량체, 인간 또는 박테리아성, NME7, NME7-AB, 2i, 5i, 핵산이 포함되지만, 이에 한정되지 않는다.
본원에서 사용된 바와 같이, "소분자"로 지칭되는 제제와 관련하여, 이는 50Da 내지 2000Da, 보다 바람직하게는 150Da 내지 1000Da, 더더욱 바람직하게는 200Da 내지 750Da의 분자량을 갖는 합성 화학물 또는 화학적 기초 분자일 수 있다.
본원에 사용된 바와 같이, "천연 생성물"로 지칭되는 제제와 관련하여, 이는 분자가 자연계에 존재하는 한 화학적 분자 또는 생물학적 분자일 수 있다.
본원에 사용된 "2i 억제제"는 MAP 키나아제 신호전달 경로의 GSK3-β 및 MEK의 소분자 억제제를 지칭한다. 2i라는 명칭은 연구 논문(Silva J et al 2008)에서 만들어졌지만, 본원에서 "2i"는 GSK3-베타 또는 MEK의 임의의 억제제를 지칭하며, 상기 표적들을 억제한다면, 다능성 또는 종양형성에 동일한 효과를 가지는 많은 소분자들 또는 생물학적 제제들이 있다.
본 명세서에서 사용된, FGF, FGF-2 또는 bFGF는 섬유아세포 성장 인자를 지칭한다.
본 명세서에서 사용된, "Rho 관련 키나아제 억제제"는 소분자, 펩타이드 또는 단백질일 수 있다(Rath N, et al, 2012). Rho 키나아제 억제제는 본원에서 ROCi 또는 ROCKi 또는 Ri로 약칭한다. 특정 ρ 키나아제 억제제의 사용은 예시적인 것으로 의미되며, 임의의 다른 ρ 키나아제 억제제를 대체할 수 있다.
본 명세서에서, 용어 "줄기-유사(stem-like)"는 줄기 세포 또는 전구 세포의 세포 획득 특성이 줄기 세포 또는 전구 세포의 유전자 발현 프로파일의 중요한 요소를 공유하는 상태를 지칭한다. 줄기-유사 세포는 다능성 유전자의 발현이 증가하는 것과 같이 덜 성숙한 상태로 유도되는 체세포일 수 있다. 줄기-유사 세포는 또한 일부 탈-분화를 겪은 세포 또는 그들이 말단 분화를 변경할 수 있는 준-안정 상태에 있는 세포를 지칭한다.
서열 목록 프리 텍스트
a, g, c, t 이외의 뉴클레오타이드 기호의 사용에 관해서는, WIPO 표준 ST.25 부록 2, 표 1에 기재된 관례를 따르며, 여기서 k는 t 또는 g을 나타내고; n은 a, c, t 또는 g을 나타내고; m은 a 또는 c를 나타내고; r은 a 또는 g을 나타내고; s는 c 또는 g을 나타내고; w는 a 또는 t를 나타내고, 및 y는 c 또는 t를 나타낸다.
Figure pat00003
는 전장 인간 MUC1 수용체(뮤신 1 전구체, Genbank 수탁번호: P15941)를 기술한다.
Figure pat00004
Figure pat00005
Figure pat00006
SEQ ID NO: 2, 3 및 4는 MUC1 수용체 및 절단된 이소형태를 세포막 표면으로 유도하기 위한 N-말단 MUC-1 신호전달 서열을 기술한다. SEQ ID NO: 2, 3 및 4의 변이체에 의해 표시된 바와 같이, C-말단에 3개 이하의 아미노산 잔기가 부재할 수 있다.
Figure pat00007
는 그의 N-말단에 nat-PSMGFR를 갖고, 인간 전장 MUC1 수용체의 막관통 및 세포질 서열을 포함하는 절단 MUC1 수용체 이소형태를 기술한다.
Figure pat00008
(SEQ ID NO: 6)는 인간 MUC1 성장 인자 수용체의 천연 일차 서열(nat-PSMGFR-"PSMGFR"의 예)의 세포외 도메인을 기술한다:
Figure pat00009
(SEQ ID NO: 7)는 SEQ ID NO: 6의 N-말단에서 단일 아미노산 결실을 갖는, 인간 MUC1 성장 인자 수용체의 천연 일차 서열(nat-PSMGFR-"PSMGFR"의 예)의 세포외 도메인을 기술한다.
Figure pat00010
(SEQ ID NO: 8)는 개선된 안정성을 갖는 MUC1 성장 인자 수용체의 천연 일차 서열의 "SPY" 기능적 변이체(var-PSMGFR-"PSMGFR"의 예)의 세포외 도메인을 기술한다.
Figure pat00011
(SEQ ID NO: 9)는 개선된 안정성을 갖고 SEQ ID NO: 8의 C-말단에서의 단일 아미노산 결실을 갖는 MUC1 성장 인자 수용체의 천연 일차 서열의 "SPY" 기능적 변이체(var-PSMGFR-"PSMGFR"의 예)의 세포외 도메인을 기술한다.
Figure pat00012
는 인간 MUC1 세포질 도메인 뉴클레오타이드 서열을 기술한다.
Figure pat00013
은 인간 MUC1 세포질 도메인 아미노산 서열을 기술한다.
Figure pat00014
는 인간 NME7 뉴클레오타이드 서열(NME7: GENBANK 수탁 AB209049)을 기술한다.
Figure pat00015
는 인간 NME7 아미노산 서열(NME7: GENBANK 수탁 AB209049)을 기술한다.
Figure pat00016
는 NMEl 뉴클레오타이드 서열로도 알려져 있는 인간 NM23-H1(NM23-H1: GENBANK 수탁 AF487339)을 기술한다.
Figure pat00017
NM23-H1은 아미노산 서열(NME1로도 알려져 있는 NM23-H1: GENBANK 수탁 AF487339)을 기술한다.
Figure pat00018
는 인간 NM23-H1 S120G 돌연변이체 뉴클레오타이드 서열(NM23-H1: GENBANK 수탁 AF487339)을 기술한다.
Figure pat00019
은 NM23-H1 S120G 돌연변이체 아미노산 서열(NM23-H1: GENBANK 수탁 AF487339)을 기술한다.
Figure pat00020
는 인간 NM23-H2 뉴클레오타이드 서열(NM23-H2: GENBANK 수탁 AK313448)을 기술한다.
Figure pat00021
(SEQ ID NO:19)는 NM23-H2 아미노산 서열(NM23-H2: GENBANK 수탁 AK313448)을 기술한다.
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NM23-H7-2 이소형태 b 서열:
(DNA)
Figure pat00022
(아미노산)
Figure pat00023
인간 NME7-A:
(DNA)
Figure pat00024
(아미노산)
Figure pat00025
인간 NME7-A1:
*(DNA)
Figure pat00026
(아미노산)
Figure pat00027
인간 NME7-A2:
(DNA)
Figure pat00028
(아미노산)
Figure pat00029
인간 NME7-A3:
(DNA)
Figure pat00030
(SEQ ID NO: 28)
(아미노산)
Figure pat00031
인간 NME7-B:
(DNA)
Figure pat00032
(아미노산)
Figure pat00033
인간 NME7-B1:
(DNA)
Figure pat00034
(아미노산)
Figure pat00035
인간 NME7-B2:
(DNA)
Figure pat00036
(아미노산)
Figure pat00037
인간 NME7-B3:
(DNA)
Figure pat00038
(아미노산)
Figure pat00039
(SEQ ID NO: 37)
인간 NME7-AB:
(DNA)
Figure pat00040
(아미노산)
Figure pat00041
인간 NME7-AB1:
(DNA)
Figure pat00042
(아미노산)
Figure pat00043
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME7-A 서열:
(DNA)
Figure pat00044
(아미노산)
Figure pat00045
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME7-A1 서열:
(DNA)
Figure pat00046
(아미노산)
Figure pat00047
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME7-A2 서열:
(DNA)
Figure pat00048
(아미노산)
Figure pat00049
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME7-A3 서열:
(DNA)
Figure pat00050
(아미노산)
Figure pat00051
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME7-B 서열:
(DNA)
Figure pat00052
(아미노산)
Figure pat00053
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME7-B1 서열:
(DNA)
Figure pat00054
(SEQ ID NO: 52)
(아미노산)
Figure pat00055
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME7-B2 서열:
(DNA)
Figure pat00056
(아미노산)
Figure pat00057
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME7-B3 서열:
(DNA)
Figure pat00058
(아미노산)
Figure pat00059
(SEQ ID NO: 57)
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME7-AB 서열:
(DNA)
Figure pat00060
(아미노산)
Figure pat00061
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME7-AB1 서열:
(DNA)
Figure pat00062
(아미노산)
Figure pat00063
마우스 NME6
(DNA)
Figure pat00064
(아미노산)
Figure pat00065
인간 NME6:
(DNA)
Figure pat00066
(아미노산)
Figure pat00067
인간 NME6 1:
(DNA)
Figure pat00068
(아미노산)
Figure pat00069
인간 NME6 2:
(DNA)
Figure pat00070
(아미노산)
Figure pat00071
(SEQ ID NO: 69)
인간 NME6 3:
(DNA)
Figure pat00072
(아미노산)
Figure pat00073
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME6 서열:
(DNA)
Figure pat00074
(아미노산)
Figure pat00075
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME6 1 서열:
(DNA)
Figure pat00076
(아미노산)
Figure pat00077
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME6 2 서열:
(DNA)
Figure pat00078
(아미노산)
Figure pat00079
대장균(E. coli) 발현을 위해 최적화된 인간 NME6 3 서열:
(DNA)
Figure pat00080
(아미노산)
Figure pat00081
히스티딘 태그
Figure pat00082
스트렙트 II 태그
Figure pat00083
PSMGFR N-10 펩타이드:
Figure pat00084
PSMGFR C-10 펩타이드
Figure pat00085
인간 NME7
뉴클레오시드 디포스페이트 키나아제 7 이소형태 a [호모 사피엔스](Hu_7)
Figure pat00086
SEQ ID NO: 84로 표시되는 인간 NME7 이소형태 a는 376개의 아미노산 중첩 영역에서 SEQ ID NO: 21로 표시되는 인간 NME7 이소형태 b와 90.4%의 서열 동일성을 갖는다.
인간 NME7-X1
(DNA)
Figure pat00087
(아미노산)
Figure pat00088
마우스 MUC1 및 NME7
마우스 MUC1* 세포외 도메인 PSMGFR은 45개의 아미노산 중첩 영역에서 인간과 51.1% 동일하다.
Figure pat00089
마우스 이소형태 1 NME7은 395개의 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 84.3% 동일하다
뉴클레오시드 디포스페이트 키나아제 7 (마우스 NME7) 이소형태 1 무스 무스쿨루스(Mus musculus)(Mo_7)
Figure pat00090
마우스 이소형태 2 NME7은 253개의 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 88.4% 동일하다
뉴클레오시드 디포스페이트 키나아제 7 이소형태 2 [Mus musculus](Mo2-7)
Figure pat00091
돼지 Sus scrofa MUC1 및 NME7
Figure pat00092
돼지 MUC1* PSMGFR은 46개의 아미노산 중첩에서 인간과 52.2% 동일하다
Figure pat00093
돼지 NME7은 453개의 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 65.6% 동일하다
예측됨: 뉴클레오시드 디포스페이트 키나아제 7 [Sus scrofa, 돼지](Pi_7)
Figure pat00094
양 MUC1 및 NME7
Figure pat00095
양 MUC1* 세포외 도메인 PSMGFR은 인간과 46.8% 동일하다.
Figure pat00096
양 NME7은 395개의 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 88.4% 동일하다
예측됨: 뉴클레오시드 디포스페이트 키나아제 7 이소형태 X1 [Ovis aries, 양](Sh_7)
Figure pat00097
필리핀 원숭이 마카카 파시큘라리스( Macaca fascicularis) MUC1 및 NME7
필리핀 원숭이 MUC1* 세포외 도메인 PSMGFR은 인간과 88.9% 동일하다
Figure pat00098
필리핀 원숭이 NME7은 251개의 아미노산 중첩에서 인간 NME7 이소형태 a와 98% 동일하다
명명되지 않은 단백질 생성물 [Macaca fascicularis](Ma_7)(서열 불완전, 유일한 NME7A)
Figure pat00099
붉은털 원숭이 MUC1 및 NME7
붉은털 원숭이 MUC1* PSMGFR
붉은털 원숭이 MUC1* 세포외 도메인 PSMGFR은 인간과 88.9% 동일하다
Figure pat00100
붉은털 원숭이 NME7은 376개 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 98.4% 동일하다.
히말라야 원숭이(Macaca mulatta(Rhesus macaque))(Mm_7)
Figure pat00101
보노보 MUC1 및 NME7
보노보 Pan paniscus MUC1
Figure pat00102
보노보 MUC1* 세포외 도메인 PSMGFR은 인간과 100% 동일하다.
Figure pat00103
보노보 NME7은 376개 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 100% 동일하다
보노보 예측됨: 뉴클레오시드 디포스페이트 키나아제 7[Pan paniscus, 보노보](Bo_7)
Figure pat00104
침팬지 MUC1 및 NME7
침팬지(Pan troglodytes) MUC1
Figure pat00105
침팬지 MUC1* 세포외 도메인 PSMGFR은 인간과 100% 동일하다
Figure pat00106
침팬지 NME7은 376개의 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 99.7% 동일하다
뉴클레오시드 디포스페이트 키나아제 7[Pan troglodytes, Chimp](CH_7)
Figure pat00107
고릴라 MUC1 및 NME7
고릴라(Gorilla gorilla) MUC1
Figure pat00108
고릴라 MUC1* PSMGFR은 인간과 100% 동일하다
Figure pat00109
고릴라 NME7은 376개의 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 78.2% 동일하다
NME7[ENSGGOP00000002464], 고릴라(Gorilla gorilla)(Go_7)
Figure pat00110
마우스
뉴클레오시드 디포스페이트 키나아제 7 [Mus musculus](Mo_7)
Figure pat00111
마우스 NME7은 378개 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 87.8% 동일하다
뉴클레오시드 디포스페이트 키나아제 7 이소형태 X1 [Mus musculus](MoX1-7)
Figure pat00112
마우스 NME7은 376개 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 79.8% 동일하다
필리핀 원숭이(Macaca fascicularis)
명명되지 않은 단백질 생성물 [Macaca fascicularis](Ma_7)(서열 불완전, 유일한 NME7A)
Figure pat00113
마카카 NME7은 251개 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 98.0% 동일하다
히말라야 원숭이(Macaca mulatta)(붉은털 원숭이)(Mm_7)
Figure pat00114
히말라야 원숭이(Macaca) NME7은 376개 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 98.4% 동일하다
침팬지
뉴클레오시드 디포스페이트 키나아제 7b [Pan troglodytes, 침팬지](CHb_7)
Figure pat00115
침팬지 NME7은 376개 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 90.2% 동일하다
양(Ovis aries)
예측됨: 뉴클레오시드 디포스페이트 키나아제 7 이소형태 X2(Shx2_7) [Ovis aries, 양]
Figure pat00116
양 NME7은 377개 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 92.6% 동일하다
예측됨: 뉴클레오시드 디포스페이트 키나아제 7 이소형태 X3 [Ovis aries, 양](Shx3_7)
Figure pat00117
양 NME7은 377개 아미노산 중첩 영역에서 인간 NME7 이소형태 a와 83.6% 동일하다
마우스
마우스 MUC1
Figure pat00118
히말라야 원숭이(붉은털 원숭이) MUC1, 부분적
Figure pat00119
필리핀 원숭이_MUC1(이소형태 X1)
Figure pat00120
미니돼지(Sus scrofa) MUC1, 부분적
Figure pat00121
양 MUC1(양)
Figure pat00122
I. 일 양태에서, 본 발명은 일부 인간 DNA 또는 일부 인간 조직을 발현하는 키메라 동물에서 잠재적인 약물 제제의 효능 또는 독성을 시험하는 방법에 관한 것이다. 이 방법에서, 일부 인간 DNA 또는 조직을 발현하는 동물은 인간 나이브 상태의 줄기 세포를 비-인간 세포 또는 세포들로 도입하여 생성된다. 일 양태에서, 비-인간 세포는 난이고, 다른 양태에서는 수정란이고, 다른 양태에서, 세포는 상실배, 배반포 또는 배아이다. 윤리적인 우려 또는 다른 이유로 인해, 통합적인 나이브 상태 줄기 세포가 비-인간이지만 수혜자 세포, 세포들, 상실배, 배반포 또는 배아와 다른 종의 키메라 동물을 생성하는 것이 유리할 수 있다. 상기 방법에서, 줄기 세포를 나이브 상태로 유지하거나 프라임드 줄기 세포를 나이브 상태로 되돌리는 제제는 NME 단백질, 2i, 5i 또는 억제제, 화학 물질 또는 핵산의 다른 칵테일일 수 있다. NME 단백질은 NME1 이량체, NME7 단량체, NME7-AB, NME7-X1, NME6 이량체 또는 박테리아 NME일 수 있다.
비-인간 포유동물은 마우스 또는 래트와 같은 설치류, 짧은 꼬리 원숭이, 붉은털 원숭이, 유인원, 침팬지, 보노보 등을 포함하는 영장류, 또는 돼지, 양, 소 등을 포함하는 가축일 수 있다. 키메라 동물은 유전 질환을 가질 수 있거나, 인간으로부터 유래된 세포로부터 자발적으로 생성되거나 이식될 수 있는 암 또는 유발된 질병을 가질 수 있다.
상기 방법에서, 비-인간 동물은 형질전환 동물일 수 있으며, 여기서 상기 동물은 생식 세포 또는 체세포에서 인간 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 단백질을 발현하며, 생식 세포 및 체세포는 재조합 인간 MUC1 또는 MUC1* 또는, 상기 동물에게 도입된 NME 유전자 서열을 함유한다. 인간 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 단백질을 발현하는 유전자는 유도성 프로모터의 제어하에 있을 수 있다. 프로모터는 비-인간 동물의 자연 발생 단백질 또는 발달 전후, 또는 발달 중에 동물에게 투여될 수 있는 제제에 대해 유도적으로 반응할 수 있다. 대안적으로, 상기 비-인간 동물은 형질전환 동물일 수 있으며, 여기서 상기 동물은 생식 세포 또는 체세포에서 그의 천연 서열 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 단백질을 발현하며, 상기 생식 세포 및 체세포는 상기 포유동물 내로 도입된 재조합 천연 종 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 유전자 서열을 함유한다. NME 종은 NME7, NME7-X1, NME1, NME6 또는 박테리아 NME일 수 있다.
상기 방법에서, 줄기 세포를 나이브 상태로 유지하거나 프라임드 줄기 세포를 나이브 상태로 되돌리는 제제는 NME 단백질, 2i, 5i 또는 억제제, 화학 물질 또는 핵산의 다른 칵테일일 수 있다. NME 단백질은 NME1 이량체, NME7 단량체, NME7-AB, NME7-X1, NME6 이량체 또는 박테리아 NME일 수 있다.
이 방법에서, 상기 제제는 MBD3, CHD4, BRD4 또는 JMJD6의 발현을 억제할 수 있다. 상기 제제는 MBD3, CHD4, BRD4 또는 JMJD6에 대해 제조된 siRNA, 또는 MBD3, CHD4, BRD4 또는 JMJD6의 발현을 상향 조절하는 단백질을 코딩하는 임의의 유전자에 대해 제조된 siRNA일 수 있다. 암 줄기 세포는 암 세포 또는 정상 세포와 비교하여 CXCR4 또는 E-캐드헤린(CDH1)의 발현이 증가하는 특징이 있을 수 있다.
다른 양태에서, 본 발명은 (i) 형질전환 비-인간 포유동물을 생성하는 단계로서, 포유동물이 생식세포 및 체세포에서 인간 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 단백질을 발현하고, 생식세포 및 체세포가 상기 포유동물에 도입된 재조합 인간 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 유전자 서열을 함유하고, 상기 유전자 서열의 발현이 유도성 및 억제성 조절 서열의 제어하에 있을 수 있는 단계; (ii) 기원이 이종인 줄기 세포 또는 전구 세포를 비-인간 포유동물에 전이시켜, 유전자가 줄기 세포 또는 전구 세포의 수를 증가시키도록 발현 유도될 수 있는 단계; 및 (iii) 이종이식된 줄기 세포로부터 조직을 생성하도록 유전자 발현을 억제하는 단계를 포함하는, 비-인간 포유동물에서 이종이식으로부터 조직을 생성하는 방법에 관한 것이다.
이 방법에서, 단계 (iii)에서, 줄기 세포를 조직 분화 인자와 접촉시킴으로써 유전자 발현 억제가 수행될 수 있으며, 또는 단계 (iii)에서 자연적으로 생성된 숙주 조직 분화 인자에 반응하여, 유전자 발현 억제가 포유동물에서 자연적으로 수행될 수 있다. 전이된 세포는 인간일 수 있다. 조직은 장기일 수 있다. NME 단백질은 NME7, NME7-AB, NME7-X1, NME1, NME6 또는 박테리아 NME일 수 있다. 동물은 포유동물, 설치류, 영장류 또는, 돼지, 양 또는 소 종과 같은 가축일 수 있다.
II. 다른 양태에서, 본 발명은 적어도 일부 인간 세포 또는, DNA의 적어도 일부가 인간 기원인 세포를 갖는 동물을 제조하는 것에 관한 것이다. 상기 동물은 인간 조직, 일부 인간 세포 또는, 인간 또는 인간-유사 조직의 생성을 위한 일부 인간 DNA를 함유하는 세포를 함유하는 조직을 성장시킬 것이다. 다른 경우, 상기 동물은 적어도 일부 인간 세포를 포함하는 장기를 성장시킬 것이다. 다른 경우, 상기 동물은 인간 세포로만 구성된 장기를 성장시킬 것이다. 또다른 경우, 숙주 동물은 발달 후에도 인간의 사지를 성장시키기 위해 유전적으로 또는 분자적으로 조작될 수 있다. 사지, 신경, 혈관, 조직, 장기, 또는 이들 내에서 제조되거나 이들로부터 분비된 인자는 동물로부터 수확되어, 다음을 포함하는 다수의 목적으로 사용되지만, 이에 한정되지 않는다: 1) 인간으로의 이식; 2) 노화-방지를 포함한 의료적 이익을 위해 인간에게 투여; 및 3) 약물 검사 및 질병 모델링을 포함한 과학 실험.
일 양태에서, 본 발명은 비-인간 동물에서 인간 조직을 생성하기 위한 방법에 관한 것으로서, 상기 방법은: (i) 인간 나이브 상태 줄기 세포를 생성시키고, 이들을 비-인간 동물의 수정란, 상실배, 배반포 또는 배아에 주입하여, 키메라 동물이 생성되도록 하는 단계; (ii) 키메라 동물의 인간 조직 또는 세포에 의해 분비되거나 이로 제조된 인간 조직, 장기, 세포 또는 인자를 수확하는 단계; 및 (iii) 상기 수확된 물질을 인간에게 이식 또는 투여하는 단계를 포함한다. 나이브 상태 줄기 세포는 NME7, NME7-AB, NME7-X1 또는 이량체 NME1을 사용하여 생성될 수 있다. 나이브 줄기 세포는 NME7, NME7-AB, NME7-X1 또는 이량체 NME1을 함유하는 배지에서 재프로그래밍된 iPS 세포일 수 있다. 또는 나이브 줄기 세포는 NME7, NME7-AB, NME7-X1 또는 이량체 NME1을 함유하는 배지에서 배양된 배아 줄기 세포일 수 있다. 배반포 또는 배아의 비-인간 세포는 유전적으로 변형되었을 수 있다. 그리고 유전자 변형은 숙주 동물이 특정 조직이나 장기를 생성하지 못하게 할 수 있다. 유전자 변형은 비-인간 숙주 동물에서 인간 줄기 세포 또는 전구 세포의 혼입 또는 성장을 촉진 또는 강화시키는 인간 분자를 비-인간 동물이 발현하게 할 수 있다. 또한, 줄기 세포를 나이브 상태로 유지하거나 프라임드 줄기 세포를 나이브 상태로 되돌리는 제제는 NME 단백질, 2i, 5i, 화학물질 또는 핵산일 수 있다. NME 단백질은 NME1 이량체, NME7 단량체, NME7-AB, NME6 이량체 또는 박테리아 NME 또는 NME7-X1일 수 있다. 비-인간 동물은 설치류, 마우스, 래트, 돼지, 양, 비-인간 영장류, 짧은꼬리 원숭이, 침팬지, 보노보, 고릴라 또는 임의의 비-인간 포유동물일 수 있다. 본 발명의 일 양태에서, 비-인간 동물은 인간 NME 단백질, 특히 인간 NME7-AB 또는 NME7-X1에 대한 높은 서열 상동성 또는 인간 MUC1* 세포외 도메인에 대한 높은 서열 상동성을 위해 선택된다. 어떤 경우에는 NME 단백질은 무혈청 배지에 단일 성장 인자로서 존재할 수 있다.
키메라 동물이 생성될 수 있는지 여부에 대한 한 가지 시험은 제1 종으로부터 줄기 세포가 제2 종의 내부세포괴(ICM)에 혼입될 수 있는지 여부이다. 키메라 동물은 2개의 다른 종, 예를 들어, 두 설치류들이 밀접하게 관련되어 있을 때 더 쉽게 생성된다. 본 발명자들은 인간 나이브 상태 줄기 세포를 마우스 상실배에 주사하여 이들이 내부세포괴에 혼입되었음을 보여주었다. 특정 예에서, 인간 NME7-AB에서 생성된 후 인간에서 배양된 인간 나이브 상태 줄기 세포를, 난자를 수정한지 2.5일 후에 마우스 상실배에 주입하였다. 이것은 내부세포괴가 형성되기 이전이다. 48시간 후, 상실배를 분석하였으며, 상기 분석은 인간 줄기 세포가 내부세포괴에 혼입되어 키메라 동물이 발생한다는 것을 보여 주었다.
III. 일 양태에서, 본 발명은 비-인간 동물 숙주에서 인간 조직 또는 장기를 생성시키는 방법에 관한 것으로서, 상기 방법은: (i) 인간 나이브 상태 줄기 세포를 생성시키고, 이들을 비-인간 동물 숙주의 수정란, 상실배, 배반포, 배아 또는 발생중 태아에 주입하여, 키메라 동물이 생성되도록 하는 단계; (ii) 키메라 동물의 인간 조직 또는 세포에 의해 분비되거나 이로부터 제조된 인간 조직, 장기, 세포 또는 인자를 수확하는 단계; (iii) 상기 수확된 물질을 인간에게 이식 또는 투여하여 인간 조직을 생성시키는 단계를 포함한다. 나이브 상태 줄기 세포는 NME7, NME7-AB, NME7-X1, NME6 또는 이량체 NME1을 사용하여 생성된다. 나이브 줄기 세포는 NME7, NME7-AB, NME6, NME7-X1 또는 이량체 NME1을 함유하는 배지에서 재프로그래밍한 iPS 세포이다. 나이브 줄기 세포는 NME7, NME7-AB, NME6, NME7-X1 또는 이량체 NME1을 함유하는 배지에서 배양된 배아 줄기 세포이다. 배반포 또는 배아의 비-인간 세포가 유전적으로 변형되었다. 유전자 변형은 숙주 동물이 특정 조직 또는 장기를 생성할 수 없도록 한다. 줄기 세포를 나이브 상태로 유지하거나 프라임드 줄기 세포를 나이브 상태로 되돌리는 제제는 NME 단백질, 2i, 5i, 화학물질 또는 핵산이다. NME 단백질은 NME1 이량체, NME7 단량체, NME7-AB, NME6 이량체 또는 박테리아 NME이다. 비-인간 동물은 설치류, 돼지 소, 양 또는 영장류이다. 설치류는 마우스 또는 래트이다. NME 단백질은 단일 성장 인자로서 무혈청 배지에 존재한다. 비-인간 동물 숙주는 생성될 줄기 세포 종의 천연 서열에 상동인 서열을 갖는 NME 단백질을 발현한다. NME 단백질은 NME7, NME7-AB, NME7-X1 또는 이량체 NME1 또는 NME6이다. NME 단백질은 NME7이다. NME 단백질은 생성될 줄기 세포 종의 천연 NME 단백질 서열과 적어도 45%, 50%, 55%, 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90% 또는 95% 상동이다. NME 단백질은 생성될 줄기 세포 종의 천연 서열과 적어도 60% 상동이다. NME 단백질은 생성될 줄기 세포 종의 천연 서열과 적어도 70% 상동이다.
본 발명의 다른 양태는 천연 마우스 NME 단백질과 적어도 75% 상동인 서열을 갖는 NME 단백질, 천연 래트 NME 단백질과 적어도 75% 상동인 서열을 갖는 NME 단백질, 천연 돼지 NME 단백질과 적어도 75% 상동인 서열을 갖는 NME 단백질, 천연 양 NME 단백질과 적어도 75% 상동인 서열을 갖는 NME 단백질, 천연 소 NME 단백질과 적어도 75% 상동인 서열을 갖는 NME 단백질, 천연 필리핀 원숭이 NME 단백질과 적어도 75% 상동인 서열을 갖는 NME 단백질, 천연 붉은털 원숭이 NME 단백질과 적어도 75% 상동인 서열을 갖는 NME 단백질, 천연 침팬지 NME 단백질과 적어도 75% 상동인 서열을 갖는 NME 단백질, 천연 보노보 NME 단백질과 적어도 75% 상동인 서열을 갖는 NME 단백질, 천연 고릴라 NME 단백질과 적어도 75% 상동인 서열을 갖는 NME 단백질, MUC1* 세포외 도메인의 서열을 포함하는 펩타이드에 결합하는 항체에 관한 것이며, 상기 서열은 MUC1*의 세포외 도메인 서열을 포함하는 펩타이드에 결합하는 비-인간 항체이며, 상기 서열은 MUC1*의 세포외 도메인 서열을 포함하는 펩타이드에 결합하는 영장류 항체이며, 상기 서열은 MUC1*의 세포외 도메인 서열을 포함하는 펩타이드에 결합하는, 짧은꼬리 원숭이, 침팬지, 유인원, 보노보 또는 고릴라 항체이며, 상기 서열은 MUC1*의 세포외 도메인의 서열을 포함하는 펩타이드에 결합하는 비-영장류 항체이며, 상기 서열은 MUC1*의 세포외 도메인의 서열을 포함하는 펩타이드에 결합하는 설치류 항체이며, 상기 서열은 MUC1*의 세포외 도메인 서열을 포함하는 펩타이드에 결합하는 마우스 또는 래트 항체이며, 상기 서열은 MUC1*의 세포외 도메인의 서열을 포함하는 펩타이드에 결합하는 포유동물 항체이며, 상기 서열은 돼지, 소 또는 양이다.
또 다른 양태에서, 본 발명은 세포를 NME 단백질 및/또는 항-MUC1* 항체와 접촉시키는 단계를 포함하는, 줄기 세포를 생성하고 체세포에서 다능성을 유도하거나 줄기 세포를 배양하는 방법에 관한 것으로서, 상기 NME 단백질은 공여자 세포의 서열과 적어도 75% 상동이고, 항-MUC1* 항체는 MUC1* 세포외 도메인의 서열을 포함하는 펩타이드에 결합하며, 상기 서열은 세포를 기증한 종의 천연 서열과 적어도 75% 상동이다.
또 다른 양태에서, 본 발명은 생성된 조직 또는 장기를 필요로 하는 인간을 치료하는 방법에 관한 것으로, 상기 단계들을 수행하는 단계를 포함한다.
또 다른 양태에서, 본 발명은 제1 비-인간 포유동물과 동일한 종 또는 속에 속하거나 또는 속하지 않는 제2 포유동물로부터 특이적으로 유래하는 DNA, 분자, 세포, 조직 또는 장기를 포함하는 제1 비-인간 포유동물을 생성하는 방법에 관한 것으로서, 제2 포유동물로부터의 세포를 제1 비-인간 포유동물로 도입하는 단계를 포함한다. 제2 포유동물로부터의 세포는 전구 세포, 줄기 세포 또는 나이브 상태 줄기 세포이다. 나이브 상태 줄기 세포는 NME를 함유하는 배지에서 세포를 배양하여 생성된다. NME는 이량체 NME1, 이량체 NME6, NME7-X1 또는 NME7-AB이다. NME는 제2 포유동물에 대하여 내생적인 서열을 가지고있다. 제2 포유동물은 인간이다. 제1 비-인간 포유동물은 설치류, 가축, 돼지, 소 또는 비-인간 영장류이다. 전구 세포, 줄기 세포 또는 나이브 줄기 세포는 제1 비-인간 포유동물의 수정란, 상실배, 배반포, 배아 또는 발생중 태아로 도입된다.
상기 방법에서, 추가의 단계는 제1 비-인간 포유동물을 발생시키고, 및 일부 제2 포유동물 DNA가 혼입된 제1 비-인간 포유동물 분자, 세포, 조직 또는 장기로부터 수확하는 단계; 및 질병 또는 질환의 치료 또는 예방을 위한 분자, 세포, 조직 또는 장기를 이들을 필요로하는 제2 포유동물에 투여하는 단계를 추가로 포함한다. 전구 세포, 줄기 세포 또는 나이브 줄기 세포는 iPS 세포이다. iPS 세포가 생성되는 체세포는 질병 또는 질환의 치료 또는 예방을 위해 수득된 분자, 세포, 조직 또는 장기가 투여되는 제2 포유동물로부터 유래된다.
상기 방법에서, 추가의 단계는 장기의 발생과 관련된 장기 발달 기간 및 내인성 유전자를 결정하는 단계; 및 제1 비-인간 포유동물의 장기 발달 기간 동안 상기 내인성 유전자를 녹아웃 또는 녹다운시키는 단계로서 상기 제2 포유동물의 세포로부터 장기가 생성되도록 하는 단계를 포함한다.
상기 방법에서, 제1 비-인간 포유동물은 70%, 75%, 80%, 85%, 90% 또는 95%보다 큰 전체 서열 동일성, 또는 45%, 50%, 55%, 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90% 또는 95%보다 큰 NME 서열 동일성을 갖는 제2 포유동물에 가깝다.
상기 기술된 방법에서, 추가의 단계는 장기의 발생과 관련된 장기 발달 기간 및 내인성 유전자를 결정하는 단계; 및 제2 포유동물 세포가 비-포유동물 NME7-AB 또는 NME1에 대한 반응으로 적시에 확장하도록, 제2 포유동물 NME7-AB 또는 NME1이 유도성 또는 억제성 프로모터로부터 발현되도록 제1 비-인간 포유동물의 수정란, 상실배 세포, 배반포 세포, 또는 배아 또는 발생중 태아의 세포를 유전적으로 변형시키는 단계를 포함한다. 추가의 단계는 원하는 장기 또는 조직이 정상적으로 발달하는 위치에서 발달의 후기 단계에서 제2 포유동물 줄기 세포를 배아에 주입하는 단계를 포함한다. 추가의 단계는 제1 비-인간 포유동물 또는 제2 포유동물 NME7 또는 NME1의 발현을 그 위치에서 유도함으로써 포유동물 줄기 세포를 확장시키는 단계를 포함한다. 추가의 단계는 제1 비-인간 포유동물 또는 제2 포유동물 NME1의 발현을 그 위치에서 유도함으로써 포유동물 줄기 세포를 확장시키는 단계를 포함한다. 제2 포유동물 프로모터는 내생적인 제1 비-인간 포유동물 단백질에 연결되고, 원하는 시간 및 위치에서 발현되어, 이어서 원하는 조직의 발달을 지시하는 제제를 도입한다. 내생적인 제1 비-인간 포유동물 단백질은 NME1 또는 NME7, 바람직하게는 NME1의 발현을 유도하는 단백질이다.
다른 양태에서, 본 발명은 일부 제2 포유동물 DNA 또는 일부 제2 포유동물 조직을 발현하는 키메라 동물에서 잠재적인 약물 제제의 효능 또는 독성을 시험하는 방법에 관한 것으로서, 상기 방법은: (i) 제1 비-인간 포유동물과 동일한 종 또는 속에 속하거나 또는 속하지 않는 제2 포유동물로부터 특이적으로 유래하는 DNA, 분자, 세포, 조직 또는 장기를 포함하는 제1 비-인간 포유동물을 생성하는 단계로서, 제2 포유동물로부터의 세포를 제1 비-인간 포유동물에 도입하는 단계를 포함하는 단계; 및 (ii) 제2 포유동물로부터 유래된 조직 또는 장기에 대한 효과를 위해 시험 약물을 제1 비-인간 포유동물에 투여하는 단계를 포함한다. NME는 제2 포유동물에서 유래한 세포의 증식을 촉진하는 제1 비-인간 포유동물에서 발현된다.
또 다른 양태에서, 본 발명은 일부 포유동물 DNA 또는 일부 제2 포유동물 조직을 발현하는 키메라 동물에서 잠재적인 약물 제제를 발견하는 방법에 관한 것으로서, 상기 방법은: (i) 제1 비-인간 포유동물과 동일한 종 또는 속에 속하거나 또는 속하지 않는 제2 포유동물로부터 특이적으로 유래하는 DNA, 분자, 세포, 조직 또는 장기를 포함하는 제1 비-인간 포유동물을 생성하는 단계로서, 제2 포유동물로부터의 세포를 제1 비-인간 포유동물에 도입하는 단계를 포함하는 단계; 및 (ii) 제2 포유동물로부터 유래된 조직 또는 장기에 대한 효과를 위해 화합물을 제1 비-인간 포유동물에 투여하는 단계를 포함하며, 상기 효과적인 효과는 잠재적인 약물의 존재를 나타낸다. NME는 제2 포유동물에서 유래한 세포의 증식을 증진시키는 제1 비-인간 포유동물에서 발현된다.
줄기 세포의 증식 및 유도에서의 MUC1*/NME
본 발명자들은 인간 줄기 세포가 강력한 성장 인자 수용체인 MUC1*을 과발현한다는 것을 발견했다. NME1이라고도 불리는, 이량체 형태의 MUC1*의 리간드, NM23-H1은 인간 줄기 세포가 피더 세포, 조건화된 배지 또는 임의의 다른 성장 인자 또는 사이토카인을 필요로 하지 않으면서 다능성 상태로 자라게 하는데 단독으로도 충분하다(Mahanta S et al 2008; Hikita S et al 2008). 본 발명자들은 NME1 이량체가 MUC1* 성장 인자 수용체의 리간드인 것을 이미 보여주었으며, 상기 MUC1*은 세포외 영역의 대부분이 분해되어 세포 표면으로부터 흘러나온 후에 남은 막통과 부분이다. 세포외 도메인의 나머지 부분은 본질적으로 PSMGFR 서열로 구성된다. NME1 이량체는 MUC1* 수용체에 결합하고 이량체화한다. 합성 PSMGFR 펩타이드를 이용한 NME-MUC1* 상호 작용의 경쟁적 억제는 다능성 줄기 세포의 분화를 유도하였으며, 이는 다능성 줄기 세포의 성장이 NME1 이량체와 MUC1* 성장 인자 수용체 사이의 상호 작용에 의해 매개됨을 보여준다. 인간 줄기 세포는 NME1을 분비하며, 이는 이량체화 후에 MUC1* 수용체에 결합하여 인간 줄기 세포의 성장과 다능성을 자극한다. PSMGFR 펩타이드의 첨가 또는 항-MUC1*(항-PSMGFR) 항체의 Fab 첨가에 의한 상호 작용의 경쟁적 억제는 시험관내에서 세포 사멸 및 분화를 유도하였다(Hikita et al 2008).
본 발명자들은 FGF 또는 임의의 다른 성장 인자의 부재하에 인간 줄기 세포를 성장시키고 그의 분화를 억제시키는 NME 계열의 새로운 성장 인자인 NME7을 발견했다. 본 발명자들은 NME7-AB 또는 rhMNE7-AB라고 부르는, 잘린, 재조합 인간 NME7을 제조하였다. 그것은 N-말단 DM10 도메인이 없고, 약 33kDa의 분자량을 갖는다. 줄기 세포로부터 분비되는 자연 발생 NME7 분열 생성물은 본원의 재조합 NME7-AB와 본질적으로 동일한 것으로 나타났다. NME7-X1이라 불리는 NME7의 대안적인 스플라이스 변형이 이론화되었다. 본 발명자들은 NME7-X1이 자연계에 존재하고, 또한 인간 줄기 세포에 의해 분비되며, 30kDa임을 PCR에 의해 입증했다. 본 발명자들은 또한 인간 재조합 NME7-X1을 제조하였다. 또한 본 발명자들은 인간 NME1과 서열 상동성이 높은 일부 박테리아 NME1 단백질이 인간 NME1과 동일한 작용을 한다는 것을 보여주었다. 그들은 MUC1* 세포외 도메인에 결합하고 이량화하여 다능성을 유도한다. 본 발명자들이 인간 줄기 세포 성장을 지원하고, 다능성을 유도한다고 보여준 상기 박테리아 NME1 단백질 중 하나는 HSP593으로도 알려져 있는 할로모나스(Halomonas) Sp. 593이다. 섬유아세포는 줄기 세포가 아닌 체세포이다. 그러나, 본 발명자들은 NME7-AB, NME7-X1, NME1 이량체 및 HSP593 이량체가 체세포가 덜 성숙한 상태로 되돌아 가도록 유도할 수 있음을 발견했다. 도 1은 NME7-AB, NME1 이량체 또는 HSP593 NME1 이량체에서 인간 섬유아세포를 단순히 배양하면 줄기 세포 마커인 OCT4와 NANOG의 상향 조절이 일어남을 보여준다. 도 2는 상기 NME 단백질이 MBD3 및 CHD4의 발현을 억제하고; 상기 유전자들의 억제가 이전에 인간 줄기 세포를 보다 나이브한 상태로 되돌리게 하는 것으로 나타났다(Rais Y et al, 2013). BRD4는 NME7의 발현을 억제하는 것으로 나타났으며, 그의 공동-인자인 JMJD6은 NME1을 상향조절한다. 도 3의 PCR 그래프는 NME7-AB 또는 NME1 이량체가 다능성 유전자를 상향조절함으로써, 및 나이브 상태 줄기 세포에서 억제되는 것으로 보고된 다른 것들을 억제함으로써 다능성을 유도함을 보여준다. 도 4의 4A 및 4B는 유일하게 첨가된 성장 인자가 다능성 줄기 세포 성장을 완전히 지지하기 때문에 NME1 이량체에서 인간 줄기 세포를 배양하는 것을 보여준다. 도 5의 5A-5C는 유일하게 첨가된 성장 인자가 다능성 줄기 세포 성장을 완전히 지지하기 때문에 NME7-AB 단량체에서 인간 줄기 세포를 배양하는 것을 보여준다. NME1이 MUC1* 성장 인자 수용체에 결합하고 이를 이량화하기 위해 이량체여야 하는 반면, 단량체 NME7-AB 및 NME7-X1은 MUC1*에 대해 2개의 결합 부위를 갖는다. 도 6의 6A 및 6B는 샌드위치 ELISA 분석에서 NME7-AB가 본원에서 PSMGFR 펩타이드(JHK SEQ ID?)로도 지칭되는 2개의 MUC1* 세포외 도메인 펩타이드에 동시에 결합할 수 있음을 보여준다. BRD4 및 공동-인자 JMJD6은 도 2 및 도 7에 도시된 바와 같이 나이브 상태의 줄기 세포에서 억제된다. 도 8-11은 줄기 세포 형태와 유사한 형태의 극적인 변화에 의해 볼 수 있으며 도 12-13에 도시된 섬유아세포 형태와는 달리 의심의 여지가 없이, NME1 이량체 및 NME7-AB가 인간 섬유아세포를 유도하여 보다 덜 성숙하고 줄기-유사 상태로 복귀시키는 것을 보여준다.
본 발명자들은 가장 초기의 인간 줄기 세포에서 NME7-AB와 NME7-X1이 분비되어 MUC1* 성장 인자 수용체의 세포외 도메인에 결합하고 이를 이량화할 수 있다고 이론화했다. 따라서 NME7-AB는 첫 나이브 상태를 안정화시킨다. 나중 단계에서 BRD4는 NME7을 억제하고, 그의 공동-인자 JMJD6은 MUC1* 성장 인자 수용체에 결합하고 이를 이량화하는 이량체가 되어야하는 NME1의 발현을 상향조절한다. 따라서, NME1 이량체는 두 번째 나이브-유사 상태를 안정화시킨다. 발달중인 상실배 또는 배반포의 줄기 세포가 번식함에 따라, 분비되는 NME1의 양이 증가하고, 이량체가 헥사머가 된다. 헥사머 NME1은 MUC1*에 결합하지 않고, 분화를 유도한다(Smagghe et al 2013). 도 14는 줄기 세포가 자가-복제를 제한하는 방법의 기계론적 모델을 보여준다. 이전에는 NME7이 고환에서만 발현되었다고 보고되었다. 본 발명자들은 인간 상실배의 초기 세포와 인간 배반포의 내부세포괴가 NME7을 발현한다는 것을 발견했다. 도 15A는 3일 인간 상실배의 모든 세포가 NME7에 대해 양성으로 염색되었음을 보여준다(실시예 섹션 #61의 항체를 말함). 도 15B는 5일째에 상실배가 배반포로 발달되고, 이 발달 단계에서 NME7-양성 세포가 나이브 상태에 있는 것으로 알려진 내부세포괴로 제한된다는 것을 보여준다. 본 발명자들은 나이브 상태의 인간 줄기 세포가 N-말단 DM10 도메인이 없는, 두개의 절단된 형태의 NME7을 발현 및 분비한다는 것을 발견했다. 이 절단된 NME7 종은 MUC1* 성장 인자 수용체의 세포외 도메인과 결합한다. 본 발명자들이 NME7-AB라고 부르는 한개의 NME7 형태는 ~33kDa의 겉보기 분자량으로 동작하는 NME7 종을 생산하기 위해 번역 후 절단을 거쳤다. 다른 절단된 형태는 -30kDa인 NME7-X1이라고 불리는 대체 스플라이스 이소형태가다. 이것은 ~42kDa의 계산된 분자량을 갖고 세포질로 제한되는 것으로 보이는 전장 NME7과는 대조적이다. NME1 이량체, NME6 이량체, NME7-AB 및 NME7-X1은 인간 줄기 세포의 성장 인자로서 기능한다. 그들은 MUC1* 성장 인자 수용체에 결합하고 이를 이량화함으로써 성장, 다능성 및 나이브 상태의 유도를 촉진한다. 그러나, NME7-AB와 NME7-X1은 MUC1*의 세포외 도메인에 대한 2개의 결합 부위를 가지고 있기 때문에 단량체로 작용한다. 도 16의 16A-16B는 인간 나이브 상태 유도 다능성 줄기(iPS) 세포 및 배아 줄기(ES) 세포가 용해되고 MUC1(Ab5)의 세포질 꼬리에 대한 항체가 MUC1에 결합하는 종을 동시-면역침전시키는데 사용된, 동시-면역침전 실험으로부터의 웨스턴 블롯 겔의 사진을 나타낸 것이다. 이어서, 면역침전물을 웨스턴 블롯으로 분석하였다. 도 16A는 항-MNE7 항체로 프로빙된 웨스턴 블롯의 사진을 나타내고, MUC1에 결합된 2개의 NME7 종(하나는 분자량 30kDa이며, 다른 하나는 분자량 33kDa임)을 보여주는 반면, 조 세포 용해물에서의 전장 NME7은 분자량 42 kDa를 가지며, 도 16B는 도 16A의 겔을 항-MUC1* 세포외 도메인 항체로 박리 및 재-프로빙한 웨스턴 블롯의 사진을 나타내며, NME7-AB 또는 NME7-X1은 글리코실화에 따라 17-25 kDa의 분자량으로 동작하는 MUC1*으로 불리는 MUC1의 절단된 형태에 결합하는 것을 보여준다.
도 17은 가장 초기의 나이브 상태에서 줄기 세포를 증식시키기 위한 본 발명의 방법을 도시한다. NME7-AB 또는 NME7-X1은 1nM-60nM 사이의 낮은 나노몰 농도 범위의 무혈청 배지에 첨가되며, 2nM-32nM이 보다 바람직하고, 2nM-10nM이 더욱 바람직하고, 4nM이 가장 바람직하다. 피더 세포 및 세포외 기질 단백질 및 혼합물은 신호를 전달하는 성장 인자 및 기타 생물학적 분자를 함유하므로, 나이브 상태를 유도하거나 안정화할 때 이들의 사용을 피하는 것이 바람직하다. 표면에 줄기 세포를 부착시키는 표면 코팅으로서, MN-C3, MN-C8 또는 MN-C3 또는 MN-C8의 인간화된 버전 또는 단편과 같은 항-MUC1* 항체 또는 NME 단백질을 사용하는 것이 바람직하다. 대안적으로, 세포는 접착층을 필요로 하지 않도록 현탁 배양될 수 있다. 분화를 유도하고자 하는 경우, PSMGFR 펩타이드의 대부분 또는 전부를 포함하는 펩타이드가 첨가된다. MUC1* 성장 인자 수용체의 세포외 도메인의 대부분 또는 전부의 서열을 갖는 펩타이드를 첨가하는 것은 리간드 싱크(ligand sink)로서 작용하고, 모든 NME 성장 인자를 결합시켜 분화가 동조되고 보다 완전하게된다. 이 펩타이드의 첨가는 또한 모든 OCT4 양성 세포가 기형종 형성의 위험을 최소화하거나 제거하는 분화로 유도되도록 한다. 이 방법은 연구, 약물 발견, 치료 용도를 위한 줄기 세포를 생산하는데 사용되거나 일부 인간의 DNA, 분자, 세포, 조직 또는 장기를 갖는 비-인간 동물의 생성을 위해 수정란, 상실배, 배반포, 배아 또는 태아에 이식될 수 있다. 적어도 일부 인간 DNA를 함유하는 상기 분자, 세포, 조직 또는 장기는 연구, 약물 발견, 약물 검사를 위해 사용될 수 있거나, 질병 또는 질환의 치료 또는 예방을 위해 인간에게 투여될 수 있다. 인간 줄기 세포를 비-인간 숙주에 삽입하기 위해, NME7-AB 또는 NME7-X1은 인간 서열 또는, 천연 인간 서열과 적어도 80% 동일한 서열을 가져야한다. 그러나, 비-인간 종 사이에 키메라를 생성하는 것이 바람직할 수 있다. 예를 들어, 윤리적인 우려를 피하기 위해 비-인간 영장류-비-영장류 키메라가 생성될 수 있다. 이 경우, NME 단백질의 서열은 높은 서열 상동성때문에 인간 또는 비-인간 영장류의 서열일 수 있다. 그러나, 하위 포유동물의 키메라를 생성하고자 한다면, NME7 서열은 줄기 세포가 숙주 상실배 또는 배반포에 삽입된 포유동물의 서열이어야 한다. 대안적으로, 낮은 퍼센트로 또는 숙주 동물의 특정 영역에서만 발현되는 인간 세포 및 조직을 갖는 것이 바람직할 수 있다. 상기 경우, 가장 초기의 나이브 상태가 아니라 후기의 나이브 상태에 있는 줄기 세포를 삽입하는 것이 바람직할 수 있다. 이러한 경우 NME1 이량체는 위에서 설명한 방법으로 줄기 세포를 배양하는데 사용된다.
진실한 키메라 동물의 생성을 위해, 수정란, 상실배, 또는 배반포에 주입되는 줄기 세포는 나이브 상태여야 한다. 도 18은 RNA-SEQ 실험으로부터 생성된 열지도를 도시한다. FGF에서 유래되고 성장한 인간 배아 줄기 세포를 프라임드 상태로 두었고, 이어서 추가된 성장 인자가 NME7-AB 또는 NME1 이량체인 상기 배양 시스템으로 옮겼다. 유전자 발현의 열지도는 프라임드 상태로 성장한 FGF가 NME7-AB 성장 세포 또는 NME1 성장 세포와 완전히 다른 유전자 발현 시그니처를 가짐을 보여주며, 이들은 프라임드 세포와는 상이하고, 나이브하다는 것을 나타낸다. NME7 및 NME1 성장 세포가 나이브 상태에 있다는 또다른 증거는 NME7-AB, NME1 이량체 또는 NME7-X1의 iPS 세포 생성이 FGF 기반 배지에서 iPS 생성보다 훨씬 효율적이라는 것이다. 도 19의 19A-19C는 FGF-기반 매질에서 유도된 다능성 줄기 세포(iPS 세포)가되도록 체세포를 재프로그래밍하는 것이 매우 낮은 효율을 갖는다는 것을 보여준다. 줄기 세포 콜로니는 알칼리성 포스파타아제로 염색되어 가시화된다. 마우스 배아 섬유아세포(MEFs)와 함께 사용된 FGF-기반 배지는 초기 단계에서 비교적 효율적으로 보이지만, 집락된 콜로니의 약 15%만이 선천적인 줄기 세포주가 된다(도 19A). 또한, 마우스 피더 층은 비-인간 비-정량화가능성 및 비-인간 종을 인간의 세포 또는 자손의 궁극적인 치료적 사용을 위해 위태로운 상태가 되는(frowned up) 방법으로 도입한다. mTeSR은 마트리겔 상에 세포를 플레이팅함으로써 피더-프리(feeder-free)로 사용될 수 있는 FGF-기반 배지이지만, 이 방법은 도 19B의 희소하고 작은 콜로니에서 볼 수 있는 바와 같이 매우 비효율적이다. 대조적으로, 항-MUC1* 항체의 층 위에서 NME7-AB에서의 iPS 재프로그래밍은 FGF-기반 방법보다 빨리 발생하고 빠르게 성장하는 줄기 세포 콜로니가 풍부하여 매우 효율적이다(도 19C). 또한, NME7-생성된 iPS 콜로니로부터 86% 이상의 콜로니가 선발되어 진짜 나이브 상태 iPS 줄기 세포주가 된다. 나이브 상태에 있는 줄기 세포의 다른 지표는 여성 소스 세포의 두 번째 X 염색체가 여전히 활성화되어있는 경우이다. 줄기 세포가 만들어내는 가장 초기의 분화 결정 중 하나는 여성 세포에서 X 염색체가 턴 오프되는 것이다. 하나의 X 염색체의 발현을 턴-오프(turn off)시키기 위해, 히스톤 3의 리신 27이 트리-메틸화된다. 도 20A는 FGF 배지에서 유래 및 성장된 여성 소스 배아 줄기 세포를 나타낸다. 각 세포의 핵에 있는 초점 적점은 히스톤 3의 트리-메틸화 리신 27에 결합하는 형광 항체이며, 이는 XaXi라고 불리는, 프라임드 상태 줄기 세포에서 제2 X 염색체가 턴-오프되어 있음을 보여준다. 도 20B는 NME7-AB에서 상기 동일한 세포를 배양한 후 제2 X(XaXa)가 재활성화되어, 초점 적점이 사라지는 것을 보여준다. NME1 이량체의 배양 후 동일한 결과가 얻어졌다. 줄기 세포가 나이브 상태에 있는지 아닌지에 대해 더 논란의 여지가 있는 척도는 다른 종의 상실배 또는 배반포의 내부세포괴로 혼입될 수 있는지 여부이다. 도 21A-21D는 마우스 배반포의 내부세포괴에 혼입된 본원의 인간 NME7-AB 줄기 세포의 형광 이미지를 도시한다. 나이브 상태 줄기 세포의 또다른 지표는 자발적 분화없이 성장할 수 있는지와 프라임드 상태 세포보다 빠르게 성장하는지의 여부이다. 도 20A-20B는 인간 NME7-AB 성장된 줄기 세포가 프라임드 줄기 세포보다 훨씬 빠른 성장 속도를 갖는다는 것을 보여준다. 그들은 4일 만에 10-20배의 확장을 겪으며, 이는 프라임드 상태의 세포보다 2~3배 빠르다.
NME 단백질은 배아 및 iPS 세포의 성장 및 다능성을 촉진할뿐만 아니라 세포를 줄기-유사 상태 또는 나이브 상태로 복귀시키도록 유도한다. 바람직한 구현예에서, NME 계통의 구성원 단백질은 NME1 또는, NME1과 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95% 또는 97% 이상의 서열 동일성을 갖는 NME 단백질이며, 상기 단백질은 이량체이다. 보다 바람직한 구현예에서, NME 계통의 구성원 단백질은 NME7 또는, NME7 도메인 A 또는 B 중 적어도 하나와 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95% 또는 97% 이상의 서열 동일성을 갖는 NME 단백질이며, MUC1* 성장 인자 수용체를 이량화시킬 수 있다.
본원에서, 본 발명자들은 이량체 형태의 NME1, NME7-AB 또는 NME7-X1이: a) 분화를 억제하면서 인간 ES 또는 iPS 성장 및 다능성을 완전히 지원하고; b) 체세포를 더 줄기-유사 또는 나이브-유사 상태로 되돌리고; c) 다른 종의 배반포에 통합될 수 있는 나이브 상태 인간 줄기 세포를 생산할 수 있다고 보고하고 있다. NME7-AB 나이브 인간 줄기 세포를 2.5일째에 마우스 상실배에 주사했다. 도 22의 22A-22D는 48시간 후에 상실배가 배반포로 발달될 때, 인간 세포(황색)가 마우스 나이브 세포가 있는 내부세포괴(원형) 내에 있음을 보여준다. 이러한 내부세포괴로의 혼입은 키메라 동물의 형성에 필요하다. 도 23의 23A-23J 및 도 24의 24A-24J는 인간 NME7-나이브 세포가 2.5일에 주사된 다른 마우스 배반포의 공초점 이미지를 도시하며, 또한 내부세포괴로의 통합을 나타낸다. 도 25의 25A-25D 및 도 26의 도 26A-26H는 프라임드 상태의, FGF 성장된 인간 줄기 세포가 동일한 조건 하에서 마우스 배반포의 내부세포괴로 혼입되지않는 것을 도시한다. 도 27의 27A-27F, 도 28의 28A-26J, 도 29의 29A-29J 및 도 30의 30A-30J는 마우스 상실배 내로 2.5일째에 주사된 인간 NME7-AB 성장된 나이브 줄기 세포가 4.5일째에 48시간후에 배반포의 내부세포괴에 농축되어 발견됨을 보여준다.
본 발명자들은 이량체를 안정화시키는 S120G 돌연변이를 갖는 이량체인 재조합 인간 NME1을 제조하였다. 본 발명자들은 이전에 인간 NME1 이량체가 MUC1* 수혜자의 세포외 도메인의 PSMGFR 부분에 결합한다고 보고했다(Smagghe et al., 2013). 본 발명자들은 또한 다능성 줄기 세포에서 MUC1* 수혜자의 세포외 도메인의 PSMGFR 부분에 단량체로 결합하고 이량화하여 재조합 인간 NME7-AB와 NME7-X1을 제조하였으며, 이는 성장과 다능성을 자극하고 줄기 세포를 최초의 나이브 상태로 되돌리도록 자극한다.
NME는 일반적인 줄기 세포 성장 인자이다
NME7 및 절단된 형태는 많은 종에서 일반적인 줄기 세포 및 다능성 성장 인자이다. 예를 들어, 본 발명자들은 인간 NME7-AB를 사용하여 배아 및 iPS 줄기 세포를 포함한 붉은털 원숭이 및 필리핀 원숭이 줄기 세포를 증식시킬 수 있었다. 본 발명자들은 표면 부착을 촉진시키기 위해 항-MUC1* 항체인 MN-C3를 사용하는, 피더 세포의 부재하에 야마나카 또는 톰슨(Thomson)의 재프로그래밍 인자와 함께 NME7-AB를 사용하여 붉은털 원숭이 및 필리핀 원숭이에서 iPS 세포를 생성하는데 성공했다. 두 원숭이 NME7의 서열은 인간 NME7과 98% 동일하며, 그의 표적 성장 인자 수용체인 MUC1* 세포외 도메인은 인간 PSMGFR과 90% 동일하다. 도 31의 31A-31F는 야마나카 다능성 인자인 OCT4, SOX2, NANOG 및 c-Myc의 형질도입 없이, NME7-AB에서 6일 동안 배양한 필리핀 원숭이로부터의 섬유아세포를 함유하는 대조군 플레이트의 사진을 나타낸다. 도 32의 32A-32C, 도 33의 33A-33F 및 도 34의 34A-34F는 야마나카 인자 및 NME7-AB에 의해 재프로그래밍된 필리핀 원숭이로부터의 섬유아세포를 나타낸다. 6일 이후, 생긴 iPS 콜로니가 항-MUC1* 항체 표면으로 옮겨지며, 각 클론이 추출되어 확장될 때 약 14-17일까지 계속 확장된다. 본 발명자들이 아는 한, 이것은 과학자들이 마우스 또는 인간 피더 세포의 부재하에 비-인간 영장류 iPS 세포를 생성하는데 성공한 최초의 사례이다. 연구원은 비-인간 영장류 줄기 세포를 배양하는데 극도의 어려움을 겪고 있다. 그들은 자발적으로 분화하며, FGF-기반의 배지에서 잘 자라지 않는다. 도 35의 35A-35D, 도 36의 36A-36D, 도 37의 37A-37B 및 도 38의 38A-38H에 도시된 바와 같이, 본 발명자들은 비-인간 영장류 세포를 NME7-AB 배지로 옮길 때 상기 모든 문제를 극복했다. MN-C3 항체 표면 또는 MEF 상에서 무 혈청, FGF-없는 NME7-AB 배지에서의 야마나카 인자 또는 톰슨 인자의 형질도입에 의한 붉은털 원숭이 iPS 세포의 생성은 도 39의 39A-39C, 도 40의 40A-40C, 도 41의 41A-41D, 도 42의 42A-42B, 도 43의 43A-43E, 도 44의 44A-44F, 도 45의 45A-45H, 도 46의 46A-46H, 도 47의 47A-47G 및 도 48의 48A-48D에서 다양한 단계로 도시되어 있다.
본 발명의 또다른 양태에서, 배아 또는 iPS 줄기 세포는 수정란 또는 배아를 배양하거나 NME 단백질을 함유하는 배지를 사용하여 세포를 재프로그래밍함으로써 다른 비-인간 종에서 증식, 유지 또는 생성된다. NME 단백질은 NME1 이량체 또는 NME6 이량체, NME7, NME7-AB 또는 NME7-X1일 수 있다. 일부의 경우, NME 단백질의 서열은 인간 서열일 수 있다. 다른 경우, NME 단백질의 서열은 재프로그램을 위한 줄기 세포, 배아 또는 세포가 유래한 비-인간 종의 서열이다. 비-인간 종에서의 NME7의 서열이 인간 NME7의 서열과 너무 다르면, 비-인간 표적 종에 대한 서열 동일성이 더 높은 서열을 갖는 NME 단백질 또는 그 종의 천연 NME 단백질의 서열을 갖는 NME 단백질을 사용하여 보다 양호한 결과들이 얻어진다. 본 발명의 일 양태에서, NME 단백질은 NME1 또는 NME6 이량체, NME7, NME7-AB 또는 NME7-X1이다. 특정 NME 단백질이 다능성 성장 인자로서 작용할 종을 결정하는 방법은 NME 단백질이 표적 종의 서열을 갖는 PSMGFR 펩타이드에 결합하는지 여부를 시험하는 것이다. NME 단백질이 표적 종의 PSMGFR 펩타이드에 결합하면, NME 단백질은 줄기 세포 성장 인자 또는 다능성 인자로서 작용할 것이다.
본 발명의 일 양태에서, 비-인간 줄기 세포는 비-인간 종의 NME 단백질을 함유하는 배지에서 세포를 배양함으로써 증식 또는 유지된다. 본 발명의 또다른 양태에서, 비-인간 종 줄기 세포의 서열과 적어도 40% 상동인 서열을 갖는 NME 단백질을 함유하는 배지에서 세포를 배양함으로써 비-인간 줄기 세포가 증식 또는 유지된다. 본 발명의 다른 양태에서, 비-인간 줄기 세포는 PSMGFR 펩타이드라고도 불리는, 종의 MUC1* 세포외 도메인의 서열을 갖는 펩타이드에 결합할 수 있는 NME 단백질을 함유하는 배지에서 세포를 배양함으로써 증식 또는 유지된다. 본 발명의 또다른 양태에서, 비-인간 줄기 세포는 인간 서열 NME 단백질을 함유하는 배지에서 세포를 배양함으로써 증식 또는 유지된다. NME 단백질은 NME1 또는 NME6 이량체, NME7, NME7-AB 또는 NME7-X1일 수 있다.
본 발명의 또다른 양태에서, 비-인간 종의 NME 단백질을 함유하는 배지의 존재하에, 비-인간 줄기 세포는 Oct4, Sox2, Klf4, c-Myc, Nanog, Lin28을 포함하는 유전자 또는 유전자 산물의 조합을 도입하는 것과 같은 재프로그래밍 기술을 사용하여 생성된다. 본 발명의 다른 양태에서, 비-인간 줄기 세포의 서열과 적어도 40% 상동인 서열을 갖는 NME 단백질을 함유하는 배지에서 재프로그래밍 기술을 사용하여 비-인간 줄기 세포가 생성된다. 본 발명의 다른 양태에서, 비-인간 줄기 세포는 PSMGFR 펩타이드로도 불리는 종의 MUC1* 세포외 도메인의 서열을 갖는 펩타이드에 결합할 수 있는 NME 단백질을 함유하는 배지에서 재프로그래밍 기술을 사용하여 생성된다. 본 발명의 다른 양태에서, 비-인간 줄기 세포는 인간 서열 NME 단백질을 함유하는 배지에서 재프로그래밍 기술을 사용하여 생성된다. NME 단백질은 NME1 또는 NME6 이량체, NME7, NME7-AB 또는 NME7-X1일 수 있다.
본 발명의 또다른 양태에서, 비-인간 배아 줄기 세포는 비-인간 종의 NME 단백질을 함유하는 배지에서 수정란 또는 배아를 배양함으로써 생성된다. 본 발명의 다른 양태에서, 비-인간 종 줄기 세포의 서열과 적어도 40% 상동성인 서열을 갖는 NME 단백질을 함유하는 배지에서 수정란 또는 배아를 배양함으로써 비-인간 배아 줄기 세포가 생성된다. 본 발명의 또다른 양태에서, 비-인간 배아 줄기 세포는 PSMGFR 펩타이드로도 불리우는 종의 MUC1* 세포외 도메인의 서열을 갖는 펩타이드에 결합할 수 있는 NME 단백질을 함유하는 배지에서 수정란 또는 배아를 배양함으로써 생성된다. 본 발명의 다른 양태에서, 비-인간 배아 줄기 세포는 인간 서열 NME 단백질을 함유하는 배지에서 수정란 또는 배아를 배양함으로써 생성된다. NME 단백질은 NME1 이량체 또는 NME6 이량체, NME7, NME7-AB 또는 NME7-X1일 수 있다.
본 발명의 또다른 양태에서, NME 단백질 또는 MUC1* 단백질이 인간과 낮은 서열 동일성을 갖는 비-인간 종의 발생중 배반포 또는 배아에 인간 줄기 세포가 혼입되기를 원하는 경우, 비-인간 종이 인간화된다. 비-인간 종의 수정란 또는 수정되지않은 난 또는 줄기 세포는 인간 NME 단백질 및/또는 인간 MUC1* 단백질의 발현을 가능하게하는 벡터로 형질도입되며, 이들의 발현은 유도성 또는 억제성일 수 있다.
키메라 동물에서 잠재적인 약물 제제에 대한 시험
마우스 및 다른 동물에서 암 제제를 시험하기 위한 현재의 실습은 인간 암세포를 동물에게 주사하고, 즉시 또는 며칠 또는 수 주간의 생착 후에 동물에게 시험 약물을 주사하는 것이다. 그러나, 이 접근법은 근본적으로 결함이 있는데, 왜냐하면 인간 암세포가 성장하거나 생장하는데 필요한 성장 인자를 숙주가 자연적으로 생산하지 않기 때문이다. 또한, 숙주가 성장 인자 또는 동일한 수준의 성장 인자 또는 인간 형태의 성장 인자를 생산하지 않기 때문에, 동물에서 시험되는 약물은 인간에서와 동일한 효과를 갖지 않을 것이다. 마우스 NME7은 인간 NME7과 겨우 84% 상동하며, 성인에서는 발현되지 않는다. 따라서, 항암제 테스트를 위한 현재의 이종이식법은 종종 이러한 약물에 대한 인간의 반응을 예측하는 데는 부족하다. 이 문제는 NME1 이량체 또는 NME7을 마우스에 도입하여 인간 종양 세포가, 종양을 공급할 수 있는 동족 성장 인자를 갖도록 하여 해결될 수 있다. NME1 이량체 또는 NME7은 다양한 방법에 의해 동물에게 도입될 수 있다. 이식 전에 종양 세포와 혼합되거나 종양이 있는 동물에게 주사될 수 있다.
바람직한 구현예에서, 인간 NME7 또는 이의 단편을 발현하는 형질전환 동물이 생성된다. NME7은 동물이 자연적으로 발달할 수 있도록 유도성 프로모터 상에 운반될 수 있지만, NME7 또는 NME7 단편의 발현은 인간 종양의 이식 또는 약물 효능 또는 독성 평가동안 턴 온(turn on)될 수 있다. 바람직한 구현예에서, 시험 동물에 도입되는 NME7 종은 NME7-AB이다.
대안적으로, 인간 MUC1, MUC1*, NME7 및/또는 NME1 또는 NME2, 이량체 형성을 선호하는 NME1 또는 NME2의 변이체, 단일 사슬 구조물 또는, 이량체를 형성하는 다른 변이체를 동물이 발현하는 형질전환 동물이 제조될 수 있다. NME 단백질과 MUC1은 인간의 피드백 루프의 일부분이므로, 하나의 발현이 다른 발현의 상향 조절을 일으킬 수 있으며, 인간 NME 단백질(들)과 MUC1 또는 절단된 형태 MUC1*를 발현하는 형질전환 동물을 생성하는 것이 유리할 수 있다. 자연적 또는 조작된 NME 종은 형질전환 동물을 생성하는 단계, 천연 또는 재조합 NME 단백질 또는 NME 단백질의 변이체를 동물에 주입하는 단계를 포함하는 다양한 방법 중 임의의 방법에 의해 마우스와 같은 동물에 도입될 수 있으며, NME1, NME6 및 NME7 단백질 또는 변이체가 바람직하며, MUC1*, 특히 PSMGFR 펩타이드를 이량화할 수 있는 NME1, NME6 및 NME7 단백질 또는 변이체가 특히 바람직하다. 바람직한 구현예에서, NME 종은 근사 분자량이 33kDa인 절단된 형태의 NME7이다. 보다 바람직한 구현예에서, NME7 종은 그의 N-말단의 DM10 도메인이 없다. 보다 더 바람직한 구현예에서, NME7 종은 인간이다.
NME 계통의 단백질, 특히 NME1, NME6 및 NME7은 인간 암에서 발현되며, 여기서 이들은 인간 암의 성장 및 전이를 촉진시키는 성장 인자로서 기능한다. 따라서, 인간 암의 적절한 성장, 진화 및 평가를 위해, 및 화합물, 생물 제제 또는 약물에 대한 그들의 반응을 측정하기 위해서는 인간 NME 단백질 또는 활성 형태의 NME 단백질이 존재해야한다.
인간화 동물
일부 경우, NME 단백질의 발현 타이밍을 조절할 수 있는 것이 바람직하다. 이러한 경우, 단백질 발현은 조절가능한 프로모터와 같은 유도성 유전자 요소에 연결될 수 있다. 바람직한 구현예에서, 인간 줄기 세포 또는 암세포의 접종(engraftment)을 증가시키기 위해 동물에게 도입되는 NME 단백질은 인간 NME7이다. 보다 바람직한 구현예에서, NME7 단백질은 ~ 33kDa인 단편이다. 보다 바람직한 구현예에서, NME 단백질은 인간 NME7-AB이다.
다른 것은 '2i'(Silva J et al 2008) 및 '5i'(Theunissen TW et al 2014)라고 불리우는 억제제가 줄기 세포를 나이브-유사 상태로 유지할 수 있다고 보고한 바 있다. '2i' 억제제 또는 '5i' 억제제로 치료하면 줄기 세포를 더 나이브한 상태로 되돌린다. 2i는 MAP 키나아제 경로의 억제제 및 PD0325901 및 CHIR99021과 같은 GSK3 억제제를 지칭한다. 그러나, 생화학적 억제제의 사용에 의존하는 이 방법과 다른 방법은 다른 종의 내부세포괴로 통합할 수 있는 것과 같이 나이브하기 위한 기준을 충족시키지 못했고, 또한 만연하는 자발적 분화 또는 비정상적인 핵형 또는 둘 다를 갖지 않는 10회 이상의 계대 배양을 위해 줄기 세포를 증식시킬 수 없다고 보고했다.
나이브 상태
줄기 세포를 나이브 상태로 유지시키거나 프라임드 줄기 세포를 나이브 상태로 되돌리기 위한 다른 제제가 보고되었다. 염색질 재배열 인자인 MBD3과 CHD4는 최근 다능성 유도를 차단한다고 보고되었다(Rais Y et al, 2013). 예를 들어, 염색질 재배열 인자인 MBD3 및 CHD4의 siRNA 억제는 인간 프라임드 줄기 세포를 나이브 상태로 되돌리는 방법의 핵심 구성 요소인 것으로 나타났다. 전사 인자 BRD4 및 공동-인자 JMJD6는 NME7을 억제하고 NME1을 상향-조절한다고 보고되었다(Lui W et al, 2013). 본 발명자들은 상기 인자들이 후기 단계 프라임드 줄기 세포에서보다 나이브 줄기 세포에서 낮은 수준으로 발현된다는 것을 발견했다. 본 발명자들은 NME1 이량체, NME7 또는 NME7-AB 또는 NME7-X1에서 배양된 암 세포에서 상기 4개의 유전자들, MBD3, CHD4, BRD4 및 JMJD6이 자연적으로 억제됨을 관찰했다(도 3).
본 발명자들은 NM23-H1로도 불리는 인간 NME1 이량체, 박테리아 NME1, NME6, NME7-X1 및 NME7-AB가 배아 줄기 세포 및 유도된 다능성 줄기 세포의 성장을 촉진하고, 이들의 분화를 억제하고, 줄기 세포 공여자가 인간인 경우 활성 상태의 X 염색체를 모두 가지고 있으며 숙주 동물에서 기형종을 형성할 수 있는 능력을 가짐으로써 전반적인 유전자 분석에 의해 입증된 바와 같이, 이들을 나이브 상태로 유지한다는 것을 입증하였다.
줄기 세포를 프라임드 상태에서 덜 성숙한 나이브 상태로 되돌릴 수 있는 제제 또는 제제(들)과 세포를 접촉시키면, 또한 다양한 세포 유형을 덜 성숙한 상태로: 체세포를 줄기 세포 또는 전구 세포로, 및 줄기 세포를 나이브 상태로, 되돌릴 수 있음을 나타내는 몇 가지 예가 본원에 제시되었다.
바람직한 구현예에서, 인간 NME7 또는 NME7-AB를 발현하는 형질전환 동물이 생성된다. NME1, 인간 또는 세균 및 NME7이 줄기 세포의 분화를 억제하기 때문에, 형질전환 동물에서 NME 단백질, 바람직하게는 NME7 또는 NME7-항체의 발현 타이밍을 제어할 수 있는 기술을 사용하는 것이 유리할 수 있다. 예를 들어, 동물의 발생 중에 NME7 발현의 잠재적인 문제점을 피하기 위해, 유도성 프로모터 상에 인간 NME7을 갖는 것이 유리할 것이다. 숙주 동물에서 유도가능한 외래 유전자의 발현을 만드는 방법은 당업자에게 공지되어있다. NME7 또는 NME7-AB의 발현은 당 분야에 공지된 형질전환 유전자의 발현을 조절하는 많은 방법 중 임의의 하나를 사용하여 유도할 수 있다.
대안적으로, NME7의 발현 또는 발현 타이밍은 포유동물에 의해 자연적으로 발현될 수 있는 또다른 유전자의 발현에 의해 조절될 수 있다. 예를 들어, NME7 또는 NME7 변이체가 심장과 같은 특정 조직에서 발현되는 것이 바람직할 수 있다. NME7 유전자는 MHC와 같은 심장에서 발현된 단백질의 발현과 동작가능하게 연결되어있다. 이 예에서, NME7의 발현은 MHC 유전자 산물이 발현될 때 및 그 자리에서 턴 오프된다. 유사하게, 인간 NME1, NME6 또는 NME7의 발현이 전립선에서 턴 온되거나 턴 오프되어서 그 발현 위치 및 타이밍이 예를 들어 전립선 특이적 단백질의 발현에 의해 조절되도록 하는 것이 바람직할 수 있다. 유사하게, 비-인간 포유동물에서 인간 NME6 또는 NME7의 발현은 유방 조직에서 발현되는 유전자에 의해 조절될 수 있다. 예를 들어, 형질전환 마우스에서, 인간 NME6 또는 인간 NME7은 프롤락틴 프로모터 또는 유사한 유전자로부터 발현된다. 이러한 방식으로, 부위 특이적 방식으로 인간 NME 단백질의 발현을 유도하거나 억제하는 것이 가능할 것이다.
인간 종양을 접종하고, 및 인간 NME7을 주사한 동물은 전이성 암이 발병했다. 따라서, 인간 NME7 또는 보다 바람직하게는 NME7-AB를 발현하는 형질전환 동물을 제조함으로써 암 전이의 발생을 위한 동물 모델이 생성된다. 최적으로 NME7은 동물이 올바르게 발달할 수 있도록 유도성 프로모터 상에 놓여 있다. 대안으로, 전이 동물 모델, 바람직하게는 설치류는 인간 NME 또는 인간 NME7 또는 NME7-AB를 발현하는 형질전환 동물을 제조함으로써 제조된다. 대안적으로, 동물은 2i 또는 5i에 의해 억제된 키나아제가 유도성 프로모터를 통해 억제되거나, 키나아제를 억제하는 제제가 시험 동물에 투여된 형질전환 동물이다. 전이 동물 모델은 암 발달에 대한 화합물, 생물학적 제제, 약물 등의 효과를 시험할뿐만 아니라 암의 발달 또는 진행의 기초 과학을 연구하는데 사용된다.
인간 조직을 발현하는 동물의 생성
인간 NME1, 박테리아 NME1 또는 인간 NME7, 바람직하게는 NME7-AB를 위한 동물 형질전환이 줄기 세포 또는 전구 세포 또는 초기 중배엽 세포일 수 있는 인간 세포로 이식되거나 접목되는 다른 응용예가 고려되고 있다. 예를 들어 어떤 경우에는 마우스, 돼지, 양, 소 동물 및 영장류와 같이, 심장, 간, 피부 또는 다른 장기에서 인간의 조직을 성장시킬 동물을 생성하는 것이 바람직하다.
그렇게 하기 위한 한 가지 방법은 인간 NME7 또는 인간 NME7-AB를 발현하도록 만든 동물에 인간 줄기 세포를 이식하여 일종의 키메라 동물을 생성하는 것이다. 인간 줄기 세포 또는 전구 세포는 생체외생체내를 포함하여, 발달 중 배반포, 배아 또는 태아 단계에서 동물 발달의 다양한 단계에 이식될 수 있다. NME7이 분화를 억제하기 때문에, NME7 또는 NME7-AB 형질전환 유전자는 그 발현 타이밍을 조절할 수 있는 방법과 관련이 있다. 분화 또는 성숙이 일어나는 것이 바람직한 시간 또는 위치에서 인간 NME7 또는 NME7-AB의 발현이 턴 오프 또는 감소되도록 사용될 수 있는 방법은 당업자에게 공지되어있다. 형질전환 유전자, 바람직하게는 NME7을 유도성 또는 억제성으로 만드는 한가지 방법은 발달 후기에 오로지 발현되는 유전자의 발현에, 그의 발현 또는 억제를 연결시키는 것이다. 상기 경우, NME7 또는 NME7-AB의 발현이 심장 또는 심장 전구 세포에서 발현되는 후기 유전자의 발현에 연결되는 형질전환 동물을 제조하게 된다. 따라서, NME7의 발현 또는 발현 타이밍은 포유동물에 의해 자연적으로 발현될 수 있는 또다른 유전자의 발현에 의해 조절된다. 예를 들어, NME7 또는 NME7 변이체가 심장과 같은 특정 조직에서 발현되는 것이 바람직할 수 있다. NME7에 대한 유전자는 MHC와 같은, 심장에서 발현된 단백질의 발현과 동작가능하게 연결되어있다. 이 경우, NME7의 발현은 MHC 유전자 산물이 발현될 때 또는 발현되는 곳에서 감소되거나 턴 오프된다. 마찬가지로, 인간 NME1, NME6 또는 NME7의 발현이 그의 발현 위치 및 타이밍이 예를 들어 전립선 특이적 단백질의 발현에 의해 조절되도록 전립선에서 턴 온되기를 원할 수 있다. 유사하게, 비-인간 포유동물에서의 인간 NME1 또는 NME7의 발현은 유방 조직에서 발현된 유전자에 의해 조절될 수 있다. 예를 들어, 형질전환 마우스에서, 인간 NME1 또는 인간 NME7은 프롤락틴 프로모터 또는 유사한 유전자에 의해 발현 또는 억제될 수 있다.
이러한 방식으로, 인간 NME7 또는 NME7-AB에 대해 형질전환인 동물은 한 지점까지 성장된 다음, 인간 줄기 또는 전구 세포가 이식될 수 있으며, 여기에서 인간 NME 단백질과의 접촉으로 인해 증식된다. 그 다음, 인간 NME의 발현은 턴 오프되어, 동물의 특정 장기 또는 장기의 일부가 인간 조직으로서 발달된다.
다른 측면에서, 인간에 대해 가까운 전반적인 서열 동일성을 공유하는 임의의 동물 또는 영장류는 종간 상호작용이 발생할 수 있고 따라서 윤리적인 문제가 발생할 수 있으므로 좋은 숙주 동물 후보가 아닐 수도 있다고 고려된다.
본 발명은 인간 NME1, 박테리아 NME1 또는 인간 NME7 또는 NME7-AB에 대해 형질전환된 동물의 많은 응용을 고려한다. 본 발명의 일 양태에서, 인간 줄기 세포 또는 전구 세포는 NME 형질전환 동물 또는 형질전환 동물이 될 생식 세포에 이식된다. NME의 발현은 유도성 또는 억제성일 수 있다. 줄기 세포 또는 전구 세포의 이식 부위와 시기에 따라 최종 수득된 동물은 인간의 심장, 간, 신경 세포 또는 피부를 발현시킬 수 있다.
따라서, 인간 조직은 형질전환 비-인간 포유동물에서 생성될 수 있으며, 포유동물은 생식 세포 또는 체세포에서 인간 MUC1 또는 MUC1* 또는 NME 단백질을 발현하며, 생식 세포 또는 체세포는 재조합 인간 MUC1 또는 MUC1* 또는, 상기 포유동물에 도입된 NME 유전자 서열을 함유하며, 상기 유전자 서열의 발현은 외부 조성물의 도입에 의해, 또는 그의 발현 또는 억제를 숙주 동물의 자연 발생 유전자의 발현 또는 억제에 연결함으로써 유도 또는 억제될 수 있다. 비-인간 포유동물에 대하여 기원이 이질성인 줄기 세포 또는 전구 세포는 형질전환 동물에게 전달되어, 줄기 세포 또는 전구 세포를 증식시키기 위해 유전자가 발현되도록 유도된 다음 이종이식된 줄기 세포로부터 조직을 생성하도록 유전자 발현을 억제한다. 형질전환 유전자의 억제가 수행되는 한 가지 방법은 줄기 세포 또는 전구 세포를 조직 분화 인자와 접촉시키는 것이다. 형질전환 유전자의 억제는 또한 자연적으로 생성된 숙주 조직 분화 인자에 대한 반응으로 포유동물에서 자연적으로 수행된다.
상기 동물은 약물 발견을 위해 사용될 수 있다. 또한 동물을 사용하여 인간 조직 또는 인간 조직의 발달에 대한 화합물, 생물학적 제제 또는 약물의 효과를 측정하는 독성 시험을 위해 사용될 수 있다. 대안적으로, 인간 줄기 세포 또는 전구 세포가 이식된 형질전환 동물은 인간 환자에게 이식하기 위한 인간 조직을 성장시키는데 사용된다. 어떤 경우에는, 이식된 줄기 세포 또는 전구 세포는 형질전환 동물로부터 수확된 인간 조직의 수혜자가 될 환자로부터 유래한 것이다.
일 양태에서, MUC1, MUC1* 또는 NME 단백질 발현은 전달된 줄기 세포 또는 전구 세포의 양이 충분히 많아질 때까지 유도될 수 있다. MUC1, MUC1* 또는 NME 단백질 발현을 억제하는 물질을 숙주 포유동물에 주사함으로써 MUC1, MUC1* 또는 NME 단백질 발현이 정지될 수 있다. 줄기 세포 또는 전구 세포의 집단은 특정 조직 또는 장기 유형에 대한 분화 유도 인자의 마우스에서의 발현과 같은 자연적 방법에 의해 분화되도록 유도될 수 있으며, 또는 화학 물질 또는 단백질 물질이 줄기 세포 또는 전구 세포 전이의 부위에 숙주에 주사되어, 원하는 조직 유형으로 분화되도록 할 수 있다.
내배엽 세포 조직에 대한 유도, 분화/형질전환 제제는 하기 세포 유형: 간, 폐, 췌장, 갑상선 및 장 세포에 대한 하기 제제: 간세포 성장 인자, 온코스타틴-M, 표피 성장 인자, 섬유아세포 성장 인자-4, 염기성-섬유아세포 성장 인자, 인슐린, 트랜스페린, 셀렌산(selenius acid), BSA, 리놀레산, 아스코르베이트 2-포스페이트, VEGF 및 덱사메타손을 포함할 수 있지만, 이에 한정되지 않는다.
중배엽 조직을 위한 유도, 분화/형질전환 제제는 하기 세포 유형: 연골, 뼈, 지방, 근육 및 혈액 세포에 대한 하기 제제: 인슐린, 트랜스페린, 셀레노우스 산(selenous acid), BSA, 리놀레산, TGF-β1, TGF-β3, 아스코르베이트 2-포스페이트, 덱사메타손, β-글리세로포스페이트, 아스코르베이트 2-포스페이트, BMP 및 인도메타신을 포함하지만, 이에 한정되지 않는다.
외배엽 조직을 위한 유도, 분화/형질전환 제제는 하기 세포 유형: 신경 세포, 피부 세포, 뇌 세포 및 눈 세포에 대한 하기 제제: 디부티릴 사이클린 AMP, 이소부틸 메틸크산틴, 인간 상피 성장 인자, 기본 섬유아세포 성장 인자, 섬유아세포 성장 인자-8, 뇌-유도된 신경영양성 인자 및/또는 다른 신경영양성 성장 인자를 포함하지만, 이에 한정되지 않는다.
NME 단백질의 조절 인자 또는 NME 단백질의 다운스트림 효과기는 NME 단백질을 대체할 수 있다
본 연구들은 NME 단백질이 줄기-유사 또는 암-유사 성장을 촉진시키는 기능을 하는 한 가지 방법은 본 명세서에서 MUC1*으로 지칭되는, 주로 PSMGFR 서열로 구성된 MUC1 막관통 단백질의 절단된 형태에 결합시키는 것임을 보여준다. MUC1* 세포외 도메인의 이량화는 체세포, 줄기 세포 및 암세포의 성장 및 탈 분화를 자극하여 이들을 보다 전이성으로 만든다.
NME 단백질이 그 효과를 발휘하는 또다른 방법은 다른 유전자를 자극하거나 억제하기 위해 직접 또는 간접적으로 기능하는 핵으로 수송되는 것이다. OCT4와 SOX2가 MUC1과 그의 절단 효소 MMP16의 프로모터 부위에 결합한다는 것이 이전에 보고된 바있다(Boyer et al, 2005). 같은 연구에서 SOX2와 NANOG가 NME7의 프로모터 부위에 결합한다고 보고했다. 본 발명자들은 이 실험을 토대로 상기 '야마나카' 다능성 인자(Takahashi and Yamanaka, 2006)가 MUC1, 그의 절단 효소 MMP16 및 그의 활성화 리간드 NME7을 상향 조절한다고 결론짓는다. BRD4가 NME7을 억제하는 반면, 그의 공동-인자 JMJD6은 NME1(Thompson et al)을 상향 조절하는 것으로 이전에 보고된 바 있으며, 본 발명자들이 입증한 것은 배아 발생에서 NME7보다 늦게 발현되는 자가-조절 줄기 세포 성장 인자이다. 또다른 연구원들은 최근에 Mbd3 또는 Chd4의 siRNA 억제가 iPS 생성에 대한 저항성을 크게 감소시켰으며(Rais Y et al., 2013 et al.), 줄기 세포를 나이브 상태에서 유지할 수 있다고 보고했다. 여기에 제시된 증거는 NME7이 BRD4 및 JMJD6을 억제하면서 다능성 Mbd3 및 CHD4의 억제제를 억제하는 상호간의 피드백 고리가 있다는 것을 보여준다. 본 발명자들은 나이브 인간 줄기 세포에서 BRD4, JMJD6, Mbd3 및 CHD4의 4가지 인자가 후기의 '프라임드' 줄기 세포에서의 발현과 비교하여 억제되어 있음을 주목했다. 본 발명자들은 또한 마우스 프라임드 줄기 세포를 나이브 상태로 되돌리는 2i 억제제(Gsk3β 및 MEK의 억제제)가 또한, 동일한 4가지 인자 BRD4, JMJD6, Mbd3 및 CHD4를 하향조절한다는 것을 주목한다.
본 발명자들은 또한 NME7이 SOX2(> 150X), NANOG(~ 10X), OCT4(~ 50X), KLF4(4X) 및 MUC1(10X)를 상향 조절한다는 것을 발견했다. 중요하게는, 본 발명자들은 NME7이 CXCR4(~200X)와 E-캐드헤린(CDH1)을 포함한 암 줄기 세포 마커를 상향 조절한다는 것을 나타냈다. 이 여러 증거들은 NME7이 가장 초기의 줄기 세포 성장과 다능성 매개체라는 결론을 내리고, 체세포를 암 상태로 형질전환시키는 것뿐만 아니라 암세포를 보다 전이성 있는 암 줄기 세포로 전환시키는 강력한 요소라고 지적한다.
따라서, 본 발명은 NME7의 발현을 증가시키는 유전자 및 유전자 생성물을 NME7에 대해 대체하는 것을 고려한다. 유사하게, 본 발명은 NME7의 다운스트림 효과기를 NME7에 대해 대체하는 것을 고려한다. 예를 들어, 단독으로 또는 조합하여, 본 발명자들이 MBD3, CHD4, BRD4 또는 JMJD6를 억제하는 제제는 MBD3, CHD4, BRD4 또는 JMJD6을 억제하는 것으로 나타난, NMD7에 대해 본원에 기술된 임의의 방법에서 치환될 수 있다.
줄기 세포-기반 장기 및 조직 생성
본 발명은 비-인간 숙주의 DNA 및 인간 공여자 줄기 세포의 DNA로 구성된 키메라 생물 또는 동물을 생성하기 위해, 비-인간 숙주 동물의 결과물 세포 또는 비-인간 동물의 수정란, 배반포 또는 배아를 사용하여 나이브 상태의 인간 줄기 세포를 생성, 유지 또는 증식시키는 방법을 개시한다. 일부 인간 DNA를 포함하는 키메라 종의 사지, 신경, 혈관, 조직, 장기 또는 상기에서 제조되거나, 또는 상기로부터 분비된 인자는 인간에게 이식되거나, 노화 방지를 포함한 의료적 이익을 위해 인간에게 투여되거나, 및 약물 검사 및 질병 모델링을 포함한 과학 실험을 포함한 여러 용도를 위해 수확될 수 있다.
제1 방법에서, NME 계통의 단백질 또는, MUC1* 성장 인자 수용체를 이량화시키는 제제와 인간 프라임드 상태 줄기 세포를 접촉시킴으로써 인간 나이브 상태 줄기 세포가 생성, 유지 또는 증식된다.
제2 방법에서, 예컨대 iPS 기술의 사용을 통해 체세포가 덜 성숙한 상태로 복귀하도록 유도함으로써 인간 나이브 상태 줄기 세포가 생성, 유지 또는 증식되며, 여기에서 세포는 NME 계통의 단백질, 또는 MUC1* 성장 인자 수용체를 이량화하는 제제의 존재하에 재프로그래밍된다.
제3 방법에서, NME 계통의 단백질, 또는 MUC1* 성장 인자 수용체를 이량화하는 제제의 존재하에 인간 배아, 배반포 또는 수정란으로부터 수득한 세포를 배양함으로써, 인간 나이브 상태 줄기 세포가 생성, 유지 또는 증식된다.
상기 NME 단백질, 또는 MUC1*을 이량화하는 제제는 인간 프라임드 상태 줄기 세포를 나이브 상태로 전환시킨다. 상기 NME 단백질, 또는 MUC1*을 이량화하는 제제는 또한 인간 배아에서 채취한 세포로부터의 나이브 상태 배아 줄기 세포주의 유도를 지원한다. 상기 NME 단백질, 또는 MUC1*을 이량화하는 제제는 나이브 상태 유도된 다능성 줄기 세포주의 생성을 지원하며, 여기에서 분화된 세포가 줄기 세포 상태로 재프로그래밍된다.
바람직한 구현예에서, NME 계통의 단백질은 NME7이다. 보다 더 바람직한 구현예에서, NME 계통의 구성원은 NME7-AB 또는 NME7-X1 또는 다른 이소형태 또는 NME7의 절단물이다. 또다른 구현예에서, NME 계통의 구성원은 NME1로도 알려진 이량체 NM23이다. 또다른 구현예에서, NME 계통의 구성원은 NME6이다. 바람직한 구현예에서, MUC1*를 이량화하는 제제는 MUC1* 세포외 도메인의 PSMGFR 펩타이드에 결합하는 항체이다.
본 발명의 일 양태에서, 인간 세포를 NME1 이량체, NME6 이량체, NME7, NME7-AB 또는 NME7-X1과 접촉시킨 후, 상기 세포를 비-인간 동물의 상실배, 배반포, 배아 또는 태아에 삽입 또는 주입하는 단계를 포함하는 방법에 의해 나이브 상태 인간 줄기 세포가 생성된다. 적어도 부분적으로 인간 기원이고 배반포 또는 배아에 삽입된 인간 줄기 세포로부터 유래된 일부 조직, 장기 또는 기타 신체 부위를 갖는 키메라 동물이 생성된다. 조직, 장기 또는 기타 신체 부위는 완전히 발달되었을때 또는 발달의 임의의 초기 단계에서 숙주 동물로부터 수확된다. 상기 인체 부분에 의해 생성된 조직, 장기 또는 신체 부위 또는 인자는 새로운 장기를 필요로 하거나 또는 숙주 비-인간의 인간 조직 또는 장기에 의해 분비된 인자의 재생 특성을 필요로 하는 인간 수혜자에게 이식되거나 투여된다.
본 발명의 일 양태에서, 비-인간 동물의 세포는 유전적으로 변형되었거나, 예를 들어, 생화학적 억제제로 처리되어, 비-인간 동물의 발달이 특정 조직 또는 장기를 생성할 수 없다. 이러한 양태에서, 키메라 동물은 인간 공여자 줄기 세포로부터 유출되거나 인간 공여자 줄기 세포로부터 현저하게 기여하는 특정 조직 또는 장기를 생성하며 부분적으로 또는 전체적으로 인간일 것이다.
본 발명의 일 양태에서, 공여자 줄기 세포는 비-인간 동물에서 생성된 조직 또는 장기를 필요로 하는 공여자로부터의 것이고, 발달의 일부 단계에서 또는 동물이 성숙한 후, 조직 또는 장기가 수확되어, 공여자 인간에게 이식한다. 본 발명의 다른 양태에서, 상기 공여자 줄기 세포는 상기 키메라 종에서 생성된 조직, 장기 또는 기타 물질의 의도된 수혜자가 아닌 공여자로부터 유래된다. 일 양태에서, 공여자 줄기 세포는 iPS 세포이고, 또다른 양태에서 줄기 세포는 배아 줄기 세포이다.
본 발명의 일 양태에서, 줄기 세포는 NME 단백질을 함유하는 배지에서 배양된다. NME 단백질은 이량체 NME1, 이량체 NME6, NME7, NME7의 이량체 B 도메인, NME7-X1 또는 NME7-AB일 수 있다. 바람직한 구현예에서, NME 단백질은 이량체 NME1이다.
보다 바람직한 구현예에서, NME 단백질은 NME7-X1이다. 보다더 바람직한 구현예에서, NME 단백질은 NME7-AB이다. 일부 경우, PSMGFR 서열의 적어도 15개의 연속적인 아미노산을 포함하는 펩타이드에 결합하는 능력을 갖는 항-MUC1* 항체로 상기 표면을 코팅함으로써 표면에 대한 줄기 세포 부착이 촉진된다. 또다른 경우에, 표면에 대한 줄기 세포 부착은 NME 단백질로 상기 표면을 코팅함으로써 촉진되며, 일부 경우에는 히스티딘-표지되고, 금속-킬레이트-금속 모이어티, 예컨대 니트릴-트리-아세트산-니켈, 일명 NTA-Ni++을 나타내는 표면 상에 코팅될 수 있다. 다른 예에서, 표면에 대한 줄기 세포 부착은 상기 표면을 인테그린 또는 인테그린 단편으로 코팅함으로써 촉진되며, 여기서 인테그린은 비트로넥틴, 피브리넥틴, 콜라겐 등이다. 다른 경우, 표면에 대한 줄기 세포 부착은 상기 표면을 펩타이드, 소분자 또는 중합체로 코팅함으로써 촉진된다. 어떤 경우에는, Rho I 키나아제 억제제가 배양 배지에 첨가되어 표면 부착을 더욱 강화시킨다.
줄기 세포의 생성, 유도 또는 유지는 상기 기술된 방법의 일부 또는 전부에 따라 달성된다. 그러나, 비-인간 줄기 세포의 생성, 유도 또는 유지를 위해, 그의 서열이 비-인간 종의 서열인 NME 단백질과 세포를 접촉시키는 것이 유리할 수 있다. 예를 들어, 다능성을 생성시키거나 유도하거나, 돼지 줄기 세포를 유지하기 위해, 그의 서열이 천연 돼지 NME6, NME1, NME7, NME7-X1 또는 NME7-AB의 서열인 NME 단백질을 사용하는 것이 유리할 수 있다. 표면 부착을 용이하게 하기 위해, MUC1* 세포외 도메인의 PSMGFR 영역의 적어도 15개의 인접한 아미노산을 포함하는 펩타이드에 결합하는 능력을 위해 선택된 항체로 표면을 코팅하는 것이 유리할 수 있으며, 상기 펩타이드의 서열은 돼지 MUC1* 세포외 도메인의 천연 서열이다.
실시예
실시예 1
최소 배지
무혈청 최소 배지 500 mL는 하기 성분을 포함한다:
394mL DMEM/F12, 글루타맥스(GlutaMAX); 100 mL Knockout™ 혈청 대체; 5.0 mL 100x MEM 비-필수 아미노산 용액;
0.9 ㎖ β-머캅토에탄올, 55 mM 스톡.
rho 키나아제 억제제, "Ri" 또는 "ROCi"가 첨가될 때, Stemgent(Cambridge, MA)로부터의 Y27632가 사용 직전에 첨가되어 최종 농도가 10μM이 되었다.
실시예 2
NME 배지에서 줄기 세포를 배양한다.
실시예 1에 기술된 무혈청 최소 배지에, 하기 NME 단백질 중 하나: 바람직하게는 안정한 이량체를 보장하기 위한 S120G 돌연변이를 갖는 8nM(최종 농도)의 이량성 rhNME1(일명, NM23), 8nM 이량성 NME6, 8nM 박테리아 HSP593 재조합 NME1, 4nM NME7AB 또는 4nM NME7-X1을 첨가한다. 줄기 세포는 NME 배지의 현탁액에서 또는 세포 배양 플레이트 상에서 배양될 수 있다. 줄기 세포가 MN-C3과 같은 항-MUC1* 항체로 코팅된 세포 배양 플레이트 상에서 배양되는 경우, Y-26732와 같은 Rho 키나제 억제제가 10uM의 최종농도로 첨가된다.
줄기 세포를 플레이팅하기 적어도 1일 전에 세포 배양 플레이트를 제조하였다. ~12.5 ug/mL의 MN-C3 항-MUC1* 항체를 함유하는 용액으로 세포 배양 플레이트를 코팅하였다. 코팅된 플레이트를 4도에서 하룻밤 동안 배양한 후, 줄기 세포를 사전-세척 단계없이 그들 위에 플레이팅하였다. 줄기 세포는 6-웰 플레이트의 웰당 100,000개 내지 300,000개의 세포를 플레이팅할 때 얻어지는 밀도에 대체로 상응하는 밀도로 플레이팅되었다. Rho 키나아제 억제제가 첨가된 NME 배지에 세포를 현탁한다. 세포를 5% CO2/5% O2 배양기에서 48시간 동안 그대로 배양하였다. 그 후, 세포가 ~80%의 컨플루언시(confluency)에 도달할 때까지 매 24 또는 48시간마다 배지를 교환했다(도 20B). 트립신/EDTA 또는 TryplE를 사용하여 세포를 단일 세포로 해리시켰다. 시작부터 확장하기까지 프로세스를 반복한다.
실시예 3
NME 배지에서의 iPS 생성
-2일(재프로그래밍 전 48시간): 섬유아세포 배지(글루타민, 10% FBS가 함유된 DMEM 고 글루코스) 2ml/웰의 표준 조직 배양-처리된 6-웰 플레이트 상에 섬유아세포를 웰 당 25,000-100,000개의 세포로 시딩하였다. 5% CO2에서 48시간동안 배양한다.
0일: 섬유아세포 배지를 NME 배지로 변경하였다(실시예 2). 표준 프로토콜에 따라 야마나카 인자 또는 톰슨 인자와 같은 마스터 재프로그래밍 인자로 섬유아세포를 형질도입하였다. 원하는 경우, OCT4, SOX2, NANOG 또는 KLF4 및 c-Myc의 발현을 일으키는 핵산을 도입하는 임의의 방법으로 충분할 것이다.
일반적인 방법은 렌티(lenti) 바이러스, 센다이(Sendai) 바이러스, 감마 레트로바이러스 또는 잠자는 미녀(Sleeping Beauty)와 같은 트랜스포손과 같은 비-통합 바이러스 전달 시스템을 사용한다.
1일째: 세포를 최소 배지로 세척하여 바이러스 및 세포 파편을 제거한 후, Rho 키나아제 억제제없이 NME 배지 웰 당 2 mL-4 mL로 대체하였다.
3일째: Rho 키나아제 억제제없이, NME 배지의 웰 당 2 mL-4 mL로 배지를 교환한다.
5일째: Rho 키나아제 억제제없이, NME 배지의 웰 당 2 mL-4 mL로 배지를 교환한다.
6일째: 3.25ug/mL 내지 24ug/mL의 농도(약 12.5ug/mL이 바람직함)로 세포 배양 플레이트 상에 코팅된 MN-C3과 같은 항-MUC1* 항체를 사용하여 세포 배양 플레이트를 제조하고, 항체 코팅된 플레이트 4℃에서 하룻밤 배양한다.
7일째: 이 시기까지 줄기 세포 형태로 변화하는 형질도입 세포를 트립신/EDTA로 해리시키고, 세포 스트레이너(cell strainer)를 통과시킨 후, NME 배지와 Rho 키나아제 억제제(예컨대, 10uM Y-26732)의 MN-C3 코팅된 플레이트 상에 시딩하였다. 재프로그래밍된 세포를 웰 당 5×104 - 1×105로 플레이팅하였다. 이 시점 이후에, 세포를 10uM Y-26732와 같은 Rho 키나아제 억제제가 첨가된 NME 배지에서 배양하고 5% CO2/5% 02에서 첫 48시간동안 손대지않고 그대로 배양하였다.
9일 이후: 10uM Y-26732와 같은 Rho 키나아제 억제제를 통해 동일한 NME 배지를 사용하여 배지를 매일 교체한다.
16일째-21일째: 콜로니를 골라낸 후, 각 클론을 MN-C3로 코팅한 표면에서 첫째로 96-웰 플레이트에서, 그후 24-웰, 12-웰, 6-웰 및 대형 포맷에서 배양한 다음 줄기 세포를 특성화하고, 모든 정상 다능성 유전자, 나이브 유전자를 발현하고, 동물에 이식되고 정상 핵형을 가질 때 기형종을 형성한다는 것이 밝혀졌다. 또한 1일 이후와 동일한 과정을 사용하여 혈액으로부터 iPS 세포가 생성되었다.
도 21의 21A, 21B 및 21C에 도시된 세포에서 신생아 수컷 섬유아세포를 사용하였다. 도 21C에서, 사용된 NME 배지는 4nM NME7-AB를 갖는 최소 배지였다.
실시예 4
*마스터 다능성 조절인자 OCT4, SOX2, KLF4 또는 c-Myc의 부재하에 NME 단백질의 재프로그래밍 능력.
본 실시예에서, 섬유아세포 세포는 재조합 인간 NME1/NM23 이량체, 박테리아 HSP593 NME1 이량체 또는 인간 재조합 NME7-AB가 첨가된 최소 배지에서 배양하였다. 대조군으로서, 섬유아세포를 500 mL에 대해, 445 mL의 DMEM 고 글루코스 베이스 배지, 5 mL GlutaMAX 및 50 mL의 소태아 혈청(FBS)인, 정상적인 배지에서 배양하였다. NME1/NM23 이량체, 박테리아 HSP593 NME1 이량체 또는 NME7-AB를 갖는 최소 배지에서 15-20일 배양 후, RT-PCR은 결과 세포가 줄기 세포 표지 유전자 OCT4 및 NANOG의 발현을 크게 증가시킨다는 것을 보여 주었으며, 도 1을 참조한다. 암 세포와 마찬가지로, BRD4, JMJD6, MBD3 및 CHD4의 발현도 감소했다. 도 2는 염색질 재배열 인자 BRD4, JMJD6, MBD3 및 CHD4를 코딩하는 유전자의 발현에 대한 RT-PCR 측정의 그래프를 도시한다. 도 3은 염색질 재배열 인자 BRD4, JMJD6, MBD3 및 CHD4 및 NME 단백질을 코딩하는 유전자인 다능성 유전자의 발현에 대한 RT-PCR 측정의 그래프를 도시한다. 여기에서 '마이너스(-)ROCi'는 비-부착성이 되어, 표면에서 떠다니는 세포를 지칭한다. 세포의 형태는 또한 완전히 변화하여, 섬유아세포로 더 이상 인식할 수 없으며, 줄기 세포처럼 보인다(도 8-11).
실시예 5
NME7-AB 배양된 인간 줄기 세포는 마우스 상실배의 내부세포괴로 통합된다. 마우스 난은 체외에서 수정되었다. 수정 후 2.5일째에, NME7-AB에서 생성되고 배양된 10개의 인간 줄기 세포가 수정란에 개별적으로 주입되었다. 2.5일은 내부세포괴가 형성되기 전이다. 48시간 후, 4.5일에, 인간의 Tra 1-81을 염색하는 형광 항체로 상실배를 염색하였다. 일부 도면에서 화살표는 키메라 동물의 발달을 나타내는, 내부세포괴에 혼입된 인간 나이브 NME7-AB 세포를 가리킨다. 도 22의 22A-22D, 도 23의 23A-23J 및 도 24의 24A-24J는 인간 NME7-나이브 세포가 2.5일에 주사된 다른 마우스 배반포의 공초점 이미지를 보여주며, 또한 4.5일 배반포의 내부세포괴로의 통합을 나타낸다. 또한, 도 27의 27A-27F, 도 28의 28A-26J, 도 29의 29A-29J 및 도 30의 30A-30J를 참조하면, 마우스 상실배에 2.5일에 주사된 인간 NME7-AB 배양된 나이브 줄기 세포를 나타내며, 4.5일에 48시간후 배반포의 내부세포괴에 집중되는 것으로 밝혀졌다. 대조군으로서, FGF-성장된 프라임드 상태 인간 줄기 세포를 2.5일째에 수정란에 주사하고, 4.5일째에 항-인간 Tra 1-81로 염색하고, 및 영양외배엽이라 불리는 비-내부세포괴 영역을 염색하는 CDX2로 염색하였다. 도 25의 25A-25D도 26의 26A-26H는 상기 프라임드 상태 줄기 세포가 내부세포괴로 통합되지는 않았지만, 영양외배엽에 있음을 보여준다.
실시예 6
NME7-AB 배양된 인간 줄기 세포를 토마토 레드(tomato red) 또는 TDtomato라고 불리는 적색 형광체로 형질감염시켰다. 그후, 상기 형광 인간 나이브 세포를 2.5일 마우스 수정란에 주입하고 4.5일에 영상화하였다. 상실배를 또한 DAPI, 및 영양외배엽을 염색하는 형광 항체로 염색하였다. 도 27의 27A-27F, 도 28의 28A-26J, 도 29의 29A-29J, 및 도 30의 30A-30J는 마우스 상실배 내로 2.5일째에 주사된 인간 NME7-AB 배양된 나이브 줄기 세포를 나타내며, 4.5일째에 48시간 후 배반포의 내부세포괴에 농축되어있음이 밝혀졌다. 화살표는 인간 세포가 내부세포괴로 통합되어 키메라 동물이 형성되었음을 나타낸다.
실시예 7
비-인간 영장류 종 줄기 세포는 bFGF의 부재하에 NME7-AB 배지에서 생성되었다. 붉은털 원숭이 및 필리핀 원숭이 섬유아세포는 NME7-AB를 함유하는 배지에서, 및 bFGF 또는 피더 세포의 부재하에, 코어 다능성 인자로 형질감염시켰다. 이 경우 야마나카 인자 Oct4, Sox2, Klf4 및 c-Myc가 사용되었지만, 유전자 또는 유전자 산물과 같은 다른 다능성 인자로 대체될 수 있었다. 유전자 형질감염후, 5일 내지 7일 사이에, 세포가 표면에서 분리되기 시작했을 때, 세포를 항-MUC1* 항체(이 경우 MN-C3)로 코팅된 표면 상에 재-플레이팅하였다. 필리핀 원숭이에 대해 6일 및 붉은털 원숭이에 대해 14일에 시작하여, 콜로니가 나타나기 시작했다. 도 31의 31A-31F는 야마나카 다능성 인자 OCT4, SOX2, NANOG 및 c-Myc의 형질도입없이 6일동안 NME7-AB에서 배양된 필리핀 원숭이로부터의 섬유아세포를 함유하는 대조군 플레이트의 사진이다. 도 32의 32A-32C, 도 33의 33A-33F 및 도 34의 34A-34F는 야마나카 인자 및 NME7-AB에 의해 재프로그래밍된 필리핀 원숭이로부터의 섬유아세포를 나타낸다. 6일 이후, 신생하는 iPS 콜로니를 항-MUC1* 항체 표면으로 옮기고, 각 클론이 채취되어 확장될 때 약 14-17일까지 계속 확장된다. 우리가 아는 한, 이것은 과학자들이 마우스 또는 인간 피더 세포의 부재하에 비-인간 영장류 iPS 세포를 생성하는데 성공한 최초의 사례이다. 연구원들은 비-인간 영장류 줄기 세포를 배양하는데 극도의 어려움을 겪고 있다. 그들은 자발적으로 분화하며, FGF-기반의 배지에서 잘 자라지 않는다. 도 35의 35A-35D, 도 36의 36A-36D, 도 37의 37A-37B 및 도 38의 38A-38H에 도시된 바와 같이, 비-인간 영장류 세포를 NME7-AB 배지로 옮길 때 이러한 모든 문제를 극복했다. MN-C3 항체 표면 또는 MEF 상에서, 무혈청, FGF-없는 NME7-AB 배지에서의 야마나카 인자 또는 톰슨 인자의 형질도입에 의한 붉은털 원숭이 iPS 세포의 생성은 도 39의 39A-39C, 도 40의 40A-40C, 도 41의 41A-41D 및 도 42의 42A-42B에 다양한 단계로 도시되어 있다. 섬유아세포가 MN-C2 항체 표면에서 또는 MEF 상에서 재프로그래밍되었는지는 중요하지 않았지만, 표면이 항-MUC1* 항체 표면일 때 더 많은 콜로니가 생성되었다.
실시예 8
영장류 종 배아 줄기 세포가 증식하여, NME7-AB 배지에서 유지된다. 콜로니를 채취한 후, MN-C3 항체 코팅 표면 또는 MEF 상에 다시 플레이팅하고, NME7-AB를 함유하는 무혈청 배지에서 2nM 내지 32nM의 농도로 무한히 연속적으로 계대 배양할 수 있었으며, 여기에서 4nM에서 최상으로 작업하였다. 도 43의 43A-43E, 도 44의 44A-44F, 도 45의 45A-45H, 도 46의 46A-46H, 도 47의 47A-47G 및 도 48의 48A-48D를 참조한다.
본원에 인용된 모든 문헌은 그 전체가 참고문헌으로 인용된다.
참고문헌 목록
Figure pat00123
Figure pat00124
Figure pat00125
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Ala Pro Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser 145 150 155 160 Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His 165 170 175 Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala 180 185 190 Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro 195 200 205 Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr 210 215 220 Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser 225 230 235 240 Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His 245 250 255 Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala 260 265 270 Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro 275 280 285 Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr 290 295 300 Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser 305 310 315 320 Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His 325 330 335 Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala 340 345 350 Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro 355 360 365 Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr 370 375 380 Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser 385 390 395 400 Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His 405 410 415 Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala 420 425 430 Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro 435 440 445 Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr 450 455 460 Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser 465 470 475 480 Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His 485 490 495 Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala 500 505 510 Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr Arg Pro Ala Pro 515 520 525 Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser Ala Pro Asp Thr 530 535 540 Arg Pro Ala Pro Gly Ser Thr Ala Pro Pro Ala His Gly Val Thr Ser 545 550 555 560 Ala Pro 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nucleotide sequence <400> 12 gagatcctga gacaatgaat catagtgaaa gattcgtttt cattgcagag tggtatgatc 60 caaatgcttc acttcttcga cgttatgagc ttttatttta cccaggggat ggatctgttg 120 aaatgcatga tgtaaagaat catcgcacct ttttaaagcg gaccaaatat gataacctgc 180 acttggaaga tttatttata ggcaacaaag tgaatgtctt ttctcgacaa ctggtattaa 240 ttgactatgg ggatcaatat acagctcgcc agctgggcag taggaaagaa aaaacgctag 300 ccctaattaa accagatgca atatcaaagg ctggagaaat aattgaaata ataaacaaag 360 ctggatttac tataaccaaa ctcaaaatga tgatgctttc aaggaaagaa gcattggatt 420 ttcatgtaga tcaccagtca agaccctttt tcaatgagct gatccagttt attacaactg 480 gtcctattat tgccatggag attttaagag atgatgctat atgtgaatgg aaaagactgc 540 tgggacctgc aaactctgga gtggcacgca cagatgcttc tgaaagcatt agagccctct 600 ttggaacaga tggcataaga aatgcagcgc atggccctga ttcttttgct tctgcggcca 660 gagaaatgga gttgtttttt ccttcaagtg gaggttgtgg gccggcaaac actgctaaat 720 ttactaattg tacctgttgc attgttaaac cccatgctgt cagtgaaggt atgttgaata 780 cactatattc agtacatttt gttaatagga gagcaatgtt tattttcttg atgtacttta 840 tgtatagaaa ataa 854 <210> 13 <211> 283 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> NME7 amino acid sequence <400> 13 Asp Pro Glu Thr Met Asn His Ser Glu Arg Phe Val Phe Ile Ala Glu 1 5 10 15 Trp Tyr Asp Pro Asn Ala Ser Leu Leu Arg Arg Tyr Glu Leu Leu Phe 20 25 30 Tyr Pro Gly Asp Gly Ser Val Glu Met His Asp Val Lys Asn His Arg 35 40 45 Thr Phe Leu Lys Arg Thr Lys Tyr Asp Asn Leu His Leu Glu Asp Leu 50 55 60 Phe Ile Gly Asn Lys Val Asn Val Phe Ser Arg Gln Leu Val Leu Ile 65 70 75 80 Asp Tyr Gly Asp Gln Tyr Thr Ala Arg Gln Leu Gly Ser Arg Lys Glu 85 90 95 Lys Thr Leu Ala Leu Ile Lys Pro Asp Ala Ile Ser Lys Ala Gly Glu 100 105 110 Ile Ile Glu Ile Ile Asn Lys Ala Gly Phe Thr Ile Thr Lys Leu Lys 115 120 125 Met Met Met Leu Ser Arg Lys Glu Ala Leu Asp Phe His Val Asp His 130 135 140 Gln Ser Arg Pro Phe Phe Asn Glu Leu Ile Gln Phe Ile Thr Thr Gly 145 150 155 160 Pro Ile Ile Ala Met Glu Ile Leu Arg Asp Asp Ala Ile Cys Glu Trp 165 170 175 Lys Arg Leu Leu Gly Pro Ala Asn Ser Gly Val Ala Arg Thr Asp Ala 180 185 190 Ser Glu Ser Ile Arg Ala Leu Phe Gly Thr Asp Gly Ile Arg Asn Ala 195 200 205 Ala His Gly Pro Asp Ser Phe Ala Ser Ala Ala Arg Glu Met Glu Leu 210 215 220 Phe Phe Pro Ser Ser Gly Gly Cys Gly Pro Ala Asn Thr Ala Lys Phe 225 230 235 240 Thr Asn Cys Thr Cys Cys Ile Val Lys Pro His Ala Val Ser Glu Gly 245 250 255 Met Leu Asn Thr Leu Tyr Ser Val His Phe Val Asn Arg Arg Ala Met 260 265 270 Phe Ile Phe Leu Met Tyr Phe Met Tyr Arg Lys 275 280 <210> 14 <211> 534 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> NM23-H1 nucleotide sequence <400> 14 atggtgctac tgtctacttt agggatcgtc tttcaaggcg aggggcctcc tatctcaagc 60 tgtgatacag gaaccatggc caactgtgag cgtaccttca ttgcgatcaa accagatggg 120 gtccagcggg gtcttgtggg agagattatc aagcgttttg agcagaaagg attccgcctt 180 gttggtctga aattcatgca agcttccgaa gatcttctca aggaacacta cgttgacctg 240 aaggaccgtc cattctttgc cggcctggtg aaatacatgc actcagggcc ggtagttgcc 300 atggtctggg aggggctgaa tgtggtgaag acgggccgag tcatgctcgg ggagaccaac 360 cctgcagact ccaagcctgg gaccatccgt ggagacttct gcatacaagt tggcaggaac 420 attatacatg gcagtgattc tgtggagagt gcagagaagg agatcggctt gtggtttcac 480 cctgaggaac tggtagatta cacgagctgt gctcagaact ggatctatga atga 534 <210> 15 <211> 177 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> NM23-H1 describes amino acid sequence <400> 15 Met Val Leu Leu Ser Thr Leu Gly Ile Val Phe Gln Gly Glu Gly Pro 1 5 10 15 Pro Ile Ser Ser Cys Asp Thr Gly Thr Met Ala Asn Cys Glu Arg Thr 20 25 30 Phe Ile Ala Ile Lys Pro Asp Gly Val Gln Arg Gly Leu Val Gly Glu 35 40 45 Ile Ile Lys Arg Phe Glu Gln Lys Gly Phe Arg Leu Val Gly Leu Lys 50 55 60 Phe Met Gln Ala Ser Glu Asp Leu Leu Lys Glu His Tyr Val Asp Leu 65 70 75 80 Lys Asp Arg Pro Phe Phe Ala Gly Leu Val Lys Tyr Met His Ser Gly 85 90 95 Pro Val Val Ala Met Val Trp Glu Gly Leu Asn Val Val Lys Thr Gly 100 105 110 Arg Val Met Leu Gly Glu Thr Asn Pro Ala Asp Ser Lys Pro Gly Thr 115 120 125 Ile Arg Gly Asp Phe Cys Ile Gln Val Gly Arg Asn Ile Ile His Gly 130 135 140 Ser Asp Ser 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<400> 17 Met Val Leu Leu Ser Thr Leu Gly Ile Val Phe Gln Gly Glu Gly Pro 1 5 10 15 Pro Ile Ser Ser Cys Asp Thr Gly Thr Met Ala Asn Cys Glu Arg Thr 20 25 30 Phe Ile Ala Ile Lys Pro Asp Gly Val Gln Arg Gly Leu Val Gly Glu 35 40 45 Ile Ile Lys Arg Phe Glu Gln Lys Gly Phe Arg Leu Val Gly Leu Lys 50 55 60 Phe Met Gln Ala Ser Glu Asp Leu Leu Lys Glu His Tyr Val Asp Leu 65 70 75 80 Lys Asp Arg Pro Phe Phe Ala Gly Leu Val Lys Tyr Met His Ser Gly 85 90 95 Pro Val Val Ala Met Val Trp Glu Gly Leu Asn Val Val Lys Thr Gly 100 105 110 Arg Val Met Leu Gly Glu Thr Asn Pro Ala Asp Ser Lys Pro Gly Thr 115 120 125 Ile Arg Gly Asp Phe Cys Ile Gln Val Gly Arg Asn Ile Ile His Gly 130 135 140 Gly Asp Ser Val Glu Ser Ala Glu Lys Glu Ile Gly Leu Trp Phe His 145 150 155 160 Pro Glu Glu Leu Val Asp Tyr Thr Ser Cys Ala Gln Asn Trp Ile Tyr 165 170 175 Glu <210> 18 <211> 459 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> NM23-H2 nucleotide sequence <400> 18 atggccaacc tggagcgcac cttcatcgcc atcaagccgg acggcgtgca 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ggcaccgatg gtatccgtaa tgcagcacat ggtccggact cattcgcatc ggcagctcgt 540 gaaatggaac tgtttttccc gagctctggc ggttgcggtc cggcaaacac cgccaaattt 600 accaattgta cgtgctgtat tgtcaaaccg cacgcagtgt cagaaggcct gctgggtaaa 660 attctgatgg caatccgtga tgctggcttt gaaatctcgg ccatgcagat gttcaacatg 720 gaccgcgtta acgtcgaaga attctacgaa gtttacaaag gcgtggttac cgaatatcac 780 gatatggtta cggaaatgta ctccggtccg tgcgtcgcga tggaaattca gcaaaacaat 840 gccaccaaaa cgtttcgtga attctgtggt ccggcagatc cggaaatcgc acgtcatctg 900 cgtccgggta ccctgcgcgc aatttttggt aaaacgaaaa tccagaacgc tgtgcactgt 960 accgatctgc cggaagacgg tctgctggaa gttcaatact ttttcaaaat tctggataat 1020 tga 1023 <210> 21 <211> 340 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Human NM23-H7-2 sequence optimized for E. coli expression <400> 21 Met His Asp Val Lys Asn His Arg Thr Phe Leu Lys Arg Thr Lys Tyr 1 5 10 15 Asp Asn Leu His Leu Glu Asp Leu Phe Ile Gly Asn Lys Val Asn Val 20 25 30 Phe Ser Arg Gln Leu Val Leu Ile Asp Tyr Gly Asp Gln Tyr Thr Ala 35 40 45 Arg 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180 tttattggca acaaagtcaa tgtgttctct cgtcagctgg tgctgatcga ttatggcgac 240 cagtacaccg cgcgtcaact gggtagtcgc aaagaaaaaa cgctggccct gattaaaccg 300 gatgcaatct ccaaagctgg cgaaattatc gaaattatca acaaagcggg tttcaccatc 360 acgaaactga aaatgatgat gctgagccgt aaagaagccc tggattttca tgtcgaccac 420 cagtctcgcc cgtttttcaa tgaactgatt caattcatca ccacgggtcc gattatcgca 480 atggaaattc tgcgtgatga cgctatctgc gaatggaaac gcctgctggg cccggcaaac 540 tcaggtgttg cgcgtaccga tgccagtgaa tccattcgcg ctctgtttgg caccgatggt 600 atccgtaatg cagcacatgg tccggactca ttcgcatcgg cagctcgtga aatggaactg 660 tttttcccga gctctggcgg ttgcggtccg gcaaacaccg ccaaatttac ctga 714 <210> 49 <211> 237 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Human NME7-A3 sequence optimized for E. coli expression <400> 49 Met Asn His Ser Glu Arg Phe Val Phe Ile Ala Glu Trp Tyr Asp Pro 1 5 10 15 Asn Ala Ser Leu Leu Arg Arg Tyr Glu Leu Leu Phe Tyr Pro Gly Asp 20 25 30 Gly Ser Val Glu Met His Asp Val Lys Asn His Arg Thr Phe Leu Lys 35 40 45 Arg Thr Lys Tyr Asp 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tgctgtattg tcaaaccgca cgcagtgtca 480 gaaggcctgc tgggtaaaat tctgatggca atccgtgatg ctggctttga aatctcggcc 540 atgcagatgt tcaacatgga ccgcgttaac gtcgaagaat tctacgaagt ttacaaaggc 600 gtggttaccg aatatcacga tatggttacg gaaatgtact ccggtccgtg cgtcgcgatg 660 gaaattcagc aaaacaatgc caccaaaacg tttcgtgaat tctgtggtcc ggcagatccg 720 gaaatcgcac gtcatctgcg tccgggtacc ctgcgcgcaa tttttggtaa aacgaaaatc 780 cagaacgctg tgcactgtac cgatctgccg gaagacggtc tgctggaagt tcaatacttt 840 ttctga 846 <210> 61 <211> 281 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Human NME7-AB1 sequence optimized for E. coli expression <400> 61 Met Glu Lys Thr Leu Ala Leu Ile Lys Pro Asp Ala Ile Ser Lys Ala 1 5 10 15 Gly Glu Ile Ile Glu Ile Ile Asn Lys Ala Gly Phe Thr Ile Thr Lys 20 25 30 Leu Lys Met Met Met Leu Ser Arg Lys Glu Ala Leu Asp Phe His Val 35 40 45 Asp His Gln Ser Arg Pro Phe Phe Asn Glu Leu Ile Gln Phe Ile Thr 50 55 60 Thr Gly Pro Ile Ile Ala Met Glu Ile Leu Arg Asp Asp Ala Ile Cys 65 70 75 80 Glu Trp Lys Arg Leu Leu Gly 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Mouse NME6 <400> 62 atgacctcca tcttgcgaag tccccaagct cttcagctca cactagccct gatcaagcct 60 gatgcagttg cccacccact gatcctggag gctgttcatc agcagattct gagcaacaag 120 ttcctcattg tacgaacgag ggaactgcag tggaagctgg aggactgccg gaggttttac 180 cgagagcatg aagggcgttt tttctatcag cggctggtgg agttcatgac aagtgggcca 240 atccgagcct atatccttgc ccacaaagat gccatccaac tttggaggac actgatggga 300 cccaccagag tatttcgagc acgctatata gccccagatt caattcgtgg aagtttgggc 360 ctcactgaca cccgaaatac tacccatggc tcagactccg tggtttccgc cagcagagag 420 attgcagcct tcttccctga cttcagtgaa cagcgctggt atgaggagga ggaaccccag 480 ctgcggtgtg gtcctgtgca ctacagtcca gaggaaggta tccactgtgc agctgaaaca 540 ggaggccaca aacaacctaa caaaacctag 570 <210> 63 <211> 189 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Mouse NME6 <400> 63 Met Thr Ser Ile Leu Arg Ser Pro Gln Ala Leu Gln Leu Thr Leu Ala 1 5 10 15 Leu Ile Lys Pro Asp Ala Val Ala His Pro Leu Ile Leu Glu Ala Val 20 25 30 His Gln Gln Ile Leu Ser Asn Lys Phe Leu Ile Val Arg Thr Arg Glu 35 40 45 Leu Gln 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tggttcggac 420 tctgtggttt cagccagcag agagattgca gccttcttcc ctgacttcag tgaacagcgc 480 tggtatgagg aggaagagcc ccagttgcgc tgtggccctg tgtga 525 <210> 67 <211> 174 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Human NME6 1 <400> 67 Met Thr Gln Asn Leu Gly Ser Glu Met Ala Ser Ile Leu Arg Ser Pro 1 5 10 15 Gln Ala Leu Gln Leu Thr Leu Ala Leu Ile Lys Pro Asp Ala Val Ala 20 25 30 His Pro Leu Ile Leu Glu Ala Val His Gln Gln Ile Leu Ser Asn Lys 35 40 45 Phe Leu Ile Val Arg Met Arg Glu Leu Leu Trp Arg Lys Glu Asp Cys 50 55 60 Gln Arg Phe Tyr Arg Glu His Glu Gly Arg Phe Phe Tyr Gln Arg Leu 65 70 75 80 Val Glu Phe Met Ala Ser Gly Pro Ile Arg Ala Tyr Ile Leu Ala His 85 90 95 Lys Asp Ala Ile Gln Leu Trp Arg Thr Leu Met Gly Pro Thr Arg Val 100 105 110 Phe Arg Ala Arg His Val Ala Pro Asp Ser Ile Arg Gly Ser Phe Gly 115 120 125 Leu Thr Asp Thr Arg Asn Thr Thr His Gly Ser Asp Ser Val Val Ser 130 135 140 Ala Ser Arg Glu Ile Ala Ala Phe Phe Pro Asp Phe Ser Glu Gln Arg 145 150 155 160 Trp Tyr Glu Glu Glu 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NME6 sequence optimized for E. coli expression <400> 73 Met Thr Gln Asn Leu Gly Ser Glu Met Ala Ser Ile Leu Arg Ser Pro 1 5 10 15 Gln Ala Leu Gln Leu Thr Leu Ala Leu Ile Lys Pro Asp Ala Val Ala 20 25 30 His Pro Leu Ile Leu Glu Ala Val His Gln Gln Ile Leu Ser Asn Lys 35 40 45 Phe Leu Ile Val Arg Met Arg Glu Leu Leu Trp Arg Lys Glu Asp Cys 50 55 60 Gln Arg Phe Tyr Arg Glu His Glu Gly Arg Phe Phe Tyr Gln Arg Leu 65 70 75 80 Val Glu Phe Met Ala Ser Gly Pro Ile Arg Ala Tyr Ile Leu Ala His 85 90 95 Lys Asp Ala Ile Gln Leu Trp Arg Thr Leu Met Gly Pro Thr Arg Val 100 105 110 Phe Arg Ala Arg His Val Ala Pro Asp Ser Ile Arg Gly Ser Phe Gly 115 120 125 Leu Thr Asp Thr Arg Asn Thr Thr His Gly Ser Asp Ser Val Val Ser 130 135 140 Ala Ser Arg Glu Ile Ala Ala Phe Phe Pro Asp Phe Ser Glu Gln Arg 145 150 155 160 Trp Tyr Glu Glu Glu Glu Pro Gln Leu Arg Cys Gly Pro Val Cys Tyr 165 170 175 Ser Pro Glu Gly Gly Val His Tyr Val Ala Gly Thr Gly Gly Leu Gly 180 185 190 Pro Ala <210> 74 <211> 525 <212> DNA <213> 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ctggttgaat tcatggcctc tggtccgatt cgcgcatata tcctggctca caaagatgcg 240 attcagctgt ggcgtaccct gatgggtccg acgcgcgtct ttcgtgcacg tcatgtggca 300 ccggactcaa tccgtggctc gttcggtctg accgatacgc gcaataccac gcacggtagc 360 gactctgttg ttagtgcgtc ccgtgaaatc gcggcctttt tcccggactt ctccgaacag 420 cgttggtacg aagaagaaga accgcaactg cgctgtggcc cggtctga 468 <210> 77 <211> 155 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Human NME6 2 sequence optimized for E. coli expression <400> 77 Met Leu Thr Leu Ala Leu Ile Lys Pro Asp Ala Val Ala His Pro Leu 1 5 10 15 Ile Leu Glu Ala Val His Gln Gln Ile Leu Ser Asn Lys Phe Leu Ile 20 25 30 Val Arg Met Arg Glu Leu Leu Trp Arg Lys Glu Asp Cys Gln Arg Phe 35 40 45 Tyr Arg Glu His Glu Gly Arg Phe Phe Tyr Gln Arg Leu Val Glu Phe 50 55 60 Met Ala Ser Gly Pro Ile Arg Ala Tyr Ile Leu Ala His Lys Asp Ala 65 70 75 80 Ile Gln Leu Trp Arg Thr Leu Met Gly Pro Thr Arg Val Phe Arg Ala 85 90 95 Arg His Val Ala Pro Asp Ser Ile Arg Gly Ser Phe Gly Leu Thr Asp 100 105 110 Thr Arg Asn 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Ser Val Pro Ser Ser Glu Thr Ala Pro Thr Ala Ala Ser His Ser Thr 385 390 395 400 Arg Thr Ala Ala Ala Ser Thr Ser Pro Ser Thr Ala Leu Ser Thr Ala 405 410 415 Ser His Pro Lys Thr Ser Gln Gln Leu Ser Val Gln Val Ser Leu Phe 420 425 430 Phe Leu Ser Phe Arg Ile Thr Asn Leu Gln Phe Asn Ser Ser Leu Glu 435 440 445 Asn Pro Gln Thr Ser Tyr Tyr Gln Glu Leu Gln Arg Ser Ile Leu Asp 450 455 460 Val Ile Leu Gln Thr Tyr Lys Gln Arg Asp Phe Leu Gly Leu Ser Glu 465 470 475 480 Ile Lys Phe Arg Pro Gly Ser Val Leu Val Asp Leu Thr Leu Ala Phe 485 490 495 Arg Glu Gly Thr Thr Ala Glu Leu Val Lys Ala Gln Phe Ser Gln Leu 500 505 510 Glu Ala His Ala Ala Asn Tyr Ser Leu Thr Ile Ser Gly Val Ser Val 515 520 525 Arg Asp Ala Gln Phe Pro Ser Ser Ala Pro Ser Ala Ser Gly Val Pro 530 535 540 Gly Trp Gly Ile Ala Leu Leu Val Leu Val Cys Val Leu Val Ala Leu 545 550 555 560 Ala Ile Ile Tyr Leu Ile Ala Leu Val Val Cys Gln Cys Gly Arg Lys 565 570 575 Lys Cys Glu Gln Leu Asp Ile Phe Pro Thr Leu Gly Ala Tyr His Pro 580 585 590 Met Ser Glu Tyr Ser Ala Tyr His Thr His Gly Arg Phe Val Pro Pro 595 600 605 Gly Ser Thr Lys Arg Ser Pro Tyr Glu Glu Val Ser Ala Gly Asn Gly 610 615 620 Gly Ser Asn Leu Ser Tyr Thr Asn Leu Ala Ala Thr Ser Ala Asn Leu 625 630 635 640

Claims (16)

  1. 비-인간 동물 숙주에서 인간 조직 또는 장기를 생성시키는 방법으로서,
    (i) 인간 나이브 상태 줄기세포를 비-인간 동물 숙주의 수정란, 상실배, 배반포, 배아 또는 발생중 태아에 주입하여, 키메라 동물이 생성되도록 하는 단계;
    (ii) 키메라 동물의 인간 조직 또는 세포에 의해 분비되거나 이로 제조된 인간 조직, 장기, 세포 또는 인자를 수확하는 단계;를 포함하고,
    상기 나이브 상태 줄기세포는 NME7, NME7-AB, NME7-X1, NME6 및 이량성 NME1로 이루어진 군으로부터 선택된 하나 이상의 NME 단백질, 또는 2i 억제제를 분리된 인간 줄기세포에 처리하여 생성된 나이브 상태 줄기세포인 것인, 방법.
  2. 제1항에 있어서, 상기 나이브 줄기 세포는 NME7, NME7-AB, NME6, NME7-X1 또는 이량성 NME1을 함유하는 배지에서 재프로그래밍된 iPS 세포인, 방법.
  3. 제1항에 있어서, 상기 나이브 줄기 세포는 NME7, NME7-AB, NME6, NME7-X1 또는 이량성 NME1을 함유하는 배지에서 배양된 배아 줄기 세포인, 방법..
  4. 제1항에 있어서, 상기 배반포 또는 배아의 비-인간 세포가 유전적으로 변형된, 방법.
  5. 제4항에 있어서, 상기 유전적 변형으로 인해 특정 조직 또는 장기를 생성할 수 없는 숙주 동물이 생성되는, 방법.
  6. 제1항에 있어서, 줄기 세포를 나이브 상태로 유지하거나, 프라임드 줄기 세포를 나이브 상태로 되돌리는 제제가 NME 단백질 또는 2i 억제제인, 방법.
  7. 제6항에 있어서, 상기 NME 단백질은 NME1 이량체, NME7 단량체, NME7-AB, NME6 이량체 또는 박테리아 NME인, 방법.
  8. 제1항에 있어서, 비-인간 동물은 설치류, 돼지, 소, 양 또는 영장류인, 방법.
  9. 제8항에 있어서, 상기 설치류는 마우스 또는 래트인, 방법.
  10. 제2항에 있어서, 상기 NME 단백질이 단일 성장 인자로서 무혈청 배지내에 존재하는, 방법.
  11. 제1항에 있어서, 상기 비-인간 동물 숙주는 생성되는 줄기 세포의 종의 천연 서열과 상동인 서열을 갖는 NME 단백질을 발현하는, 방법.
  12. 제11항에 있어서, 상기 NME 단백질은 NME7, NME7-AB, NME7-X1 또는 이량성 NME1 또는 NME6인, 방법.
  13. 제12항에 있어서, 상기 NME 단백질이 NME7인, 방법.
  14. 제11항에 있어서, 상기 NME 단백질은 생성되는 줄기 세포의 종의 천연 NME 단백질 서열과 적어도 45%, 50%, 55%, 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 또는 95% 상동인, 방법.
  15. 제14항에 있어서, 상기 NME 단백질은 생성되는 줄기 세포의 종의 천연 서열과 적어도 60% 상동인, 방법.
  16. 제14항에 있어서, 상기 NME 단백질은 생성되는 줄기 세포의 종의 천연 서열과 적어도 70% 상동인, 방법.
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