KR20210036433A - Method of producing seed potatoe using red and blue LED of low light intensity as light source - Google Patents

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KR20210036433A
KR20210036433A KR1020190117936A KR20190117936A KR20210036433A KR 20210036433 A KR20210036433 A KR 20210036433A KR 1020190117936 A KR1020190117936 A KR 1020190117936A KR 20190117936 A KR20190117936 A KR 20190117936A KR 20210036433 A KR20210036433 A KR 20210036433A
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Abstract

A method for increasing the productivity of direct planting microtuber potato seeds is presented. According to the method of the present invention, by mixing red and blue LED light sources and irradiating with a low light intensity during tissue culture of potato stems, the growth of potato stems is improved, and the welfare formation rate is increased, so that a large amount of microtuber potato seeds are finally produced.

Description

저광도의 적색 및 청색 LED를 광원으로 이용하는 마이크로튜버 감자 종자의 생산방법 {Method of producing seed potatoe using red and blue LED of low light intensity as light source}{Method of producing seed potatoe using red and blue LED of low light intensity as light source}

본 발명은 마이크로튜버 감자 종자의 생산방법에 관한 것으로, 보다 구체적으로는 사이즈가 큰 마이크로튜버 감자 종자를 다량 생산할 수 있는 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a method for producing microtuber potato seeds, and more particularly, to a method for producing large amounts of microtuber potato seeds having a large size.

감자는 생육기간이 짧고 단위 면적당 생산량이 비교적 높으며 환경적응성도 강하기 때문에 세계적으로 벼, 밀가루, 옥수수 다음으로 많이 재배되는 세계 4대 식량작물 중의 하나이다. 감자는 국가 별로 주식으로 이용하기도 하고 여러 가공 제품을 만드는데 주로 이용하기도 하는데, 우리나라에서 감자의 소비는 더욱 증가하는 추세에 있다.Potatoes are one of the world's four largest food crops, followed by rice, wheat, and corn because of their short growing period, relatively high production per unit area, and strong environmental adaptability. Potatoes are used as a staple food in each country and mainly used to make various processed products, but the consumption of potatoes in Korea is on the rise.

감자는 진정 종자 또는 영양번식체로 번식할 수 있는데 일반적으로는 영양번식에 의한 방법이 주를 이루고 있다. 영양번식에 의한 감자 생산시 무병 우량 씨감자를 선택하는 것이 중요하며, 농가에 공급하는 보급종 씨감자는 이와 같이 바이러스 등 병에 걸리지 않은 무병 건전서여야 한다.Potatoes can be truly propagated by seeds or vegetative propagation, but in general, the method by vegetative propagation is dominant. When producing potatoes by nutrient breeding, it is important to select disease-free and superior seed potatoes, and the seed potatoes supplied to farms must be disease-free, disease-free, such as viruses.

씨감자는 보통 조직 배양 감자종서(무균 인공 씨감자)를 하우스에서 상토 또는 수경 재배에 의해 소형의 씨감자를 생산하여 하우스에서 망실재배를 3년 정도 시행한 후 고랭지에서 2회 정도 노지재배 하여 농가에 공급하고 있다. 이 같은 체계에 의하면 조직배양한 감자 종서로부터 농가에 공급하는 보급용 씨감자를 생산하는데 5-7년 정도 소요된다. 이와 같이 장시간이 필요한 이유는 최초 조직배양 감자종서를 생산하는데 많은 경비와 시간이 들고 대량으로 생산하는 시스템이 정립되지 않아 여러 번의 증식과정이 필요하기 때문이다. 따라서, 장시간이 소요되는 만큼 토양이나 환경에서 오는 바이러스 감염율이 높아질 우려가 있다.Seed potatoes usually produce small-sized seed potatoes by cultivating tissue-cultivated potato seeds (sterile artificial seed potatoes) on top soil or hydroponics in a house. have. According to this system, it takes about 5-7 years to produce seed potatoes for supply to farmers from tissue-cultivated potato seeds. The reason why a long time is necessary is that it takes a lot of cost and time to produce the first tissue cultured potato seeds, and a system for mass production is not established, requiring several proliferation processes. Therefore, as it takes a long time, there is a concern that the rate of virus infection coming from the soil or environment increases.

한편, 바이오리액터 배양기를 이용한 무병 씨감자의 대량 생산방법은 수백 리터 규모의 액체 배지를 배양기에 넣어 배양체를 대량으로 생산하는데 유리한 면이 있다. 하지만 이 배양법은 배양기술이 복잡하고 시설비가 많이 들며, 미니튜버 사이즈의 괴경을 확보하기 위한 추가적인 식재 과정이 필요하다. 또한, 배양체를 대량으로 생산하는과정 중 오염이 발생할 경우 배양기 내의 전체 배양체가 오염될 우려가 있다.On the other hand, the method for mass production of disease-free seed potatoes using a bioreactor incubator has an advantage in mass production of a culture medium by putting a liquid medium of several hundred liters in the incubator. However, this cultivation method requires a complex cultivation technique, high facility cost, and requires an additional planting process to secure tubers the size of a mini tuber. In addition, if contamination occurs during the process of mass production of the culture medium, there is a concern that the entire culture medium in the incubator may be contaminated.

바이오리액터를 이용하지 않는 기내 마이크로튜버 배양을 통한 씨감자 생산 방법은 좁은 공간에서도 원하는 때에 무병 씨감자를 연중 생산 가능한 장점이 있다. 그러나, 이 방법은 아직까지 양액소괴경이나 경삽소괴경을 통한 씨감자 생산방법처럼 산업화되지 못하였는데, 이는 기내에서 생산되는 마이크로튜버의 사이즈가 너무 작거나 품질이 좋지 않아 상업화 씨감자처럼 직파가 불가능하기 때문이었다. 또한, 다소 큰 사이즈의 마이크로튜버가 생산된다 하더라도 수율이 낮아 대량 생산하기 어려운 문제가 있었다.The method of producing seed potatoes through in-flight microtuber cultivation without using a bioreactor has the advantage of being able to produce disease-free seed potatoes year-round when desired even in a small space. However, this method has not yet been industrialized like the method of producing seed potatoes through nutrient solution small tubers or small small tubers. This is because the size of the microtubers produced in-flight is too small or the quality is poor, so direct selling like commercialized seed potatoes is impossible. Was. In addition, even if a rather large-sized microtuber is produced, there is a problem that it is difficult to mass-produce because the yield is low.

본 발명은 이와 같은 문제를 해결하기 위하여 안출된 것으로, 저광도의 적색 및 청색 LED (Light-Emiting Diodes)를 광원으로 하여 감자 식물의 생육을 높이고, 궁극적으로 사이즈가 큰 마이크로튜버 감자 종자의 생산성을 높일 수 있는 방안과 관계된다. The present invention has been devised to solve such a problem, and increases the growth of potato plants by using low-intensity red and blue LEDs (Light-Emiting Diodes) as light sources, and ultimately increases the productivity of microtuber potato seeds with large sizes. It has to do with ways to improve.

본 발명의 목적은 사이즈가 큰 마이크로튜버 감자 종자의 생산성을 높일 수 있는 방법을 제공하기 위한 것이다.An object of the present invention is to provide a method for increasing the productivity of microtuber potato seeds having a large size.

본 발명의 다른 목적은 광스트레스를 감소시켜 양호한 감자 식물 성장을 유도할 수 있는 방법을 제공하기 위한 것이다. Another object of the present invention is to provide a method capable of inducing good potato plant growth by reducing light stress.

상기 과제를 달성하기 위하여, To achieve the above task,

본 발명의 일 측면에 따르면,According to an aspect of the present invention,

(a) MS 배지를 기준으로, 질산 암모늄 함량이 800 내지 1200 mg/L 및 질산 칼륨의 함량이 3000 내지 4000 mg/L이고, 탄소원이 2 내지 4 중량%으로 조정된 배지에 무균 감자 식물의 줄기를 치상하여 LED 광원을 광량 20 내지 48 umol/m2/sec로 조사하면서 10 내지 30일 배양하여 증식 줄기를 배양하는 단계; 및(a) Based on the MS medium, the stem of a sterile potato plant in a medium having an ammonium nitrate content of 800 to 1200 mg/L and a potassium nitrate content of 3000 to 4000 mg/L and a carbon source of 2 to 4% by weight Culturing the proliferation stem by culturing for 10 to 30 days while irradiating the LED light source with a light amount of 20 to 48 umol/m 2 /sec. And

(b) 증식 줄기를 커팅하고 남은 하단의 1~3 마디를 MS 배지를 기준으로, 질산 암모늄 함량이 200 내지 800 mg/L, 질산 칼륨 함량이 2500 내지 3000 mg/L이고, 탄소원이 7 내지 10 중량%로 조정된 배지에서 암조건하 70일 내지 100일 배양하는 단계를 포함하는 마이크로 튜버 감자 종자의 생산방법을 제시할 수 있다.(b) Cutting the proliferation stem and cutting the remaining 1 to 3 nodes on the basis of the MS medium, the ammonium nitrate content is 200 to 800 mg/L, the potassium nitrate content is 2500 to 3000 mg/L, and the carbon source is 7 to 10 It is possible to present a method for producing micro-tuber potato seeds comprising the step of culturing for 70 to 100 days under dark conditions in a medium adjusted to% by weight.

본 발명의 감자 마이크로튜버의 생산방법에 있어서, 상기 LED 광원은 적색 및 청색 광원을 사용하며, 바람직하게는 이 둘을 1:1로 혼합하여 광량 20 내지 48 umol/m2/sec, 바람직하게는 35 내지 40 umol/m2/sec로 유지하는 것이 좋다. In the production method of the potato microtuber of the present invention, the LED light source uses a red and blue light source, and preferably, a light quantity of 20 to 48 umol/m 2 /sec by mixing the two at 1:1, preferably It is good to maintain it at 35 to 40 umol/m 2 /sec.

상기 LED 적색 광원은 파장이 660 내지 700 nm이고, LED 청색 광원은 파장이 450 내지 480 nm일 수 있다.The red LED light source may have a wavelength of 660 to 700 nm, and the blue LED light source may have a wavelength of 450 to 480 nm.

본 발명의 감자 마이크로튜버의 생산방법은 지중, 대서, 수미, 고운, 하령, 자영, 대지 및 새봉 등 적용되는 감자 품종에 크게 제한은 없으나, 지중에 적용되는 것이 바람직하다. The production method of the potato microtuber of the present invention is not largely limited to the potato varieties applied, such as underground, Daeseo, Sumi, Goun, Haeryeong, Jayeong, Earth, and Saebong, but it is preferably applied to the underground.

본 발명의 마이크로튜버 감자 종자의 생산방법은 (b) 단계를 거친 마이크로튜버감자 종자를 녹화하는 단계를 더 포함할 수 있다. 상기 녹화 과정은 7 내지 10일 동안 마이크로튜버의 표면에 60 내지 80 umol/m2/s의 광을 2일 간격으로 6시간/18시간, 8시간/16시간, 10시간/14시간, 12시간/12시간의 명/암 주기로 총 4번의 광주기를 변화시키며 조사하여 수행될 수 있다. The method for producing micro-tuber potato seeds of the present invention may further include the step of recording the micro-tuber potato seeds that have undergone step (b). The recording process includes 60 to 80 umol/m 2 /s of light on the surface of the microtuber for 7 to 10 days at intervals of 2 days, 6 hours/18 hours, 8 hours/16 hours, 10 hours/14 hours, 12 hours It can be carried out by irradiation with a total of 4 photoperiod changes with a light/dark cycle of /12 hours.

또한, 본 발명의 다른 일 측면에 따르면, 상기한 방법에 의하여 생산된 마이크로튜버 감자 종자를 제시할 수 있다. In addition, according to another aspect of the present invention, it is possible to present microtuber potato seeds produced by the above method.

본 발명의 마이크로튜버 감자 종자의 생산 방법에 따르면, 감자 줄기의 조직 배양시의 광원으로 저광도의 적색 및 청색 LED 광원을 혼합하여 이용함으로써, 감자 줄기의 생육을 좋게 하고 복지형성율을 높혀 궁극적으로 크기가 큰 마이크로튜버 감자 종자를 다량 생산할 수 있다.According to the method for producing microtuber potato seeds of the present invention, by mixing and using a low-intensity red and blue LED light source as a light source for tissue culture of the potato stem, it improves the growth of the potato stem and increases the welfare formation rate. Large microtuber potato seeds can be produced in large quantities.

도 1의 좌측 도면은 본 발명의 일 실시예에 따라 생산된 마이크로튜버(MCT)를 나타내는 사진이고, 우측 도면은 발아된 마이크로튜버를 확대한 사진이다.
도 2의 좌측 도면은 본 발명의 일 실시예에 따라 생산된 마이크로튜버(G0)를 노지에 직파하고 60일 경과 후의 생육을 나타내는 사진이고, 우측 도면은 파종 100일 경과 후 수확한 G1을 나타내는 사진이다.
The left drawing of FIG. 1 is a photograph showing a microtuber (MCT) produced according to an embodiment of the present invention, and the right drawing is an enlarged photograph of a germinated microtuber.
The left drawing of FIG. 2 is a photograph showing the growth of the microtuber (G0) produced according to an embodiment of the present invention directly in the field, and the growth after 60 days, and the right drawing is a photograph showing the G1 harvested after 100 days of sowing. to be.

이하, 본 발명의 바람직한 실시예를 통해 본 발명의 구성 및 작용을 더욱 상세히 설명하기로 한다. 다만, 이는 본 발명의 바람직한 예시로 제시된 것이며 어떠한 이유로도 이에 의해 본 발명이 제한되는 것으로 해석될 수는 없다.Hereinafter, the configuration and operation of the present invention will be described in more detail through preferred embodiments of the present invention. However, this has been presented as a preferred example of the present invention, and for any reason cannot be construed as limiting the present invention.

여기에 기재되지 않은 내용은 본 발명이 속하는 기술 분야에서 숙련된 자이면 충분히 기술적으로 유추할 수 있는 것이므로 그 설명을 생략하기로 한다.Contents not described herein can be sufficiently technically inferred by those skilled in the technical field to which the present invention pertains, and the description thereof will be omitted.

본 발명은 The present invention

(a) MS 배지를 기준으로, 질산 암모늄 함량이 800 내지 1200 mg/L 및 질산 칼륨의 함량이 3000 내지 4000 mg/L이고, 탄소원이 2 내지 4 중량%으로 조정된 배지에 무균 감자 줄기를 치상하여 LED 광원을 광량 20 내지 48 umol/m2/sec로 유지하면서 10 내지 30일 배양하여 증식 줄기를 배양하는 단계; 및(a) Based on the MS medium, the ammonium nitrate content is 800 to 1200 mg/L and the potassium nitrate content is 3000 to 4000 mg/L, and the carbon source is 2 to 4% by weight. The step of culturing the proliferation stem by culturing for 10 to 30 days while maintaining the LED light source at a light amount of 20 to 48 umol/m 2 /sec; And

(b) 증식 줄기를 커팅 후 남은 하단의 1~3 마디를 MS 배지를 기준으로, 질산 암모늄 함량이 200 내지 800 mg/L, 질산 칼륨 함량이 2500 내지 3000 mg/L이고, 탄소원이 7 내지 10 중량%로 조정된 배지에서 암조건하 70일 내지 100일 배양하는 단계를 포함하는, 마이크로튜버 감자 종자의 대량 생산방법을 제공한다. (b) Based on the MS medium, 1 to 3 nodes at the bottom left after cutting the proliferation stem have an ammonium nitrate content of 200 to 800 mg/L, a potassium nitrate content of 2500 to 3000 mg/L, and a carbon source of 7 to 10 It provides a method for mass production of microtuber potato seeds, comprising the step of culturing for 70 to 100 days under dark conditions in a medium adjusted to% by weight.

본 발명의 마이크로튜버 감자 종자는 조직 배양법을 기반으로, 감자 식물의 생장점을 채취하고 배양하여 기본 줄기를 수득하고, 이 줄기의 윗 부분을 커팅/ 배양하여 증식 줄기를 수득하고, 증식 줄기를 커팅 후 남은 마디를 암배양하는 일련의 과정에 의해 생산된다. The microtuber potato seed of the present invention is based on a tissue culture method, by collecting and culturing the growth point of a potato plant to obtain a basic stem, cutting/culturing the upper part of the stem to obtain a proliferating stem, and cutting the proliferating stem It is produced by a series of processes in which the remaining nodes are cultured in the dark.

MS 배지 (Murashige & Skoog, 1962)는 원래 담배 식물의 조직 배양을 위해 개발되었지만, 다른 식물의 배양에도 널리 쓰이고 있는 식물 배지이다. MS 배지는 쌍자엽과 단자엽 식물 모두에서 효과적인 성장을 증명하여 식물 세포/조직 배양에 가장 흔히 사용하고 있다. MS medium (Murashige & Skoog, 1962) was originally developed for tissue cultivation of tobacco plants, but is a plant medium widely used for cultivation of other plants. MS medium has proven effective growth in both dicotyledonous and monocotyledonous plants and is most commonly used for plant cell/tissue culture.

본 발명의 방법에서 증식 줄기 배지는 MS 배지를 기준으로, 질산암모늄 (NH4NO3)을 800 내지 1200 mg/L, 바람직하게는 900 내지 1100 mg/L 포함하며, 질산칼륨 (KNO3)을 3000 내지 4000 mg/L, 바람직하게는 3200 내지 3800 mg/L 포함할 수 있다. 탄소원으로는 수크로오스를 2 내지 4 중량% 포함할 수 있다.In the method of the present invention, the growth stem medium contains ammonium nitrate (NH 4 NO 3 ) 800 to 1200 mg/L, preferably 900 to 1100 mg/L , based on the MS medium, and potassium nitrate (KNO 3 ). It may contain 3000 to 4000 mg/L, preferably 3200 to 3800 mg/L. The carbon source may contain 2 to 4% by weight of sucrose.

또한, 마이크로튜버를 유도, 생산하기 위한 암 배양 배지는 MS 배지 조성 중 질산 암모늄을 200 내지 800 mg/L, 바람직하게는 400 내지 600 mg/L, 질산 칼륨을 2500 내지 3000 mg/L, 바람직하게는 2600 내지 3000 mg/L으로 조정하여 사용하였으며, 탄소원으로 수크로오스를 7 내지 10 중량% 포함할 수 있다.In addition, the dark culture medium for inducing and producing microtubers contains 200 to 800 mg/L of ammonium nitrate, preferably 400 to 600 mg/L, and 2500 to 3000 mg/L of potassium nitrate in the MS medium composition. Was used by adjusting to 2600 to 3000 mg/L, and may contain 7 to 10% by weight of sucrose as a carbon source.

본 발명에서 이용한 조직 배양 배지는 인위적인 생장조절제나 호르몬을 포함하지 않는다.The tissue culture medium used in the present invention does not contain artificial growth regulators or hormones.

본 출원인은 증식 줄기 배양 단계에서 광원과 광량을 최적화하여 품종 특성에 맞는 광조건을 구축하였다. 이로써, 최적의 광조건이 수립되어 광이 모자라거나 많아서 발생되는 스트레스 현상을 제거하여 줄기 생장이 좋아졌으며, 생산되는 마이크로튜버의 품질도 높일 수 있었다. The Applicant established light conditions suitable for the characteristics of the variety by optimizing the light source and the amount of light in the step of culturing the proliferation stem. As a result, the optimal light conditions were established to remove the stress phenomenon caused by insufficient or large light, thereby improving stem growth and improving the quality of the produced microtubers.

일반적으로 기내에서 마이크로튜버를 생산하기 위해 감자 식물을 성장시키는 광량 조건은 대략 50 ~ 60 umol/m2/sec 정도인데, 이 광량은 모든 감자 품종을 위한 최적의 광량 조건은 아니다. 일부 품종은 이 광량 범위에서 높은 광스트레스에서 발견되는 안토시아닌 축적, 캘러스 형성, 잎말림 현상 등이 관찰된다. 감자 식물의 성장에서 이러한 광스트레스가 지속되면 심각한 생육 저하를 유발하게 된다. 궁극적으로, 광스트레스 조건에서 성장된 감자 식물은 마이크로튜버의 생산율을 현격히 떨어뜨리고, 마이크로튜버가 형성된다 하여도 그 사이즈가 작아지는 문제가 있다.In general, the light intensity condition for growing potato plants to produce microtubers on board is about 50 to 60 umol/m 2 /sec, which is not the optimal light intensity condition for all potato varieties. Some varieties have anthocyanin accumulation, callus formation, and leaf curl, which are found in high light stress in this light range. In the growth of potato plants, if this light stress persists, it causes serious growth degradation. Ultimately, potato plants grown under light stress conditions have a problem in that the production rate of microtubers is significantly lowered, and the size of the microtubers is reduced even if the microtubers are formed.

본 발명은 전기소모량과 열방출량이 작으며 특정 파장대 영역의 광을 선택적으로 방출시킬 수 있는 LED (Light-Emiting Diodes)를 광원으로 하여, 이의 조건에 따라 감자 식물 성장 및 나아가 감자 마이크로튜버의 생산에 미치는 영향을 알아본 결과물이다.The present invention uses LEDs (Light-Emiting Diodes) that can selectively emit light in a specific wavelength range with a small amount of electricity and heat emission as a light source, and is suitable for the growth of potato plants and further production of potato microtubers according to the conditions thereof. This is the result of examining the impact.

구체적으로, 본 발명의 감자 마이크로튜버의 생산방법에 있어서, 상기 LED 광원은 적색 및 청색의 혼합 광원을 1:1로 혼합하여 광량 20 내지 48 umol/m2/sec, 바람직하게는 35 내지 40 umol/m2/sec 범위로 유지하는 것이 좋다. 여기서, 광 주기는 12~18시간: 12~6시간 (L:D)으로 할 수 있다. Specifically, in the production method of the potato microtuber of the present invention, the LED light source is a mixture of red and blue light sources at a ratio of 1 to 1 to obtain a light quantity of 20 to 48 umol/m 2 /sec, preferably 35 to 40 umol. It is recommended to keep it in the range /m 2 /sec Here, the light cycle may be 12 to 18 hours: 12 to 6 hours (L:D).

상기 LED 적색 광원은 파장이 660 내지 700 nm이고, LED 청색 광원은 파장이 450 내지 480 nm일 수 있다. The red LED light source may have a wavelength of 660 to 700 nm, and the blue LED light source may have a wavelength of 450 to 480 nm.

광원으로서 적색 및 청색 LED를 혼합하여 본 발명의 방법에 사용하면, 증식 줄기 생장이 좋아지고 암배양시 복지 형성도 잘되며, 사이즈가 큰 마이크로튜버의 생산량을 높일 수 있다.When red and blue LEDs are mixed as a light source and used in the method of the present invention, growth of proliferating stems is improved, welfare formation is well formed during dark culture, and the production of large-sized microtubers can be increased.

본 발명의 방법에서 증식 줄기 배양은 24 내지 28℃에서 10 내지 30일 배양할 수 있고, 암 배양은 18 내지 22℃ 온도에서 70 내지 100일 배양하여 마이크로튜버를 성장시킬 수 있다. 상기 배양일수는 생장 속도, 용기 크기, 작업의 효율성 등을 고려하여 상기 범위 내에서 조정할 수 있다. In the method of the present invention, the proliferation stem culture may be cultured at 24 to 28°C for 10 to 30 days, and the cancer culture may be cultured at 18 to 22°C for 70 to 100 days to grow microtubers. The number of cultivation days may be adjusted within the above range in consideration of the growth rate, the size of the vessel, and the efficiency of the operation.

본 발명의 마이크로튜버 생산방법은 암배양을 거친 마이크로튜버를 녹화하는 단계를 더 포함할 수 있다. 상기 녹화 과정은 예를 들어, 7 내지 10일 동안 마이크로튜버의 표면에 60 내지 80 umol/m2/s 광도의 광을 2일 간격으로 6시간/18시간, 8시간/16시간, 10시간/14시간, 12시간/12시간(L/D) 주기로 총 4번 조사하여 진행될 수 있다. The microtuber production method of the present invention may further include the step of recording the microtuber that has undergone cancer culture. The recording process is, for example, 6 hours / 18 hours, 8 hours / 16 hours, 10 hours / light of 60 to 80 umol / m 2 / s luminous intensity on the surface of the microtuber for 7 to 10 days at intervals of 2 days. It can be conducted by irradiating a total of 4 times in a 14-hour, 12-hour/12-hour (L/D) cycle.

이와 같이 녹화를 통하여 표면을 경화시킴에 따라 마이크로튜버의 활력을 높여 저장성 등을 높일 수 있다. 이후 이것을 저온 저장하였다가 필요시 발아시키고 최종 출고하여 파종하게 된다. As the surface is hardened through greening in this way, it is possible to increase the vitality of the microtuber and increase storage properties. After that, it is stored at a low temperature, germinated if necessary, and finally shipped and sown.

본 발명의 방법은 감자 증식 줄기 배양시 다른 광조건하에서 생산된 경우에 비하여 줄기의 생체중, 마디수, 잎수, 신초 길이, 줄기 직경 및 엽면적 등 측정된 모든 항목에서 우수한 결과를 나타내었다 (표 1).The method of the present invention showed excellent results in all measured items such as the fresh weight of the stem, the number of nodes, the number of leaves, shoot length, stem diameter, and leaf area compared to the case where the potato growth stem was grown under different light conditions (Table 1).

또한, 후속 암배양에서도 복지형성율이 우수하였으며 (표 2), 최종 생산된 마이크로튜버도 8mm 이상 크기가 큰 것이 다량 생산되었다 (표 3). In addition, the welfare formation rate was excellent in subsequent cancer culture (Table 2), and the final produced microtubers were also produced in large quantities with a size of 8 mm or more (Table 3).

본 출원인은 감자의 여러 품종을 대상으로 마이크로튜버 종자의 생산성을 높일 수 있는 방법을 다년간 연구하여 왔다. 그 한 측면으로, 크기가 큰 마이크로튜버 종자를 생산하려는 노력을 경주하여 왔는데, 크기가 큰 마이크로튜버는 포장에 직파하였을 때 출현율(파종한 종자 대비 파종 20일 후 토양 표면에 싹이 출현한 비율)이 높고, 주당 생산수량 및 생산무게도 높아지는 상관관계가 있었기 때문이다. The applicant of the present invention has been studying a method for increasing the productivity of microtuber seeds for several varieties of potatoes for many years. In one aspect, efforts have been made to produce large-sized microtuber seeds, and the emergence rate of large-sized microtubers when they are directly sown on the field (ratio of sprouts appearing on the soil surface after 20 days of sowing compared to the sown seeds) This is because there was a correlation that was high, and the production quantity per week and production weight also increased.

본 발명의 방법에 따라 생산된 마이크로튜버는 포장에 직파한 경우에서도 정상적인 생육과 수확량을 보여주었다 (도 1 및 도 2).The microtuber produced according to the method of the present invention showed normal growth and yield even when directly sown in the packaging (FIGS. 1 and 2).

본원의 방법에 의하면, 무병의 마이크로튜버 감자 종자를 다량으로 간편하게 생산할 수 있다. 본 발명의 방법은 포장에 직파 가능한 감자 종자를 생산하기 때문에 종래의 보급용 씨감자를 생산하는데 걸리는 시간을 단축할 수 있고, 그만큼 생산 단가를 낮춰 농가에 도움을 줄 수 있다.According to the method of the present application, it is possible to conveniently produce a large amount of disease-free microtuber potato seeds. Since the method of the present invention produces potato seeds that can be directly stalked on a package, it is possible to shorten the time taken to produce the conventional seed potatoes for replenishment, and to help farmers by lowering the production cost accordingly.

이하, 본 발명의 바람직한 실시예를 통해 본 발명을 더욱 상세하게 설명하기로 한다. 이는 본 발명의 예시를 위한 것으로, 이에 의하여 본 발명이 제한되는 것으로 해석될 수 없다.Hereinafter, the present invention will be described in more detail through preferred embodiments of the present invention. This is for illustration of the present invention, whereby the present invention cannot be interpreted as being limited.

실시예 1: 마이크로튜버의 생산 Example 1: Production of microtubers

감자 식물(지중)의 생장점 배양 후 바이러스 검정을 통하여 바이러스 프리 개체를 선별하였다. 이로부터 수득된 기본 줄기를 밀식 배양하여 증식된 줄기를 얻기 위해 각 구획으로 나누어진 배양지지판(부직포, PP 30g sm, ㈜ 노자)을 포함하는 20 * 30 * 15 cm 배양 용기 내에 30 개의 줄기를 치상하였다.Virus-free individuals were selected through virus assay after culturing the growth point of potato plants (underground). Placing 30 stems in a 20 * 30 * 15 cm culture vessel containing a culture support plate (non-woven fabric, PP 30g sm, Laoja Co., Ltd.) divided into each compartment to obtain a proliferated stem by densely culturing the basic stem obtained therefrom. I did.

증식 줄기를 배양하기 위한 배지는 MS 배지 조성 중 질소와 칼륨 조성을 조정 (NH4NO3 1,000mg/L, KNO3 3,600mg/L) 하였고, 수크로오스 3%를 포함하는 액체 배지 (용기당 200 mL)를 사용하였다. 배양 조건은 26℃ 광주기 16h/8h으로 14일 배양하고, 적색 및 청색 광원이 1:1로 혼합된 LED 광원을 이용하여 광량은 38 umol/m2/s 으로 조사하였다. The medium for culturing the proliferation stem was adjusted to the composition of nitrogen and potassium in the MS medium composition (NH 4 NO 3 1,000 mg/L, KNO 3 3,600 mg/L), and a liquid medium containing 3% sucrose (200 mL per container) Was used. Culture conditions were cultivated for 14 days at 26°C photoperiod 16h/8h, and the amount of light was irradiated at 38 umol/m 2 /s using an LED light source in which a red and blue light source was mixed 1:1.

증식 줄기 커팅 후 남은 하단 부분의 3 마디를 마이크로튜버 생산 배지 (20 * 30 * 10 cm 용기당 300ml)로 교체하였다. 이 배지는 MS 배지 조성 중 질소와 칼륨 함량을 조정(NH4NO3 500mg/L, KNO3 2,800mg/L)하고, 수크로오스 8%로 조정한 액체 배지이다. 이것을 20℃ 암 조건에서 고정된 배양 선반에서 90일 동안 배양하였다.After cutting the proliferation stem, the remaining 3 nodes of the lower part were replaced with microtuber production medium (300ml per 20 * 30 * 10 cm container). This medium is a liquid medium in which the contents of nitrogen and potassium in the composition of the MS medium were adjusted (500 mg/L of NH 4 NO 3 and 2,800 mg/L of KNO 3 ) and was adjusted with 8% sucrose. This was incubated for 90 days on a fixed culture shelf in dark conditions at 20°C.

비교예 1: 마이크로튜버의 생산 Comparative Example 1: Production of microtubers

증식 줄기 배양에서 LED 광원으로 적색 광원(660~700 nm, 서울반도체)을 100% 사용한 것을 제외하고 실시예 1의 방법과 동일한 조건에서 마이크로튜버를 생산하였다. Microtubers were produced under the same conditions as in Example 1, except that 100% of a red light source (660-700 nm, Seoul Semiconductor) was used as an LED light source in the growth stem culture.

비교예 2: 마이크로튜버의 생산 Comparative Example 2: Production of microtubers

증식 줄기 배양에서 LED 광원으로 청색 광원(450~480 nm, 서울반도체)을 100% 사용한 것을 제외하고 실시예 1의 방법과 동일한 조건에서 마이크로튜버를 생산하였다.Microtubers were produced under the same conditions as in Example 1, except that 100% of a blue light source (450-480 nm, Seoul Semiconductor) was used as an LED light source in the growth stem culture.

비교예 3: 마이크로튜버의 생산 Comparative Example 3: Production of microtubers

증식 줄기 배양에서 광원으로 형광등(40W)을 사용한 것을 제외하고 실시예 1의 방법과 동일한 조건에서 마이크로튜버를 생산하였다.Microtubers were produced under the same conditions as in Example 1, except that a fluorescent lamp (40W) was used as a light source in the growth stem culture.

시험예 1: 다양한 광원에 따른 증식 줄기 생육 비교Test Example 1: Comparison of proliferation stem growth according to various light sources

실시예 및 비교예의 증식 줄기 배양과정에서 얻어진 감자 식물체의 생체중, 마디수, 잎수, 신초길이, 줄기 직경 및 엽면적을 측정하였다. 그 결과를 아래 표에 나타내었다. The fresh weight, number of nodes, number of leaves, shoot length, stem diameter, and leaf area of potato plants obtained in the proliferation stem culture process of Examples and Comparative Examples were measured. The results are shown in the table below.

구분division 생체중Live weight 마디수Number of nodes 잎수Number of leaves 신초길이
(cm)
Shoot length
(cm)
줄기직경
(mm)
Stem diameter
(mm)
엽면적
(cm2)
Leaf area
(cm 2 )
실시예Example 1.591.59 5.85.8 7.57.5 7.67.6 2.72.7 4.54.5 비교예 1Comparative Example 1 1.011.01 3.73.7 5.15.1 7.97.9 1.51.5 3.13.1 비교예 2Comparative Example 2 0.880.88 4.34.3 6.46.4 4.54.5 1.81.8 3.93.9 비교예 3Comparative Example 3 1.371.37 5.45.4 6.96.9 6.86.8 2.32.3 4.24.2

* 3반복 테스트 평균값.* Average value of 3 iteration tests.

상기 표에 나타난 바와 같이, 적색 및 청색 광원을 1:1로 혼합, 조사하여 배양한 증식 줄기는 생체중, 마디수, 잎수, 신초 길이, 줄기 직경 및 엽면적 등 모든 측정 항목에서 이들을 단용하거나 다른 광원을 사용한 경우에 비해 생육이 우수한 것을 확인할 수 있다. As shown in the table above, the proliferation stems cultured by mixing and irradiating red and blue light sources in a ratio of 1:1 use these alone or use other light sources in all measurement items such as fresh weight, number of nodes, number of leaves, shoot length, stem diameter, and leaf area. It can be seen that the growth is excellent compared to the case of use.

한편, 적색 및 청색의 혼합광, 청색 단색광, 형광등 하에서는 전반적으로 잎의 발달이 비교적 정상적인 반면, 적색 단색광 하에서는 초장은 길고 마디 수는 적어 절간 사이 간격이 길어지는 웃자람 현상이 나타났다. 반면, 청색 단색광 하에서는 줄기의 초장은 짧고 마디 수는 증가하여 절간 신장이 억제되는 것으로 나타났다. 상기 혼합광, 청색 단색광, 적색 단색광에서의 생육 차이는 크립토크롬 혹은 피토크롬(청색과 적색의 광수용체)의 서로 다른 종류의 상호 작용으로 인해 줄기 신장의 촉진 또는 억제가 나타난 때문으로 생각된다. On the other hand, under red and blue mixed light, blue monochromatic light, and fluorescent light, overall leaf development was relatively normal, whereas under red monochromatic light, the plant length was long and the number of nodes was small, resulting in an overgrowth phenomenon in which the interval between nodes became longer. On the other hand, under blue monochromatic light, stem length was short and the number of nodes increased, indicating that internode elongation was suppressed. The difference in growth in the mixed light, blue monochromatic light, and red monochromatic light is thought to be due to the promotion or inhibition of stem elongation due to different kinds of interactions of cryptochrome or phytochrome (blue and red photoreceptors).

시험예 2: 복지 형성율 평가 Test Example 2: Welfare formation rate evaluation

실시예 및 비교예의 광원에 따른 증식 줄기 배양 단계를 거친 후 암배양시의 시간에 따른 복지(匐枝) 형성율을 살펴보았다. 조직 배양에서 감자의 복지는 암배양에서의 배양용기 내에 기부의 측아가 수평으로 발달된 줄기를 의미하며, 복지가 발생된 식물체 수를 세어 백분율로 나타낸 것을 복지형성율로 정의하였다. 이 복지로부터 마이크로튜버가 유도, 생산된다.After going through the step of culturing the proliferation stem according to the light sources of Examples and Comparative Examples, the rate of formation of welfare according to time during cancer culture was examined. In tissue culture, the welfare of potatoes refers to the stems with horizontally developed side buds of the base in the culture vessel in the culture of cancer, and the number of plants with welfare is counted and expressed as a percentage was defined as the welfare formation rate. Microtubers are derived and produced from this welfare.

배양기간Cultivation period 복지형성율(%)Welfare formation rate (%) 실시예 Example 비교예 1Comparative Example 1 비교예 2Comparative Example 2 비교예 3Comparative Example 3 2일2 days 25.625.6 11.511.5 13.313.3 11.911.9 4일4 days 80.380.3 30.130.1 46.846.8 44.344.3 1주1 week 98.998.9 44.244.2 60.160.1 98.398.3 2주2 weeks 100100 89.789.7 85.585.5 100100 3주3 weeks -- 98.598.5 96.296.2 -- 4주4 weeks -- 100100 100100 --

* 3반복 테스트 평균값.* Average value of 3 iteration tests.

그 결과 적색 및 청색의 1:1 혼합광을 조사하여 배양한 경우는 2주만에 복지 형성율이 100%에 달하였다. 형광등을 이용하여 배양한 비교예 3의 경우도 비슷한 결과를 나타내었으나, 암배양 초기에서는 실시예가 비교예 3보다 복지 형성율이 다소 높았다. 적색이나 청색 단색광 하에서는 복지 형성율이 100%에 달하는데 4주 소요되었다. 복지 형성이 빠를수록 마이크로튜버의 형성속도도 빨라졌고, 마이크로튜버의 평균 크기도 더 컸으며 마이크로튜버의 크기가 클수록 저장후 발아율도 높은 것으로 나타났다.As a result, when cultured by irradiating 1:1 mixed light of red and blue, the welfare formation rate reached 100% in 2 weeks. Comparative Example 3 cultured using a fluorescent lamp showed similar results, but in the early stage of cancer culture, Example had a slightly higher welfare formation rate than Comparative Example 3. Under red or blue monochromatic light, it took 4 weeks for the welfare formation rate to reach 100%. The faster the welfare formation, the faster the formation rate of microtubers, the larger the average size of the microtubers, and the larger the microtubers, the higher the germination rate after storage.

시험예 3: 마이크로튜버 생산성 평가Test Example 3: Evaluation of microtuber productivity

실시예 및 비교예에서 생산된 마이크로튜버를 수확하여 크기를 분석하였다. Microtubers produced in Examples and Comparative Examples were harvested and analyzed for size.

생산량output 8mm 이상 종자8mm or more seeds 7.9 mm 이하 종자Seeds less than 7.9 mm 실시예 1Example 1 1,2081,208 587587 비교예 1Comparative Example 1 780780 813813 비교예 2Comparative Example 2 874874 799799 비교예 3Comparative Example 3 501501 1,2351,235

* 20개 용기내 배양 결과물임.* This is the result of culture in 20 containers.

상기 표에 나타난 바와 같이, 적색 및 청색 LED 광원을 1:1로 혼합, 조사하여 배양한 실시예 1의 방법에서 크기가 8mm 이상 큰 종자를 효과적으로 다량 생산할 수 있음이 확인된다. 마이크로튜버의 크기가 7.9mm 이하일 경우에는 저장율 (저장율이란 4℃의 저온 저장고에서 3개월 이상 보관 후 파종 전에 정상적 생육이 가능한 최종 종자로 사용될 수 있는 종자의 비율을 말함)이 약 89%인 반면, 8mm 이상일 경우에는 97%로 저장율이 높아졌다. 이는 마이크로튜버의 크기가 클수록 표피가 단단해지고, 전분함량이 증가하기 때문에 저장율이 높아진 것으로 생각할 수 있다.As shown in the above table, it was confirmed that in the method of Example 1 in which a red and blue LED light source was mixed and irradiated at 1:1 and cultured, a large amount of seeds having a size of 8 mm or more can be effectively produced. If the size of the microtuber is less than 7.9mm, the storage rate (the storage rate refers to the ratio of seeds that can be used as final seeds that can be normally grown before sowing after storage for 3 months or more in a low temperature storage at 4℃) is about 89%. On the other hand, in the case of more than 8mm, the storage rate increased to 97%. It can be considered that the larger the size of the microtuber, the harder the epidermis and the higher the starch content, the higher the storage rate.

시험예 4: 재배 실험Test Example 4: Cultivation experiment

실시예에서 생산된 마이크로튜버 감자 종자를 10일 동안 마이크로튜버의 표면에 70 umol/m2/s의 광량을 2일 간격으로 18시간/6시간, 16시간/8시간, 14시간/10시간 및 12시간/12시간 주기로 조사하여 녹화시킨 후 4℃의 저온 저장고에서 3개월 정도 저장기간을 거친 후 발아시켜 포장에 직파하였다. 파종 17~20일 후 대부분 출현하였고, 파종 100일 이후 정상적으로 G1을 수확하였다(도 1 및 도 2). The microtuber potato seeds produced in the examples were subjected to a light amount of 70 umol/m 2 /s on the surface of the microtuber for 10 days at intervals of 2 days for 18 hours/6 hours, 16 hours/8 hours, 14 hours/10 hours, and After irradiation at 12/12 hour cycles and greening, it was germinated after a storage period of about 3 months in a cold storage at 4°C, and then sprouted to the packaging. Most appeared 17 to 20 days after sowing, and G1 was harvested normally after 100 days of sowing (FIGS. 1 and 2).

이상 본 발명의 실시예들을 설명하였으나, 본 발명은 상기 실시예들에 한정되는 것이 아니라 서로 다른 다양한 형태로 구현될 수 있으며, 본 발명이 속하는 기술 분야에서 통상의 지식을 가진 자는 본 발명의 기술적 사상이나 필수적인 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 실시될 수 있다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적이 아닌 것으로 이해해야 한다. Although the embodiments of the present invention have been described above, the present invention is not limited to the above embodiments, but may be implemented in various different forms, and those of ordinary skill in the technical field to which the present invention pertains to the technical idea of the present invention. It will be appreciated that it can be implemented in other specific forms without changing any or essential features. Therefore, it should be understood that the embodiments described above are illustrative in all respects and not limiting.

Claims (8)

(a) MS 배지를 기준으로, 질산 암모늄 함량이 800 내지 1200 mg/L 및 질산 칼륨의 함량이 3000 내지 4000 mg/L이고, 탄소원이 2 내지 4 중량%으로 조정된 배지에 무균 감자 줄기를 치상하여 LED 광원을 광량 20 내지 48 umol/m2/sec로 조사하면서 10 내지 30일 배양하여 증식 줄기를 배양하는 단계; 및
(b) 증식 줄기를 커팅 후 남은 하단의 1~3 마디를 MS 배지를 기준으로, 질산 암모늄 함량이 200 내지 800 mg/L, 질산 칼륨 함량이 2500 내지 3000 mg/L이고, 탄소원이 7 내지 10 중량%로 조정된 배지에서 암조건하 70일 내지 100일 배양하는 단계를 포함하는, 마이크로튜버 감자 종자의 생산방법.
(a) Based on the MS medium, the ammonium nitrate content is 800 to 1200 mg/L and the potassium nitrate content is 3000 to 4000 mg/L, and the carbon source is 2 to 4% by weight. Culturing the growth stem by culturing for 10 to 30 days while irradiating the LED light source with a light amount of 20 to 48 umol/m 2 /sec; And
(b) Based on the MS medium, 1 to 3 nodes at the bottom left after cutting the proliferation stem have an ammonium nitrate content of 200 to 800 mg/L, a potassium nitrate content of 2500 to 3000 mg/L, and a carbon source of 7 to 10 A method for producing microtuber potato seeds comprising the step of culturing 70 to 100 days under dark conditions in a medium adjusted to% by weight.
제1항에 있어서, 상기 LED 광원은 적색 및 청색 광원을 1:1 혼합한 것인, 마이크로튜버 감자 종자의 생산방법.
The method of claim 1, wherein the LED light source is a 1:1 mixture of red and blue light sources.
제2항에 있어서, 상기 적색 광원은 파장이 660~700 nm이고, 청색 광원은 파장이 450~480 nm 인, 마이크로튜버 감자 종자의 생산방법.
The method of claim 2, wherein the red light source has a wavelength of 660 to 700 nm, and the blue light source has a wavelength of 450 to 480 nm.
제1항에 있어서, 상기 광량은 35 내지 40 umol/m2/sec인, 마이크로튜버 감자 종자의 생산방법.
The method of claim 1, wherein the amount of light is 35 to 40 umol/m 2 /sec.
제1항에 있어서, 상기 감자의 품종이 지중인, 마이크로튜버 감자 종자의 생산방법.
The method according to claim 1, wherein the variety of the potato is cultivated.
제1항에 있어서, (b) 단계를 거친 마이크로튜버를 녹화하는 단계를 더 포함하는, 마이크로튜버 감자 종자의 생산방법.
The method of claim 1, further comprising the step of recording the microtuber that has been subjected to step (b).
제6항에 있어서, 상기 녹화는 7 내지 10일 동안 마이크로튜버의 표면에 광량 60 내지 80 umol/m2/s을 2일 간격으로 18시간/6시간, 16시간/8시간, 14시간/10시간 및 12시간/12시간 주기로 조사하여 수행되는 것인, 마이크로튜버 감자 종자의 생산방법.
The method of claim 6, wherein the recording is performed by applying a light amount of 60 to 80 umol/m 2 /s to the surface of the microtuber for 7 to 10 days at intervals of 2 days, 18 hours/6 hours, 16 hours/8 hours, 14 hours/10 Time and 12 hours / 12 hours will be carried out by irradiation, the production method of microtuber potato seeds.
제1항의 방법에 의하여 생산된 마이크로튜버 감자 종자. Microtuber potato seeds produced by the method of claim 1.
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Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20100052026A (en) * 2008-11-10 2010-05-19 (주) 마이크로프랜츠 Method for mass production of micro potato by bioreactor culture

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20100052026A (en) * 2008-11-10 2010-05-19 (주) 마이크로프랜츠 Method for mass production of micro potato by bioreactor culture

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR102644462B1 (en) * 2023-08-10 2024-03-07 (주)지에프씨생명과학 Culture method of Leontopodium alpinum callus, Centella asiatica callus, Panax ginseng callus using LED

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