KR20140018444A - Microorganism for fermenting schisandra chinensis fruit byproduct and use of the fermented schisandra chinensis fruit byproduct - Google Patents

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Abstract

The present invention relates to a microorganism for fermenting a schisandra chinensis fruit byproduct and a use of the fermented schisandra chinensis fruit byproduct. The microorganism is Wickerhamomyces anomalus SK1819(KACC91725P). The present invention relates to a method for obtaining polyphenol by extracting the fermented schisandra chinensis fruit byproduct using an organic solvent.

Description

오미자박 발효 균주 및 그 발효된 오미자박의 용도{Microorganism for fermenting Schisandra chinensis fruit byproduct and use of the fermented Schisandra chinensis fruit byproduct }[0001] The present invention relates to a microorganism for fermentation of Schizandra chinensis fruit byproduct and a fermented Schizandra chinensis fruit byproduct,

본 발명은 오미자박 발효 균주 및 그 발효된 오미자박의 용도에 관한 것이다.The present invention relates to a fermentation strain of Omija persimmon and its use.

축산업은 식물생산물을 기반으로 인류에 양질의 단백질공급을 위한 산업이다. 가축의 영양소 급여량에 대하여서는 연구가 많이 진행되어 이미 독일의 Wolf-Lehmann feeding standard (1864), Kellner feeding standard (1907), 스웨덴의 Hanson feeding standard (1915), 미국의 Morrison feeding standard (1915), NRC (national research council, 1945~현재), Armshy feeding standard (1925), 영국의 CNCPS (carbohydrate and protein system) 등 프로그램들이 생산현장에서 활용되고 있으나 사료첨가제에 대하여서는 체계화되어 있지 않기 때문에 축산현장에서 사료첨가제 생산 및 활용 프로그램화까지는 많은 사료 첨가제에 대한 연구가 필요하다.Livestock industry is an industry for supplying high quality protein to mankind based on plant products. (1987), the Kellner feeding standard (1907), the Hanson feeding standard of Sweden (1915), the Morrison feeding standard of the United States (1915), the NRC (1955), the Armshy feeding standard (1925), and the UK's CNCPS (carbohydrate and protein system) programs have been used at the production site. However, since feed additives are not systematized, Many feed additive researches are needed until production and utilization program.

식물체는 동물에 대하여 항생제 대체물질, 항산화 물질, 면역증강물질 및 미지성장인자등 다양한 생리활성 물질을 함유하고 있다. 한국을 포함한 중국, 일본 등 아시아 지역 국가들은 허브(herb)에 대해서 많은 연구를 진행해 오고 있다.그러나 허브 사료 첨가제 별, 각 축 종별 급여량 수준이 아직 정립되지 않았으며, 허브 사료 첨가제 연구도 일부 품목에만 국한되어 있다. 안전한 먹거리를 제공하기 위하여 사료 첨가제로 사용할 수 있는 식물체가 함유하고 있는 새로운 생리활성물질들에 대한 연구들이 진행되어왔다.The plant contains various physiologically active substances such as antibiotic substitutes, antioxidants, immunostimulating substances and unknown growth factors for animals. However, the level of herbal feed additives and herbal feeds have not yet been established, and research on herb feed additives has been limited to some items. . Studies have been carried out on new physiologically active substances contained in plants that can be used as feed additives to provide safe food.

동물의 정상적 생명현상유지를 위하여 항산화 기능은 동물체 내에서 절대적으로 중요한 역할을 한다. 조직 손상, 세포노화, 염증 현상 및 고혈압 등 질병 유발 물질이기도 한 hydroxyl radical과 superoxide anion과 같은 활성 산소에 대하여 효소적인 방법으로 처리하는 SOD (super oxide dismutase) 와 알파-tocopherol, 베타-carotene, f1avonoid, glutathione, vitamine C 등 비효소성 항산화 기작이 있다. 식품 가치 보존을 위하여 화학 합성제제인 BHA (butylatedhydroxy anisole), BHT (butyllatedhydroxy toluene), PG (propyl gallate), 및 TBHQ (tert-butyl hydro quinone) 등 식품보존제를 많이 사용하고 있지만, 대부분 합성 제제의 암 유발 가능성에 대한 불안 때문에 천연 항산화 대체물질이 각광을 받고 있으며 이에 대한 여러 가지 연구가 진행되었다.Antioxidant function plays an absolutely important role in the animal to maintain the normal life condition of the animal. SOD (superoxide dismutase), alpha-tocopherol, beta-carotene, f1avonoid, and beta-carotene, which are enzymatically treated with reactive oxygen species such as hydroxyl radicals and superoxide anion which are also disease causing substances such as tissue damage, cell senescence, inflammation phenomenon and hypertension, glutathione, vitamine C, and other non-enzymatic antioxidant mechanisms. Food preservatives such as butylatedhydroxy anisole (BHA), butylatedhydroxy toluene (BHT), propyl gallate (PG) and tert-butyl hydroquinone (TBHQ) Because of the anxiety about the possibility of inducing the natural antioxidant substitute materials are in the spotlight, and various studies have been conducted on this.

2011년 7월1일부터 사료 내에 항생제 첨가를 법으로 금지하고 있다. 사료내에 항생제를 제거함으로 인한 여러 가지 문제들이 발생될 것으로 예상된다. 따라서 이러한 문제들을 해결하기 위하여 천연 항생제 대체물질을 탐색과 식물에 대한 생리활성 물질 연구가 활발히 진행되었다(Greathead, H. 2003. Plants and plant extracts for improving animal productivity. Proc. Nutr. Soc. 62: 279-290;Yang, Y., P. Iji, and M. Choct. 2009. Dietary modulation of gut microflora in broiler chickens: a review of the role of six kinds of alternatives to in-feed antibiotics. Worlds Poult. Sci. J. 65: 97-114).Effective July 1, 2011, the addition of antibiotics to feed is prohibited by law. It is expected that various problems will arise due to removal of antibiotics in feed. In order to solve these problems, researches on natural antibiotic substitutes and research on physiologically active substances for plants have been conducted actively (Greathead, H. 2003. Plants and plant extracts for improving animal productivity, Proc. Nutr. Soc. Yang, Y., P. Iji, and M. Choct. 2009. Dietary modulation of gut microflora in broiler chickens: a review of the role of six kinds of alternatives to in-feed antibiotics. 65: 97-114).

관련 선행특허로 대한민국특허공개번호 제1020020036381 호는 홍삼을 이용한 닭 사료의 제조방법 에 관한 것으로, 엑기스를 추출하고 난 홍삼의 부산물인 홍삼박과 한약찌꺼기등을 이용하여 닭의 사료를 제조함으로서 닭의 내성강화와 양질의 계란을 얻을 수 있도록 하기 위한 홍삼을 이용한 닭 사료의 제조방법이 개시된다.Korean Patent Publication No. 1020020036381 discloses a method for producing chicken feed using red ginseng. The method of producing chicken feed using extracts of red ginseng, red ginseng roots and Chinese medicine residue, A method for manufacturing a chicken feed using red ginseng to enhance tolerance and obtain high quality eggs is disclosed.

다른 관련 선행특허로 대한민국특허공개번호 제1020020008733호는 사람의 인체에 이로운 성질을 많이 포함하고 있는 인삼 등이 포함된 한약재를 가공하여 생산하는 여러 제품을 만드는 과정에서 배출되어지는 부산물을 이용하여 가축생산에 유용한 사료로서 재이용 할 수 있도록 하기 위한 그 제조방법이 개시되어 있다. Korean Patent Laid-Open Publication No. 1020020008733 discloses a method for producing livestock products containing ginseng and the like, which contains many beneficial properties to humans, Which can be reused as a useful feed for the human body.

본 발명은 상기의 필요성에 의하여 안출된 것으로서 본 발명의 목적은 오미자박 발효 균주를 제공하는 것이다.The present invention has been made in view of the above needs, and an object of the present invention is to provide a fermentation strain of Omija persimmon.

본 발명의 다른 목적은 생균제가 첨가된 발효 산물을 이용하여 복합적인 기능성 사료첨가제를 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide a complex functional feed additive using a fermented product to which a probiotic agent is added.

본 발명의 또 다른 목적은 생균제가 첨가된 발효 산물을 이용하여 복합적인 기능성 사료첨가제 제조방법을 제공하는 것이다.It is another object of the present invention to provide a method for producing a complex functional feed additive using a fermented product to which a probiotic agent is added.

상기의 목적을 달성하기 위하여 본 발명은 오미자박을 발효하는 Wickerhamomyces 균주를 제공한다.In order to accomplish the above object, the present invention provides a strain of Wickerhamomyces which fermentes Schizandra chinensis.

본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 균주는 Wickerhamomyces anomalus SK1819(KACC91725P)균주인 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.In one embodiment of the present invention, the strain is preferably a strain of Wickerhamomyces anomalus SK1819 (KACC91725P), but is not limited thereto.

또 본 발명은 오미자박에 상기 본 발명의 균주를 접종하여 발효한 후, 그 발효된 오미자박을 유기용매로 추출하여 폴리페놀을 얻는 방법을 제공한다.The present invention also provides a method for producing polyphenol by inoculating the strain of the present invention with the strain of the present invention and then fermenting the fermented omiza bark with an organic solvent.

또 본 발명은 오미자박에 상기 본 발명의 균주를 접종하여 발효한 후, 그 발효된 오미자박을 유기용매로 추출하여 플라보노이드 또는 안토시아닌을 얻는 방법을 제공한다.The present invention also provides a method for obtaining a flavonoid or anthocyanin by inoculating the strain of the present invention with the strain of the present invention and then fermenting the fermented omiza foil with an organic solvent.

또 본 발명은 오미자박에 상기 본 발명의 균주를 접종하여 발효한 후, 그 발효된 오미자박을 유기용매로 추출하여 항생활성 조성물을 얻는 방법을 제공한다.In addition, the present invention provides a method for obtaining an antibiotic active composition by inoculating a strain of the present invention to an ozaki leaf and fermenting the same, followed by extracting the fermented omza leaf with an organic solvent.

또한 본 발명은 상기 본 발명의 균주가 접종된 오미자박 발효물을 유효성분으로 함유하는 사료용 조성물을 제공한다.The present invention also provides a composition for feed comprising the fermented product of Schizophyllum sinensis inoculated with the strain of the present invention as an active ingredient.

이하 본 발명을 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described.

본 발명은 오미자박 이용 균주를 분리하기 위하여 분리균주의 분류학적 성질, 균주의 배양조건 및 배양상 특징조사, 분리균주의 오미자박 접종 생존성 측정 및 18S rDNA 분석에 의한 동정을 한 후 sequence data를 MEGA 4 software를 이용하여 query GenBank의 data와 비교하여 그 결과를 나타내었다. In order to isolate the strains of the invention, the present invention is characterized in that the taxonomic properties of the isolates, the culture conditions and the characteristics of the strains, the viability of the isolates and the 18S rDNA analysis, The results were compared with the data of the query GenBank using MEGA 4 software.

균주의 형태학적 성질은 SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 및 SK1819 다섯 균주에 대한 현미경관찰을 통하여 모두 효모 출아형태를 관찰하였다. Oval형 그룹에 SK1759 균주와 SK1760 균주가 두 균주가, candida형에는 SK1811균주와 SK1812균주가 위균사와 군집을 형성하여 존재하며, ellipsoideus형과 pastorianus형을 나타내는 SK1819균주는 포도송이 형태로 군집을 형성하는 것을 확인하였다. API 20C AUX Kit로 당 자화성을 측정한 결과 SK1759와 SK1760 두 가지 균주가 한 그룹, SK1812균주와 SK1819균주가 동일한 당자화성을, SK1811 균주는 독자적인 당자화성을 보였다. 18S rDNA sequence data BLAST 결과 SK1759 균주와 SK1760 두 균주는K azaxh stania viticola X99526 Type균주와 100%의 상동성을 나타내었고, SK1812 균주와 SK1819 두 균주의 비교분석결과 Wickerhamomyces anomalus AB126679 Type strain과 99% 상동성을 보이는 것을 확인할 수 있었고, The morphological characteristics of the strains were observed by microscopic observation of five strains SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 and SK1819. SK189 and SK1760 strains were found in oval type, SK1811 and SK1812 in candida, and SK1819, which is ellipsoideus type and pastorianus type, were clustered into grape clusters . As a result of measurement of glycosylation by API 20C AUX Kit, SK1875 and SK1760 showed one sugar group, SK1812 and SK1819 had the same sugar potential, and SK1811 showed unique sugar resistance. 18S rDNA sequence data BLAST showed that SK1759 and SK1760 were 100% homologous to K azaxh stania viticola X99526 Type strain and SK1812 and SK1819 were compared with Wickerhamomyces anomalus AB126679 Type strain and was able to see that exhibit 99% homology,

해당 균주인 SK1819균주를 대한민국 경기도 수원시 권선구 서둔동 88-20 소재 국립농업과학원 농업유전자원센터에 7월3일에 Wickerhamomyces anomalus SK1819(KACC91725P)로 기탁하였다.The strain, SK1819, was deposited at the National Institute of Agricultural Science and Technology , National Academy of Agricultural Science, 88-20, Suwon-dong, Gwon, anomalus SK1819 (KACC91725P).

한편, 다섯 균주의 생장곡선은 YM broth 배지에서 25℃처리구의 배양결과가 배양 36시간대에 최고의 흡광도를 나타내었다. 균주접종 오미자박 발효 pH는 3.0근처에 위치하면서 SK1819 균주와 SK1760 두 균주가 가장 큰 변화를 보였다. 자연발효 오미자박에서 분리한 5 가지 균주를 접종 후 25℃에서 log10(cfu/㎖)치는 Wickerhamomyces sp. SK1819 균주는 7일차에 최고 균수인 log10(cfu/㎖)치 8.85를 나타내면서 발효 56일차까지 균수가 8.26을 유지하였다.On the other hand, the growth curve of the five strains showed the highest absorbance at 36 ℃ in the YM broth medium at 25 ℃. The strains of SK1819 and SK1760 showed the greatest change with the pH near 3.0. Five strains isolated from natural fermented Omija pak were inoculated and incubated at 25 ℃ for 10 log (cfu / ㎖) of Wickerhamomyces sp. The SK1819 strain showed the highest bacterial count of log 10 (cfu / ㎖) value of 8.85 on day 7 and maintained the bacterial count of 8.26 until the 56th day of fermentation.

또 자연발효 오미자박에서 분리한 Wickerhamomyces sp.SK1819 균주를 1% 접종하여 25℃에서 28일간 발효과정을 거친 발효 오미자박(WFS) [Wickerhamomyces sp.SK1819-fermentation Schisandra chinensis fruit byproduct]과 효모를 접종하지 않은 비발효 오미자박(NFS) [nonfermentedSchisandra chinensis fruit byproduct]의 일반 성분과 유기용매 추출물의 항산화활성, 항균활성, 총 flavonoid, 총 polyphenol, anthocyanin함량을 측정하는 방식으로 각각의 생리활성능을 측정하였다.In addition, Wickerhamomyces (WFS) [ Wickerhamomyces (WFS)) which was inoculated with 1% of sp.SK1819 strain and fermented at 25 ° C for 28 days sp.SK1819-fermentation Schisandra antimicrobial activity, total flavonoid, total polyphenol, and anthocyanin content of non-fermented Schisandra chinensis fruit byproduct, which is not inoculated with chinensis fruit byproduct and yeast, Were measured for each physiological performance.

WFS의 일반성분은 수분 6.67%, 조단백질 14.83%, 조지방 21.67%, 조섬유 16.48%, 회분 1.80%, Ca 0.07% 및 P 0.33%로 나타났다. 유기 추출물의 생리활성물질 중 total polyphenol은 Eth-OH 층에서 0.24 ㎎/㎖, CHCl3층에서는 0.22 ㎎/㎖, n-Hexan 층과 Bu-OH 층에서 0.19 ㎎/㎖을 나타내었고, Aqueous 층에서는 0.18 ㎎/㎖으로 분석되는데 Bu-OH층에서는 NFS보다 약 2배 높은 추출율을 나타내었다. total flavonoid는 CHCI3층은 604.7 ㎍/㎖으로 NFS보다 22.82배 높았다. WFS의 n-Hexan 층, CHCI3층, EtOAc 층, Bu-OH 층 및 aqueous층의 flavonoid 농도는 각각 90.35 ㎍/㎖, 235.64 ㎍/㎖, 71.89 ㎍/㎖, 103.11 ㎍/㎖이다. anthocyanin 함량은 WFS는 28.98 ㎎%, NFS는 11.26 ㎎%이다. DPPH free radical inhibition activity 는 WFS 의 EtAOc층이 NFS 보다 약 8.26배 강하고, Bu-OH층은 NFS 보다 약 3.05배, CHCl3층은 NFS 보다 약 2.47배 강한 효과를 보였다. Superoxide dismutase (SOD) 유사활성능은 CHCl3층은 WFS는 68.89%이고 NFS 46.47%보다 22.42% 높고, Eth-OH층은 WFS 86.36%로 NFS 보다 14.87% 높고, n-Hexan층은 90.26%로 NFS보다 7.56% 높다. EtAOc층에서는 WFS는 76.66%로 NFS보다 8.69% 높으며, Aqueous층은 90.36%로 NFS보다 14.03% 높았다.The general components of WFS were moisture 6.67%, crude protein 14.83%, crude fat 21.67%, crude fiber 16.48%, ash 1.80%, Ca 0.07% and P 0.33%. The total polyphenol content of the organic extracts was 0.24 ㎎ / ㎖ in the Eth-OH layer, 0.22 ㎎ / ㎖ in the CHCl 3 layer, 0.19 ㎎ / ㎖ in the n-Hexan layer and Bu-OH layer, 0.18 ㎎ / ㎖. The extraction rate of Bu-OH layer was about twice as high as that of NFS. Total flavonoids were 604.7 ㎍ / ㎖ in CHCl 3 layer and 22.82 times higher than NFS. The concentrations of flavonoids in the n-Hexan, CHCl 3 , EtOAc, Bu-OH and aqueous layers of WFS are 90.35 ㎍ / ㎖, 235.64 ㎍ / ㎖, 71.89 ㎍ / ㎖ and 103.11 ㎍ / ㎖ respectively. The content of anthocyanin was 28.98 ㎎% for WFS and 11.26 ㎎% for NFS. In the DPPH free radical inhibition activity, EtAOc layer of WFS was about 8.26 times stronger than NFS, Bu-OH layer was about 3.05 times stronger than NFS, and CHCl 3 layer was about 2.47 times stronger than NFS. The superoxide dismutase (SOD) -like activity of the CHCl 3 layer was 68.89% for WFS and 22.42% higher than for NFS 46.47%. The Eth-OH layer was WFS 86.36%, 14.87% higher than NFS and 90.26% . In EtAOc layer, WFS was 76.66%, 8.69% higher than NFS and 90.36% higher than AFS in NFS.

6가지 병원성 세균에 대한 minimum inhibition concentration (MIC) 는 WFS는Salmonella gallinarum ATCC 9184 strain은 n-Hexan, CHCl3, EtAOc 및 aqueous층의12.50 ㎎/㎖, Haemopillus Somnus strain은 EtAOc층3.13 ㎎/㎖, Haemopillus parasuisstrain은 Bu-OH층과 aqueous층에서 6.25 ㎎/㎖, Enterotoxigenic E. coli strain은 Eth-OH층과 EtAOc층에서 모두 6.25 ㎎/㎖, Staphylococcus aureus strain은 Eth-OH층과 EtAOc층에서 6.25 ㎎/㎖로 나타났다.The minimum inhibition concentration (MIC) for six pathogenic bacteria was WFS, Salmonella gallinarum ATCC 9184 strain was 12.50 ㎎ / ㎖ of n-Hexan, CHCl 3 , EtAOc and aqueous layers, Haemopillus The Somnus strain was 3.13 ㎎ / ㎖ for the EtAOc layer and the Haemopillus parasuis strain was 6.25 ㎎ / ㎖ for the Bu-OH and aqueous layers, Enterotoxigenic E. coli Strain was 6.25 ㎎ / ㎖ in both Eth-OH and EtAOc layers, and Staphylococcus aureus strain was 6.25 ㎎ / ㎖ in the Eth-OH and EtAOc layers.

또한 Wickerhamomyces sp. SK1819 균주를 접종한 비발효 오미자박과 아무런 처리도 거치지 않은 건조 비발효 오미자박을 각각 0.25%와 0.50% 급여하여 산란계의 생산성과 산란계에 미치는 영향을 알아보기 위하여 실험을 진행하였다. 처리구는 급여사료의 차이를 근거로 일반사료를 급여하는 대조구, 비발효 오미자박 0.25%를 첨가급여한 NFS25 처리구, 비발효 오미자박 0.50%를 첨가급여한 NFS50 처리구와 Wickerhamomyces sp.SK1819 균주를 접종한 발효 오미자박을 0.25% 첨가급여한 WFS25 처리구와 0.50%를 첨가급여한 WFS50 처리구로 5 처리 처리구 당 9수씩 4반복으로 28일간 실험하였다. 난 생산성에 대하여 1~2주차에는 WFS25처리구 90.83%로 높은 생산성을 나타내었고 (P<0.05), 3~4주차의 결과는 대조구는 88.69%, WFS50에서 91.63%로 나타났다. Egg mass는 1~2주차에 WFS25 처리구가 55.46 g/day로 유의적으로 높았다 (P<0.05). 난각 색은 3~4주차에 WFS25 처리구에서 높은 결과 43.66을 나타내었으나(P<0.05) 난황 색에 있어서는 처리구에 따른 일관성 있는 변화가 관찰되지 않았다. 난황의 지방산 구성은 WFS25 처리구에서 Stearate 는 9.23%, oleate 는 49.09%, total MUFA 는 49.19% 및 arachidonate 2.47%로 유의적으로 높은 차이를 나타내었다(P<0.05). 간, 비장 및 복강 지방의 무게와 간, 비장 및 복강 지방의 무게에 대한 몸무게의 비율에서 대조구와 처리구간의 유의적인 차이를 나타내지 않았다. WFS50 처리구에서 총 균수와 E. coli는 유의적으로 낮은 균수를 나타내었다 (P<0.05). 효모 수는 NFS25 처리구와 WFS25 처리구에서 유의적인 차이를 나타내는 2.55와 2.51로 유의적으로 높았다 (P<0.05). 맹장 내에서 균총은 총 균수 와 E. coli는 소장처럼 처리구간 유의적인 차이를 나타내지 않았다.본 발명에서 발효 오미자박의 사료 내 첨가급여는 산란계의 난 생산성 향상에 긍정적인 영향을 미치는 것으로 나타났다Also, Wickerhamomyces sp. The experiment was carried out to investigate the effect of SK1819 non - fermented Omiza bean on the productivity of laying hens and laying hens by feeding 0.25% and 0.50% of dry non - fermented Omiza bean, respectively. The treatments consisted of a control diet fed general diet, NFS25 supplemented with 0.25% non - fermented omiza paste, NFS50 supplemented with 0.50% non - fermented omiza paste, and Wickerhamomyces The WFS25 treated with 0.25% FFS and the WFS50 treated with 0.50% were tested for 28 days with 9 replicates per 5 treatments. In terms of productivity, productivity was high at 90.83% ( P <0.05) in WFS25 treatment at 1 ~ 2 weeks and 88.69% and 91.63% in WFS50 at 3 ~ 4th week respectively. Egg mass was significantly higher ( P <0.05) in WFS25 treatment at 55.46 g / day than at 1 and 2 weeks. Egg color was highest at 43.66 ( P <0.05) in WFS25 treatment at 3 ~ 4 weeks, but no consistent change was observed in egg yolk color. The fatty acid composition of egg yolk was significantly higher ( P <0.05) in WFS25 treated group, with 9.23% of stearate, 49.09% of oleate, 49.19% of total MUFA and 2.47% of arachidonate. There was no significant difference in the weight of liver, spleen and abdominal fat and the ratio of body weight to liver, spleen and abdominal fat weight. Total bacterial counts and E. coli were significantly lower in WFS50 ( P <0.05). The number of yeast was significantly higher in NFS25 and WFS25 treatments ( P <0.05). Cecal microflora in the total number of bacteria and E. coli showed no significant difference in treatments like the intestine. Dietary salary of fermentation Schisandra nights in the present invention showed that the hens I have a positive impact on improving productivity

본 발명을 통하여 알 수 있는 바와 같이, 오미자박에서 자생하는 균주를 이용하여 오미자박 분말 발효물 제조와 발효 오미자박을 산란계에 첨가급여하여 미치는 효과를 알아보기 위하여 다음과 같은 세 가지 실험을 수행하였다. As can be seen from the present invention, the following three experiments were carried out in order to examine the effects of preparing a fermented product of Omija powder by using a strain native to Omija foil and feeding the fermented Omija foil to the laying hens .

본 발명에서는 자연발효 오미자박에서 오미자박 이용균주를 탐색하기 위하여 균주의 동정, 배양조건 및 배양 상 특징조사, 분리균주의 오미자박에서 생존성 실험을 수행하였다. 실험결과를 통하여 분리된 다섯 가지 균주가 모두 효모이다.이 다섯 가지 균주는 각각 3그룹으로 나뉘고, 그 중 SK1819균주는 Wickerhamomyces sp.에 속하는데 비발효 오미자박 분말에 접종하면 25℃의 환경에서 가장 잘자랄수있는 균주로 판명되었다.In the present invention, identification of strains, culturing conditions and culture characteristics, and viability tests of the isolated strains were conducted in order to search for strains harvested from natural fermented Omija foil. The five isolates were divided into three groups, of which SK1819 strain was Wickerhamomyces sp. The inoculation of non-fermented omija powder resulted in the best strain to grow at 25 ℃.

균주의 형태학적 성질은 SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 및 SK1819 다섯 균주의 현미경 관찰을 통하여 출아하는 형태와 25℃에서 가장 높은 성장을 보였다. 오미자박에서 상기 다섯 가지 효모 균주를 발견할 수 있었던 원인은 오미자 자체적으로 효모와 곰팡이를 제외한 기타 균주에 대한 강한 항균 활성능 때문에 다른 균주들은 생존하지 못하고 효모 균주가 생존할 수 있는 것으로 사료된다.The morphological characteristics of the strains showed the highest growth at 25 ℃ with morphological observations of five strains SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 and SK1819. The reason why the five yeast strains were found in Omiza Park is that the other strains can not survive and the yeast strains can survive due to strong antimicrobial activity against other strains except for yeast and fungi.

현미경 관찰결과와 API 20C AUX Kit로 당 자화성 측정결과는 SK1759와 SK1760 두 가지 균주가 첫 그룹; SK1812균주와 SK1819균주가 두 번째 그룹; 및 SK1811균주가 세 번째 그룹을 이루면서 각각 동일한 당 이용성이 있음을 확인하였다.이러한 그룹은 오미자박 분말에 다섯 가지 균주접종 후 25℃환경에서 SK1819 균주가 가장 높은 생장곡선을 유지하였다. Microscopic observations and API 20C AUX Kit showed that the two strains SK1759 and SK1760 were the first group; SK1812 strain and SK1819 strain were the second group; And SK1811 strains were found to have the same sugar availability, respectively. In this group, the strain SK1819 maintained the highest growth curve at 25 ℃ after five inoculum strains.

18S rDNA sequence data BLST search 결과 SK1819 균주는 Wickerhamomyces anomalus AB126679 Type strain과 99% 상동성을 보이므로 그 이름을 Wickerhamomyces sp. SK1819로 정하였다.Wickerhamomyces sp. SK1819균주의 오미자박 분말 발효 최적 균주로 판단하였으며 발효온도는 현장에서 적용하기 쉬운 실온으로 정하였으며 생균수와 적정 발효기간을 고려하여 30일간 발효하였다.18S rDNA sequence data BLST search The SK1819 strain has 99% homology with Wickerhamomyces anomalus AB126679 Type strain and its name is Wickerhamomyces sp. SK1819. Wickerhamomyces sp. The fermentation temperature was determined to be room temperature, which is easy to apply in the field. Fermentation was carried out for 30 days considering the number of viable cells and proper fermentation period.

또 상기에서 확립한 Wickerhamomyces sp. SK1819로 발효한Schisandra chinensis fruit byproduct (WFS)와 비발효 Schisandra chinensis fruit byproduct (NFS)의 유기용매 추출물 생리활성을 측정하였다.In addition, the Wickerhamomyces sp. Schisandra chinensis fruit byproduct (WFS) fermented with SK1819 and non-fermented Schisandra The physiological activity of chinensis fruit byproduct (NFS) was measured.

WFS의 총 polyphenol 함량은 오미자박보다 차이가 크게 나타난 농도의 순서로 나열하면 Bu-OH층에서는 0.08 ㎎/㎖ 더 높은데 약 1.7배 높은 농도이다. n-Hexan 층에서도 NFS의 총 polyphenol 농도인 0.15 ㎎/㎖보다 약 1.26배 높은 0.19㎎/㎖이었다.The total polyphenol content of WFS is 0.08 ㎎ / ㎖ higher in the Bu-OH layer than that of the omija bush. In the n-hexane layer, the total polyphenol concentration of NFS was 0.19 mg / ml which was 1.26 times higher than that of 0.15 mg / ml.

WFS의 유기추출물층 CHCI3층의 total flavonoid 추출농도는 NFS의 약 23배이고anthocyanin 추출농도는 NFS의 약 2.6로 높게 나타내었다.DPPH free radical inhibition activity 는 NFS 보다 EtAOc층에서 약 8배, Bu-OH층은 약 3배, CHCl3층은 약 2.5배 강한 효과를 나타내었다. Superoxide dismutase (SOD) Like activity는 CHCl3층, Eth-OH층, n-Hexan층, EtAOc층 및 Aqueous층에서 NFS보다 높게 나타났다. 발효 오미자박의 생리활성은 추출용 유기용매가 소수성에서 친수성으로 가까이 갈수록 WFS의 생리활성이 높아지는 것을 확인할 수 있었다. The concentration of total flavonoids in the CHCl 3 layer of WFS was about 23 times higher than that of NFS and the anthocyanin concentration was about 2.6 higher than that of NFS. The DPFH free radical inhibition activity was about 8 times higher in the EtAOc layer than in the NFS, Layer was about 3 times, and the CHCl 3 layer was about 2.5 times stronger. Superoxide dismutase (SOD) Like activity was higher in the CHCl 3 layer, Eth-OH layer, n-Hexan layer, EtAOc layer and Aqueous layer than NFS. The physiological activity of fermented omija foil was confirmed to be higher in the biological activity of WFS from the hydrophobic to hydrophilic organic solvent for extraction.

6종의 pathogen에 대한 minimum inhibition concentration (MIC) 는 3.13-100 ㎎/㎖의 범위로 나타났다. WFS는 Salmonella gallinarum ATCC 9184 strain은 n-Hexan, CHCl3, EtAOc 및 Aqueous층의12.50 ㎎/㎖, Haemopillus somnus strain은 EtAOc층에서 3.13 ㎎/㎖, Haemopillus parasuisstrain은 Bu-OH층과 Aqueous층에서3.13 ㎎/㎖, Enterotoxigenic E. coli strain은 Eth-OH층과 EtAOc층에서 모두 6.25 ㎎/㎖, Staphylococcus aureus strain은 Eth-OH층과 EtAOc층에서 3.13 ㎎/㎖로 나타났다.The minimum inhibition concentration (MIC) for six pathogens ranged from 3.13 to 100 ㎎ / ㎖. WFS is Salmonella The gallinarum ATCC 9184 strain contained 12.50 ㎎ / ㎖ of n-Hexan, CHCl 3 , EtAOc and Aqueous layers, and Haemopillus The somnus strain was 3.13 ㎎ / ㎖ in the EtAOc layer, and Haemopillus The parasuis strain was 3.13 mg / ml in the Bu-OH layer and the aqueous layer, and Enterotoxigenic E. coli Strain was 6.25 ㎎ / ㎖ in both Eth-OH and EtAOc layers, and Staphylococcus aureus strain was 3.13 ㎎ / ㎖ in the Eth-OH and EtAOc layers.

Wickerhamomyces sp. SK1819 균주를 접종한 오미자박과 아무런 처리도 거치지 않은 비발효 오미자박을 각각 0.25%와 0.50% 급여하여 산란계의 생산성과 산란계에 미치는 영향을 알아보기 위하여 실험을 진행하였다. 처리구는 급여사료의 차이를 근거로 일반사료를 급여하는 대조구, 비발효 오미자박 0.25%를 첨가급여한 NFS25 처리구, 비발효 오미자박 0.50%를 첨가급여한 NFS50 처리구와 Wickerhamomyces sp.SK1819 균주를 접종한 발효 오미자박을 0.25% 첨가급여한 WFS25 처리구와 0.50%를 첨가급여한 WFS50 처리구로 5 처리 처리구 당 9수씩 4 반복으로 28일간 실험하였다. 사료섭취량과 폐사량은 첨가물 급여수준에 대하여 처리구별 유의적 차이가 없었고, 난 생산성에 대하여 1~2주차에는 WFS25 처리구 90.83%로 높은 생산성을 나타내었고 (P<0.05) 와 3~4주차의 결과 대조구 88.69%, WFS25 88.03%로 나타났다. Egg Mass는 1~2주차에 WFS25 처리구가 55.46 g/day로 유의적으로 높았다 (P<0.05). 계란품질은 난각 색은 3~4주차에 WFS25 처리구에서 높은 결과 43.66을 나타내었다(P<0.05). 난황의 지방산 구성은 WFS25 처리구에서 Stearate 는 9.23%, Oleate 는 49.09%, total MUFA 는 49.19% 및 arachidonate 2.47%로 유의적으로 높은 차이를 나타내었다 (P<0.05). 간, 비장 및 복강 지방의 무게와 간, 비장및 복강 지방의 무게에 대한 몸무게의 비율에서 대조구와 처리구간의 유의적인 차이를 나타내지 않았다. WFS50 처리구에서 총 균수와 E. coli는 유의적으로 낮은 균수를 나타내었다 (P<0.05). 효모 수는 NFS25 처리구와 WFS25 처리구에서 유의적인 차이를 나타내었는데 각각의 log10(cfu/g) 수치는 2.55와 2.51을 기록하였다 (P<0.05). 맹장 내에서 균총은 총 균수와 E. coli는 소장처럼 처리구간 유의적인 차이를 나타내지 않았다 Wickerhamomyces sp. Experiments were carried out to investigate the effects of feeding of SK1819 strain on the productivity of laying hens and laying hens by 0.25% and 0.50% of the non - fermented. The treatments consisted of control, which fed general diet, NFS25 treated with 0.25% non - fermented omija, NFS50 treated with 0.50% non - fermented omija, and Wickerhamomyces sp.SK1819 The WFS25 treated with 0.25% fermented Omija foil and the WFS50 treated with 0.50% were tested for 28 days with 9 replicates per 5 treatments. Feed intake and mortality were not significantly different between treatments. The productivity of WFS25 was 90.83% ( p <0.05) at 1 ~ 2 weeks, 88.69% of the control and 88.03% of the WFS25. Egg Mass was significantly higher ( P <0.05) as WFS25 treatment was 55.46 g / day at the 1st and 2nd week. Egg quality was highest at 43.66 ( P <0.05) in WFS25 treatment at 3 ~ 4 weeks. The fatty acid composition of egg yolk was significantly higher ( P <0.05) in WFS25 treated group, which was 9.23% in stearate, 49.09% in oleate, 49.19% in total MUFA and 2.47% in arachidonate. There was no significant difference in the weight of liver, spleen and abdominal fat and the ratio of body weight to liver, spleen and abdominal fat weight. Total number of bacteria and E. coli were significantly lower ( P <0.05). The number of yeast was significantly different between NFS25 and WFS25, and log 10 (cfu / g) values were 2.55 and 2.51, respectively ( P <0.05). In the cecum, the total number of microorganisms and E. coli showed no significant difference in the treatment interval as in the small intestine

Wickerhamomyces sp. SK1819균주를 접종한 발효 오미자박 분말을 산란계 사료 내 첨가급여는 산란계의 생산성 향상에 긍정적인 효과를 나타내므로 부산물 재이용으로 인한 처리비용 절감과 환경보존 효과 및 건강한 먹거리 생산에 유용한 것으로 사료된다. Wickerhamomyces sp. The addition of the fermented omija powder inoculated with SK1819 strain to the laying hens showed a positive effect on the productivity improvement of laying hens. Therefore, it seems to be useful for the reduction of the processing cost due to the by-product reuse and the environmental preservation effect and the healthy food production.

도 1은 위상차 현미경에 의한 SK1759, SK1760, SK1811, SK1812, 및 SK1819 균주의 사진(배율: x 1,000). 화살표는 효모의 출아를 나타냄. 그 세포들은 25℃에서 24시간 동안 YM아가에서 배양됨.
도 2는 K1759 및 SK1760 사이의 18S rDNA 서열 배열을 나타낸 그림.
도 3은 SK1812 및 SK1819 사이의 18S rDNA 서열 배열을 나타낸 그림.
도 4는 Kazachstania sp. 균주와 Evolutionary relationships of SK1759 및 SK1760 균주의 진화적 상관도를 나타낸 그림.
도 5는 Wickerhamomyces sp. 균주와 SK1812 및 SK1819 균주들 사이의 진화적 상관도를 나타낸 그림.
도 6은 SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 및 SK1819 균주에서 배양 온도에 따른 성장 곡선을 나타낸 그림(n=5).
도 7은 25℃ 배양(n=3) 동안 오미자박의 pH변화를 나타낸 그림.
도 8은 Kazachstania sp. SK1759, Kazachstania sp. SK1759, Candida sp. SK1811, Wickerhamomyces sp. SK1812, 및 Wickerhamomyces sp. SK1819 발효(n=5)ㅇ에서 오미자박에서 5 효모 균주의 세포수를 나타낸 그림.
도 9는 비발효 또는 발효 오미자박에서 유기용매 추출의 개략도
도 10은 비발효 오미자박 및 Wickerhamomyces sp. SK1819-발효 오미자박(n=3)의 총 폴리페놀 양을 나타낸 그림.
도 11은 비발효 오미자박 및 Wickerhamomyces sp. SK1819-발효 오미자박(n=3)의 플라보노이드 양을 나타낸 그림.
도 12는 비발효 오미자박 및 Wickerhamomyces sp. SK1819-발효 오미자박(n=3)의 안토시아닌 양을 나타낸 그림.
도 13은 비발효 오미자박 및 Wickerhamomyces sp. SK1819-발효 오미자박 에탄올 추출물(n=3)의 DPPH IC50을 나타낸 그림.
도 14는 비발효 오미자박 및 Wickerhamomyces sp. SK1819-발효 오미자박(n=3)의 SOD-유사 활성을 나타낸 그림.
FIG. 1 is a photograph (magnification: x 1,000) of SK1759, SK1760, SK1811, SK1812, and SK1819 strain by a phase contrast microscope. Arrows indicate the emergence of yeast. The cells were cultured in YM agar for 24 hours at 25 ° C.
Figure 2 shows the 18S rDNA sequence alignment between K1759 and SK1760.
Figure 3 shows the 18S rDNA sequence alignment between SK1812 and SK1819.
4 Kazachstania sp. Figure 1 shows the evolutionary relationships of the strains and the Evolutionary relationships of SK1759 and SK1760 strains.
FIG. 5 is a graphical representation of Wickerhamomyces sp. Figure shows the evolutionary correlation between strains and SK1812 and SK1819 strains.
FIG. 6 is a graph (n = 5) showing the growth curves of SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 and SK1819 according to the incubation temperature.
FIG. 7 is a graph showing the pH change of Schizandra chinensis during 25 ° C incubation (n = 3).
8 is Kazachstania sp. SK1759, Kazachstania sp. SK1759, Candida sp. SK1811, Wickerhamomyces sp. SK1812, and Wickerhamomyces sp. Figure 5 shows the number of 5 yeast strains from Schizandra chinensis in SK1819 fermentation (n = 5).
Fig. 9 is a schematic view of organic solvent extraction from non-fermented or fermented Omija foil
Fig. 10 is a graph showing the results of non-fermented Omija foil and Wickerhamomyces sp. SK1819-fermented omiza bark (n = 3).
Fig. 11 is a graph showing the results of non-fermented Omija foil and Wickerhamomyces sp. SK1819-fig showing the amount of flavonoid of fermented omiza bark (n = 3).
Fig. 12 shows the results of a comparison between the non-fermented Omija foil and Wickerhamomyces sp. SK1819-fermented oyster mushroom (n = 3).
Fig. 13 shows the results of a comparison between the non-fermented Omija foil and Wickerhamomyces sp. SK1819-DPPH IC 50 of ethanol extract of fermented Omiza bean (n = 3).
Fig. 14 is a graph showing the results of non- sp. SK1819-SOD-like activity of fermented omiza bark (n = 3).

이하, 비한정적인 실시 예를 통하여 본 발명을 더욱 구체적으로 설명한다. 단 하기 실시예는 본 발명을 예시하기 위한 의도로 기재된 것으로서 본 발명의 범위는 하기 실시예에 의하여 제한되는 것으로 해석되지 아니한다.Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to non-limiting examples. The following examples are intended to illustrate the invention and the scope of the invention is not to be construed as being limited by the following examples.

실시예Example 1: One: 오미자박Omiza Park 발효 균주의 동정 및 접종  Identification and Inoculation of Fermentation Strain 생존성Survivability

재료 및 사용 배지 조건Materials and Usage Medium Conditions

본 실험에 공시된 오미자박은 2010년 8월 경북 문경시 공평동 소재 그린 종합식품에서 제공받아 실험에 사용하였다. 오미자는 일반적으로 개화 120~125일차 되는 9월 중순에 수확하여 수분을 25%이하로 건조시킨다. 건조된 오미자 열매를 열탕에서 24시간 추출과정을 거친 후 남은 부산물이다.This study was conducted in August, 2010 in the green general food of Gongpyeong-dong, Myeong-buk, Gyeongsangbuk-do. Omija usually harvests in the middle of September, 120 to 125 days after flowering, and dries the water to less than 25%. It is a by-product after extracting dried Omiza berries in hot water for 24 hours.

균주분리용으로 YM (l % glucose, 0.5% peptone, 0.3% malt extract, 0.3% yeast extract, 2.0% agar (Becton, Dickinson and Company, USA) 배지를 Autoclave (MAC-501, Eyela, Tokyo, Japan)를 이용하여 121℃에서 12~15분간 멸균하여 45~50℃로 식힌 후 petri dish (90×150 ㎜, SPL, Gyeongki-do, Korea)에 부어서 실온에서 16시간 이상 건조하여서 균 분리용 평판배지로 사용하였다.For the isolation of the strains, 1 ml of YM (1% glucose, 0.5% peptone, 0.3% malt extract, 0.3% yeast extract, 2.0% agar (Becton, Dickinson and Company, USA) (90 × 150 ㎜, SPL, Gyeongki-do, Korea) and dried at room temperature for 16 hours or more. The plate was then sterilized by using a plate for bacterial isolation Respectively.

효모균주의 순수 분리 및 보존Pure isolation and preservation of yeast strain

자연발효된 오미자박 1 g을 멸균 생리식염수 (0.85% w/v NaCI) 용액 9 ㎖에 넣고 voltex (G-560, Scientific Industries, USA)로 균질화한 후 10분간 방치하였다. 표본을 순차 희석 후 1×10-5~1×10- 3농도의 표본을 YM 평판배지에 도말하여 30℃ incubator (Scientific VS-1203P, Vision, Korea)에서 18~25시간 배양하여 균주를 분리하였다. 분리된 균주의 colony를 YM 평판배지에 streaking 방법으로 3회 계대배양하여 단일 효모균주를 분리하였다. 1 g of spontaneously fermented Schizosaccharomyces pomaceii was homogenized in 9 ml of sterile physiological saline (0.85% w / v NaCI) solution and homogenized with a voltex (G-560, Scientific Industries, USA) and left for 10 minutes. After sequentially diluted sample 1 × 10 -5 ~ 1 × 10 - to 18-3 concentration samples the YM plate and smeared on the medium 30 ℃ incubator (Scientific VS-1203P , Vision, Korea) to 25 hours of incubation were isolated strains . The colony of isolated strains was subcultured three times by streaking in YM plate medium to isolate single yeast strains.

순수분리된 균주는 멸균된 YM broth에 1% 접종하여 30℃shaking incubator (J-SIL-R, Jisico Co., Ltd, Korea)에서 12~24시간 배양하여 그 배양액 100 ㎕를 멸균된 1 ㎖짜리 vial에 넣고 DMSO (dimethyl sulf oxide) (Bio basic Inc, Ontario, Canada) 900 ㎕첨가하고 균질 후 -70℃ deep freezer (MDF-U53V, Sanyo electric Co., Ltd, Japan)에서 보관하였다.The pure strains were inoculated 1% in sterilized YM broth and cultured in a shaking incubator (J-SIL-R, Jisico Co., Ltd, Korea) at 30 ° C for 12 to 24 hours. 100 μl of the culture was added to a sterilized 1 ml and 900 μl of DMSO (Bio Basic Inc, Ontario, Canada) was added to the vial. After homogenization, the cells were stored at -70 ° C deep freezer (MDF-U53V, Sanyo electric Co., Ltd., Japan).

균주의 동정Identification of the strain

효모의 분류동정법 "The yeast a toxonomic study" Kreger-Van R (1984)과 Barnett JA (2000) 에 근거하여 분리균주의 형태학적, 생리학적, 생화학적인 제반 특성 등을 따라 분류학적인 위치를 검토조사한 후 Lodder J와 Kreger-VanR (1952)과 Yarrow D (1998) 법으로 동정하였다. 분리 균주의 형태학적 분리방법은 YM 고체 평판배지에서 자란 colony의 모양, 색깔 및 크기 등을 관찰하여 광학현미경 (CX-40, Olympus, Japan)으로 자낭포자 유무와 단세포의 형태를 관찰하여 구분하였다.Based on Kreger-Van R (1984) and Barnett JA (2000), the taxonomic position of the isolated strains was investigated according to their morphological, physiological and biochemical characteristics. (1952) and Yarrow D (1998), respectively. The morphological separation method of the isolated strains was observed by observing the shape, color and size of the colony grown in the YM solid plate medium and observing the shape of the single cell with and without the ascospores in an optical microscope (CX-40, Olympus, Japan).

효모의 일반적 특성 조사Investigation of general characteristics of yeast

분리 균주의 YM 고체 평판 배지의 colony 특징, YM broth 에서 배양 특성, 최적온도 등에 따른 특성 구분은 Lodder J (1952) 와 Yarrow D (1998)의 방법을 근거로 진행하였다.The colony characteristics of the YM solid plate culture broth, YM broth culture characteristics, optimum temperature, etc., were classified according to Lodder J (1952) and Yarrow D (1998).

Party 자화성Harmony 시험 exam

API 20C Aux Kit (bioM?rieux?sa, France)를 이용하여 분리 균주의 당 자화성 유무를 판단하였다 (Lodder and Kreger-van Rij, 1952). API 20C AUX kit에 사용된 당 종류로는 D-glucose, glycerol, calcium 2-keto-gluconate, L-arabinose, D-xylose, adonitol, xylitol, D-galactose, inositol, D-sorbitol, Methyl-aD-glucopyranoside, N-acetyl-glucosamine, D-celiobiose, D-lactose (bovineorigin), D-maltose, D-saccharose (sucrose), D-trehalose, D-melezitose및 D-raffinose로 모두 19 가지이다. Using the API 20C Aux Kit (bioM? Rieux? Sa, France), the presence or absence of glycosylation of the isolates was determined (Lodder and Kreger-van Rij, 1952). D-glucose, glycerol, calcium 2-keto-gluconate, L-arabinose, D-xylose, adonitol, xylitol, D-galactose, inositol, D-sorbitol, D-maltose, D-saccharose (sucrose), D-trehalose, D-melezitose and D-raffinose.

멸균한 YM broth 5 ㎖에 분리 균주 1백금이 접종 후 shaking incubator (J-SIL-R, JISICO Co., LTD, Korea) 에서 24~48시간 배양하였다. 분리 균주 배양액은 API 20C Aux Kit와 동봉되어온 C Medium (ammonium sulphate 5 g/l, monopotassium phosphate 0.31 g/l, dipotassium phosphate 0.45 g/l, disodium phosphate 0.92 g/l, sodium chloride 0.1 g/l, calcium chloride 0.05 g/l, magnesium sulphate 0.2 g/l, histidine 0.005 g/l, tryptophane 0.02 g/l, methionine 0.02 g/l, agar 0.5 g/l, vitamin solution 1 ml/l, trace elements 10 ml/l, final pH : 6.4-6.8)에 1% 접종한 후 mcFariand standard 1# (BaSO4, 2.4×10-5mol/l)과 O.D.가 같게 kit box 내 동봉한 suspension medium (Denineralized water, 2 ㎖)을 보조 희석용액을 이용하여 희석하였다.One platinum strain was inoculated into 5 ml of sterilized YM broth and cultured for 24 to 48 hours in a shaking incubator (J-SIL-R, JISCO Co., LTD, Korea). The isolate culture broth was incubated with C 20 medium (ammonium sulphate 5 g / l, monopotassium phosphate 0.31 g / l, dipotassium phosphate 0.45 g / l, disodium phosphate 0.92 g / l, sodium chloride 0.1 g / trace element 10 ml / l, calcium phosphate 0.05 g / l, magnesium sulphate 0.2 g / l, histidine 0.005 g / l, tryptophane 0.02 g / l, methionine 0.02 g / , final pH: 6.4-6.8). The suspension medium (Denineralized water, 2 ml) enclosed in a kit box was supplemented with mcFariand standard 1 # (BaSO4, 2.4 × 10-5 mol / Lt; / RTI &gt; solution.

혼합액을 기포가 들어가지 않게 API 20C Aux Kit에 주입하고 산소 차단을 위하여 mineral oil (125㎖, bioM?rieux?sa, France)로 마무리하였다. API 20C Aux Kit에 주입된 균주배양은 25℃ incubator (Scientific VS-1203P, Vision, Korea)에서 48시간 배양 결과와 72시간 배양결과를 근거로 결과에 나타내었다.The mixture was poured into API 20C Aux Kit to prevent air bubbles from entering and finished with mineral oil (125 mL, bioM? Rieux? Sa, France) to block oxygen. Culture of the strains injected into the API 20C Aux Kit was shown in the results based on the incubation results for 48 hours and 72 hours in a 25 ° C incubator (Scientific VS-1203P, Vision, Korea).

세포의 성장 특징Growth characteristics of cells

YM 평판배지 상에서 48시간 배양, 활성화한 분리 균주를 2% glucose-yeast extract-peptone water (glucose 20g, yeast extract 5g, peptone 10g, D.W. 1 L) 에 접종한 다음 25℃에서 3 일간 배양하여 광학현미경 (CX-40, Olympus, Japan)을 이용하여 세포형태를 관찰하였다. 모두 동일한 배율인 ×1,000로 관찰하였으며 주로 출아 (budding)여부의 유무와 그 출아형태의 차이점을 관찰 근거로 개체의 차이를 구분하였다.The cells were cultured on YM flat plate for 48 hours and inoculated into 2% glucose-yeast extract-peptone water (glucose 20 g, yeast extract 5 g, peptone 10 g, DW 1 L) (CX-40, Olympus, Japan). All of them were observed at the same magnification × 1,000, and the differences among the individuals were classified based on observation of the presence or absence of budding and differences in the appearance of the budding.

분리 균주의 생장성 비교Comparison of Growth Performance of Isolated Strains

YM 고체 배지와 MRS 고체 배지에서 배양한 SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 및 SK1819 균주의 적정 생장을 위하여 분리 배지인 YM broth를 이용하여 분리한 다섯 가지 균주의 생장성을 측정하였다. YM Broth 두 종류의 배지에 분리한 다섯 가지 균주를 접종하고 배양온도를 20℃, 25℃, 30℃, 37℃, 40℃ 및 45℃ 여섯 온도로 설정한 incubator (Scientific VS-1203P, Vision, Korea)에서 각각 0, 12, 24, 36 및 48 시간차 균주의 생장성을 측정하였다. 균주의 생장성 측정방법은 96 well plate (SPL, Korea)를 이용하여 흡광도를 측정하였다. 흡광도와 실제 plate 상의 도말 결과를 근거로 환산하여 실제 균수를 계산하였다.YM broth was used for the growth of SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 and SK1819 strains in the solid medium and the MRS solid medium. YM Broth Inoculated with five strains isolated on two different mediums and incubated at six temperatures of 20, 25, 30, 37, 40 and 45 ℃ (Scientific VS-1203P, Vision, Korea ) Were used to measure the growth of strains of 0, 12, 24, 36 and 48 hours, respectively. The absorbance of the strain was measured using a 96 well plate (SPL, Korea). The actual number of bacteria was calculated based on the absorbance and the result of coating on the actual plate.

DNADNA 분리 detach

분리된 균주로부터 chromosomal DNA 분리는 GenEx™genomicsx genomic DNA extraction kit(General Biosystel11, Korea)를 사용하여 분리하고, 분리된 genomic DNA는 18S rDNA sequencing을 위한 template로 사용하였다.Chromosomal DNA isolation from isolated strains was performed using GenEx ™ genomicsx genomic DNA extraction kit (General Biosystel 11, Korea) and isolated genomic DNA was used as a template for 18S rDNA sequencing.

PrimerPrimer

본 실험에서 순수분리한 효모 균종의 동정을 위하여 forward primer; NS1 (5′-GTAGTCATATGCTTGTCTC-3′), NS2 (5′-CTCTTTATTGATTGAGTTGG AATTTCAT GAT-3′), reverse primer; NS3 (5′-GCAAGTCTGGTGCCAGCAGCC-3′) NS4 (5′-TTCCATCAATTCCTTTAAG-3′)를 사용하여 18S rDNA 부분을 증폭하여 분석하였다(White et al., 1990).For the identification of yeast strains isolated in this experiment, forward primer; NS1 (5'-GTAGTCATATGCTTGTCTC-3 '), NS2 (5'-CTCTTTATTGATTGAGTTGG AATTTCAT GAT-3'), reverse primer; NS3 (5'-GCAAGTCTGGTGCCAGCAGCC-3 ') NS4 (5'-TTCCATCAATTCCTTTAAG-3') was amplified and analyzed (White et al., 1990).

PCRPCR 에 의한 증폭Amplification by

PCR (polymerase chain reaction) 반응을 PCR 장치 (9600 therrnocycler, PE Applied Biosysterns, Washin-gton USA)를 이용하여 5U 의 Taq polyl11erase, 10mM dNTP, l0 mM Tris-HCI (pH 8.3), 1.51M MgCb를 포함하는 PCR 혼합물을 이용하였다. PCR은 first denature 95 ℃로 (5 분), 30 cycle로 denaturation 95℃ (60초), annealing 55℃ (45 초) 및 extension 72℃ (5 분)로 수행하였다(Innis et al., 1990).PCR (polymerase chain reaction) was performed using 5U of Taq polyl11erase, 10mM dNTP, 10mM Tris-HCI (pH 8.3) and 1.51M MgCb using a PCR apparatus (9600 therrnocycler, PE Applied Biosysterns, Washin- PCR mixtures were used. PCR was performed with denaturation at 95 ° C for 60 seconds, annealing at 55 ° C for 45 seconds, and extension at 72 ° C for 5 minutes (Innis et al., 1990).

18S 18S rDNArDNA 의 염기서열 분석Nucleotide Sequence Analysis

증폭된 PCR 산물은 1.0% agarose gel 에 전기영동한 후 DNA 단편을 회수하였다. 염기서열분석은 DNA sequencing 대행업체인 SolGent (Ko-rea)의 자동염기서열분석장치 ABI PRISM@ 3100-avant genetic analysis (Applied Biosystel11s, USA)를이용하여 분석의뢰하였다.결정된 18S rDNA의 염기서열은 GeneBank의 BLAST program을 이용하여 이미 GeneBank에 등록되어 있는 18S rDNA의 염기서열과 상동성을 분석하여 NCBI (National center for biotechnology inforrnation)의 GeneBank database와 비교하여 동정하였다.The amplified PCR product was electrophoresed on 1.0% agarose gel and DNA fragments were recovered. The nucleotide sequence of the determined 18S rDNA was determined by GeneBank (Roche Diagnostics, St. Louis, MO, USA) using the ABI PRISM @ 3100-avant genetic analysis (Applied Biosystel 11s, USA) The nucleotide sequence and homology of 18S rDNA already registered with GeneBank were analyzed using the BLAST program of GeneBank, and compared with the GeneBank database of NCBI (National Center for Biotechnology inforrnation).

상기 실시예의 결과는 하기와 같다.The results of the above embodiment are as follows.

오미자박에서From Omiza Park 일반 균주의  Common strain 생존성Survivability

오미자박을 이용가능한 균주를 탐색하기 위하여 일반적으로 축산 현장에서 생균제로 많이 사용되는 Bacillus subtillis SK878, Lactobacillus brevis SK1304 및 Saccharomyces cerevisiae SK1708 세 가지 균주를 접종하여 오미자박 분말과 혼합한 후 생존성 실험을 진행하였다 (표 1).오미자박에 Bacillus subtillis SK878, Lactobacillus brevis SK1304 및 Saccharomyces cerevisiae SK1708 세 가지 균주의 배양액을 건 오미자박 무게 기준 1% 접종하였을 때 Bacillus subtillis SK878의 균 수는 5×107 cfu/g, Lactobacillus brevis SK1304와 Saccharomyces cerevisiae SK1708의 균 수는 모두 3×107 cfu/g 수준의 균 수를 나타내었다.Three strains of Bacillus subtillis SK878, Lactobacillus brevis SK1304 and Saccharomyces cerevisiae SK1708, which are commonly used as probiotics in animal husbandry, were inoculated with Omija powder to investigate the strains that could be used for Omija bacillus. Bacillus subtilis SK878, Lactobacillus brevis SK1304, and Saccharomyces cerevisiae SK1708 were inoculated at a dose of 1% on the basis of dry weight of omija, and the number of bacillus subtilis SK878 bacteria was 5 × 10 7 cfu / g, The number of bacteria of Lactobacillus brevis SK1304 and Saccharomyces cerevisiae SK1708 was 3 × 10 7 cfu / g.

실험에서 상기 세 가지 균주를 각각 접종한 오미자박을 30℃ 배양 결과 접종 12일 차에는 균들이 완전히 사멸하는 것을 확인하였다.이는 오미자박 자체의 강한 항균활성으로 인하여 Bacillus subtillis SK878, Lactobacillus brevis SK1304 및 Saccharomyces cerevisiae SK1708 세 가지 균주들이 죽어버리는 것으로 사료된다.As a result of the incubation of the three different strains of the above-mentioned three strains, the microorganisms were completely killed at the day of inoculation at 30 ° C. The strong antimicrobial activity of Bacillus subtilis SK878, Lactobacillus brevis SK1304 and Saccharomyces It is believed that three strains of S. cerevisiae SK1708 die.

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표 1은 오미자박의 발효에 대한 세 종류의 probiotics의 생존 세포 수를 나타낸 표이다.Table 1 shows the number of surviving cells of three kinds of probiotics for the fermentation of Schizandra chinensis.

분리 균주의 특성Characteristics of isolated strains

형태학적 특징Morphological feature

YM 고체배지에서 자란 SK 1759, SK 1760, SK 1811, SK 1812 및 SK 1819 균주의 형태에 대한 현미경 관찰결과는 도 1에서 나타내었다.효모의 전형적인 번식특징인 출아 (budding)딸세포형성을 관찰하여 효모 여부를 판단하였다. 이를 근거로 SK 1759, SK 1760, SK 1811, SK 1812 및 SK 1819 다섯균주는 효모균주로 판단된다.Microscopic observations of the morphology of the SK 1759, SK 1760, SK 1811, SK 1812 and SK 1819 strains grown in the YM solid medium are shown in Figure 1. The formation of budding daughter cells, a typical breeding characteristic of yeast, . Based on this, five strains of SK 1759, SK 1760, SK 1811, SK 1812 and SK 1819 are mainly yeast strains.

자연발효 오미자박에서 분리된 균주들은 세 그룹으로 나뉠 수 있었다. SK1759 균주와 SK1760 균주가 한 그룹으로 판명되었고, SK1811 균주와 SK1812 균주가 서로 유사하였으며, SK1819균주는 상기 두 그룹의 균주들과 다른 모양을 하고 있는 것을 확인하였다. SK1759 균주와 SK1760 두 균주는 계란 (oval) 형으로 번식된 개체들이 배지 내에서 각 개체별로 산재하였다. SK1811 균주와 SK1812 균주는 출아한 개체들이 서로 이어져서 위균사 (pseudonycelium)를 형성하고 있는 candida형 균체로 배지에서 위균사끼리 군집형태를 유지하는 생존형태를 관찰할 수 있었다. SK1819균주는 타원 (ellipsoideus) 형과 소시지 (pastorianus)형이 혼합되어 나타내는 개체로 번식한 개체들은 포도송이 형태로 수십~수백 개체들이 모여서 대부분 균체가 타원형으로 존재하고, 군집 밖의 균체들은 대부분이 소시지형을 나타나는데 이는 균체성상 시기별로 모양을 달리하는 균 자체적인 특성으로 사료된다. The strains isolated from natural fermented Omiza pak were divided into three groups. SK1759 and SK1760 strains were found to be one group. SK1811 and SK1812 strains were similar to each other. SK1819 strains were different from the strains of the two groups. The strains SK1759 and SK1760 were oval - shaped and distributed in the medium. SK1811 strain and SK1812 strain were able to observe the survival pattern of the hyphae of the hyphae in the culture medium with the candida - like cells forming the pseudonycelium due to mutual connection of the individuals. The SK1819 strain is a mixture of ellipsoideus and pastorianus, and the breeders are composed of grapevine clusters of several tens to several hundreds. Most of the cells are oval, and most of the cells outside the cluster are sausage type Which is considered to be a characteristic of the fungus with different shapes depending on the size of the fungus.

분리 균주의 당 Per se of the isolate 자화성Harmony

YM 배지에서 자란 5 종의 균주들이 19종의 당에 대한 당 자화성을 확인하기 위한 API 20C AUX Kit 생장성 측정실험을 진행하였다(표 2).SK1759와 SK1760 두 가지 균주는 각각 glycerol, calcium 2-keto-gluconate 및 N-acetyl-glucosamine 세 가지 당에서 양성 반응을 나타내었고 나머지 16 가지 당에 대해서는 음성반응을 나타내었다. SK1812균주와 SK1819균주는 D-glucose, glycerol, calcium 2-keto-gluconate, D-xylose, D-galactose, D-sorbitol, N-acetyl-glucosamine, D-maltose, D-saccharose (sucrose), D-trehalose 및 D-melezitose 11 가지 당에 대하여 양성반응을 나타내었고, 나머지 당에 대하여서는 음성반응을 나타내었다. SK1811 균주가 양성반응을 일으키는 당 종류로는 D-glucose, glycerol, methyl-a-D-glucopyranoside, D-celiobiose, D-maltose, D-saccharose (sucrose) 및 D-melezitose 7 가지이었다.Five strains grown in the YM medium were tested for their ability to inhibit glycosylation of 19 sugars by the API 20C AUX Kit (Table 2). The strains SK1759 and SK1760 were glycerol, calcium 2 -keto-gluconate and N-acetyl-glucosamine, and negative responses to the remaining 16 sugars. D-maltose, D-saccharose, D-galactose, D-galactose, D-sorbitol, N-acetylglucosamine, D-saccharose, trehalose and D-melezitose, and negative reaction was observed for the remaining sugars. D-glucose, glycerol, methyl-α-D-glucopyranoside, D-celiobiose, D-maltose, D-saccharose (sucrose) and D-melezitose were the most effective sugars in the SK1811 strain.

SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 및 SK1819 다섯 균주에 대한 19 가지 당 자화성 유무 실험 결과는 형태학적 성질에서 세 그룹을 형성하는 결과와 일치하게 나타났다.즉 SK1759, SK1760 두 균주는 oval형 그룹, SK1811균주와 SK1812균주는 Candida형 그룹, SK1819 Ellipsoideus형과 Pastorianus형의 혼합형 그룹으로 나뉜 것과 본 실험에서 당 종류의 자화성도 SK1759와 SK1760 두 균주가 한 그룹, SK1811 균주와 SK1812 균주는 또 다른 그룹, SK1819 균주는 단독으로 나타났다. The morphological properties of the 19 strains of SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 and SK1819 were identical to those of the three groups: SK1759 and SK1760 were oval, SK1811 And SK1812 were divided into Candida type group, SK1819 Ellipsoideus type and Pastorianus type mixed group, and in this experiment, one type of the two types of magnetization SK1759 and SK1760, another group of SK1811 strain and SK1812 strain, and SK1819 strain Respectively.

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표 2는 SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 및 SK1819 균주의 생화학적 특성을 나타낸 표이다.Table 2 shows the biochemical characteristics of SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 and SK1819 strains.

분리 균주의 항생제 내성Antibiotic resistance of isolated strains

자연 발효 오미자박에서 분리한 다섯 가지 균주 SK들의 항생제 내성을 측정한 결과는 표 3에서 나타내었다. 항생제를 이용하여 순수 분리된 균주를 구분하는 방법은 미생물 분리, 동정에서 매우 자주 사용되는 방법으로 간단하게 서로 다른 균을 골라내는데 매우 효과적인 방법이다.The antimicrobial resistance of five strain SKs isolated from natural fermented omija pak was measured. The method of isolating pure isolates using antibiotics is a very effective method for isolating different microorganisms simply by isolating and identifying microorganisms.

자연발효 오미자박에서 분리한 SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 및 SK1819 다섯 가지 균주의 상동성 여부를 구분하기 위하여 각각의 농도로 희석되어 있는 여섯 가지 항생제에 각각의 다른 농도 ampicillin 50, 100 ㎍/㎖, carbenicillin 5, 10 ㎍/㎖, chloramphenicol 5, 10 ㎍/㎖, gentamicin 12.5, 25 ㎍/㎖, kanamycin 10, 20 ㎍/㎖, rifampicin 10, 20 ㎍/㎖로 각각 균주의 배양액에 첨가하여 생존성을 측정하였다. In order to distinguish the homology between five strains of SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 and SK1819 isolated from natural fermented omija, six different antibiotics diluted at each concentration were added with different concentration of ampicillin 50, 100 ㎍ / ㎖, The viability of the strains was determined by adding carbenicillin 5, 10 ㎍ / ㎖, chloramphenicol 5, 10 ㎍ / ㎖, gentamicin 12.5, 25 ㎍ / ㎖, kanamycin 10, 20 ㎍ / ㎖, rifampicin 10 and 20 ㎍ / Respectively.

자연발효 오미자박에서 순수 분리한 다섯 가지 균주의 항생제 내성 결과는 ampi-cillin 100 ㎍/㎖를 제외한 모든 항생제에서 양성으로 나왔다. 이러한 특성은 효모와 곰팡이에서 나타나는 현상으로 자연발효 오미자박에서 분리한 SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 및 SK1819 다섯 가지 균주가 효모 혹은 곰팡이로 판단된다.The antibiotic resistance results of five strains isolated from pure fermented Omija pak were positive in all antibiotics except ampi-cillin 100 ㎍ / ㎖. These characteristics are seen in yeast and mold. Five strains of SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 and SK1819 isolated from natural fermented Omija pak were judged to be yeast or mold.

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표 3은 오미자박으로부터 분리된 균주들의 항생물질 내성 테스트 결과 표이다. Table 3 shows antibiotic resistance test results of strains isolated from Schizandra chinensis.

18S  18S rDNArDNA 분석에 의한 균주동정 Identification of strains by analysis

18S 18S rDNArDNA 염기서열 비교분석 Comparison of nucleotide sequences

SK1759 균주와 SK1760 균주의 염기서열 비교분석 결과는 도 2에서 나타내었고, SK1812 및 SK1819 4 균주의 염기서열 비교분석 비교결과는 도 3에 표시하였다.각각의 염기서열 분석결과를 근거로 query sequence를 SK1759 균주로, sbjct sequence를 SK1760 균주로 하여 비교분석결과 query sequence / sbjctsequence = 1081/1091로상동성이 99.08%이었다.서로의 gap은 10/1091로 0.92%의 차이성을 나타내었으며, 그 위치는 query sequence에서 561, 562, 1076, 1090, 1096, 1100 및 1103 번째 염기와 sbjctsequence에서 132, 257 및 1968 번째 염기에서 나타났다.SK1812균주를 query sequence로 SK1812 균주를 sbjctsequence로 하여 비교분석 진행한 결과 query sequence / sbjct sequence = 1095/1102의 비율로 상동성이 99.36%이었다. 서로 상이하게 나타난 gap은 7/1102로 0.63%의 상이성을 보였고, 그 위치는 query sequence에서 39, 1067 및 1077번째 염기와 sbjct sequence에서 132, 221, 1029 및 1102 번째 염기에서 나타났다.The results of comparative analysis of the nucleotide sequences of SK1759 and SK1760 are shown in Figure 2. The comparison results of the nucleotide sequences of the four strains SK1812 and SK1819 are shown in Figure 3. Based on the result of each nucleotide sequence, As a result of comparative analysis using sbjct sequence as SK1760 strain, the query sequence / sbjctsequence = 1081/1091 and the homology of the homology was 99.08%. The gap between them was 10/1091, which was 0.92% In the nucleotides 132, 257 and 1968 in the sbjctsequence and 561, 562, 1076, 1090, 1096, 1100 and 1103 bases. In comparison with the SK1812 strain as the query sequence and the sbjctsequence as the query sequence, the query sequence / sbjct sequence = 1095/1102 and the homology was 99.36%. The gap, which was shown to be different from each other, was 7/1102 and showed a 0.63% phase difference. The positions were found at positions 132, 221, 1029 and 1102 in 39, 1067 and 1077 base and sbjct sequence in the query sequence.

이를 근거로 SK1759균주와 SK1760균주 및 SK1812 균주와 SK1819 균주는 각각두 그룹으로 나눠지고 각 그룹에서도 18S rDNA 상에서 상동성이 각각 99.08%와 99.36%를 나타내었다.Based on these results, SK1759, SK1760, SK1812 and SK1819 were divided into two groups, respectively. In each group, homology was 99.08% and 99.36% on 18S rDNA, respectively.

MEGAMEGA 4 를4 이용한  Used 균주간Bacterial week 상동성Homology 비교 compare

자연발효 오미자박에서 분리, 동정한 SK1759, SK1760, SK1812 및 SK1819 네 균주의 18S rDNA에 대한 BLAST search 결과는 도 4와 도 5에서 나타내었다. SK1811은 query GenBank에서 검색결과 Type균주를 검색하지 못하여 그림에서 나타내지 않았다. The BLAST search results for 18S rDNA of four SK1759, SK1760, SK1812, and SK1819 isolates isolated from natural fermented Omiza mats were shown in FIG. 4 and FIG. SK1811 was not shown in the figure because the search result type strain was not searched in the query GenBank.

MEGA 4 software를 이용하여 GenBank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov)상의 기존의 확인된 type strain과 비교결과 SK1759 균주와 SK1760 두 균주의 비교분석결과는 Kazachstania viticola X99526 type균주와 100%의 상동성을나타내었다. 이를 근거로 SK1759 균주와 SK1760 두 균주는 각각K azachst ania sp. SK1759와 Kazachstania sp. SK1760 로 명명하였다. Kazachstania속은 Kazakhstan에서 발효 중인 포도에서 분리한 자낭균으로 Saccharomycetaceae family에 속한 균주이다.Compared with the same type of strain confirmed the results of the strain SK1759, and SK1760 comparison of the two strain analysis on the GenBank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov) using the software MEGA 4 is Kazachstania and 100% homology with viticola X99526 type strain. Based on this, SK1759 strain and SK1760 strain were identified as K azachst ania sp. SK1759 and Kazachstania sp. SK1760. The genus Kazachstania is the acacia separated from grapes fermented in Kazakhstan, Saccharomycetaceae family.

MEGA 4 software를 이용한 SK1812 균주와 SK1819 균주의 비교분석결과Wickerhamomyces anomalus AB126679 type strain과 99% 상동성을 보였다. 따라서 이 두 균주는 Wickerhamomyces sp.로 판단된다. Comparison of SK1812 and SK1819 strains using MEGA 4 software revealed that Wickerhamomyces anomalus And 99% homology with AB126679 type strain. Therefore, these two strains were named Wickerhamomyces sp.

SK1811SK1811 균주의  Strain BLASTBLAST 검색 Search

SK1811 균주의 18S rDNA sequence data로 BLAST를 이용한 GenBank sequence data와 alignment결과를 표 4에서 나타내었다.SK1811 균주는 MEGA 4 software를 이용하여 GenBank sequence data와 비교한 결과 균 종 분류 가지를 형성하지 않았다. BLAST 검색결과는 99%의 Max identity를 나타내는 accession 번호는 AM279680과 AY518522 로 각각 Candidakrissii JCM 9454 균주와 Candida oleophila JCM 1620 균주로 나타났다. Max identity 98%를 나타내는 것으로 각각 Bispora sp.,Candida sp., Dedaryomyces sp., Marine sp., Pichia sp. 및 Taphrina sp. 로 나타났다.GenBank sequence data and alignment results using BLAST as the 18S rDNA sequence data of SK1811 strain are shown in Table 4. As compared with the GenBank sequence data using the MEGA 4 software, the SK1811 strain did not form any strain class. In BLAST search results, the accession numbers representing 99% max identity were AM279680 and AY518522, respectively. Candidakrissii JCM 9454 and Candida oleophila JCM 1620 strain. Max identity 98%, respectively; Bispora sp., Candida sp., Dedaryomyces sp., Marine sp., Pichia sp. And Taphrina sp. Respectively.

Figure pat00004
Figure pat00004

표 4는 SK1811의 호모로지 서치 표이다.Table 4 is a homology search chart of SK1811.

분리 균주의 최적 배양온도Optimal culture temperature of isolate

자연발효 오미자박에서 분리배양한 SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 및 SK1819 다섯 균주의 최적 생장온도 대를 탐색하기 위하여 550㎚에서 나타난 흡광도 결과를 도 6에서 명시하였다. YM broth에서 다섯 균주의 생장곡선은 온도별 일부 균주를 제외하고 대부분 균주들의 생장곡선은 거의 일치한 모양을 나타내었다. YM broth 배지에서 25℃ 처리구의 배양결과 배양 36시간대에 O.D.가 SK1812 균주는 1.82와 SK1760 균주의 1.48로 20, 30, 35, 40 및 45℃ 처리구 보다 높은 흡광도를 나타내었다. 20℃ 처리구와 35℃처리구의 배양결과가 다섯 균주 모두 균일하게 자라는 경향이 있으나 그 외의 온도처리구에서는 흡광도가 1.5 미만이고, 또 균 생장 최고치가 48시간 대에서 나타났고, 다섯 가지 균주가 일치하지 않은 성장형태를 보였다.The results of absorbance at 550 nm were plotted in Fig. 6 in order to investigate the optimum growth temperature range of five strains SK1759, SK1760, SK1811, SK1812 and SK1819 isolated from natural fermented omija. In YM broth, the growth curves of five strains showed almost identical growth curves, except for some strains by temperature. In the culture broth of YM broth at 25 ℃, the absorbance of O.D., SK1812 and SK1760 was 1.82 and 1.48, respectively, at 20, 30, 35, 40 and 45 ℃ treatment at 36 hours. There was a tendency for all five strains to grow uniformly at 20 ℃ and 35 ℃, but the absorbance was lower than 1.5 at the other temperature treatments and the maximum value of bacterial growth was found at 48 hours. Growth pattern.

본 실험을 통하여 분리한 균주들의 배양 특징상 25℃가 5 가지 균주 모두에 가장 적합한 생육 온도대로 판단된다The culture temperature of 25 ℃ was the most suitable growth temperature for all 5 isolates.

오미자박Omiza Park 발효시  Upon fermentation pHpH 변화 change

자연발효 오미자박에서 분리한 5 가지 균주 접종 후 0, 2, 3, 7, 15, 21, 28일차 오미자박의 pH변화는 도 7에서 나타내었다. 대조구의 pH는 3.0 근처에서 큰 변화를 나타내지 않았으나 SK1819 균주와 SK1760 두 균주는 다른 세 균주에 비해서 큰 pH변화를 보였다. 오미자의 pH가 3.6으로 이는 본 실험결과와 유사한 수치를 나타내었다. 오미자는 원래 신맛이 강하여서 낮은 산도를 유지하며, 또 bacteria와 같은 일부 미생물 균종들이 자라기에 너무 낮은 이유로 산도의 영향을 적게 받는 효모 종류가 자랄 수 있는 것을 확인할 수 있었다.오미자박에서 분리한 균주들은 접종한 후 pH는 3.0 ~ 4.5의 낮은 범위로 유지하고 있는것을 확인할 수 있었다. The pH changes of 0, 2, 3, 7, 15, 21, and 28 days after inoculation of 5 strains isolated from natural fermented omija pak were shown in Fig. The pH of the control was not significantly changed near 3.0, but SK1819 and SK1760 showed a large pH change compared with the other three strains. The pH of omiza was 3.6, which is similar to the results of this experiment. Omija was originally strong in acidity and maintained low acidity, and some microbial species such as bacteria were too low to grow, so we could confirm that yeast species that are less affected by acidity can grow. After inoculation, it was confirmed that pH was kept in a low range of 3.0 to 4.5.

오미자박Omiza Park 분말에 균주 접종 생장 곡선 Growth curve of strain inoculated with powder

자연발효 오미자박에서 분리한 5 가지 균주를 오미자박에 접종한 후 25℃에서 발효하면서 생존균 수의 상용로그 수의 변화는 도 8에서 나타내었다. 0일차 균주 배양액 접종 후 측정 균주의 log10(cfu/㎖)치는 Kazachstania sp. SK1759 균주와Kazachstania sp. SK1760 두 균주는 각각 8.11과 8.03을 나타내었고, Wickerhamomyces sp. SK1819 균주의 log10(cfu/㎖)치는 7.26으로 나타났으며, Pichia sp. SK1811, Wickerhamomyces sp. SK1812 두 균주는 각각 4.94와 5.23으로 나타났다. Wickerhamomyces sp. SK1819 균주는 7일차에 최고 균수 log10(cfu/㎖)치8.85를 나타내고 발효 56일차까지 균주를 8.26의 균 수를 유지하였다. Wickerhamomyces sp . SK1812 균주는 발효 7일차에 최고인 7.82를 보이다가 발효 56일차에 6.30을 나타내었다.Kazachstania sp. SK1759균주와 Kazachstania sp. SK1760 두 균주를 접종한 처리구는 서서히 그 균수가 줄어들면서 발효 56일차에는 각각 2.14와 0.77로 마감하였다.Wickerhamomyces sp. SK1811 균주를 접종한 처리구는 발효 3일차부터 0.42로 급격히 떨어지면서 발효 56일차까지 다시 그 균수가 늘어나지 않았다.Fig. 8 shows changes in the number of viable cell counts of viable bacteria at 25 占 폚 after inoculation of 5 strains isolated from natural fermented Omija pomaceae. The log 10 (cfu / ml) value of the strain after the inoculation of the 0 day old strain culture solution sp. SK1759 strain and Kazachstania sp. SK1760 showed 8.11 and 8.03, respectively, and Wickerhamomyces sp. The log 10 (cfu / ml) value of SK1819 strain was 7.26, and Pichia sp. SK1811, Wickerhamomyces sp. SK1812 showed 4.94 and 5.23, respectively. Wickerhamomyces sp. The SK1819 strain showed the highest log 10 (cfu / ㎖) value of 8.85 on day 7 and the strain number of 8.26 was maintained up to 56 days of fermentation. Wickerhamomyces sp . The strain SK1812 exhibited a maximum of 7.82 on the 7th day of fermentation and showed 6.30 on the 56th day of fermentation. Kazachstania sp. SK1759 strain and Kazachstania sp. Treatment with SK1760 strains gradually decreased the number of bacilli to 2.14 and 0.77 on the 56th day of fermentation, respectively. Wickerhamomyces sp. The treatments inoculated with SK1811 strain rapidly dropped to 0.42 from the 3rd day of fermentation, and the number of bacteria did not increase again until 56 days of fermentation.

발효 오미자박의 pH는 5.0이하로 일반적으로 낮은 pH에서는 bacteria와 같은 일부 미생물 균종들이 잘 자라지 않는다. 또 오미자 씨앗의 추출물은 Lactobacillus plantarum (KCCM 11322), Bacillus subtilis (KCCM 11314), Escherichia coli (ATCC 10536), Staphylococcus aureus (KCCM 12103), Salmonella typhimurium (KCCM 11806), Penicillium citrirum (KCCM 11663)에 대하여 모두 항균활성이 강하게 나타났다(Jung et al., 2000). 본 연구에서 접종한 Kazachstania sp. SK1759 균주, Kazachstania sp. SK1760 균주 및 Candida sp. SK1811 균주가 적응하지 못하고균수가 줄어드는 이유는 오미자박을 파쇄한 이유 때문인 것으로 사료된다.The pH of the fermented omija foil is 5.0 or less, and at a generally low pH, some microbial species such as bacteria do not grow well. The extracts of Omija seed were Lactobacillus plantarum (KCCM 11322), Bacillus subtilis (KCCM 11314), Escherichia coli (ATCC 10536), Staphylococcus aureus (KCCM 12103), Salmonella typhimurium (KCCM 11806), Penicillium citrirum (KCCM 11663) was strongly antimicrobial (Jung et al., 2000). In this study, the inoculated Kazachstania sp. SK1759 strain, Kazachstania sp. SK1760 strain and Candida sp. The reason why the SK1811 strain can not adapt and the number of bacteria is decreased seems to be the reason of breaking the omiza pak.

실시예Example 2:발효  2: Fermentation 오미자박Omiza Park 유기용매 추출물에 관한 실험 Experiments on organic solvent extracts

본 발명의 연구대상은 발효과정을 거치지 않은 오미자박과 Wickerhamomyces sp.SK1819 균주를 이용하여 발효를 한 오미자박의 유기용매추출물로 두 가지 오미자박의 Eth-OH, n-Hexan, CHCl3, EtOAc, Bu-OH 및 Aqueous 등 6 가지 분액 층에 포함한 생리활성물질에 대하여 비교연구를 수행하였다.The object of the present invention is to provide a method for the fermentation of &lt; RTI ID = 0.0 &gt; The organic solvent extracts of Omiza japonica fermented with the sp.SK1819 strain were used as the biosurfactant in the six fractional layers of the two kinds of omnivores including Eth-OH, n-Hexan, CHCl 3 , EtOAc, Bu-OH and Aqueous Were compared.

발효오미자박의Fermentation of Omiza Pak 제조 및 일반성분 Manufacturing and general ingredients

발효용 오미자박 분말 15 ㎏을 믹서기 (HR2860, Philips, Netherland)로 분쇄하여 standard sieve (16#, Chung gye sang gong sa, Seoul, Korea)로 걸러서 그 크기를 골고루 하였다.접종균주는 실험1에서 분리동정한 Wickermamomyces sp. SK1819 균주를 선택하였다. YM (l % glucose, 0.5% peptone, 0.3% malt extract, 0.3% yeast extract, 2.0% agar, Becton, Dickinson and Company, USA) Broth 5 ㎖에 접종하여 30℃ shaking incubator (J-SIL-R, JISICO Co., Ltd., Korea)에서 48시간 배양하였다. 이 배양액을 다시 YM broth 100 ㎖에 1% 접종하여 30℃ shaking incubator 에서 36시간 배양하였다. 균 접종은 멸균된 소형분무기 (700 ㎖, Loving Home, Korea)로 골고루 접종하였다. 발효용 starter 효모균 Wickerhamomyces sp. SK1819 균주 접종 완료한 오미자박 분말은 실온에서 30일간 발효과정을 거쳤다. Starter로 접종한 효모가 오미자박 분말에서의 생장상태를 확인하기 위하여 실험개시 0, 3, 7 및 30일차에 평판 고체배지 도말법으로 살아있는 효모균수를 측정하였다. 생균수 실제 측정 수치는 Log10(cfu/g)로 환산하여 표시하였다.Fifteen kilograms of omega - starch powder for fermentation were ground with a blender (HR2860, Philips, Netherland) and filtered through a standard sieve (16 # , Chunggye sang gong sa, Seoul, Korea) Compassionate Wickermamomyces sp. SK1819 strain was selected. (J-SIL-R, JISICO, Japan) was inoculated in 5 ml of YM broth (1% glucose, 0.5% peptone, 0.3% malt extract, 0.3% yeast extract, 2.0% agar, Becton, Dickinson and Company, USA) Co., Ltd., Korea) for 48 hours. The culture was inoculated 1% in 100 ml of YM broth and cultured in a shaking incubator at 30 ° C for 36 hours. Inoculation was inoculated evenly with a sterile small sprayer (700 ml, Loving Home, Korea). Starter yeast for fermentation Wickerhamomyces sp. After the inoculation of SK1819 strain, the powder of Omija was fermented at room temperature for 30 days. Yeast cells inoculated with Starter were examined for the number of live yeast cells by flat plate solid smear method at 0, 3, 7, Actual measured values of live cells were expressed in terms of Log 10 (cfu / g).

오미자박과 발효 오미자박의 일반성분은 A.O.A.C 법(Cunniff, 1997)에 준하여 분석하였다.The general components of Omija pak and fermented omiza pak were analyzed according to the A.O.A.C method (Cunniff, 1997).

유기용매 추출Organic solvent extraction

비발효 오미자박과 발효오미자박을 각각 1 ㎏을 추출용 ethanol (Merck, Darmstadt, Germany) 2 l를 가하고 하루에 2번씩 흔들면서 7일간 상온 침출, 추출 후 여지 (1#, Whatman, England)로 불순물을 제거한 여과액을 감압 농축기 (NVC-2000, Eyela, Tokyo, Japan)로 ethanol 추출물을 얻었다. 200 ㎖ 증류수로 추출물을 희석한 후 증류수 용해 추출물층과 순서별로 각각 n-Hexane (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) (100 ㎖씩 3번), chloroform (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) (100 ㎖씩 3번), ethyl acetate (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) (100 ㎖씩 3번) 및 butanol (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) (100 ㎖씩 1번) 로 혼합 후 10시간 이상 정치 분액한 n-Hexane, chloroform, ethyl acetate, butanol 및Aqueos층은 감압농축기로 농축하였다 (도 9).(1 # , Whatman, England) with 2 l of extractive ethanol (Merck, Darmstadt, Germany) and shaking 2 times a day for 7 days at room temperature and extracting 1 ㎏ of non fermented Omija and fermented Omija The filtrate from which the impurities were removed was subjected to ethanol extraction with a vacuum concentrator (NVC-2000, Eyela, Tokyo, Japan). Hexane (Sigma Co., St. Louis, Mo., USA) (100 ㎖ three times) and chloroform (Sigma Co., St. Louis, MO) were added to the distilled water-soluble extract layer and diluted with 200 ml of distilled water. (Sigma Co., St. Louis, Mo., USA) (3 times by 100 ml each) and butanol (Sigma Co., St. Louis, Mo., USA) (1 × 100 ml). The mixture was concentrated for more than 10 hours. The n-hexane, chloroform, ethyl acetate, butanol, and Aqueos layers were concentrated using a vacuum concentrator (FIG.

항산화 활성Antioxidant activity

gun polyphenolpolyphenol 함량 측정 Content measurement

비발효 오미자박과 발효오미자박에 포함된 총 페놀 함량을 측정하기 위하여 folin-denis법(Gutfinger, 1981)에 근거하여 각종 유기용매추출물 1 ㎖에 folin-ciocalteau 시약과 10% Na2CO3 용액을 각각 1 ㎖씩 순서대로 첨가 후 voltex (G-560, Scientific Industries, USA)로 혼합 후 60분간 실온 반응 후 UV spectrophotometer (UV1650PC, Shimadzu, Tokyo, Japan)로 700 ㎚의 흡광도 (Optical Density, O.D.)를 측정하였다. 측정한 흡광도를 표준물질 caffeic acid (Sigma Co., St. Louis, MO, USA)의 농도를 각각 25, 50, 75 및 100 ㎍/㎖로 제조한 후 동일한 방법으로 흡광도를 측정하여 총 페놀 함량 환상용 표준 검량선을 작성하였다. 표준 검량선과 공시된 비발효 오미자박과 발효 오미자박의 시료 추출물 흡광도를 비교하여 시료추출물의 총 페놀 함량을 산출하였다.In order to measure the total phenol content of non-fermented omiza mats and fermented omiza mats, folin-ciocalteau reagent and 10% Na 2 CO 3 were added to 1 ml of various organic solvent extracts based on the folin-denis method (Gutfinger, 1981) (G-560, Scientific Industries, USA). After incubation for 60 minutes at room temperature, the absorbance at 700 nm (Optical Density, OD) was measured with a UV spectrophotometer (UV1650PC, Shimadzu, Tokyo, Japan) ) Were measured. The absorbance was measured at 25, 50, 75 and 100 ㎍ / ㎖ of caffeic acid (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) Standard calibration curve was prepared. The total phenol content of the sample extracts was calculated by comparing the absorbance of the standardized calibration curve and the sample extracts of the disclosed non - fermented omiza pulp and fermented omiza pak.

gun flavonoidflavonoid 함량 측정 Content measurement

비발효 오미자박과 발효 오미자박의 총 flavonoid 함량을 측정하였다(Moreno et al., 2000). 측정용 시료 0.5 ㎖에 10% aluminum nitrate (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) 0.1 ㎖ 및 1 M potassium acetate (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) 0.1 ㎖, ethanol 4.3 ㎖를 차례로 가하여 혼합하고 실온에서 40분간 반응 후 UV spectrophotometer 를 이용하여 415 ㎚에서 흡광도를 측정하였다. 비발효 오미자박과 발효 오미자박 시료 추출물의 흡광도를 표준물질quercetin (Sigma Co., St. Louis, MO, USA)을 0, 25, 50, 75, 100 ㎍/㎖의 농도에서 얻어진 표준 검량선으로 비발효 오미자박과 발효 오미자박 추출물의 총 flavonoid함량을 환산하였다.The total flavonoid content of non-fermented Omiza bean and fermented Omiza bean was measured (Moreno et al., 2000). 0.1 ml of 10% aluminum nitrate (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) and 0.1 ml of 1 M potassium acetate (Sigma Co., St. Louis, Mo., USA) and 4.3 ml of ethanol were added to 0.5 ml of the measurement sample After mixing for 40 min at room temperature, the absorbance was measured at 415 nm using UV spectrophotometer. The absorbance of non-fermented Omija pak and fermented Omiza pak extract was measured by using a standard calibration curve obtained from quercetin (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) at a concentration of 0, 25, 50, 75 and 100 ㎍ / The total flavonoid contents of fermented omija and fermented omija were estimated.

DPPHDPPH radicalradical 에 대한 For 전자공여능Electron donating ability 측정 Measure

비발효 오미자박과 발효 오미자박 각종 유기용매 추출물의 전자공여능 (elecelect donation ability, EDA)은 각각의 추출물 시료에 대한 DPPH (α,α-diphenyl-picrylhydrazyl)의 전자공여 효과로 각 시료의 환원력을 측정하였다(Blais, 1958). ethanol 1 ㎖, 시료 10 ㎕, 100 mM sodium acetate buffer (pH 5.5) 990 ㎕를 분주한 시험관에 0.5 mM DPPH (Sigma Co., St. Louis, MO, USA)용액 (Abs. EtOH soln.) 0.5 ㎖를 넣어 vortex 하고 암실에서 5분간 반응을 유도한 후, 잔존 radical의 농도를 UV spectrophotometer를 이용하여 517 ㎚에서 흡광도를 측정하였다(Lee and Lee, 2008). 전자공여능은 다음 식으로 표시하였고, 처리구 SA와 대조군 CA의 측정된 흡광도 값을 대입하여 계산하였다.The electron donating ability (EDA) of non-fermented Schisandra chinensis and fermented Schisandra chinensis extract was measured by measuring the reducing power of each sample by the electron donating effect of DPPH (α, α-diphenyl-picrylhydrazyl) on each extract sample. (Blais, 1958). 0.5 ml of a 0.5 mM DPPH (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) solution (Abs. EtOH soln.) was added to a test tube in which 1 ml of ethanol, 10 μl of the sample and 990 μl of 100 mM sodium acetate buffer After incubation in a dark room for 5 minutes, the absorbance was measured at 517 nm using UV spectrophotometer (Lee and Lee, 2008). The electron donating ability was expressed by the following equation, and calculated by substituting the measured absorbance values of the treatment SA and the control CA.

Figure pat00005
Figure pat00005

DRSA: DPPH-Radicals Scavenging ActivityDRSA: DPPH-Radicals Scavenging Activity

SA: Sample AbsorbanceSA: Sample Absorbance

CA: Control AbsorbanceCA: Control Absorbance

SODSOD 유사활성Similar activity 측정 Measure

발효 오미자박 유기용매 추출물 시료의 SOD (super oxide dismutase)유사 활성능은 활성산소종을 과산화수소 (H2O2)로 전환하는 반응을 촉매하는 pyrogallol의 생성량을 측정하는 방법(Marklund and Marklund, 1974)으로 시료 중의 SOD 유사활성정도를 나타내었다. 일정농도의 시료 0.2 ㎖에 pH 8.5로 보정한 tris-HCl buffer (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) (50 mM tris[hydroxymethyl] amino-methane, 10 mM EDTA, pH 8.5) 2.6 ㎖와 7.2 mM pyrogallol 0.2 ㎖를 첨가하고 voltex 후 실온에서 10분간 반응 후 1 N HCl (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) 0.1 ㎖를 가하여 반응을 정지시켰다. 반응액 중 산화된 pyrogallol의 양은 spectrophotometer 를 이용하여 420 ㎚에서 흡광도를 측정하였다. SOD 유사활성은 공시 시료와 대조구간의 흡광도 차이를 백분율로 나타내었다. The superoxide dismutase (SOD) -like activity of fermented organic solvent extracts was determined by measuring the amount of pyrogallol that catalyzes the conversion of reactive oxygen species to hydrogen peroxide (H 2 O 2 ) (Marklund and Marklund, 1974) Indicating the degree of SOD-like activity in the sample. 2.6 ml of tris-HCl buffer (Sigma Co., St. Louis, Mo., USA) (50 mM tris [hydroxymethyl] amino-methane, 10 mM EDTA, pH 8.5) After adding 0.2 ml of 7.2 mM pyrogallol, the reaction was stopped by adding 0.1 ml of 1 N HCl (Sigma Co., St. Louis, MO, USA) to the reaction mixture at room temperature for 10 minutes. The amount of oxidized pyrogallol in the reaction solution was measured by using a spectrophotometer at 420 ㎚. SOD - like activity was expressed as a percentage of absorbance difference between the control sample and the control.

대조구인 ascorbic acid의 농도는 100㎍/㎖, 발효 오미자박과 비발효 오미자박 Eth-OH 층, n-Hexan 층, CHCl3 층, EtAOc 층, Bu-OH 층, Aqueous 층의 농도는 각각 500㎍/㎖로 측정하였다.The concentration of the control of ascorbic acid is 100㎍ / ㎖, fermented and non-fermented Schisandra Chinensis foil layer foil Eth-OH, n-Hexan layer, CHCl 3 Layer, the EtAOc layer, the Bu-OH layer, and the Aqueous layer were measured at 500 μg / ml, respectively.

Figure pat00006
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SODA: SOD (super oxide dismutase) 활성SODA: Superoxide dismutase (SOD) activity

As: 7.2 mM pyrogallol 첨가된 샘플의 10분 후 흡광도As: Absorbance after 10 minutes of 7.2 mM pyrogallol added sample

Ac: 대조군의 흡광도Ac: absorbance of control group

항균활성 측정Antimicrobial Activity

비발효 오미자박과 발효 오미자박의 유기 추출물 시료의 항균활성 측정하기 위하여 그램 음성균으로 Salmonella gallinarum ATCC 9184, Haemopillus Somnus, Haemopillus parasuis, Mannheimiahaemolytica, Enterotoxigenic E. coli 균주와 그램양성균인 Staphylococcus aureus균주 등 모두 6 가지 균주를 활용하였다. To determine the antimicrobial activity of the organic extracts of non-fermented Omija and fermented Omija foams, Salmonella gallinarum ATCC 9184, Haemopillus Somnus , Haemopillus parasuis , Mannheimiahaemolytica , Enterotoxigenic E. coli Staphylococcus strains and Gram positive bacteria aureus strains were used.

유해 균주 배양용 배지인 LB (Luria-Bertani) broth는 auto clave (MAC-501, Eyela, Tokyo, Japan)를 이용하여 121℃에서 12~15 분간 멸균한 다음 실험에 사용하였다. 비발효 오미자박과 발효 오미자박 유기용매 추출물은 96well plate (90096, SPL, Korea) 상에서 1/2 희석법으로 11회 희석하여 MIC (minimum inhibition concentration)를 측정하였다(Breeuwer et al., 1996; Oyaizu, 1986). LB (Luria-Bertani) broth, a medium for culture of harmful strains, was sterilized at 121 ° C for 12 to 15 minutes using an auto clave (MAC-501, Eyela, Tokyo, Japan) The minimum inhibition concentration (MIC) was determined by diluting the non-fermented Omija mackerel and fermented Omija organic solvent extract with 1/2 dilution on a 96-well plate (90096, SPL, Korea) (Breeuwer et al., 1996; Oyaizu, 1986).

통계처리Statistical processing

In vitro 실험에서 얻어진 결과의 통계적 유의성은 statistical analysis system (SAS release ver. 9.2, SAS Inc., North Carolina, USA) program을 이용하여 분산분석을 진행하였고(Barr and Goodnight, 1971), 처리구간의 유의성은 Duncan's multiple range-test (Duncan, 1955)를 이용하여 95% 수준의 신뢰구간에서 실험결과를 검정하였다. 각 실험은 처리구별로 동일한 시료 3개를 사용하여 3 반복으로 시행하였다 In vitro The statistical significance of the results of the experiments was analyzed using a statistical analysis system (SAS release version 9.2, SAS Inc., North Carolina, USA) (Barr and Goodnight, 1971) The test results were tested at 95% confidence interval using multiple range-test (Duncan, 1955). Each experiment was carried out in three replicates using the same three samples

상기 실시예의 결과는 하기와 같다.The results of the above embodiment are as follows.

일반 성분함량General ingredient content

비발효 오미자박과 발효 오미자박의 일반 성분분석결과는 표 5에 나타내었다. 일반 성분분석 결과에서 발효 오미자박은 수분과 Ca 두 가지 항목을 제외한 다른 분석 항목에서는 모두 오미자박보다 낮은 함량을 나타내었다. 발효 오미자박의 일반 성분은 수분이 6.67%, 조 단백질은 14.83%, 조 지방 21.67%, 조 섬유 16.48%, 회분 1.80%, Ca 0.07% 및 P이 0.33%로 나타났다. 비발효 오미자박과 Wickerhamomyces sp. SK1811 접종 발효 오미자박의 일반 성분함량을 비교하여 보면 발효 오미자박의 수분 함량은 오미자박보다 1.5%가량 높은 결과를 보였고, 조 단백질은 1.46%가량 낮으며, 조 지방은 1.85%정도 적게 나타났다. 조 섬유도 오미자박이 17.73% 높게 나타났으며, Ash는 0.08%가량 발효 오미자박이 적게 검출되었고, 총 P도 오미자박이 0.01% 높게 나타내었다. Ca함량은 두 가지 모두 0.07%로 같게 분석되었다. 오미자열매의 일반 성분 함량은 수분 57.5%, 조 지방 18.8%, 탄수화물 12.6%, 조 단백질 11.1%, 조 섬유 5.4% 및 회분 4.9% (Kim and Choi, 2008)로 표 5에서 제시한 비발효 오미자박 및 발효 오미자박의 분석치와 차이를 나타내었다.The results of the analysis of the general components of non-fermented Omija bean and fermented Omija bean are shown in Table 5. From the results of the general composition analysis, fermented omijaek showed lower contents than other components except water and Ca. The general composition of fermented omija was 6.67% in moisture, 14.83% in crude protein, 21.67% in crude fat, 16.48% in crude fiber, 1.80% in ash, 0.07% in Ca and 0.33% in P. Non Fermented Omiza Pak and Wickerhamomyces sp. The moisture content of fermented omija foams was 1.5% higher than that of omija foams, crude protein was 1.46% lower and crude fat was 1.85% lower than that of SK1811 inoculated fermented omija foams. The crude fiber was also found to be 17.73% higher in the oyster mushroom, less than 0.08% in the fermented oyster mash, and the total P was higher by 0.01%. The Ca content was analyzed to be 0.07% in both cases. The content of common ingredients of Omiza fruit was 57.5% moisture, 18.8% crude fat, 12.6% carbohydrate, 11.1% crude protein, 5.4% crude fiber and 4.9% ash (Kim and Choi, And fermented omija foams.

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표 5는 비발효 오미자박 부산물및 Wickerhamomyces sp. SK1819 발효오미자박 부산물의 성분분석 결과를 나타낸 표Table 5 shows the results of the non-fermented Omiza gum by- product and Wickerhamomyces sp. Table showing the results of component analysis of SK1819 fermented omija ash by-product

생리활성 물질 함량Physiologically active substance content

gun polyphenolpolyphenol 함량 content

발효 오미자박과 비발효 오미자박의 유기용매 추출물의 총 polyphenol 함량은 도 10에서 나타내었다.발효 오미자박 유기용매 추출물은 EtOAc 추출물층을 제외한 나머지 다섯 가지 추출물에 함유한 총 polyphenol 함량은 비발효 오미자박 유기용매 추출물의 총 polyphenol 함량보다 높게 나타내었다. 함량이 높은 추출물부터 나열하면 Eth-OH 층은 0.24 ㎎/㎖, CHCl3층에서는 0.22 ㎎/㎖, n-Hexan 층과 Bu-OH 층에서 0.19 ㎎/㎖을 나타내었고, aqueous 층에서는 0.18 ㎎/㎖으로 분석되었다. 또 오미자의 주요 anthocyanin은 poenidin-3-glucoside으로 나타났다(Yang et al., 1982).The total polyphenol content of the organic solvent extracts of fermented omiza bacillus and non-fermented omiza bacillus was shown in Figure 10. The total polyphenol content in the five extracts except the EtOAc extract layer of the fermented organic solvent extracts of the fermented omiga- The total polyphenol content of the organic solvent extract was higher than that of the organic solvent extract. In the aqueous layer, 0.18 ㎎ / ㎖ was found for the Eth-OH layer, 0.22 ㎎ / ㎖ for the CHCl 3 layer, 0.19 ㎎ / ㎖ for the n-Hexan layer and the Bu-OH layer, Ml. &Lt; / RTI &gt; The main anthocyanin of Omija was poenidin-3-glucoside (Yang et al., 1982).

발효 오미자박의 총 polyphenol 함량이 오미자박 보다 차이가 크게 나타난 농도의 순서로 나열하면 Bu-OH층에서는 0.08 ㎎/㎖ 더 높은데 약 1.7배 높은 농도이다. n-Hexan 층에서도 비발효 오미자박의 총 polyphenol 농도인 0.15 ㎎/㎖보다 약 1.26배 높은 0.19㎎/㎖이었다. 그러나 비발효 오미자박 EtOAc층에서 0.17 ㎎/㎖의 농도로 발효 오미자 유기용매 추출물 EtOAc층의 0.12 ㎎/㎖보다 높은 총 polyphenol 함량을 나타내었다. 백삼의 총 phenol 화합물은 0.379% (Choi et al., 2006)로 본 실험의 결과보다 높게 나타났다.When the total polyphenol content of fermented omija foams is higher than that of Omija foams, the order of concentration is 0.08 ㎎ / ㎖ higher in Bu-OH layer, about 1.7 times higher. n-Hexan layer was about 1.26 times higher than the total polyphenol concentration of 0.15 mg / ml of non-fermented Schizosaccharum. However, the total polyphenol content in the non - fermented Omiza - Pak EtOAc layer was 0.17 ㎎ / ㎖ higher than the 0.12 ㎎ / ㎖ of the fermented Omija organic solvent extract EtOAc layer. The total phenol content of white ginseng was 0.379% (Choi et al., 2006).

Free radical에 대하여 대부분의 phenol성 물질이 효율적인 제거 효과를 나타내지만 free radical의 기질에 따라서 선택적으로 작용하는데 flavonoid는 그 치환기 위치 변화에 따라 free radical 소거능이 변화하며 또 methoxyl 그룹이 B-ring에 결합하면 free radical 소거능이 감소한다. Although most phenol substances are effective for free radicals, they act selectively depending on the free radical substrate. Flavonoids change their free radical scavenging ability according to the substituent position, and the methoxyl group binds to the B-ring Free radical scavenging ability decreases.

Pu-Erh차(Tea)에 Streptomyces bacillaris 혹은 Streptomyces cinereus균으로 발효할 적에 statin, 감마-aminobutyric acid (GABA) 및 총 polyphenols 등의 함량이 증진되고 DPPH radicals 제거활성이 증가된다고 보고하였다(Jeng et al., 2007). 또 Black Olives를 brine (8% NaCl,0.4% acetic acid)에 침지하여 자연발효시키면서 다양한 polyphenol 성분들에 대하여 분석을 한 결과 크게 달라지는 것을 보고하였다(Romero et al., 2004). 발효과정 동안에 일어나는 주요 반응으로 glucosides와 aglycons의 산 가수분해로 최종 발효산물에는 hydroxytyrosol이 12 mM 농도로 존재하면서 이것이 가장 중요한 phenol화합물로 나타났다. 신선한 올리브의 anthocyanins으로는 cyanidin 3-rutinoside과 cyanidin 3-glucoside으로 자연발효 후에는 검출되지 않았다.Pu-Erh Tea (Tea) Streptomyces bacillaris (Jeng et al., 2007). It was reported that the contents of statin, gamma-aminobutyric acid (GABA) and total polyphenols were increased when fermenting Streptomyces cinereus . In addition, it has been reported that the analysis of various polyphenol components by natural fermentation by immersing black olives in brine (8% NaCl, 0.4% acetic acid) is greatly different (Romero et al., 2004). The main reaction during the fermentation process was acid hydrolysis of glucosides and aglycons, which was the most important phenol compound with 12 mM of hydroxytyrosol in the final fermentation product. As anthocyanins of fresh olives, cyanidin 3-rutinoside and cyanidin 3-glucoside were not detected after natural fermentation.

실험에 의하면총 polyphenol 함량이 높아진 층은 친수성이 높은 유기용매 층으로 갈수록 높아지는 경향을 나타내는데 이는 오미자박에서는 지용성 유기용매 층에서 총 polyphenol 함량이 높은 것과 대조적이다. 오미자박 분말이 Wickerhamomyces sp. SK1819 균주를 통한 발효에서 polyphenol이 지용성에서 수용성으로 변화되는 것으로 사료된다.According to the experiment, the layer with higher total polyphenol content tends to become higher toward the hydrophilic organic solvent layer, which is in contrast to the higher total polyphenol content in the oil soluble organic solvent layer. Omiza gum powder is Wickerhamomyces sp. It is suggested that polyphenol is changed from lipid soluble to water soluble by fermentation through SK1819 strain.

gun FlavonoidFlavonoid 함량 content

비발효 오미자박과 발효 오미자박의 유기용매 추출물의 flavonoid 함량은 도 11에서 나타내었다.오미자박과 발효 오미자박의 유기용매 추출물의 flavonoid 농도는 Eth-OH 추출물 층을 제외한 나머지 n-Hexan 추출물 층, CHCI3추출물 층, EtOAc 추출물 층, Bu-OH 추출물 층 및 aqueous층의 flavonoid 함량은 발효 오미자박이 비발효 오미자박에 비해서 높은 결과를 나타내었다. 특히 발효 오미자박의 CHCI3 추출물 층의 flavonoid 함량은 604.7 ㎍/㎖으로 오미자의 26.5 ㎍/㎖의 22.82배에 달한다. 발효 오미자박의 n-Hexan 추출물 층, CHCI3추출물 층, EtOAc 추출물 층, Bu-OH 추출물 층 및 aqueous층의 유기용매 추출물 flavonoid 농도는 각각 90.35 ㎍/㎖, 604.67㎍/㎖, 235.64 ㎍/㎖, 71.89 ㎍/㎖, 103.11 ㎍/㎖이고 비발효 오미자박은 32.15 ㎍/㎖, 153.11 ㎍/㎖, 20.37 ㎍/㎖, 78.20 ㎍/㎖이다. 발효 오미자박 유기용매 추출물의 flavonoid 농도는 비발효 오미자박보다 각각 2.81배, 1.54배, 3.52배 및 1.32배 높았다.The flavonoid contents of the organic solvent extracts of the non-fermented Omija foil and the fermented Omija foil are shown in Figure 11. The flavonoid concentrations of the organic solvent extracts of Omija foil and fermented Omija foil were higher than those of the n-hexane extract layer except for the Eth- The content of flavonoids in the CHCl 3 extract layer, the EtOAc extract layer, the Bu-OH extract layer and the aqueous layer was higher than that of the non-fermented Schizosaccharomyces sp. In particular, CHCI 3 The flavonoid content of the extract layer is 604.7 ㎍ / ㎖, which is 22.82 times that of 26.5 ㎍ / ㎖ of Omija. The organic solvent extract flavonoid concentrations of the n-Hexan, CHCl 3 , EtOAc, Bu-OH, and aqueous layers of fermented omiga paste were 90.35 ㎍ / ㎖, 604.67 ㎍ / ㎖, 235.64 ㎍ / 71.11 / / ㎖, 103.11 / / ㎖, respectively. The non-fermented omiza bacillus was 32.15 ㎍ / ㎖, 153.11 ㎍ / ㎖, 20.37 ㎍ / ㎖ and 78.20 ㎍ / ㎖. The flavonoid concentrations of organic solvent extracts of fermented omijaek were 2.81, 1.54, 3.52 and 1.32 times higher than those of non - fermented omija, respectively.

본 실험에서 발효를 거친 오미자박의 경우 그렇지 않은 오미자박에 비하여 flavonoid 추출량이 높아졌는데 이는 발효과정을 통하여 항산화 활성 등 생리활성능을 높이는 물질들의 추출율이 높아지는 영향으로 사료된다.In this experiment, flavonoid extract was higher than that of non - fermented Schizosaccharomyces pombe which was fermented. It is considered that the fermentation process results in an increase in the extraction efficiency of materials that enhance the physiological performance such as antioxidant activity.

AnthocyaninAnthocyanin 함량분석 Content analysis

비발효 오미자박과 발효 오미자박의 anthocyanin 추출 농도 측정결과를 도 12에서 나타내었다.발효 오미자박의 anthocyanin 함량은 28.98 ㎎% 이었고, 비발효 오미자박의 anthocyanin 함량은 11.26 ㎎%이다. 이는 본 결과에서 Wickerhamomyces sp.SK1819 균주를 접종하여 발효한 오미자박의 anthocyanin 추출율이 발효과정을 거치지 않은 오미자박의 anthocyanin 추출율 보다 약 2.6배 높아진 것으로 나타났다. 이는 효모의 분해작용과 효모의 Eth-OH 생성으로 인한 오미자박 내에 함유한 anthocyanin용해도를 높이는 작용으로 인한 것으로 사료된다.The results of measurement of anthocyanin extract concentration of non - fermented Omiza bean and fermented Omiza bean are shown in Figure 12. The anthocyanin content of fermented Omiza bean was 28.98 ㎎% The content of anthocyanin in Schizandra chinensis was 11.26 ㎎%. These results suggest that Wickerhamomyces The extracting rate of anthocyanin in fermented oyster mushroom by inoculation of sp.SK1819 strain was about 2.6 times higher than that of the anthocyanin extract in the absence of fermentation. It is thought that this is due to the decomposition of yeast and the effect of increasing the solubility of anthocyanin in the oyster shell due to the production of Eth-OH in the yeast.

기능성 물질인 anthocyanin색소는 항산화 작용, 콜레스테롤 저하와 시력개선, 항암효과, 함염증, 혈관보호, 동맥경화, 심장병예방, 당뇨 억제 및 자외선으로부터의 보호기능 등이 있는 것으로 알려져 있으며 특히, 자외선 조사에 의한Malondiadehyde(MDA) 생성억제 효과는 tocopherol보다 12배나 높다(Yi and Kim, 2010). 북한산 반건조 오미자의 anthocyanin함량은 2.0 ㎎% (Cho et al., 2003)이었는데 본 결과에서는 약 15배 가량 높게 나타났다.The anthocyanin pigment, which is a functional substance, is known to have antioxidant activity, cholesterol lowering and improvement of vision, anticancer effect, inflammation, vascular protection, arteriosclerosis, prevention of heart disease, prevention of diabetes and protection against ultraviolet rays. Especially, The inhibitory effect of malondiadehyde (MDA) production is 12 times higher than tocopherol (Yi and Kim, 2010). The anthocyanin content of the North Korean semi-dried omija was 2.0 ㎎% (Cho et al., 2003), which was about 15 times higher in this study.

DPPH free radical 에 대한 전자공여능 D PPH free electron donating ability of the radical

공시된 오미자박과 발효 오미자박의 다섯 가지 유기용매 추출시료의 DPPH free radical에 대한 전자공여능 측정결과는 도 13에 나타내었다.CHCl3, EtAOc, Bu-OH 및 Aqueous 층 추출물에서 나타낸 DPPH free radical에 대한 전자공여능은 점차 높아지는 경향을 나타내었으며 수용성이 커짐에 따라 그 효과는 점점 큰 차이를 나타내었다. The results of measurement of the electron donating ability of DPPH free radicals of the five organic solvent extract samples of the disclosed Schizandra chinensis and fermented Schizosaccharomyces pomace are shown in Figure 13. DPPH free radicals shown in CHCl 3 , EtAOc, Bu-OH and Aqueous layer extracts The electron donating ability of the solution showed a tendency to increase gradually.

DPPH는 자유 radical로 517 ㎚부근에서 최대 흡광도를 나타내며, 전자를 받으면 흡광도가 감소하면서 자유 radical을 상쇄 또는 환원 능력이 강하면 높은 항산화 활성으로 인하여 자유 radical을 소거하는 것으로 간주하고, 동물체 내에서 자유 radical에 의한 노화지연 능력의 척도로 본다.DPPH shows the maximum absorbance at around 517 ㎚ with free radicals. When the electron is received, the absorbance decreases and the free radical is canceled due to its high antioxidative activity. As a measure of delayed aging.

발효 오미자박의 Aqueous층의 DPPH free radical에 대한 강한 전자공여능 효과를 나타내었는데 발효하지 않은 오미자박보다 약 186배 높은 결과를 보였다. 발효 오미자박의 EtAOc층 추출물은 오미자박보다 약 8.26배 강한 공여능을 나타내었고, 발효 오미자박 Bu-OH층의 추출물에서는 오미자박보다 약 3.05배의 높은 효과를 나타내었으며, 발효 오미자박의 CHCl3층 추출물의 DPPH free radical에 대한 공여능은 오미자박에 비해서 약 2.47배 높은 효과를 보였다.The strong electron donating effect on the DPPH free radical of the Aqueous layer of fermented omija was shown to be about 186 times higher than that of unfermented Schizosaccharomyces pombe. The EtAOc layer extract of fermented Omiza mushroom exhibited about 8.26 times greater potency than the Omiza mushroom extract. The extract of fermented Omiza mushroom Bu-OH layer showed about 3.05 times higher effect than that of Omiza mushroom, and the CHCl 3 layer The DPPH free radical scavenging ability of the extract was 2.47 times higher than that of Schizandra chinensis.

SODSOD 유사활성Similar activity

발효 오미자박과 비발효 오미자박의 유기용매 추출물의 SOD 유사활성능 측정결과는 도 14에서 나타내었다.발효 오미자박 유기추출물의 유사활성은 Bu-OH층을 제외한 다른 추출물층은 모두 비발효 오미자박 유기추출물의 유사활성보다 높은 경향을 나타내었다. 전체 유기용매 추출물층에서 발효 오미자박과 비발효 오미자박의 차이가 가장 큰 층은 CHCl3층으로 발효 오미자박은 68.89%이고 비발효 오미자박은 46.47%로 약 1.5배 높은 활성을 보였다. Eth-OH층에서는 발효 오미자박의 활성 86.36%가 비발효 오미자박의 활성 71.49%보다 1.2배 가량 높은 결과를 보였다. n-Hexan층에서 발효 오미자박의 활성 90.26%가 비발효 오미자박의 활성 82.7% 보다 약 1.1배 높게 나타났다. EtAOc층에서는 발효 오미자박은 76.66%로 비발효 오미자박의 67.97%보다 활성이 1.1배 정도 높고, Aqueous층은 90.36% 활성을 가진 발효 오미자박이 비발효 오미자박 76.36%보다 약 1.2배 높은 활성을 나타내었다.The results of measurement of the SOD-like activity of the organic solvent extracts of the fermented omiza bacillus and the non-fermented omiza bacillus were shown in Figure 14. The similar activities of the organic extracts of the fermented omiza pomace were as follows: The organic extracts showed higher activity than the similar activities. In the whole organic solvent extract layer, the layer having the largest difference between the fermented omija and nonfermented omija foams was CHCl 3 layer, and the fermented omija was 68.89% and the non-fermented omija was 46.47%. In the Eth-OH layer, 86.36% of the activity of fermented omija was 1.2 times higher than the activity of 71.49% of non-fermented omija. In the n-Hexan layer, 90.26% of the activity of fermented omija foil was about 1.1 times higher than the activity of non-fermented omija foil 82.7%. In the EtAOc layer, 76.66% of the fermented omiza pulp was active at a rate of about 1.1 times higher than that of the non-fermented omiza pulp at 67.37%, and the aqueous layer was about 1.2 times higher than that of the non-fermented omiza pulp .

오미자의 열수 추출물은 1㎎/㎖에서는 28.0% 와 10㎎/㎖에서는 83.2%의 활성을 나타났는데 본 실험의 결과인 500 ㎍/㎖농도의 aqueous층의 90.39%보다 낮은 활성을 나타내었다. 본 실험결과 SOD 유사활성능이 비발효 오미자박에서는 46.47~93.74%, 발효 오미자박에서는 68.89~90.39%로 과일, 야채 및 한약재의 결과보다 높은 활성을 나타내었는데 비발효 오미자박과 발효 오미자박의 SOD 유사활성능이 매우 높은 것을 확인할 수 있었다.The activity of hydrothermal extract of Omija was 28.0% at 1 mg / ㎖ and 83.2% at 10 ㎎ / ㎖, which was lower than that of the aqueous layer of 90 ㎍ / ㎖ concentration of 500 ㎍ / ㎖. As a result, SOD - like activity was 46.47 ~ 93.74% in non - fermented oyster mushroom and 68.89 ~ 90.39% in fermented oyster mushroom. The activity of SOD was similar to that of fruit, vegetable and medicinal herb. It was confirmed that the similar bow performance was very high.

발효 Fermentation 오미자박의Omiza's 항균활성 Antimicrobial activity

효모 접종 발효 오미자박의 MIC 항균활성 결과는 표 6에서 나타내었다. 비발효 오미자박 유기추출물과 Wickerhamomyces sp. SK1819 균주를 접종하여 발효한 오미자박의 유기용매 추출물은 공시된 모든 유해균에 대하여 항균활성을 나타내었다.비발효 오미자박 유기추출물과 발효 오미자박 유기추출물의 항균활성은 1/2 희석법으로 희석하여 각각 100, 50, 25, 12.5, 6.25 및 3.13㎎/㎖의 농도로 나타내었다. 각 유기 추출물의 항균활성 농도는 3.13-100 ㎎/㎖의 범위로 나타났다. 그람양성균 5종 중 Salmonella gallinarum 균주는 비발효 오미자박의 n-Hexan층과 발효 오미자박의 n-Hexan, CHCl3, EtAOc 및 aqueous층의 12.50 ㎎/㎖에서부터 항균활성을 보였고, Haemopillus Somnus 균주는 비발효 오미자박의 EtAOc층에서는 3.13 ㎎/㎖로 나타났으며, 발효 오미자박의 EtAOc층에서는 6.25 ㎎/㎖에서부터 항균효과를 나타냈다. Haemopillus parasuis 균주는 비발효 오미자박의 EtAOc층과 aqueous층 및 발효 오미자박의 Bu-OH층과 aqueous층에서 6.25 ㎎/㎖농도로 나타났다. Enterotoxigenic E. coli 균주에 대하여서는 비발효 오미자박 유기추출물에서 항균억제력이 높게 나타났다.The results of the MIC antimicrobial activity of the yeast inoculated fermented omiza mushroom are shown in Table 6. Non-fermented Omisadak organic extract and Wickerhamomyces sp. The antimicrobial activity of the organic extract of non-fermented Schizandra chinensis extract and the fermented Schizandra chinensis extract was diluted with 1/2 dilution method to give the antimicrobial activity of the organic extract of Schizandra chinensis 100, 50, 25, 12.5, 6.25 and 3.13 mg / ml. The concentration of antimicrobial activity of each extract was in the range of 3.13-100 ㎎ / ㎖. Salmonella among five gram-positive bacteria gallinarum The strains showed antimicrobial activity from 12.50 mg / ㎖ of n-Hexan layer of non-fermented Omija foil and n-Hexan, CHCl 3 , EtAOc and aqueous layer of fermented Omija foil, and Haemopillus Somnus The strain showed 3.13 ㎎ / ㎖ in the EtAOc layer of non - fermented Omija foil and showed antimicrobial effect in the EtAOc layer of fermented Omija foil at 6.25 ㎎ / ㎖. Haemopillus parasuis The strains were found to be 6.25 ㎎ / ㎖ in the EtAOc layer and aqueous layer of non-fermented Schizandra chinensis, Bu-OH layer and aqueous layer of fermented Schizandra chinensis. Enterotoxigenic E. coli The antimicrobial inhibitory effect of the non - fermented Omija pak organic extracts on the strains was high.

비발효 오미자박 추출물의 EtAOc층에서 3.13 ㎎/㎖의 농도에서 항균활성 효과를 나타내었다. 그람양성균인 Staphylococcus aureus 균주는 비발효 오미자박에서는 EtAOc층에서 12.5 ㎎/㎖에서부터 항균활성이 나타났지만 발효 오미자박에서는 Eth-OH층과 EtAOc층에서 모두 6.25 ㎎/㎖에서 항균활성이 나타났다. 6가지 가축질병 유발 유해 균주에 대한 항균활성능 측정에서 비발효 오미자박 유기 추출물의 활성이 발효 오미자박 유기 추출물에 비해서 활성능이 더 강한 경향을 보였다. 그러나 발효 오미자박의 aqueous층에서 나타낸 활성능은 발효과정을 거치지 않은 오미자박보다 높았다.The antioxidant activity of the non - fermented Schizosaccharomyces rugosum extract was observed at the concentration of 3.13 ㎎ / ㎖ in the EtAOc layer. Gram-positive Staphylococcus aureus The antimicrobial activity of non - fermented Schizosaccharomyces pombe was observed from 12.5 ㎎ / ㎖ in EtAOc layer. However, the fermented Schizosaccharomyces pombe showed antimicrobial activity in both Eth - OH and EtAOc layers at 6.25 ㎎ / ㎖. The activity of non - fermented omija pak organic extracts was higher than that of fermented omija pak organic extracts in antifungal activity performance of six livestock - causing harmful strains. However, the aerobic performance of the fermented Omija mushroom in the aqueous layer was higher than that of the fermented mushroom.

오미자 에탄올 추출물의 항미생물활성을 측정하기 위하여 세균, 효모, 곰팡이가 포함되는 12종류의 미생물에 대한 항미생물활성을 측정하였다. 추출물은 세균의 생육을 억제하지만 효모와 곰팡이의 생육은 억제하지 못하였다. B. subtilisS. aureus에 대한 최소 치사 농도는 1.6~3.2 ㎎/㎖이었으며, E. coli를 비롯한 gram 음성 세균의 최소 치사농도는 6.3-12.5 ㎎/㎖이었다. To determine the antimicrobial activity of the ethanol extract of Omija, antimicrobial activity against 12 microorganisms including bacteria, yeast and fungi was measured. The extract inhibited the growth of bacteria but did not inhibit the growth of yeast and fungi. The minimum lethal concentration of B. subtilis and S. aureus was 1.6 ~ 3.2 ㎎ / ㎖, and the minimum lethal concentration of gram negative bacteria including E. coli was 6.3-12.5 ㎎ / ㎖.

Figure pat00008
Figure pat00008

실시예Example 3:사료 내 발효  3: In-feed fermentation 오미자박Omiza Park 첨가 급여가 산란계 생산성에 미치는 영향  Effect of supplementation on productivity of laying hens

본 실험에서는 산란계 사료에 Wickerhamomyces sp. SK1819 균주를 접종하여 발효를 거친 발효 오미자박과 발효과정을 거치지 않은 비발효 오미자박을 각각 0.25%와 0.50%를 첨가급여시 산란계의 생산성에 미치는 영향을 조사함으로 사료첨가제로 사용가능 여부를 알아보려는 목적으로 진행하였다In this experiment, we used Wickerhamomyces sp. In order to investigate the effect of fermented omija (fermented soybean oil) fermented with SK1819 strain on the productivity of laying hens during the addition of 0.25% and 0.50% Proceeded for the purpose

발효 Fermentation 오미자박Omiza Park 제조 및 실험사료 Manufacturing and experimental feed

실험에 사용된 발효 오미자박은 비발효 오미자박 분말 2㎏에 Wickerhamo -mycessp. SK1819 균주 YM배양액을 1%씩 접종하여 상온에서 30일간 발효한 후 공시하였다.The fermented omiga paste used in the experiment was added to 2 kg of non-fermented omiga paste powder, Wickerhamo- myces sp. SK1819 strain YM culture was inoculated at 1%, and fermented at room temperature for 30 days and then exposed.

실험용 산란계 사료는 서울사료에서 구입하였으며 옥수수-대두박 위주의 사료를 사용하였다. 실험사료는 NRC (1994)에 근거하여 옥수수-대두박을 기초 사료원료로 대사에너지 (ME) 2,780 ㎉/㎏, 조단백질 (CP) 16.50%, phosph-orrus 0.21%, calcium 3.86%로 배합하였다(표 7). Experimental laying hens were purchased from Seoul diets and corn - soybean meal - based diets were used. Experimental diets were fed with corn-soybean meal as basic feedstuffs with 2,780 ㎉ / ㎏ of ME, 16.50% of CP, 0.21% of phosphates, and 3.86% of calcium, based on NRC (1994) ).

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실험동물 및 실험설계Experimental animal and experimental design

본 시험에서 실험동물로는 45주령 Hy-Line Brown 180수를 공시하여 사양시험을 실시하였다. 2011년 4월23일부터 5월13일까지 5주간 사양실험을 진행하였으며 사료 적응기간을 1주간 거친 후 4주 동안 발효 오미자박 급여사양 시험을 진행하였다. In this test, the number of 45-week Hy-Line Brown 180 was used as an experimental animal. From April 23rd to May 13th, 2011, the experiment was conducted for 5 weeks. After the feed adaptation period of 1 week, the fermented omija nut was tested for 4 weeks.

시험 설계는 비발효 오미자박 무첨가 일반 시판사료를 대조구로 하고, NFS25 (일반사료 + 비발효 오미자박 0.25%), NFS50 (일반사료 + 비발효 오미자박 0.5%), WFS25 (일반사료 + Wickerhamomyces sp. SK1819 균주 발효 오미자박 0.25%) 및 WFS50 (일반사료 + Wickerhamomyces sp. SK1819 균주 발효 오미자박 0.5%) 로 하여 5 처리구, 4 반복, 반복 당 9수씩 완전 임의배치하여 실시하였다.NFS50 (normal feed + non fermented omija foil 0.25%), NFS50 (general feed + non fermented omija foil 0.5%), WFS25 (general feed + Wickerhamomyces) were used as the control. sp. &Lt; / RTI &gt; 0.25%) and WFS50 (general feed + Wickerhamomyces sp. SK1819 strain fermented omiza pak (0.5%)), 5 treatments, 4 replicates, and 9 replicates per batch.

사양관리 및 폐사처리Spec Management and Processing

사육공간은 90 ㎝, 90 ㎝, 90 ㎝크기의 2 단 철제 케이지에서 케이지당 3수씩 사육하였다. 음용수는 산란계 3마리당 1개씩 설치한 자동급수 nipple을 통하여 자유 취수하게 하였다. 음수용 Nipple과 사료구유 숫자는 반복구별로 동일하게 설치하였다. The breeding space was divided into three groups of 90 cage, 90 cage and 90 ㎝. Drinking water was freely collected through an automatic watering nipple installed per one of three laying hens. Nipple and feed trough numbers were installed in the same way.

점등 관리는 자동점등 조절기를 이용하여 16L:8D로 하였으며, 기타 사육관리 방법은 Hy-Line 사양관리지침(Hy-Line, 2006)에 근거하여 실시하였다. 폐사계의 폐사일자를 기준으로 처리구당 누계사육 마리 수를 사료섭취량, 난생산성에 적용하여 계산하였다.The lighting management was performed using the automatic lighting controller at 16L: 8D, and other breeding management methods were conducted based on the Hy-Line specification management guide (Hy-Line, 2006). The cumulative number of rearing per treatment was calculated by applying to the feed intake and egg productivity based on the date of our company 's death.

본실험은 건국대학교 실험동물 윤리위원회 규정에 따라 사육하고 희생하였다.This experiment was carried out and sacrificed according to the regulations of the Experimental Animal Ethics Committee of Konkuk University.

조사항목 및 방법Survey items and methods

사료섭취량 및 난생산성 및 Feed intake and egg productivity and 폐사계Our company

발효 오미자박 첨가급여가 산란계의 생산성에 미치는 영향을 분석하기 위하여 사료섭취량과 난생산성을 조사분석하였다. 사료급여량은 매일 처리구별로 급여사료량을 합산하여 실제급여량으로 간주하고, 실험 마감시 실제급여량에서 사료급이구 내의 잔량과 바닥에 떨어진 유실 사료량을 합산계량한 후 각 처리반복구별 급여량을 계산하였으며 그 평균을 처리구별 사료 섭취량으로 활용하였다.사료 섭취량 계산은 폐사계수를 공시 실험계의 총 마리수에서 감하여서 실험결과에 나타내었다.Feed intake and egg productivity were investigated in order to investigate the effect of supplementation of fermented omiza mats on the productivity of laying hens. The amount of feed was divided into daily treatments, and the amount of feed was considered as the actual amount of feed. The remaining amount in the feed feed and the amount of feed from the bottom of the feed in the actual feed amount and the amount of feed lost in the bottom were calculated, The feed intake was calculated by subtracting the mortality from the total number of eggs in the experimental system.

산란율은 사양 실험진행 기간 중 매일 14시에 확인하였다. 처리구별 생산된 계란을 집란하여 정상란, 연란 및 파란 수를 합한 총 산란수에 처리구별 사육수수를 나눈 수치를 백분율 (%)로 표시하였다. 평균 난중은 당일 집란한 각 처리구별 계란의 무게를 측정하였고 정상란의 총 무게에 정상란 수로 나눈 평균치를 결과에 표시하였다.The egg production rate was confirmed at 14 o'clock every day during the specimen run. The eggs produced by the treatments were divided into the total number of eggs laid by total number of eggs combined with the number of eggs, the number of eggs, the number of eggs, and the number of bluegrass. Average egg weight was measured by weighing eggs of each treatments at the same day and the average value of the total weight of the eggs divided by the number of eggs was indicated in the results.

난질 및 Ovary and 난각질I horny

실험사료 급여 후 난질에 미치는 영향을 알아보기 위하여 난각 강도, 난각 두께및 난 각질을 조사하였다.난각 강도는 계란의 둔단부를 위로 하고 수직 압력을 가한 후 파각되는 순간압력을 난각 강도계 (FHK, Fujihara Industry Co., Ltd., Japan)로 측정하였다. 난각 두께는 난각 강도 측정 후 계란 중앙부의 난각을 난각 후도계 (FHK Peacock, Fujihara Industry Co., Ltd., Japan)로 측정한 20개의 평균 두께를 결과에 활용하였다. 계란의 Haugh unit은 난백 높이와 난중을 대비하여 (FHK, Fujihara Industry Co., Ltd., Japan) 계산하였다.The eggshell strength, egg thickness, and crustal quality were investigated in order to investigate the effects of feed intake on the egg quality, Fujihara Industry Co., Ltd., Japan). The eggshell thickness was determined by measuring the egg shell thickness at the central part of the egg after the measurement of egg shell strength using an average thickness of 20 eggs measured by an egg shell (FHK Peacock, Fujihara Industry Co., Ltd., Japan). The Haugh unit of the eggs was calculated by comparing the egg height to the egg weight (FHK, Fujihara Industry Co., Ltd., Japan).

Haugh unit = 100 log(H+7.75 - 1.7W0 .37)Haugh unit = 100 log (H + 7.75 - 1.7W 0 .37)

H = 난백높이(mm)H = height of egg white (mm)

W = 난중(g)W = lunar (g)

난황 색과 난각 색 비교는 모두 육안으로 색도계와 대조한 수치로 그 색도를 표시하였다. 난황색 비교 Roche egg yolk color fan (Roche, Switzerland)를 활용하여 비교하였고, 난각 색도는 난각 색도계 (QCM+, Technical services and suplies, York Ltd., England)를 이용하여 측정하였다.The egg yolk color and egg shell color comparison were visually compared with the colorimeter to indicate the chromaticity. The egg color was measured using an egg shell colorimeter (QCM + , Technical Services and suplies, York Ltd., England). The egg color was compared using a Roche egg yolk color fan (Roche, Switzerland).

장기 무게 및 Long-term weight and 장내균Enterobacteriaceae 총 조사 Census

공시 가축의 장기의 상대적 중량을 알아보기 위하여 처리구별 8수씩 간장, 비장의 무게를 소수점 아래 두 자리 기준으로 측정하여 생 체중 대비 %로 제시하였다. In order to determine the relative weights of the organs of the livestock, the weight of the liver and spleen was measured by 8 digits of treatment distinction.

장내 균총을 알아보기 위하여 소장과 맹장에서 계분을 1 g씩 취하여 십분의 일 희석방법으로 약10-1~약 10- 7농도로 희석하여 각 처리구별 장내 E. coil, Yeast, 총 균수를 log10(cfu/g)으로 환산하여 결과로 나타내었다.Tenth of the manure in the small intestine and the cecum by taking 1 g per day dilution method In order to examine the intestinal microflora of about 10 -1 to about 10 - each processing distinguished intestinal E. coil, Yeast, the total number of bacteria was diluted with 7 log 10 concentration (cfu / g).

통계 처리Statistical processing

in vivo 실험에서 얻어진 결과의 통계분석은 statistical analysis system (SAS release ver. 9.2, SAS Inc., North Carolina, USA) program을 이용하여 분석하였고 (Barr and Goodnight, 1971), General linear model (GLM) procedure (Koerts and Abrahamse, 1969)를 이용하여 분산분석을 진행하였다. 처리구간의 유의성은 Duncan's multiple range-test (Duncan, 1955)를 이용하여 95% 수준의 신뢰구간에서 실험결과를 검정하였다. SAS로 각 처리구의 데이터를 처리 전 Q-test (Muranaka, 1999)로 95% 신뢰구간 밖의 수치는 결측치 처리하였다. 각 실험은 처리구 당 9수씩 4 반복으로 시행하였다. in vivo Statistical analysis was performed using a statistical analysis system (SAS release version 9.2, SAS Inc., North Carolina, USA) (Barr and Goodnight, 1971) and Abrahamse, 1969). The significance of the treatment interval was tested using the Duncan's multiple range-test (Duncan, 1955). The Q-test (Muranaka, 1999) before the data of each treatment was processed by SAS, and the values outside the 95% confidence interval were discarded. Each experiment was carried out in 4 replicates, 9 replicates per treatment.

상기 실시예의 결과는 하기와 같다.The results of the above embodiment are as follows.

사료 섭취량 및 폐사량Feed intake and mortality

발효 오미자박과 비발효 오미자박을 각각 0.25%와 0.50% 첨가급여가 산란계의 사료섭취량과 폐사량에 미치는 영향은 표 8에 나타내었다. 본 실험에서는 사료 섭취량은 첨가물급여수준에 대하여 처리구별 유의적 차이가 없었다. 사료섭취량은 발효하지 않은 오미자박을 0.50% 첨가한 NFS50 처리구가 가장 높은 사료섭취량을 기록하였고 차례로 WFS50 처리구, 대조구, WFS25 처리구 및 NFS25 처리구 순으로 많이 섭취하였다.Table 8 shows the effects of 0.25% and 0.50% addition of fermented omiza bacon and nonfermented omiza bacon on feed intake and mortality of laying hens, respectively. In this experiment, there was no significant difference in feed intake between treatments according to supplement level. Feed intake was highest in the order of WFS50, control, WFS25 and NFS25 in the order of NFS50 supplemented with 0.50% of unfermented Omija bark.

전체 실험구에서 폐사는 실험개시 12일차에 WFS50 처리구에서 1마리, 14일차에 NFS25 처리구 중에서 1마리, 그리고 실험개시 16일차에 WFS25 처리구에서 1마리발생하였으며 처리구간 유의적인 차이를 나타내지 않았다. 적응기간 7일을 포함하여 전체 35일간 진행된 실험에서 전체실험 개체 180수 중 3마리 폐사가 발생되었는데 이는 전체 시험구의 약 1.67% 로 다른 연구의 평균 3% 보다 낮은 폐사률로 실험사료 처리와는 상관관계가 없는 것으로 판단된다(Choi and Son, 2006)In the whole experimental group, there was no significant difference in the treatments between the WFS50 treatment on the 12th day of the experiment, 1 of the NFS25 treatment on the 14th day and 1 case of the WFS25 treatment on the 16th day of the experiment. In a total of 35 days of experiment, including 7 days of adaptation period, 3 out of 180 specimens resulted in mortality of about 1.67% of the total test area, which is lower than the average of 3% of other studies (Choi and Son, 2006)

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난 생산성I am productive

발효 오미자박과 비발효 오미자박을 각각 0.25%와 0.50% 첨가급여가 산란계의 산란율에 미치는 영향을 표 9에서 나타내었다. 본 실험에서는 난생산성에 대하여 시험1~2주차와 3~4주차를 구분하여 비교분석하였다. 난 생산성은 1~2주차에서 일반 시판사료에 Wickerhamomyces sp. SK1819 균주를 접종하여 배양한 오미자박 0.25%를 혼합한 WFS25 처리구에서 90.83%로 유의적 차이가 있는 높은 생산성을 나타내었고 (P<0.05), 그 다음으로 생산성이 높은 처리구는 발효 오미자 0.50%를 첨가급여한 WFS50로 87.63%의 생산성을 나타내었다. 3~4주차에서는 WFS50의 생산성이 91.63%에 달하면서 대조구 88.69%, WFS25 88.03%와 함께 유의적으로 높게 나타났다. NFS50 처리구는 86.30을 기록하면서 비발효 오미자박 0.25%를 첨가급여한 NFS25 처리구의 76.62%보다 조금 높은 생산성을 나타내었다. Table 9 shows the effect of 0.25% and 0.50% addition of fermented omiza bacon and nonfermented omiza bacon on egg production in laying hens. In this experiment, the productivity of eggs was compared between 1 ~ 2 weeks and 3 ~ 4 weeks. I am productive at 1-2 weeks in general commercial feed Wickerhamomyces sp. The productivity of WFS25 treated with 0.25% of Omiza pomaceus cultured inoculated with SK1819 strain was 90.83%, which showed significant difference ( P < 0.05). The next highest productivity was 0.50% of fermented Omija The productivity of the WFS50 was 87.63%. In the 3rd and 4th weeks, productivity of WFS50 reached 91.63%, which was significantly higher than that of control (88.69%) and WFS25 (88.03%). The yield of NFS50 was 86.30, which was slightly higher than that of NFS25 treated with 0.25% non - fermented omija.

동충하초 3.0%, 인진쑥 1.5% 및 3.0% 처리구에서 산란율이 각각 73.4, 73.9, 74.2%였는데 대조구 71.7%에 비해서 유의차는 나타나지 않았다(Kim et al., 2006). 또 고온 스트레스 환경 내 산란계에 당귀, 지황, 산약, 차전초, 천궁, 둥글레, 오미자를 일정 비율로 배합한 생약제를 0.1, 0.2% 첨가급여 처리구의 산란율이 유의적으로 감소하였으나 생약제 0.05% 처리구는 대조구와 비슷한 생산성을 나타내었다(Min et al., 2004). 본 실험에서는 기본사료와 발효 오미자박과 비발효 오미자박으로 처리급여한 생산성이 당귀 등 다른 한약제와 혼합하여 급여한 처리구보다 생산성이 높았는데 이는 발효 오미자박과 비발효 오미자박이 생산성 향상에 긍정적인 영향을 미치는 것으로 사료된다.The egg production rate was 73.4%, 73.9% and 74.2%, respectively, but the difference was not significant compared to the control (71.7%) (Kim et al., 2006). In addition, the egg production rate of 0.1, 0.2% addition treatment of crude herbaceous herb which contains Angelica japonica, Rhizopus spp., Glycyrrhizae spp., Chungcheongcho, Dongguk, Donggol and Omija were significantly decreased in laying hens in high temperature stress environment. However, 0.05% Showed similar productivity (Min et al., 2004). In this experiment, the productivity of the basic diet, fermented omija bacon and non-fermented omija bacillus was higher than that of other herbal medicines mixed with other herbal medicines such as fermented bacon and nonfermented bacon. .

발효 오미자박과 비발효 오미자박을 각각 0.25%, 0.50% 첨가급여한 처리구의 난중 변화는 1~2주차에는 비발효 오미자박과 발효 오미자박 처리구가 대조구에 비해서 모두 유의적으로 높았다 (P<0.05). 난중치가 가장 큰 NFS25 처리구가 61.56 g으로 최고치를 나타내었고, 그 다음으로 각각 NFS50 처리구가 61.40 g, WFS50 처리구가 61.10 g 및 WFS25 처리구가 61.04 g으로 나타내었다. 실험 3~4주차에도 NFS25 처리구가 57.59 g으로 최고치를 NFS50 처리구가 57.62 g, WFS50 처리구가 57.52 g 및 WFS25 처리구가 56.82 g으로 1~2주차와 동일한 순서로 나열되었지만 대조구56.49 g과는 처리구간 유의적 차이는 없었다.Fermented omiza mats and fermented omija mats treated with 0.25% and 0.50% non - fermented omiza mats were significantly higher than those of the control ( P < 0.05 ). The highest NFS25 treatment was 61.56 g, followed by NFS50 treated 61.40 g, WFS50 treated 61.10 g and WFS25 treated 61.04 g, respectively. In the third and fourth weeks of experiment, NFS25 treatment was 57.59 g, NFS50 treatment was 57.62 g, WFS50 treatment was 57.52 g and WFS25 treatment was 56.82 g. There was no enemy difference.

고온 스트레스 환경 내 산란계에 오미자를 기타 한약제와 일정비율로 배합한 생약제를 0.1, 0.2% 첨가급여하였을 때 처리구의 시험개시 4주 후 난중은 각각 생약제 처리구에서 60.47 g과 60.27 g으로서 대조구의 57.70 g 보다 유의적으로 높은 결과를 보였다(Min et al., 2004).The egg weight was 60.47 g and 60.27 g in the crude herb treatment at 4 weeks after the initiation of the test when the crude herb medicine was added to the laying hens in the high temperature stress environment at a certain ratio of 0.1, 0.2% (Min et al., 2004).

일당 계란생산성을 설명하는 egg mass는 1~2주차에 Wickerhamomyces sp. SK1819 균주를 접종한 발효 오미자박을 0.25% 첨가급여한 WFS25 처리구에서 55.46 g/day로 대조구 50.26 g/day에 비해서 유의적으로 높았다 (P<0.05). WFS50 처리구 53.55 g/day, NFP50 처리구 52.99 g/day 및 NFS25 처리구에서 61.56 g/day를 나타내었다. 시험사료 급여 실험 3~4주차의 egg mass는 유의적 차이가 없는 것으로 나타났다.사료 내 발효 오미자박 급여량은 0.25% 첨가급여 처리구가 좋은 생산성을 나타내었으며,비발효 오미자박의 급여량 증가로 인한 생산성 향상 현상은 없었다.Egg mass, which accounts for the daily egg productivity, is expressed in Wickerhamomyces sp. ( P < 0.05) compared with control group (50.26 g / day) in WFS25 treated with 0.25% of fermented omiza bacillus inoculated with SK1819 strain. WFS50 treatment 53.55 g / day, NFP50 treatment 52.99 g / day and NFS 25 treatment 61.56 g / day. The egg weight of 3 ~ 4 weeks of the experimental diets was not significantly different from that of the experimental diets. The dietary supplementation of 0.25% fermented omija was shown to be good productivity, and the productivity of non - fermented omija was increased There was no phenomenon.

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발효 오미자박과 비발효 오미자박을 첨가한 산란계에서 시험 1~2주차와 3~4주차의 계란품질에 미치는 영향을 조사분석한 결과를 표 10에 나타내었다.난각 색은 실험 1~2주차에는 유의적인 결과를 나타내지 않았으나, 실험 3~4주차에 발효 오미자박 0.25% 첨가구인 WFS25 처리구에서 유의적으로 높은 (P<0.05) 결과를 나타내었는데 대조구 25.58보다 높은 26.91을 나타내었다. 계란의 난황색은 대조구가 7.97로 가장 높은 색도를 나타내었다. Anthocyanin은 수용성 물질로 지용성 색소에 영향을 받는 난황색에는 큰 영향을 미치지 않고 난각 색에 영향을 미친 것으로 사료된다.The results of the analysis on the egg quality of the 1 st to 2 nd and 3 nd to 4 th males in the laying hens with fermented omija and non fermented omija were shown in Table 10. The eggshell color was measured ( P < 0.05), which was higher than that of the control (25.58), in the WFS25 treated group (0.25%). Egg yolk showed the highest color intensity at 7.97. Anthocyanin was thought to have affected the egg shell color without affecting the yolk color affected by fat - soluble pigment as a water - soluble substance.

본 실험에서 발효 오미자의 유용색소인 anthocyanin의 추출효과가 발효를 거치지 않은 오미자에 비해서 257.37% 높아지는 결과를 나타내었는데 그 효과가 일정한 영향을 받은 것으로 판단되나 발효 오미자박 0.50% 첨가급여한 WFS50 처리구에서는 대조구와 비슷한 결과를 나타내었다. 난각 두께는 1~2주차에 대조구의 37.35 ㎜/100와 NFS25 처리구에서 37.60 ㎜/100로 다른 처리구보다 높았으나 실험 진행 3~4주기간에 생산된 계란의 난각 두께는 NFS50 처리구가 36.90 ㎜/100의 결과를 나타내면서 대조구의 34.85보다 처리구간 유의적인 차이 (P<0.05)가 나타나는 결과를 보였다. WFS50 처리구와 WFS25 처리구가 좀 높게 나타났으나 유의적 차이는 없었다.In this experiment, the extraction effect of anthocyanin, a useful pigment of fermented omija, was 257.37% higher than that of unfermented omija, but it was considered that the effect was affected to some extent. In WFS50 treated with 0.50% . Egg shell thickness of 1-2 37.35 of the control to the parking ㎜ / 100 and NFS25 treatment 37.60 ㎜ / 100 was higher than the other groups egg shell thickness of the eggs produced between the test proceeds 3-4 cycles NFS50 treatment is 36.90 ㎜ / 100 in Results showed significant difference ( P < 0.05) between treatments than control (34.85). WFS50 and WFS25 treatments were slightly higher, but there was no significant difference.

오미자와 인진쑥 등 한약제 혼합 추출물이 산란계의 생산성, 계란품질, 혈액특성 및 계란 저장성에 미치는 효과를 알아보기 위한 실험에서는 오미자를 포함한 혼합물 추출물을 급여한 처리구에서 Haugh unit은 대조구 98.9에 비해서 처리구가 100.7로 유의하게 높은 경향 (P<0.05)을 나타내었다.그러나 난황 색,난각 색,난각 두께,난각 강도 처리구간 유의차를 나타내지 않았다. In order to investigate the effects of mixed herb extracts such as omija and aruguswort on the productivity, egg quality, blood characteristics and egg shelter of laying hens, Haugh unit was 100.7 ( P < 0.05), but did not show significant differences in egg yolk color, egg shell color, egg shell thickness, egg shell strength.

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계란의 지방산Fatty acids in eggs

발효 오미자박과 비발효 오미자박을 첨가급여하여 난황의 성분함량 구성에 미치는 영향을 알아보기 위하여 실험종료 4주차 난황의 지방산 성분함량을 분석하였으며 그 결과는 표 11에서 나타내었다. Wickerhamomyces sp. SK1819 균주를 이용하여 발효한 오미자박 0.25%를 첨가급여한 WFS25처리구에서 stearate (C18:0), oleate (C18:1n9), total MUFA 및 arachidonate (C20:4ω6)가 대조구에 비해서 유의적으로 높게 나왔다 (P<0.05). stearate 는 9.23%로 대조구 8.47%, oleate 는 49.09%로 대조구 43.75%, total MUFA 는 49.19%로 대조구 48.02% 및 arachidonate 2.47%로 대조구의 2.35%에 비해서 유의적으로 높은 차이 (P<0.05)를 나타내었다. Wickerhamomyces sp. SK1819 균주를 이용하여 발효한 비발효 오미자박 0.50%를 첨가급여한 WFS50처리구에서 total SFA가 34.74%를 나타내면서 대조구 34.43%보다 유의적으로 높았다.비발효 오미자박 0.25%를 첨가급여한 NFS25처리구에서 linolenate 0.46%를 나타내어 전 처리구 중 가장 높게 유의적 차이 (P<0.05)를 나타내었고, total PUFA 19.98% 및 total PUFA/SFA 0.59로 유의적으로 (P<0.05) 가장 높은 결과를 나타내었다. 비발효 오미자박 0.50% 첨가급여한 NFS50 처리구에서는 total ω6/ω3의 결과 19.91로 처리구간에 유의적 차이를 보였다.In order to investigate the effects of supplemented fermented omiza bacon and nonfermented omiza bacon on the composition of egg yolk ingredient contents, the content of fatty acid components in the 4th egg yolk of the end of the experiment was analyzed and the results are shown in Table 11. Wickerhamomyces sp. Stearate (C18: 0), oleate (C18: 1n9), total MUFA and arachidonate (C20: 4ω6) were significantly higher in WFS25 treated with 0.25% ( P < 0.05). stearate is 8.47% of control to 9.23%, oleate is 43.75% of control by 49.09%, total MUFA represents a compared to 2.35% in the control group to 49.19% in the control 48.02% and arachidonate 2.47% high difference significantly (P <0.05) . Wickerhamomyces sp. In the WFS50 supplemented with 0.50% non-fermented omiza paste fermented with SK1819 strain, the total SFA was 34.74%, which was significantly higher than the control 34.43%. In the NFS25 supplemented with 0.25% ( P < 0.05). Total PUFAs were 19.98% and total PUFA / SFA was 0.59, which was the highest among all treatments ( P < 0.05). In the NFS50 treated with 0.50% non - fermented omiza pork, the total ω6 / ω3 value was 19.91.

통상적으로 난황 속에는 palmitate와 oleate가 많은 비중을 차지하는데(Koo et al., 2002)본 결과에서는 WFS25처리구에서 oleate가 가장 높은 비중을 차지하였고, palmitate는 대조구가 처리구간에 최고로 많은 함량을 나타내었다. 불포화지방산은 포화지방산에 비해서 인류건강에 유익한 것으로 간주되는데 주로 그 지방산의 사슬이 유동적이어서 체내로 섭취된 후 고지혈증 등 증세를 유발할 가능성이 낮출 수 있는 것으로 간주되기 때문이다. Palmitate와 oleate이 단일 불포화지방산을 구성하고 있고, linolenate, arachidonate, EPA 및 DHA 가 다중 불포화지방산을 이룬다. Wickerhamomyces sp. SK1819 균주를 이용하여 발효한 오미자박 0.25%를 첨가급여한 WFS25처리구에서 oleate, total MUFA 및 arachidonate 세 가지 지방산의 함량이 유의적으로 높게 나왔으나 ω3 계열 지방산은 검출되지 아니하였다. 이처럼 발효 또는 발효하지 않은 오미자박을 첨가한 사료를 산란계에 급여하였을 때 계란난황 내 지방산 조성의 변화는 지방산이 종류에 따라 다양하게 나타나며, 첨가제의 종류나 함량에 따라 일관성있는 변화를 보이지 않았고 또한 첨가제의 사용량이 많지 않은 관계로 처리구간 지방산 고정의 차이가 첨가제의 영향이라고 해석하기 어렵다.Palmitate and oleate account for a large proportion of egg yolk in the egg yolk (Koo et al., 2002). In this study, oleate was the highest content in WFS25 and palmitate was the highest in the treatments. Unsaturated fatty acids are considered to be beneficial to human health as compared to saturated fatty acids because they are considered to be less likely to cause symptoms such as hyperlipemia after being ingested into the body because the chain of fatty acids is fluid. Palmitate and oleate constitute monounsaturated fatty acids, linolenate, arachidonate, EPA and DHA constitute polyunsaturated fatty acids. Wickerhamomyces sp. The contents of oleate, total MUFA, and arachidonate were significantly higher in WFS25 supplemented with 0.25% of omza - zoo fermented with SK1819 strain, but omega - 3 fatty acids were not detected. When diets supplemented with fermented or unfermented Omija bamboo were fed to the laying hens, the fatty acid compositions of the egg yolks varied according to the types of fatty acids, and there was no consistent change depending on the kinds and contents of the additives, It is difficult to interpret the difference in the fixation of fatty acid in the treatment zone as the influence of the additive.

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장기와With organ 복강 Abdominal cavity 지방 Fat

산란계에 발효 오미자박과 비발효 오미자박 사료 내 첨가급여가 간, 비장 및 복강 지방에 미치는 영향을 표 12에서 체중대비 %로 나타내었다.The effects of dietary supplementation on the liver, spleen, and abdominal fat of the fermented omiza bacillus and nonfermentous omiza bacillus were shown in Table 12 as percentages by weight.

산란계에 발효 오미자박과 비발효 오미자박을 각각 0, 0.25, 0.50% 첨가하여 급여한 실험에서 간, 비장 및 복강 지방의 무게와 간, 비장 및 복강 지방의 무게에 대한 몸무게의 비율에서 대조구와 처리구간의 유의적인 차이가 나타나지 않았다. 오미자 추출물이 비만 관련 장내세균의 생육에 미치는 영향을 알아보기 위하여 rat에서 6주간 진행한 실험의 결과에서는 대조구와 오미자 추출물 0.5%첨가급여 시험구의 개시 체중은 각각 227.4 g, 239.3 g에서 실험 종료시 각각의 종료 체중은 409.8 g과 408.7 g으로 처리구간 유의적인 차이를(Jeong et al., 2009) 나타내지 않은 것을 미루어 보아 이는 본 실험에서 비발효 오미자박을 사용한 관계로 자체 생리활성물질이 오미자 추출물에 비해 낮을 것으로 예상되며, 따라서 오미자 성분을 단기간 섭취시 장기와 복강 지방에 미치는 영향이 미비한 것으로 사료된다.The ratio of body weight of liver, spleen and abdominal fat to weight of liver, spleen, and abdominal fat in control group and control group was higher than that of control group in 0, 0.25, 0.50% There was no significant difference in the interval. In order to investigate the effect of Omiza extract on the growth of obesity-related intestinal bacteria, the initial weights of 227.4 g and 239.3 g of the 0.5% addition of 0.5% The final body weight was 409.8 g and 408.7 g, indicating no significant difference in the treatment interval (Jeong et al., 2009). This indicates that the self-physiologically active substance was lower Therefore, it is considered that the short-term consumption of Omija component has little effect on organ and abdominal fat.

Figure pat00014
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소장과 맹장의 총 Total of intestines and appendixes 균수Number of bacteria

산란계에 발효 오미자박과 비발효 오미자박을 각각 0.25%, 0.50% 첨가급여 장내 총 균수의 차이를 알아보기 위하여 소장과 맹장의 균총 수를 조사하였으며 그 결과는 표 13에서 나타내었다.The number of intestinal and cecal microflora was investigated in order to investigate the difference of total bacterial counts between 0.25% and 0.50% fed fermented and nonfermented omija foams in laying hens. The results are shown in Table 13.

소장 내 균총수은 nutrient agar를 이용하여 총균수를, mac conkey agar를 이용하여 E. coli 균수를 확인한 결과, 발효 오미자박 0.25% 첨가한 WFS25 처리구와 발효 오미자박 0.50%를 첨가급여한 WFS50 처리구에서 총 균수와 E. coli는 유의적으로 낮은 균수를 나타내었다(P<0.05). WFS25 처리구와 WFS50 처리구는 각각 4.65와 4.64를 기록하면서 대조구의 5.00보다 유의적으로 낮은 균수를 나타내었다. 표에서 나타낸 수치는 log10(cfu/g)으로 환산한 수치이기 때문에 실제 균수는 3~4배 정도 차이가 나타나는 수치이다.YM agar 배지를 이용하여 소장 내 효모 균수를 측정한 결과 비발효 오미자박 0.25% 첨가급여한 NFS25 처리구와 WFS25 처리구에서 유의적으로 높은 균수를 나타내었다(P<0.05). 대조구가 2.05인데 비하여 각각 유의적인 차이를 나타내는 2.55와 2.51을 기록하였다(P<0.05). Total bacterial counts were obtained from E. coli using mac conkey agar using nutrient agar. The total number of bacteria and E. coli were significantly lower ( P < 0.05) in WFS25 treated with 0.25% fermented omija foil and WFS50 treated with 0.50% fermented omija foil. WFS25 and WFS50 treatments were 4.65 and 4.64, respectively, and significantly lower than those of control (5.00). As the values shown in the table are converted to log 10 (cfu / g), the actual number of bacteria is about 3 to 4 times larger than that of the control. The yeast number in the small intestine was measured using a YM agar medium, NFS25 and WFS25 treatments were significantly higher ( P < 0.05). And 2.55 and 2.51, respectively, which were significantly different from the control (2.05) ( P < 0.05).

맹장의 효모는 발효 오미자박 0.25% 첨가한 WFS25 처리구와 발효 오미자박 0.50%를 첨가급여한 WFS50 처리구에서는 각각 2.75와 2.75를 나타내면서 대조구의 2.20과 처리구간 유의적으로 높은 균수를 확인할 수 있었다(P<0.05). 이는 사료로 급여한 효모가 소장을 통해서 맹장으로 이전이 되어서 나타나는 균수의 차이로 판단된다.맹장 내에서 나타낸 YM agar 배지에서는 균총은 총 균수와 E. coli는 소장처럼 처리구간 유의적인차이를 나타내지 않았다.In the cecal yeast, WFS25 treated with 0.25% fermented omija foil and WFS50 treated with 0.50% fermented omija foil showed 2.75 and 2.75, respectively, which were significantly higher than those of control (2.20 and P < 0.05). In the YM agar medium in the cecum, there was no significant difference in the bacterial counts of E. coli and E. coli between the treatments as the small intestine .

사료 내에 첨가하는 생균은 장내에서 생존할 수 있으면 장내 생균총의 구성에 영향을 미치는데 10일령 육계 병아리의 사료에 Lactobacillussp.배양액을 109 cfu/g 급여하면 장내에서 유산균 수가 증가한다고 보고하였으며(Jin, 1996), 육계에Lactobacillus culture를 급여한 결과 실험을 6주간 진행하는 동안 실험육계의 체중은 유의적으로 처리구간 별 차이를 나타내면서 42일 차에 가서 대조구 1700.33 g에 대해서 유의적인 차이 (P<0.05)를 나타내는 1976.58 g의 성적을 보였다(Kalavathy et al., 2008).The viable cell counts of Lactobacillus sp . In broiler chicks fed 10 - day - old chickens were significantly higher than those in broiler chicks fed 10 - day - old chickens . It was reported that lactic acid bacilli increased in the intestine when 10 9 cfu / g of culture was fed (Jin, 1996). Lactobacillus culture was fed to broiler chickens and the weight of experimental broiler chickens during 6 weeks of experiment was significantly (Kalavathy et al., 2008), showing a significant difference ( P < 0.05) for 1700.33 g of control at 42 days of age.

본 실험에서 소장과 맹장 내의 미생물 균총의 차이는 오미자박과 Wickerhamomyces sp.SK1819 생균으로 인한 효과로 사료된다.In this experiment, the difference in microflora between the small intestine and the cecum seems to be due to the microorganisms of Schizandra chinensis and Wickerhamomyces sp.

농업생명공학연구원Agricultural Biotechnology Research Institute KACC91725KACC91725 2012070320120703

Claims (6)

오미자박을 발효하는 Wickerhamomyces 균주.Wickerhamomyces strain fermenting Schisandra chinensis. 제 1항에 있어서, 상기 균주는 Wickerhamomyces anomalus SK1819(KACC91725P) 균주인 것을 특징으로 하는 균주.The strain according to claim 1, wherein the strain is Wickerhamomyces anomalus SK1819 (KACC91725P) strain. 오미자박에 제 1항 또는 제2항의 균주를 접종하여 발효한 후, 그 발효된 오미자박을 유기용매로 추출하여 폴리페놀을 얻는 방법.A method of obtaining polyphenol by inoculating fermented Schisandra chinensis seed according to claim 1 or 2, and then extracting the fermented Schisandra chinensis with an organic solvent. 오미자박에 제 1항 또는 제2항의 균주를 접종하여 발효한 후, 그 발효된 오미자박을 유기용매로 추출하여 플라보노이드 또는 안토시아닌을 얻는 방법.After inoculating fermented strains of claim 1 or 2 in Schisandra chinensis, the fermented Schisandra chinensis extract is extracted with an organic solvent to obtain flavonoids or anthocyanins. 오미자박에 제 1항 또는 제2항의 균주를 접종하여 발효한 후, 그 발효된 오미자박을 유기용매로 추출하여 항생활성 조성물을 얻는 방법.A method of obtaining antimicrobial composition by inoculating fermented Schisandra chinensis seed according to claim 1 or 2, and then extracting the fermented Schisandra chinensis with organic solvent. 제 1항 또는 제2항의 균주가 접종된 오미자박 발효물을 유효성분으로 함유하는 사료용 조성물.Feed composition comprising a Schisandra chinensis fermented with the strain of claim 1 or 2 as an active ingredient.
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