KR20120045917A - Specific primers for rapid detection of bakanae disease pathogen(fusarium fujikuroi) and method for detection using the same - Google Patents

Specific primers for rapid detection of bakanae disease pathogen(fusarium fujikuroi) and method for detection using the same Download PDF

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Abstract

PURPOSE: A specific primer for detecting Fusarium fujikuroi and a detection method using the same are provided to enable species-specific detection. CONSTITUTION: A specific primer for detecting Fusarium fujikuroi is denoted by sequence number 1 or 2. A method for detecting Fusarium fujikuroi using the specific primer comprises: a step of isolating genome DNA from Oriza sativa seeds; a step of performing PCR using the genome DNA as a template and forward and reverse primers; and a step of detecting PCR product.

Description

벼키다리병균(Fusarium fujikuroi) 신속 검출용 특이 프라이머 및 이를 이용한 균 검출방법{Specific Primers For Rapid Detection Of Bakanae Disease Pathogen(Fusarium fujikuroi) And Method For Detection Using The Same}Specific Primers For Rapid Detection Of Bakanae Disease Pathogen (Fusarium fujikuroi) And Method For Detection Using The Same}

본 발명은 벼키다리병균(Fusarium fujikuroi)을 신속, 정확하게 종 특이적으로 검출할 수 있는 특이 프라이머 및 이를 이용하는 균 검출방법에 관한 것이다. The present invention relates to a specific primer capable of quickly and accurately detecting species specific to Fusarium fujikuroi , and a bacterium detection method using the same.

종자전염은 식물 병의 전염방법 중 하나로서 병원균에 감염된 종자는 포장에서 전염원으로 작용할 뿐만 아니라 무병지역에서 새로운 발병의 원인이 되고, 상품가치가 하락하며, 병원균의 독소분비로 인하여 인간이나 동물에게 심각한 질병을 일으키기도 한다. Seed transmission is one of the ways of spreading plant diseases. Seeds infected with pathogens not only act as infectious agents in the field, but also cause new outbreaks in disease-free areas, declining commodity value, and severe to humans or animals due to the secretion of pathogens. It can also cause illness.

벼키다리병은 Fusarium fujikuroi Nirenberg에 의해 발생하는 대표적인 종자전염성 병해로, 육묘시부터 본답시기까지 발생하는 병해이다. 1828년에 일본에서 처음 발견되었으며, 묘가 비정상적으로 신장하는 병징때문에 Bakanae disease라 명명되었다. 벼키다리병은 90년대 후반부터 효과적인 종자소독제의 개발로 크게 문제가 되지 않았으나, 최근에는 기온상승, 친환경재배 등 여러 가지 원인으로 인해 본 병의 발생이 증가하고 있으며, 국가 보급종 종자에서도 병이 발생하여 문제시된 바 있다. 일반적으로 벼키다리병의 방제를 위해서는 종자소독과 더불어 건전종자를 사용하여야 하는데, 사용전 키다리병의 감염여부를 조사하는 것은 매우 어려운 실정이다. 따라서 파종 전, 종자에서의 정밀하고 신속한 진단은 이 병의 방제 및 관리에 있어 매우 중요하다. Dwarf leg disease is a representative seed infectious disease caused by Fusarium fujikuroi Nirenberg. It was first discovered in Japan in 1828, and was named Bakanae disease because of its abnormally growing symptom. Dwarf leg disease has not been a problem since the development of effective seed disinfectants since the late 1990s, but recently, the incidence of this disease is increasing due to various factors such as temperature rise and environmentally-friendly cultivation. Has been questioned. In general, in order to control fumigation leg disease, it is necessary to use healthy seeds in addition to disinfection of seeds, and it is very difficult to investigate the infection of key leg disease before use. Therefore, accurate and rapid diagnosis of seeds before sowing is very important for the control and management of the disease.

종자에서 각종 병원균의 검출율을 조사하는 대표적인 방법으로는 blotter법(습지법)이 있으며, Fusarium균 선택배지를 사용하기도 한다. 그러나 이 방법으로 키다리병균의 검출율을 조사하기 위해서는 몇 가지 어려움이 있다. 첫째, 키다리병균과 형태적으로 유사한 다른 Fusarium균을 구분하기 위한 균학적 전문지식이 필요하다. 둘째, 현미경을 사용하여 조사해야 하기 때문에 그 사용법이 익숙해야 한다. 셋째, 종자를 치상하여 배양한 후 조사하기까지 적어도 7일 이상의 시간이 소요된다. 넷째, 균의 형태적 특성에 의존하여 조사하기 때문에 정확성이 떨어진다. Representative methods for investigating the detection rate of various pathogens in seeds are the blotter method (wet method), Fusarium bacteria selection medium is also used. However, there are some difficulties in investigating the detection rate of kidney disease by this method. First, bacteriological expertise is needed to distinguish other Fusarium bacteria that are morphologically similar to the kidney disease. Secondly, you should be familiar with how to use it because you need to investigate using a microscope. Third, it takes at least 7 days to seed and culture the seed. Fourth, the accuracy depends on the morphological characteristics of the bacteria.

최근의 분자생물학적 기법이 발전함에 따라 유전자(DNA) 수준에서 생물종을 식별하는 방법을 통해 벼키다리병균의 감염여부를 진단하고자 하였다. 일반적으로, 유전자 수준에서 생물종을 식별하는 방법으로 가장 광범위하게 사용되고 있는 방법은 핵산지문법(DNA fingerprinting)이다. 이 방법은 다시 제한효소단편장다형(RFLP:Restriction Fragment Length Polymerase) 분석법, 라이보좀 구성 핵산 염기서열의 차이를 이용한 분석법, 특정 프라이머를 이용한 PCR(polymerase chain reaction) 진단법 등으로 구분된다. 여기서 상기 PCR법은 10~20mer로 구성된 특정 DNA 단편(프라이머(primer))을 분석하고자 하는 게놈 유전자(genomic DNA)에 접촉(annealing)한 후, DNA 중합효소(polymerase)를 첨가하고 합성반응을 반복적으로 행하게 되면, 프라이머가 결합된 영역이 급속히 증폭하게 되며, 그 PCR 증폭산물을 아가로스 겔(agarose gel) 또는 아크릴아마이드 겔(acrylamide gel)에 전기영동하고 에티디움브로마이드(Ethidium bromide) 및 은염색(silver stain)으로 DNA를 염색한 후 나타나는 DNA 밴드의 유무 혹은 형태의 차이와 같은 종의 DNA 다형성을 검출하는 진단방법이다.With recent advances in molecular biology techniques, we attempted to diagnose the infection of D. coli bacteria by identifying species at the DNA level. In general, the most widely used method for identifying species at the genetic level is DNA fingerprinting. This method is further divided into restriction fragment fragment polymorphism (RFLP) analysis, analysis using differences in ribosome-constituting nucleic acid sequences, and PCR (polymerase chain reaction) analysis using specific primers. Here, the PCR method is annealing the genomic DNA to analyze a specific DNA fragment (primer) consisting of 10 ~ 20mer, add DNA polymerase and repeat the synthesis reaction When amplified, the region to which the primer is bound is rapidly amplified, and the PCR amplification product is electrophoresed on an agarose gel or an acrylamide gel, and ethidium bromide and silver dye ( It is a diagnostic method that detects DNA polymorphism of species such as the presence or absence of DNA bands or differences in form after DNA staining with silver stain).

따라서, 종래의 문제점을 해결하기 위하여 신속하고 정확한 벼키다리병 진단법의 필요성이 대두되고 있으며, 따라서 본 병원균을 종 특이적으로 검출할 수 있는 특이 프라이머를 개발하고 이를 이용한 벼 종자에서의 균 검출법이 요구된다.Therefore, in order to solve the conventional problems, there is a need for a rapid and accurate diagnosis of dystrophy, thus developing a specific primer capable of detecting species-specific pathogens and a method for detecting bacteria in rice seeds using the same. do.

본 발명은 상기와 같은 문제점을 해결하기 위한 것으로, 본 발명의 목적은 종래의 문제점을 해결하고 병원성이 없는 균주와는 반응하지 않으면서 벼에 키다리병 증상을 나타내는 균주를 종 특이적으로 검출할 수 있도록 설계된 벼키다리병균 신속 검출용 프라이머 및 이를 이용하여 보다 신속, 정확하게 진단하는 벼키다리병균 검출 방법을 제공하는데 있다. The present invention is to solve the above problems, an object of the present invention is to solve the conventional problems and can detect species-specific strains showing the symptoms of Kidari disease in rice without reacting with strains without pathogenicity The present invention provides a primer for rapid detection of dysfunctional bacteria, and a method for detecting dysfunctional bacteria using the same.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 서열번호 1로 표시되는 프라이머(primer) 또는 서열번호 2로 표시되는 프라이머를 이용하여 벼키다리병균의 감염여부를 진단하는 벼키다리병균(Fusarium fujikuroi) 신속 검출용 특이 프라이머를 제공한다.In order to achieve the above object, the present invention uses a primer represented by SEQ ID NO: 1 or primer represented by SEQ ID NO: 2 for the rapid detection of Fusarium fujikuroi for diagnosing the infection of D. Provide specific primers.

또한, 본 발명은 서열번호 1로 표시되는 포워드 프라이머(Forward primer) 및 서열번호 2로 표시되는 리버스 프라이머(Reverse primer)를 한 세트로 이용하여 벼 종자에서 벼키다리병균을 검출하는 벼키다리병균 신속검출용 프라이머를 제공한다.In addition, the present invention using a forward primer represented by SEQ ID NO: 1 and a reverse primer represented by SEQ ID NO: 2 as a set of rapid detection of D. coli bacteria to detect D. coli bacteria in rice seeds Provide a primer for.

또한, 본 발명은 상기 벼키다리병균 신속검출용 프라이머를 이용하여 벼에서 벼키다리병균을 종 특이적으로 검출하는 벼키다리병균 신속 검출용 특이 프라이머를 이용한 균 검출 방법을 제공한다. 보다 구체적으로는, 벼에서 벼키다리병 균 검출 방법으로서,In addition, the present invention provides a method for detecting bacteria using a specific primer for rapid detection of D. coli bacteria to species-specifically detecting the D. pylori bacteria in rice by using the primer for rapid detection of D. coli bacteria. More specifically, as a method of detecting rice limb disease in rice,

(S1) 벼 종자에서 게놈 DNA를 추출하는 단계;(S1) extracting genomic DNA from rice seeds;

(S2) 상기 게놈 DNA를 주형으로 이용하고, 서열번호 1을 포워드(Forward) 프라이머, 서열번호 2를 리버스(Reverse) 프라이머로 이용하여 PCR을 수행하여 표적 서열을 증폭시키는 단계;(S2) amplifying a target sequence by using the genomic DNA as a template and performing PCR using SEQ ID NO: 1 as a forward primer and SEQ ID NO: 2 as a reverse primer;

(S3) 상기 증폭시킨 산물을 검출하는 단계;를 포함하는 벼키다리병균 검출 방법을 제공한다. (S3) provides a method for detecting a bacterium foot disease comprising a; detecting the amplified product.

본 발명의 벼키다리병균 신속 검출용 프라이머는 병원성이 없는 균주와는 반응하지 않도록 설계되었으며, 벼키다리병균과 형태적으로 비슷하여 현미경적으로 구분이 어려운 다른 Fusarium종과도 반응하지 않도록 설계되어 벼키다리병균을 종 특이적으로 검출할 수 있다. 또한, 본 발명의 벼키다리병균 신속 검출용 프라이머를 이용한 균 검출방법은 벼 종자에서 본 병원균의 검출여부를 조사하기 위하여 기존에 사용되던 blotter법 및 선택배지 치상에 의한 현미경 관찰에서 나타나는 문제점을 해결하여 보다 간편하고 정확하게 진단이 가능하며, 벼 종자에서 병원균의 감염여부를 진단하는데 필요한 소요시간을 현저히 줄어든다는 장점을 가진다.The primer for rapid detection of the bacteriophage bacterium according to the present invention is designed not to react with the strain without pathogenicity, and is similar to the bacteriophage bacterium so that it does not react with other Fusarium species that are difficult to distinguish microscopically. Germs can be detected species-specific. In addition, the bacterium detection method using the primer for rapid detection of the bacteriophage bacterium according to the present invention solves the problem of microscopic observation by the blotter method and the selection medium used to investigate the detection of the pathogen in rice seeds. More convenient and accurate diagnosis is possible, and the time required for diagnosing the pathogen infection in rice seeds is significantly reduced.

도 1은 본 발명의 진단 대상 유전자로 선정한 지베렐린(gibberellic acid, GA) 생합성 유전자 클러스터(cluster)(S. Malonek et al., 2005)를 나타낸 것이다.
도 2는 벼 종자에서 분리한 8개의 Fusarium균을 주형으로 이용하고, 상기 표 2에 설계한 벼키다리병균 검출용 프라이머 18 세트(set)의 PCR 분석 결과를 나타낸 것이다. 여기서, M은 100bp DNA 분자량 마커를 나타내며, 1 내지 5는 병원성균주, 6 내지 8은 비병원성 균주이다.
도 3은 서열번호 1(BFsp F) 및 서열번호 2(BFsp R) 프라이머를 이용한 벼키다리병균(F. fujikuroi)의 PCR 진단 결과를 나타내었다. 여기서, 주형으로 각각 1: F. annulatum, 2-5: F. fujikuroi, 6-7: F. nygamai, 8-11: F. proliferatum, 12: F. sacchari, 13: F. subglutinans, 14: F. thapsinum, 15-16: F. verticillioides, 17: F. concolor, 18-19: F. globosum, 20: F. nisikadoi, 21-22 : F. asiaticum. 의 게놈 DNA를 사용하였다.
도 4는 본 발명의 벼키다리병균 특이 프라이머의 annealing 온도에 따른 PCR 분석 결과이다. (A): 국내 균주, (B): 미국 ARS collection center 분양균주를 이용한 것이다.
도 5는 본 발명의 벼키다리병균 특이 프라이머를 이용한 벼 종자에서의 균 검출방법의 모식도를 나타낸 것이다.
Figure 1 shows a gibberellic acid (GA) biosynthetic gene cluster (S. Malonek et al., 2005) selected as a diagnostic gene of the present invention.
Figure 2 shows the results of PCR analysis of 18 sets of primers for the detection of D. coli bacteria designed in Table 2 using eight Fusarium bacteria isolated from rice seeds as a template. Here, M represents a 100 bp DNA molecular weight marker, 1 to 5 are pathogenic strains, and 6 to 8 are non-pathogenic strains.
Figure 3 shows the results of PCR diagnostics of F. fujikuroi using SEQ ID NO: 1 (BFsp F) and SEQ ID NO: 2 (BFsp R) primers. Here, as a template, respectively, 1: F. annulatum , 2-5: F. fujikuroi, 6-7: F. nygamai, 8-11: F. proliferatum , 12: F. sacchari , 13: F. subglutinans , 14: F thapsinum, 15-16: F. verticillioides , 17: F. concolor , 18-19: F. globosum, 20: F. nisikadoi, 21-22: F. asiaticum. The genome DNA was used.
Figure 4 is a PCR analysis result according to the annealing temperature of the Dakki foot bacteria specific primer of the present invention. (A): Domestic strain, (B): US ARS collection center was used for the strain.
Figure 5 shows a schematic diagram of the bacteria detection method in the rice seeds using the rice cake bacteria specific primer of the present invention.

본 발명은 서열번호 1로 표시되는 프라이머(primer) 또는 서열번호 2로 표시되는 프라이머를 이용하여 벼키다리병균의 감염여부를 진단하는 벼키다리병균(Fusarium fujikuroi) 신속 검출용 특이 프라이머를 제공한다. 보다 바람직하게는 상기 서열번호 1로 표시되는 포워드 프라이머(Forward primer) 및 상기 서열번호 2로 표시되는 리버스 프라이머(Reverse primer)를 한 세트로 이용하여 벼 종자에서 키다리병균을 검출하는 벼키다리병균 신속 검출용 특이 프라이머에 관한 것이다.The present invention provides a specific primer for rapid detection of Fusarium fujikuroi , which diagnoses infection of D. coli by using a primer represented by SEQ ID NO: 1 or a primer represented by SEQ ID NO: 2. More preferably, using a forward primer represented by SEQ ID NO: 1 and a reverse primer represented by SEQ ID NO: 2 as a set, rapid detection of D. dystrophy bacteria for detecting Kidari disease in rice seeds It relates to a specific primer for.

상기 벼키다리병균 신속 검출용 특이 프라이머는 벼에서 벼키다리병균(Fusarium fujikuroi)을 종 특이적으로 검출하여 벼키다리병균의 감염여부를 진단할 수 있다.
The specific primer for rapid detection of D. coli bacteria can be diagnosed by infection of D. coli bacteria by species-specific detection of Fusarium fujikuroi in rice.

벼키다리병균은 지베렐린(gibberellic acid, GA)을 생성하여 병징을 나타내며, 벼키다리병균과 분류학적으로 유연관계가 높은 종들은 지베렐린 생합성 유전자 클러스터(cluster)를 전체 혹은 일부 포함하는 것으로 알려져 있다. 이들 중 벼키다리병균만이 지베렐린 생합성 유전자를 발현하며, 지베렐린을 형성한다. 따라서, 본 발명의 벼키다리병균(Fusarium fujikuroi) 신속 검출용으로 개발된 특이 프라이머는 지베렐린 생합성 유전자 클러스터의 염기서열을 분석하여 프라이머를 디자인하여 병원성 검정 결과와의 일치 여부를 조사하여 벼에 벼키다리병 증상을 나타내는 균주를 검출할 수 있도록 설계되었으며, 병원성이 없는 균주와는 반응하지 않도록 설계되었다. 또한, 벼키다리병균과 근연관계이거나 형태적으로 비슷한 11개의 Fusarium종과는 반응하지 않도록 설계되었다.
Dye bacterium is known to produce gibberellic acid (GA) and exhibits a symptom. Species that are highly taxonomically related to the bacterium are known to contain all or part of a gibberellic biosynthetic gene cluster. Among them, only the bacteriophage bacteria express the gibberellin biosynthesis gene and form gibberellin. Therefore, the specific primer developed for the rapid detection of Fusarium fujikuroi of the present invention is designed to analyze the nucleotide sequence of the gibberellin biosynthetic gene cluster to design the primer and to check whether it matches the pathogenicity assay results. It was designed to detect strains showing symptoms and not to react with non-pathogenic strains. It was also designed to not react with 11 Fusarium species that are closely related or morphologically related to D. aureus.

본 발명에서 용어 “프라이머(primer)”는 특정 유전자 서열에 대하여 상보적인 단일 가닥, 즉 올리고뉴클레오티드 서열을 말하며, 프라이머 연장산물의 합성을 위한 개시점으로 작용할 수 있다. 상기 프라이머의 길이 및 서열은 연장 산물의 합성을 시작하도록 허용해야 하며, 프라이머의 구체적인 길이 및 서열은 요구되는 DNA 또는 RNA 표적의 복합도(complexity)뿐만 아니라 온도 및 이온 강도 같은 프라이머 이용 조건에 의존할 수 있다.
As used herein, the term “primer” refers to a single strand, ie oligonucleotide sequence, complementary to a particular gene sequence, and may serve as a starting point for the synthesis of primer extension products. The length and sequence of the primer should allow to start the synthesis of the extension product, and the specific length and sequence of the primer will depend on the primer utilization conditions such as temperature and ionic strength as well as the complexity of the required DNA or RNA target. Can be.

또한, 본 발명의 벼키다리병균 신속 검출용 특이 프라이머를 이용하여 벼에서 벼키다리병균을 종 특이적으로 검출하는 벼키다리병균 신속 검출용 특이 프라이머를 이용한 균 검출 방법을 제공한다. In addition, the present invention provides a bacterium detection method using a specific primer for rapid detection of D. coli bacteria, which uses a specific primer for rapid detection of D. coli bacteria of the present invention.

벼키다리병균 신속 검출용 특이 프라이머를 이용한 균 검출 방법으로서,As a bacterium detection method using a specific primer for rapid detection of bacteria

(S1) 벼 종자에서 게놈 DNA를 추출하는 단계;(S1) extracting genomic DNA from rice seeds;

(S2) 상기 게놈 DNA를 주형으로 이용하고, 서열번호 1을 포워드(Forward) 프라이머, 서열번호 2를 리버스(Reverse) 프라이머로 이용하여 PCR을 수행하여 표적 서열을 증폭시키는 단계;(S2) amplifying a target sequence by using the genomic DNA as a template and performing PCR using SEQ ID NO: 1 as a forward primer and SEQ ID NO: 2 as a reverse primer;

(S3) 상기 증폭시킨 산물을 검출하는 단계;를 포함한다.
(S3) detecting the amplified product.

상기 (S1)단계의 벼에서 게놈 DNA(genomic DNA)를 추출하는 방법은 당업계에서 알려진 통상의 방법을 이용할 수 있으며, 예컨대 벼의 종자를 PDB(potato dextrose broth) 배지에서 25 내지 30℃ 온도에서 1 내지 3일간 배양하여, 마쇄한 후, 추출버퍼를 이용하여 DNA를 추출하는 것이 바람직하다.The method of extracting genomic DNA from the rice of step (S1) may use a conventional method known in the art, for example, seed of rice at a temperature of 25 to 30 ℃ in PDB (potato dextrose broth) medium After culturing for 1 to 3 days, grinding, it is preferable to extract DNA using an extraction buffer.

상기 (S2)단계에서의 PCR을 수행하기 위한 시약은 dNTPs, DNA polymerase, 버퍼 등을 포함할 수 있다. 상기 (S2)단계에서 본 발명의 프라이머를 이용한 PCR 반응 조건 중 어닐링(annealing) 온도는 광범위한 온도범위에서 진단이 가능하나, 50 내지 62℃인 것이 바람직하며, 더욱 바람직하게는 54 내지 58℃이며, 58℃인 것이 가장 바람직하다.Reagents for performing PCR in the step (S2) may include dNTPs, DNA polymerase, buffer and the like. In the step (S2), the annealing temperature of the PCR reaction conditions using the primer of the present invention can be diagnosed in a wide range of temperature, but is preferably 50 to 62 ℃, more preferably 54 to 58 ℃, It is most preferable that it is 58 degreeC.

또한, 상기 증폭 산물의 검출은 모세관 전기영동, DNA 칩, 겔 전기영동, 방사성 측정, 형광 측정 및 인광 측정으로부터 선택된 하나이상의 방법으로 수행될 수 있으나, 이에 제한되지는 않는다. 증폭 산물을 검출하는 방법 주의 하나로서, 모세관 전기영동을 수행할 수 있다. 모세관 전기영동은 예를 들면, ABi sequencer를 이용할 수 있다. 또한, 겔 전기영동을 수행할 수 있으며, 겔 전기영동은 증폭 산물의 크기에 따라 아가로스 겔 전기영동 또는 아크릴아마이드 겔 전기영동을 이용할 수 있다.
In addition, the detection of the amplification product may be performed by one or more methods selected from capillary electrophoresis, DNA chip, gel electrophoresis, radioactivity measurement, fluorescence measurement and phosphorescence measurement, but is not limited thereto. Method of Detecting Amplification Products As one of the cautions, capillary electrophoresis can be performed. Capillary electrophoresis can use, for example, an ABi sequencer. In addition, gel electrophoresis may be performed, and gel electrophoresis may use agarose gel electrophoresis or acrylamide gel electrophoresis depending on the size of the amplification product.

이하, 본 발명을 실시예를 이용하여 더욱 상세하게 설명한다. Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples.

단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하기 위한 것으로서 본 발명은 하기 실시예에 의해 한정되지 않고 다양하게 수정 및 변경될 수 있다.
However, the following examples are provided to illustrate the present invention, and the present invention is not limited to the following examples and may be variously modified and changed.

실시예 1 : 벼키다리병균(Example 1 Dwarf Leg Bacteria ( Fusarium fujikuroiFusarium fujikuroi ) 검출용 프라이머의 설계) Design of the primer for detection

a. 벼키다리병균 검출을 위한 대상 유전자의 선정a. Selection of Target Genes for Detection of Dung Bacteria

벼키다리병균은 지베렐린(gibberellic acid, GA)을 생성하여 병징을 나타내며, 벼키다리병균과 분류학적으로 유연관계가 높은 종들은 GA 생합성 유전자 클러스터(cluster)를 전체 혹은 일부 포함하는 것으로 알려져 있다. 이들 중 벼키다리병균만이 GA 생합성 유전자를 발현하며, GA를 형성한다. 따라서 본 실험에서는 GA 생합성 유전자 클러스터(cluster)를 진단대상 유전자로 선정하였다(도 1).Dye bacterium is known to produce gibberellic acid (GA) and exhibits a symptom, and species that are highly taxonomically related to D. aeruginosa are known to contain all or part of GA biosynthetic gene clusters. Among them, only D. aureus expresses the GA biosynthetic gene and forms GA. Therefore, in this experiment, GA biosynthetic gene cluster (cluster) was selected as a gene for diagnosis (Fig. 1).

b. 벼키다리병균(b. Baked Leg Bacteria ( Fusarium fujikuroiFusarium fujikuroi ) 검출용 프라이머의 설계) Design of the primer for detection

벼키다리병균 검출용 프라이머는 지베렐린 생산 관련 유전자를 기반으로 디자인하여 벼에 키다리병 증상을 나타내는 균주를 검출할 수 있도록 설계하였다. 따라서, 벼키다리병균 검출용 프라이머 서열은 하기 표 1과 나타낸 것과 같이 지베렐린 생합성 유전자 클러스터 부위에서 9개의 포워드 프라이머(forward primer)와 13개의 리버스 프라이머(reverse primer)를 설계하였다.
Primer for detecting D. coli was designed to detect strains showing stinging on the rice by designing genes related to gibberellin production. Therefore, as shown in Table 1 below, the primer sequences for detecting the bacterium were designed to have 9 forward primers and 13 reverse primers at the gibberellin biosynthetic gene cluster site.

프라이머 primer 염기서열(5'-3')Sequence (5'-3 ') 길이
(bp)
Length
(bp)
Tm값
(℃)
Tm value
(℃)
ForwardForward GfIGS F1GfIGS F1 TCGGCAGAGAGAACTCACTTTCGGCAGAGAGAACTCACTT 2020 57.357.3 GfSMT F1GfSMT F1 TCGGTTCATTCTTGGTAGGATCGGTTCATTCTTGGTAGGA 2020 55.355.3 Ffsp F1Ffsp F1 TCGGCAGAGAGAACTCACTTTCGGCAGAGAGAACTCACTT 2020 68.068.0 Gfcpsintron3 FGfcpsintron3 F AGAATAGTTAGCGAGTGCTAGAATAGTTAGCGAGTGCT 1919 52.452.4 Gfcpsexon4 FGfcpsexon4 F ACTGTCGTTCCAGAGCTTCGACTGTCGTTCCAGAGCTTCG 2020 59.459.4 GfDesIGS FGfDesIGS F TGCTTCGGTCACTGATGATGTGCTTCGGTCACTGATGATG 2020 59.759.7 GfP4504IGS FGfP4504IGS F TCGGCAGAGAGAACTCACTTATCGGCAGAGAGAACTCACTTA 2121 57.957.9 Ffsp FFfsp F TGGGCTATGAGTTTGCTCAGTTGGGCTATGAGTTTGCTCAGT 2121 59.959.9 BFsp FBFsp F TGAGACTTGTGTCTGAGAGCTTGAGACTTGTGTCTGAGAGCT 2121 55.255.2 ReverseReverse GfIGS R1GfIGS R1 GCGGAACGTCTGAAATGCCTGCGGAACGTCTGAAATGCCT 2020 59.459.4 GfIGS R2GfIGS R2 GATAGACAAGAGAGGATAGTGATAGACAAGAGAGGATAGT 2020 53.253.2 GfSMT R1GfSMT R1 CGTTCCTCATCGTCATCATCCGTTCCTCATCGTCATCATC 2020 57.057.0 Ffsp R2Ffsp R2 ACTGTGATAACATCATAACTACTGTGATAACATCATAACT 2020 54.054.0 Ffsp R3Ffsp R3 GCGGAACGTCTGAAATGCCTGCGGAACGTCTGAAATGCCT 2020 75.075.0 Ffsp R1Ffsp R1 GATAGACAAGAGAGGATAGTGATAGACAAGAGAGGATAGT 2020 54.054.0 Gfcpsexon 2RGfcpsexon 2R CGCGGCTTGTCAACTATACCGCGGCTTGTCAACTATAC 1919 56.756.7 Gfcpsexon 4RGfcpsexon 4R AGGACAACAGTCGCTTCTCCAGGACAACAGTCGCTTCTCC 2020 59.459.4 GfDes RGfDes R AGACTCCGGATGAGGTTCTCAGACTCCGGATGAGGTTCTC 2020 59.459.4 GfDesIGS RGfDesIGS R TTGTTCCAGGTGCTGACTTGTTGTTCCAGGTGCTGACTTG 2020 57.357.3 GfP4504IGS RGfP4504IGS R GTCCTAGTCAATTGCCGTGTCGTCCTAGTCAATTGCCGTGTC 2121 59.859.8 Ffsp RFfsp R TAACTCCTGCGGTTCATTCATAACTCCTGCGGTTCATTCA 2020 59.359.3 BFsp RBFsp R GATAACATCATAACTCCTGCGGATAACATCATAACTCCTGCG 2121 54.954.9

c. 설계한 프라이머의 PCR 증폭 예상산물c. PCR amplification product of the designed primer

상기 표 1의 설계한 프라이머를 이용하여 표2와 나타낸 것과 같이 13개 프라이머 세트(set)를 만들었으며, 이에 대한 PCR 증폭 예상산물의 크기를 표 2에 나타내었다.Using the primers designed in Table 1, 13 primer sets were prepared as shown in Table 2, and the sizes of the PCR amplification products for this are shown in Table 2.

세트 번호Set number 프라이머primer 예상
증폭산물(bp)
prediction
Amplification Product (bp)
ForwardForward ReverseReverse (A)(A) GfIGS F1GfIGS F1 GfIGS R1GfIGS R1 400400 (B)(B) GfIGS F1GfIGS F1 GfIGS R2GfIGS R2 413413 (C)(C) GfSMT F1GfSMT F1 GfSMT R1GfSMT R1 450450 (D)(D) Ffsp F1Ffsp F1 Ffsp R2Ffsp R2 537537 (E)(E) Ffsp F1Ffsp F1 Ffsp R3Ffsp R3 318318 (F)(F) Ffsp F1Ffsp F1 Ffsp R1Ffsp R1 255255 (G)(G) Gfcpsintron3 FGfcpsintron3 F Gfcpsexon2 RGfcpsexon2 R 430430 (H)(H) Gfcpsexon4 FGfcpsexon4 F Gfcpsexon 4RGfcpsexon 4R 440440 (I)(I) GfDesIGS FGfDesIGS F GfDes RGfDes R 472472 (J)(J) GfDesIGS FGfDesIGS F GfDesIGS RGfDesIGS R 160160 (K)(K) GfP4504IGS FGfP4504IGS F GfP4504IGS RGfP4504IGS R 640640 (L)(L) Ffsp FFfsp F Ffsp RFfsp R 446446 (M)(M) BFsp FBFsp F BFsp RBFsp R 547547

실시예 2 : 벼키다리병균 검출용 프라이머의 선발Example 2 Selection of Primer for Detection of Streptococcus Bacteria

a. 병원성이 확인된 균주를 이용한 1차 선발 a. Primary selection using strains with confirmed pathogenicity

표 2에 나타낸 것과 같이 설계된 13개 프라이머 세트의 PCR 증폭 특성을 알아보기 위하여 1차적으로 2006년도에 벼에서 분리한 8개의 Fusarium균을 대상으로 실험하였다. 상기 8개 균주의 병원성 검정 결과, 5개 균주는 전형적인 병징을 나타내는 병원성 균주이며, 3개 균주는 병원성이 없는 균주로 확인되었다. 이들 균주에서 게놈 DNA(genomic DNA)를 추출하여 PCR(polymerase chain reaction)을 수행하였다. 도 2의 결과를 살펴보면 BFsp F/BFsp R 프라이머((M) set)를 이용한 것이 병원성 검정 결과와 일치하는 것으로 나타내어 본 프라이머를 벼키다리병균 검출용 프라이머로 1차 선발하였다(도 2).In order to examine the PCR amplification characteristics of the 13 primer sets designed as shown in Table 2, eight Fusarium bacteria isolated from rice were first tested in 2006. As a result of the pathogenicity assay of the eight strains, five strains were identified as pathogenic strains showing typical symptoms, and three strains were identified as non-pathogenic strains. Genomic DNA (genomic DNA) was extracted from these strains and polymerase chain reaction (PCR) was performed. Looking at the results of Figure 2 shows that using the BFsp F / BFsp R primer ((M) set) is consistent with the results of the pathogenic assay, this primer was first selected as a primer for detecting the bacteriophage bacteria (Fig. 2).

b. 표준균주를 이용한 2차 선발b. Secondary Selection Using Standard Strains

1차 선발된 BFsp F/BFsp R 프라이머 세트의 2차 확인을 위하여 미국 ARS collection center에서 분양받은 균주를 사용하였다. 하기 표 3에는 벼키다리병균 검출용 프라이머의 확인을 위해 사용한 Fusarium 균주명 및 기주를 나타내었다. 벼를 비롯한 화곡류에서 분리된 12종의 Fusarium균의 게놈 DNA(genomic DNA)를 추출하고 선발된 프라이머(BFsp F/BFsp R 프라이머 세트)를 이용하여 PCR 검정하였다. 그 결과를 도 3에 나타내었다. 그 결과, 레인(lane) 2, 3, 4, 5에서만 밴드가 나타났으며, 이는 선발된 BFsp F/BFsp R 프라이머는 F. fujikuroi외의 다른 균에서는 증폭되지 않는 것을 확인하였다.
For the second confirmation of the first selected BFsp F / BFsp R primer set was used strains sold in the US ARS collection center. Table 3 below shows the Fusarium strain name and host used for the identification of the primer for the detection of D. coli bacteria. Genomic DNAs of 12 Fusarium bacteria isolated from rice grains including rice were extracted and PCR assayed using the selected primers (BFsp F / BFsp R primer set). The results are shown in Fig. As a result, bands appeared only in lanes 2, 3, 4, and 5, and it was confirmed that the selected BFsp F / BFsp R primers were not amplified by other bacteria except F. fujikuroi .

번호number 종명Species 기주Host 번호number 종명Species 기주Host 1One Fusarium annulatumFusarium annulatum rice plant 1212 Fusarium sacchariFusarium sacchari 수수Sorghum 22 Fusarium fujikuroiFusarium fujikuroi rice plant 1313 Fusarium subglutinansFusarium subglutinans 옥수수corn 33 Fusarium fujikuroiFusarium fujikuroi rice plant 1414 Fusarium thapsinumFusarium thapsinum 수수Sorghum 44 Fusarium fujikuroiFusarium fujikuroi rice plant 1515 Fusarium verticillioidesFusarium verticillioides rice plant 55 Fusarium fujikuroiFusarium fujikuroi rice plant 1616 Fusarium verticillioidesFusarium verticillioides 옥수수corn 66 Fusarium nygamaiFusarium nygamai rice plant 1717 Fusarium concolorFusarium concolor 맥류Pulse 77 Fusarium nygamaiFusarium nygamai 수수Sorghum 1818 Fusarium globosumFusarium globosum wheat 88 Fusarium proliferatumFusarium proliferatum 옥수수corn 1919 Fusarium globosumFusarium globosum 옥수수corn 99 Fusarium proliferatumFusarium proliferatum 수수Sorghum 2020 Fusarium nisikadoiFusarium nisikadoi wheat 1010 Fusarium proliferatumFusarium proliferatum 옥수수corn 2121 Fusarium asiaticumFusarium asiaticum 보리barley 1111 Fusarium proliferatumFusarium proliferatum wheat 2222 Fusarium asiaticumFusarium asiaticum wheat

실시예 3 : 선발된 프라이머의 PCR 조건 확립Example 3 Establishment of PCR Conditions for Selected Primers

본 발명에서 선발된 프라이머의 PCR 반응조건을 최적화하기 위하여, 상기 선발된 프라이머 BFsp F/BFsp R의 annealing 온도에 따른 PCR 반응을 조사하였다. 이때, 주형은 국내 균주(경북 상주시에서 채집한 병원성 균주 CF283)와 미국 ARS collection center 분양균주(Fusarium fujikuroi NRRL21010)를 각각 이용하였으며, 그 PCR 분석 결과를 도 4에 기재하였다. 도 4에 나타난 것과 같이 BFsp F/BFsp R 프라이머 세트는 광범위한 온도범위에서 진단이 가능한 것으로 나타났으며, 최적 annealing 온도는 약 54-58℃로 나타났다.
In order to optimize the PCR reaction conditions of the primers selected in the present invention, the PCR reaction according to the annealing temperature of the selected primers BFsp F / BFsp R was investigated. At this time, the template used domestic strain (pathogenic strain CF283 collected from Sangju-si, Gyeongsangbuk-do) and US ARS collection center distribution strain ( Fusarium fujikuroi NRRL21010), respectively, the PCR analysis results are described in FIG. As shown in FIG. 4, the BFsp F / BFsp R primer set was found to be diagnosed over a wide temperature range, and the optimum annealing temperature was about 54-58 ° C.

실시예 4 : 선발된 프라이머를 사용한 벼 종자에서의 균 검출방법 확립Example 4 Establishment of a Bacterial Detection Method in Rice Seeds Using Selected Primers

선발된 프라이머를 적용하여 벼 종자에서의 벼키다리병균 감염 여부를 조사하는 방법을 확립하였다. 종자 1알을 PDB(potato dextrose broth) 배지 (Potato Starch 4g, Dextrose 20g) 50μl에 넣어 2일간 배양한 후, 곱게 마쇄하고 추출 버퍼(200mM Tris-HCl(pH8.0), 300mM NaCl, 25mM EDTA(pH8.0), 1% Sodium dodecylsulfate)를 이용하여 DNA를 추출하였다. 이를 선발 프라이머인 BFsp F(5'-TGAGACTTGTGTCTGAGAGCT-3') 및 BFsp R(5'-GATAACATCATAACTCCTGCG-3')을 이용하여 PCR 증폭한 결과, 인위적으로 접종한 이병종자에서는 81.3%의 검출율을 나타내었으며, 대조로 사용한 건전종자에서는 2.1%의 균검출율을 나타내었다(도 5).
The selected primers were applied to establish a method for investigating the infection of D. coli in rice seeds. One seed was incubated for 2 days in 50 μl of PDB (potato dextrose broth) medium (Potato Starch 4g, Dextrose 20g), finely ground and extracted with 200 mM Tris-HCl (pH8.0), 300 mM NaCl, 25 mM EDTA (200 mM). pH 8.0), 1% Sodium dodecylsulfate) to extract the DNA. PCR amplification using BFsp F (5'-TGAGACTTGTGTCTGAGAGCT-3 ') and BFsp R (5'-GATAACATCATAACTCCTGCG-3') as a selection primer resulted in an 81.3% detection rate in the artificially inoculated diseased seeds. In the healthy seed used as a control, the bacterial detection rate was 2.1% (FIG. 5).

상기와 과정을 통하여 최종적으로 BFsp F/BFsp R를 하나의 세트 프라이머로 이용하여 본 발명의 벼키다리병균 검출용 특이 프라이머 및 이를 이용한 균 검출 방법을 완성하였다. 본 발명의 선발된 프라이머 세트의 특성을 표 4에 나타내었다.
Through the above process and finally using the BFsp F / BFsp R as a set primer to complete the specific primer for detecting the bacteriophage bacteria of the present invention and the bacteria detection method using the same. The properties of the selected primer sets of the present invention are shown in Table 4.

서열번호SEQ ID NO: 구 분division 프라이머primer 염 기 서 열(5′- 3′)Base sequence (5′-3 ′) 길이Length 예상
산물
prediction
product
최적반응
온도
Optimal response
Temperature
1One ForwardForward BFspFBFspF TGAGACTTGTGTCTGAGAGCTTGAGACTTGTGTCTGAGAGCT 2121 547bp547 bp 58℃58 22 ReverseReverse BFspRBFspR GATAACATCATAACTCCTGCGGATAACATCATAACTCCTGCG 2121

따라서, 상기 벼키다리병균 검출용 특이 프라이머를 이용하여 PCR을 수행하여 벼 종자에 벼키다리병균이 감염되었는지 여부를 종 특이적으로, 신속 정확하게 검출할 수 있다.
Therefore, PCR can be performed using the specific primer for detecting the bacteriophage bacterium to quickly and accurately detect whether the rice seed is infected with the rice seed bacillus.

<110> REPUBLIC OF KOREA(MANAGEMENT : RURAL DEVELOPMENT ADMINISTRATION) <120> Specific Primers For Rapid Detection Of Bakanae Disease Pathogen(Fusarium fujikuroi) And Method For Detection Using The Same <160> 2 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Specific Primers For Rapid Detection Of Bakanae Disease Pathogen(Fusarium fujikuroi) - BFspF <400> 1 tgagacttgt gtctgagagc t 21 <210> 2 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Specific Primer For Rapid Detection Of Bakanae Disease Pathogen(Fusarium fujikuroi) - BFspR <400> 2 gataacatca taactcctgc g 21 <110> REPUBLIC OF KOREA (MANAGEMENT: RURAL DEVELOPMENT ADMINISTRATION) <120> Specific Primers For Rapid Detection Of Bakanae Disease          Pathogen (Fusarium fujikuroi) And Method For Detection Using The          Same <160> 2 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Specific Primers For Rapid Detection Of Bakanae Disease          Pathogen (Fusarium fujikuroi)-bfspf <400> 1 tgagacttgt gtctgagagc t 21 <210> 2 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Specific Primer For Rapid Detection Of Bakanae Disease          Pathogen (Fusarium fujikuroi)-bfspr <400> 2 gataacatca taactcctgc g 21

Claims (8)

서열번호 1로 표시되는 벼키다리병균(Fusarium fujikuroi) 검출용 특이 프라이머.Specific primer for detecting Fusarium fujikuroi represented by SEQ ID NO: 1. 서열번호 2로 표시되는 벼키다리병균(Fusarium fujikuroi) 검출용 특이 프라이머. Specific primer for detecting Fusarium fujikuroi represented by SEQ ID NO: 2. 서열번호 1로 표시되는 포워드(forward) 프라이머 및 서열번호 2로 표시되는 리버스(reverse) 프라이머를 한 세트로 이용하여 벼 종자에서 벼키다리병균을 검출하는 것을 특징으로 하는 벼키다리병균 신속 검출용 특이 프라이머 조합.A specific primer for rapid detection of D. coli bacteria, characterized by detecting D. zygote bacteria in rice seeds using a forward primer represented by SEQ ID NO: 1 and a reverse primer represented by SEQ ID NO: 2 as a set Combination. 상기 청구항 1 내지 3에 기재된 벼키다리병균 검출용 특이 프라이머를 이용한 균 검출 방법.A bacterium detection method using the specific primer for detecting the bacteriophage bacterium according to claim 1 to 3. (S1) 벼 종자에서 게놈 DNA를 추출하는 단계;
(S2) 상기 게놈 DNA를 주형으로 이용하고, 서열번호 1을 포워드 프라이머, 서열번호 2를 리버스 프라이머로 이용하여 PCR을 수행하여 표적 서열을 증폭시키는 단계;
(S3) 상기 증폭시킨 산물을 검출하는 단계;를 포함하는 것을 특징으로 하는 벼키다리병균 신속 검출용 특이 프라이머를 이용한 균 검출 방법.
(S1) extracting genomic DNA from rice seeds;
(S2) amplifying a target sequence by using the genomic DNA as a template and performing PCR using SEQ ID NO: 1 as a forward primer and SEQ ID NO: 2 as a reverse primer;
(S3) microorganism detection method using a specific primer for rapid detection of the bacteriophage bacteria, characterized in that it comprises a; detecting the amplified product.
청구항 5에 있어서, 상기 (S1)단계는 벼의 종자를 PDB(potato dextrose broth) 배지에서 25 내지 30℃ 온도에서 1 내지 3일간 배양하여, 마쇄한 후, 추출버퍼를 이용하여 DNA를 추출하는 것을 특징으로 하는 벼키다리병균 신속 검출용 특이 프라이머를 이용한 균 검출 방법.The method according to claim 5, wherein the step (S1) is to incubate the seed of rice in PDB (potato dextrose broth) medium at 25 to 30 ℃ temperature for 1 to 3 days, after grinding, to extract DNA using an extraction buffer Bacterial detection method using specific primers for rapid detection of dystrophy. 청구항 5에 있어서, 상기 (S2)단계에서 PCR 반응 조건 중 어닐링(annealing) 온도는 50 내지 62℃인 것을 특징으로 하는 벼키다리병균 신속 검출용 특이 프라이머를 이용한 균 검출 방법.The method of claim 5, wherein the annealing (annealing) temperature of the PCR reaction conditions in the step (S2) is a bacteria detection method using a specific primer for rapid detection of D. coli bacteria, characterized in that 50 to 62 ℃. 청구항 5에 있어서, 상기 증폭 산물의 검출은 모세관 전기영동, DNA 칩, 겔 전기영동, 방사성 측정, 형광 측정 및 인광 측정으로부터 선택된 하나이상의 방법으로 수행되는 것을 특징으로 하는 균 검출 방법.The method of claim 5, wherein the detection of the amplification product is performed by at least one method selected from capillary electrophoresis, DNA chip, gel electrophoresis, radioactivity measurement, fluorescence measurement and phosphorescence measurement.
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