KR20040092760A - A attenuated porcine epidemic diarrhrea virus, an immunogenic composition comprising the same and a method for detecting the virus - Google Patents
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Abstract
Description
본 발명은 약독화된 돼지 유행성설사병 바이러스, 그를 포함하는 유행성설사병 예방 또는 치료용 조성물 및 상기 유행성설사병 바이러스의 존재를 검출하는 방법에 관한 것이다.The present invention relates to an attenuated porcine epidemic diarrhea virus, a composition for preventing or treating epidemic diarrhea, and a method for detecting the presence of the epidemic diarrheal virus.
돼지 유행성설사병 바이러스(PEDV)(porcine epidemic diarrhea virus)는 코로나비리대 과(Coronaviridaefamily)의 일원으로서, 막(envelop)이 있는 단일가닥 RNA 바이러스이며, 돼지에 있어서 심한 장관 설사병(diarrhea)을 야기하여 아시아에서 심한 경제적 손실을 초래하고 있다. PEDV 관련 증상으로는, 설사(diarrhea), 거식증(anorexia) 및 피레미아(pyremia)가 있다.Porcine epidemic diarrhea virus (PEDV) is a coronavirus and(CoronaviridaeAs a member of the family, it is a single-stranded RNA virus with an envelope, causing severe intestinal diarrhea in pigs, leading to severe economic losses in Asia. PEDV related symptoms include diarrhea, anorexia and pyremia.
PEDV는 스파이크(S), 막(M), 작은 막(sM), ORF3와 뉴클레오캡시드(N) 유전자로 이루어지고, 이들 모두는 서열분석되었다 (Bridgen A 등,J. Gen. Virol.1993; 74: 1795∼1804; Duarte M 등,J. Gen. Virol.1994; 75: 1195∼1200). 야생형 PEDV를 세포 배양에 적응시키면 야생형 바이러스의 독성이 감소하는데, 이는 ORF3 산물이 상실되는 것과 관련이 있는 것으로 알려져 있다 (Bridgen A 등,Adv. Exp. Med. Biol.1998; 101: 781∼786; Tobler K 등,Adv. Exp. Med. Biol.1995; 86: 541∼542 ). 베로 세포에서 연속 계대배양된 PEDV를 자돈(piglet)에 접종하였을 때, 질병이 약화되는 것이 알려져 있다 (Kweon CH 등,Vaccine1999; 17:2546∼2553).PEDV consists of the spike (S), membrane (M), small membrane (sM), ORF3 and nucleocapsid (N) genes, all of which were sequenced (Bridgen A et al. , J. Gen. Virol. 1993; 74: 1795-1804; Duarte M et al. , J. Gen. Virol. 1994; 75: 1195-1200). Adaptation of wild-type PEDV to cell culture reduces the toxicity of wild-type viruses, which is known to be associated with the loss of ORF3 products (Bridgen A et al . , Adv. Exp. Med. Biol. 1998; 101: 781-786; Tobler K et al . , Adv. Exp. Med. Biol. 1995; 86: 541-542). It is known that the disease is attenuated when the piglets are inoculated with PEDV serially cultured in Vero cells (Kweon CH et al., Vaccine 1999; 17: 2546-2553).
유행성설사병을 예방 또는 치료하기 위하여 PEDV 약독화주가 백신으로서 개발된 바 있다. 이러한 약독화 백신의 예로는 현재 시판중인 KPEDV9 주(KCTC 8641P) (예를 들면, 한국미생물(주))가 있다. 한국특허공개번호 특1996-023048호는 상기 KPEDV9에 대하여 개시하고 있다. 상기 특허문헌에 의하면, KPEDV9는 유행성 설사병으로 폐사한 6일령 자돈의 소장 및 장으로부터 바이러스를 분리하고, 이를 베로 세포(ATCC C1008)에서 증식시키고, 4∼5일 간격으로 약 90회 이상 연속 계대배양을 실시하여 약독화시킨 균주로서, 안전하면서도 이를 접종 받은 돼지에서 면역을 유도한다.PEDV attenuated strains have been developed as vaccines to prevent or treat pandemic diarrhea. An example of such an attenuated vaccine is the currently available KPEDV9 strain (KCTC 8641P) (for example, Korea Microorganism Co., Ltd.). Korean Patent Publication No. 1996-023048 discloses KPEDV9. According to the patent document, KPEDV9 isolates the virus from the small intestine and intestine of 6-day-old piglets died of epidemic diarrheal disease, propagates it in Vero cells (ATCC C1008), and continuously passages about 90 times at intervals of 4 to 5 days. As attenuated strain by carrying out, it is safe but induces immunity in pigs inoculated.
그러나, 상기 KPEDV9 균주를 실제 백신으로 사용하는 경우, 근육을 통하여 투여하여야 한다. 실제 시판중인 KPDEV9의 제품 사양에는 근육주사하도록 지시하고 있으며, 경구 투여에 대하여는 전혀 언급하지 않고 있다. 근육 투여 백신에 비하여, 경구투여 백신은 장내의 GALP(Gut Associated Lymphoid Tissue)를 자극하여 효과적인 면역을 유도하도록 하는 형태의 백신이다. 백신이 투여되었을 경우, 면역기관에서 항체 및 면역세포가 활성화되어 혈액을 통하여 목적 장기로 전달되는 근육투여 백신과는 달리, 상기 경구투여백신은 목적 장기에 곧바로 전달되어 작용한다는 장점이 있다. 그러나, 이러한 경구 투여 백신은 투여되었을 경우, 위산에 의하여 불활성화되지 않을 정도로 산에 강하여야 하고, 소화효소에 대한 저항성을 가지고 있어야 한다. 이러한 경구 투여 백신의 유효성은 투여된 개체로부터 배출되는 배설물 중에 바이러스가 배출이 되는 경우, 경구투여 백신으로서 사용가능성이 있다고 추정할 수 있다.However, if the KPEDV9 strain is used as an actual vaccine, it should be administered via muscle. The actual product specification of KPDEV9 is directed to intramuscular injection and does not mention oral administration at all. Compared to intramuscularly administered vaccines, oral vaccines are types of vaccines that stimulate gut-associated Lymphoid Tissue (GALP) in the gut to induce effective immunity. When a vaccine is administered, unlike an intramuscular vaccine in which antibodies and immune cells are activated in an immune organ and delivered to a target organ through blood, the oral vaccine has an advantage in that it is delivered directly to the target organ. However, these oral vaccines, when administered, must be acid resistant to the extent that they are not inactivated by gastric acid and must be resistant to digestive enzymes. The effectiveness of such oral vaccines can be presumed to be usable as oral vaccines when the virus is excreted in excreta released from administered individuals.
상기 KPEDV9 백신은 또한, 실제 모돈에 투여하였을 경우 자돈의 보호비율이 낮은 것으로 알려져 있다. 또한, 상기 균주를 백신으로서 사용한 경우, 면역학적 분석 방법이외에 간단하게 검출할 수 있는 분석 방법이 없어, 면역화 과정의 분석이나 분자 생물학적 연구가 효율적이지 못한 점이 있었다.The KPEDV9 vaccine is also known to have a low protection rate for piglets when administered to sows. In addition, when the strain was used as a vaccine, there was no analysis method that could be easily detected other than an immunological analysis method, and there was a point that the analysis of the immunization process and the molecular biological research were not efficient.
이에 본 발명자들은 면역학적인 방법 뿐만 아니라, 보다 용이한 방법으로 검출할 수 있으면서도, 백신으로서 사용하는 경우 안전성, 안정성 및 면역원성이 향상되고, 경구 투여가 가능한 약독화 PEDV를 얻고자 집중적인 연구를 수행한 결과, 본 발명을 완성하게 되었다.Accordingly, the present inventors conducted intensive studies to obtain attenuated PEDV, which can be detected by an easier method, as well as immunologically, while improving safety, stability and immunogenicity when used as a vaccine and orally administered. As a result, the present invention has been completed.
따라서, 본 발명의 목적은 안전성, 안정성 및 면역원성이 향상되고, 경구 투여에 의하여도 면역을 유도할 수 있고, 검출이 용이한 약독화된 돼지 유행성설사병 바이러스(PEDV)를 제공하는 것이다.Therefore, it is an object of the present invention to provide attenuated swine epidemic diarrheal virus (PEDV) which is enhanced in safety, stability and immunogenicity, can be induced by oral administration, and is easy to detect.
또한, 본 발명의 목적은 상기 약독화된 유행성설사병 바이러스를 포함하는 유행성설사병의 예방 또는 치료용 조성물을 제공하는 것이다.It is also an object of the present invention to provide a composition for the prevention or treatment of epidemic diarrhea disease comprising the attenuated epidemic diarrhea virus.
또한, 본 발명의 목적은 상기 약독화된 돼지 유행성설사병 바이러스를 용이하게 검출할 수 있는 방법을 제공하는 것이다.It is also an object of the present invention to provide a method for easily detecting the attenuated porcine epidemic diarrheal virus.
도1은 5회 계대 간격으로 측정된 PEDV DR13 역가를 나타내는 도면이다.1 shows PEDV DR13 titers measured at five passage intervals.
도2는 S 유전자 특이적인 RT-PCR를 통한 PEDV DR13 확인 결과를 나타내는 도면이다.Figure 2 is a diagram showing the results of PEDV DR13 via S gene specific RT-PCR.
도3은 ORF3 유전자 특이적인 RT-PCR를 통한 PEDV DR13 확인 결과를 나타내는 도면이다.Figure 3 shows the results of PEDV DR13 identification through ORF3 gene specific RT-PCR.
도4a, 4b와 4c는 계대별 PEDV DR13 ORF3 부분의 서열분석 결과를 표준주 및 모주의 서열과 정열하여 나타낸 것이다.Figures 4a, 4b and 4c shows the sequencing results of the passages of the PEDV DR13 ORF3 portion aligned with the standard and parent strains.
도5는HindIII를 이용한 계대별 PEDV DR13 ORF3 부분의 RFLP 분석 결과이다.5 is a result of RFLP analysis of PEDV DR13 ORF3 part by passage using Hind III.
도6은XhoII를 이용한 계대별 PEDV DR13 ORF3 부분의 RFLP 분석 결과이다.6 is a result of RFLP analysis of PEDV DR13 ORF3 part by passage using Xho II.
도7은HindIII를 이용한 여러 PEDV 주 ORF3 부분의 RFLP 분석 결과이다.Figure 7 shows the results of RFLP analysis of several PEDV strain ORF3 using Hind III.
도8는XhoII를 이용한 여러 PEDV 주 ORF3 부분의 RFLP 분석 결과이다.8 shows the results of RFLP analysis of several PEDV main ORF3 fragments using Xho II.
도9는 14일령 자돈에서 1주일 간격으로 6주 동안의 항체가 변화를 나타낸 도면이다.Figure 9 shows the change in antibody for 6 weeks at weekly intervals in 14-day-old piglets.
본 발명은 돼지 유행성설사병 바이러스 약독화주를 제공한다. 상기 바이러스는 PEDV DR13(수탁번호 KCCM-10474)인 것이 바람직하다.The present invention provides swine epidemic diarrhea virus attenuated strains. The virus is preferably PEDV DR13 (Accession No. KCCM-10474).
본 발명의 상기 바이러스는 돼지 유행성 설사병(PED)(porcine epidemic diarrhea)에 걸린 포유돈으로부터 돼지 유행성 설사병 바이러스(PEDV)(porcine epidemic diarrhea virus) DR13 주를 분리하고, 이를 베로 세포(Vero cell)에서 최대 100회까지 연속 계대배양하여 얻었다. 상기 바이러스는 면역원성이 높으면서도, 병원성을 전혀 갖지 않는 특성을 갖는다. 또한, 돼지에 상기 바이러스를 경구 투여하였을 경우에도 면역을 유도할 수 있으며, 모돈에 투여한 경우 자돈이 80% 이상 보호되는 특성을 가지고 있다.The virus of the present invention isolates the porcine epidemic diarrhea virus (PEDV) DR13 strain from a pig with porcine epidemic diarrhea (PED), which is up to 100 in Vero cells. It was obtained by successive passages up to times. The virus has a high immunogenicity and no pathogenicity. In addition, when the virus is orally administered to pigs, immunity can be induced, and when administered to sows, piglets have a characteristic of protecting 80% or more.
본 발명은 또한, 치료학적으로 유효한 양의 돼지 유행성설사병 바이러스 약독화주 (수탁번호 KCCM-10474) 및 약제학적으로 허용가능한 담체를 포함하는 돼지 유행성 설사병의 예방 또는 치료용 조성물를 제공한다. 상기 조성물의 투여량은 돼지 두당 107∼108TCID50, 바람직하기로는 106.5∼107.5TCID50인 것이다. 상기 조성물은 액제, 주사제, 정제, 및 캅셀제의 형태가 될 수 있으나, 여기에 한정되는 것은 아니다. 상기 조성물은 액제의 경우, 바람직하기로는 모돈에 백신 접종하는 경우 경구를 통하여 2회 투여하고, 그 시기는 분만 4주전 및 2주전에 투여할 수 있다. 상기 약제학적으로 허용가능한 담체에는 통상적인 부형제, 붕해제, 결합제 및 활택제 중에서 1종 또는 2종 이상을 선택적으로 사용할 수 있으며, 구체적으로는 부형제로서 미결정셀룰로오스, 유당, 저치환도 히드록시셀룰로오스 등, 붕해제로서 전분글리콜산 나트륨, 무수인산일 수소 칼슘 등, 결합제로는 폴리비닐피롤리돈, 저치환도히드록시프로필셀룰로오스, 히드록시프로필셀룰로오스 등, 활택제로서는 스테아린산 마그네슘, 이산화규소, 탈크 등에서 선택하여 사용할 수 있다.The present invention also provides a composition for preventing or treating swine pandemic diarrheal disease comprising a therapeutically effective amount of swine pandemic diarrhea virus attenuated strain (Accession No. KCCM-10474) and a pharmaceutically acceptable carrier. The dose of the composition is a pig per person 10 7 ~10 8 TCID 50, preferably 10 6.5 ~10 7.5 TCID 50. The composition may be in the form of solutions, injections, tablets, and capsules, but is not limited thereto. The composition may be administered twice, orally, in the case of a liquid formulation, preferably in the case of vaccinating sows, the timing of 4 weeks before delivery and 2 weeks before delivery. The pharmaceutically acceptable carrier may be optionally used one or two or more of conventional excipients, disintegrants, binders and lubricants, specifically, as an excipient, microcrystalline cellulose, lactose, low-substituted hydroxycellulose, etc. For example, polyvinylpyrrolidone, low-substituted hydroxypropyl cellulose, hydroxypropyl cellulose, and the like may be used as binders such as sodium starch glycolate, sodium hydrogen phosphate anhydrous as a disintegrating agent, and magnesium stearate, silicon dioxide, talc, and the like. You can choose to use it.
본 발명은 또한, 다음 단계를 포함하는 약독화된 돼지 유행성 설사병 바이러스(수탁번호 KCCM-10474)의 존재를 검출하는 방법을 제공한다:The present invention also provides a method for detecting the presence of an attenuated swine pandemic diarrheal virus (Accession No. KCCM-10474) comprising the following steps:
(a) 약독화된 돼지 유행성 설사병 바이러스(수탁번호 KCCM-10474) 유래의 ORF3 DNA를 포함하는 시료를 제공하는 단계;(a) providing a sample comprising ORF3 DNA from attenuated swine pandemic diarrheal virus (Accession No. KCCM-10474);
(b) 상기 시료를 제한 효소HindIII과XhoII로 이루어지는 군으로부터 선택되는 하나 이상의 제한효소로 처리하고 얻어지는 DNA 단편을 검출하여 RFLP 패턴을 얻는 단계; 및(b) treating the sample with one or more restriction enzymes selected from the group consisting of restriction enzymes Hind III and Xho II to obtain a RFLP pattern by detecting a DNA fragment obtained; And
(c) 상기 RFLP 패턴을 동일한 제한효소로 처리하고 얻어지는 DNA 단편을 검출하여 얻어진 표준 돼지 유행성 설사병 바이러스 유래의 ORF3 DNA의 RFLP 패턴과 비교하는 단계.(c) comparing the RFLP pattern of ORF3 DNA derived from standard swine pandemic diarrheal virus obtained by treating the RFLP pattern with the same restriction enzyme and detecting the DNA fragment obtained.
상기 방법은 예를 들면, 약독화된 돼지 유행성 설사병 바이러스 (수탁번호 KCCM-10474)의 RNA를 주형으로 RT-PCR을 통하여 ORF3 DNA를 얻고, 상기 DNA를 제한 효소HindIII 또는XhoII로 처리하여 전기영동하여 RFLP 패턴을 얻고, 얻어진 RFLP 패턴을 표준 돼지 유행성 설사병 바이러스의 RFLP 패턴과 비교하여 상기 바이러스의 존재를 검출하는 것이다. 여기서, 서열번호4의 ORF 3-2 리버스 프라이머를 이용하여 역전사 반응을 수행하고, 서열번호 3과 4의 ORF3-1 포워드 및 ORF 3-2 리버스 프라이머를 이용하여 PCR하여 얻어진 ORF3 DNA는 약 883bp 단편으로서, 바이러스의 RFLP 패턴은HindIII로 처리하였을 경우, 표준 바이러스가 약 471, 183 및 179bp의 래더가 나타나지만, 본 발명의 약독화된 바이러스의 경우, 650 및 183bp의두개의 단편만이 나타난다. 또한,XhoII로 처리하였을 경우, 표준 바이러스가 약 833bp의 하나의 래더가 나타나지만, 본 발명의 약독화된 바이러스의 경우, 563 및 270bp의 두개의 단편이 나타난다. 본 발명의 방법에 사용되는 "ORF3 DNA"는 단순히 ORF3 유전자에 해당하는 서열만을 의미하는 것이 아니고, 연속 계대배양에 의하여 상기 ORF3 유전자에서 제거된HindIII 또는 새롭게 도입된XhoII 제한부위를 포함하는 DNA 단편으로서, ORF3 유전자에 인접하는 서열도 포함할 수 있다. 제한 효소처리 및 전기영동에 의하여 얻어지는 RFLP 패턴은 프라이머 디자인에 따라 달라질 수 있으며, 이러한 프라이머 디자인은 통상적인 DNA 조작 기술을 통하여 행하여질 수 있는 것이므로 당업자에게 잘 알려져 있다. 상기 (b) 단계에 있어서, 상기 단편의 검출은 통상적으로는 전기영동을 통하여 이루어지나, 다른 검출 수단에 의하여서도 행하여질 수 있다. 예를 들면, 상기 단편을 형광으로 표지한 다음, 형광 검출기로 검출함으로써 이루어질 수도 있다.The method, for example, obtains ORF3 DNA via RT-PCR with RNA of attenuated swine pandemic diarrheal virus (Accession No. KCCM-10474) as a template, and treats the DNA with restriction enzymes Hind III or Xho II to perform electrolysis. It is obtained by activating the RFLP pattern and comparing the obtained RFLP pattern with the RFLP pattern of the standard swine pandemic diarrheal virus to detect the presence of the virus. Here, the reverse transcription reaction is performed using the ORF 3-2 reverse primer of SEQ ID NO: 4, and the ORF3 DNA obtained by PCR using the ORF 3-1 forward and ORF 3-2 reverse primer of SEQ ID NOs: 3 and 4 is about 883 bp fragment. As an RFLP pattern of the virus, when treated with Hind III, the standard virus showed a ladder of about 471, 183, and 179 bp, but for the attenuated virus of the present invention, only two fragments of 650 and 183 bp appeared. In addition, when treated with Xho II, one ladder of about 833 bp of standard virus appears, but two fragments of 563 and 270 bp appear in the attenuated virus of the present invention. "ORF3 DNA" used in the method of the present invention does not simply mean the sequence corresponding to the ORF3 gene, but DNA containing the Hind III or the newly introduced Xho II restriction site removed from the ORF3 gene by serial passage. As a fragment, the sequence adjacent to the ORF3 gene may also be included. RFLP patterns obtained by restriction enzyme treatment and electrophoresis may vary depending on the primer design, which is well known to those skilled in the art because such primer design can be done through conventional DNA manipulation techniques. In the step (b), detection of the fragments is usually carried out by electrophoresis, but can also be performed by other detection means. For example, the fragment may be labeled with fluorescence and then detected by a fluorescence detector.
이하 본 발명을 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나, 이들 실시예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명이 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples. However, these Examples are for illustrative purposes only, and the present invention is not limited to these Examples.
실시예Example
실시예에 사용된 연속 베로 세포 주(ATCC, CCL-8)는 5% 우태아 혈청, 페니실린(100 유니트/ml), 스트렙토마이신(100㎍/ml), 및 암포테리신 B(0.25㎍/ml)로 보충된α-MEM(α-minimum essential medium)에 규칙적으로 유지하였다. 세포 약독화된 PEDV인 KPEDV9주는 한국 녹십자 수의 약품사로부터 제공받았다.Continuous Vero cell lines (ATCC, CCL-8) used in the Examples were 5% fetal calf serum, penicillin (100 units / ml), streptomycin (100 μg / ml), and amphotericin B (0.25 μg / ml). Was maintained regularly in α-MEM (α-minimum essential medium) supplemented with). KPEDV9 strain, a cell attenuated PEDV, was provided by a Korean green cross drug company.
실시예1 : 세포 배양을 이용한 PEDV의 분리 및 계대Example 1: Isolation and passage of PEDV using cell culture
유행성설사병(PED)에 감염된 것으로 추정되는 포유자돈(suckling pig)으로부터 얻은 49개의 소화관 가검물 시료를 완충 용액(PBS; 0.1M, pH 7.2)에 균질화하여 10%(v/v) 유제액(suspension)으로 만들었다. 상기 유제액을 격렬하게 섞고, 4800xg에서 10분 동안 원심분리하여 맑게 하였다. 0.2㎛ 시린지 필터(Acrodisk, Gelman)를 통과한 상등액을 베로 세포에서의 바이러스 분리에 사용하였다. 상기 상등액을 접종하기 전에, 25cm2플라스크(Falcon, 미국)에서 자란 밀집(confluent) 세포의 성장 배지를 제거하고, PBS로 세번 세척하였다. 플라스크 당 상등액 1ml를 세포에 접종하였다. 37℃에서 1시간 동안 흡착시킨 후, 0.02% 효모 추출물, 0.3% 트립토우즈 포스페이트 브로쓰, 및 트립신 2㎍으로 보충된 α-MEM 에 상기 세포를 배양하였다. 그 결과, 49개의 시료 중에서 세포변성효과(CPE) (cytopahtic effec)를 일으키는 10개 시료를 1차로 선별하고, 이를 다시 베로 세포에 접종하여 연속적으로 약 70%∼80%의 세포변성효과를 나타내는 PEDV를 분리하고, 이를 PEDV DR13주로 명명하고, 연속 계대배양의 모주로 사용하였다.49 alimentary tract specimens from suckling pigs suspected of having epidemic diarrheal disease (PED) were homogenized in buffer solution (PBS; 0.1M, pH 7.2) to 10% (v / v) emulsion. Made with. The emulsion was mixed vigorously and cleared by centrifugation at 4800 × g for 10 minutes. Supernatants that passed through a 0.2 μm syringe filter (Acrodisk, Gelman) were used for virus isolation from Vero cells. Prior to inoculation of the supernatant, growth media of confluent cells grown in 25 cm 2 flasks (Falcon, USA) was removed and washed three times with PBS. 1 ml of supernatant per flask was inoculated into the cells. After 1 hour of adsorption at 37 ° C., the cells were incubated in α-MEM supplemented with 0.02% yeast extract, 0.3% tryptopose phosphate broth, and 2 μg trypsin. As a result, PEDVs were first selected from the 49 samples that cause cytopathic effect (CPE) (cytopahtic effec), and then inoculated into Vero cells to continuously show about 70% to 80% of cytotoxicity effects. Was isolated and named PEDV DR13 strain and used as the parental line for continuous passage.
또한, 상기 DR13 주는 세포변성효과 뿐만 아니라, PEDV 특이적인 프라이머(서열번호1 및 서열번호2)를 이용한 RT-PCR 분석법(Kim 등, J.Vet. Diagn. Invest. 2001; 13: 516∼520)을 통하여도 PEDV(약 651bp PCR 산물 생성)임을 확인하였다. 상기 프라이머는 병원성을 일으키는 것으로 알려진 PEDV의 S 유전자를 표적으로 하고, 설사병이 유행하는 양돈장에서 함께 진단되는 전염성위장염을 일으키고, PEDV와 동일한 코로나비리대 과에 속하는 TGEV (transmissible gastroenteritis virus)를 분별하여 검출할 수 있도록 고안된 것이다. 먼저, 서열번호2의 리버스 프라이머를 이용한 역전사 반응을 통하여, 상보적 DNA를 제조하였다. PCR 반응은 열순환기(thermal cycler)(Perkin-Elmer, Applied Biosystems 사, Foster city, 미국)에서 3-단계 과정에 의하여 이루어졌다. 시료는 다음으로 구성되는 프로그램에 의하여 증폭하였다: 94℃에서 5분동안 배양; 94℃에서 30초 변성; 55℃에서 30초 어닐링; 및 72℃에서 30초 연장을 5회; 그리고, 94℃에서 30초 변성; 53℃에서 30초 어닐링; 및 72℃에서 30초 연장을 30회 반복하되 각 회마다 1초씩 늘림. 마지막으로, 시료를 72℃에서 7분 동안 유지한 다음, 차갑게 하여 반응을 완료시켰다.In addition, the DR13 strain, as well as cytopathic effect, RT-PCR analysis using PEDV-specific primers (SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2) (Kim et al., J. Vet. Diagn. Invest. 2001; 13: 516-520) Through PEDV (about 651bp PCR product generation) was confirmed. The primer targets the S gene of PEDV, which is known to cause pathogenicity, causes infectious gastroenteritis, which is diagnosed with diarrheal disease in swine pigs, and detects and detects TGEV (transmissible gastroenteritis virus) belonging to the same Coronaviridae family as PEDV. It is designed to do that. First, complementary DNA was prepared by reverse transcription using a reverse primer of SEQ ID NO: 2. PCR reactions were carried out by a three-step process in a thermal cycler (Perkin-Elmer, Applied Biosystems, Foster city, USA). Samples were amplified by a program consisting of: incubating at 94 ° C. for 5 minutes; 30 seconds denaturation at 94 ° C; 30 seconds annealing at 55 ° C .; And 5 30 second extensions at 72 ° C .; And, 30 seconds denaturation at 94 ℃; 30 seconds annealing at 53 ° C .; And repeating the 30 second extension at 72 ° C. for 30 times, increasing by 1 second each time. Finally, the sample was held at 72 ° C. for 7 minutes and then cooled to complete the reaction.
실시예2 : 분리된 PEDV의 연속 계대배양을 통한 약독화Example 2 Attenuation Through Continuous Passage of Separated PEDV
실시예1에서 분리된 DR13 주를 실시예1과 동일하게 25cm2에서 베로 세포에서 100회까지 연속 계대배양하였다. 계대는 접종후 약 5일 간격으로 하였다. 접종 72시간 후, 세포 융합 및 합포체 형성(syncytial formation)이 일어난 다음, 세포 파괴가 일어나는 세포변성효과가 관찰되었다.The DR13 strain isolated in Example 1 was serially passaged up to 100 times in Vero cells at 25 cm 2 in the same manner as in Example 1. Passaging was performed about 5 days after inoculation. After 72 hours of inoculation, cell denaturation and syncytial formation occurred, followed by cell denaturation effect that caused cell destruction.
1. 계대별 PEDV 역가 분석1.PEDV Titer Analysis by Passage
각 5회 계대 마다 Reed와 Muench 법을 이용하여 PEDV의 역가를 측정하였다 (Kusanagi K 등,J. Vet. Med. Sci.1992; 54(2): 303∼318). 역가분석은 베로 세포를 가지고, 96웰 마이크로플레이트를 이용하였다. 바이러스 배양물을 트립신을 함유하는 바이러스 증식 배지로 10배씩 연속 희석하였다. 마이크로플레이트의 밀집베로 세포를 PBS로 3회 세척하고, 0.1ml/웰로 5개의 웰에 접종하였다. 37℃에서 1시간 동안 흡착시킨 후, 접종물을 제거하고, PBS로 3회 세척하였다. 다음으로, 신선한 트립신 함유 바이러스 증식 배지 0.1ml를 각 웰에 첨가하고, 세포를 37℃에서 5일 동안 더 배양하였다. 50% 조직배양 감염량(50% tissue culture infective dose (TCID50)은 세포변성효과를 나타내는 최대 바이러스 희석배수의 역수로 나타낸다.The titers of PEDV were measured for each five passages using the Reed and Muench methods (Kusanagi K et al . , J. Vet. Med. Sci. 1992; 54 (2): 303-318). Titer assays were with Vero cells and 96 well microplates. Virus cultures were serially diluted 10-fold with virus propagation medium containing trypsin. Dense Vero cells in microplates were washed three times with PBS and inoculated in five wells at 0.1 ml / well. After 1 hour of adsorption at 37 ° C., the inoculum was removed and washed three times with PBS. Next, 0.1 ml of fresh trypsin containing virus propagation medium was added to each well, and the cells were further incubated at 37 ° C. for 5 days. The 50% tissue culture infective dose (TCID 50 ) is shown as the inverse of the maximum virus dilution factor that exhibits cytopathic effect.
도1은 5회 계대 간격으로 측정된 PEDV 역가를 나타내는 도면이다. 도1에 나타낸 바와 같이, DR13 모주의 TCID50/0.1ml은 102.2이고, 바이러스의 역가는 55 회 계대에서 정점을 이룬후, 105.0내지 106.0에서 유지된다. 즉, 55 회 계대 이후에는 세포 적응(cell adaptation)이 이루어졌다는 것을 의미한다.1 is a diagram showing PEDV titers measured at five passage intervals. As shown in FIG. 1, TCID 50 /0.1 ml of the DR13 parent strain was 10 2.2 and the titer of the virus was maintained at 10 5.0 to 10 6.0 after peaking at 55 passages. That is, cell adaptation was performed after 55 passages.
2. 계대별 RT-PCR에 의한 PEDV 확인2. Confirmation of PEDV by RT-PCR
또한, 0, 1, 30, 60, 90 및 100회 계대에서 실시예1에서 나타낸 S 유전자 특이적인 RT-PCR과 ORF3 특이적인 RT-PCR를 통하여 PEDV를 확인하였다.In addition, PEDV was identified through S gene-specific RT-PCR and ORF3-specific RT-PCR shown in Example 1 at 0, 1, 30, 60, 90 and 100 passages.
도2는 S 유전자 특이적인 RT-PCR를 통한 PEDV 확인 결과를 나타내는 도면이다. 도2에 나타낸 바와 같이, KPEDV9 뿐만 아니라, 약독화중인 DR13에 대하여도 S 유전자 특이적 PCR 산물(약 651bp) 밴드를 확인할 수 있었다. 도2에서, M : 분자 마커, 레인1: 양성 대조군(시판중인 KPEDV9), 레인2: 음성 대조군, 레인3-8: 0, 1, 30, 60, 90 및 100회 계대한 DR13주이다.Figure 2 is a diagram showing the result of PEDV confirmation through S gene specific RT-PCR. As shown in FIG. 2, not only KPEDV9 but also attenuated DR13 band S gene specific PCR product (about 651 bp) bands were identified. In Figure 2, M: molecular marker, lane 1: positive control (commercial KPEDV9), lane 2: negative control, lanes 3-8: 0, 1, 30, 60, 90 and 100 passaged DR13 strains.
도3은 ORF3 유전자 특이적인 RT-PCR를 통한 PEDV 확인 결과를 나타내는 도면이다. 도3에 나타낸 바와 같이, 양성 대조군(시판 KPEDV9) 뿐만 아니라, 약독화중인 DR13에 대하여도 ORF3 유전자 특이적 PCR 산물(약 833bp) 밴드를 확인할 수 있었다. 도3에서, M : 분자 마커, 레인1: 양성 대조군(시판 KPEDV9), 레인2: 음성 대조군, 레인3-11: 0, 1, 30, 60, 70, 75, 85, 90, 및 100회 계대한 DR13주이다.Figure 3 is a diagram showing the result of PEDV identification through ORF3 gene specific RT-PCR. As shown in FIG. 3, the ORF3 gene-specific PCR product (about 833 bp) band was identified for the attenuated DR13 as well as the positive control (commercial KPEDV9). In Figure 3, M: molecular marker, lane 1: positive control (commercial KPEDV9), lane 2: negative control, lanes 3-11: 0, 1, 30, 60, 70, 75, 85, 90, and 100 times For DR13 weeks.
여기서, ORF3 유전자 특이적인 RT-PCR은 ORF3 유전자를 포함하는 S 및 sM 유전자의 공개된 서열에 기초하여 디자인한 ORF3-1(포워드)과 ORF3-2(리버스)(서열번호3 및 서열번호4)를 프라이머로 사용하였다. 예상되는 PCR 산물의 크기는 약 833bp이다. 역전사 반응은 ORF3-2를 사용하여 이루어졌다. PCR 반응은 실시예1에 기재한 S 유전자 특이적인 PCR과 동일한 방법으로 수행하였다.Here, the ORF3 gene specific RT-PCR is designed based on the published sequences of the S and sM genes, including the ORF3 gene, ORF3-1 (forward) and ORF3-2 (reverse) (SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4) Was used as the primer. The expected PCR product size is about 833 bp. Reverse transcription reaction was done using ORF3-2. PCR reaction was carried out in the same manner as S gene specific PCR described in Example 1.
3. ORF3 서열분석 및 RFLP 분석3. ORF3 Sequencing and RFLP Analysis
(1) ORF3 서열분석(1) ORF3 sequencing
상기2에서 기재한 방법에 따라 증폭된 ORF3 유전자 단편(각 3회 반복 증폭함)을 1.5% 아가로즈 겔상에서 전기영동하여 분리하고, 각 PCR 산물을 QIAquick Gel Extraction 키트 (Qiagen 사, 독일)를 사용하여 매뉴얼에 따라 정제한 다음, PCR 프라이머 (ORF3-1과 ORF3-2)를 사용하여 FS Dye Primer 키트 (Perkin-Elmer, Applied Biosystem 사)로 양방향으로 서열분석하고, ABI 373 자동화 시퀀서(Perkin-Elmer, Applied Biosystem 사)로 확인하였다. 20, 40, 60, 80 및 100회 계대의 ORF3 유전자를 서열분석하였고, 이를 BCM search launcher Multiple Sequence Alignment Program(Human Genome Sequencing center, Houston, TX, 미국)을 사용하여 Genbank에 공지된 표준주 PEDV CV777의 ORF3 서열(accession 번호:Z24733)과 정렬하였다.ORF3 gene fragments amplified according to the method described above (3 repeated amplifications each time) were separated by electrophoresis on 1.5% agarose gel, and each PCR product was separated using a QIAquick Gel Extraction Kit (Qiagen, Germany). Purified according to the manual, and then sequenced bidirectionally with FS Dye Primer kit (Perkin-Elmer, Applied Biosystem) using PCR primers (ORF3-1 and ORF3-2), and ABI 373 automated sequencer (Perkin-Elmer). , Applied Biosystem). ORF3 genes of 20, 40, 60, 80 and 100 passages were sequenced and standardized by the BCM search launcher Multiple Sequence Alignment Program (Human Genome Sequencing center, Houston, TX, USA) PEDV CV777 known from Genbank. To the ORF3 sequence (accession number: Z24733).
도4a, 4b와 4c는 계대별 PEDV ORF3 부분의 서열분석 결과를 표준주 및 모주의 서열과 정열하여 나타낸 것이다. 도4a, 4b와 4c에서 나타낸 바와 같이, 100회 계대 PEDV DR13의 ORF3 서열 (서열번호5)은 모주에 비하여 여러 개의 결실 또는 치환과 같은 돌연변이를 가지고 있다. 구체적으로는, 7개의 뉴클레오티드 서열 변이와 2개의 결실이 발견되었다. 또한, 모주 DR13의 경우, 2개의 제한 효소HindIII (밑줄로 표시) 인지부위가 있는 반면, 100회 계대 PEDV DR13 ORF3 서열에는 하나만 존재하고, 모주 DR13에는 없는XhoII (상자로 표시) 인지 부위가 새로 도입되었다. 이는 RFLP 법을 이용하여 본 발명의 약독화 PEDV를 다른 PEDV주로부터 용이하게 분별할 수 있다는 것을 암시한다. 도4a, 4b와 4c에서, CV777: 표준 균주, 필드(Field): 모주인 DR13 주, P(20),P(40), P(60),P(80),P(100); 각각 20, 40, 60, 80 및 100회 계대를 거친 PEDV DR13을 나타낸다.Figures 4a, 4b and 4c shows the results of sequencing the passages of the PEDV ORF3 portion of the passage line with the sequence of standard strain and parent strain. As shown in Figures 4a, 4b and 4c, the ORF3 sequence (SEQ ID NO: 5) of the 100 passage PEDV DR13 has several deletions or substitutions as compared to the parent strain. Specifically, seven nucleotide sequence variants and two deletions were found. In addition, for the parent DR13, there are two restriction enzyme Hind III (underlined) recognition sites, whereas there is only one Xho II (marked box) recognition site present in the 100 passage PEDV DR13 ORF3 sequence and not in the parent DR13. Newly introduced. This suggests that the attenuated PEDV of the present invention can be easily distinguished from other PEDV strains using the RFLP method. 4A, 4B and 4C, CV777: standard strain, Field: parent DR13 strain, P (20), P (40), P (60), P (80), P (100); PEDV DR13 passed 20, 40, 60, 80 and 100 passages, respectively.
(2) ORF3의 RFLP 분석(2) RFLP analysis of ORF3
계대별 PEDV DR13, 100회 계대 PEDV DR13와 이전에 RT-PCR에 의하여 알려진 12개 PEDV 주에 대하여, ORF3 유전자를 RT-PCR을 통하여 증폭하고, 증폭된 ORF3 단편(약 833bp)에 대하여 RFLP분석을 하였다.For passage PEDV DR13, passage 100 PEDV DR13 and 12 PEDV strains previously known by RT-PCR, the ORF3 gene was amplified via RT-PCR and RFLP analysis was performed on the amplified ORF3 fragment (approximately 833 bp). It was.
각 계대별 PEDV DR13을HindIII과XhoII를 이용하여 RFLP 분석을 수행한 결과,HindIII의 경우 75회 계대부터HindIII의 RFLP 패턴이 달라지기 시작하였으며,XhoII의 경우 90회 계대부터 RFLP 패턴이 달리지기 시작하였다. 도5는HindIII를 이용한 계대별 PEDV DR13 ORF3 부분의 RFLP 분석 결과이다. 도5에 나타낸 바와 같이, 낮은 계대수에서는 471, 183 및 179bp 단편이 생성되었으나, 75회 계대 이후에서는 650과 183bp의 두개의 단편이 생성되었다. 상기 183 및 179bp 단편은 아가로즈 겔 전기영동에서는 겹쳐 있다. 도5에서, M: 분자량 마커, 레인1: 시판중인 KPEDV9, 레인2: 음성 대조군(mock-infected), 레인3-10: 0, 1, 30, 60, 70, 75, 85, 및 100회 계대한 DR13주이다.After performing each type classified PEDV DR13 the RFLP analysis using Hind III and Xho II, Hind was 75 times passaged for III The RFLP pattern of the Hind III begins to vary, RFLP patterns from 90th passage for Xho II This started to run. 5 is a result of RFLP analysis of PEDV DR13 ORF3 part by passage using Hind III. As shown in FIG. 5, 471, 183 and 179 bp fragments were generated at low passage numbers, but two fragments of 650 and 183 bp were generated after 75 passages. The 183 and 179 bp fragments overlap in agarose gel electrophoresis. In Figure 5, M: molecular weight marker, lane 1: commercial KPEDV9, lane 2: negative control (mock-infected), lane 3-10: 0, 1, 30, 60, 70, 75, 85, and 100 times For DR13 weeks.
도6은XhoII를 이용한 계대별 PEDV DR13 ORF3 부분의 RFLP 분석 결과이다. 도6에 나타낸 바와 같이, 90 회 계대 이전에는 833bp 단편이 생성되었으나, 90회 계대 이후에서는 563과 270bp의 두개의 단편이 생성되었다. 도6에서, M: 분자량 마커, 레인1: 시판중인 KPEDV9, 레인2: 음성 대조군(mock-infected), 레인3-11: 0, 1, 30, 60, 70, 75, 85, 90, 및 100회 계대한 DR13주이다.6 is a result of RFLP analysis of PEDV DR13 ORF3 part by passage using Xho II. As shown in FIG. 6, 833 bp fragments were generated before passage 90, but two fragments of 563 and 270 bp were generated after passage 90. In Figure 6, M: molecular weight marker, lane 1: commercial KPEDV9, lane 2: negative control (mock-infected), lanes 3-11: 0, 1, 30, 60, 70, 75, 85, 90, and 100 This is a sub- DR13 week.
다음으로, 도7은HindIII를 이용한 여러 PEDV 주 ORF3 부분의 RFLP 분석 결과이고, 도8는XhoII를 이용한 여러 PEDV 주 ORF3 부분의 RFLP 분석 결과이다. 그 결과, 종래 알려진 12개의 PEDV 분리주는 도5 및 6에 나타낸 바와 같은 낮은 계대수의 PEDV DR13와 동일한 RFLP 패턴을 나타내었다. 도7 및 도8에서, M: 분자량 마커(100bp 래더), 레인1: 100회 계대의 DR13, 레인2: DR13 모주, 레인3: 음성 대조군, 레인4-15: PEDV 분리주로서 각각 DR11, B409, DR183, B640, DR195, GC2, B719, 1101, KJY1, KJY2, B720, 및 DH1이다. 그 결과, RFLP 패턴 분석을 통하여 본 발명의 약독화된 PEDV DR13을 분별할 수 있음을 확인하였다.Next, FIG. 7 shows RFLP analysis results of various PEDV main ORF3 parts using Hind III, and FIG. 8 shows RFLP analysis results of various PEDV main ORF3 parts using Xho II. As a result, the 12 known PEDV isolates showed the same RFLP pattern as the low pass PEDV DR13 as shown in FIGS. 5 and 6. 7 and 8, M: molecular weight marker (100 bp ladder), lane 1: DR13 of 100 passages, lane 2: DR13 parent, lane 3: negative control, lanes 4-15: PEDV isolates, respectively, DR11, B409, DR183, B640, DR195, GC2, B719, 1101, KJY1, KJY2, B720, and DH1. As a result, it was confirmed that the attenuated PEDV DR13 of the present invention can be identified through RFLP pattern analysis.
실시예3 : 약독화 PEDV DR13의 특성 분석Example 3 Characterization of Attenuated PEDV DR13
1. 초유를 먹지 않은 자돈에서의 병원성 유발여부의 검사1. Examination of pathogenicity in piglets not fed colostrum
초유를 먹지 않은 1일령 돼지에 DR13, 75와 100회 계대의 DR13을 각각 접종하여 병원성을 검사하였다. 사용된 자돈의 수는 그룹별로 각각 5마리이고, 5ml(105.8TCID50/0.1ml)의 바이러스를 구강을 통하여 1회 투여하였다. 음성 대조군에는, 초유를 먹지 않은 1일령 돼지 1마리에 α-MEM 배지(minimal essential media) 5ml를 접종하였다. 바이러스 투여후 24시간 간격으로 분변을 채취하고, 실시예1에 기재한 S 유전자 특이적 RT-PCR을 실시하여, 바이러스의 배출유무를 확인하고, 매일 임상증상을 모니터링하였다.One-day-old pigs without colostrum were inoculated with DR13, 75 and 100 passages of DR13, respectively, to test for pathogenicity. The number of piglets used was 5 each group, and 5 ml (10 5.8 TCID 50 /0.1 ml) of the virus was administered once through the oral cavity. In the negative control group, 5 ml of α-MEM medium (minimal essential media) was inoculated into 1 day-old pig without colostrum. Feces were collected at 24 hour intervals after virus administration, and S gene-specific RT-PCR described in Example 1 was performed to confirm the discharge of virus and to monitor daily clinical symptoms.
그 결과를 표1에 나타내었다. 표1에 나타낸 바와 같이, DR13을 투여한 그룹에서는 3일이내에 심한 설사와 탈수로 모든 돼지가 폐사하였으나, 75와 100회 계대의 DR13을 투여한 그룹에서는 여전히 생존하였다. 따라서, 자돈이 우연히 상기 약독화 DR13 바이러스에 노출되더라도 안전하게 생존할 수 있다.The results are shown in Table 1. As shown in Table 1, all pigs died due to severe diarrhea and dehydration within 3 days in the DR13 group, but still survived in the 75 and 100 passages. Thus, piglets can survive safely even if they are accidentally exposed to the attenuated DR13 virus.
표1. 초유를 먹지 않은 돼지에서 DR13 배출 검사 결과Table 1. DR13 emission test results in pigs that did not eat colostrum
2. 14일령 및 임신 모돈에서의 약독화 DR13의 병원성과 면역원성2. Pathogenicity and Immunogenicity of Attenuated DR13 in 14-Day and Pregnant Sows
(1) 병원성의 검사(1) examination of pathogenicity
약독화 여부를 확인하기 위하여, 100회 계대 DR13주를 14일령 자돈과 임신 모돈에 대하여 시험하였다. 시험은 다음 표2와 같이 디자인하였다.To confirm attenuation, 100 passages DR13 weeks were tested for 14-day-old piglets and pregnant sows. The test was designed as shown in Table 2 below.
표2. 14일령 및 임신 모돈에서의 약독화 DR13의 병원성과 면역원성Table 2. Pathogenicity and Immunogenicity of Attenuated DR13 at 14-Day and Pregnancy Sows
aTCID50/0.1mlb약독화 DR13(100회 계대) a TCID 50 /0.1ml b Attenuated DR13 (100 passages)
c약독화 DR13(75회 계대)d모주 DR13(0회 계대) c Attenuated DR13 (75th Passage) d Moju DR13 (0th Passage)
e소장의 10% 유제액 (바이러스 역가는 측정되지 않음.)10% of e-liquid emulsion Director (viral reverse does not go measure.)
fα-Minimum essential media f α-Minimum essential media
병원성(pathogenicity) 비교를 위하여, 세포 적응(cell adaptation) 이전의 야외 분리주 DR13을 자돈의 소장으로부터 준비하였다. 상기 소장을 PBS로 균질화하였다. 다음으로, 10% 소장 유제액을 0.8㎛와 0.2㎛ 마이크로필터(Satorius, 독일)를 사용하여 여과하였다. 105.8TCID50/0.1ml를 함유하는 바이러스(100회 계대) 1ml를 4개의 상업적 농장 (각각 300, 500, 1200 및 1300 마리)의 총 2520 마리의 임신 모돈에 대하여 경구를 통하여 1회 투여하였다. 자돈과 임신 모돈에 대하여 각각 10일과 5일 동안 투여된 시험 동물의 설사와 폐사의 임상증상을 관찰하였다. 또한, 태어난 새끼 돼지를 동일 기간 동안에 해당 농장에서 대조군 임신 모돈에서 태어난 새끼 돼지와 평균 크기를 비교하였다.For pathogenicity comparison, the outdoor isolate DR13, prior to cell adaptation, was prepared from the small intestine of piglets. The small intestine was homogenized with PBS. Next, the 10% small intestine emulsion was filtered using 0.8 μm and 0.2 μm microfilters (Satorius, Germany). 1 ml of virus (100 passages) containing 10 5.8 TCID 50 /0.1 ml was administered once orally to a total of 2520 pregnant sows from four commercial farms (300, 500, 1200 and 1300, respectively). Clinical symptoms of diarrhea and mortality were observed in pigs and pregnant sows for 10 and 5 days, respectively. In addition, the piglets born were compared with the average size of piglets born from control gestational sows on the farm during the same period.
그 결과, 약독화 DR13을 투여한 자돈과 임신 모돈에서는 설사와 PEDV 감염과 관련되는 거식증, 피레미아 증상은 나타나지 않았다. 그러나, 모주인 DR13을 투여한 자돈의 경우, 모든 자돈에서 심한 수성 설사와 탈수 증상이 3일 동안 발생하였다. 바이러스 배출은 약독화 DR13과 모주인 DR13을 투여한 군에서 각각 7일과 8일 동안 지속되었다. 약독화 DR13(100회 계대)을 투여한 임신 모돈에서는 설사, 거식증 및 피레미아와 같은 임상 증상은 전혀 나타나지 않았다. 약독화 DR13(100회 계대)를 투여한 임신 모돈과 대조군 모돈에서 태어난 새끼 돼지(평균 10.4 마리)의 평균 크기에는 차이가 없었다.As a result, piglets and pregnant sows treated with attenuated DR13 did not show anorexia and pyremia symptoms associated with diarrhea and PEDV infection. However, in piglets treated with parental DR13, severe aqueous diarrhea and dehydration occurred in all piglets for 3 days. Viral excretion lasted 7 and 8 days in the attenuated DR13 and parent DR13 groups, respectively. Pregnant sows administered attenuated DR13 (100 passages) showed no clinical symptoms such as diarrhea, anorexia and pyremia. There was no difference in mean size of gestational sows born with attenuated DR13 (100 passages) and piglets born from control sows (average 10.4).
(2) 면역원성의 검사(2) Examination of immunogenicity
또한, 면역 반응을 비교하기 위하여, 14일령 자돈에서 수집된 혈청과 초유(colostrum at delivery)에 대하여 간접 효소면역측정법(ELISA)을 이용하여 측정하였다 (Kweon CH 등,Vaccine1999; 17: 2546∼2553). 또한, 약독화 DR13(100회 계대) 접종전, 접종후 2주 및 초유에서의 항체가를 측정하였다. 또한, 대조군 돼지로부터 10개의 초유를 수집하였다. 상기 간접 효소면역측정법은 구체적으로, 세포 순화된 PEDV를 폴리에틸렌글리콜(PEG)(분자량 6,000)에 용해시키고, 이를 다시 TEN 완충용액(0.01 M Tris, 0.001M EDTA, 0.1M NaCl )에 녹이고 정제하여 항원으로 사용하였다. 카보네이트 버퍼를 96웰 플레이트에 첨가하고, 항원을 1∼2㎍ 코팅하고, 1% 탈지유(skimmed milk)로 37℃에서 1시간 동안 블로킹한 다음, 5℃에서 밤새 방치하였다. 돼지 가검 혈청은 인산완충용액에 1:400으로 희석하여 30분 동안 반응시키고, 2차 항체(goat HRP conjugated anti-swine IgG)(KPN 사)는 1:2,000으로 희석하여 1시간 동안 37℃에서 반응시켰다. 발색은 ABTS를 이용하였다.In addition, to compare the immune response, serum and colostrum at delivery collected from 14-day-old piglets were measured using indirect enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) (Kweon CH et al., Vaccine 1999; 17: 2546-2553). ). In addition, antibody titers were measured before inoculation with attenuated DR13 (100 passages), two weeks after inoculation, and colostrum. In addition, 10 colostrums were collected from control pigs. Indirect enzyme immunoassay specifically, cell purified PEDV is dissolved in polyethylene glycol (PEG) (molecular weight: 6,000), and dissolved in TEN buffer solution (0.01 M Tris, 0.001 M EDTA, 0.1 M NaCl) and purified by antigen. Used as. Carbonate buffer was added to a 96 well plate, 1-2 μg coated antigen, blocked with 1% skimmed milk for 1 hour at 37 ° C. and then left at 5 ° C. overnight. Porcine gum serum was diluted 1: 400 in phosphate buffer solution for 30 minutes, and secondary antibody (goat HRP conjugated anti-swine IgG) (KPN) was diluted 1: 2,000 and reacted at 37 ° C for 1 hour. I was. Color development was performed using ABTS.
그 결과, 접종된 모든 자돈과 모돈에서 보호성 ELISA 역가를 나타내었다 (도9). 도9는 14일령 자돈에서 1주일 간격으로 6주 동안의 항체가 변화를 나타낸 도면이다. 도9에 나타낸 바와 같이, 모주 DR13를 접종한 경우, 2주일째에 피크를 나타내었고, 약독화주를 접종한 경우 3주일째에 피크를 나타내었다. 대조군 자돈과 모돈에서는 PEDV에 대한 항체는 검출되지 않았다. 또한, 분만시의 모돈의 초유에서는 높은 수준의 항 PEDV 항체가 검출되었다. ELISA에서, 약독화 DR13(100회 계대)을 투여한 임신 모돈의 초유에 대한 OD405값은 0.479 내지 0.718로서, 대조군의 0168 내지 0.231에 비하여 높았다.As a result, protective ELISA titers were shown in all inoculated piglets and sows (FIG. 9). Figure 9 shows the change in antibody for 6 weeks at weekly intervals in 14-day-old piglets. As shown in FIG. 9, when the parent DR13 was inoculated, peaks were observed at 2 weeks, and when attenuated strains were inoculated, peaks were observed at 3 weeks. No control for PEDV was detected in control piglets and sows. In addition, high levels of anti-PEDV antibody were detected in colostrum of sows at delivery. In the ELISA, the OD 405 value for colostrum of pregnant sows administered attenuated DR13 (100 passages) was 0.479 to 0.718, higher than 0168 to 0.231 of the control group.
실시예4 : 현재 시판중인 백신(KPEDV9)과 본 발명의 약독화 PEDV DR13(100회 계대) 백신의 경구 투여에 의한 공격접종에 대한 방어 능력 비교 실험.Example 4 Comparison of Protective Capability against Inoculation by Oral Administration of Currently Available Vaccine (KPEDV9) and Attenuated PEDV DR13 (100 Pass) Vaccine of the Present Invention.
본 실시예에서는 현재 시판중인 KPEDV9 백신과 본 발명의 약독화 PEDV DR13(100회 계대) 백신의 공격접종에 대한 방어능력을 비교하기 위하여, 임신 모돈에 각각의 백신을 접종하고, 그로부터 태어난 자돈에 1회 공격접종하여 그 생존율을 확인하였다.In this example, in order to compare the protective capacity against the challenge of the currently commercially available KPEDV9 vaccine and the attenuated PEDV DR13 (100 passages) vaccine of the present invention, each vaccine was inoculated into pregnant sows, and the pigs born therefrom 1 The challenge rate was confirmed by the survival challenge.
분만 4주전과 2주전에 임신모돈(각 3마리)에 KPEDV9 백신과 약독화 PEDV DR13(100회 계대)을 105.5TCID50/0.1ml의 역가로 2회 경구 투여하였다. 다음으로, 분만후 모돈으로부터 태어난 각각 5마리의 자돈에 병원성 돼지 유행성 설사병 바이러스 야외주를 1ml 씩 공격접종하였다. 야외 바이러스는 돼지 유행성 설사병이 발생한 농장에서 수집된 자돈의 소장을 유제화하여 10% 유제액을 만들고, 0.2㎛ 필터를 이용하여 여과하여 사용하였다(실시예1 참조). 공격 접종은 3일령의 자돈에 대하여 실시한 후, 7일 동안 자돈의 임상증상 및 폐사율을 기록하였다. 그 결과를 표3에 나타내었다.KPEDV9 vaccine and attenuated PEDV DR13 (100 passages) were administered orally twice a titer of 10 5.5 TCID50 / 0.1 ml to 4 and 2 weeks before delivery. Next, 1 ml of pathogenic pig epidemic diarrheal virus outdoor strain was challenged with 5 piglets born from sows after delivery. The open air virus was used to emulsify the small intestine of piglets collected from a farm in which swine epidemic diarrheal disease occurred, to make a 10% emulsion, and to filter using a 0.2 μm filter (see Example 1). Attack vaccination was performed on piglets at 3 days of age, and then recorded clinical symptoms and mortality of piglets for 7 days. The results are shown in Table 3.
표3. 백신을 모돈에 경구 투여한 후, 자돈에 대한 공격 접종에 자돈의 생존율Table 3. Survival rate of piglets after oral administration of vaccine to sows
그 결과, KPEDV9 백신을 접종한 모돈에서 태어난 자돈의 경우, 공격접종에 대하여 심한 수양성 설사로 인하여 4마리가 폐사하였다. 즉, 생존율은 20%이었다. 반면, 본 발명의 약독화 PEDV DR13(100회 계대) 백신을 접종한 모돈에서 태어난 자돈의 경우, 1마리만이 폐사하였다. 즉, 생존율은 80%이었다.As a result, in piglets born from sows vaccinated with KPEDV9 vaccine, 4 animals died due to severe watery diarrhea for challenge. In other words, the survival rate was 20%. On the other hand, in piglets born from sows vaccinated with the attenuated PEDV DR13 (100 passages) of the present invention, only one died. In other words, the survival rate was 80%.
상기 실시예에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 약독화 PEDV DR13은 모돈과 자돈에 경구투여하여 안전하게 면역을 유도할 수 있었다. 또한, 본 발명의 약독화 PEDV는 모돈에 경구를 통하여 투여하였을 때, 80%이상의 자돈을 보호할 수 있었으나, 종래 시판되고 있는 KPEDV9을 모돈에 근육을 통하여 투여하였을 때, 20%이하의 자돈만이 보호되었다. 종래 KPEDV9은 주로 근육을 통하여 투여되었으나, 본 발명의 약독화 PEDV DR13은 경구 투여를 통하여도 종래 시판 중인 KPEDV9보다 우수한 면역효과를 유도할 수 있었다. 본 발명의 약독화 PEDV DR13은 경구 투여 후 동일한 형태의 바이러스가 배출되는 것으로 보아 체내에서 안전하면서도, 안정하게 유지되고, 표준 균주들과는 분별될 수 있는 제한효소 마커(예를 들면,HindIII과XhoII)를 가지고 있어 상기 약독화 PEDV DR13을 포함하는 백신을 모돈 또는 자돈에 투여한 후 RFLP 분석을 통하여 용이하게 면역화 과정을 모니터링할 수 있고, PEDV 백신 관련 분자 생물학적 연구를 용이하게 할 수 있다. 이상과 같은 장점을 갖는 본 발명의 약독화 PEDV DR13 중, 100회까지 연속 계대배양된 PEDV DR13 주를 한국미생물보존센터에 2003년 3월 12일 기탁하였다 (수탁번호 KCCM-10474).As shown in the above examples, the attenuated PEDV DR13 of the present invention was able to induce immunity safely by oral administration to sows and piglets. In addition, the attenuated PEDV of the present invention was able to protect more than 80% of piglets when administered orally to sows, but only 20% or less of piglets, when commercially available KPEDV9 was administered via muscle to sows, Protected. Conventional KPEDV9 was mainly administered through muscle, but the attenuated PEDV DR13 of the present invention was able to induce an immune effect superior to conventional KPEDV9 even through oral administration. The attenuated PEDV DR13 of the present invention appears to release the same type of virus after oral administration, so that it remains safe, stable in the body and can be distinguished from standard strains (eg, Hind III and Xho II). ), The vaccine containing the attenuated PEDV DR13 can be administered to sows or piglets, and the immunization process can be easily monitored through RFLP analysis, and PEDV vaccine-related molecular biological studies can be facilitated. Among the attenuated PEDV DR13 of the present invention having the above-mentioned advantages, PEDV DR13 strains passaged up to 100 times were deposited at the Korea Microorganism Conservation Center on March 12, 2003 (Accession No. KCCM-10474).
본 발명의 약독화 PEDV DR13은 안전성, 안정성, 면역원성 및 모돈에 투여하였을 때 자돈의 보호 효율이 높은, 약독화 PEDV DR13을 함유하는 백신을 제조하는데 효과적으로 이용될 수 있으며, 제한 효소 마커를 가지고 있어 백신 접종후 이를 모니터링하는데에도 효과적으로 이용될 수 있다.The attenuated PEDV DR13 of the present invention can be effectively used to prepare a vaccine containing attenuated PEDV DR13, which has high safety, stability, immunogenicity and protection efficiency for piglets when administered to sows, and has a restriction enzyme marker. It can also be used effectively to monitor this after vaccination.
본 발명의 약독화 PEDV DR13을 포함하는 돼지 유행성 설사병의 예방 또는 치료용 조성물은 경구 투여를 통하여도 모돈 또는 자돈에서 돼지 유행성설사병을 효과적으로 예방 또는 치료를 할 수 있다.The composition for preventing or treating swine pandemic diarrhea comprising attenuated PEDV DR13 of the present invention can effectively prevent or treat swine pandemic diarrheal disease in sows or piglets through oral administration.
본 발명의 약독화 PEDV DR13을 검출하는 방법에 의하면, 백신에 의한 면역화 과정 분석 및 관련 분자생물학적 연구를 용이하게 할 수 있다.According to the method for detecting the attenuated PEDV DR13 of the present invention, it is possible to facilitate the analysis of the immunization process by the vaccine and related molecular biological studies.
<110> PARK, BONGKYUN <120> A attenuated porcine epidemic diarrhrea virus, a immunogenic composition comprising the same and a method for detecting the virus <130> GN14098 <160> 4 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer for PEDV S gene <400> 1 ttctgagtca cgaacagcca 20 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer for PEDV S gene <400> 2 catatgcagc ctgctctgaa 20 <210> 3 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ORF3-1 forward primer for ORF3 amplification <400> 3 tcctagactt caaccttacg 20 <210> 4 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ORF3-2 reverse primer for ORF3 amplification <400> 4 ggtgacaagt gaagcacaga 20<110> PARK, BONGKYUN <120> A attenuated porcine epidemic diarrhrea virus, a immunogenic composition comprising the same and a method for detecting the virus <130> GN14098 <160> 4 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer for PEDV S gene <400> 1 ttctgagtca cgaacagcca 20 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer for PEDV S gene <400> 2 catatgcagc ctgctctgaa 20 <210> 3 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ORF3-1 forward primer for ORF3 amplification <400> 3 tcctagactt caaccttacg 20 <210> 4 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> ORF3-2 reverse primer for ORF3 amplification <400> 4 ggtgacaagt gaagcacaga 20
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