KR20030002214A - Compositions for preventing and treating brain diseases - Google Patents
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Abstract
Description
본 발명은 뇌질환 예방 및 치료에 효과가 있는 한약조성물에 관한 발명으로 더욱 상세하게는 전체 조성물의 조성 중 중량비로 당귀 3.57-16%, 우슬 3.57-16%, 생지황 3.57-16%, 도인 3.57-10.7%, 지각 3.57-9%, 적작약 3.57-9%, 시호 1.78-5.35%, 감초 1.78-5.35%, 질경 2.68-7.14%, 천궁 2.68-7.14%, 구인 3.57-9%, 및 전칠 3.57-9%로 이루어진 한약재의 용매 추출물를 포함하는 뇌질환 예방 및 치료용 조성물에 관한 발명이다.The present invention relates to a herbal composition effective for the prevention and treatment of brain diseases. More specifically, the weight ratio of the composition of the whole composition, Angelica 3.57-16%, dew 3.57-16%, saenghwanghwang 3.57-16%, doin 3.57- 10.7%, crust 3.57-9%, opposition 3.57-9%, shiho 1.78-5.35%, licorice 1.78-5.35%, plantain 2.68-7.14%, celestial 2.68-7.14%, job offer 3.57-9%, and prech 3.57-9 The present invention relates to a composition for preventing and treating cerebral disease, including a solvent extract of a Chinese herbal medicine.
어혈(瘀血)은 한방고유의 병인으로 체내의 일정부위에 혈액이 정체되거나 더럽혀져 불결하며 또는 경맥을 이탈한 혈액으로 병리적 산물인 동시에 질병을 발생시키는 중요한 원인으로 인식되고 있고, 실제로 임상에서 암 등의 난치병에 활혈거어제(活血祛瘀)가 활용되고있다. 최근에는 어혈의 범위가 넓어서 각종 혈전증(thrombosis), DIC(disseminated intravascular coagualtion), 고점도혈증(hyperviscomia) 등의 병증과 유사하다고 인식되고 있는데 이러한 양방적 병인은 각종 심혈관계(관상동맥질환, 고혈압, 혈전증, 고지혈증등) 및 뇌질환(중풍 및 치매 등) 등을 야기시켜 사망율을 증대시키고 있으므로 이의 치료 및 예방은 중요한 과제이다.Fish blood is a unique etiology of the Chinese medicine, and the blood is stagnant or dirty at certain parts of the body, or it is the blood that is out of the meridians and is recognized as a pathological product and an important cause of disease. Live blood hormonal medicine is used for incurable diseases such as cancer. Recently, it is recognized that the range of fish blood is similar to various thrombosis, disseminated intravascular coagualtion (DIC), hyperviscomia (hyperviscomia), etc. These two etiologies include various cardiovascular diseases (coronary artery disease, hypertension, thrombosis). , Hyperlipidemia, etc.) and brain diseases (such as stroke and dementia) to increase mortality, so its treatment and prevention is an important task.
어혈이 혈관이나 심장내의 혈액덩어리인 혈전증과 유사하다는 것을 전제로 이에 관련된 연구가 진행되고 있다. 특히 혈전증(thrombosis)은 폐색성혈전증,벽재성혈전증 및 부패성 혹은 진균성혈전증이 있는데, 연령, 탈수, 악성종양, 비만, 빈혈, 고혈압, 간염, 당뇨병, 고지혈증, 콜라겐 혈관질환, 엔도톡신 쇼크 등이 원인이 되어 혈관내벽의 손상, 혈류의 변화 및 혈액성분의 변화 등을 야기시키는 것으로 인식되고 있다. 혈전에 의한 증상은 매우 다양하여 증상이 전혀 발현되지 않는 경우부터 울혈, 부종, 핍혈성 괴사로 인한 경색, 심장기능장애 및 패혈증 등이 나타날 수 있으며 관상혈관폐새 또는 복부대동맥혈전에 의하여 갑작스러운 사망에 이르는 경우도 있다. 혈관내 혈전유발물질로 엔도톡신(endotoxin)과 덱스트란(dextran)이 이용되고 있으며, 혈액을 피하에 주사하여 혈종을 유발하는 방법이 이용된 실험연구가 진행된바가 있다. 또한 혈전증에 대한 동물모델로는 probe로 혈관내피를 손상하여 혈전을 유발시키거나, 혈관내 어혈을 유발시키고 혈관조형술을 통해 혈전용해를 평가하고, 혈전형성에서 중요한 요인이되는 혈소판의 수와 응집능을 측정하며, 박화진은 혈소판내의 cAMP와 cGMP의 생성을 촉진함으로써휘드백(feed back) 시스템으로 TXA2(thromboxane 2)를 저해하여 혈소판응집을 저해하는 연구를 수행하고 있다. 그러나 항혈전제에 연구에서 약물선정에서는 한의학의 어혈개념을 고려한 활혈거어제의 단미 한약이나 한방 처방을 전반적으로 비교 검토한 연구는 거의 없는 실정이며 한방고유의 병인인 어혈과 관련된 실험연구에서 한의계에서 최근의 진보된 실험기법을 활용한 연구는 많지 않다. 이에 앞으로 연구는 이미 한의계에서 이루어져왔던 엔도톡신 어혈모델외에 다양한 모델을 개발하고자 하며 수종의 항혈전 가능성이 있는 한방처방과 단미약물을 이용하여 항혈전 효과를 검정하고, 한의 방제본초학의 중요이론인 약물간 상승작용을 고려한 연구를 통해 어혈을 제거하면서 항혈전 효과를 나타내어 심혈관질환의 예방과 치료에 기여할 수 있는 한방요법의 개발이 절실하다.Research has been conducted on the premise that fish blood is similar to thrombosis, a blood clot in a blood vessel or heart. In particular, thrombosis includes obstructive thrombosis, wall thrombosis, and decayed or fungal thrombosis, which are caused by age, dehydration, malignancy, obesity, anemia, hypertension, hepatitis, diabetes, hyperlipidemia, collagen vascular disease, and endotoxin shock. This is recognized to cause damage to the inner wall of blood vessels, changes in blood flow and changes in blood components. Symptoms caused by blood clots are so diverse that symptoms can occur from no symptoms to congestion, swelling, infarction due to percutaneous necrosis, cardiac dysfunction, and sepsis, and sudden death from coronary pulmonary or abdominal aortic thrombosis. It may come early. Endotoxin and dextran are used as thrombogenic substances in blood vessels, and experimental studies have been conducted using a method of causing hematoma by injecting blood subcutaneously. In addition, the animal model of thrombosis is a probe that damages the vascular endothelium to induce thrombosis, induce vascular blood clots, evaluate thrombolysis through angioplasty, and platelet count and coagulation, which are important factors in thrombosis. Hwajin is conducting research to inhibit platelet aggregation by inhibiting TXA2 (thromboxane 2) as a feed back system by promoting the production of cAMP and cGMP in platelets. However, in the selection of anti-thrombotic drugs, there have been few studies comparing the single-term herbal medicines or herbal prescriptions of biomolecular oils in consideration of the concept of Korean blood, and in the oriental medicine system in experimental studies related to fish blood which is the etiology of oriental medicine. There is not much research using recent advanced experimental techniques. In the future, this study intends to develop various models in addition to the endotoxin fish blood model, which has already been made in oriental medicine, and tests the antithrombotic effect by using herbal prescriptions and danmi drugs, which have the possibility of antithrombotic activity, and the important theory of herbal remedies. The study considering synergism is urgently needed to develop herbal remedies that can contribute to the prevention and treatment of cardiovascular diseases by removing the blood and showing antithrombotic effects.
특히 뇌혈관질환은 주로 중풍과 노인성 치매 등이 많은데 의료, 복지 분야의 향상으로 인한 인구의 고령화와 식생활 패턴의 변화등으로 말미암아 그 발생율이 날로 증가하는 추세이다. 뇌혈관질환으로 발생된 뇌기능 저하를 개선시키는 약물에 대한 연구는 앞으로의 신약 개발에 있어 관심을 기울여야할 분야라고 생각되며 이러한 뇌기능 개선제의 개발을 활성화시키기 위해서는 효능 검색법의 확립이 필수적이다.In particular, cerebrovascular disease is mainly due to stroke and senile dementia, and the incidence rate is increasing day by day due to the aging of the population and changes in dietary patterns due to the improvement of medical and welfare fields. Research on drugs that improve brain function deterioration caused by cerebrovascular disease is considered to be an area of concern for the development of new drugs in the future, and it is essential to establish efficacy screening methods to activate the development of such brain function improving agents.
한의학에서 자주 접하는 환자중의 하나인 중풍에 대한 연구로 중풍에 임상에서 효과적인 한방 처방 및 단미한약을 이용하여 중풍모델에 대한 효과를 검정하고 새로운 처방을 개발하는 연구가 필요하다. 현대의학적으로 중풍(CVA;cerebovascular accident)의 병인은 고혈압(hypertension),혈전증(cerebral thrombosis), 뇌색전(cerebral embolism), 뇌경색(cerebral infarction) 및 일시적뇌빈혈(transient ischemic accident) 등으로 알려져 있다. 이중 뇌경색을 유발하는 실험모델은 주로 국소적 뇌허혈증에 의해 유발되는데 좌우 경동맥폐색(bilateral carotid occlusion), 동맥 소색전(microembolism) 및 네 혈관 폐색(four vessel occlusion) 등이다.As a study on stroke, one of the patients frequently encountered in oriental medicine, studies on the effectiveness of the stroke and the development of new prescriptions are needed by using herbal prescriptions and simple medicines that are effective in clinical trials. The pathogenesis of cerebral vascular accidents (CVA) is known as hypertension, cerebral thrombosis, cerebral embolism, cerebral infarction and transient ischemic accidents. Experimental models that induce double cerebral infarction are mainly caused by focal cerebral ischemia, such as bilateral carotid occlusion, microembolism and four vessel occlusion.
본 발명은 상기한 문제점을 해결하고 상기의 필요성에 의하여 안출된 것으로서, 본 발명의 목적은 중풍치료 및 예방에 효과가 있는 조성물을 제공하는 것이다.The present invention has been made in view of the above problems and the above necessity, the object of the present invention is to provide a composition that is effective in treating and preventing stroke.
도 1은 MCA 처리한 쥐에서 부종 및 허혈면적에 대한 대조군(오른쪽)과 KHCT(왼쪽)의 효과를 보여주는 사진.1 is a photograph showing the effect of the control (right) and KHCT (left) on edema and ischemia area in MCA treated mice.
도 2는 MCA 처리한 쥐에서 부종 및 허혈면적에 대한 대조군(오른쪽)과 KHCT헥산분획(왼쪽)의 효과를 보여주는 사진.Figure 2 is a photograph showing the effect of the control (right) and KHCT hexane fraction (left) on edema and ischemia area in MCA treated mice.
도 3은 MCA 처리한 쥐에서 부종 및 허혈면적에 대한 대조군(오른쪽)과 KHCT에테르분획(왼쪽)의 효과를 보여주는 사진.Figure 3 is a photograph showing the effect of the control (right) and KHCT ether fraction (left) on edema and ischemia area in MCA treated mice.
도 4는 MCA 처리한 쥐에서 부종 및 허혈면적에 대한 대조군(오른쪽)과 KHCT.EA분획(왼쪽)의 효과를 보여주는 사진.Figure 4 is a photograph showing the effect of the control (right) and KHCT.EA fraction (left) on edema and ischemia area in MCA treated mice.
도 5는 MCA 처리한 쥐에서 부종 및 허혈면적에 대한 대조군(오른쪽)과 KHCT.부탄올분획(왼쪽)의 효과를 보여주는 사진.Figure 5 is a photograph showing the effect of the control (right) and KHCT. Butanol fraction (left) on edema and ischemia area in MCA treated mice.
도 6은 쥐 피질 성상세포의 이차배양 사진.Figure 6 is a secondary culture photograph of rat cortical stellate cells.
도 7은 일차배양한 성상세포에 대한 가미혈부축어탕의 효과를 보여주는 그림.Figure 7 is a diagram showing the effect of Gami-Byeolbujangeotang on primary cultured astrocytes.
도 8은 허혈 독성에 대한 가미혈부축어탕의 효과를 보여주는 그림.Figure 8 is a figure showing the effect of Gami-Bebuchukeotang on ischemic toxicity.
도 9는 p38활성에 대한 가미혈부축어탕의 효과를 보여주는 그림.Figure 9 is a diagram showing the effect of Gami-Bibuchukeotang on p38 activity.
도 10은 JNK 활성에 대한 가미혈부축어탕의 효과를 보여주는 그림.Figure 10 is a figure showing the effect of Kamyomibucchieotang on JNK activity.
도 11은 허혈증에 의한 VEGF(Vascular endothelial growth factor)의 유도를 보여주는 그림. A는 RT-PCR의 결과이고, B는 웨스턴 블럿의 결과이다.11 is a diagram showing the induction of Vascular endothelial growth factor (VEGF) by ischemia. A is the result of RT-PCR and B is the result of Western blot.
도 12는 HIF(HIF;hypoxia-inducible factor) 활성에 대한 허혈증의 효과를 보여주는 그림.12 is a diagram showing the effect of ischemia on HIF (hypoxia-inducible factor) activity.
도 13은 MCA 처리한 쥐에서 부종 및 허혈면적에 대한 대조군과 KHCT의 효과를 보여주는 그림.Figure 13 shows the effect of the control and KHCT on edema and ischemia area in MCA treated mice.
도 14는 가미혈부축어탕 EA층의 이동 활성에 영향을 보여주는 그림.Figure 14 is a diagram showing the effect on the migration activity of Gami-Bibujangeotang EA layer.
상기의 목적을 달성하기 위하여 본 발명은 전체 조성물의 조성 중 중량비로 당귀 3.57-16%, 우슬 3.57-16%, 생지황 3.57-16%, 도인 3.57-10.7%, 지각 3.57-9%, 적작약 3.57-9%, 시호 1.78-5.35%, 감초 1.78-5.35%, 질경 2.68-7.14%, 천궁 2.68-7.14%, 구인 3.57-9%, 및 전칠 3.57-9%로 이루어진 한약재의 용매 추출물를 포함하는 뇌질환 예방 및 치료용 조성물을 제공한다.In order to achieve the above object, the present invention is a weight ratio of the composition of the total composition of Angelica 3.57-16%, wort 3.57-16%, live turmeric 3.57-16%, phosphate 3.57-10.7%, crust 3.57-9%, red medicine 3.57- Prevention of brain diseases, including 9%, shiho 1.78-5.35%, licorice 1.78-5.35%, plantain 2.68-7.14%, celery 2.68-7.14%, job offer 3.57-9%, and solvent extract of herbal medicine 3.57-9% And it provides a therapeutic composition.
상기 조성물의 각각의 약재의 범위는 그 상한치를 초과하면 소화불량, 설사등이 발생할 수 있으며, 그 하한치 미만은 항혈전 및 뇌경색 보호효과가 없거나 약할 수 있는 문제점이 있다.If the range of each medicine of the composition exceeds its upper limit may cause indigestion, diarrhea, etc., below the lower limit there is a problem that the anti-thrombotic and cerebral infarction protective effect may be weak or weak.
본 발명의 한약재를 추출하기 위해서 사용한 용매는 물, 헥산, 부탄올, 에테르, 및 에틸아세테이트로 등을 이용하여 추출하였다.The solvent used to extract the herbal medicine of the present invention was extracted using water, hexane, butanol, ether, ethyl acetate and the like.
또 본 발명에서 의미하는 뇌질환은 중풍 및 치매 등을 포함한다.In addition, the brain diseases referred to in the present invention include stroke and dementia.
본 발명에 사용된 실험동물은 국립보건안전연구원에서 생산된 5주령의 웅성 흰쥐 Splague Dawley를 온도 23±2℃, 습도 55±10%, 12시간 조명주기 조건하에서 SER의 경우 주령 16주 이상, Wistar rat는 체중이 300g이상 될 때까지 사육하여 사용하였으며 이때 물과 사료는 자유로이 섭취할 수 있도록 하였으며, 약물은 현재 어혈방의 대표방인 혈부축어탕(血府逐瘀湯), 격하축어탕(膈下逐瘀湯), 익신활혈탕(益腎活血湯), 관심이호방(冠心二號方), 활락효령단(活絡效靈丹), 통규활혈탕(通竅活血湯), 화어찬육탕(化瘀贊育湯), 대황자충환, 계지복령환, 대황목단피탕(大黃牧丹皮湯), 도핵승기탕(桃核承氣湯), 저당탕(抵當湯), 보양환오탕(補陽還五湯), 사묘용안탕(四妙勇安湯), 소전통어탕(消栓通瘀湯), 천마구등음(天麻鉤藤飮) 등을 중심으로 하며 구인, 전칠여기에 현재 다용되고 있는 각종 활혈화어(活血化瘀)약물을 가감하여 실험처방으로 사용하고자 하였다.Experimental animals used in the present invention were 5 weeks old male rat Splague Dawley produced by the National Institute of Health and Safety at 23 ± 2 ℃, 55 ± 10% humidity, 16 hours of SER under 12 hours lighting cycle conditions, Wistar The rats were reared until the weight of 300g or more, and water and feed were freely ingested. ,), Iksinhaengheoltang (益腎 活血 湯), Lee, Bo-Hi-Bang (활 心 二號 方), Lively Hyoyeongdan, Tonggyuhaengheol-tang (通 화 活血 湯), Hwa-chan Yuk-tang (化) 대), Rhubarb Jachunghwan, Gyeji Bokryeonghwan, Rhubarb Mokdanpitang, Donugunggigitang, Pangdantang, Boyanghwanotang湯), Sammyo Yongantang, Soseontongeotang (消 栓 通 구), Cheonmagu Deungeum (天 飮 藤 飮), etc. The acceleration and various hwalhyeol hwaeo (活血 化瘀) was to use experimental drugs to prescribe.
실시예 1: 본 발명에 사용된 약물의 조성 및 유기용매분획층의 제조Example 1 Composition of the Drug Used in the Present Invention and Preparation of the Organic Solvent Fraction Layer
현재 어혈방의 대표방인 혈부축어탕, 격하축어탕, 관심이호방, 활락효영단, 통규활혈탕, 익신활혈탕, 생화탕, 소복축어탕, 보양환오탕, 대황자충환, 인삼별갑전환, 계지복령환, 대황목단피탕, 도핵승기탕, 저당탕, 온경탕, 도인공연단, 익신탕, 사묘용안탕, 서각지황탕, 천금위경탕, 화어찬육탕, 익심탕, 청선어혈탕등을 기본방으로 하고, 구인 8g, 전칠(田七) 8g을 가미하여 가미방을 만들어 실험처방으로 사용하였다.Presently, the representative rooms of Eoyeolbang, Blood-Bucked Fish Soup, Gyeok-ha-Jung-eup-tang, Lee Ji-ho-bang, Bowak Hyoyoungdan, Tonggyuhaengheol-tang, Iksin-shalhe-tang, Saenghwa-tang, Sobok-tang Fish-tang, Boyanghwan-o-tang, Rhubarb Jachung-hwan, Ginseng Star Crab Conversion, Gyeji Boknyeonghwan, Rhubark Mokdanpitang, Dokuk Seunggitang, Mordangtang, Ongyeongtang, Doin Performance, Iksintang, Samyoyongantang, Seogakjihwangtang, Cheongeumwigyeongtang, Huaechan Yuktang, Iksimtang, Cheongseoneoheoltang, etc. 8g of ginseng and 8g of Chilchi (田七) were added to make a kamibang and used as an experimental prescription.
a. 약물의 제조a. Manufacture of drugs
실험에 사용할 약재를 각각 추출기(S-15000, SEA IK MEDICAL)에 넣고,1500ml의 물을 가하여 2시간 동안 가열 추출하여 각각 추출액을 얻었다. 추출액을 여과지로 여과하여 얻은 여액을 rotary vaccum evaporator(Switzerland)를 이용하여 감압 농축하여 점조성의 추출물을 얻어, 다시 딥 프리저로 동결하여 동결건조기, FDU 540(EYELA co., Japan)로 동결 건조하여 본 실험에 필요한 농도로 희석하여 사용하였다.The medicinal herbs to be used in the experiment were put in extractors (S-15000, SEA IK MEDICAL), and 1500 ml of water was added thereto, followed by heat extraction for 2 hours, to obtain respective extracts. The filtrate obtained by filtering the extract with a filter paper was concentrated under reduced pressure using a rotary vaccum evaporator (Switzerland) to obtain a viscous extract. The extract was then frozen with a deep freezer and freeze-dried with a freeze dryer, FDU 540 (EYELA co., Japan). Diluted to the concentration required for this experiment was used.
유기용매 분획은 상기 처방 및 약물을 먼저 추출하고자 하는 식물부분 약 10kg 정도에 95% 메탄올 20kg을 넣고 reflux 상태에서 3시간 정도 가열한 다음 여과한 후, 모액을 50ml 정도로 농축한 후 클로로포름과 물의 혼합용액(각각 100ml씩)을 넣고 잘 흔들어서 두층으로 분리시킨 후 클로로포름 층에 대해서 도표에 있는 과정을 주어진 용매의 혼합물(각각 100ml씩)로 분리를 진행하여 최종 5가지 분획을 얻어 농축한 다음, 아래에 언급한 방법에 따라 생리활성시험을 행하였다.The organic solvent fraction is added to 20kg of 95% methanol in about 10kg of the plant part to be extracted first, and then heated in reflux for 3 hours, filtered and the mother liquor is concentrated to about 50ml, and then a mixed solution of chloroform and water. (100 ml each), shake well to separate the two layers, and then proceed with the procedure in the table for the chloroform layer by separating the mixture with a given solvent (each 100 ml each) to obtain the final five fractions, and then concentrate as follows. According to one method, a physiological activity test was performed.
만약 어떤 분획의 식물 추출물이 항암활성이 있으면 활성부위를 다시 추출하며 특히 단미생약의 유효성분의 분리작업에 들어갈 수 있다. 즉 크로마토크래피 등의 방법을 동원하여 분획을 하였다. 분획을 TLC상에서 비교하고 활성분획의 물질spot이 일치하면 다량의 단일생약에서 물질분리와 동물실험에 충분한 양의 활성 분획을 얻었다.If a fraction of the plant extract has anticancer activity, the active site is re-extracted and in particular, the separation of the active ingredient of the single herb can be carried out. That is, fractionation was carried out by mobilizing methods such as chromatography. The fractions were compared on TLC, and when the active spots were matched with the material spots, a sufficient amount of active fractions were obtained for mass separation and animal experiments.
[표 1] 가미혈부축어탕의 조성TABLE 1 Composition of Kami-Blood Fish Cake
b. 유기용매분획층의 제조b. Preparation of Organic Solvent Fraction Layer
가미혈부축어탕(이하, "KHCT"라 함) 4,640g(40첩)을 준비하고 이들 약재에 메탄올 12L를 가하여 3일간 방치한 후 여과지에 걸러 모으는 작업을 2회 반복하여 메탄올층을 확보하고 모아진 메탄올층을 감압농축기를 사용하여 메탄올을 모두 증발시켜 메탄올추출 농축액(330g)을 확보한다. 이 농축액에 3차 증류수 1L를 넣어 녹인 뒤 분리 깔대기에 넣고 동량의 헥산을 넣어 강하게 흔들어 혼합시킨 후 방치하는 과정을 2-3회 반복하여 헥산층을 분리해내며 남은 물층에 다시 동량의 에테르, 에틸 아세테이트를 순차적으로 가하여 같은 방법으로 유기용매층을 분리해낸다. 얻어진 유기용매층은 각각 감압농축기를 사용하여 유기용매층을 모두 증발시켜 각각의 유기용매추출 농축액을 확보한다. 에틸 아세테이트농축액(11.2244g)은 실리카겔 크로마토그래피방법을 이용하여 세분획을 4층으로 나누어 분리해내고 각각의 세분획(1분획-1.82g, 2분획-1.55g, 3분획-4.13g, 4분획-3.68g)층은 감압농축기를이용하여 유기용매를 모두 증발시켜 농축액을 확보한 뒤 실험약물로 사용하였다.Prepare 4,640g (40 pouches) of Kami-Bubu-chae-tang (hereinafter referred to as "KHCT"), add 12 liters of methanol to these medicines, leave for 3 days, and filter the filter paper twice to secure the methanol layer. The methanol layer was evaporated using a vacuum condenser to secure methanol extract concentrate (330 g). Dissolve 1L of tertiary distilled water in this concentrate, put it in a separatory funnel, add the same amount of hexane, shake it vigorously, mix it, and repeat it for 2-3 times to separate the hexane layer, and then add the same amount of ether and ethyl to the remaining water layer. Acetate was added sequentially to separate the organic solvent layer in the same manner. The obtained organic solvent layers were each evaporated using a vacuum concentrator to secure each organic solvent extraction concentrate. Ethyl acetate concentrate (11.2244 g) was separated into four layers by silica gel chromatography, and each fraction (1 fraction-1.82 g, 2 fractions-1.55 g, 3 fractions-4.13 g, 4 fractions) was separated. -3.68g) layer was used as a test drug after securing the concentrate by evaporating all the organic solvent using a vacuum condenser.
실시예 2: MCA 폐색Example 2: MCA Occlusion
a. 프로브 제작a. Probe Fabrication
4-0규격의 나일론 봉합사(Deknatel Inc.)를 적당한 길이로 잘라 열을 가해 한 쪽 끝에 매듭을 만들었다. 총 길이를 18㎜로 만든 후 경화제를 섞은 실리콘을 약 0.3㎜두께로 매듭 반대편에 얇게 5㎜ 덧씌워 프로브를 만들었다.A 4-0 standard nylon suture (Deknatel Inc.) was cut to the appropriate length and heated to form a knot at one end. After making the total length to 18 mm, the probe was made by thinly coating the opposite side of the knot with a thickness of about 0.3 mm of silicon mixed with a curing agent.
b. 중대뇌동맥 폐쇄b. Middle cerebral artery occlusion
하룻밤 절식시킨 흰쥐를 에테르로 가볍게 마취시킨 후 ketamine chloride (100㎎/㎏)를 복강내 주사하고 수술대에 고정시켰다. Nagasawa등의 방법에 따라 목 중앙을 절개하고 미주신경에 손상을 주지 않도록 주의하면서 오른쪽 총경동맥, 내경동맥 및 외경동맥을 분리한 뒤 총경동맥과 외경동맥을 결찰하고 곧바로 외경동맥과 내경동맥의 분지점에 매듭을 제외한 프로브 전체를 삽입한 뒤 삽입부위 바로 위쪽을 결찰함으로써 동측 중대뇌동맥을 폐쇄하였다. 총 수술 시간은 30분 이내로 하였으며 적외선등을 비추어 가능한 한 체온 하강을 방지하였고 수술중 출혈이 발생되지 않도록 하였다. Sham operation의 경우 총경동맥과 외경동맥만을 결찰하였다.The overnight fasted rats were lightly anesthetized with ether, and then injected intraperitoneally with ketamine chloride (100 mg / kg) and fixed on the operating table. Dissecting the center of the neck according to Nagasawa et al., Taking care not to damage the vagus nerve, separating the right common carotid artery, the internal carotid artery and the external carotid artery, and ligation the common carotid artery and the external carotid artery and the branching points of the external carotid artery and the internal carotid artery. After inserting the entire probe except the knot, the ipsilateral middle cerebral artery was closed by ligation just above the insertion site. Total operation time was less than 30 minutes, and infrared rays were prevented to reduce body temperature as much as possible and bleeding did not occur during surgery. In the sham operation, only the total and external carotid arteries were ligated.
c. 신경학적 검사c. Neurological examination
수술 후 24시간이 경과한 다음 신경학적 검사를 행하여 중대뇌동맥 폐쇄에 따른 신경학적 결손정도를 측정하였다. 신경학적 결손정도는 Bederson등의 방법에 의해 그 정도를 4등급으로 나누어 점수화하였으며 증상에 따른 등급 분류는 Table 1, 2와 같다.After 24 hours after surgery, neurologic examinations were performed to determine the degree of neurologic deficits due to the middle cerebral artery occlusion. The degree of neurological deficits was scored by dividing the degree into 4 grades by Bederson et al., And the classification according to the symptoms is shown in Table 1 and 2.
[표 2] 앞다리에서 신경학적 조사 등급 시스템Table 2: Neurological Investigation Rating System in Forelimbs
[표 3] 뒷다리에서 신경학적 조사 등급 시스템Table 3 Neurological Investigation Rating System in Hind Legs
d. 허혈 면적 및 부종을 측정d. Measuring ischemia area and edema
신경학적 검사 직후 쥐를 단두하여 재빨리 뇌를 꺼내어 뇌 매트릭스(ASI Instruments, Warren, MI., U.S.A)를 이용하여 2㎜두께의 두정(coronal) 뇌 조각을 얻은 후 이중 8 조각만을 선택하여 3% triphenyltetrazolium chloride(TTC)용액을 가하고 37℃에서 50분간 배양하였다. TTC에 의해 정상 조직은 짙은 빨강색으로 염색되나 허혈이 일어난 조직은 염색되지 않음으로써 정상 조직과의 구분이 가능하였다. 배양종료후 염색된 조직을 10% 포르말린 중성 버퍼용액으로 고정시키고 2-3일내에 칼라 사진용 필름으로 사진을 찍어 현상한 뒤 영상분석기로 각각의 두정 조각에서의 허혈 면적을 측정하였다. 허혈 면적 및 부종율은 아래의 식에 의해 산출하였다.Immediately after neurological examination, the rats were single-headed and the brains were quickly taken out to obtain 2 mm thick coronal brain slices using a brain matrix (ASI Instruments, Warren, MI., USA), and only 8 pieces were selected and 3% triphenyltetrazolium was selected. A chloride (TTC) solution was added and incubated at 37 ° C. for 50 minutes. Normal tissues were stained dark red by TTC, but tissues with ischemia were not stained. After incubation, the stained tissues were fixed with 10% formalin neutral buffer solution, photographed with a color photographic film within 2-3 days, developed, and the ischemic area of each parietal fragment was measured by an image analyzer. Ischemia area and edema rate were calculated by the following equation.
A : 각 두정 조각에서의 허혈이 유발된 대뇌 반구 면적(㎣)A ischemia-induced cerebral hemisphere area in each parietal slice
B : 각 두정 조각에서의 대측 대뇌 반구 면적(㎣)B: the cerebral hemisphere area in each parietal piece
C : 각 두정 조각에서의 허혈 면적(㎣)C ischemia area in each parietal piece
중대뇌동맥 폐쇄에 따른 허혈 면적 및 부종율에 미치는 효과를 살펴보면,The effects on the ischemic area and edema rate following middle cerebral artery occlusion
중풍모델 개발은 MCA 폐색을 통해 수행하였으며, 혈부축어탕과 관심이호방에 구인 전칠을 가미하여 유효분획연구를 수행하였다.The development of the stroke model was carried out through MCA occlusion, and an effective fraction study was carried out with the addition of roasted chicken paste in the blood bun fish tang and the larvae of interest.
그 결과, 관심이호방이 상대적으로 혈부축어탕에 비해 효과가 우수하였으며 특히 관심이호방의 부탄올층이 가장효과가 높았고, 혈부축어탕에서도 부탄올층이 가장효과가 우수하였다.As a result, it was found that Rho-bang-bang of interest was more effective than blood-rich fish tang, and especially the butanol layer of R-bang-bang-bang was the most effective.
[표 4] MCA 처리한 쥐에서 부종 및 허혈면적에 대한 대조군과 KHCT의 효과:TABLE 4 Effect of control and KHCT on edema and ischemia area in MCA treated mice:
상기 표에서 C1-8은 대조군의 뇌 조각 번호를 의미하고, KH1-8는 KHCT처리한 군의 뇌조각을 의미하며, ND는 검출안된 것이다. In the above table, C1-8 means brain fragment number of the control group, KH1-8 means brain fragments of the KHCT-treated group, and ND is not detected.
[표 5] MCA 처리한 쥐에서 부종 및 허혈면적에 대한 대조군과 KHCT헥산분획의 효과:TABLE 5 Effect of control and KHCT hexane fraction on edema and ischemia area in MCA treated mice:
상기 표에서 C1-8은 대조군의 뇌 조각 번호를 의미하고, KH.H1-8는 KHCT의 헥산분획을 처리한 군의 뇌조각을 의미하며, ND는 검출안된 것이다. In the above table, C1-8 means brain fragment number of the control group, KH.H1-8 means brain slices of the group treated with hexane fraction of KHCT, and ND is not detected.
[표 6] MCA 처리한 쥐에서 부종 및 허혈면적에 대한 대조군과 KHCT에테르분획의 효과TABLE 6 Effect of control and KHCT ether fractions on edema and ischemia area in MCA treated mice
상기 표에서 C1-8은 대조군의 뇌 조각 번호를 의미하고, KH.E1-8는 KHCT의 에테르분획을 처리한 군의 뇌조각을 의미하며, ND는 검출안된 것이다.In the above table, C1-8 means brain fragment number of the control group, KH.E1-8 means brain fragments of the group treated with ether fraction of KHCT, and ND is not detected.
[표 7] MCA 처리한 쥐에서 부종 및 허혈면적에 대한 대조군과 KHCT.EA분획의 효과:TABLE 7 Effect of control and KHCT.EA fraction on edema and ischemia area in MCA treated mice:
상기 표에서 C1-8은 대조군의 뇌 조각 번호를 의미하고, KH.EA1-8는 KHCT의 에틸 아세테이트분획을 처리한 군의 뇌조각을 의미하며, ND는 검출안된 것이다.In the above table, C1-8 means brain fragment number of the control group, KH.EA1-8 means brain fragments of the group treated with ethyl acetate fraction of KHCT, and ND is not detected.
[표 8] MCA 처리한 쥐에서 부종 및 허혈면적에 대한 대조군과 KHCT.부탄올분획의 효과:TABLE 8 Effect of control and KHCT.butanol fraction on edema and ischemia area in MCA treated mice:
상기 표에서 C1-8은 대조군의 뇌 조각 번호를 의미하고, KH.EA1-8는 KHCT의 에틸 아세테이트분획을 처리한 군의 뇌조각을 의미하며, ND는 검출안된 것이다.In the above table, C1-8 means brain fragment number of the control group, KH.EA1-8 means brain fragments of the group treated with ethyl acetate fraction of KHCT, and ND is not detected.
Fore limb의 신경학적 결손정도는 대조군의 경우 조작(operation) 후의 등급은 2.89±0.11이었는데 비하여 실험투여군인 가미혈부축어탕의 헥산. 부탄올층에서1.52±0.33, 2.15±0.25으로 등급이 호전되었다. 저산소증(Hypoxia) 후의 대조군의 등급은 2.89±0.11이었는대 비하여 가미혈부축어탕의 헥산. 부탄올층에서 2.13±0.45, 2.45±0.25으로 크게 호전되지는 않았다 또한 재순환(Recirculation) 후의 등급도 대조군에 비해서 가미혈부축어탕의 헥산.만 2.57±0.20에서 2.0±0.00로 호전되었다.The degree of neurological deficits of fore limb was 2.89 ± 0.11 after operation in the control group, compared with the hexane level of Gamiblood Buchaeotang in the experimental group. The grade improved to 1.52 ± 0.33 and 2.15 ± 0.25 in the butanol layer. The control group after hypoxia was 2.89 ± 0.11, compared to that of Kami-Bibujangeotang. Butanol layer was not significantly improved to 2.13 ± 0.45 and 2.45 ± 0.25. Also, the grade after recirculation was improved from 2.57 ± 0.20 to 2.0 ± 0.00.
또한 뒷 다리의 신경학적 결손정도는 대조군의 경우 조작 후의 등급은 0.44±0.18이었는데 비하여, KHCT: 헥산. 에테르, 부탄올, KGSIHB: 에테르, 부탄올층에서 0.1±0.18, 0.11±0.11, 0.11±0.11, 0.00±0.00도0.1±0.11로 등급이 호전되었다. 저산소증(Hypoxia)의 경우 대조군의 등급은 0.11±0.11이었는데 비하여 KHCT: 헥산., 부탄올, KGSIHB: 에테르, 부탄올층에서 0.00±0.000,. 0.00±0.00, 0.11±0.11, 0.00±0.00로 등급이 호전되었다. 또한 재순환(Recirculation) 후의 대조군의 등급은 0.14±0.14이었는데 비하여 KHCT: 헥산., 부탄올, KGSIHB: 에테르, 부탄올층에서 0.18±0.44, 0.00±0.00, 0.14±0.28, 0.00±0.00로 등급이 호전되었다.The degree of neurological deficit in the hind limbs was 0.44 ± 0.18 in the control group, whereas KHCT: hexane. Ether, Butanol, KGSIHB: The grades were improved to 0.1 ± 0.18, 0.11 ± 0.11, 0.11 ± 0.11, 0.00 ± 0.00 degrees and 0.1 ± 0.11 in the ether and butanol layers. In the case of hypoxia, the control grade was 0.11 ± 0.11 compared to KHCT: hexane, butanol, KGSIHB ether, butanol 0.00 ± 0.000. The grade improved to 0.00 ± 0.00, 0.11 ± 0.11, and 0.00 ± 0.00. In addition, the grade of the control group after recirculation was 0.14 ± 0.14, but the grade was improved to 0.18 ± 0.44, 0.00 ± 0.00, 0.14 ± 0.28, 0.00 ± 0.00 in the KHCT: hexane, butanol, KGSIHB: ether, butanol layers.
[표 9] 중대뇌동맥 폐쇄에 따른 신경학적 결손 정도의 변화에 미치는 효과(앞다리)[Table 9] Effect of neurologic deficits on middle cerebral artery occlusion (forelimbs)
상기표에서 대조군은 정상 식염수를 처리한 군이고, KHCT: 가미혈부축어탕 , KHCT. 헥산: 가미혈부축어탕 헥산층, KHCT. 에테르: 가미혈부축어탕 에테르층, KHCT. EA; 가미혈부축어탕 EA층, KHCT. 부탄올: 가미혈부축어탕 부탄올층, KGSIHB:가미관심이호방 , KGSIHB. 헥산: 가미관심이호방 헥산층, KGSIHB. 에테르; 가미관심이호방 에테르층, KGSIHB. EA; 가미관심이호방 EA층, KGSIHB. 부탄올; 가미관심이호방 부탄올층을 의미한다.In the table, the control group was treated with normal saline, and KHCT: Kami-Bubu-echi-tang, KHCT. Hexane: Kami-Bubu-echijangtang hexane layer, KHCT. Ether: Kami-Bubu-cha-e-tang, KHCT. EA; Kami Blood Bubbly Fish Soup EA, KHCT. Butanol: Kami-Bibu-Chameotang-Butanol layer, KGSIHB: Kami-Choibangbang, KGSIHB. Hexane: Kamishibangbang hexane layer, KGSIHB. ether; Flavor interest ether layer, KGSIHB. EA; Kami Interest Room EA floor, KGSIHB. Butanol; Kami attention means the butanol layer in the room.
[표 10] 중대뇌동맥 폐쇄에 따른 신경학적 결손 정도의 변화에 미치는 효과(뒷다리)[Table 10] Effect of neurologic deficits on middle cerebral artery occlusion (hind limbs)
상기표에서 대조군은 정상 식염수 처리군을 의미하고, KHCT: 가미혈부축어탕 , KHCT. 헥산: 가미혈부축어탕 헥산층, KHCT. 에테르: 가미혈부축어탕 에테르층, KHCT. EA; 가미혈부축어탕 EA층, KHCT. 부탄올: 가미혈부축어탕 부탄올층, KGSIHB:가미관심이호방 , KGSIHB. 헥산: 가미관심이호방 헥산층, KGSIHB. 에테르; 가미관심이호방 에테르층, KGSIHB. EA; 가미관심이호방 EA층, KGSIHB. 부탄올; 가미관심이호방 부탄올층을 의미한다.In the above table, the control group means normal saline treatment group, and KHCT: Kami-Bebu-echukeo-tang, KHCT. Hexane: Kami-Bubu-echijangtang hexane layer, KHCT. Ether: Kami-Bubu-cha-e-tang, KHCT. EA; Kami Blood Bubbly Fish Soup EA, KHCT. Butanol: Kami-Bibu-Chameotang-Butanol layer, KGSIHB: Kami-Choibangbang, KGSIHB. Hexane: Kamishibangbang hexane layer, KGSIHB. ether; Flavor interest ether layer, KGSIHB. EA; Kami Interest Room EA floor, KGSIHB. Butanol; Kami attention means the butanol layer in the room.
실시예 2: KCN유발 혼수시간 측정Example 2 KCN Induced Coma Time Measurement
ICR계 생쥐 10마리를 1군으로 하여 한약을 저농도와 고농도로 oral zonde(대종기기)를 이용하여 경구투여 하였으며, 대조군(control)에는 검액을 녹일 때 사용한 동량의 생리식염수을 경구투여 하였다. 경구투여 30분 후에 비치사량의 1.2mg/kg KCN을 미정맥주사하고 정향반사를 소실한 후부터 정향반사를 회복할 때 까지의 시간을 측정하여 KCN유발 수면시간으로 하였다.Ten ICR mice were used as a group 1, and Chinese medicine was orally administered at low and high concentrations using an oral zonde (Daejong equipment). The control group was orally administered with the same amount of saline used to dissolve the sample solution. Thirty minutes after oral administration, 1.2 mg / kg KCN was injected intravenously, and the time from the loss of the clove to the recovery of the clove was measured to determine KCN-induced sleep time.
a. KCN 유발 수면시간a. KCN-induced sleep time
우선 뇌손상에 대한 스크리닝을 KCN으로 수행하였는데 각 처방의 뇌손상보호효과는 아래와 같았다. KCN(1.2㎎/㎏/20g)에 의해서 유발된 대조군의 수면시간은 66.71±4.84 sec인데 비하여 격하축어탕은 42.5±6.54 sec(34.30%, P<0.01), 혈부축어탕은 48.43±3.38sec(27.41%,P<0.01), 관심이호방은 23.83±3.35sec(64.28%, P<0.001), 도핵승기탕은 39.0±4.23 sec(41.54%, P<0.001), 통규활혈탕은 35.85±3.78 sec(46.26%, P<0.001), 보양환오탕은 25.8±5.17 sec(61.33%,P<0.001), 소속명탕은 41.25±2.58 sec(38.16, P<0.01), 육일순기산은 43.25±3.58 sec(35.57%, P<0.01)로 KCN에 의해서 유발된 수면시간을 유의성있게 감소시켰다.First of all, screening for brain injury was performed by KCN. The sleep time of the control group induced by KCN (1.2mg / kg / 20g) was 66.71 ± 4.84 sec, compared to 42.5 ± 6.54 sec (34.30%, P <0.01) for Gyeok-hak-eotang and 48.43 ± 3.38sec 27.41%, P <0.01), interested room is 23.83 ± 3.35sec (64.28%, P <0.001), Dokukseunggi-tang is 39.0 ± 4.23 sec (41.54%, P <0.001), and 35.85 ± 3.78sec (46.26%, P <0.001), Boyanghwanotang was 25.8 ± 5.17 sec (61.33%, P <0.001), belonging to Myeongtang 41.25 ± 2.58 sec (38.16, P <0.01), and 6 days net acid was 43.25 ± 3.58 sec (35.57 %, P <0.01) significantly reduced sleep time induced by KCN.
[표 11] KCN에 의해서 유발된 수면시간Table 11 Sleep Times Induced by KCN
상기 표에서 HBSS는 Hanks' Balanced Salt Solution이다.HBSS in the table is Hanks' Balanced Salt Solution.
또, 뇌손상에 대한 스크리닝을 KCN으로 수행하였는데 각 처방의 뇌손상보호효과는 아래와 같았다. KCN(1.2㎎/㎏/20g)에 의해 유발된 수면시간은 58.12±6.72sec에 비해서 가미혈부축어탕 헥산층 48.03±3.23 sec(17.3 %) 가미혈부축어탕 에테르층은 42.53±5.56 sec(26.8%), 혈부축어탕 EA층은 37.03±7.42 sec(36.2%), 혈부축어탕 부탄올층 27.32±4.84sec(52.9%), 관심이호방 42.38±3.42sec(27.1%), 관심이호방 헥산 층은 42.23±5.25 sec(27.3%), 관심이호방 에테르층은 51.43±5.56 sec(11.5%) 관심이호방 EA층은 53.21±6.24 sec(8%), 관심이호방 부탄올층 36.42±5.26sec(37.3%), KCN에 의해서 유발된 수면시간을 감소시켰다.In addition, screening for brain injury was performed by KCN, the brain damage protection effect of each prescription was as follows. Sleeping time induced by KCN (1.2mg / kg / 20g) was 48.03 ± 3.23 sec (17.3%) in the Kami-Buibu-chaetang hexane layer compared to 58.12 ± 6.72sec. ), The blood layer fish sauce EA layer is 37.03 ± 7.42 sec (36.2%), the blood layer fish sauce butanol layer 27.32 ± 4.84sec (52.9%), the room of interest 42.38 ± 3.42sec (27.1%), the room layer of hexane of interest 42.23 ± 5.25 sec (27.3%), interest ether layer 51.43 ± 5.56 sec (11.5%) interest EA layer 53.21 ± 6.24 sec (8%), interest butanol layer 36.42 ± 5.26sec (37.3%) In addition, sleep time induced by KCN was reduced.
[표 12] 각처방의 KCN에 의해서 유발된 수면시간Table 12: Sleep Times Induced by KCN in Various Prescriptions
상기표에서 대조군은 KCN(1.2㎎/㎏/20g)을 처리한 것이고, KHCT: 가미혈부축어탕 , KHCT. 헥산: 가미혈부축어탕 헥산층, KHCT. 에테르: 가미혈부축어탕 에테르층, KHCT. EA; 가미혈부축어탕 EA층, KHCT. 부탄올: 가미혈부축어탕 부탄올층, KGSIHB:가미관심이호방 , KGSIHB. 헥산: 가미관심이호방 헥산층, KGSIHB. 에테르; 가미관심이호방 에테르층, KGSIHB. EA; 가미관심이호방 EA층, KGSIHB. 부탄올; 가미관심이호방 부탄올층을 의미한다.In the table, the control group was treated with KCN (1.2 mg / kg / 20 g), and KHCT: Kami-Blood Bok-eotang, KHCT. Hexane: Kami-Bubu-echijangtang hexane layer, KHCT. Ether: Kami-Bubu-cha-e-tang, KHCT. EA; Kami Blood Bubbly Fish Soup EA, KHCT. Butanol: Kami-Bibu-Chameotang-Butanol layer, KGSIHB: Kami-Choibangbang, KGSIHB. Hexane: Kamishibangbang hexane layer, KGSIHB. ether; Flavor interest ether layer, KGSIHB. EA; Kami Interest Room EA floor, KGSIHB. Butanol; Kami attention means the butanol layer in the room.
실시예 3: KCN유발 생존율 측정Example 3: KCN-induced survival rate measurement
ICR계 생쥐 10마리를 1군으로 하여 한약을 저농도와 고농도로 대종기기(oral zonde)를 이용하여 경구투여 하였으며 대조군에는 검액을 녹일 때 사용한 정상 식염수를 동량 경구투여 하였다. 경구투여 30분 후에 치사량의 3.0mg/kg KCN을 미정맥주사하고 실험동물의 생존율을 측정하였다.Ten ICR mice were used as a group 1, and Chinese medicine was orally administered at low and high concentrations using an oral zonde, and the control group was orally administered with normal saline used to dissolve the sample solution. Thirty minutes after oral administration, a lethal dose of 3.0 mg / kg KCN was injected intravenously and the survival rate of the test animals was measured.
치사량의 KCN(3.0㎎/㎏/20g i.v.)에 의해 유발시킨 마우스의 치사율은 대조군이 100% 의 치사율을 나타낸다. 대조군에 비해 KHCT의 헥산, 부탄올 fractio에서는 상대적으로 KGSIHB fractio에 비해 현저히 생존율의 증가효과를 나타내었다The mortality rate of mice caused by lethal dose of KCN (3.0 mg / kg / 20 g i.v.) indicates a mortality rate of 100% in the control group. Compared to the control group, the hexane and butanol fractio of KHCT showed a significantly increased survival rate compared to the KGSIHB fractio.
[표 13] KHCT 및 KGSIHB 투여 후 KCN에 의해 유발된 마우스의 생존 수TABLE 13 Survival Number of Mice Induced by KCN After KHCT and KGSIHB Administration
상기표에서 대조군은 KCN(3.0㎎/㎏/20g), KHCT: 가미혈부축어탕 , KHCT. 헥산: 가미혈부축어탕 헥산층, KHCT. 에테르: 가미혈부축어탕 에테르층, KHCT. EA; 가미혈부축어탕 EA층, KHCT. 부탄올: 가미혈부축어탕 부탄올층, KGSIHB:가미관심이호방 , KGSIHB. 헥산: 가미관심이호방 헥산층, KGSIHB. 에테르; 가미관심이호방 에테르층, KGSIHB. EA; 가미관심이호방 EA층, KGSIHB. 부탄올; 가미관심이호방 부탄올층을 처리한 것이다.In the table, the control group was KCN (3.0 mg / kg / 20 g), KHCT: Kami-Bebu-echukeotang, KHCT. Hexane: Kami-Bubu-echijangtang hexane layer, KHCT. Ether: Kami-Bubu-cha-e-tang, KHCT. EA; Kami Blood Bubbly Fish Soup EA, KHCT. Butanol: Kami-Bibu-Chameotang-Butanol layer, KGSIHB: Kami-Choibangbang, KGSIHB. Hexane: Kamishibangbang hexane layer, KGSIHB. ether; Flavor interest ether layer, KGSIHB. EA; Kami Interest Room EA floor, KGSIHB. Butanol; The taste is treated by the protective butanol layer.
실시예 4: PC12 뇌세포 배양 및 세포독성 연구Example 4: PC12 Brain Cell Culture and Cytotoxicity Study
a. PC12세포 배양a. PC12 Cell Culture
PC12 cell은 rat의 phechromocytoma에서 유래된 뇌세포로 RPMI1640에 5% FCS, 열에 가하여 불활성한 10% horse serum혈청10%과 50ng NGF(Nerve growthfactor)를 가하고 collagen 코팅된 dish에 의해 분화유도하여 실험에 사용하였다.PC12 cells are brain cells derived from rat phechromocytoma. 5% FCS was added to RPMI1640, 10% horse serum serum and 50 ng NGF (Nerve growth factor) inactivated by heat, followed by differentiation by collagen coated dish. It was.
b. 허혈성 뇌세포 제작b. Ischemic Brain Cell Production
배양된 세포를 hypoxic condition(N295% + O25%)하에서 6시간 이상 배양하여 허혈성 뇌세포를 유도하였다.Cultured cells were cultured for 6 hours or more under hypoxic conditions (N 2 95% + O 2 5%) to induce ischemic brain cells.
c. LDH(lactic dehydrogenase)측정c. Lactic Dehydrogenase (LDH) Measurement
Hypoxia 유도후 24시간 이후에 세포손상에 의해 배지로 유리되는 LDH의 활성을 측정하였다. LDH는 lactate, NAD와 반응하여 Pyruvate와 NADH가 생성될 때 생성되는 NADH양의 변화 LDH유출정도를 측정하였다.24 hours after induction of hypoxia, the activity of LDH released into the medium by cell damage was measured. LDH was measured to change the amount of NADH produced when Pyruvate and NADH were reacted with lactate and NAD.
d. 단백질 정량d. Protein Quantitation
Lowry등의 방법을 이용하여 측정하였다.It measured using the method of Lowry et al.
[표 14] MCA 폐색 후 해마의 신경세포 수Table 14 Number of Neurons in Hippocampus After MCA Occlusion
PC12 세포는 β-아밀로이드 단백질 25-35(50μM)에 의해서 생존율이 42.95%로 감소가 되는데 비해서 샘플처리군도은 커다란 보호효과를 보지는 않았지만, KHCT: 에테르, 부탄올층과 KGSIHG: EA, 부탄올층에서는 38.79%, 38.74% 39.8%40.19%로 보호작용을 나타내었다The survival rate of PC12 cells was reduced to 42.95% by β-amyloid protein 25-35 (50μM), while the sample treatment group did not show a significant protective effect. , 38.74% 39.8% 40.19%
[표 15] β-아밀로이드 단백질에 의해서 유도된 PC12 세포의 세포보호효과TABLE 15 Cytoprotective effect of PC12 cells induced by β-amyloid protein
상기표에서 대조군은 Aβ-아밀로이드 단백질(25-35), KHCT: 가미혈부축어탕 , KHCT. 헥산: 가미혈부축어탕 헥산층, KHCT. 에테르: 가미혈부축어탕 에테르층, KHCT. EA; 가미혈부축어탕 EA층, KHCT. 부탄올: 가미혈부축어탕 부탄올층, KGSIHB:가미관심이호방 , KGSIHB. 헥산: 가미관심이호방 헥산층, KGSIHB. 에테르; 가미관심이호방 에테르층, KGSIHB. EA; 가미관심이호방 EA층, KGSIHB. 부탄올; 가미관심이호방 부탄올층을 나타낸다.In the table, the control group was Aβ-amyloid protein (25-35), KHCT: Kami-Byeolbucchieotang, KHCT. Hexane: Kami-Bubu-echijangtang hexane layer, KHCT. Ether: Kami-Bubu-cha-e-tang, KHCT. EA; Kami Blood Bubbly Fish Soup EA, KHCT. Butanol: Kami-Bibu-Chameotang-Butanol layer, KGSIHB: Kami-Choibangbang, KGSIHB. Hexane: Kamishibangbang hexane layer, KGSIHB. ether; Flavor interest ether layer, KGSIHB. EA; Kami Interest Room EA floor, KGSIHB. Butanol; The taste interest indicates the protective butanol layer.
B103세포는 β-amyloid protein 25-35(50μM)에 의해서 생존율이 37.77%로감소가 되는데 비해서 sample 처리군에서는 보호효과가 거의 보이지 않았다The survival rate of B103 cells was reduced to 37.77% by β-amyloid protein 25-35 (50μM).
[표 16] β-아밀로이드 단백질에 의해서 유도된 B103 세포의 세포보호효과Table 16. Cytoprotective effect of B103 cells induced by β-amyloid protein
상기표에서 대조군은 Aβ-아밀로이드 단백질(25-35)을 KHCT: 가미혈부축어탕, KHCT. 헥산: 가미혈부축어탕 헥산, KHCT. 에테르: 가미혈부축어탕 에테르, KHCT. EA; 가미혈부축어탕 EA, KHCT. 부탄올: 가미혈부축어탕 부탄올, KGSIHB:가미관심이호방 , KGSIHB. 헥산: 가미관심이호방 헥산, KGSIHB. 에테르; 가미관심이호방 Ethe, KGSIHB. EA; 가미관심이호방 EA층, KGSIHB. 부탄올; 가미관심이호방 부탄올을 의미한다.In the table, the control group was Aβ-amyloid protein (25-35) KHCT: Kami-Byeolbucchieotang, KHCT. Hexane: Kami-Bubu-Chameotang-Han-hexane, KHCT. Ether: Kami-Bubu-e-Chan-Tang Ether, KHCT. EA; Kami Blood Bukkake Fish EA, KHCT. Butanol: Kami-Bibu-Chameotang Butanol; Hexane: Kamikaze hexane, KGSIHB. ether; Kamchatzia Ethe, KGSIHB. EA; Kami Interest Room EA floor, KGSIHB. Butanol; Kami attention means a protective butanol.
세포 독성의 지표가 되는 β-아밀로이드 단백질(50μM)에 의해서 방출되는PC-12 세포의 LDH 양에 있어서 KHCT: 에테르, 부탄올 KGSIHB: EA, 부탄올에서 12.54% 18.35% 12.32% 17.82%로 LDH 방출을 감소시켰으며, 다른 분획에서는 LDH 방출에 커다란 영향을 미치지 않았다.Reduction of LDH release by 12.54% 18.35% 12.32% 17.82% in KHCT: ether, butanol KGSIHB: EA, butanol in LDH amount of PC-12 cells released by β-amyloid protein (50 μM), which is an indicator of cytotoxicity The other fractions had no significant effect on LDH release.
[표 17] PC-12 세포의 LDH 양Table 17 LDH Amount of PC-12 Cells
상기표에서 대조군은 Aβ-amyloid protein(25-35)이고, KHCT: 가미혈부축어탕 , KHCT. 헥산: 가미혈부축어탕 헥산층, KHCT. 에테르: 가미혈부축어탕 에테르층, KHCT. EA; 가미혈부축어탕 EA층, KHCT. 부탄올: 가미혈부축어탕 부탄올층, KGSIHB:가미관심이호방 , KGSIHB. 헥산: 가미관심이호방 헥산층, KGSIHB. 에테르; 가미관심이호방 에테르층, KGSIHB. EA; 가미관심이호방 EA층, KGSIHB. 부탄올; 가미관심이호방 부탄올층을 나타낸다.In the table, the control group was Aβ-amyloid protein (25-35), and KHCT: Kami-Bubu-Ae-tang, KHCT. Hexane: Kami-Bubu-echijangtang hexane layer, KHCT. Ether: Kami-Bubu-cha-e-tang, KHCT. EA; Kami Blood Bubbly Fish Soup EA, KHCT. Butanol: Kami-Bibu-Chameotang-Butanol layer, KGSIHB: Kami-Choibangbang, KGSIHB. Hexane: Kamishibangbang hexane layer, KGSIHB. ether; Flavor interest ether layer, KGSIHB. EA; Kami Interest Room EA floor, KGSIHB. Butanol; The taste interest indicates the protective butanol layer.
실시예 5: Protein kinase C 저해실험Example 5: Protein kinase C inhibition test
Protein kinase C의 활성저해능 측정은 Hwang등의 방법에 따랐으며 생약의 활성저해능은 PKC 효소반응액에 생약시료를 첨가하고 측정한 활성과 시료를 첨가하지 않은 대조군의 활성을 비교하여 산출하였다. PKC 효소 반응액은 Tris-HCL 완충액 30mM (pH 7.5), 6mM Mg acetate, 0.12mM[γ-32P]ATP, cpm/μ), 0.25mM EGTA, 0.4mM CaCl2, 0.04% Nonidet P=40, 100μg/㎖ phosphatidyl serine, 20μg/㎖ diolein, 1mg/㎖ histon IIIS의 조성으로 조제하였으며, PKC 효소액을 첨가하여 PKC의 최종단백질 농도가 1.75mg/㎖로 되게 하였다. 효소반응액 25㎕와 생약시료 5㎕를 혼합하여 30℃에서 15분간 반응시킨 후, 20% TCA와 0.2M ATP용액 20μ로 적셔 놓은 cellulose -Pi paper strip에 10㎕의 반응액을 점적시켜 반응을 중지시키고 건조시킨 다음, 5% TCA와 0.2M KCl용액을 전개용매로 하여 TLC를 실시한 후 출발점의 방사능을 liquid scintillation counter로 측정하였다. PKC이외의 protein kinase에 의하여 일어나는 histone의 인산화는 효소반응액에 diolein과 phosphatidyl serine을 첨가하지 않고 반응시킨 후의 cpm으로 측정하였다. 생약시료의 PKC 활성저해도는 cpm을 D+, diolein과 phosphatidyl serine을 첨가하지 않고 용매만을 첨가한 반응액의 D-, 생약시료를 첨가한 효소반응액의 cpm을 시료 cpm으로 하여 다음 식으로 산출하였다.The activity inhibition of protein kinase C was determined by Hwang et al., And the activity inhibition of the herbal medicine was calculated by comparing the activity of the control sample without the addition of the herbal sample to the PKC enzyme reaction solution. PKC enzyme reactions were performed in Tris-HCL buffer 30 mM (pH 7.5), 6 mM Mg acetate, 0.12 mM [γ- 32 P] ATP, cpm / μ), 0.25 mM EGTA, 0.4 mM CaCl 2 , 0.04% Nonidet P = 40, 100 μg / ml phosphatidyl serine, 20 μg / ml diolein, and 1 mg / ml histon IIIS were prepared. The final protein concentration of PKC was 1.75 mg / ml by the addition of PKC enzyme solution. After 25 µl of enzyme reaction solution and 5 µl of crude drug sample were mixed and reacted at 30 ° C. for 15 minutes, 10 µl of the reaction solution was added to the cellulose-Pi paper strip soaked with 20 μl of 20% TCA and 0.2M ATP solution. After stopping and drying, TLC was performed using 5% TCA and 0.2M KCl solution as a developing solvent, and radioactivity at the starting point was measured by a liquid scintillation counter. Phosphorylation of histone caused by protein kinase other than PKC was measured by cpm after reaction without addition of diolein and phosphatidyl serine to enzyme reaction solution. The PKC activity inferiority of the crude herb samples was calculated by the following equation: cpm was D + , D - of the reaction solution without diolein and phosphatidyl serine, and cpm of the enzyme reaction solution with the crude herb sample. It was.
(D+-시료cpm)×100/(D+-D-)=저해률(D + - sample cpm) × 100 / (D + -D -) = inhibition rate
MCA 폐색 후 좌반구와 우반구의 뇌를 절단하여 단백질 정량을 시행하였다. Table 5에서 보는 바와 좌측반구가 우측반구에 비하여 단백질의 양이 줄어들음으로 이는 뇌손상 부위와 관련이 있는 것으로 보인다.After MCA occlusion, the brains of the left and right hemispheres were cut and protein quantified. As shown in Table 5, the left hemisphere decreases the amount of protein compared to the right hemisphere, which seems to be related to the area of brain injury.
[표 18] MCA 폐색 후 좌반구와 우반구의 뇌를 절단하여 단백질 정량Table 18 Protein quantification by cleavage of the left and right hemispheres after MCA occlusion
상기표에서 대조군은 처리하지 않은 군이고, KHCT. 부탄올: 가미혈부축어탕 부탄올층, KGSIHB. 부탄올; 가미관심이호방 부탄올층을 나타낸다.The control group in the above table is the untreated group, KHCT. Butanol: Kami-Bibu-Chameotang Butanol layer, KGSIHB. Butanol; The taste interest indicates the protective butanol layer.
감소된 PKC의 활성은 KHCT 부탄올에 의해서 우측 반구에서 증가되는 경향을 보이며 (P<0.08) 좌측 반구는 PKC의 활성이 (P<0.05)증가하였다 (P<0.05). 그러나 KGSIHB. 부탄올 투여시는 PKC 활성에 영향이 없었다Reduced PKC activity tended to be increased in the right hemisphere by KHCT butanol (P <0.08) and the left hemisphere increased (P <0.05) PKC activity (P <0.05). But KGSIHB. Butanol administration did not affect PKC activity
[표 19] 뇌반구에서 PKC 활성(unit:pmole/min)TABLE 19 PKC activity in brain hemispheres (unit: pmole / min)
상기표에서 대조군은 처리하지 않은 군을 나타내고, KHCT. 부탄올: 가미혈부축어탕 부탄올층, KGSIHB. 헥산; 가미관심이호방 헥산층을 나타낸다.The control group in the above table represents the untreated group, KHCT. Butanol: Kami-Bibu-Chameotang Butanol layer, KGSIHB. Hexane; The taste interest represents the hexane layer of the protective layer.
실시예 6: 허혈뇌세포의 생존력 측정Example 6 Measurement of Viability of Ischemic Brain Cells
가미혈부축어탕 EA층이 허혈뇌세포의 생존력에 미치는 영향을 알아보기위해확립된 성상세포(astrocyte) 배양과in vitro허혈모방환경을 이용하였다. 성상세포에 4시간동안 허혈을 시키는 동안 0, 0.1, 0.2mg/ml 농도로 가미혈부축어탕의 EA층과 헥산층을 가한후 즉시(0시간), 2시간, 24시간후에 세포독성을 측정하였다. 세포독성 측정은 Flick과 Gifford의 방법(Flick and Gifford, 1984)을 이용하여 측정하였다. 성상세포를 96-웰 마이크로타이터 플레이트에 웰당 3∼4 × 104세포 정도로 시딩(seeding)하고, 37℃, 5% CO2조건하에서 24시간동안 배양하였다. 96-웰 플레이트의 상층배지를 버린다음 이미 멸균된 테스트 샘플과 2㎍/㎖의 액티노마이신 D를 포함하는 성장배지를 1:1의 비율로 섞어 웰당 200㎕ 씩 넣어준 후, 37℃, 5% CO2에서 18시간동안 배양하였다. 배양후 플레이트의 배지를 털어 버리고 크리스탈 바이오렛 염색 용액(0.1% crystal violet, 10% calcium carbonate saturated formalin, 11.1% ethanol)에 15분간 담궈 염색하였다. 염색시킨 96-웰 플레이트를 탭 워터로 잘 세척한 후 털어서 말리고 마이크로플레이트 리더를 사용하여 540nm에서 흡광도를 측정하였다. 테스트 샘플의 세포독성은 다음과 같이 결정하였다.In order to investigate the effect of Gami-Bubu-Ae-Chan-Ae EA on the viability of ischemic brain cells, we used established astrocyte culture and in vitro ischemic mimic environment. Cytotoxicity was measured immediately (0 hours), 2 hours, and 24 hours after adding EA layer and hexane layer of Kami-Bebujangeotang at concentrations of 0, 0.1 and 0.2mg / ml during ischemia for 4 hours. . Cytotoxicity measurements were determined using the method of Flick and Gifford (Flick and Gifford, 1984). Astrocytes were seeded in 96-well microtiter plates at 3-4 × 10 4 cells per well and incubated at 37 ° C., 5% CO 2 conditions for 24 hours. Discard the upper medium of the 96-well plate, mix the already sterilized test sample with the growth medium containing 2 ㎍ / ㎖ actinomycin D in a ratio of 1: 1 and put 200 ㎕ per well, 37 ℃, 5 Incubated for 18 hours in% CO 2 . After incubation, the plate medium was shaken off and stained for 15 minutes in a crystal biot stain solution (0.1% crystal violet, 10% calcium carbonate saturated formalin, 11.1% ethanol). The stained 96-well plates were washed well with tap water, then shaken and dried and the absorbance was measured at 540 nm using a microplate reader. The cytotoxicity of the test sample was determined as follows.
% 세포독성 =× 100 (%)% Cytotoxicity = × 100 (%)
여기서 대조군은 테스트 샘플 대신 성장배지만을 넣어준 웰의 540nm에서의 흡광도로 정하였다.Here, the control group was determined as the absorbance at 540 nm of the wells in which only the growth medium was added instead of the test sample.
생체 뇌 허혈시 일어나는 가장 큰 변화는 산소와 포도당의 공급 중단이므로 우선 뇌세포 일차배양체계를 확립하였다. 태어난 지 1-2일 째 되는 마우스 새끼의뇌전두피질로 부터 성상세포를 일차 배양하였다. Macarthy 등의 뇌세포 배양법을 주로 하되 약간 변형하여 사용하였다. 갓 태어난 마우스 대뇌를 적출한 후, 신속히 뇌막 및 혈관 등을 해부현미경(Olympus, Japen) 하에서 제거하고 전두피질 부위를 적출 하였다. 주사기와 파스테로 피펫을 이용하여 가볍게 trituratoin한 후 100mm 디쉬(Corning ,USA)에 대뇌 반구당 배지[(DMEM; GibcoBRL, USA), 26.2 mM sodium bicarbonate, 21 mM glucose, 2 mM glutamin, 0.7 mM HEPES, 200 mg penicillin, 19000 unit streptomycine G, 5% fetal bovine serum(FBS;GibcoBRL, USA)] 10 ml에 넣고 37℃에서 2주간 5% CO2-95% 에어 인큐베이터(Forma, USA)에서 배양하였다. 배양 과정에서 1주일에 2∼3회 새로운 배지로 교환하여 주었으며, 배양 일주일 째부터는 일주일에 2회 가볍게 흔들어 주어 미세신경교(microglia)를 떼어냄으로써 순수한 성상세포만이 남도록 하였다. 성상세포가 성공적으로 배양되었는지 확인하기 위하여 성상세포 특이 마카인 anti glial fibrillary acidic protein (GFAP) 항체로 염색하였다. 형광 현미경 관찰 결과는 그림 1에 나타난 바와 같다.The biggest change in the brain ischemia is to stop the supply of oxygen and glucose, so we established the brain cell primary culture system. Astrocytes were first cultured from the prefrontal cortex of mouse pups 1-2 days old. Macarthy's brain cell culture method was mainly used, but slightly modified. After removing the newborn mouse cerebrum, the meninges and blood vessels were quickly removed under an anatomical microscope (Olympus, Japen) and the frontal cortex was extracted. Lightly trituratoin using a syringe and Pastero pipette followed by cerebral hemispheres medium (DMEM; GibcoBRL, USA), 26.2 mM sodium bicarbonate, 21 mM glucose, 2 mM glutamin, 0.7 mM HEPES, in 100 mm dish (Corning, USA). 200 mg penicillin, 19000 unit streptomycine G, 5% fetal bovine serum (FBS; GibcoBRL, USA)] was added to 10 ml and incubated at 37 ° C. for 2 weeks in a 5% CO 2 -95% air incubator (Forma, USA). The culture was exchanged with fresh medium 2-3 times a week, and gently shaken twice a week from the first week of culture to remove microglia so that only pure astrocytes remained. In order to confirm that the stellate cells were successfully cultured, they were stained with an anti-glial fibrillary acidic protein (GFAP) antibody. The results of fluorescence microscopy are shown in Figure 1.
배양된 성상세포에 산소및 포도당을 결핍시켜 세포 배양계(in vitro)에서 허혈을 모방하고자 하였다. 이를 위하여 모든 조작을 저산소증 챔버(Forma, USA) 내에서 무포도당 배지(glucose free media)를 이용하였고 배지내의 잔존 산소를 제거하기 위하여 모든 실험 전에 가스를 제거한 무포도당 배지로 3회 세척한 후 실험하였다. 최적의 허혈 용량은 S35-Methionine을 이용한 메타볼릭 레이블링을 이용하여단백질 합성률을 50%로 감소시키는 시간으로 결정하였다. 4 시간 전·후 동안 산소및 포도당을 결핍시켜 성상세포를 배양하였을 때, 단백질의 합성률은 정상 상태와 비교시 약 50% 정도 감소되었음을 알 수 있었다. 4 시간 이후부터는 성상세포의 형태학적 변화가 나타나기 시작하였으며 8시간 이후에는 상당수의 세포사가 관찰되었다.Cultured astrocytes lack oxygen and glucose to mimic ischemia in cell culture systems ( in vitro ). For this purpose, all manipulations were performed using glucose-free media in hypoxia chamber (Forma, USA) and washed three times with degassed, glucose-free media before all experiments to remove residual oxygen in the media. . The optimal ischemic dose was determined by the time to reduce protein synthesis rate to 50% using metabolic labeling with S 35 -Methionine. When the astrocytes were cultured by oxygen and glucose deficiency for 4 hours before and after 4 hours, the synthesis rate of protein was reduced by about 50% compared to the normal state. After 4 hours, morphological changes of astrocytes began to appear, and after 8 hours, significant cell death was observed.
가미혈부축어탕 EA층이 허혈뇌세포의 생존력에 미치는 영향을 알아보기위해 확립된 astrocyte 배양과in vitro허혈모방환경을 이용하였다. Astrocyte에 4시간동안 허혈을 시키는 동안 0, 0.1, 0.2mg/ml 농도로 가미혈부축어탕의 EA층과 헥산층을 가한후 즉시(0시간), 2시간, 24시간후에 Flick과 Gifford의 방법(Flick and Gifford, 1984)을 이용하여 세포독성을 측정하였다. 먼저 가미혈부축어탕 EA층의 자체 세포독성을 알아보기 위하여, 허혈을 시키지 않은 상태에서 가미혈부축어탕 EA층의 농도를 달리하여 세포독성활성을 측정하였는데, 그림 3에서 보는 바와 같이 가미혈부축어탕(EA층)의 농도를 증가하여도 세포독성은 대조군과 비교하여 증가하지 않았다. 따라서 가미혈부축어탕의 자체독성은 없는 것으로 생각된다. 그러나 헥산에서 추출한 가미혈부축어탕은 자체의 독성이 심하였다. 따라서 모든 실험은 EA층에서 분리한 가미혈부축어탕을 사용하였다. 4시간 허혈을 하는 동안 가미혈부축어탕을 처리하고 난 후 세포독성을 조사한 결과, 가미혈부축어탕의 농도가 증가할수록 허혈에 의한 세포독성이 점차 감소하였다. 이것으로 보아 가미혈부축어탕이 뇌허혈독성으로부터 세포를 보호하는 것으로 사료된다.The established astrocyte culture and in vitro ischemic mimic environment were used to investigate the effect of the EA layer of Kami-Bubu-Ache-tang on the viability of ischemic brain cells. During 4 hours of ischemia treatment, Flick and Gifford methods were used immediately (0 hours), 2 hours, and 24 hours after adding EA layer and hexane layer of Kamiblooded fish tang at 0, 0.1, 0.2mg / ml concentration. Flick and Gifford, 1984) were used to measure cytotoxicity. First, in order to examine the cytotoxicity of the EA layer of Kami-Blood Buche-tang, we measured the cytotoxic activity by varying the concentration of Kami-Blood Bu-Eup-tang EA layer without ischemia, as shown in Figure 3. Increasing the concentration of (EA layer) did not increase cytotoxicity compared to the control. Therefore, it is considered that there is no self-toxicity of Gami-Blood Fish Cake. However, Kami-Bubu-chae-tang extracted from hexane was highly toxic. Therefore, all experiments used Kami-Blood Buche-tang, separated from EA layer. Cytotoxicity was investigated after treatment with Kami-Bubu-Ae-Tang for 4 hours of ischemia. This suggests that Gami-Bubu-Ae-Chan-Tang protects cells from cerebral ischemic toxicity.
실시예 7: Mitogen activated protein kinase (MAP kinase) 활성측정Example 7: Mitogen activated protein kinase (MAP kinase) activity measurement
가미혈부축어탕의 뇌허혈독성에 대한 세포보호 효과가 MAP 키나제 활성 조절을 통해 나타나는지 알아보기위해 활성화된 형태의 MAP 키나제에 대한 항체를 이용하여 MAP 키나제 활성을 조사하였다. 성상세포에 4시간동안 허혈을 시키는 동안 0.1mg/ml 농도로 가미혈부축어탕가한후 즉시(0시간), 0.5시간후에 세포를 얼음 위에 올리고, 4℃의 PBS로 3회 세척하였다. 100 mm 디쉬 당 1ml의 SDS-젤 샘플버퍼[(0.1% bromophenol blue, 20% glycerol, 4% sodium dodecil sulfate(SDS), 10% 2-mercapto ethanol)]를 넣어 세포를 녹인 후 5분 동안 끓여주었다. 수거된 세포의 총 단백질은 Lowry 법(Lowry, 1951)에 따라 정량 하였으며 정량 후 실험 전까지 -20℃에 보관하였다. 동량의 단백질(40㎍)을 Laemmli 등(Laemmliet. al., 1970)의 방법을 이용하여 10% 폴리아크릴아마이드 젤에 전기영동 하였다. 전기영동시 전류는 스택킹 젤에서 50mA, 분리 젤에서 70mA로 유지시켰다. 전기영동 후 엘렉트로트랜스퍼 키트(Hoeffer, USA)를 사용하여 전류를 400 mA로 4시간동안 유지시켜 nitrocellulose(NC) 막(BioRad, USA)에 옮겼다. 매 실험 후 남은 젤은 coomasie brilliant blue R250으로 염색하여 젤 내의 단백질이 완전히 막으로 트랜스퍼되었는지 확인하였다.MAP kinase activity was investigated by using antibodies against the activated form of MAP kinase to determine whether the cytoprotective effect of Gami-Buchukeo-tang on cerebral ischemic toxicity was shown through the regulation of MAP kinase activity. While the astrocytes were ischemed for 4 hours, the scavenger was added at 0.1 mg / ml concentration immediately (0 hours), and 0.5 hours later, the cells were placed on ice and washed three times with 4 ° C. PBS. 1 ml of SDS-gel sample buffer (0.1% bromophenol blue, 20% glycerol, 4% sodium dodecil sulfate (SDS), 10% 2-mercapto ethanol) per 100 mm dish was dissolved and boiled for 5 minutes. . Total protein of the collected cells was quantified according to Lowry method (Lowry, 1951) and stored at -20 ℃ until the experiment after quantification. The same amount of protein (40 μg) was electrophoresed on 10% polyacrylamide gel using the method of Laemmli et al . (Laemmli et. Al ., 1970). During electrophoresis, the current was maintained at 50 mA in the stacking gel and 70 mA in the separation gel. After electrophoresis, the electrotransfer kit (Hoeffer, USA) was used to transfer current to nitrocellulose (NC) membrane (BioRad, USA), maintaining the current at 400 mA for 4 hours. After each experiment, the remaining gel was stained with coomasie brilliant blue R250 to confirm that the protein in the gel was completely transferred to the membrane.
NC 막은 항체의 비특이적인 결합을 막기 위하여 PBS로 가볍게 세척 후 5% 탈지분유로 상온에서 2 시간 이상 블럭킹하였다. 블럭킹이 끝난 막은 MAP 키나제에 대한 항체[ERK1; 1:1000, SantaCruz, Swiss: phospho ERK(pERK, 활성화된 형태); 1:1000, SantaCruz, Swiss), (p38; 1:2000, NEB, Canada: phospho p38(pp38, 활성화된 형태); 1;2000, NEB, Canada), (JNK1; 1:1000, SantaCruz, Swiss: phosphoJNK(pJNK, 활성화된 형태); 1:1000, SantaCruz, Swiss)] 를 상온에서 각각 5 시간 이상 반응시키고 0.1% tween 20이 첨가된 PBS로 20분씩 3회 세척하였다. 호스 래디쉬 퍼옥시데이즈(Horse radish peroxidase;HRP)가 부착된 2차 항체를 NC 막에 1 시간 동안 반응시킨 후 0.1% tween 20이 첨가된 PBS로 20분간 3회 세척하고 나서 enhanced chemiluminece(ECL) 시스템(Amersham, USA)을 사용하여 분석하였다.The NC membrane was lightly washed with PBS and blocked at room temperature for 2 hours or more with 5% skim milk powder to prevent nonspecific binding of the antibody. Blocking membranes are antibodies against MAP kinase [ERK1; 1: 1000, Santa Cruz, Swiss: phospho ERK (pERK, activated form); 1: 1000, SantaCruz, Swiss), (p38; 1: 2000, NEB, Canada: phospho p38 (pp38, activated form); 1; 2000, NEB, Canada), (JNK1; 1: 1000, SantaCruz, Swiss: phosphoJNK (pJNK, activated form); 1: 1000, SantaCruz, Swiss)] were reacted at room temperature for at least 5 hours and washed three times with PBS added with 0.1% tween 20 for 20 minutes each. After reacting the secondary antibody with Horse radish peroxidase (HRP) to NC membrane for 1 hour, washed 3 times with PBS with 0.1% tween 20 for 20 minutes, and then enhanced chemiluminece (ECL) Analyzes were made using the system (Amersham, USA).
a. Exrtacellular signal - regulated kinase(ERK)에 대한 항체(anti rabbit polyclonal ERK antibody)를 이용하여 ERK 활성을 Western blot으로 확인하였다. 실험 결과 허혈만 처리한 경우와 약제와 허혈을 함께 처리한 경우에 모두 활성화된 형태인 pERK에는 유의할만한 차이가 없는 것으로 나타났다. 불활성형태인 ERK도 변화가 없었다.a. ERK activity was confirmed by Western blot using an anti-rabbit polyclonal ERK antibody against exrtacellular signal-regulated kinase (ERK). The experimental results showed that there was no significant difference in the activated form of pERK when treated only with ischemia and treated with ischemia. There was no change in ERK, an inactive form.
b. p38에 대한 항체(anti mouse monoclonal p38 antibody)를 이용하여 p38의 활성을 Western blot으로 확인하였다. 실험 결과 허혈만 처리한 경우와 약제와 허혈을 함께 처리한 경우에 모두 활성화된 형태인 p38에는 큰 차이가 없는 것으로 나타났다. 불활성형태인 p38도 변화가 없었다.b. p38 activity was confirmed by Western blot using an antibody against p38 (anti mouse monoclonal p38 antibody). The experimental results showed that there was no significant difference between p38, an activated form of ischemia alone and both ischemia and ischemia. Inactive form p38 also did not change.
c. c-jun N-terminal Kinase(JNK)에 대한 항체(anti mouse monoclonal JNK1 antibody)를 이용하여 JNK의 활성을 Western blot으로 확인하였다. 실험 결과 허혈만 처리한 경우에 비해 약제와 허혈을 함께 처리한 경우 활성화된 형태인 pJNK가 감소하는 것으로 나타났다. 불활성형태인 JNK에는 변화가 없었다.c. The activity of JNK was confirmed by Western blot using an antibody against c-jun N-terminal Kinase (JNK) (anti mouse monoclonal JNK1 antibody). Experimental results show that the active form of pJNK decreases when both the drug and ischemia are treated compared to the treatment with ischemia alone. There was no change in the inactive form of JNK.
실시예 8: 허혈에 의한 신생혈관 생성인자의 발현양상Example 8 Expression of Angiogenesis Factor by Ischemia
성상세포에 4시간동안 허혈을 시킨후 즉시(0시간), 30분, 1시간 3시간후 세포를 얼음 위에 올리고, 4℃의 PBS로 3회 세척하였다. 처리한 성상세포로부터의 RNA 분리는 단일단계 구아니디움 아이소씨아나이트(guanidium isothiocyanate) 융해(lysis) 방법를 이용하여 추출하였으며 분광기(Kontron, USA)를 사용하여 정량 하였다. 수거된 총 RNA로부터 1㎍의 RNA, random hexamer, moloney murine leukemia virus(MMLV; Promega, USA)를 섞어 37℃에서 1시간 동안 역전사(Reverse Transcription, RT)를 수행하였다. 역전사된 cDNA에 각종 primer (20 pmole, GenoTech, Korea), dNTP(1.25 mM, Promega, USA), 10X PCR buffer(10 mM Tris, pH 8.3, 50 mM KCl, 1.5 mM MgCl2), AmpliTag DNA polymerase(PerkinElmer, USA)와 함께 5㎕의 RT solution(1㎍ cDNA)을 섞고 PCR을 수행하였다. 사용한 PCR 머신은 미국 PerkinElmer 제품이었다. 실험에 사용된 primer들의 염기서열은 표1에 정리되어있다. HPRT는 내부 대조군으로 사용하였다. RT-PCR 수행 결과, DNA는 1.5% 아가로스 젤에서 전기영동하여 ethidium bromide로 염색한 후 UV illuminator(Spectronics, USA)에서 밴드를 확인하고 폴라로이드 카메라를 사용하여 사진을 찍었다.After 4 hours of ischemia in astrocytes, immediately after (0 hours), 30 minutes, 1 hour and 3 hours, the cells were placed on ice and washed three times with PBS at 4 ° C. RNA isolation from the treated astrocytes was extracted using a single step guanidium isothiocyanate lysis method and quantified using a spectrometer (Kontron, USA). 1 μg of RNA, random hexamer, and moloney murine leukemia virus (MMLV; Promega, USA) were mixed from the total RNA collected and reverse transcription (RT) was performed at 37 ° C. for 1 hour. Various primers (20 pmole, GenoTech, Korea), dNTP (1.25 mM, Promega, USA), 10X PCR buffer (10 mM Tris, pH 8.3, 50 mM KCl, 1.5 mM MgCl 2 ), AmpliTag DNA polymerase PerkinElmer, USA) and 5 μl of RT solution (1 μg cDNA) were mixed and PCR was performed. The PCR machine used was from PerkinElmer, USA. The base sequences of the primers used in the experiment are summarized in Table 1. HPRT was used as an internal control. As a result of RT-PCR, DNA was electrophoresed on 1.5% agarose gel and stained with ethidium bromide. Then, the band was checked by UV illuminator (Spectronics, USA) and photographed using a polaroid camera.
단백질분리는 4항의 실험방법과 동일한 방법을 이용하였고 사용한 항체는 다음과같다. [VEGF; 1:1000, SantaCruz, Swiss: EPO; 1:1000, SantaCruz, Swiss, TGF-β1; 1;1000, SantaCruz, Swiss]Protein separation was performed using the same method as in Experiment 4, and the antibodies used were as follows. [VEGF; 1: 1000, Santa Cruz, Swiss: EPO; 1: 1000, Santa Cruz, Swiss, TGF-β1; 1; 1000, Santa Cruz, Swiss]
[표 20] 신생혈관 유전자에 대한 PCR 쌍의 위치와 서열Table 20 Location and sequence of PCR pairs for neovascular genes
신생혈관생성인자들은 조직의 산소화를 유지시켜 세포의 O2압력을 조절함으로써 조직의 양이 증가한다거나, 혹은 병태생리학적 환경이 형성되면 새로운 혈관을 생성시키는데 중요한 역할을 하는 것으로 알려져 있다. 본 실험에서는 허혈에 의해 Vascular endothelial growth factor (VEGF, Steinet al., 1995), erythropoietin (EPO, Wang and Semenza, 1993), transforming growth factor-β1 (TGF-β1, Brownet al., 1997)의 발현양상을 조사하였다. 성상세포에서 허혈에 의해 VEGF의 유전자와 단백질이 증가하였다. 그러나 EPO와 TGF-β1는 뚜렸한 변화를 보이지 않았다 .Angiogenesis factors are known to play an important role in the production of new blood vessels by increasing the amount of tissue by maintaining the oxygenation of the tissue and regulating the O 2 pressure of the cells, or when the pathophysiological environment is established. In this experiment, ischemia induced vascular endothelial growth factor (VEGF, Stein et al ., 1995), erythropoietin (EPO, Wang and Semenza, 1993), and transforming growth factor-β1 (TGF-β1, Brown et al ., 1997). Expression patterns were investigated. Ischemia in astrocytes increased the genes and proteins of VEGF. However, EPO and TGF-β1 showed no significant change.
실시예 9: 가미혈부축어탕 EA층 세분획의 뇌허혈 손상 보호효과Example 9: Protective effect of cerebral ischemia in the EA layer subdivisions
a. KCN 유발 생존율에 미치는 효과a. Effect on KCN-induced Survival Rate
뇌손상에 대한 스크리닝을 KCN을 이용하여 수행하였으며 가미혈부축어탕의 EA층 세분획Ⅰ,Ⅱ,Ⅲ,Ⅳ을 약재로 하여 뇌손상보호효과를 실험하였다.Screening for brain injury was carried out using KCN, and the brain injury protection effect was examined using EA fraction subdivisions I, II, III, IV of Gami-Byeolchukeo-tang.
결과는 다음의 표와 같으며 KCN(3.0mg/kg)에 유발된 수면시간은 KHCT fr.1의 경우 37.5%의 저해효과를 보였으며, 나머지 KHCT fr.2,3,4는 12.5%의 저해효과를나타내어 상대적으로 KHCT fr.1의 효과가 좋은 것으로 나타났다.The results are shown in the table below. The sleep time induced by KCN (3.0mg / kg) showed 37.5% inhibition of KHCT fr.1, and the remaining KHCT fr.2,3,4 inhibited 12.5%. The effect of KHCT fr.1 was relatively good.
[표 21] KHCT 세분획이 KCN 유발 생존율에 미치는 효과[Table 21] Effect of KHCT subfraction on KCN-induced survival rate
상기표에서 대조군은 KCN(3.0mg/kg)이고, KHCT fr.1, fr.2, fr.3, fr4 : 가미혈부축어탕 세분획 1,2,3,4을 나타낸다.In the table, the control group was KCN (3.0 mg / kg), and KHCT fr.
b. KCN유발 수면시간b. KCN-induced sleep time
뇌손상에 대한 스크리닝을 KCN을 이용하여 수행하였으며 가미혈부축어탕의 EA층 세분획Ⅰ,Ⅱ,Ⅲ,Ⅳ을 약재로 하여 뇌손상보호효과를 실험하였다.Screening for brain injury was carried out using KCN, and the brain injury protection effect was examined using EA fraction subdivisions I, II, III, IV of Gami-Byeolchukeo-tang.
KCN(1.2m/kg)에 의해 유발된 수면시간은 대조군 66.38±4.90sec에 비해 KHCT fr.1 55.38±5.78, KHCT fr.2 65.63±6.63, KHCT fr.3 63.63±4.03, KHCT fr.4 64.13±3.60으로 KHCT fr.1이 KCN유발 수면시간을 감소시켰다.Sleep time induced by KCN (1.2m / kg) was KHCT fr.1 55.38 ± 5.78, KHCT fr.2 65.63 ± 6.63, KHCT fr.3 63.63 ± 4.03, KHCT fr.4 64.13 KHCT fr.1 reduced KCN-induced sleep time by ± 3.60.
[표 22] KHCT 세분획이 KCN유발 수면시간[Table 22] KHCT subdivision for KCN-induced sleep time
상기표에서 대조군은 KCN(3.0mg/kg)이고, KHCT fr.1, fr.2, fr.3, fr4 : 가미혈부축어탕 세분획 1,2,3,4이다.In the table, the control group was KCN (3.0 mg / kg), and KHCT fr.1, fr.2, fr.3, and fr4: Kami-Bubu-chaetang subdivisions 1,2,3,4.
실시예 10: 가미혈부축어탕 EA층의 중대뇌동맥 폐쇄에 따른 허혈면적 및 부종율에 미치는 효과Example 10: Effect on the ischemic area and edema rate of the middle cerebral artery occlusion of the Gami-Blook-Jung-Ae-Chan EA layer
중대뇌동맥 허혈에 미치는 효과가 좋았던 가미혈부축어탕 EA층의 세분획 1,2,3,4를 가지고 실험을 하였다.The experiments were carried out with subfractions 1,2,3,4 of the EA layer of Kami-Blood-Shaped Fish-tang, which had a good effect on the middle cerebral artery ischemia.
가미혈부축어탕 세분획 1,2,3,4중 세분획 1이 상대적으로 다른 분획에 비해 효과가 좋았다.The subfraction 1 of the subdivided fractions 1,2,3, and 4 of Kami-Bubu-chae-tang was more effective than the other fractions.
[표 23] 가미혈부축어탕 EA층의 중대뇌동맥 폐쇄에 따른 허혈면적 및 부종율에 미치는 효과[Table 23] Effect of ischemia area and edema rate of middle cerebral artery occlusion
상기표에서 C-1∼6는 대조군의 뇌조각번호를 나타내고, KHCT fr.1∼4 : KHCT 분획1∼4 처리군의 뇌조각번호를 나타내고, ND는 검출안된 것을 나타낸다.In the above table, C-1 to 6 represent brain fragment numbers of the control group, KHCT fr.
실시예 11: 가미혈부축어탕 EA층의 중대뇌동맥 폐쇄에 따른 신경학적 결손 정도의 변화에 미치는 효과Example 11 Effect of Neurodegenerative Deficits on Middle Cerebral Artery Occlusion
앞다리의 신경학적 결손정도는 대조군 조작 후의 등급 2.75±0.46, 저산소증 처리후의 등급 2.88±0.35, 재순환 2.75±0.46으로 나타났으며, KHCT fr.1 처리한 군의 경우 조작 후의 등급 2.67±0.52, 저산소증 처리후의 등급 2.67±0.52, 재순환 2.67±0.52으로 나타났으며, KHCT fr.1을 처리한 실험군은 대조군에 비해 호전되는 경향은 보였으나 크게 호전되지는 않았다.The neurological deficits of the forelimbs were grade 2.75 ± 0.46 after control operation, grade 2.88 ± 0.35 after hypoxia treatment, and recirculation 2.75 ± 0.46.For the KHCT fr.1 treated group, grade 2.67 ± 0.52 after hypoxia treatment The grade of 2.67 ± 0.52 and recycling 2.67 ± 0.52 were shown. The experimental group treated with KHCT fr.1 showed a tendency to improve compared with the control group, but not significantly improved.
또한, 뒷다리의 신경학적 결손정도는 대조군의 경우 조작 후의 등급 0.38±0.52, 저산소증 처리후의 등급 0.38±0.52, 재순환 0.5±0.53으로 나타났으며, KHCT fr.1 처리한 군의 경우 조작 후의 등급0.25±0.46, 저산소증 처리후의 등급 0.25±0.46, 재순환 0.38±0.52으로 나타났으며, KHCT fr.1을 처리한 실험군은 대조군에 비해 호전되는 경향은 보였으나 크게 호전되지는 않았다.The degree of neurological deficits of the hind limbs was 0.38 ± 0.52 after operation in the control group, 0.38 ± 0.52 after hypoxia treatment, and 0.5 ± 0.53 in the recirculation treatment. 0.46, hypoxia after treatment was 0.25 ± 0.46, recycle 0.38 ± 0.52, KHCT fr.1 treated group showed a tendency to improve compared to the control group, but did not improve significantly.
[표 24] 가미혈부축어탕 EA층 중 분획 1의 중대뇌동맥 폐쇄에 따른 신경학적 결손 정도의 변화에 미치는 효과(앞다리)Table 24: Effect of Fraction 1 on the Changes in Neurologic Defects due to Closing of the Middle Cerebral Artery in the EA Layer of Kami-Blood-Shaped Fish (Forelimbs)
상기표에서 대조군은 10% 알콜처리군이고, KHCT 분획1은 가미혈부축어탕 EA층 세분획 1이다.In the table, the control group is a 10% alcohol treatment group, and KHCT fraction 1 is EA fraction subdivision 1 of Kami-Buchukeotang.
[표 25]가미혈부축어탕 EA층 중 분획 1의 중대뇌동맥 폐쇄에 따른 신경학적 결손 정도의 변화에 미치는 효과(뒷다리)[Table 25] Effect of Fraction 1 on Changes in Neurologic Deficits of the Middle Cerebral Artery Occlusion in Gami-Blood-Shark Fish-Ea EA Layer (hind Leg)
상기표에서 대조군은 10% 알콜처리군이고, KHCT 분획1은 가미혈부축어탕 EA층 세분획 1이다.In the table, the control group is a 10% alcohol treatment group, and KHCT fraction 1 is EA fraction subdivision 1 of Kami-Buchukeotang.
실시예 12: 가미혈부축어탕 EA층의 이동 활성에 대한 영향Example 12: Influence on the Mobility Activity of Kami-Blood-Shake Fish-Ea EA Layer
MCA 폐색을 통해 허혈증을 유발한 쥐에 있어서 정상군과 KHCT 분획1을 처리한 군과의 행동량 측정을 통해 허혈증에 의한 행동량의 변화와 그에따른 약효과를 보고자 실험을 실시하였다.In rats that induced ischemia through MCA occlusion, an experiment was conducted to determine the behavioral change and its drug effects by ischemia by measuring the activity of the normal group and the group treated with KHCT fraction 1.
결과적으로 대조군, KHCT 분획1을 처리한 군과 정상군과의 차이는 많이 났지만As a result, there were many differences between the control group and the KHCT fraction 1 group and the normal group.
대조군과 KHCT 분획1군과는 차이가 거의 없었다. 따라서, 약재의 효과는 행동에 영향을 거의 미치지 않는 것으로 평가된다.There was little difference between the control group and the KHCT fraction 1 group. Therefore, the effect of the medicinal herb is evaluated to have little effect on the behavior.
[표 26] 가미혈부축어탕 EA층의 이동 활성에 대한 영향[Table 26] Effect on the migration activity of Gami-Blood Fish Extract EA layer
상기표에서 단위는 cm이고, n=3이다.In the table above the unit is cm and n = 3.
실시예 13: 가미혈부축어탕 EA층의β-아밀로이드 단백질에 의해서 유도된 PC-12세포의 세포보호효과Example 13: Cytoprotective effect of PC-12 cells induced by β-amyloid protein in EA layer
[표 27] β-아밀로이드 단백질에 의한 PC-12세포의 세포보호효과Table 27: Cytoprotective effect of PC-12 cells by β-amyloid protein
KHCT fr.1에서 β-아밀로이드만 처리한 군에서는 0.9%의 낮은 생존률을 보였지만 약제를 처리한 군에서는 농도에 의존적으로 높은 생존률을 보여 보호효과를 나타내었다. KHCT fr.4에서도 KHCT fr.1과 같은 경향을 나타내었다.In KHCT fr.1, the β-amyloid-treated group showed a low survival rate of 0.9%, but the drug-treated group showed a high survival rate depending on the concentration. KHCT fr.4 also showed the same trend as KHCT fr.1.
상기에서 살펴본 바와 같이, 본 발명의 조성물을 처리한 경우, 뇌의 허혈면적 감소나 부종의 감소 등에 있어서 뛰어난 효과를 가져서 중풍 및 치매 등 뇌질환 치료 및 예방에 사용할 수 있다.As described above, when the composition of the present invention is treated, it has an excellent effect in reducing ischemic area of the brain or reduction of edema and can be used for treating and preventing brain diseases such as stroke and dementia.
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