KR20010034995A - A Modified Quartz microfiber membrane and the Use there of - Google Patents

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Abstract

PURPOSE: A modified quartz microfiber membrane is provided to have a suitable hydrophilicity and a proper electropositivity by treating surface with NaOH or the mixture of NaOH and C3P, so as to usefully extract DNA or RNA. CONSTITUTION: A quartz microfiber membrane is filled in 50 ml beaker, treated with 0.2N NaOH 20 ml and then let alone 25 deg.C for 12 hours after being left 35 deg.C for 12 hours. The Quartz microfiber membrane treated with NaOH is washed with acetone 4 times after being cleaned with a distilled water 4 times. And the Quartz microfiber membrane is dried in an oven of 100 deg.C for 1 hour after being let alone in air 1 hour and is kept in a desicator. And a circular of 7mm diameter made of the membrane is inserted in a spin mini column after being piled up with 3 membranes. And then the membrane is fixed with a ring and sterilized by etylene oxide gas.

Description

개질된 수정미세섬유막 및 그 이용{A Modified Quartz microfiber membrane and the Use there of}A modified quartz microfiber membrane and the use there of}

본 발명은 개질된 수정미세섬유막 및 그 이용에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 수정미세섬유막에 NaOH 또는 NaOH와 PCl3로 조합처리하여 막 표면의 친수성(hydrophilicity)과 전기양성도(electropositivity)를 DNA나 RNA를 추출하기에 유용하도록 개질된 수정미세섬유막(modified quartz microfiber membrane)에 관한 것이다.The present invention relates to a modified quartz fiber membrane and its use, and more particularly, to a hydrophilicity and electropositivity of the membrane surface by combining NaOH or NaOH with PCl 3 to the quartz crystal fiber membrane. It relates to a modified quartz microfiber membrane modified to be useful for extracting RNA.

일반적으로, 분자생물학에 있어서 높은 순도의 두 가닥 사슬 플라스미드 DNA, 단일 가닥사슬 파아지(phage) DNA, 람다(lamda) DNA, 염색체(chromosomal) DNA, PCR 생성물, RNA 그리고 아가로오즈 젤 또는 폴리아크릴아마이드로부터 정제된 DNA 단편의 준비는 매우 중요한 작업이다. 따라서, 이러한 핵산을 정제하기 위한 방법은 빠르고 간편하여야 하며 어떠한 부수적인 조작이 없을 수록 좋으며, 이렇게 정제된 DNA나 RNA는 형질전환이나 제한효소 분석, 연결(ligation), 서열분석(sequencing), 형질감염(transfection) 등을 위하여 즉시 사용할 수 있다.Generally, in molecular biology, high purity two-stranded chain plasmid DNA, single stranded phage DNA, lambda DNA, chromosomal DNA, PCR products, RNA and agarose gels or polyacrylamides The preparation of purified DNA fragments from is a very important task. Therefore, the method for purifying such nucleic acid should be fast and simple and better if no additional manipulation is required, and the purified DNA or RNA may be transformed, restriction enzyme analyzed, ligation, sequencing, transfected. Can be used immediately for transfection.

이러한 특징을 만족시킬 수 있는 핵산을 얻기 위한 방법으로는 현재 자동화된 DNA 정제장치가 있다. 그러나, 이러한 장치들은 고가이며 유지비가 너무 많이 소요되는 문제점이 있어왔다.Methods for obtaining nucleic acids that can satisfy these characteristics currently include automated DNA purification apparatus. However, these devices have been expensive and expensive to maintain too much problem.

그래서, 많은 실험실에서는 전통적으로 사용되는 알콜 침전법을 사용하는데 이 방법 역시 많은 노동력과 시간을 필요로 할 뿐만 아니라, 정제된 DNA의 순도가 너무 낮은 문제점이 있다. 따라서, 이러한 문제점을 해결하여 좀 더 높은 순도를 가진 DNA를 정제하기 위하여 CsCl 구배, 겔 여과(gel filtration), 이온교환 크로마토그래피(ion exchange chromatography) 등을 사용하여 왔다. 그런데 이러한 방법들은 음전하된 세포구성물질들이 DNA와 함께 정제되어 원하지 않은 수준의 불순물이 포함될 수도 있기 때문에 별도의 정제과정이 필요하거나 순도가 매우 떨어지는 문제점이 있어왔다.Therefore, many laboratories use the alcohol precipitation method that is traditionally used. This method also requires a lot of labor and time, and the purity of purified DNA is too low. Therefore, CsCl gradient, gel filtration, ion exchange chromatography and the like have been used to solve these problems and to purify DNA with higher purity. However, these methods require a separate purification process or have a very low purity since negatively charged cell components may be purified together with DNA to contain unwanted levels of impurities.

또한, 유리 또는 셀라이트(celite)와 같은 실리카(silica) 표면을 지닌 고체상을 이용하여 DNA를 정제하는 방법도 있다. 그러나, 이들 방법은 과량의 DNA를 고체상 표면에 부착시킬 수 있거나 추출에 의하여 DNA 분자를 회수하기에 적합한 표면을 가지고 있지 않을 뿐만 아니라, 이러한 형태의 DNA 결합은 독성이 있으며 가격이 비싼 높은 농도의 차오트로피스(chaotropes)이나 알콜을 필요로 한다. 예를 들어 차오트로피스(chaotropes)가 존재하는 상태에서 유리분말 또는 유리섬유막에 DNA를 결합시킨 후 알콜로 차오트로픽 이온(chaotropic ion)을 제거하고 낮은 농도의 완충용액 또는 물로 DNA를 추출할 수 있다. 하지만 유리분말은 DNA 결합 능력이 낮으며 큰 DNA인 경우에 잘라지는 경향이 있다. 따라서, 보다 간단 신속하면서도 저렴하고, 불순물 없이 DNA나 RNA만을 고순도로 분리하는 방법의 개발 필요성이 절실히 대두되고 있는 실정이었다.There is also a method for purifying DNA using a solid phase having a silica surface such as glass or celite. However, these methods not only can attach excess DNA to a solid phase surface or do not have a surface suitable for recovering DNA molecules by extraction, but this type of DNA binding is toxic and expensive and high concentration of chao You need chaotropes or alcohol. For example, DNA may be bound to a glass powder or glass fiber membrane in the presence of chaotropes, followed by alcohol removal of chaotropic ions, and DNA extraction with a low concentration of buffer or water. . However, glass powder has a low DNA binding ability and tends to be cut in the case of large DNA. Therefore, there is an urgent need for the development of a simpler, faster and cheaper method of separating DNA or RNA with high purity without impurities.

이에, 본 발명의 별명자는 상기와 같은 문제점을 해결하기 위하여 예의 노력한 결과, 수정미세섬유막(quartz microfiber membrane)의 표면을 NaOH 단독으로 처리하거나, 또는 NaOH와 Cl3P를 조합하여 처리함으로써 DNA나 RNA만을 추출하기에 유용한 친수성(hydrophilicity)과 전기양성도(electropositivity)를 갖도록 조절함으로써 본 발명을 완성하게 되었다.Thus, the nickname of the present invention, as a result of intensive efforts to solve the above problems, the surface of quartz microfiber membrane (quartz microfiber membrane) by treating with NaOH alone, or by combining NaOH and Cl 3 P by DNA or RNA The present invention has been completed by adjusting to have hydrophilicity and electropositivity useful for extracting bays.

따라서, 본 발명은 NaOH 단독처리 또는 NaOH와 PCl3로 조합처리한 개질된 수정미세섬유막을 제공하는 데 그 목적이 있다.Accordingly, an object of the present invention is to provide a modified quartz fiber membrane treated with NaOH alone or with NaOH and PCl 3 .

또한, 본 발명은 상기한 개질된 수정미세섬유막을 핵산정제용 충진제로 사용하는 방법을 제공하는 데 또 다른 목적이 있다.It is another object of the present invention to provide a method for using the modified quartz fiber membrane as a filler for nucleic acid purification.

도 1a는 개질된 수정미세섬유막 컬럼의 분해도이다.1A is an exploded view of a modified quartz fiber membrane column.

도 1b는 콜렉팅 튜브의 분해도이다.1B is an exploded view of the collecting tube.

도 2는 미개질된 수정미세섬유막과, 다양한 개질제를 사용하여 개질화된 수정미세섬유막에서 DNA의 수득율을 비교한 그림이다.FIG. 2 is a graph comparing the yield of DNA in an unmodified microfibrous membrane and a modified microfibrous membrane modified using various modifiers. FIG.

도 3은 개질된 수정미세섬유막 컬럼을 사용하여 플라스미드 DNA를 정제한 그림이다.Figure 3 is a picture of plasmid DNA purified using a modified quartz fiber membrane column.

도 4는 개질된 수정미세섬유막 컬럼을 사용하여 정제한 플라스미드 DNA의 제한효소분석을 나타낸 그림이다.4 is a diagram showing restriction enzyme analysis of plasmid DNA purified using a modified quartz fiber membrane column.

도 5는 개질된 수정미세섬유막 컬럼을 사용하여 정제한 플라스미드 DNA를 제한효소로 절단한 후 아가로오즈 젤로부터 정제한 그림이다.Figure 5 is a diagram purified from agarose gel after cleavage of plasmid DNA purified using a modified microfiber membrane column with restriction enzymes.

도 6a는 개질된 수정미세섬유막 컬럼을 사용하여 사람의 혈액으로부터 게놈 DNA를 정제한 그림이다.Figure 6a is a picture of genomic DNA purified from human blood using a modified quartz fiber membrane column.

도 6b는 개질된 수정미세섬유막 컬럼을 사용하여 원핵세포와 사람의 혈액으로부터 게놈 DNA를 정제하고 그것을 주형으로 하여 PCR을 수행한 결과를 나타낸 그림이다.6B is a diagram showing the results of PCR using genomic DNA purified from prokaryotic cells and human blood using a modified quartz fiber membrane column as a template.

도 7은 개질된 수정미세섬유막 컬럼을 사용하여 여러 크기의 DNA와 단일 가닥사슬의 M13 파아지 DNA를 정제한 그림이다.7 is a diagram illustrating purification of various sizes of DNA and single-stranded M13 phage DNA using a modified quartz fiber membrane column.

도 8a는 개질된 수정미세섬유막 컬럼을 사용하여 DNA 칩을 위해 사용하는 여러 가지 PCR 생성물을 정제한 그림이다.Figure 8a is a purified image of the various PCR products used for the DNA chip using a modified quartz fiber membrane column.

도 8b는 개질된 수정미세섬유막 컬럼을 사용하여 PCR 생성물로부터 프라이머, 염 등의 제거를 나타내는 그림이다.8b is a diagram showing the removal of primers, salts, etc. from the PCR product using a modified quartz fiber membrane column.

도 9a는 개질된 수정미세섬유막 컬럼을 사용하여 정제된 DNA를 사용하여 형질감염(transfection)한 그림이다.FIG. 9A is a diagram of transfection using DNA purified using a modified quartz fiber membrane column. FIG.

도 9b는 CsCl를 사용하여 정제된 DNA를 사용하여 형질감염(transfection)한 그림이다.9b is a diagram transfected with DNA purified using CsCl.

도 10은 개질된 수정미세섬유막 컬럼을 사용하여 정제된 pCR2.1-AK3 플라스미드 DNA를 M13 역방향 프라이머를 사용하여 매뉴얼 시퀀싱(manual sequencing)한 결과이다.10 shows the results of manual sequencing of purified pCR2.1-AK3 plasmid DNA using a modified quartz fiber membrane column using an M13 reverse primer.

도 11은 개질된 수정미세섬유막 컬럼을 사용하여 정제된 pCR2.1-AK3 플라스미드 DNA를 T7 프라이머를 사용하여 자동 염기서열분석을 한 결과이다.FIG. 11 shows the results of automatic sequencing of pCR2.1-AK3 plasmid DNA purified using a modified quartz fiber membrane column using a T7 primer.

본 발명의 NaOH 단독처리 또는 NaOH와 PCl3로 조합처리한 개질된 수정미세섬유막에 대하여 보다 구체적으로 살펴보면 다음과 같다.The modified quartz fiber membrane treated with NaOH alone or with NaOH and PCl 3 of the present invention will be described in more detail.

본 발명은 개질된 수정미세섬유막에 관한 것으로, 수정미세섬유막을 NaOH 단독으로 처리하거나, 또는 NaOH와 Cl3P를 조합처리하여 막 표면의 전기적 성질을 DNA나 RNA를 추출하는 데에 유용하도록 조절하여 개질화된 수정미세섬유막을 포함한다. 즉, 수정미세섬유막의 표면을 NaOH로 단독처리하거나 또는 NaOH와 Cl3P를 조합처리하여 막 표면의 친수성(hydrophilicity)과 전기양성도(electropositivity)를 조절하여 음성의 전기적 성질을 나타내는 핵산이 용이하게 결합할 수 있도록 한 것이다.The present invention relates to a modified quartz microfiber membrane, by treating the quartz microfiber membrane with NaOH alone, or by combining NaOH and Cl 3 P to adjust the electrical properties of the membrane surface to be useful for extracting DNA or RNA Modified quartz fiber membranes. In other words, the surface of the crystal microfibrous membrane is treated with NaOH alone or NaOH and Cl 3 P are combined to control the hydrophilicity and electropositivity of the membrane surface, thereby making it easy to display a nucleic acid showing negative electrical properties. It is to be combined.

수정미세섬유막의 표면처리를 위해서는 NaOH 용액에 수정미세섬유막을 넣고 15 ∼ 37 ℃ 온도로 2 시간 정도 방치시킨다. 상기 NaOH 용액 표면처리 후에 전기양성도를 증가시키기 위하여 추가로 Cl3P 용액에서 15 ∼ 37 ℃ 온도로 1 시간 정도 방치시킬 수도 있다. 또한, 표면처리는 0.2 N NaOH를 수정미세섬유막이 완전히 잠길 정도로 하여 2 시간 정도 처리하거나 0.2 N NaOH로 처리된 수정미세섬유막을 증류수로 3번 세척한 후 2M 디클로로메탄과 10 mM PCl3로 구성된 용액에서 12 시간 정도 처리한 후 아세톤과 증류수로 세척하는 것이 바람직하다.For surface treatment of the crystal microfiber membrane, the crystal microfiber membrane was placed in a NaOH solution and left to stand at a temperature of 15 to 37 ° C for about 2 hours. In order to increase the electrical conductivity after the NaOH solution surface treatment, it may be further left for 1 hour at a temperature of 15 to 37 ℃ in Cl 3 P solution. In addition, the surface treatment is a solution consisting of 2M dichloromethane and 10 mM PCl 3 after 0.2 hours of treatment with 0.2 N NaOH so that the quartz crystal fiber membrane is completely submerged or washed three times with 0.2 N NaOH quartz crystal fiber membrane with distilled water three times. After treatment for about 12 hours in acetone and distilled water is preferably washed.

이상의 표면처리 방법에 의해 개질화된 수정미세섬유막을 세포구성물질들과 접촉하게 되면, 이러한 개질된 수정미세섬유막은 세척에 의하여 모든 세포구성물질들을 제거할 수 있으며 DNA 또는 RNA만 개질된 수정미세섬유막에 결합되며 결합된 DNA나 RNA는 개질된 수정미세섬유막으로부터 추출할 수 있다.When the modified microfibrous membrane modified by the above surface treatment method is brought into contact with the cell components, the modified microfibrous membrane can remove all cell components by washing, and the modified microfibrous membrane is modified with only DNA or RNA. The bound DNA or RNA can be extracted from the modified quartz fiber membrane.

한편, 본 발명은 이상에서 설명한 개질된 수정미세섬유막이 적용된 핵산정제용 충진제를 포함한다. 즉, DNA 또는 RNA와 같은 핵산만을 분리추출하기 위한 칼럼 충진제로서 본 발명의 개질된 수정미세섬유막을 사용하는 것을 포함한다.On the other hand, the present invention includes a filler for nucleic acid purification to which the modified microfiber membrane described above is applied. That is, it includes using the modified quartz fiber membrane of the present invention as a column filler for separating and extracting only nucleic acids such as DNA or RNA.

첨부도면 도 1a는 개질된 수정미세섬유막이 충전제로 충진된 핵산정제용 칼럼의 분해도이고, 도 1b는 콜렉팅 튜브의 분해도이다. 개질된 수정미세섬유막을 7 mm 원형을 만든 후 도 1a의 핵산정제용 칼럼에 넣고 7.25 mm의 링으로 개질된 수정미세섬유막을 고정시킨 후 도 1b의 콜렉팅 튜브와 결합시켜서 핵산 정제용 칼럼을 완성하였다.1A is an exploded view of a column for nucleic acid purification in which a modified quartz fiber membrane is filled with a filler, and FIG. 1B is an exploded view of a collecting tube. After making the modified microfibrous membrane with 7 mm round shape, inserting the modified microfibrous membrane into the nucleic acid purification column of FIG. 1a and fixing the modified microfibrous membrane with the ring of 7.25 mm, and then combining with the collecting tube of FIG. It was.

이와 같은 본 발명을 다음의 실시예 및 실험예에 의하여 개질된 수정미세섬유막(modified Quartz microfiber membrane)을 제조하는 단계, 개질된 수정미세섬유막을 충진한 컬럼의 제조 및 이를 이용하여 두 가닥 사슬 플라스미드 DNA, 단일 가닥사슬 M13 파아지 DNA, 람다 DNA, 염색체 DNA, PCR 생성물 그리고 아가로오즈 젤 또는 폴리아크릴아마이드 젤로부터 DNA 단편의 정제 및 정제된 플라스미드 DNA의 제한효소 분석, 형질감염(transfection), 매뉴얼 서열분석(mannual sequencing) 그리고 자동서열분석(automatic sequencing)을 수행하는 단계로 더욱 상세히 설명하고자 한다.The present invention comprises the steps of preparing a modified quartz microfiber membrane (modified quartz microfiber membrane) according to the following Examples and Experimental Examples, the production of a column filled with a modified quartz microfiber membrane and using the two-stranded chain plasmid DNA Purification of DNA fragments from single-stranded M13 phage DNA, lambda DNA, chromosomal DNA, PCR products and agarose gels or polyacrylamide gels, restriction enzyme analysis, transfection, manual sequencing of purified plasmid DNA (manual sequencing) and automatic sequencing are described in more detail.

그러나, 이들 실시예 및 실험예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 이들 실시예에 의하여 본 발명의 범위가 한정되지 않는다는 것은 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다.However, these Examples and Experimental Examples are only for illustrating the present invention in more detail, and the scope of the present invention is not limited by these Examples to those of ordinary skill in the art. Will be self explanatory.

실시예 1: NaOH를 사용하여 개질된 수정미세섬유막 및 DNA 정제용 컬럼의 제조Example 1 Preparation of Modified Microfiber Membranes and Columns for DNA Purification Using NaOH

수정미세섬유막(Quartz microfiber membrane)을 50 ㎖ 비이커에 넣고 20 ㎖의 0.2N NaOH 20 ㎖을 처리하여 35 ℃에서 12 시간동안 방치한 후 25 ℃에서 12 시간동안 방치하였다. NaOH로 처리된 수정미세섬유막은 증류수로 4번 세척한 후 아세톤으로 4번 세척하였다. 개질된 수정미세섬유막을 공기중에서 1 시간동안 방치한 후 100 ℃ 오븐에서 1 시간동안 건조시킨 후 데시케이터(desicator)에 보관하였다.A quartz microfiber membrane was placed in a 50 ml beaker, treated with 20 ml of 20 ml of 0.2N NaOH, and left at 35 ° C. for 12 hours and then left at 25 ° C. for 12 hours. NaOH-treated microfibrous membranes were washed four times with distilled water and four times with acetone. The modified microfiber membrane was left in air for 1 hour and then dried in an oven at 100 ° C. for 1 hour and then stored in a desiccator.

그런 다음, 이렇게 개질된 수정미세섬유막(Modified Quartz microfiber)을 직경이 7 mm인 원형을 만든 후 3 개를 겹쳐서 스핀 미니 컬럼(spin mini column)(도 1a)에 삽입한 후 링을 삽입하여 고정하고 에틸렌 옥사이드(Etylene Oxide)가스로 멸균하여 제조하였다. 대장균(E. coli) 부유액을 10 ㎖ 사용시 개질된 수정미세섬유막을 3장 이상 겹쳐서 사용하여도 DNA 수득율은 더 이상 증가하지 않는다.Then, the modified quartz microfiber is made into a 7 mm diameter circle, and three of them are inserted in a spin mini column (FIG. 1A), and then the ring is inserted and fixed. It was prepared by sterilization with ethylene oxide (Etylene Oxide) gas. When 10 ml of E. coli suspension is used, the yield of DNA is no longer increased when three or more modified quartz fiber membranes are overlapped.

실시예 2: NaOH와 PCl3를 사용하여 개질된 수정미세섬유막 및 DNA 정제용 컬럼의 제조Example 2 Preparation of Modified Microfiber Membranes and DNA Purification Columns Using NaOH and PCl 3

실시예 1에서 준비된 NaOH가 처리된 수정미세섬유막을 PCl3에 2M 디클로로메탄이 함유된 용액에 12 시간동안 25 ℃에서 담근 후 아세톤으로 세 번 세척하고, 다시 증류수로 3번 세척하여 개질된 수정미세섬유막을 만든 다음, 진공 데시케이터(desicator)에서 건조시켰다.The modified NaOH-treated quartz fiber membrane prepared in Example 1 was immersed in a solution containing 2M dichloromethane in PCl 3 at 25 ° C. for 12 hours, washed three times with acetone, and washed three times with distilled water. The fibrous membrane was made and then dried in a vacuum desiccator.

이렇게 개질된 수정미세섬유막(Modified Quartz microfiber)를 도 1a에서와 같이 직경이 7 mm인 원형을 만든 후 3 개를 겹쳐서 스핀 미니 컬럼(spin mini column)에 삽입한 후 링을 삽입하여 고정하고 에틸렌 옥사이드(Etylene Oxide) 가스로 멸균하여 제조하였다. 역시, 대장균(E. coli) 부유액을 10 ㎖ 사용시 개질된 수정미세섬유막을 3장 이상 겹쳐서 사용하여도 DNA 수득율은 더 이상 증가하지 않는다.This modified quartz microfiber is made into a circular diameter of 7 mm, as shown in FIG. 1A, and then three of them are inserted into a spin mini column, and then the ring is inserted to fix the ethylene oxide. It was prepared by sterilization with (Etylene Oxide) gas. In addition, the DNA yield does not increase any more when three or more modified microfibrous membranes are overlapped when 10 ml of E. coli suspension is used.

실험예 1: 플라스미드 DNA의 분리Experimental Example 1 Isolation of Plasmid DNA

상기 실시예 1에서 제조된 개질된 수정미세섬유막 DNA 정제 컬럼을 사용하여 플라스미드 DNA를 분리 제조하였다. 플라스미드 DNA(pCR2.1)을 함유하는 TOP 10 대장균(E. coli) 균주를 배양하고 이 균주 배양액을 원심분리하여 펠렛을 얻었다. 이 펠렛을 A용액(20 mM EDTA와 100 ㎍/㎖ RNAse A를 함유하는 30 mM Tris/HCl pH 7.5)에 부유시킨 다음, B용액(0.2 N NaOH, 1% 소디움 도데실 설페이트(SDS)(w/v))으로 세포를 용균시킨 후, C용액(3.1 mM 아세트산 칼륨, 아세트산, 4 M 구아니딘 티오시아네이트 pH 4.2)를 사용하여 중화시킨 후, 원심분리하여 상층액을 개질된 수정미세섬유막 컬럼에 DNA를 결합시킨 후, D용액(20 mM Tris/HCl pH 7.4, 100 mM NaCl, 10 mM EDTA, 50% 에탄올)으로 세척한 후 증류수로 용출시켜 고순도의 플라스미드 DNA를 얻었다.Plasmid DNA was isolated and prepared using the modified quartz fiber membrane DNA purification column prepared in Example 1. Top 10 E. coli strains containing plasmid DNA (pCR2.1) were cultured and pelleted by centrifugation of the strain culture solution. The pellet was suspended in solution A (30 mM Tris / HCl pH 7.5 containing 20 mM EDTA and 100 μg / ml RNAse A), followed by solution B (0.2 N NaOH, 1% sodium dodecyl sulfate (SDS) (w) / v)), the cells were lysed, neutralized with C solution (3.1 mM potassium acetate, acetic acid, 4 M guanidine thiocyanate pH 4.2), and then centrifuged to supernatant to the modified quartz fiber membrane column. After binding the DNA, washed with D solution (20 mM Tris / HC1 pH 7.4, 100 mM NaCl, 10 mM EDTA, 50% ethanol) and eluted with distilled water to obtain a high-purity plasmid DNA.

실험예 2: 수정미세섬유막과 개질된 수정미세섬유막의 DNA 수득율의 비교Experimental Example 2 Comparison of DNA Yield between Modified Microfibrous Membrane and Modified Microfibrous Membrane

수정미세섬유막과 개질된 수정미세섬유막의 플라스미드 DNA의 수득율을 비교하기 위하여, 각각의 개질화제(modifier)를 사용하여 제조된 개질된 수정미세섬유막을 사용하여 상기 실시예 1 및 실시예 2와 동일한 방법으로 컬럼을 제조하고, 대장균(E. coli) 배양액 10 ㎖으로부터 3,000 rpm으로 10 분동안 원심분리하여 대장균 침전물을 회수한 후 상기 실험예 1과 같은 방법으로 플라스미드 DNA를 각각 제조하여 수득율과 순도를 비교 분석하였다. 그리고, 그 결과를 다음 표 1과 도 2에 요약하여 나타내었다.In order to compare the yield of the plasmid DNA of the modified microfibrous membrane and the modified microfibrous membrane, the same method as in Example 1 and Example 2 using the modified modified microfibrous membrane prepared using the respective modifiers To prepare a column, and centrifuged for 10 minutes from 10 ml of E. coli culture at 3,000 rpm to recover the precipitate of E. coli, and plasmid DNA was prepared in the same manner as in Experimental Example 1 to compare the yield and purity. Analyzed. The results are summarized in Table 1 and FIG. 2.

그 결과, 표 1 및 도 2에서 보는 바와 같이 수정미세섬유막 보다 개질된 수정미세섬유막, 특히 NaOH 또는 NaOH/PCl3로 처리한 수정미세섬유막이 월등한 DNA 결합능력을 보여주고 있으며, 순도는 개질된 수정미세섬유막이나 개질되지 않은 수정미세섬유막 모두 OD260=1.6 ∼ 1.8을 나타내었다.As a result, as shown in Table 1 and FIG. 2, the modified microfibrous membrane, especially the modified microfibrous membrane treated with NaOH or NaOH / PCl 3 , showed superior DNA binding ability, and the purity was modified. Both OD 260 = 1.6 and 1.8 were found in both the modified and unmodified quartz fibers.

개질된 수정미세섬유막에 따른 플라스미드 DNA 순도 및 수득율Purity and yield of plasmid DNA according to modified quartz fiber membrane 개질제Modifier E. coli TOP 10 배양액* E. coli TOP 10 medium * OD260/OD280(순도)OD 260 / OD 280 (purity) 수득량Yield 비개질화(NON)NON 10 ㎖10 ml 1.60 ∼ 1.751.60-1.75 0.3 ∼ 0.5 ㎍0.3 to 0.5 μg 0.2N NaOH0.2N NaOH 10 ㎖10 ml 1.65 ∼ 1.821.65-1.82 10 ∼ 12 ㎍10 to 12 ㎍ 10N NaOH10N NaOH 10 ㎖10 ml 1.59 ∼ 1.811.59-1.81 4 ∼ 6 ㎍4 to 6 μg PCl3 PCl 3 10 ㎖10 ml 1.61 ∼ 1.801.61-1.80 0.2 ∼ 0.4 ㎍0.2 to 0.4 μg 0.2N NaOH/PCl3 0.2N NaOH / PCl 3 10 ㎖10 ml 1.60 ∼ 1.801.60-1.80 11 ∼ 13 ㎍11 to 13 ㎍ *E. coli TOP 10 배양액 : LB 배지 * E. coli TOP 10 medium: LB medium

실험예 3: 여러 콜로니 배양액으로부터 플라스미드 DNA의 제조Experimental Example 3: Preparation of Plasmid DNA from Various Colony Cultures

pCR2.1-AK3로 형질전환된 9개의 대장균(E. coil TOP 10)을 각각 10 ㎖ LB 배지에서 12 시간 동안 37 ℃에서 250 rpm으로 키운 후, 상기 실험예 1에서 나타낸 방법과 동일한 방법으로 플라스미드 DNA를 정제한 결과 각각의 콜로니로부터 15 ㎍ 이상의 프라스미드 DNA를 추출할 수 있었다.Nine Escherichia coli (E. coil TOP 10) transformed with pCR2.1-AK3 were grown at 250 rpm at 37 ° C. for 12 hours in 10 ml LB medium, respectively, and then the plasmids were prepared in the same manner as in Experiment 1 above. As a result of purifying the DNA, 15 µg or more of the plasmid DNA could be extracted from each colony.

실험예 4: 플라스미드 DNA의 제한효소 절단Experimental Example 4 Restriction Enzyme Cleavage of Plasmid DNA

AK3에 대한 오픈리딩프레임(Open reading frame)을 중합효소반응(PCR)을 사용하여 증폭시키고 pCR 2.1 벡터와 결합시킨 다음, 대장균(E. coli TOP 10)에 형질전환시켜 엠피실린 배지에서 키운 후 상기 실험예 1과 같은 방법으로 플라스미드 DNA를 추출한 후 제한효소 EcoRI으로 절단해 본 결과 도 4에서 알 수 있듯이 효과적인 DNA 절단이 이루어 졌다.Open reading frame for AK3 was amplified using polymerase reaction (PCR) and combined with pCR 2.1 vector, transformed into E. coli TOP 10 and grown on empicillin medium. Extracting the plasmid DNA in the same manner as in Experimental Example 1 and digesting with restriction enzyme EcoRI showed effective DNA cleavage as shown in FIG. 4.

실험예 5: 아가로오즈 젤로부터 DNA 단편의 분리Experimental Example 5: Isolation of DNA Fragments from Agarose Gel

TAE 또는 TBE 아가로즈 젤에서 DNA를 전기영동하여 DNA를 분리하고, 밴드를 잘라서 에펜도르프 튜브에 넣고 젤 용해(Gel lysis) 용액[50 mM Tris/HCl pH 7.0, 6 M 구아니딘 티오시아네이트]을 젤 200 mg당 500 ㎕를 넣고 42 ℃에서 젤을 완전히 녹인 후 개질된 수정미세섬유막 컬럼에 DNA를 결합시킨 후 세척용액[20 mM Tris/HCl pH 7.4, 100 mM NaCl, 10 mM EDTA, 50% 에탄올]으로 세척한 후 증류수로 DNA를 용출하였다. 그 결과, 도 5에서 볼 수 있듯이 우수한 DNA 분리 성능을 발휘하였다. 이때, 용출수득율은 85 ∼ 95%에 이른다.DNA was isolated by electrophoresis of DNA on a TAE or TBE agarose gel, the band was cut and placed in an Eppendorf tube and gel lysis solution [50 mM Tris / HCl pH 7.0, 6 M guanidine thiocyanate] 500 μl per 200 mg, the gel was completely dissolved at 42 ° C., and DNA was bound to the modified quartz fiber membrane column, followed by washing solution [20 mM Tris / HCl pH 7.4, 100 mM NaCl, 10 mM EDTA, 50% ethanol]. After washing with DNA eluted with distilled water. As a result, as shown in FIG. 5, excellent DNA separation performance was exhibited. At this time, the elution yield reaches 85 to 95%.

실험예 6: 혈액으로부터 염색체(chromosomal) DNA의 제조Experimental Example 6 Preparation of Chromosome DNA from Blood

사람으로부터 채혈한 혈액에 7.5%가 되게 끔 EDTA를 첨가한 후, 이중 300 ㎕를 취한 후 적혈구 분해용액(0.5% NH4Cl)을 처리하고 원심분리하여 백혈구만을 얻었다. 여기에 1% 소디움 도데실 설페이트(SDS) 용액을 첨가하여 백혈구를 분해한 후 2.5M 암모늄 아세테이트를 첨가하여 단백질들을 침전시킨 후 차오트로픽 염(chaotropic salt) 존재하에서 개질된 수정미세섬유막 컬럼에 염색체(chromosomal) DNA를 부착시킨 후 50% 에탄올로 세척한 후 증류수로 DNA를 용출시켰다[도 6a]. 그리고, 용출된 염색체(chromosomal) DNA를 주형으로 하여 PCR를 수행하였을 때 PCR 생성물이 잘 생성되었다[도 6b].After EDTA was added to the blood collected from humans to 7.5%, 300 μl of the blood was collected, treated with red blood cell digestion solution (0.5% NH 4 Cl), and centrifuged to obtain only white blood cells. To this, 1% sodium dodecyl sulfate (SDS) solution was added to decompose leukocytes, and 2.5M ammonium acetate was added to precipitate proteins. chromosomal) DNA was attached and washed with 50% ethanol and then eluted with distilled water [FIG. 6a]. In addition, PCR was well generated when PCR was performed using the eluted chromosomal DNA as a template (FIG. 6B).

실험예 7: 다양한 크기의 플라스미드 DNA 와 단일 가닥사슬 DNA의 제조Experimental Example 7: Preparation of plasmid DNA and single stranded DNA of various sizes

다양한 크기의 플라스미드 DNA를 함유하고 있는 형질전환된 대장균으로부터 상기 실험예 1과 같은 방법으로 플라스미드 DNA를 제조한 결과 플라스미드 DNA의 크기에 관계없이 플라스미드 DNA의 정제 효율이 좋으며 또한 M13 페이지(phage) DNA를 30% PEG로 침전시킨 후 1 ㎖ 증류수로 페이지(phage)를 용해시키고 여기에 50 mM Tris/HCl pH 7.0, 4 M 구아니딘 티오시아네이트 500 ㎕를 넣고 개질된 수정미세섬유막 컬럼에 DNA를 결합시킨 후 세척용액[20 mM Tris/HCl pH 7.4, 100 mM NaCl, 10 mM EDTA, 70% 에탄올]으로 세척한 후 증류수로 단일가닥사슬 DNA를 용출하였다. 그 결과, 도 7에서 볼 수 있듯이 우수한 단일가닥사슬 DNA 분리 성능을 발휘하였다.Plasmid DNA was prepared from the transformed Escherichia coli containing various sizes of plasmid DNA in the same manner as in Experimental Example 1, and the purification efficiency of the plasmid DNA was good regardless of the size of the plasmid DNA, and M13 phage DNA After precipitation with 30% PEG, the phage was dissolved in 1 ml of distilled water, and 500 µl of 50 mM Tris / HCl pH 7.0 and 4 M guanidine thiocyanate was added thereto, and DNA was bound to the modified quartz fiber membrane column. After washing with washing solution [20 mM Tris / HCl pH 7.4, 100 mM NaCl, 10 mM EDTA, 70% ethanol], single-stranded DNA was eluted with distilled water. As a result, as shown in Figure 7, it showed an excellent single-stranded DNA separation performance.

실험예 8: 중합효소반응(PCR) 반응물의 정제Experimental Example 8: Purification of Polymerase Reaction (PCR) Reaction

다양한 크기의 유전자를 함유하고 있는 벡터 DNA 5 ㎕를 주형으로 하여, 2.5 mM 디엔티피(dNTPs) 8 ㎕, 5 units/㎕ 이엑스 텍 DNA 폴리머레이즈(Ex taq DNA polymerase) 1 ㎕, 10X 이엑스 텍 버퍼(Ex taq buffer) 10 ㎕, T7 프라이머 와 T3 프라이머 (100 pmol/㎕) 각각 1.5 ㎕, 증류수 73 ㎕를 섞어 총 부피를 100 ㎕로 하였다. 반응은 94 ℃에서 5 분간 변성, 98 ℃에서 10 초간 변성, 60 ℃에서 30 초간 시발체 결합, 72 ℃에서 40 초간 확장과정으로 35cycle을 수행한 후 다시 72 ℃에서 5 분간 확장하여 4 ℃에서 저장하였다. 이렇게 생성된 중합효소반응 반응물에 DNA 결합용액[50 mM Tris/HCl pH 7.0, 4 M 구아니딘 티오시아네이트]을 500 ㎕를 넣고 개질된 수정미세섬유막 컬럼에 DNA를 결합시킨 후 세척용액[20 mM Tris/HCl pH 7.4, 100 mM NaCl, 10 mM EDTA, 50% 에탄올]으로 세척한 후 증류수로 중합효소반응 반응물를 용출하였다. 그 결과, 도 8a에서 볼 수 있듯이 우수한 DNA 분리 성능을 발휘하였으며, 도 8b에서 나타낸 바와 같이 중합효소반응 후 반응을 하지 않고 남아 있는 플라이머도 제거되었다.5 μl of vector DNA containing genes of various sizes was used as a template, 8 μl of 2.5 mM dNTPs, 5 units / μl Ex taq DNA polymerase 1 μl, 10X Extech 10 μl of buffer (Ex taq buffer), 1.5 μl of T7 primer and T3 primer (100 pmol / μl) and 73 μl of distilled water were mixed to make 100 μl of the total volume. The reaction was denatured at 94 ° C. for 5 minutes, denatured at 98 ° C. for 10 seconds, at 30 ° C. for 30 seconds, and then subjected to 35 cycles of expansion at 72 ° C. for 40 seconds. . 500 μl of a DNA binding solution [50 mM Tris / HCl pH 7.0, 4 M guanidine thiocyanate] was added to the polymerase reaction product thus prepared, and DNA was bound to the modified quartz fiber membrane column, followed by a washing solution [20 mM Tris]. / HCl pH 7.4, 100 mM NaCl, 10 mM EDTA, 50% ethanol] and the polymerase reaction was eluted with distilled water. As a result, as shown in Figure 8a exhibited excellent DNA separation performance, as shown in Figure 8b was removed after the polymerase reaction, the remaining primers were not removed.

실험예 9: 세포 형질감염(Cell transfection)Experimental Example 9: Cell transfection

상기 실시예 1에서 제조된 개질된 수정미세섬유막 컬럼과 CsCl 구배를 사용하여 리포터 플라스미드(reporter plasmid (GFP))를 인간배 신장세포주(human embryo kidney cell line)인 293세포에 칼슘포스페이트(Calcium Phosphate) 방법으로 형질감염(transfection) 시킨 후 36 시간 후 관찰하였으며, 그 결과를 도 9a 및 도 9b에 나타내었다. 그 결과, 도 9a 및 9b에서 보는 바와 같이, 본 발명의 개질된 수정미세섬유막으로 제조된 플라스미드 DNA를 형질감염하였을 시에 CsCl 구배로 정제된 플라스미드 DNA와 유사하게 거의 모든 세포내에서 효과적인 단백질 발현이 이루어졌음을 확인하였다.Reporter plasmid (GFP) was added to 293 cells of human embryo kidney cell line using calcium modified fibrous membrane column and CsCl gradient prepared in Example 1, calcium phosphate (Calcium Phosphate). 36 hours after the transfection was observed, and the results are shown in FIGS. 9A and 9B. As a result, as shown in FIGS. 9A and 9B, when transfecting plasmid DNA prepared with the modified modified microfibrous membrane of the present invention, effective protein expression in almost all cells was similar to that of plasmid DNA purified with a CsCl gradient. It was confirmed that it was done.

실험예 10: 정제된 플라스미드 DNA의35S 서열분석(sequencing analysis)Experimental Example 10 35 S sequencing analysis of purified plasmid DNA

ATP를 이용하여 시쿼네이즈 버젼2.0(SequenaseTM version 2.0) DNA 서열분석 키트(sequencing kit)로서 반응하여 서열분석 겔(sequencing gel)에서 분리한 후 방사선 사진(autoradiography)로 확인 하였다. 그 결과 도 10 에서 보는 바와 같이, 본 발명의 개질된 수정미세섬유막으로 제조된 DNA의 서열분석은 선명하게 DNA 밴드가 분리됨을 확인할 수 있었다.ATP was used to react as a SequenaseTM version 2.0 DNA sequencing kit, separated from the sequencing gel, and confirmed by autoradiography. As a result, as shown in Figure 10, the sequencing of the DNA prepared by the modified microfiber membrane of the present invention was confirmed that the DNA band is clearly separated.

실험예 11: 정제된 플라스미드 DNA의 자동서열분석Experimental Example 11: Automatic Sequence Analysis of Purified Plasmid DNA

자동 서열(Automatic sequencing) 분석은 ABI PRIMTMDye terminator cycle sequencing ready reaction kit(Perkin Elmer)를 이용하여 실시하였으며, 터미널 레디 반응혼합물(terminal ready reaction mix) 8 ㎕, 주형 DNA 0.4 ㎍, 프라이머 3 pmole(sense primer : M13 reverse primer anti-sense primer : T7 promoter primer)을 20 ㎕ 반응볼륨(reaction volume)으로 96℃/30min, 50℃/15sec, 60℃/4min 동안 퍼킨 엘머 온도반응기(Perkin Elmer thermalcycler)에서 25 사이클(cycle) 반응하여 에탄올로 침전시켜 회전식 진공 증발기(speed vac.)에서 말린 후 자동서열분석기(automatic sequencer(Applied Biosystem))로 분석하였다.Automatic sequencing analysis was performed using ABI PRIM Dye terminator cycle sequencing ready reaction kit (Perkin Elmer), 8 μl terminal ready reaction mix, 0.4 μg template DNA, and 3 pmole (primary primer). sense primer: M13 reverse primer anti-sense primer: T7 promoter primer in 20 µl reaction volume in Perkin Elmer thermal cycler for 96 ℃ / 30min, 50 ℃ / 15sec, 60 ℃ / 4min After 25 cycles, the mixture was precipitated with ethanol, dried in a rotary vacuum evaporator (speed vac.), And analyzed by an automatic sequencer (Applied Biosystem).

그 결과, 도 11과 같이 매우 효과적인 DNA 염기 서열 분석이 이루어 졌으며 이때, 상기에서 사용된 주형은 680 bp의 DNA를 함유한 pCR2.1이고 프라이머는 M13 역방향 프라이머 또는 T7 프라이머이다.As a result, as shown in FIG. 11, a very effective DNA sequencing was performed, wherein the template used above was pCR2.1 containing 680 bp of DNA and the primer was an M13 reverse primer or a T7 primer.

이상에서 상세히 설명한 바와 같이 본 발명은 개질된 수정미세섬유막과 그 이용에 관한 것으로서, 이러한 본 발명에 따르면 보다 간단하고 신속하게 고순도의 두 가닥 사슬 플라스미드 DNA, 람다 DNA, 염색체(chromosomal) DNA, 단일 가닥사슬 파아지 DNA를 정제할 수 있으며, PCR 생성물로부터 여러가지 조요소(cofactor), 완충용액 구성물 그리고 프라이머를 제거할 수 있으며, 아가로오즈 젤 또는 폴리아크릴아마이드 젤로부터 DNA 단편을 효과적으로 분리할 수 있을 뿐만 아니라, 정제된 플라스미드 DNA의 제한효소 분석, 형질감염(transfection), 매뉴얼 서열분석(mannual sequencing) 그리고 자동서열분석(automatic sequencing)에서도 보다 우수한 효과를 얻을 수 있다.As described in detail above, the present invention relates to a modified quartz fiber membrane and its use. According to the present invention, two-stranded chain plasmid DNA, lambda DNA, chromosomal DNA, and single strand of high purity are simpler and faster. It is possible to purify chain phage DNA, remove various cofactors, buffer components and primers from PCR products, as well as effectively separate DNA fragments from agarose gels or polyacrylamide gels. In addition, the effect of restriction enzyme analysis, transfection, manual sequencing and automatic sequencing of purified plasmid DNA can be obtained.

Claims (5)

수정미세섬유막을 NaOH 단독처리 또는 NaOH와 PCl3로 조합처리하여 개질화시킨 것임을 특징으로 하는 개질된 수정미세섬유막.Modified microfibrous membrane, characterized in that the modified microfiber membrane was modified by NaOH alone or NaOH and PCl 3 treatment. 제 1 항에 있어서, 상기 수정미세섬유막을 0.2 ∼ 10 N NaOH 용액을 사용하여 1 시간에서 24시간 동안 개질화시킨 것임을 특징으로 하는 개질된 수정미세섬유막.The modified quartz fiber membrane of claim 1, wherein the quartz fiber membrane is modified for 1 hour to 24 hours using a 0.2 to 10 N NaOH solution. 제 1 항에 있어서, 상기 수정미세섬유막을 0.2 ∼ 10 N NaOH 용액을 사용하여 개질화시킨 후에, 1 mM ∼ 1 M PCl3를 사용하여 개질화시킨 것임을 특징으로 하는 개질된 수정미세섬유막.The modified quartz fiber membrane according to claim 1, wherein the quartz fiber membrane is modified using 0.2 to 10 N NaOH solution and then modified using 1 mM to 1 M PCl 3 . 상기 청구항 1의 개질된 수정미세섬유막이 적용된 것임을 특징으로 하는 핵산정제용 충진제.The filler for nucleic acid purification, characterized in that the modified quartz fiber membrane of claim 1 is applied. 제 4 항에 있어서, 상기 핵산은 DNA 또는 RNA인 것임을 특징으로 하는 핵산정제용 충진제.5. The nucleic acid purification filler according to claim 4, wherein the nucleic acid is DNA or RNA.
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