KR102463106B1 - 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 및 이의 제조 방법 - Google Patents

3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 및 이의 제조 방법 Download PDF

Info

Publication number
KR102463106B1
KR102463106B1 KR1020200184770A KR20200184770A KR102463106B1 KR 102463106 B1 KR102463106 B1 KR 102463106B1 KR 1020200184770 A KR1020200184770 A KR 1020200184770A KR 20200184770 A KR20200184770 A KR 20200184770A KR 102463106 B1 KR102463106 B1 KR 102463106B1
Authority
KR
South Korea
Prior art keywords
dimensional
struts
scaffold
layer
dimensional layer
Prior art date
Application number
KR1020200184770A
Other languages
English (en)
Other versions
KR20220093740A (ko
KR102463106B9 (ko
Inventor
전호준
최은정
강동구
정경호
김민경
Original Assignee
바오밥헬스케어 주식회사
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 바오밥헬스케어 주식회사 filed Critical 바오밥헬스케어 주식회사
Priority to KR1020200184770A priority Critical patent/KR102463106B1/ko
Priority to PCT/KR2021/001999 priority patent/WO2022014809A1/ko
Publication of KR20220093740A publication Critical patent/KR20220093740A/ko
Application granted granted Critical
Publication of KR102463106B1 publication Critical patent/KR102463106B1/ko
Publication of KR102463106B9 publication Critical patent/KR102463106B9/ko

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M25/00Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
    • C12M25/14Scaffolds; Matrices
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B33ADDITIVE MANUFACTURING TECHNOLOGY
    • B33YADDITIVE MANUFACTURING, i.e. MANUFACTURING OF THREE-DIMENSIONAL [3-D] OBJECTS BY ADDITIVE DEPOSITION, ADDITIVE AGGLOMERATION OR ADDITIVE LAYERING, e.g. BY 3-D PRINTING, STEREOLITHOGRAPHY OR SELECTIVE LASER SINTERING
    • B33Y40/00Auxiliary operations or equipment, e.g. for material handling
    • B33Y40/20Post-treatment, e.g. curing, coating or polishing
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B33ADDITIVE MANUFACTURING TECHNOLOGY
    • B33YADDITIVE MANUFACTURING, i.e. MANUFACTURING OF THREE-DIMENSIONAL [3-D] OBJECTS BY ADDITIVE DEPOSITION, ADDITIVE AGGLOMERATION OR ADDITIVE LAYERING, e.g. BY 3-D PRINTING, STEREOLITHOGRAPHY OR SELECTIVE LASER SINTERING
    • B33Y70/00Materials specially adapted for additive manufacturing
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B33ADDITIVE MANUFACTURING TECHNOLOGY
    • B33YADDITIVE MANUFACTURING, i.e. MANUFACTURING OF THREE-DIMENSIONAL [3-D] OBJECTS BY ADDITIVE DEPOSITION, ADDITIVE AGGLOMERATION OR ADDITIVE LAYERING, e.g. BY 3-D PRINTING, STEREOLITHOGRAPHY OR SELECTIVE LASER SINTERING
    • B33Y80/00Products made by additive manufacturing
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/50Proteins
    • C12N2533/54Collagen; Gelatin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/70Polysaccharides
    • C12N2533/72Chitin, chitosan

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Manufacturing & Machinery (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드가 개시된다. 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드는 바이오 잉크 조성물로 제조된 삼차원 스캐폴드를 포함하되, 상기 삼차원 스캐폴드는, 복수의 제1스트럿들이 서로 이격하여, 제1방향으로 나란하게 배열된 제1 이차원 레이어; 상기 제1 이차원 레이어의 상부에 적층되며, 복수의 제2스트럿들이 서로 이격하여 상기 제1방향과 상이한 제2방향으로 나란하게 배열된 제2 이차원 레이어; 및 상기 제2 이차원 레어어의 상부에 적층되며, 복수의 제3스트럿들이 서로 이격하여 상기 제1방향으로 나란하게 배열된 제3 이차원 레이어를 포함하되, 상기 제3스트럿들은 상부에서 바라볼 때, 상기 제1스트럿들의 사이 영역에 배열된다.

Description

3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 및 이의 제조 방법{Culture bed for producing stem cell with 3D structure and method for manufacturing the culture bed}
본 발명은 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 및 이의 제조 방법에 관한 것이다.
삶의 질이 높아지고 인간의 생명연장의 꿈이 현실로 다가오면서 세포 담체를 만들어 이식함으로써 우리 몸의 손상된 조직 및 기능을 유지, 향상 또는 복원하려는 연구가 활발히 진행되고 있다. 이러한 조직 이식과 스캐폴드(Scaffold), 즉, 세포담체의 개발은 생체조직 공학의 발전에 따라 세포들이 3차원적으로 부착하고 배양될 수 있는 기능화된 조직을 제공하고 있다. 이러한 지지체는 세포가 부착, 분화 및 이동 가능하도록 다공화된 구조로 구성되고 있으며, 신체 내의 조직과 공존할 수 있는 셍체적합성 물질로 이뤄지며, 세포의 성장과 함께 지지체가 세포로 교체될 수 있도록 생분해적 성질을 갖추고 있어야 한다.
최근 생체조직 공학의 발달과 더불어 더욱 더 정교하고 조직적으로 세포담체를 제작하기 위한 여러 가지 기계 공학적 기술들이 사용되고 있다. CAD/CAM 기술은 생체내 대체하고자 하는 부분에 대해 필요한 모양으로 만들어지도록 형상의 설계를 용이하게 하고, 원하는 형상의 정보를 직접적으로 얻어내고, 이를 CAD 파일로 변환하여 세포담체 제작에 필요한 구조정보를 얻어내기도 한다. 이후 3D 바이오 프린터라 불리는 정밀한 압출기계 등을 이용해 다양한 생분해성 고분자 재료와 변환된 CAD 파일을 이용해 원하는 세포담체를 제작하게 된다.
종래의 천연 생체 고분자 키토산(Chitosan)과 알지네이트(Alginate)를 혼합하여 스펀지 형태로 제작된 세포담체는 두 가지 물질이 서로 혼합되어 제작된 세포담체로, 제조 방법이 복잡하고 조직 재생 및 기계적 강도의 한계가 있고 약물 전달 및 항생 역할을 수행하지 못하는 문제가 있다.
또한, 중화 키토산 스폰지, 중화 콜라겐 스폰지 또는 콜라겐 코팅된 중화 키토산 스폰지를 포함하여 이루어지는 세포 담체 또는 스캐폴드와, 이 세포 담체 또는 스캐폴드에 인체 섬유아세포 또는 각종 생체 활성 인자들이 부가되어 있는 세포 담체 또는 스캐폴드, 그리고 이들의 제조방법은, 산성 키토산 수용액을 동결 건조한 후, 알칼리 용액으로 중화하는 방법을 제공한다. 그러나, 이와 같이 제조된 세포 담체 또는 스캐폴드는 스폰지 형태로서, 공극이 불규칙적으로 형성되어 내부에 충분한 세포 부착 공간을 확보하기 어렵고, 세포이동과 증식에도 적절하지 않은 내부 구조를 가지고 있다.
종래의 세포에서 파생된 물질의 치료제 개발 및 연구는 세포의 제한적 수급으로 인해 많은 비용과 시간이 소요되었다. 따라서, 종래 방식을 탈피한 대량 배양 공정 개발 필요하며, 제한적 배양으로 인한 줄기세포 유래 물질의 제한적 수확에 따른 관련 제품 개발의 어려움을 극복할 수 있는 줄기세포 대량생산 배드가 필요하다.
본 발명은 줄기세포를 한번에 대량으로 배양할 수 있는 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 및 이의 제조방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 줄기세포에서 내뿜는 엑소좀을 대량으로 얻어낼 수 있는 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 및 이의 제조방법을 제공한다.
그러나, 본 발명이 해결하고자 하는 과제는 이상에서 언급한 것들로 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 과제들은 아래의 기재로부터 해당 분야 통상의 기술자에게 명확하게 이해될 수 있을 것이다.
본 발명에 따른 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드는 바이오 잉크 조성물로 제조된 삼차원 스캐폴드를 포함하되, 상기 삼차원 스캐폴드는, 복수의 제1스트럿들이 서로 이격하여, 제1방향으로 나란하게 배열된 제1 이차원 레이어; 상기 제1 이차원 레이어의 상부에 적층되며, 복수의 제2스트럿들이 서로 이격하여 상기 제1방향과 상이한 제2방향으로 나란하게 배열된 제2 이차원 레이어; 및 상기 제2 이차원 레어어의 상부에 적층되며, 복수의 제3스트럿들이 서로 이격하여 상기 제1방향으로 나란하게 배열된 제3 이차원 레이어를 포함하되, 상기 제3스트럿들은 상부에서 바라볼 때, 상기 제1스트럿들의 사이 영역에 배열된다.
또한, 상기 제3 이차원 레어어의 상부에 적층되며, 복수의 제4스트럿들이 서로 이격하여 상기 제2방향으로 나란하게 배열된 제4 이차원 레이어를 포함하되, 상기 제4스트럿들은 상부에서 바라볼 때, 상기 제2스트럿들의 사이 영역에 배열될 수 있다.
또한, 상기 삼차원 스캐폴드에는 상기 제1 스트럿들 내지 상기 제3스트럿들 사이에는 공극이 형성되며, 상기 공극들에 제공되는 파이버 형태의 고분자를 더 포함할 수 있다.
또한, 상기 제1 스트럿들 내지 상기 제3 스트럿들 각각의 직경은 10um 내지 2mm이고, 상기 파이버 형태의 고분자는 그 직경이 0.1um 내지 10um일 수 있다.
또한, 상기 바이오 잉크 조성물은 생분해성 물질, 생체활성 물질, 그리고 가교제를 포함하며, 상기 생분해성 물질은 천연 고분자, 합성 고분자, 그리고 이들의 혼합 물질 중에서 선택될 수 있다.
또한, 상기 제1 스트럿들 내지 상기 제3스트럿들의 표면은 고분자와 초순수가 혼합된 코팅액으로 코팅되며, 상기 고분자는 콜라겐, 알지네이트, 키토산, 그리고 젤라틴 중에서 선택되거나 부착 단백질과 성장 인자의 혼합물일 수 있다.
또한, 상기 제1 스트럿들 내지 상기 제3스트럿들의 표면은 플라스마 처리될 수 있다.
또한, 상기 삼차원 스캐폴드는 50mmX50mmX10mm 내지 200mmX200mmX200mm 크기를 가질 수 있다.
본 발명에 따른 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드의 제조 방법은 바이오 잉크 조성물을 출력하여 삼차원 스캐폴드를 제조하는 단계를 포함하되, 상기 삼차원 스캐폴드를 제조하는 단계는, 상기 바이도 잉크 조성물을 제1방향으로 출력하여 제1스트럿들이 서로 이격하여 나란하게 배열된 제1 이차원 레이어를 제조하는 단계; 상기 제1 이차원 레이어의 상부에 상기 바이도 잉크 조성물을 상기 제1방향과 상이한 제2방향으로 출력하여 제2스트럿들이 서로 이격하여 나란하게 배열된 제2 이차원 레이어를 제조하는 단계; 및 상기 제2 이차원 레이어의 상부에 상기 바이도 잉크 조성물을 상기 제1방향으로 출력하여 제3스트럿들이 서로 이격하여 나란하게 배열된 제3이차원 레이어 제조하는 단계를 포함하되, 상기 제3스트럿들은 상부에서 바라볼 때, 상기 제1스트럿들의 사이 영역에 배열될 수 있다.
또한, 상기 삼차원 스캐폴드를 제조하는 단계는, 상기 제3 이차원 레이어의 상부에 상기 바이도 잉크 조성물을 상기 제2방향으로 출력하여 제4스트럿들이 서로 이격하여 나란하게 배열된 제4이차원 레이어 제조하는 단계를 포함하되, 상기 제4스트럿들은 상부에서 바라볼 때, 상기 제2스트럿들의 사이 영역에 배열될 수 있다.
또한, 상기 제1 이차원 레이어 내지 상기 제3 이차원 레이어의 표면을 플라스마 처리하는 삼차원 스캐폴드 표면 처리 단계를 더 포함할 수 있다.
또한, 고분자와 초순수가 혼합된 코팅액을 상기 삼차원 스캐폴드의 표면에 코팅하는 코팅 단계; 및 상기 코팅액이 코팅된 삼차원 스캐폴드를 건조하는 건조 단계를 더 포함하되, 상기 삼차원 스캐폴드에는 상기 제1 이차원 레이어 내지 상기 제3 이차원 레이어 사이에 공극이 형성되며, 상기 건조 단계가 완료된 상기 제1 이차원 레이어 내지 상기 제3 이차원 레이어의 표면과 상기 공극에는 상기 고분자가 파이버 형태로 제공될 수 있다.
또한, 상기 코팅 단계는, 상기 고분자가 제1함량으로 혼합된 제1코팅액에 상기 삼차원 스캐폴드를 침지하는 1차 코팅 단계; 및 상기 1차 코팅 단계가 완료된 상기 삼차원 스캐폴드를 상기 고분자가 상기 제1함량보다 낮은 제2함량으로 혼합된 제2코팅액에 침지하는 2차 코팅 단계를 포함할 수 있다.
본 발명에 의하면, 이차원 레이어들이 적층된 삼차원 스캐폴드와 스터럿들의 사이 공극에 제공된 파이버 형태의 고분자들에 의하여, 줄기세포를 부착할 수 있는 표면적이 넓어지고, 줄기세포의 손실을 막고, 이동, 증식 등의 활성도를 높여 줄기세포의 대량배양이 가능하다.
또한, 본 발명에 의하면, 줄기세포에서 내뿜는 엑소좀을 대량으로 얻을 수 있다.
도 1은 본 발명의 실시 예에 따른 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 를 나타내는 사시도이다.
도 2는 도 1의 배양배드를 나타내는 정면도이다.
도 3은 도 1의 배양배드를 나타내는 우측면도이다.
도 4는 도 1의 배양배드의 일부를 확대하여 나타내는 도면이다.
도 5는 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드의 제조 방법을 설명하기 위한 순서도이다.
도 6은 본 발명의 실시 예에 따라 3D 바이오 프린터를 이용하여 스트럿을 출력하는 과정을 나타내는 도면이다.
도 7은 본 발명의 실시 예에 따라 제조된 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드를 나타내는 사진이다.
도 8은 도 7의 A영역을 확대하여 나타내는 사진이다.
도 9는 본 발명의 실시 예에 따른 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드에서 생산되는 엑소좀을 촬영한 사진이다.
도 10은 비교예에 따른 줄기세포 배양배드에서 생산되는 엑소좀을 촬영한 사진이다.
이하, 첨부된 도면들을 참조하여 본 발명의 바람직한 실시 예를 상세히 설명할 것이다. 그러나 본 발명의 기술적 사상은 여기서 설명되는 실시 예에 한정되지 않고 다른 형태로 구체화 될 수도 있다. 오히려, 여기서 소개되는 실시 예는 개시된 내용이 철저하고 완전해질 수 있도록 그리고 당업자에게 본 발명의 사상이 충분히 전달될 수 있도록 하기 위해 제공되는 것이다.
본 명세서에서, 어떤 구성요소가 다른 구성요소 상에 있다고 언급되는 경우에 그것은 다른 구성요소 상에 직접 형성될 수 있거나 또는 그들 사이에 제 3의 구성요소가 개재될 수도 있다는 것을 의미한다. 또한, 도면들에 있어서, 막 및 영역들의 두께는 기술적 내용의 효과적인 설명을 위해 과장된 것이다.
또한, 본 명세서의 다양한 실시 예 들에서 제1, 제2, 제3 등의 용어가 다양한 구성요소들을 기술하기 위해서 사용되었지만, 이들 구성요소들이 이 같은 용어들에 의해서 한정되어서는 안 된다. 이들 용어들은 단지 어느 구성요소를 다른 구성요소와 구별시키기 위해서 사용되었을 뿐이다. 따라서, 어느 한 실시 예에 제 1 구성요소로 언급된 것이 다른 실시 예에서는 제 2 구성요소로 언급될 수도 있다. 여기에 설명되고 예시되는 각 실시 예는 그것의 상보적인 실시 예도 포함한다. 또한, 본 명세서에서 '및/또는'은 전후에 나열한 구성요소들 중 적어도 하나를 포함하는 의미로 사용되었다.
명세서에서 단수의 표현은 문맥상 명백하게 다르게 뜻하지 않는 한 복수의 표현을 포함한다. 또한, "포함하다" 또는 "가지다" 등의 용어는 명세서상에 기재된 특징, 숫자, 단계, 구성요소 또는 이들을 조합한 것이 존재함을 지정하려는 것이지, 하나 또는 그 이상의 다른 특징이나 숫자, 단계, 구성요소 또는 이들을 조합한 것들의 존재 또는 부가 가능성을 배제하는 것으로 이해되어서는 안 된다. 또한, 본 명세서에서 "연결"은 복수의 구성 요소를 간접적으로 연결하는 것, 및 직접적으로 연결하는 것을 모두 포함하는 의미로 사용된다.
또한, 하기에서 본 발명을 설명함에 있어 관련된 공지 기능 또는 구성에 대한 구체적인 설명이 본 발명의 요지를 불필요하게 흐릴 수 있다고 판단되는 경우에는 그 상세한 설명은 생략할 것이다.
도 1은 본 발명의 실시 예에 따른 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 를 나타내는 사시도이고, 도 2는 도 1의 배양배드를 나타내는 정면도이고, 도 3은 도 1의 배양배드를 나타내는 우측면도이고, 도 4는 도 1의 배양배드의 일부를 확대하여 나타내는 도면이다.
도 1 내지 도 4를 참조하면, 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드(10)는 기계공학적 세포배양시스템을 통해 줄기세포를 한번에 대량 배양할 수 있다. 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드(10)는 삼차원 스캐폴드(100)와 고분자(200)를 포함한다.
삼차원 스캐폴드(100)는 바이오 잉크 조성물로 형성된 스트럿(strut, 111, 121, …)들이 이차원 레이어(110, 120, …) 상에 배열되고, 이차원 레이어(110, 120, …) 들이 적층되어 삼차원 구조체를 이룬다. 삼차원 스캐폴드(100)는 정육면체, 직육면체, 삼각뿔, 원기동, 구형 등 다양한 형태로 제공될 수 있다. 실시 예에 의하면, 삼차원 스캐폴드(100)는 50mmX50mmX10mm 내지 200mmX200mmX200mm 크기를 가질 수 있다. 그러나 삼차원 스캐폴드(100)의 크기는 이에 한정되지 않으며, 배양 세포의 종류와 배양 조건에 따라 다양하게 변경될 수 있다.
상기 바이오 잉크 조성물은 줄기세포의 부착, 증식, 인체 조직 세포(예컨대 골 세포, 연골 세포, 모유두 세포, 진피세포 등을 포함)로의 분화를 위한 것으로, 인장 특성, 높은 친수성 및 우수한 수분흡수 능력을 갖는 물리적 특성이 현저하게 개선된 삼차원 스캐폴드(100)를 제조할 수 있다. 바이오 잉크 조성물은 생분해성 물질, 생체활성 물질, 그리고 가교제를 포함한다.
상기 생분해성 물질은 단일중합체 또는 공중합체로 이루어지며, 외부 이력에 의한 유동성이 거의 없는 구조적으로 안정한 3 차원 네트워크 구조를 형성하는데, 이러한 구조는 공유결합, 수소결합, 반데르발스 결합 또는 물리적인 응집 등 여러 요인에 의해 형성된다.
일 실시 예에 따르면, 상기 생분해성 물질은 천연 고분자, 합성 고분자 또는 이 둘을 포함하는 것일 수 있다.
상기 천연 고분자는, 콜라겐(collagen), 알긴산(alginic acid), 알부민(albumin), 젤라틴(gelatin), 키토산(chitosan), 실크 피브로인(silk fibroin), 폴리펩타이드(polypeptide), 헤파린(hparin), 알지네이트(alginate), 덱스트란(dextran), 콘드로이틴 설페이트(chondroitin sulfate), 덱스트란 설페이트(dextran sulfate), 아카시아 검(acacia gum), 트라가칸친(tragacanthin), 펙틴(pectin), 구아검(guar gum), 히알루론산(Hyaluronic acid), 소듐카복시메틸덱스트란(Carboxymethyl dextran), 카르복시메틸셀룰로오스(Carboxymethyl cellulose), 펩타이드(peptide), 올리고 펩타이드(oligopeptide), 아가(agar), 카라기난(carrageenan), 갈락토만난(Galactomannans), 잔탄(Xanthan), 베타-사이클로덱스트린(Beta-Cyclodextrin), 아밀로즈(Amylose, 수용성 전분), 피브린(fibrin), 플루란(pullulan) 및 양성 전분(Tertiary amine starch ether)으로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 어느 하나를 포함하는 것일 수 있다.
상기 합성 고분자는, 폴리락트산(PLA), 폴리카프로락톤(PCL), 폴리글리콜산(PGA), 폴리(D, L-락트산-co-글리콜산)(poly(D,L-lactide-coglycolide; PLGA), 폴리(카프로락톤), 폴리(발레로락톤), 폴리(하이드록시부티레이트), 폴리(하이드록시 발러레이트), 폴리[(3-하이드록시부티레이트)-co-(3-하이드록시발러레이트)(PHBV), 폴리다이옥산온(PDO), 폴리[(L-락타이드)-co-(카프로락톤)], 폴리(에스테르우레탄)(PEUU), 폴리[(L-락타이드)-co-(D-락타이드)], 폴리[에틸렌-co-(비닐 알코올)](PVOH), 히드록시아파타이트(Hydroxyapatite; HA) 및 β트리칼슘 포스페이트(βphosphate; β로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 어느 하나를 포함하는 것일 수 있다.
상기 생분해성 물질은 상기 바이오 잉크 조성물 중 1 중량% 내지 100 중량%인 것일 수 있다. 바람직하게는, 상기 생분해성 물질은, 상기 바이오 잉크 조성물 중 1 중량% 내지 50 중량%, 더 바람직하게는, 1 중량% 내지 30 중량%인 것일 수 있다. 상기 생분해성 물질이 상기 바이오 잉크 조성물 중 1 중량% 미만인 경우 낮은 점도로 인해 프린팅 시 구조체 제작의 문제가 발생할 수 있고, 100 중량% 초과인 경우 생체활성 물질이 첨가되지 않는다.
상기 생분해성 물질이, 예를 들어, PCL, PLGA 등의 합성 고분자의 경우 100 중량%의 중량으로 토출하여 삼차원 스캐폴드(100)의 제작이 가능하다. 따라서, 천연 고분자와 합성 고분자를 통합할 경우, 생분해성 물질은 1 중량% 내지 100 중량%로 포함할 수 있다.
상기 생체활성 물질은, 성장인자, 단백질, 아미노산, 지질, 탄수화물, 당질, 핵산, 효소, 무기물, 호르몬, 항원, 약물, Fetal bovine serum(FBS) 포함된 배양배지 세포 및 세포외기질로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 어느 하나를 포함하는 것일 수 있다.
상기 성장인자는, 아드레노메둘린(Adrenomedullin), 앙기오포이에틴(Angiopoietin), 자가분비 운동성 인자(Autocrine motility factor), 골 형성 단백질(Bone morphogenetic proteins), 섬모 향신경성 인자(Ciliary neurotrophic factor), 백혈병억제인자(Leukemia inhibitory factor), 인터류킨-1(Interleukin-1), 인터류킨-2(Interleukin-2), 인터류킨-3(Interleukin-3), 인터류킨-4(Interleukin-4), 인터류킨-5(Interleukin-5), 인터류킨-6(Interleukin-6), 인터류킨-7(Interleukin-7), 집락자극인자(Colony-stimulating factors), 대식세포증식작즉인자(Macrophage colony-stimulating factor), 과립구집락자극인자(Granulocyte colony-stimulating factor), 과립구 대식세포 콜로니 자극 인자(Granulocyte macrophage colony-stimulating factor), 표피성장인자(Epidermal growth factor), 에프린 A1(Ephrin A1), 에프린 A2(Ephrin A2), 에프린 A3(Ephrin A3), 에프린 A4(Ephrin A4), 에프린 A5(Ephrin A5), 에프린B1(Ephrin B1), 에프린 B2(Ephrin B2), 에프린 B3(Ephrin B3), 에리스로포이에틴(Erythropoietin), 섬유아세포성장촉진인자 1~23(Fibroblast growth factor 1~23), 소 성장 촉진 호르몬(Bovine somatotrophin), 신경 아교 세포계 유도 신경영양 인자(Glial cell line-derived neurotrophic factor), 뉴투린(Neurturin), 페르세핀(Persephin), 아르테민(Artemin), 성장분화인자(Growth differentiation factor-9), 간세포 성장 인자(Hepatocyte growth factor), 간암유래 성장인자(Hepatoma-derived growth factor) 인슐린(Insulin), 인슐린유사성장인자(Insulin-like growth factors), 인슐린유사성장인자-1(Insulin-like growth factor-1), 인슐린유사성장인자-2(Insulin-like growth factor-2), 인터류킨(Interleukins), 각질세포 증식인자(Keratinocyte growth factor), 세포이동 자극인자(Migration-stimulating factor), 과립구대식세포 증식인자(Macrophagestimulating protein), 마이오스타틴(Myostatin), 뉴레귤린 1~4(Neuregulin 1~4), 뉴로트로핀(Neurotrophins), 뇌유래신경영양인자(Brain-derived neurotrophic factor), 신경성장인자(Nerve growth factor), 뉴로트로핀 3(Neurotrophin-3), 뉴로트로핀 4(Neurotrophin-4), 태반 형성 인자(Placental growth factor), 레날라제(Renalase), T세포성장인자(T-cell growth factor), 트롬보포이에틴(Thrombopoietin), 형질전환생장인자(Transforming growth factor), 형질전환생장인자 알파(Transforming growth factor alpha), 형질전환생장인자베타(Transforming growth factor beta), 종양 괴사 인자 알파(Tumor necrosis factor-alpha), 혈관내피성장인자(Vascular endothelial growth factor) 및 wnt 신호전달경로(Wnt Signaling Pathway)로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 어느 하나를 포함하는 것일 수 있다.
상기 생체활성 물질은, 상기 바이오 잉크 조성물 중 0.0001 중량% 내지 50 중량%인 것일 수 있다. 상기 성장인자가 상기 바이오 잉크 조성물 중 0.0001 중량% 미만인 경우 성장인자가 타깃조직에 미치는 영향이 미미해 비활성화가 될 수 있고, 50 중량% 초과인 경우 바이오 잉크 조성물의 제작의 어려움과 더불어 세포의 성장이 비 정상적이거나 유전자 변형이 생겨 화학적 및 생화학적 자극 요소로 세포의 생장 및 특정 조직으로의 분화가 활성화돼 비정상적일 수 있다.
일 실시형태에 따르면, 상기 가교제는, 탄닉에시드(tannic acid), 제니핀(genipin), 트랜스글루타미나제 ((Moo Gloo TI) Transglutaminase), 에틸디메틸아미노프로필카르보디이미드[1-ethyl-3(3-dimethyl aminopropyl) carbodiimide; EDC], 하이드록시석신이미드(N-hydroxysuccinimide; NHS), 디메틸아미노프로필에틸카르보디이미드하이드로클로라이드(dimethylaminopropyl ethylcarbodiimide hydrochloride; EDAC), 하이드록시벤조트리아졸(hydroxybenzotriazole) 및 글루타알데하이드(Glutaraldehyde)로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 어느 하나를 포함하는 것일 수 있다.
상기 가교제는, 상기 바이오 잉크 조성물 중 0.00001 중량% 내지 30 중량%인 것일 수 있다. 상기 가교제가 상기 바이오 잉크 조성물 중 0.00001 중량% 미만인 경우 3 차원 스캐폴드 제조 시 기계적 물성, 형상구현 및 형상유지를 지속적으로 할 수 없는 문제가 있을 수 있고, 30 중량% 초과인 경우 가교제의 독성으로 인해 줄기세포 배양배드로서 사용하기 어려운 문제가 있을 수 있다.
상기 스트럿(111, 121, …)은 3D 바이오 프린터(300)를 이용하여 바이오 잉크 조성물로 형성된다. 실시 예에 의하면, 3D 바이오 프린터(300)에서 출력되는 스트럿(111, 121, …)의 직경이 10um 내지 2mm일 수 있다. 상기 스트럿(111, 121, …)은 XY 평면으로 제공되는 이차원 레이어(110, 120, …) 상에서 기 설정된 방향으로 복수의 열로 출력된다. 그리고 상기 스트럿(111, 121, …)은 Z축 방향으로 복수의 이차원 레이어(110, 120, …) 상에서 기 설정된 방향으로 복수의 열로 출력된다.
이에 의해, 삼차원 스캐폴드(100)는 Z축 방향으로 복수의 이차원 레이어(110, 120, …)들이 적층된 삼차원 구조체를 이루며, 각각의 이차원 레이어(110, 120, …) 상에는 스트럿(111, 121, …)이 복수의 열로 배열된다. 그리고 스트럿(111, 121, …)들의 배열 방향은 각각의 이차원 레이어(110, 120, …)마다 상이할 수 있다.
실시 예에 의하면, 제1 이차원 레이어(110)는 복수의 제1스트럿(111)들이 서로 이격하여 제1방향으로 나란하게 배열된다.
제2 이차원 레이어(120)는 제1 이차원 레이어(110)의 상부에 적층되며, 복수의 제2스트럿(121)들이 서로 이격하여 제1방향과 상이한 제2방향으로 나란하게 배열될 수 있다. 제1방향은 X축 방향일 수 있고, 제2방향은 Y축 방향일 수 있다. 이와 달리, 제1방향은 X축 방향일 수 있고, 제2방향은 X축 방향에 소정 각도로 경사진 방향일 수 있다.
제3 이차원 레이어(130)는 제2 이차원 레이어(120)의 상부에 적층되며, 복수의 제3스트럿(131)들이 서로 이격하여 제1방향으로 나란하게 배열될 수 있다. 제3스트럿(131)들은 상부에서 바라볼 때, 제1스트럿(111)으로부터 소정 거리 오프셋(offset)되어 위치한다. 실시 예에 의하면, 제3스트럿(131)들 각각은 제1스트럿(111)들의 사이 영역에 위치한다.
제4 이차원 레이어(140)는 제3 이차원 레이어(130)의 상부에 적층되며, 복수의 제4스트럿(131)들이 서로 이격하여 제2방향으로 나란하게 배열될 수 있다. 제4스트럿(141)들은 상부에서 바라볼 때, 제2스트럿(121)으로부터 소정 거리 오프셋(offset)되어 위치한다. 실시 예에 의하면, 제4스트럿(141)들 각각은 제2스트럿(121)들의 사이 영역에 위치한다.
제5 이차원 레이어(150)는 제4 이차원 레이어(140)의 상부에 적층되며, 복수의 제5스트럿(151)들이 서로 이격하여 제1방향으로 나란하게 배열될 수 있다. 제5스트럿(151)들은 상부에서 바라볼 때, 제3스트럿(131)으로부터 소정 거리 오프셋(offset)되어 제3스트럿(131)들의 사이 영역에 위치한다. 일 실시 예에 의하면, 제5스트럿(151)들 각각은 제1스트럿(111)들과 동일 선상에 위치할 수 있다. 다른 실시 예에 의하면, 제5스트럿(151)들 각각은 제1스트럿(111)들 및 제3스트럿(131)들 각각으로부터 오프셋되어, 제1스트럿(111)과 제3스트럿(131) 사이 영역에 위치할 수 있다.
제6 이차원 레이어(160)는 제5 이차원 레이어(150)의 상부에 적층되며, 복수의 제6스트럿(161)들이 서로 이격하여 제2방향으로 나란하게 배열될 수 있다. 제6스트럿(161)들은 상부에서 바라볼 때, 제4스트럿(141)으로부터 소정 거리 오프셋(offset)되어 제4스트럿(141)들의 사이 영역에 위치한다. 일 실시 예에 의하면, 제6스트럿(161)들 각각은 제2스트럿(121)들과 동일 선상에 위치할 수 있다. 다른 실시 예에 의하면, 제6스트럿(161)들 각각은 제2스트럿(121)들 및 제4스트럿(141)들 각각으로부터 오프셋되어, 제2스트럿(121)과 제4스트럿(141) 사이 영역에 위치할 수 있다.
상술한 과정으로 복수의 이차원 레이어(110, 120, …)들이 적층되어 삼차원 구조체를 형성한다. 즉, 홀수 층의 이차원 레이어(110, 130, …)들은 스트럿(111, 131, …)들이 제1방향으로 나란하게 배열되고, 바로 아래의 홀수 층의 스트럿들 사이 영역에 위치한다. 그리고 짝수 층의 이차원 레이어(120, 140, …)들은 스트럿(121, 141, …)들이 제2방향으로 나란하게 배열되고, 바로 아래의 짝수 층의 스트럿들 사이 영역에 위치한다.
상술한 구조의 삼차원 스캐폴드(100)에는 인접한 스트럿(111, 121, …)들 사이에 공극(11)이 형성된다. 실시 예에 의하면, 공극(11)은 그 크기가 1 ㎛ 내지 3mm이고, 공극율(porosity)이 1 % 내지 99 %이고, 투과율(tortuosity)이 1 % 내지 99 %이고, 굴곡율(permeability)이 1 % 내지 99 %일 수 있다.
고분자(200)는 삼차원 스캐폴드(100)의 표면에 코팅되고, 공극(11)들 내에 제공된다. 고분자(200)는 파이버 형태로, 스트럿(111, 121, …)과 동일하거나 작은 직경을 가질 수 있다. 실시 예에 의하면, 고분자(200)는 0.1um 내지 10um의 직경을 가질 수 있다. 일 실시 예에 의하면, 고분자(200)는 천연 고분자일 수 있다. 상기 고분자(200)는 콜라겐, 알지네이트, 키토산, 그리고 젤라틴 중에서 선택되거나 부착 단백질과 성장 인자의 혼합물일 수 있다. 부착 단백질은 생체 활성 물질에 사용되는 단백질과 동일할 수 있다.
파이버 형태의 고분자(200)는 삼차원 스캐폴드(100)의 표면과 공극(11)들 내에서 그물망 형태로 배열되어, 줄기세포가 부착될 수 있는 표면적을 넓혀 줄기세포의 삼차원 배양이 가능하게 한다. 또한, 고분자(200)는 공극(11)들로 인한 줄기세포의 손실을 최소화한다.
이하 상술한 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드(10)의 제조 방법에 대해 자세하게 설명한다.
도 5는 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드의 제조 방법을 설명하기 위한 순서도이다.
도 5를 참조하면, 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드의 제조 방법은 바이오 잉크 조성물을 준비하는 단계(S10), 삼차원 스캐폴드 출력 단계(S20), 삼차원 스캐폴드 경화 단계(S30), 삼차원 스캐폴드 표면 처리 단계(S40), 코팅 단계(S50), 그리고 건조 단계(S60)를 포함한다.
바이오 잉크 조성물 준비 단계(110)는 상술한 바이오 잉크 조성물을 준비한다. 상기 바이오 잉크 조성물을 준비하는 단계는, 생분해성 물질을 준비하는 단계, 생분해성 물질을 투석하는 단계, 투석된 생분해성 물질을 원심분리하는 단계, 그리고 원심분리된 생분해성 물질에 생체활성 물질 및 가교제를 혼합하는 단계를 포함한다.
상기 생분해성 물질 준비 단계는, 상기에서 설명한 생분해성 물질을 준비하는 단계이다. 구체적인 생분해성 물질의 종류는 상술하였으므로, 중복 기재는 생략하기로 한다.
상기 생분해성 물질을 DPBS(Dulleco's phosphatebuffer)을 넣고 40 ℃ 내지 60 ℃의 온도에서 30 분 내지 3 시간 동안 녹여준 다음, 생분해성 물질-DPBS 용액에 메타크릴릭 무수물(Methacrylic anhydride)을 혼합하여 2 시간 내지 4 시간 동안 반응을 진행시키는 것일 수 있다.
상기 생분해성 물질 투석 단계는, 반응이 진행된 불투명한 용액을 처음 넣어준 DBPS 용액의 3 배 내지 5 배 넣어 반응을 종결시킨 후 투석 튜브(Dialysis tubing)에 나눠 담은 후 30 ℃ 내지 50 ℃에서 DI water를 사용하여 일주일간 투석(dialyze)하는 것일 수 있다.
상기 생분해성 물질 원심분리 단계는, 투석된 용액을 원심 분리시키는 것일 수 있다. 원심분리 시킨 후 동결 건조하는 것일 수 있다.
상기 성장인자 및 가교제 혼합 단계는, 원심분리시킨 생분해성 물질에 성장인자 및 가교제를 혼합하는 것일 수 있다. 구체적인 성장인자 및 가교제의 종류는 상술하였으므로, 중복 기재는 생략하기로 한다. 또한, 실란-표면 개질된 실리카 입자를 더 포함할 수도 있다.
삼차원 스캐폴드 출력 단계(S10)는 3D 바이오 프린터를 이용하여 바이오 잉크 조성물로 스트럿(111, 121, …) 들을 출력한다.
도 6은 본 발명의 실시 예에 따라 3D 바이오 프린터를 이용하여 스트럿을 출력하는 과정을 나타내는 도면이다.
도 1 및 도 6을 참조하면, 3D 바이오 프린터(300)는 노즐(310)과 스테이지(320)를 포함하며, 노즐(310)에서 바이오 잉크 조성물이 스테이지(320)에 스트럿(111, 121, …)으로 출력된다.
스테이지(320)는 상온에서부터 극저온까지 온도를 유지할 수 있다. 상기 극저온은 0℃ 내지 -100℃, 바람직하게는, 0℃ 내지 -90℃, 또는 0℃ 내지 -80℃, 또는 0℃ 내지 -70℃, 또는 0℃ 내지 -60℃, 또는 0℃ 내지 -50℃, 또는 0℃ 내지 -40℃, 또는 0℃ 내지 -30℃, 또는 0℃ 내지 -20℃, 또는 0℃ 내지 -10℃의 온도일 수 있다. 노즐(310)에서 출력되는 바이오 잉크 조성물은 스테이지(320) 상에서 냉각된다.
노즐(310)은 0.1 mm/s 내지 20 mm/s의 이동속도 및 0.001 MPa 이상; 0.1 내지 2 MPa; 또는 0.3 내지 1 MPa; 또는 0.3 내지 0.5 MPa의 압력으로 바이오 잉크 조성물을 출력할 수 있다.
삼차원 스캐폴드 출력 단계(S20)는 노즐(310)이 바이오 잉크 조성물을 출력하면서 제1방향으로 반복 이동하여 제1스트럿(111)들이 서로 이격하여 제1방향으로 나란하게 배열된 제1 이차원 레이어(110)를 제조한다. 그리고 노즐(310)이 제1 이차원 레이어(110) 상부에 바이오 잉크 조성물을 출력하면서 상기 제1방향과 상이한 제2방향으로 반복 이동하여 제2스트럿(121)들이 서로 이격하여 제2방향으로 나란하게 배열된 제2 이차원 레이어(120)를 제조한다. 또한 노즐(310)은 제2 이차원 레이어(120) 상에 제3스트럿(131)들이 서로 이격하여 제1방향으로 나란하게 배열된 제3 이차원 레이어(130)를 제조하고, 제3 이차원 레이어(130)상에 제4스트럿(141)들이 서로 이격하여 제2방향으로 나란하게 배열된 제4 이차원 레이어(140)를 제조한다. 상부에서 바라볼 때, 제3스트럿(131)들 각각은 제1스트럿(111)들의 사이 영역에 위치하고, 제4스트럿(141)들 각각은 제2스트럿(121)들의 사이 영역에 위치한다.
또한, 노즐(310)은 제4 이차원 레이어(140) 상에 제5스트럿(151)들이 서로 이격하여 제1방향으로 나란하게 배열된 제5 이차원 레이어(150)를 제조하고, 제5 이차원 레이어(150)상에 제6스트럿(161)들이 서로 이격하여 제2방향으로 나란하게 배열된 제6 이차원 레이어(160)를 제조한다.
일 실시 예에 의하면, 상부에서 바라볼 때, 제5스트럿(151)들 각각은 제3스트럿(131)들의 사이 영역에 위치하고, 제1스트럿(111)들과 동일 선상에 위치할 수 있다. 그리고 제6스트럿(161)들 각각은 제4스트럿(141)들의 사이 영역에 위치하고, 제2스트럿(121)들과 동일 선상에 위치할 수 있다.
다른 실시 예에 의하면, 상부에서 바라볼 때, 제5스트럿(151)들 각각은 제1스트럿(111) 및 제3스트럿(131)들에 대해 각각 오프셋되어 제1스트럿(111)과 제3스트럿(131) 사이 영역에 위치할 수 있다. 그리고 제6스트럿(161)들 각각은 제2스트럿(121) 및 제4스트럿(141)들에 대해 각각 오프셋되어 제2스트럿(121)과 제4스트럿(141) 사이 영역에 위치할 수 있다.
이러한 이차원 레이어(110, 120, …)의 형성은 삼차원 스캐폴드(100)의 목표 높이에 따라 반복될 수 있다. 삼차원 스캐폴드(100)는 각각의 이차원 레이어(110, 120, …)에서 스트럿(111, 121, …)들이 이격 배열되고, 배열 방향이 상이하므로, 인접한 스트럿(111, 121, …)들 사이에 공극(11)이 형성된다.
삼차원 스캐폴드 경화 단계(S30)는 3D 바이오 프린터(300)에서 출력된 삼차원 스캐폴드를 경화시킨다.
일 실시 예에 의하면, 삼차원 스캐폴드를 이루는 바이오 잉크 조성물에 광 경화제가 포함되는 경우, 광 경화 방식으로 삼차원 스캐폴드를 경화시킬 수 있다. 이 경우, 삼차원 스캐폴드 경화 단계(S30)는 UV, 가시광 및 레이저로 이루어진 군에서 선택되는 적어도 어느 하나의 광을 조사하여 삼차원 스캐폴드를 경화할 수 있다. 실시 예에 따르면, 삼차원 스캐폴드 경화 단계(S30)는 365 nm 및 405 nm 파장에서 30 초 내지 48 시간 동안 수행될 수 있다.
다른 실시 예에 의하면, 삼차원 스캐폴드를 이루는 바이오 잉크 조성물에 광 경화제가 포함되지 않을 경우, 상기 광 경화 방식 이외의 방법으로 삼차원 스캐폴드를 경화시킬 수 있다.
삼차원 스캐폴드 표면 처리 단계(S40)는 경화가 완료된 삼차원 스캐폴드의 표면을 플라스마 처리한다. 플라스마 표면 처리로, 삼차원 스캐폴드의 표면은 친수성을 띄어 세포의 초기 부착과 생장에 유리하다. 또한, 플라스마 표면 처리는 삼차원 스캐폴드 표면을 멸균한다.
삼차원 스캐폴드 표면 처리 단계(S40)는 저주파 플라즈마, 고주파 플라즈마 또는 이 둘을 이용할 수 있다. 실시 예에 의하면, 플라즈마 전력은 0.1 W 내지 100 W이고, 플라즈마 처리시간은 1 초 내지 12 시간이고, 가스 플로우는 1 sccm 내지 100 sccm이고, 가스 종류는 산소, 염소, 질소 및 아르곤으로 이루어진 군으로부터 선택되는 적어도 어느 하나를 포함하는 것일 수 있다. 가스 종류는 이외에도 대기 중의 모든 종류의 가스를 사용할 수 있다.
코팅 단계(S50)는 플라스마 처리가 완료된 삼차원 스캐폴드에 코팅액을 코팅한다. 일 예에 의하면, 코팅 단계(S50)는 삼차원 스캐폴드를 코팅액에 침지시킨다. 코팅액은 고분자와 초순수가 혼합된 용액이다. 실시 예에 의하면, 코팅액에는 고분자가 0.001중량% 내지 2중량% 함량으로 혼합될 수 있다. 상기 고분자(200)는 콜라겐, 알지네이트, 키토산, 그리고 젤라틴 중에서 선택되거나 부착 단백질과 성장 인자의 혼합물일 수 있다.
코팅 단계(S50)는 1차 코팅 단계(S51)와 2차 코팅 단계(S52)가 순차적으로 진행될 수 있다. 1차 코팅 단계(S51)는 고분자가 제1함량으로 혼합된 제1코팅액에 삼차원 스캐폴드를 침지하고, 2차 코팅 단계(S52)는 고분자가 제1함량보다 낮은 량으로 혼합된 제2코팅액에 삼차원 스캐폴드를 침지시킨다. 실시 예에 의하면, 제1함량은 2중량%이고, 제2함량은 0.001중량% 일 수 있다.
코팅 단계(S50)가 완료되면, 삼차원 스캐폴드의 표면에 코팅액이 코팅되고 공극 내에 코팅액이 수용된다.
건조 단계(S60)를 코팅액이 수용된 삼차원 스캐폴드를 냉동 건조한다. 실시 예에 의하면, 건조 단계는 -100℃ 내지 -10℃ 온도에서 6시간 내지 100시간 동안 진행될 수 있다. 일 예에 의하면, 건조 단계는 -80℃ 온도에서 72시간 동안 진행될 수 있다. 건조 단계(S60)가 완료되면, 코팅액에 포함된 초순수가 증발하고 삼차원 스캐폴드의 표면은 고분자로 코팅되고, 공극 내에는 고분자가 파이버 형태로 스트럿(111, 112, 113)들의 가교 역할을 한다.
도 7은 본 발명의 실시 예에 따라 제조된 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드를 나타내는 사진이고, 도 8은 도 7의 A영역을 확대하여 나타내는 사진이다. 본 실시 예에서는 고분자로 콜라겐이 사용되었다.
도 7 및 도 8을 참조하면, 제1스트럿(111)과 제2스트럿(112)이 서로 상이한 방향으로 배열되고, 제3스트럿(113)이 제1스트럿(111)으로부터 오프셋되고 제1스트럿(111)과 동일한 방향으로 배열된다. 제1 내지 제3스트럿(111, 112, 113)들 사이에는 공극(11)이 형성되고, 공극(11)에는 콜라겐(200)이 파이버 형태로 위치하는 것을 확인할 수 있다. 콜라겐(200)은 제1 내지 제3스트럿(111, 112, 113)들의 가교 역할을 한다.
상술한 바와 같이, 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드는 스트럿들이 서로 상이한 방향으로 적층되고, 동일한 방향으로 배열된 스트럿들은 다른 이차원 레이어의 스트럿들과 오프셋되어 배열되므로, 삼차원 스캐폴드의 표면적이 증대되고, 공극이 조밀하게 형성된다. 이로 인해 공극들 내에는 콜라겐이 조밀하게 채워질 수 있다.
도 9는 본 발명의 실시 예에 따른 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 에서 생산되는 엑소좀을 촬영한 사진이고, 도 10은 비교예에 따른 줄기세포 배양배드에서 생산되는 엑소좀을 촬영한 사진이다. 비교예에 따른 줄기세포 배양배드는 XY평면상의 2차원 배양배드가 사용되었다. 도 9 및 도 10의 사진에서 밝은 영역(EX1, EX2)이 엑소좀을 나타낸다.
도 9 및 도 10을 참조하면, 배양배드에는 줄기세포가 부착되어 배양되며, 줄기세포에서 내뿜는 엑소좀을 생산할 수 있다. 본 발명에 따른 배양배드에서는 1.96X1011Particles/mL의 소포체가 생산되는 반면, 비교예에 따른 배양배드에서는 4.36X108Particles/mL의 소포체가 생산되는 것을 확인할 수 있다.
이는 삼차원 스캐폴드 내에 형성된 콜라겐 파이버가 줄기 세포의 손실을 최소화하고, 줄기 세포가 초기에 부착할 수 있는 표면적을 넓히고, 줄기 세포의 이동, 증식 등의 활성화를 높여 한 번에 많은 수의 줄기 세포 배양을 가능하게 하였고, 이로 인해 줄기세포에서 내뿜는 엑소좀 또한 대량으로 얻어낼 수 있게 된 결과라고 판단된다. 본 발명에 따른 방법으로 줄기 세포를 배양했을 경우, 비교예에 비해 최대 500배 이상으로 엑소좀 생산수율이 향상됨을 확인할 수 있다.
이상, 본 발명을 바람직한 실시 예를 사용하여 상세히 설명하였으나, 본 발명의 범위는 특정 실시 예에 한정되는 것은 아니며, 첨부된 특허청구범위에 의하여 해석되어야 할 것이다. 또한, 이 기술분야에서 통상의 지식을 습득한 자라면, 본 발명의 범위에서 벗어나지 않으면서도 많은 수정과 변형이 가능함을 이해하여야 할 것이다.
10: 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드
100: 삼차원 스캐폴드
110, 120, …: 이차원 레이어
111, 121, …: 스트럿
200: 고분자

Claims (13)

  1. 바이오 잉크 조성물로 제조된 삼차원 스캐폴드를 포함하되,
    상기 삼차원 스캐폴드는,
    복수의 제1스트럿들이 서로 이격하여, 제1방향으로 나란하게 배열된 제1 이차원 레이어;
    상기 제1 이차원 레이어의 상부에 적층되며, 복수의 제2스트럿들이 서로 이격하여 상기 제1방향과 상이한 제2방향으로 나란하게 배열된 제2 이차원 레이어; 및
    상기 제2 이차원 레이어의 상부에 적층되며, 복수의 제3스트럿들이 서로 이격하여 상기 제1방향으로 나란하게 배열된 제3 이차원 레이어를 포함하되,
    상기 제3스트럿들은 상부에서 바라볼 때, 상기 제1스트럿들의 사이 영역에 배열되는 3차원 구조를 갖되,
    상기 삼차원 스캐폴드에는 상기 제1 스트럿들 내지 상기 제3스트럿들 사이에는 공극이 형성되며,
    상기 공극들에 제공되는 파이버 형태의 고분자를 더 포함하되,
    파이버 형태의 상기 고분자는 상기 삼차원 스캐폴드의 표면을 플라즈마 처리한 후, 초순수에 콜라겐인 고분자가 2중량%로 혼합된 제1코팅액에 상기 삼차원 스캐폴드를 침지한 후, 상기 삼차원 스캐폴드를 초순수에 콜라겐인 고분자가 0.001중량%로 혼합된 제2코팅액에 침지한 후 상기 공극 내에 코팅액이 수용된 상태로 냉동 건조를 수행하여 형성되는 줄기세포 배양배드.
  2. 제 1 항에 있어서,
    상기 제3 이차원 레이어의 상부에 적층되며, 복수의 제4스트럿들이 서로 이격하여 상기 제2방향으로 나란하게 배열된 제4 이차원 레이어를 포함하되,
    상기 제4스트럿들은 상부에서 바라볼 때, 상기 제2스트럿들의 사이 영역에 배열되는 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드.
  3. 삭제
  4. 제 1 항에 있어서,
    상기 제1 스트럿들 내지 상기 제3 스트럿들 각각의 직경은 10um 내지 2mm이고, 상기 파이버 형태의 고분자는 그 직경이 0.1um 내지 10um인 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드.
  5. 제 1 항에 있어서,
    상기 바이오 잉크 조성물은 생분해성 물질, 생체활성 물질, 그리고 가교제를 포함하며,
    상기 생분해성 물질은 천연 고분자, 합성 고분자, 그리고 이들의 혼합 물질 중에서 선택되는 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드.
  6. 삭제
  7. 삭제
  8. 제 1 항에 있어서,
    상기 삼차원 스캐폴드는 50mmX50mmX10mm 내지 200mmX200mmX200mm 크기를 가지는 줄기세포 배양 배드.
  9. 바이오 잉크 조성물을 출력하여 삼차원 스캐폴드를 제조하는 단계;
    제1 이차원 레이어 내지 제3 이차원 레이어의 표면을 플라스마 처리하는 삼차원 스캐폴드 표면 처리 단계;
    고분자와 초순수가 혼합된 코팅액을 상기 삼차원 스캐폴드의 표면에 코팅하는 코팅 단계; 및
    상기 코팅액이 코팅된 삼차원 스캐폴드를 건조하는 건조 단계를 포함하되,
    상기 삼차원 스캐폴드를 제조하는 단계는,
    상기 바이오 잉크 조성물을 제1방향으로 출력하여 제1스트럿들이 서로 이격하여 나란하게 배열된 제1 이차원 레이어를 제조하는 단계;
    상기 제1 이차원 레이어의 상부에 상기 바이오 잉크 조성물을 상기 제1방향과 상이한 제2방향으로 출력하여 제2스트럿들이 서로 이격하여 나란하게 배열된 제2 이차원 레이어를 제조하는 단계; 및
    상기 제2 이차원 레이어의 상부에 상기 바이오 잉크 조성물을 상기 제1방향으로 출력하여 제3스트럿들이 서로 이격하여 나란하게 배열된 제3이차원 레이어 제조하는 단계를 포함하되,
    상기 제3스트럿들은 상부에서 바라볼 때, 상기 제1스트럿들의 사이 영역에 배열되고,
    상기 삼차원 스캐폴드에는 상기 제1 이차원 레이어 내지 상기 제3 이차원 레이어 사이에 공극이 형성되며,
    상기 건조 단계가 완료된 상기 제1 이차원 레이어 내지 상기 제3 이차원 레이어의 표면과 상기 공극에는 상기 고분자가 파이버 형태로 제공되고,
    상기 코팅 단계는,
    콜라겐인 상기 고분자가 2중량%로 혼합된 제1코팅액에 상기 삼차원 스캐폴드를 침지하는 1차 코팅 단계; 및
    상기 1차 코팅 단계가 완료된 상기 삼차원 스캐폴드를 콜라겐인 상기 고분자가 0.001중량%로 혼합된 제2코팅액에 침지하는 2차 코팅 단계를 포함하는 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드의 제조 방법.
  10. 제 9 항에 있어서,
    상기 삼차원 스캐폴드를 제조하는 단계는,
    상기 제3 이차원 레이어의 상부에 상기 바이오 잉크 조성물을 상기 제2방향으로 출력하여 제4스트럿들이 서로 이격하여 나란하게 배열된 제4이차원 레이어 제조하는 단계를 포함하되,
    상기 제4스트럿들은 상부에서 바라볼 때, 상기 제2스트럿들의 사이 영역에 배열되는 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드의 제조 방법.
  11. 삭제
  12. 삭제
  13. 삭제
KR1020200184770A 2020-07-14 2020-12-28 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 및 이의 제조 방법 KR102463106B1 (ko)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020200184770A KR102463106B1 (ko) 2020-12-28 2020-12-28 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 및 이의 제조 방법
PCT/KR2021/001999 WO2022014809A1 (ko) 2020-07-14 2021-02-17 엑소좀 대량생산용 3차원 세포 배양배드 및 이의 제조 방법

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020200184770A KR102463106B1 (ko) 2020-12-28 2020-12-28 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 및 이의 제조 방법

Publications (3)

Publication Number Publication Date
KR20220093740A KR20220093740A (ko) 2022-07-05
KR102463106B1 true KR102463106B1 (ko) 2022-11-03
KR102463106B9 KR102463106B9 (ko) 2023-04-12

Family

ID=82401916

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020200184770A KR102463106B1 (ko) 2020-07-14 2020-12-28 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 및 이의 제조 방법

Country Status (1)

Country Link
KR (1) KR102463106B1 (ko)

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2008101001A2 (en) * 2007-02-13 2008-08-21 3D Biotek, Llc Three dimensional cell culture construct and apparatus for its making
JP2009000100A (ja) * 2007-05-23 2009-01-08 Mitsubishi Rayon Co Ltd 細胞培養用足場材料、その製造方法、細胞培養用モジュール
KR101130239B1 (ko) * 2011-02-24 2012-03-26 홍국선 세포배양용 격자형 지지체 및 그 제조방법
JP2014519843A (ja) * 2011-06-23 2014-08-21 ナショナル チェン クン ユニバーシティー 接着性細胞組織ゲル

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2008101001A2 (en) * 2007-02-13 2008-08-21 3D Biotek, Llc Three dimensional cell culture construct and apparatus for its making
JP2009000100A (ja) * 2007-05-23 2009-01-08 Mitsubishi Rayon Co Ltd 細胞培養用足場材料、その製造方法、細胞培養用モジュール
KR101130239B1 (ko) * 2011-02-24 2012-03-26 홍국선 세포배양용 격자형 지지체 및 그 제조방법
JP2014519843A (ja) * 2011-06-23 2014-08-21 ナショナル チェン クン ユニバーシティー 接着性細胞組織ゲル

Also Published As

Publication number Publication date
KR20220093740A (ko) 2022-07-05
KR102463106B9 (ko) 2023-04-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Khorshidi et al. A review of key challenges of electrospun scaffolds for tissue‐engineering applications
Ratheesh et al. 3D fabrication of polymeric scaffolds for regenerative therapy
Wang et al. 3D bioprinting in cardiac tissue engineering
Kitsara et al. Fibers for hearts: A critical review on electrospinning for cardiac tissue engineering
Ercolani et al. Vascular tissue engineering of small‐diameter blood vessels: reviewing the electrospinning approach
Stratton et al. Bioactive polymeric scaffolds for tissue engineering
Weekes et al. Biofabrication of small diameter tissue-engineered vascular grafts
Pandey et al. Chitosan: Application in tissue engineering and skin grafting
Woodruff et al. The return of a forgotten polymer—Polycaprolactone in the 21st century
Liu et al. Design and development of three-dimensional scaffolds for tissue engineering
Rocco et al. In vivo applications of electrospun tissue-engineered vascular grafts: a review
Silvestri et al. Biomimetic materials and scaffolds for myocardial tissue regeneration
Liu et al. Development of biodegradable scaffolds for tissue engineering: a perspective on emerging technology
CN112384168A (zh) 2d和3d生物支架细胞外结构单元和组织结构设计及制造方法
Koyyada et al. Recent advancements and associated challenges of scaffold fabrication techniques in tissue engineering applications
KR20210084883A (ko) 바이오 잉크 조성물, 줄기세포 배양배드에 사용할 수 있는 3 차원 스캐폴드의 제조방법 및 그에 의해 제조된 3 차원 스캐폴드
Wang et al. Aligned biomimetic scaffolds as a new tendency in tissue engineering
US20200171208A1 (en) Scaffolds for cell culture and tissue regeneration
Ghobeira et al. Plasma surface functionalization of biodegradable electrospun scaffolds for tissue engineering applications
Karande et al. Function and requirement of synthetic scaffolds in tissue engineering
George et al. Biopolymer-based scaffolds: Development and biomedical applications
Forgacs et al. Biofabrication: micro-and nano-fabrication, printing, patterning and assemblies
Tamay et al. Bioinks—materials used in printing cells in designed 3D forms
Shahriari-Khalaji et al. Advancements in the fabrication technologies and biomaterials for small diameter vascular grafts: A fine-tuning of physicochemical and biological properties
KR102463106B1 (ko) 3차원 구조를 갖는 줄기세포 배양배드 및 이의 제조 방법

Legal Events

Date Code Title Description
E902 Notification of reason for refusal
E701 Decision to grant or registration of patent right
GRNT Written decision to grant
G170 Re-publication after modification of scope of protection [patent]