KR102433456B1 - Tph1 knockout mouse - Google Patents
Tph1 knockout mouse Download PDFInfo
- Publication number
- KR102433456B1 KR102433456B1 KR1020190160100A KR20190160100A KR102433456B1 KR 102433456 B1 KR102433456 B1 KR 102433456B1 KR 1020190160100 A KR1020190160100 A KR 1020190160100A KR 20190160100 A KR20190160100 A KR 20190160100A KR 102433456 B1 KR102433456 B1 KR 102433456B1
- Authority
- KR
- South Korea
- Prior art keywords
- tph1
- mouse
- mice
- βko
- delete delete
- Prior art date
Links
- 101150058700 Tph1 gene Proteins 0.000 title claims abstract description 242
- 238000011813 knockout mouse model Methods 0.000 title claims abstract description 24
- 210000000227 basophil cell of anterior lobe of hypophysis Anatomy 0.000 claims abstract description 112
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 20
- 208000030159 metabolic disease Diseases 0.000 claims abstract description 15
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 claims description 182
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 claims description 94
- 210000002237 B-cell of pancreatic islet Anatomy 0.000 claims description 30
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 17
- 108700024394 Exon Proteins 0.000 claims description 14
- 238000011830 transgenic mouse model Methods 0.000 claims description 13
- 108010051219 Cre recombinase Proteins 0.000 claims description 11
- 208000016097 disease of metabolism Diseases 0.000 claims description 9
- 238000003209 gene knockout Methods 0.000 claims description 7
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 claims description 6
- 239000003814 drug Substances 0.000 claims description 5
- 238000012216 screening Methods 0.000 claims description 5
- 229940124597 therapeutic agent Drugs 0.000 claims description 5
- 241000699660 Mus musculus Species 0.000 claims description 3
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 claims description 3
- 201000010099 disease Diseases 0.000 claims description 3
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 claims description 3
- 229940124598 therapeutic candidate Drugs 0.000 claims 1
- 101150019955 HTR2B gene Proteins 0.000 abstract description 66
- 210000000496 pancreas Anatomy 0.000 abstract description 32
- 208000001072 type 2 diabetes mellitus Diseases 0.000 abstract description 17
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 abstract description 12
- 208000001145 Metabolic Syndrome Diseases 0.000 abstract description 5
- 201000000690 abdominal obesity-metabolic syndrome Diseases 0.000 abstract description 5
- 230000002062 proliferating effect Effects 0.000 abstract description 5
- QZAYGJVTTNCVMB-UHFFFAOYSA-N serotonin Chemical compound C1=C(O)C=C2C(CCN)=CNC2=C1 QZAYGJVTTNCVMB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 222
- NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N insulin Chemical compound N1C(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(NC(=O)CN)C(C)CC)CSSCC(C(NC(CO)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CCC(N)=O)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CSSCC(NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2C=CC(O)=CC=2)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(C)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2NC=NC=2)NC(=O)C(CO)NC(=O)CNC2=O)C(=O)NCC(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CCCNC(N)=N)C(=O)NCC(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)NC(C(C)O)C(=O)N3C(CCC3)C(=O)NC(CCCCN)C(=O)NC(C)C(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(O)=O)=O)NC(=O)C(C(C)CC)NC(=O)C(CO)NC(=O)C(C(C)O)NC(=O)C1CSSCC2NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CC(N)=O)NC(=O)C(NC(=O)C(N)CC=1C=CC=CC=1)C(C)C)CC1=CN=CN1 NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 77
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 50
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 46
- 229940125396 insulin Drugs 0.000 description 40
- 102000004877 Insulin Human genes 0.000 description 37
- 108090001061 Insulin Proteins 0.000 description 37
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 36
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 28
- 108700028369 Alleles Proteins 0.000 description 27
- 230000004663 cell proliferation Effects 0.000 description 27
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 25
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 24
- 230000014509 gene expression Effects 0.000 description 23
- 101000830742 Homo sapiens Tryptophan 5-hydroxylase 1 Proteins 0.000 description 21
- 102100024971 Tryptophan 5-hydroxylase 1 Human genes 0.000 description 21
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 21
- 108020004999 messenger RNA Proteins 0.000 description 21
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 20
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 20
- 230000009261 transgenic effect Effects 0.000 description 19
- 230000009984 peri-natal effect Effects 0.000 description 18
- 230000002093 peripheral effect Effects 0.000 description 18
- 230000003914 insulin secretion Effects 0.000 description 17
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 15
- ZSJLQEPLLKMAKR-UHFFFAOYSA-N Streptozotocin Natural products O=NN(C)C(=O)NC1C(O)OC(CO)C(O)C1O ZSJLQEPLLKMAKR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 15
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 15
- 238000011160 research Methods 0.000 description 15
- ZSJLQEPLLKMAKR-GKHCUFPYSA-N streptozocin Chemical compound O=NN(C)C(=O)N[C@H]1[C@@H](O)O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@@H]1O ZSJLQEPLLKMAKR-GKHCUFPYSA-N 0.000 description 15
- 229960001052 streptozocin Drugs 0.000 description 15
- 230000006870 function Effects 0.000 description 14
- 238000003125 immunofluorescent labeling Methods 0.000 description 14
- 210000004153 islets of langerhan Anatomy 0.000 description 14
- 210000001630 jejunum Anatomy 0.000 description 14
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 13
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 12
- 235000009200 high fat diet Nutrition 0.000 description 11
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 10
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 10
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 10
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 9
- 238000012217 deletion Methods 0.000 description 9
- 230000037430 deletion Effects 0.000 description 9
- 231100000283 hepatitis Toxicity 0.000 description 9
- 238000012744 immunostaining Methods 0.000 description 9
- 238000007912 intraperitoneal administration Methods 0.000 description 9
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 9
- 241000283074 Equus asinus Species 0.000 description 8
- 101150017422 HTR1 gene Proteins 0.000 description 8
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 8
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 8
- 229940076279 serotonin Drugs 0.000 description 8
- 206010022489 Insulin Resistance Diseases 0.000 description 7
- 230000037396 body weight Effects 0.000 description 7
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 7
- 230000003197 catalytic effect Effects 0.000 description 7
- 210000001198 duodenum Anatomy 0.000 description 7
- 229940093181 glucose injection Drugs 0.000 description 7
- 238000007490 hematoxylin and eosin (H&E) staining Methods 0.000 description 7
- 208000006454 hepatitis Diseases 0.000 description 7
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 7
- 230000002441 reversible effect Effects 0.000 description 7
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 7
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 7
- OPIFSICVWOWJMJ-AEOCFKNESA-N 5-bromo-4-chloro-3-indolyl beta-D-galactoside Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1OC1=CNC2=CC=C(Br)C(Cl)=C12 OPIFSICVWOWJMJ-AEOCFKNESA-N 0.000 description 6
- TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L Magnesium chloride Chemical compound [Mg+2].[Cl-].[Cl-] TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 6
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 6
- 238000011529 RT qPCR Methods 0.000 description 6
- 208000019425 cirrhosis of liver Diseases 0.000 description 6
- 210000001072 colon Anatomy 0.000 description 6
- 210000003405 ileum Anatomy 0.000 description 6
- 238000011532 immunohistochemical staining Methods 0.000 description 6
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 6
- 238000010172 mouse model Methods 0.000 description 6
- 208000008338 non-alcoholic fatty liver disease Diseases 0.000 description 6
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 6
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 101000892398 Homo sapiens Tryptophan 2,3-dioxygenase Proteins 0.000 description 5
- 101000851865 Homo sapiens Tryptophan 5-hydroxylase 2 Proteins 0.000 description 5
- 101710183548 Pyridoxal 5'-phosphate synthase subunit PdxS Proteins 0.000 description 5
- 102100036474 Tryptophan 5-hydroxylase 2 Human genes 0.000 description 5
- 108010031944 Tryptophan Hydroxylase Proteins 0.000 description 5
- 102000005506 Tryptophan Hydroxylase Human genes 0.000 description 5
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 5
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical compound P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 5
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 5
- 238000010166 immunofluorescence Methods 0.000 description 5
- 230000001965 increasing effect Effects 0.000 description 5
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 5
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 5
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 108091032973 (ribonucleotides)n+m Proteins 0.000 description 4
- 108050006400 Cyclin Proteins 0.000 description 4
- 102000016736 Cyclin Human genes 0.000 description 4
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 102100028096 Homeobox protein Nkx-6.2 Human genes 0.000 description 4
- 101000578254 Homo sapiens Homeobox protein Nkx-6.1 Proteins 0.000 description 4
- 101000578258 Homo sapiens Homeobox protein Nkx-6.2 Proteins 0.000 description 4
- 102100041030 Pancreas/duodenum homeobox protein 1 Human genes 0.000 description 4
- 101150015730 Prlr gene Proteins 0.000 description 4
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- 238000000692 Student's t-test Methods 0.000 description 4
- NKANXQFJJICGDU-QPLCGJKRSA-N Tamoxifen Chemical compound C=1C=CC=CC=1C(/CC)=C(C=1C=CC(OCCN(C)C)=CC=1)/C1=CC=CC=C1 NKANXQFJJICGDU-QPLCGJKRSA-N 0.000 description 4
- 239000002299 complementary DNA Substances 0.000 description 4
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 4
- 206010012601 diabetes mellitus Diseases 0.000 description 4
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 4
- 210000001035 gastrointestinal tract Anatomy 0.000 description 4
- 238000007446 glucose tolerance test Methods 0.000 description 4
- 238000003364 immunohistochemistry Methods 0.000 description 4
- 230000001771 impaired effect Effects 0.000 description 4
- 230000000968 intestinal effect Effects 0.000 description 4
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 4
- 210000005228 liver tissue Anatomy 0.000 description 4
- 230000001404 mediated effect Effects 0.000 description 4
- 230000001537 neural effect Effects 0.000 description 4
- 230000035935 pregnancy Effects 0.000 description 4
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 4
- 238000005215 recombination Methods 0.000 description 4
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 4
- 210000000813 small intestine Anatomy 0.000 description 4
- 239000001509 sodium citrate Substances 0.000 description 4
- NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K sodium citrate Chemical compound O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 4
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 4
- 230000008685 targeting Effects 0.000 description 4
- 102100024956 5-hydroxytryptamine receptor 2B Human genes 0.000 description 3
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 208000004930 Fatty Liver Diseases 0.000 description 3
- 206010016654 Fibrosis Diseases 0.000 description 3
- 101150050738 HTR1B gene Proteins 0.000 description 3
- 206010019708 Hepatic steatosis Diseases 0.000 description 3
- 239000006180 TBST buffer Substances 0.000 description 3
- 102000005936 beta-Galactosidase Human genes 0.000 description 3
- 108010005774 beta-Galactosidase Proteins 0.000 description 3
- 230000008859 change Effects 0.000 description 3
- 230000007882 cirrhosis Effects 0.000 description 3
- 238000011161 development Methods 0.000 description 3
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 3
- 235000005911 diet Nutrition 0.000 description 3
- 230000037213 diet Effects 0.000 description 3
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 3
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 3
- 208000010706 fatty liver disease Diseases 0.000 description 3
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 description 3
- 238000003119 immunoblot Methods 0.000 description 3
- 210000004347 intestinal mucosa Anatomy 0.000 description 3
- 210000000936 intestine Anatomy 0.000 description 3
- 238000001294 liquid chromatography-tandem mass spectrometry Methods 0.000 description 3
- 210000004185 liver Anatomy 0.000 description 3
- 229910001629 magnesium chloride Inorganic materials 0.000 description 3
- 210000004379 membrane Anatomy 0.000 description 3
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 3
- 230000006609 metabolic stress Effects 0.000 description 3
- 210000004923 pancreatic tissue Anatomy 0.000 description 3
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 3
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 3
- 239000000047 product Substances 0.000 description 3
- 230000004044 response Effects 0.000 description 3
- 238000003757 reverse transcription PCR Methods 0.000 description 3
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 3
- 231100000240 steatosis hepatitis Toxicity 0.000 description 3
- 102100027499 5-hydroxytryptamine receptor 1B Human genes 0.000 description 2
- 108091032151 5-hydroxytryptamine receptor family Proteins 0.000 description 2
- 102000040125 5-hydroxytryptamine receptor family Human genes 0.000 description 2
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- BPYKTIZUTYGOLE-IFADSCNNSA-N Bilirubin Chemical compound N1C(=O)C(C)=C(C=C)\C1=C\C1=C(C)C(CCC(O)=O)=C(CC2=C(C(C)=C(\C=C/3C(=C(C=C)C(=O)N\3)C)N2)CCC(O)=O)N1 BPYKTIZUTYGOLE-IFADSCNNSA-N 0.000 description 2
- 241000700199 Cavia porcellus Species 0.000 description 2
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 2
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 2
- 239000007995 HEPES buffer Substances 0.000 description 2
- 206010019728 Hepatitis alcoholic Diseases 0.000 description 2
- 101000724725 Homo sapiens 5-hydroxytryptamine receptor 1B Proteins 0.000 description 2
- 101000761319 Homo sapiens 5-hydroxytryptamine receptor 2B Proteins 0.000 description 2
- 229940094910 Insulin receptor antagonist Drugs 0.000 description 2
- CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L Magnesium sulfate Chemical compound [Mg+2].[O-][S+2]([O-])([O-])[O-] CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 229930193140 Neomycin Natural products 0.000 description 2
- 208000008589 Obesity Diseases 0.000 description 2
- 238000012408 PCR amplification Methods 0.000 description 2
- 239000012083 RIPA buffer Substances 0.000 description 2
- 241000283984 Rodentia Species 0.000 description 2
- 101150048473 SLC25A21 gene Proteins 0.000 description 2
- 101001010097 Shigella phage SfV Bactoprenol-linked glucose translocase Proteins 0.000 description 2
- 108091081024 Start codon Proteins 0.000 description 2
- 101150115335 TPH2 gene Proteins 0.000 description 2
- 210000001789 adipocyte Anatomy 0.000 description 2
- 210000000577 adipose tissue Anatomy 0.000 description 2
- 208000002353 alcoholic hepatitis Diseases 0.000 description 2
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 2
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 2
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 2
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 2
- 230000006907 apoptotic process Effects 0.000 description 2
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 2
- 239000011324 bead Substances 0.000 description 2
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 2
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 2
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 2
- 230000005754 cellular signaling Effects 0.000 description 2
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 2
- HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N cholesterol Chemical compound C1C=C2C[C@@H](O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H]([C@H](C)CCCC(C)C)[C@@]1(C)CC2 HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N 0.000 description 2
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 2
- 229960003964 deoxycholic acid Drugs 0.000 description 2
- KXGVEGMKQFWNSR-LLQZFEROSA-N deoxycholic acid Chemical compound C([C@H]1CC2)[C@H](O)CC[C@]1(C)[C@@H]1[C@@H]2[C@@H]2CC[C@H]([C@@H](CCC(O)=O)C)[C@@]2(C)[C@@H](O)C1 KXGVEGMKQFWNSR-LLQZFEROSA-N 0.000 description 2
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 2
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 2
- 230000037149 energy metabolism Effects 0.000 description 2
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 2
- DEFVIWRASFVYLL-UHFFFAOYSA-N ethylene glycol bis(2-aminoethyl)tetraacetic acid Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCOCCOCCN(CC(O)=O)CC(O)=O DEFVIWRASFVYLL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 2
- 230000004761 fibrosis Effects 0.000 description 2
- MHMNJMPURVTYEJ-UHFFFAOYSA-N fluorescein-5-isothiocyanate Chemical compound O1C(=O)C2=CC(N=C=S)=CC=C2C21C1=CC=C(O)C=C1OC1=CC(O)=CC=C21 MHMNJMPURVTYEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 2
- 238000003205 genotyping method Methods 0.000 description 2
- 229960004666 glucagon Drugs 0.000 description 2
- 210000003494 hepatocyte Anatomy 0.000 description 2
- 101150090205 htr1d gene Proteins 0.000 description 2
- 230000028993 immune response Effects 0.000 description 2
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 2
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 2
- 230000006651 lactation Effects 0.000 description 2
- 210000002429 large intestine Anatomy 0.000 description 2
- 238000004895 liquid chromatography mass spectrometry Methods 0.000 description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 229930014626 natural product Natural products 0.000 description 2
- 229960004927 neomycin Drugs 0.000 description 2
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 2
- 235000020824 obesity Nutrition 0.000 description 2
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 2
- 230000035790 physiological processes and functions Effects 0.000 description 2
- 210000004560 pineal gland Anatomy 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 238000003753 real-time PCR Methods 0.000 description 2
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 2
- 238000010839 reverse transcription Methods 0.000 description 2
- 230000003248 secreting effect Effects 0.000 description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 2
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 2
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 description 2
- 239000006104 solid solution Substances 0.000 description 2
- 238000007619 statistical method Methods 0.000 description 2
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 description 2
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 2
- 229960001603 tamoxifen Drugs 0.000 description 2
- 210000003462 vein Anatomy 0.000 description 2
- 239000003643 water by type Substances 0.000 description 2
- 230000036266 weeks of gestation Effects 0.000 description 2
- NHBKXEKEPDILRR-UHFFFAOYSA-N 2,3-bis(butanoylsulfanyl)propyl butanoate Chemical compound CCCC(=O)OCC(SC(=O)CCC)CSC(=O)CCC NHBKXEKEPDILRR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- JKMHFZQWWAIEOD-UHFFFAOYSA-N 2-[4-(2-hydroxyethyl)piperazin-1-yl]ethanesulfonic acid Chemical compound OCC[NH+]1CCN(CCS([O-])(=O)=O)CC1 JKMHFZQWWAIEOD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- MEVXSUZBFYZPHZ-UHFFFAOYSA-N 2-amino-3-methyl-4h-imidazol-5-one;sulfuric acid Chemical compound OS(O)(=O)=O.CN1CC(=O)N=C1N MEVXSUZBFYZPHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- FWBHETKCLVMNFS-UHFFFAOYSA-N 4',6-Diamino-2-phenylindol Chemical compound C1=CC(C(=N)N)=CC=C1C1=CC2=CC=C(C(N)=N)C=C2N1 FWBHETKCLVMNFS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102100027493 5-hydroxytryptamine receptor 1D Human genes 0.000 description 1
- 101710138092 5-hydroxytryptamine receptor 2B Proteins 0.000 description 1
- 101150087690 ACTB gene Proteins 0.000 description 1
- 230000035502 ADME Effects 0.000 description 1
- 239000004382 Amylase Substances 0.000 description 1
- 102000013142 Amylases Human genes 0.000 description 1
- 108010065511 Amylases Proteins 0.000 description 1
- 238000011725 BALB/c mouse Methods 0.000 description 1
- 238000000035 BCA protein assay Methods 0.000 description 1
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 1
- 238000011746 C57BL/6J (JAX™ mouse strain) Methods 0.000 description 1
- 238000011814 C57BL/6N mouse Methods 0.000 description 1
- 241000282472 Canis lupus familiaris Species 0.000 description 1
- 241000282693 Cercopithecidae Species 0.000 description 1
- 102000029816 Collagenase Human genes 0.000 description 1
- 108060005980 Collagenase Proteins 0.000 description 1
- 102000016911 Deoxyribonucleases Human genes 0.000 description 1
- 108010053770 Deoxyribonucleases Proteins 0.000 description 1
- 208000032928 Dyslipidaemia Diseases 0.000 description 1
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 description 1
- 241000283086 Equidae Species 0.000 description 1
- 241000282326 Felis catus Species 0.000 description 1
- 102400000321 Glucagon Human genes 0.000 description 1
- 108060003199 Glucagon Proteins 0.000 description 1
- 108010023302 HDL Cholesterol Proteins 0.000 description 1
- HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N Heparin Chemical compound OC1C(NC(=O)C)C(O)OC(COS(O)(=O)=O)C1OC1C(OS(O)(=O)=O)C(O)C(OC2C(C(OS(O)(=O)=O)C(OC3C(C(O)C(O)C(O3)C(O)=O)OS(O)(=O)=O)C(CO)O2)NS(O)(=O)=O)C(C(O)=O)O1 HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101000724739 Homo sapiens 5-hydroxytryptamine receptor 1D Proteins 0.000 description 1
- 101000761343 Homo sapiens 5-hydroxytryptamine receptor 3A Proteins 0.000 description 1
- 101000653469 Homo sapiens T-complex protein 1 subunit zeta Proteins 0.000 description 1
- 101150045775 Htr3a gene Proteins 0.000 description 1
- 208000031226 Hyperlipidaemia Diseases 0.000 description 1
- FFEARJCKVFRZRR-BYPYZUCNSA-N L-methionine Chemical compound CSCC[C@H](N)C(O)=O FFEARJCKVFRZRR-BYPYZUCNSA-N 0.000 description 1
- QIVBCDIJIAJPQS-VIFPVBQESA-N L-tryptophane Chemical compound C1=CC=C2C(C[C@H](N)C(O)=O)=CNC2=C1 QIVBCDIJIAJPQS-VIFPVBQESA-N 0.000 description 1
- 108010028554 LDL Cholesterol Proteins 0.000 description 1
- 238000008214 LDL Cholesterol Methods 0.000 description 1
- 101100054161 Mus musculus Htr2b gene Proteins 0.000 description 1
- 101100370134 Mus musculus Tph1 gene Proteins 0.000 description 1
- CTQNGGLPUBDAKN-UHFFFAOYSA-N O-Xylene Chemical compound CC1=CC=CC=C1C CTQNGGLPUBDAKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229930040373 Paraformaldehyde Natural products 0.000 description 1
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 1
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 1
- 102000003992 Peroxidases Human genes 0.000 description 1
- 229920001213 Polysorbate 20 Polymers 0.000 description 1
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 1
- 108010029485 Protein Isoforms Proteins 0.000 description 1
- 102000001708 Protein Isoforms Human genes 0.000 description 1
- 239000012980 RPMI-1640 medium Substances 0.000 description 1
- 102100037486 Reverse transcriptase/ribonuclease H Human genes 0.000 description 1
- 238000010818 SYBR green PCR Master Mix Methods 0.000 description 1
- 238000012300 Sequence Analysis Methods 0.000 description 1
- 241000282887 Suidae Species 0.000 description 1
- 239000007980 Sørensen’s phosphate buffer Substances 0.000 description 1
- 102100030664 T-complex protein 1 subunit zeta Human genes 0.000 description 1
- 239000007983 Tris buffer Substances 0.000 description 1
- QIVBCDIJIAJPQS-UHFFFAOYSA-N Tryptophan Natural products C1=CC=C2C(CC(N)C(O)=O)=CNC2=C1 QIVBCDIJIAJPQS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- SXEHKFHPFVVDIR-UHFFFAOYSA-N [4-(4-hydrazinylphenyl)phenyl]hydrazine Chemical compound C1=CC(NN)=CC=C1C1=CC=C(NN)C=C1 SXEHKFHPFVVDIR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000003187 abdominal effect Effects 0.000 description 1
- 230000001594 aberrant effect Effects 0.000 description 1
- 238000001042 affinity chromatography Methods 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical group 0.000 description 1
- VZTDIZULWFCMLS-UHFFFAOYSA-N ammonium formate Chemical compound [NH4+].[O-]C=O VZTDIZULWFCMLS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000019418 amylase Nutrition 0.000 description 1
- 230000036528 appetite Effects 0.000 description 1
- 235000019789 appetite Nutrition 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 230000003305 autocrine Effects 0.000 description 1
- 230000004888 barrier function Effects 0.000 description 1
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 1
- 230000003592 biomimetic effect Effects 0.000 description 1
- 210000002459 blastocyst Anatomy 0.000 description 1
- 230000000740 bleeding effect Effects 0.000 description 1
- 230000008499 blood brain barrier function Effects 0.000 description 1
- 210000001218 blood-brain barrier Anatomy 0.000 description 1
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 description 1
- 210000000692 cap cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000030833 cell death Effects 0.000 description 1
- 230000003915 cell function Effects 0.000 description 1
- 230000006727 cell loss Effects 0.000 description 1
- 210000003169 central nervous system Anatomy 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 235000012000 cholesterol Nutrition 0.000 description 1
- 229960002424 collagenase Drugs 0.000 description 1
- 230000001447 compensatory effect Effects 0.000 description 1
- 239000008367 deionised water Substances 0.000 description 1
- 229910021641 deionized water Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000003111 delayed effect Effects 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 230000002183 duodenal effect Effects 0.000 description 1
- 238000000132 electrospray ionisation Methods 0.000 description 1
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 1
- 210000003890 endocrine cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000000105 enteric nervous system Anatomy 0.000 description 1
- 210000002322 enterochromaffin cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000011067 equilibration Methods 0.000 description 1
- 239000003797 essential amino acid Substances 0.000 description 1
- 235000020776 essential amino acid Nutrition 0.000 description 1
- 238000010195 expression analysis Methods 0.000 description 1
- 230000008175 fetal development Effects 0.000 description 1
- 239000000834 fixative Substances 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 238000013467 fragmentation Methods 0.000 description 1
- 238000006062 fragmentation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000005176 gastrointestinal motility Effects 0.000 description 1
- 210000004602 germ cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- MASNOZXLGMXCHN-ZLPAWPGGSA-N glucagon Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@H](C(=O)N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CCSC)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)O)C(O)=O)C(C)C)NC(=O)[C@H](CC(O)=O)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@H](CCCNC(N)=N)NC(=O)[C@H](CCCNC(N)=N)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@H](CC(O)=O)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)NC(=O)[C@H](CCCCN)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)NC(=O)[C@H](CC(O)=O)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CC=1C=CC=CC=1)NC(=O)[C@@H](NC(=O)CNC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@@H](N)CC=1NC=NC=1)[C@@H](C)O)[C@@H](C)O)C1=CC=CC=C1 MASNOZXLGMXCHN-ZLPAWPGGSA-N 0.000 description 1
- 230000014101 glucose homeostasis Effects 0.000 description 1
- 230000004217 heart function Effects 0.000 description 1
- 229960002897 heparin Drugs 0.000 description 1
- 229920000669 heparin Polymers 0.000 description 1
- 125000005842 heteroatom Chemical group 0.000 description 1
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 1
- 238000010842 high-capacity cDNA reverse transcription kit Methods 0.000 description 1
- 229940088597 hormone Drugs 0.000 description 1
- 239000005556 hormone Substances 0.000 description 1
- 229940084769 humulin r Drugs 0.000 description 1
- 238000002991 immunohistochemical analysis Methods 0.000 description 1
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 1
- 230000008595 infiltration Effects 0.000 description 1
- 238000001764 infiltration Methods 0.000 description 1
- 210000004969 inflammatory cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 1
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 description 1
- PBGKTOXHQIOBKM-FHFVDXKLSA-N insulin (human) Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@H]1CSSC[C@H]2C(=O)N[C@H](C(=O)N[C@@H](CO)C(=O)N[C@H](C(=O)N[C@H](C(N[C@@H](CO)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)N[C@@H](CSSC[C@H](NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CC=3C=CC(O)=CC=3)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CC=3NC=NC=3)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)CNC1=O)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)O)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)O)C(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(O)=O)=O)CSSC[C@@H](C(N2)=O)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)[C@@H](NC(=O)CN)[C@@H](C)CC)[C@@H](C)CC)[C@@H](C)O)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CC(N)=O)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@@H](N)CC=1C=CC=CC=1)C(C)C)C1=CN=CN1 PBGKTOXHQIOBKM-FHFVDXKLSA-N 0.000 description 1
- 238000012528 insulin ELISA Methods 0.000 description 1
- 239000000492 insulin antagonist Substances 0.000 description 1
- 101150066555 lacZ gene Proteins 0.000 description 1
- 230000006372 lipid accumulation Effects 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 238000012317 liver biopsy Methods 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 239000006166 lysate Substances 0.000 description 1
- 229910052943 magnesium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019341 magnesium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 1
- 210000005075 mammary gland Anatomy 0.000 description 1
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 1
- 230000002503 metabolic effect Effects 0.000 description 1
- 229930182817 methionine Natural products 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 230000036651 mood Effects 0.000 description 1
- 210000000944 nerve tissue Anatomy 0.000 description 1
- 239000002858 neurotransmitter agent Substances 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 1
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 1
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000011164 ossification Effects 0.000 description 1
- 230000003076 paracrine Effects 0.000 description 1
- 229920002866 paraformaldehyde Polymers 0.000 description 1
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 1
- 108040007629 peroxidase activity proteins Proteins 0.000 description 1
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 1
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 1
- 239000000256 polyoxyethylene sorbitan monolaurate Substances 0.000 description 1
- 235000010486 polyoxyethylene sorbitan monolaurate Nutrition 0.000 description 1
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 1
- 229920002981 polyvinylidene fluoride Polymers 0.000 description 1
- 239000013641 positive control Substances 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 230000001737 promoting effect Effects 0.000 description 1
- 238000003762 quantitative reverse transcription PCR Methods 0.000 description 1
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 1
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 1
- 238000012552 review Methods 0.000 description 1
- PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N rhodamine B Chemical compound [Cl-].C=12C=CC(=[N+](CC)CC)C=C2OC2=CC(N(CC)CC)=CC=C2C=1C1=CC=CC=C1C(O)=O PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000012488 sample solution Substances 0.000 description 1
- 235000020183 skimmed milk Nutrition 0.000 description 1
- 230000007958 sleep Effects 0.000 description 1
- 238000002415 sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 239000012128 staining reagent Substances 0.000 description 1
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 1
- 239000013595 supernatant sample Substances 0.000 description 1
- 230000002459 sustained effect Effects 0.000 description 1
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 1
- 230000002194 synthesizing effect Effects 0.000 description 1
- 230000009885 systemic effect Effects 0.000 description 1
- UFTFJSFQGQCHQW-UHFFFAOYSA-N triformin Chemical compound O=COCC(OC=O)COC=O UFTFJSFQGQCHQW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N tris Chemical compound OCC(N)(CO)CO LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000004704 ultra performance liquid chromatography Methods 0.000 description 1
- 238000002604 ultrasonography Methods 0.000 description 1
- 230000004584 weight gain Effects 0.000 description 1
- 235000019786 weight gain Nutrition 0.000 description 1
- 238000001262 western blot Methods 0.000 description 1
- 239000012130 whole-cell lysate Substances 0.000 description 1
- 239000008096 xylene Substances 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K67/00—Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New or modified breeds of animals
- A01K67/027—New or modified breeds of vertebrates
- A01K67/0275—Genetically modified vertebrates, e.g. transgenic
- A01K67/0276—Knock-out vertebrates
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K67/00—Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New or modified breeds of animals
- A01K67/027—New or modified breeds of vertebrates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/705—Receptors; Cell surface antigens; Cell surface determinants
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
- C12N15/8509—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells for producing genetically modified animals, e.g. transgenic
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0676—Pancreatic cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
- C12N9/0071—Oxidoreductases (1.) acting on paired donors with incorporation of molecular oxygen (1.14)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y114/00—Oxidoreductases acting on paired donors, with incorporation or reduction of molecular oxygen (1.14)
- C12Y114/16—Oxidoreductases acting on paired donors, with incorporation or reduction of molecular oxygen (1.14) with reduced pteridine as one donor, and incorporation of one atom of oxygen (1.14.16)
- C12Y114/16004—Tryptophan 5-monooxygenase (1.14.16.4)
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K2217/00—Genetically modified animals
- A01K2217/07—Animals genetically altered by homologous recombination
- A01K2217/075—Animals genetically altered by homologous recombination inducing loss of function, i.e. knock out
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K2217/00—Genetically modified animals
- A01K2217/20—Animal model comprising regulated expression system
- A01K2217/206—Animal model comprising tissue-specific expression system, e.g. tissue specific expression of transgene, of Cre recombinase
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K2227/00—Animals characterised by species
- A01K2227/10—Mammal
- A01K2227/105—Murine
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K2267/00—Animals characterised by purpose
- A01K2267/03—Animal model, e.g. for test or diseases
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2830/00—Vector systems having a special element relevant for transcription
- C12N2830/008—Vector systems having a special element relevant for transcription cell type or tissue specific enhancer/promoter combination
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
본 발명은 Tph1 또는 Htr2b 넉아웃 마우스 및 이의 제조방법에 관한 것이다. 본 발명의 Tph1 또는 Htr2b 넉아웃 마우스는 타겟 유전자의 넉아웃 효율이 높고, 췌장의 β 세포의 증식능이 감소되어 있으므로 제2형 당뇨 및 대사증후군을 비롯한 다양한 대사 질환 연구에 유용하게 사용될 수 있다.The present invention relates to a Tph1 or Htr2b knockout mouse and a method for preparing the same. The Tph1 or Htr2b knockout mouse of the present invention has a high knockout efficiency of a target gene and has a reduced proliferative ability of β cells of the pancreas, so it can be usefully used in the study of various metabolic diseases, including type 2 diabetes and metabolic syndrome.
Description
본 발명은 대한민국 과학기술정보통신부의 지원 하에서 과제번호 2018018200에 의해 이루어진 것으로서, 상기 과제의 연구관리 전문기관은 "한국연구재단", 연구사업명은 "원천기술개발사업", 연구과제명은 "(EZBARO)줄기세포 유래 생체모방 베타세포 클러스터 제작 및 임상응용", 주관기관은 "한국과학기술원", 연구기간은 2018.04.01-2019.01.31 이다.The present invention was made under project number 2018018200 under the support of the Ministry of Science and ICT of the Republic of Korea, and the research management institution for the project is "National Research Foundation", the research project name is "Original Technology Development Project", and the research project name is "(EZBARO) Production and clinical application of stem cell-derived biomimetic beta-cell clusters", the lead institution is "Korea Advanced Institute of Science and Technology", and the research period is 2018.04.01-2019.01.31.
본 발명은 또한 대한민국 과학기술정보통신부의 지원 하에서 과제번호 2018074646에 의해 이루어진 것으로서, 상기 과제의 연구관리 전문기관은 "한국연구재단", 연구사업명은 "이공분야기초연구사업", 연구과제명은 "(EZBARO)임신, 수유에 따른 여성 당뇨병의 특징 및 췌장 베타세포 기능 개선 연구", 주관기관은 "한국과학기술원", 연구기간은 2018.09.01-2019.02.28 이다. The present invention was also made under the support of the Ministry of Science and ICT of the Republic of Korea under project number 2018074646, and the research management institution of the project is "National Research Foundation", the research project name is "Basic Research Project in Science and Engineering", and the research project name is "( EZBARO) Characteristics of Diabetes in Women and Improvement of Pancreatic Beta Cell Functions According to Pregnancy and Lactation", organized by the "Korea Advanced Institute of Science and Technology", and the study period is 2018.09.01-2019.02.28.
본 특허출원은 2019년 4월 25일에 대한민국 특허청에 제출된 대한민국 특허출원 제10-2019-0048126호에 대하여 우선권을 주장하며, 상기 출원의 개시사항은 본 명세서에 참조로서 삽입된다. This patent application claims priority to Korean Patent Application No. 10-2019-0048126 filed with the Korean Intellectual Property Office on April 25, 2019, the disclosure of which is incorporated herein by reference.
본 발명은 넉아웃 마우스 및 이의 제조방법에 관한 것이다.The present invention relates to a knockout mouse and a method for preparing the same.
세로토닌 (5-hydroxytryptamine [5-HT])은 필수 아미노산인 트립토판에서 합성된 모노 아민 신경전달물질이다. 5-HT의 생합성은 트립토판 가수분해효소(tryptophan hydroxylase, TPH)에 의해 조절되고, 이는 5-HT 효소의 생산을 위한 속도-조절 효소이다. 서로 구별되는 조직 발현 패턴을 나타내는 TPH의 두 가지 이형체 (TPH1 및 TPH2)가 발견된 이후로, 중추 및 말초의 5-HT 시스템들이 기능적으로 구별되어 있다는 점은 잘 알려져 있다. 이 공간적 분리는 5-HT가 혈액 뇌 장벽을 통과하지 못한다는 점에 기인한다; 따라서 5-HT는 TPH2에 의해 중추에서 생합성되고 TPH1에 의해 말초에서 생합성된다. 한편, 5-HT는 신경 조직과 말초 조직 모두에서 다양한 기능을 가진다. 신경 5-HT는 중추 신경계의 통제 하에 있는 수면, 기분 및 식욕을 조절하는 것으로 알려져 있을 뿐만 아니라 장 신경계(enteric neuvous system)에 의해 조절되는 위장관 운동성을 조절하는 것으로 알려져 있다. 신경 5-HT의 잘 알려진 기능과는 대조적으로, 말초 조직에서의 5-HT의 역할은 아직 명확하게 밝혀지지 않았다. 말초 5-HT는 간 재생, 뼈 형성, 면역 반응 및 에너지 대사를 조절하는 것으로 나타났다. 인체 내 5-HT의 90 % 이상이 말초 5-HT이며, 대다수는 장의 점막의 엔테로크로마핀 세포에 의해 생산되고 혈소판에 저장된다. 최근 연구에 따르면 췌장 베타 세포와 지방 세포는 TPH1에 의해 촉매되어 5-HT를 생성하는 것으로 나타났다.Serotonin (5-hydroxytryptamine [5-HT]) is a monoamine neurotransmitter synthesized from the essential amino acid tryptophan. The biosynthesis of 5-HT is regulated by tryptophan hydroxylase (TPH), which is a rate-regulating enzyme for the production of 5-HT enzyme. Since the discovery of two isoforms of TPH (TPH1 and TPH2) that exhibit distinct tissue expression patterns, it is well known that the central and peripheral 5-HT systems are functionally distinct. This spatial separation is due to the fact that 5-HT does not cross the blood brain barrier; Thus, 5-HT is biosynthesized centrally by TPH2 and peripherally by TPH1. On the other hand, 5-HT has various functions in both neural and peripheral tissues. Neuronal 5-HT is known to regulate sleep, mood and appetite, which are under the control of the central nervous system, as well as to regulate gastrointestinal motility, which is regulated by the enteric neuvous system. In contrast to the well-known function of neuronal 5-HT, the role of 5-HT in peripheral tissues has not yet been clearly elucidated. Peripheral 5-HT has been shown to modulate liver regeneration, bone formation, immune response and energy metabolism. More than 90% of 5-HT in the human body is peripheral 5-HT, and the majority is produced by enterochromaffin cells in the intestinal mucosa and stored in platelets. Recent studies have shown that pancreatic beta cells and adipocytes are catalyzed by TPH1 to produce 5-HT.
말초 조직에서 5-HT의 기능을 연구하기 위해 몇몇 Tph1 녹아웃 (KO) 대립 유전자가 마우스에서 생성되었다. 최초의 Tph1 KO 마우스는 신경 및 말초 구획으로 공간적으로 분리된 5-HT 시스템의 이중성을 입증하였다. 이 마우스는 간 재생 능력이 부족했고 인슐린 분비 기능이 손상되었다. 다른 전신 Tph1 KO 마우스에 대한 연구는 심장 기능 및 태아 발달에 있어서 말초 5-HT의 중요한 역할을 밝혀 냈다. Yadav와 동료들은 최초의 컨디셔널 Tph1 KO 대립 유전자를 생성하여 이전에는 잘 알려져 있지 않던 뼈 조절과 에너지 대사에서 5-HT의 기능을 발견하게 되었다. 초기 Tph1 floxed 대립 유전자가 다른 조직에서 말초 5-HT의 기능을 연구하는데 유용함이 입증되었지만, 생성된 Tph1 KO 마우스는 장의 점막에 5-HT 양성 세포를 여전히 포함하고 있어 잔류 5-HT 합성을 나타내었고, 따라서 장내의 TPH1 활성이 불완전하게 파괴되었다. To study the function of 5-HT in peripheral tissues, several Tph1 knockout (KO) alleles were generated in mice. The first Tph1 KO mice demonstrated the duality of the 5-HT system spatially separated into neural and peripheral compartments. These mice lacked the ability to regenerate the liver and had impaired insulin secretory function. Studies in other systemic Tph1 KO mice have revealed an important role of peripheral 5-HT in cardiac function and fetal development. Yadav and co-workers created the first conditional Tph1 KO allele to discover previously unknown functions of 5-HT in bone regulation and energy metabolism. Although the initial Tph1 floxed allele proved useful for studying the function of peripheral 5-HT in other tissues, the resulting Tph1 KO mice still contained 5-HT-positive cells in the intestinal mucosa, indicating residual 5-HT synthesis. , and thus the intestinal TPH1 activity was incompletely disrupted.
현재까지 이용 가능한 모든 KO 마우스는 엑손 5 및 6 대신에 엑손 2 및/또는 엑손 3을 타겟팅 함으로써 생성되었으며, 엑손 5 및 6는 TPH1의 촉매 도메인을 코딩한다. 따라서 이전에 생성 된 모든 Tph1 KO 대립 유전자는 잠재적으로, 엑손 5와 6을 포함하는 비정상적으로 스플라이싱 된 Tph1 전사체를 발현 할 수 있었으며 Tph1의 엑손 2 및/또는 3의 결실에도 불구하고 TPH1 촉매 활성을 갖는 단백질을 생산하였다. 따라서 5-HT의 생산이 완전히 제거된 새로운 Tph1 넉아웃 마우스의 개발이 필요한 실정이다. All KO mice available to date have been generated by targeting
본 발명자들은 말초 조직에서 5-HT의 기능을 연구하던 중, 종래 Tph1 넉아웃 마우스에서 5-HT 생산이 완전히 제거되지 않았음을 확인하고, 5-HT 생산이 완전히 중단된 새로운 Tph1 넉아웃 마우스를 개발하고자 노력하였다. 그 결과 Tph1 유전자의 엑손 5 및 엑손 6을 타겟팅하는 넉아웃 마우스에서 5-HT 생산이 완전히 제거되었음을 규명함으로써, 본 발명을 완성하게 되었다. While studying the function of 5-HT in peripheral tissues, the present inventors confirmed that 5-HT production was not completely eliminated in conventional Tph1 knockout mice, and obtained novel Tph1 knockout mice in which 5-HT production was completely stopped. tried to develop. As a result, by identifying that 5-HT production was completely eliminated in knockout
또한, 본 발명자들은 마우스의 β 세포 증식에 필수적인 기전 및 세로토닌 수용체(HTR)의 종류를 확인하기 위하여, Tph1 또는 Htr 유전자가 췌장 특이적으로 넉아웃 된 마우스를 개발하고 출생 전후 및 성체 마우스의 β세포 증식성을 관찰하였다. 그 결과, Tph1 유전자 또는 Htr2b 유전자가 췌장 특이적으로 넉아웃 된 마우스에서 β 세포 증식이 감소된다는 점 및 이들의 표현형이 유사하게 나타남을 규명함으로써 본 발명을 완성하게 되었다. In addition, the present inventors developed a mouse in which the Tph1 or Htr gene is knocked out in a pancreas-specific manner to identify the mechanism and type of serotonin receptor (HTR) essential for β cell proliferation in mice, before and after birth and β cells of adult mice. Proliferability was observed. As a result, in mice in which the Tph1 gene or the Htr2b gene was knocked out specifically for the pancreas, β The present invention was completed by finding that cell proliferation was reduced and their phenotypes were similar.
따라서, 본 발명의 목적은 신규한 Tph1 넉아웃 마우스 및 이의 제조방법을 제공하는 것이다.Accordingly, it is an object of the present invention to provide a novel Tph1 knockout mouse and a preparation method thereof.
본 발명의 다른 목적은 Htr2b 유전자가 넉아웃 된 마우스 및 이의 제조방법을 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide a mouse in which the Htr2b gene is knocked out and a method for preparing the same.
본 발명의 일 양태에 따르면, 본 발명은 Tph1 유전자의 엑손 5 및 엑손 6이 넉아웃(knock-out)된 형질전환 동물을 제공한다. According to one aspect of the present invention, the present invention provides a transgenic animal in which
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 Tph1 유전자(mRNA)는 NCBI Reference sequence NM_009414.3 에서 확인할 수 있다.In one embodiment of the present invention, the Tph1 gene (mRNA) can be identified in NCBI Reference sequence NM_009414.3.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 Tph1 유전자의 엑손 5 및 엑손 6은각각 서열번호 11의 845-912번째 서열과, 913-1109번째 염기서열로 이루어진 것이다. In one embodiment of the present invention,
본 발명의 다른 구현예에 있어서, 상기 형질전환 동물은 조직 특이적으로 Tph1 유전자가 넉아웃 된 것이고, 상기 조직은 췌장 β 세포이다. In another embodiment of the present invention, the transgenic animal is a tissue-specific Tph1 gene knockout, and the tissue is a pancreatic β cell.
본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 형질전환 동물은 마우스이나, 이에 한정되는 것은 아니다. In another embodiment of the present invention, the transgenic animal is a mouse, but is not limited thereto.
본 발명의 구체적인 구현예에 있어서, 상기 형질전환 동물은 Tph1 fl/fl x Insulin2-Cre +/- 마우스(Tph1 beta cell specific knockout mouse, Tph1 βKO mouse) 또는 Tph1 fl/fl x Pdx1-CreER +/- 마우스(Tph1 beta cell specific inducible knockout mouse, Tph1 βiKO mouse)일 수 있다. In a specific embodiment of the present invention, the transgenic animal is Tph1 fl/fl x Insulin2-Cre +/- mouse (Tph1 beta cell specific knockout mouse, Tph1 βKO mouse) or Tph1 fl/fl x Pdx1-CreER +/- mouse It may be a mouse (Tph1 beta cell specific inducible knockout mouse, Tph1 βiKO mouse).
상기 Tph1 fl/fl x Insulin2-Cre +/- 마우스(Tph1 beta cell specific knockout mouse, Tph1 βKO mouse) 마우스는 출생시부터 Tph1 유전자가 제거된 형질전환 마우스이고, 상기 Tph1 fl/fl x Pdx1-CreER +/- 마우스(Tph1 beta cell specific inducible knockout mouse, Tph1 βiKO mouse)는 출생 이후 타목시펜을 투여하는 경우 타겟 유전자의 넉아웃이 유도되는 형질전환 마우스이다. The Tph1 fl/fl x Insulin2-Cre +/- mouse (Tph1 beta cell specific knockout mouse, Tph1 βKO mouse) is a transgenic mouse in which the Tph1 gene is removed from birth, and the Tph1 fl/fl x Pdx1-CreER + // Mouse (Tph1 beta cell specific inducible knockout mouse, Tph1 βiKO mouse) is a transgenic mouse in which target gene knockout is induced when tamoxifen is administered after birth.
본 발명의 다른 일 구현예에 있어서, 상기 형질전환 동물은 제2형 당뇨병, 비알코올성 지방간질환 및 간염 또는 대사증후군과 같은 대사질환의 모델로 사용될 수 있으나, 반드시 이에 용도가 한정되는 것은 아니다. In another embodiment of the present invention, the transgenic animal may be used as a model for metabolic diseases such as
본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 다음 단계를 포함하는, 조직-특이적으로 Tph1 유전자가 넉아웃 된 마우스의 제조방법을 제공한다:According to another aspect of the present invention, the present invention provides a method for producing a tissue-specific Tph1 gene knockout mouse comprising the following steps:
(a) Tph1의 엑손 5 및 엑손 6 양 옆에 loxp site를 삽입한 Tph1 floxed 마우스 및 조직-특이적으로 Cre-recombinase를 발현하는 마우스를 교배하는 단계; 및 (a) crossing a Tph1 floxed mouse in which loxp sites are inserted on both sides of
(b) 상기 교배 결과 얻어진 다음 세대 마우스를 얻는 단계.(b) obtaining a next-generation mouse obtained as a result of the crossing.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 조직-특이적으로 Cre-recombinase를 발현하는 마우스는 췌장 특이적으로 Cre-recombinase를 발현하는 Insulin2-Cre 마우스이다. In one embodiment of the present invention, the tissue-specifically expressing Cre-recombinase mouse is an Insulin2-Cre mouse expressing pancreatic-specific Cre-recombinase.
본 발명의 다른 구현예에 있어서, 상기 조직-특이적인 넉아웃이 이루어지는 조직은 췌장의 β 세포이다.In another embodiment of the present invention, the tissue-specific knockout tissue is a pancreatic β cell.
본 발명의 구체적인 구현예에서, 본 발명자들은 도 2a의 Tph1 tm1a 와 같은 유전체 구조를 가진 배아줄기세포(Embryonic stemm cell)을 구입하였고, 대리모에 착상하여 마우스를 생산하였다. 상기 생산된 Tph1 tm1a 의 유전체를 가진 마우스는 플리페이스(Flippase)를 발현하는 마우스와 교배하여 FRT 사이의 유전자를 제거한 후, β 세포 특이적으로 Cre-recombinase를 발현하는 Insulin2-Cre 마우스와 교배를 시킨다. 상기 교배로 얻어진 자손은 상기 유전체 중 loxp 의 양측으로 타겟팅 된 Tph1의 엑손 5 및 엑손 6가 제거된다. 따라서, β 세포 특이적인 Tph1 KO 마우스를 얻을 수 있다. In a specific embodiment of the present invention, the present inventors purchased embryonic stemm cells having the same genomic structure as Tph1 tm1a of FIG. 2A , and implanted in a surrogate mother to produce mice. A mouse having the produced Tph1 tm1a genome is crossed with a mouse expressing Flippase, the gene between FRT is removed, and then crossed with a β-cell-specific Cre-recombinase-expressing Insulin2-Cre mouse. . In the progeny obtained by the cross,
본 발명의 Tph1 βKO 마우스는 출생 당일(Postnatal day 0, P0) 췌장에서 Tph1의 mRNA 발현이 감소하여 Tph1이 넉아웃 되었음이 확인되었다. 또한, 면역형광염색 (IF, immunofluorescent) 결과에서도 5-HT (세로토닌)이 제거됨을 확인하여, Tph1 βKO 마우스의 췌장 베타세포에서 세로토닌 생성이 억제됨을 확인되었다.In the Tph1 βKO mouse of the present invention, it was confirmed that the mRNA expression of Tph1 was decreased in the pancreas on the day of birth (
본 발명의 Tph1 βKO 마우스과 야생형 마우스 사이에는 체중의 차이는 나타나지 않으며, 당내성 테스트(Glucose tolerance test, GTT) 상 Tph1 βKO 마우스에서 혈당감소가 지연되어 제2형 당뇨의 표현형을 나타낸다. 한편, Tph1 βKO 마우스에는 인슐린 내성 테스트(Insulin tolerance test, ITT) 상으로는 차이가 없다는 점이 특징적이다. There was no difference in body weight between the Tph1 βKO mouse and the wild-type mouse of the present invention, and the glucose tolerance test (GTT) showed a delayed decrease in blood glucose in the Tph1 βKO mouse, indicating a
또한, 본 발명의 Tph1 βKO 마우스는 췌장 베타세포양이 절반 미만으로 감소되어 있어, 제2형 당뇨와 유사한 표현형을 나타낸다.In addition, the Tph1 βKO mouse of the present invention exhibits a phenotype similar to
또한, 본 발명의 Tph1 βKO 마우스는 췌장 베타세포의 인슐린 분비능력을 평가하는 GSIS(Glucose stimulated insulin secretion) 검사에서 Tph1 βKO의 인슐린 분비능이 저하되어 있는 것으로 나타났다. 즉, 췌장 베타 세포에서 세로토닌이 없으면 인슐린 분비에 문제가 생기고, 이러한 점에서 본 발명의 Tph1 βKO 마우스는 제2형 당뇨와 유사한 표현형을 나타낸다. In addition, in the Tph1 βKO mouse of the present invention, it was found that the insulin secretion ability of Tph1 βKO was decreased in a glucose stimulated insulin secretion (GSIS) test for evaluating the insulin secretion ability of pancreatic beta cells. That is, the absence of serotonin in pancreatic beta cells causes a problem in insulin secretion, and in this respect, the Tph1 βKO mouse of the present invention exhibits a phenotype similar to
또한, 본 발명의 Tph1 βKO 마우스는 출생 당일(P0) β 세포 양이 줄어들었음을 H&E염색 및 면역형광염색을 통해 확인되었고, β 세포의 증식(proliferation) 능력을 phosphohistone H3 (pHH3) 및 Ki-67을 통해 확인한 결과, Tph1 βKO에서 베타세포 증식능이 줄어있음을 확인하였다. 따라서, 본 발명의 Tph1 βKO는 출생 전후 베타세포의 양과 증식능의 감퇴로 인한 성인기 2형 당뇨 발병 모델로 유용하게 사용될 수 있다. In addition, it was confirmed through H&E staining and immunofluorescence staining that the Tph1 βKO mouse of the present invention had a decreased amount of β cells on the day of birth (P0), and the proliferation ability of β cells was confirmed by phosphohistone H3 (pHH3) and Ki-67. As a result, it was confirmed that the beta cell proliferation ability was reduced in Tph1 βKO. Therefore, the Tph1 βKO of the present invention can be usefully used as a model for the onset of
본 발명의 Tph1 βKO 마우스의 β 세포의 증식(proliferation) 능력을 평가하는 다른 지표인 cyclin의 mRNA 수준을 측정한 결과, Tph1 βKO 마우스에서 감소되어 있어 β 세포 증식능이 감소되어 있음을 나타낸다.As a result of measuring the mRNA level of cyclin, which is another indicator for evaluating the β cell proliferation ability of the Tph1 βKO mouse of the present invention, it was decreased in the Tph1 βKO mouse, indicating that the β cell proliferative ability was reduced.
또한, 본 발명의 변형된 STAM 마우스 모델에서 확인한 바와 같이, 췌장 베타 세포의 감소는 비알코올성 지방간, 간염, 간섬유화 및/또는 간경변을 유발하는 바, 본 발명의 Tph1 βKO 마우스는 췌장 베타 세포의 증식능이 감소하는 결과, 베타세포의 양이 감소되므로 비알코올성 지방간질환 및 간염의 모델 동물로서도 유용하게 사용될 수 있다. In addition, as confirmed in the modified STAM mouse model of the present invention, a decrease in pancreatic beta cells causes nonalcoholic fatty liver, hepatitis, liver fibrosis and/or cirrhosis. As a result of this decrease, since the amount of beta cells is reduced, it can be usefully used as a model animal for nonalcoholic fatty liver disease and hepatitis.
본 발명의 다른 일 양태에 따르면, 본 발명은 Htr2b 유전자가 넉아웃(knock-out)된 형질전환 동물을 제공한다. According to another aspect of the present invention, the present invention provides a transgenic animal in which the Htr2b gene is knocked out.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 Htr2b 유전자는 엑손 2가 넉아웃 된 것이나, 이에 한정되는 것은 아니다.In one embodiment of the present invention, the Htr2b gene is
또한, 상기 Htr2b 유전자(mRNA)는 NCBI Reference sequence NM_008311.3 에서 확인할 수 있다.In addition, the Htr2b gene (mRNA) can be identified in NCBI Reference sequence NM_008311.3.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 Htr2b 유전자의 엑손 2는 서열번호 12의 103-685번째 염기서열로 이루어진 것이다. In one embodiment of the present invention,
본 발명의 상기 형질전환 동물은 조직 특이적으로 Htr2b 유전자가 넉아웃 된 것이고, 구체적으로는 췌장의 β 세포 특이적으로 Htr2b 유전자가 넉아웃 된 것이다. The transgenic animal of the present invention is a tissue-specific Htr2b gene knockout, specifically, a pancreatic β cell-specific Htr2b gene knockout.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 형질전환 동물은 마우스인 것이 바람직하나, 이에 한정되는 것은 아니며 원숭이, 돼지, 말, 소, 양, 개, 고양이, 토끼 등을 포함하는 모든 동물이 이에 해당할 수 있다.In one embodiment of the present invention, the transgenic animal is preferably a mouse, but is not limited thereto, and all animals including monkeys, pigs, horses, cattle, sheep, dogs, cats, rabbits, etc. may correspond to this. can
본 발명의 구체적인 일 구현예에 있어서, 상기 형질전환 동물은 Htr2b fl/fl x Insulin-Cre +/- 마우스(Htr2b beta cell specific knockout mouse, Htr2b βKO mouse) 또는 Htr2b fl/fl x Pdx1-CreER +/- 마우스(Htr2b beta cell specific inducible knockout mouse, Htr2b βiKO mouse)이다. In a specific embodiment of the present invention, the transgenic animal is Htr2b fl/fl x Insulin-Cre +/- mouse (Htr2b beta cell specific knockout mouse, Htr2b βKO mouse) or Htr2b fl/fl x Pdx1-CreER +/ - Mouse (Htr2b beta cell specific inducible knockout mouse, Htr2b βiKO mouse).
상기 형질전환 동물은 Htr2b fl/fl x Insulin-Cre +/- 마우스(Htr2b beta cell specific knockout mouse, Htr2b βKO mouse)는 출생시부터 Htr2b 유전자가 제거된 형질전환 마우스이고, 상기 Htr2b fl/fl x Pdx1-CreER +/- 마우스(Htr2b beta cell specific inducible knockout mouse, Htr2b βiKO mouse)는 출생 이후 타목시펜을 투여하는 경우 타겟 유전자의 넉아웃이 유도되는 형질전환 마우스이다. The transgenic animal is an Htr2b fl/fl x Insulin-Cre +/- mouse (Htr2b beta cell specific knockout mouse, Htr2b βKO mouse) is a transgenic mouse in which the Htr2b gene has been removed from birth, and the Htr2b fl/fl x Pdx1 -CreER +/- mice (Htr2b beta cell specific inducible knockout mouse, Htr2b βiKO mouse) are transgenic mice in which target gene knockout is induced when tamoxifen is administered after birth.
본 발명의 다른 일 구현예에 있어서, 상기 형질전환 동물은 제2형 당뇨병, 비알코올성 지방간질환 및 간염 또는 대사증후군의 모델로 사용될 수 있으나, 반드시 이에 용도가 한정되는 것은 아니다. In another embodiment of the present invention, the transgenic animal may be used as a model for
본 발명의 또 다른 일 양태에 따르면, 본 발명은 다음 단계를 포함하는, 조직-특이적으로 Htr2b 유전자가 넉아웃 된 마우스의 제조방법을 제공한다:According to another aspect of the present invention, the present invention provides a method for preparing a mouse in which the tissue-specific Htr2b gene is knocked out, comprising the following steps:
(a) Htr2b의 엑손 2 양 옆에 loxp site를 삽입한 Htr2b floxed 마우스 및 조직-특이적으로 Cre-recombinase를 발현하는 마우스를 교배하는 단계; 및 (a) crossing Htr2b floxed mice in which loxp sites are inserted on both sides of
(b) 상기 교배 결과 얻어진 다음 세대 마우스를 얻는 단계.(b) obtaining a next-generation mouse obtained as a result of the crossing.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 조직-특이적으로 Cre-recombinase를 발현하는 마우스는 췌장 특이적으로 Cre-recombinase를 발현하는 Insulin2-Cre 마우스이다. In one embodiment of the present invention, the tissue-specifically expressing Cre-recombinase mouse is an Insulin2-Cre mouse expressing pancreatic-specific Cre-recombinase.
본 발명의 다른 구현예에 있어서, 상기 조직-특이적인 넉아웃이 이루어지는 조직은 췌장의 β 세포이다.In another embodiment of the present invention, the tissue-specific knockout tissue is a pancreatic β cell.
본 발명자들은 Htr2b floxed mouse를 Insulin Cre mouse와 교배하여 본 발명의 Htr2b 베타 세포 특이적 넉아웃 (Htr2b βKO ) 마우스를 제작하였다. 상기 Htr2b floxed 마우스는 Columbia대학의 Gerard Karsenty 교수로부터 얻었다.The present inventors crossed an Htr2b floxed mouse with an Insulin Cre mouse to prepare an Htr2b beta cell-specific knockout ( Htr2b βKO) mouse of the present invention. The Htr2b floxed mice were obtained from Professor Gerard Karsenty of Columbia University.
본 발명의 Htr2b βKO 마우스는 대조군과 체중차이는 보이지 않았고, GTT(Glucose tolerance test) 상, Htr2b βKO 마우스의 혈당이 악화되어 제 2형 당뇨와 유사한 표현형을 가진다. 반면, Htr2b βKO 마우스는 ITT(Insulin tolerance test) 상으로는 표현형의 차이가 없어, 인슐린 저항성에는 차이가 없다.The Htr2b βKO mouse of the present invention did not show a weight difference with the control group, and on a glucose tolerance test (GTT), the Htr2b βKO mouse had a phenotype similar to
또한, 본 발명의 Htr2b βKO 마우스의 β 세포양이 절반 미만으로 감소되어 있어, 제2형 당뇨와 유사한 표현형을 나타낸다.In addition, the amount of β cells of the Htr2b βKO mice of the present invention was reduced to less than half, indicating a phenotype similar to
또한, 본 발명의 Htr2b βKO 마우스는 췌장 β 세포의 인슐린 분비능력을 평가하는 GSIS(Glucose stimulated insulin secretion) 검사에서 인슐린 분비능이 저하되어 있는 것으로 나타났다. 즉 췌장 베타 세포에서 세로토닌이 없으면 인슐린 분비에 문제가 생기고, 이러한 점에서 본 발명의 Htr2b βKO 마우스는 제2형 당뇨의 표현형과 유사한 표현형을 나타낸다.In addition, it was found that the Htr2b βKO mouse of the present invention had decreased insulin secretion in a GSIS (glucose stimulated insulin secretion) test that evaluates the insulin secretion ability of pancreatic β cells. That is, the absence of serotonin in pancreatic beta cells causes a problem in insulin secretion, and in this respect, the Htr2b βKO mouse of the present invention exhibits a phenotype similar to that of
또한, 본 발명의 Htr2b βKO 마우스는 출생 당일 Htr2b βKO의 베타세포 양이 줄어들어 있음이 H&E염색 및 면역형광염색을 통해 확인되었고, 베타 세포의 증식(proliferation) 능력을 phosphohistone H3 (pHH3) 및 Ki-67을 통해 확인하였고, Htr2b βKO 마우스에서 베타 세포 증식능이 감소되어 있음을 확인하였다. 따라서, 본 발명의 Htr2b βKO 마우스는 출생 전후 베타세포의 양과 증식능의 감퇴로 인한 성인기 2형 당뇨 발병 모델로 유용하게 사용될 수 있다.In addition, it was confirmed through H&E staining and immunofluorescence staining that the amount of Htr2b βKO beta cells in the Htr2b βKO mice of the present invention was reduced on the day of birth, and the proliferation ability of beta cells was confirmed by phosphohistone H3 (pHH3) and Ki-67. was confirmed, and it was confirmed that beta cell proliferation was reduced in Htr2b βKO mice. Therefore, the Htr2b βKO mouse of the present invention can be usefully used as a model for the onset of
또한, 본 발명의 변형된 STAM 마우스 모델에서 확인한 바와 같이, 췌장 베타세포의 감소는 비알코올성 지방간, 간염, 간섬유화 및/또는 간경변을 유발하는 바, 본 발명의 Htr2b βKO 마우스는 비알코올성 지방간질환 및 간염의 모델 동물로서도 유용하게 사용될 수 있다. In addition, as confirmed in the modified STAM mouse model of the present invention, the decrease in pancreatic beta cells causes non-alcoholic fatty liver, hepatitis, liver fibrosis and/or cirrhosis. It can also be usefully used as a model animal for hepatitis.
따라서, 본 발명의 다른 일 양태에 따르면, 본 발명은 다음 단계를 포함하는 대사질환 치료제의 스크리닝 방법을 제공한다:Accordingly, according to another aspect of the present invention, the present invention provides a method for screening a therapeutic agent for a metabolic disease comprising the steps of:
(a) 본 발명의 상기 Tph1 또는 Htr2b가 넉아웃된 형질전환 동물에 대사질환 치료제 후보물질을 투여하는 단계; (a) administering a metabolic disease treatment candidate to the transgenic animal in which the Tph1 or Htr2b of the present invention is knocked out;
(b) 상기 후보물질을 투여한 형질전환 동물을 후보물질을 투여하지 않은 대조군 동물과 비교하여 질환에 대한 지표를 측정하는 단계; 및(b) measuring an index for a disease by comparing the transgenic animal administered with the candidate substance with a control animal not administered with the candidate substance; and
(c) 상기 지표가 후보물질을 투여한 형질전환 동물에서 대조군 동물에 비해 개선되는 경우, 후보물질을 대사질환의 치료제로 판정하는 단계.(c) determining the candidate substance as a therapeutic agent for metabolic diseases when the indicator is improved in the transgenic animal administered with the candidate substance compared to the control animal.
본 발명에 있어서, 상기 "후보물질"은 대사질환의 치료제로서 테스트할 물질을 의미하며, 예컨대 본 발명에서 분석하고자 하는 후보물질은 다양한 물질을 포함한다. 예를 들어, 상기 후보물질은 화학물질, 단백질, 펩타이드, 항체, 핵산 및 천연 추출물을 포함하나, 이에 한정되는 것은 아니다. 본 발명의 스크리닝 방법에 의해 분석되는 후보물질은 단일 화합물 또는 화합물들의 혼합물(예컨대, 천연 추출물 또는 세포 또는 조직 배양물)일 수 있다. 후보물질은 합성 또는 천연 화합물의 라이브러리로부터 얻을 수 있다. 이러한 화합물의 라이브러리를 얻는 방법은 당업계에 공지되어 있다. 합성 화합물 라이브러리는 Maybridge Chemical Co.(영국), Comgenex(미국), Brandon Associates(미국), Microsource(미국) 및 Sigma-Aldrich(미국)에서 상업적으로 구입 가능하며, 천연 화합물의 라이브러리는 Pan Laboratories(미국) 및 MycoSearch(미국)에서 상업적으로 구입가능하다. 단백질, 펩타이드 등의 후보물질은 당업계에 공지된 다양한 조합 라이브러리 방법에 의해 얻을 수 있으며, 예를 들어, 생물학적 라이브러리, 공간 어드레서블 패러럴 고상 또는 액상 라이브러리(spatially addressable parallel solid phase or solution phase libraries), 디컨볼루션이 요구되는 합성 라이브러리 방법, "1-비드 1-화합물" 라이브러리 방법, 그리고 친화성 크로마토그래피 선별을 이용하는 합성 라이브러리 방법에 의해 얻을 수 있다. 분자 라이브러리의 합성 방법은, DeWitt et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 90, 6909, 1993; Erb et al. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 91, 11422, 1994; Zuckermann et al., J. Med. Chem. 37, 2678, 1994; Cho et al., Science 261, 1303, 1993; Carell et al., Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 33, 2059, 1994; Carell et al., Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 33, 2061; Gallop et al., J. Med. Chem. 37, 1233, 1994 등에 개시되어 있다.In the present invention, the "candidate substance" means a substance to be tested as a therapeutic agent for a metabolic disease, for example, the candidate substance to be analyzed in the present invention includes various substances. For example, the candidate substances include, but are not limited to, chemicals, proteins, peptides, antibodies, nucleic acids, and natural extracts. A candidate to be analyzed by the screening method of the present invention may be a single compound or a mixture of compounds (eg, a natural extract or a cell or tissue culture). Candidates can be obtained from libraries of synthetic or natural compounds. Methods for obtaining libraries of such compounds are known in the art. Synthetic compound libraries are commercially available from Maybridge Chemical Co. (UK), Comgenex (USA), Brandon Associates (USA), Microsource (USA) and Sigma-Aldrich (USA), and libraries of natural compounds are available from Pan Laboratories (USA). ) and MycoSearch (USA). Candidate substances such as proteins and peptides can be obtained by various combinatorial library methods known in the art, for example, biological libraries, spatially addressable parallel solid phase or solution phase libraries (spatially addressable parallel solid phase or solution phase libraries) , a synthetic library method requiring deconvolution, a "1-bead 1-compound" library method, and a synthetic library method using affinity chromatography selection. Methods for synthesizing molecular libraries are described in DeWitt et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 90, 6909, 1993; Erb et al. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 91, 11422, 1994; Zuckermann et al., J. Med. Chem. 37, 2678, 1994; Cho et al., Science 261, 1303, 1993; Carell et al., Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 33, 2059, 1994; Carell et al., Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 33, 2061; Gallop et al., J. Med. Chem. 37, 1233, 1994, et al.
본 발명에 있어서, 상기 대사질환은 제2형 당뇨병, 비알코올성 지방간질환 및 간염, 또는 대사증후군 등을 포함하나, 이에 한정되는 것은 아니다. In the present invention, the metabolic disease includes, but is not limited to, type 2 diabetes, non-alcoholic fatty liver disease and hepatitis, or metabolic syndrome.
본 발명에 있어서, 상기 "질환에 대한 지표"는 상술한 대사질환과 관련하여 당업계에서 통상적으로 수행되는 검사에 의한 결과값을 의미한다. 예컨대 당뇨병의 경우는 금식 후 혈당 검사와 당부하 검사 결과 등을 의미하고, 이상지질혈증 중 고지혈증의 경우에는 총 콜레스테롤, LDL 콜레스테롤, HDL 콜레스테롤, 중성지방 검사 등의 결과값을 의미한다. 비만의 경우는 체중이나 체질량 지수(BMI)가 이에 해당한다. 또한, 지방간의 경우에는 ALT, AST, 또는 혈중 빌리루빈 농도의 변화, 복부초음파, 간생검에 의한 간 조직내 지방의 분포도, 간염의 경우에는 간세포의 풍선화, 섬유화, 염증세포 침윤 등의 결과를 의미한다. In the present invention, the "indicator for disease" refers to the result of a test routinely performed in the art in relation to the above-described metabolic disease. For example, in the case of diabetes, it means the results of a blood sugar test and glucose tolerance test after fasting, and in the case of hyperlipidemia among dyslipidemias, it means the results of total cholesterol, LDL cholesterol, HDL cholesterol, triglyceride test, and the like. In the case of obesity, this includes weight or body mass index (BMI). In addition, in the case of fatty liver, it refers to the results of changes in ALT, AST, or blood bilirubin concentration, the distribution of fat in the liver tissue by abdominal ultrasound and liver biopsy, and ballooning, fibrosis, and inflammatory cell infiltration in the case of hepatitis. do.
본 발명에 있어서, 상기 스크리닝 방법에 사용되는 형질전환 동물은 대사질환이 발병하도록 유도하는 처치가 수행된다. 예컨대 상기 형질전환 동물은 고지방식이를 급여할 수 있다. In the present invention, the transgenic animal used in the screening method is treated to induce the onset of a metabolic disease. For example, the transgenic animal may be fed a high-fat diet.
본 발명에 있어서, 상기 스크리닝 방법에 사용되는 형질전환 동물은 상술한 본 발명의 형질전환 동물과 동일하므로, 이들 사이에 공통된 내용은 본 명세서의 과도한 복잡성을 피하기 위하여 그 기재를 생략한다.In the present invention, the transgenic animal used in the screening method is the same as the above-described transgenic animal of the present invention, and therefore, descriptions of common contents among them are omitted to avoid excessive complexity of the present specification.
본 발명은 Tph1 또는 Htr2b 넉아웃 마우스 및 이의 제조방법을 제공한다. The present invention provides a Tph1 or Htr2b knockout mouse and a method for preparing the same.
본 발명의 Tph1 또는 Htr2b 넉아웃 마우스는 타겟 유전자의 넉아웃 효율이 높고, 췌장의 β 세포의 증식능이 감소되어 있으므로 제2형 당뇨 및 대사증후군을 비롯한 다양한 대사 질환 연구에 유용하게 사용될 수 있다. The Tph1 or Htr2b knockout mouse of the present invention has a high knockout efficiency of a target gene and has a reduced proliferative ability of β cells of the pancreas, so it can be usefully used in the study of various metabolic diseases, including
도 1a 내지 도 1g는 Tph1 tm1kry 를 이용하여 제작된 Tph1 KO 마우스는 부분적인 TPH 활성을 보유한다는 결과를 나타낸다. 도 1a는 Tph1 tm1kry 의 유전적 구조를 나타낸다. 도 2b는 야생형 및 Tph1 tm1kry GKO 마우스의 공장(jejunum) 내 5-HT 농도를 나타낸다 (n = 3-7 per group). 모든 데이터는 평균 ± 표준편차 로 표시되었다. (**P < 0.01 vs. 야생형, Student’s t-test). 도 1c는 야생형 및 Tph1 tm1kry GKO 마우스의 공장(jejunum) 내 5-HT를 나타내는 면역조직화학 염색 결과를 나타낸다. Scale bar, 50 μm.
도 1d는 Tph1 tm1kry βKO 마우스의 췌장 소도의 면역조직화학 염색 결과를 나타낸다 (n = 3 per group). 췌장 절편은 인슐린(녹색)과 5-HT(적색)으로 염색되었다. 대조군: MIP-Cre-hGH; βKO: Tph1 tm1kry βKO. Scale bar, 50 μm.
도 1e는 TPH1의 아미노산 서열을 나타낸다. 적색 글씨는 중첩되는 스플라이싱 위치; RD, regulatory domain; CD, catalytic domain; TD, tetramerization domain. 도 1f는 야생형 마우스의 Tph1 전사체와 Tph1 tm1kry GKO 마우스의 십이지장의 KO 전사체를 Tph1 Exon1 forward 및 Tph1 Exon11 reverse 프라이머를 이용하여 RT-PCR로 증폭한 결과를 나타낸다. 빈 삼각형은 1000 bp를 가리키고, 검은 삼각형은 1500 bp를 가리킨다. 도 1g는 Tph1 tm1kry βKO 마우스와 hetero βKO 마우스의 췌장 소도로부터 면역블랏 분석에 의해 TPH1 (50 kD) 및 절단된 TPH1 (37kD)를 검출한 결과를 나타낸다.
도 2a 내지 도 2e는 새로운 Tph1 floxed 마우스 모델의 제작에 관한 것이다. 도 2a는 새로운 Tph1 floxed 마우스의 제작을 위한 타겟팅 전략의 개략도이다. 도 2b는 Tph1 tm1a 및 Tph1 tm1c 마우스의 유전자 타이핑(genotyping)을 나타낸 도이다. 도 1c는 Tph1 tm1c βKO 마우스에서 췌장 소도의 유전자 타이핑을 나타낸 도이다. 빈 삼각형(empty triangles)은 500 bp를 나타내고, 검은 삼각형은 1000 bp를 나타낸다. 도 2d 및 도 2e는 야생형 및 Tph1 tm1a 마우스의 뇌 (2d) 및 소장 (2e)에서 X-gal 염색 결과를 나타낸 도이다 (n = 그룹당 3마리). 빨간색 원은 송과체(pineal grand)이다. 이미지는 입체현미경 stereomicroscope)을 이용하여 촬영되었다.
도 3a 내지 도 3c는 Tph1 tm1a 마우스에서 Tph1 의 발현 및 5- HT 수준을 나타낸다. 도 3a는 Tph1 tm1a 마우스의 공장(jejunum)에서 Tph1 mRNA 수준은 정량적 실시간 RT-PCR로 측정하고, 야생형 마우스의 Tph1 mRNA 수준에 대해서 상대적으로 표현한 결과를 나타낸다. 도 3b는 야생형 마우스와 Tph1 tm1a 마우스의 공장에서 5-HTl 면역조학화학 염색를 나타낸다. Scale bar, 50 μm. 도 3c는 혈청, 공장, 및 뇌에서의 5-HT 수준을 LC-MS/MS로 측정하였다. 모든 데이터는 평균 ± 표준편차로 나타내었다 (n = 5-8 per group; *P < 0.05, **P < 0.01, and ***P < 0.001 vs. Tph1+/+, Student’s t-test).
도 4a 내지 도 4d는 새롭게 제작한 Tph1 floxed 마우스에서 Tph1 발현과 5-HT 수준을 나타낸 도이다. 도 4a는 야생형 마우스와 Tph1 tm1c GKO 마우스의 십이지장, 공장, 회장, 및 결장에서의 Tph1 mRNA 수준을 정량적 실시간 RT-PCT에 의해 측정한 결과를 나타내고, 야생형과 비교한 상대치로 표현되었다 (n = 3-5 per group). 도 4b는 십이지장, 공장, 회장, 결장, 및 뇌에서의 5-HT 수준을 LC-MS/MS로 측정한 결과를 나타낸다 (n = 3-8 per group). 모든 데이터는 평균 ± 표준편차로 표현되었다 (**P < 0.01, ***P < 0.001 vs. wild type, Student’s t-test). 도 4c는 야생형 마우스와 Tph1 tm1c GKO 마우스의 십이지장, 공장, 회장, 및 결장에서의 5-HT에 대한 대표적인 면역조직화학염색. Scale bar, 50 μm. 도 4d는 MIP-Cre-hGH (Control) 및 Tph1 tm1c βKO 마우스의 췌장 소도에서의 대표적인 면역형광염색 결과를 나타낸다(n = 3 per group). 췌장 절편은 인슐린(녹색) 및 5-HT (적색)으로 염색되었다. Scale bar, 50 μm.
도 5a 내지 도 5f는 주산기(perinatal period)에 세로토닌이 β 세포 매스 및 증식을 조절함을 나타낸다. 도 5a는 인간의 주산기 췌장의 조직학을 H&E 및 5-HT 에 대한 면역조직화학 염색으로 나타낸 도이다(임신 후 24주령, 생후 8일령, 및 생후 3개월령). 도 5b는 C57BL6/J 마우스에서 얻은 주산기 췌장 소도(perinatal islet)의 면역형광 이미지를 나타낸 도이다. 녹색은 인슐린을, 적색은 5-HT를 나타낸다. 도 5c 내지 도 5f는 대조군과 Tph1 βKO 마우스의 췌장을 생후 0일령(P0)에 평가한 도이다. 도 5c는 전체 췌장을 H&E와 면역형광염색으로 나타낸 도이다. 인슐린은 녹색이고, 아밀라아제는 적색으로 나타내었다. 도 5d는 β 세포 매스(β cell mass)를 전체 췌장 면적에 대한 β 세포 면적의 백분율로 정량화한 결과를 나타낸 도이다. 도 5e는 β 세포 증식에 대한 면역 형광 이미지이다. 인슐린은 녹색, 인-히스톤 H3 (phosphor-Histone H3, PHH3)는 적색으로 나타내었으며, 화사표는 인슐린과 PHH3에 모두 양성인 세포를 나타낸다. 이의 정량화는 모든 β 세포에서 인슐린 및 PHH3에 대해 모두 양성인 세포의 백분율로 나타내었다. 도 5f는 P0의 췌장에서 사이클린 패밀리(cyclin family)의 mRNA 발현을 qRT-PCR로 나타낸 도이다. 데이터는 평균 ± 표준편차로 나타내었다. *P<0.05, **P<0.01 및 ***P<0.001.
도 6a 내지 도 6f는 세로토닌이 성체의 β 세포 매스(β cell mass)을 결정하고, 글루코스 항상성을 유지한다는 것을 나타낸다. 도 6a는 9주령 웅성 대조군 마우스와 9주령의 웅성 Tph1 βKO 마우스의 16시간 금식 후 복강내 글루코스 주사(2 g/kg) 후에 측정된 혈당을 나타낸 도이다. 도 6b는 9주령 웅성 대조군 마우스와 9주령의 웅성 Tph1 βKO 마우스의 16시간 금식 후 복강내 글루코스 주사(2 g/kg) 후에 측정된 혈장 인슐린 수준을 나타낸 도이다. 도 6c는 9주령 웅성 대조군 마우스와 9주령의 웅성 Tph1 βKO 마우스의 ex vivo GSIS 분석 결과를 나타낸 도이다. 2.8mM 또는 16.8mM 의 글루코스를 투여한 후의 인슐린 분비를 기초 인슐린 분비량을 기준으로 배수로 나타내었다. 도 6d는 9주령 웅성 대조군 마우스와 9주령의 웅성 Tph1 βKO 마우스의 전체 췌장 면적에 대한 β 세포 면적의 백분율로 β 세포 매스를 정량화하여 나타낸 도이다. 도 6e는 9주령 웅성 대조군 마우스와 9주령의 웅성 Tph1 βKO 마우스의 β 세포 증식을 면역형광이미지 및 정량적 결과로 나타낸 도이다. 인슐린은 녹색이고, Ki-67은 적색으로 나타내었으며, 화살표는 인슐린과 Ki-67이 모두 양성인 세포를 나타낸다. 도 6f는 9주령 웅성 대조군 마우스와 9주령의 웅성 Tph1 βKO 마우스의 췌장 중량을 나타낸 도이다. 데이터는 평균 ± 표준편차로 나타내었다. *P<0.05, **P<0.01 및 ***P<0.001.
도 7a 내지 도 7j는 세로토닌 수용체 2b(HTR2B)가 주산기 β 세포(perinatal β cell)에서 5-HT의 다운스트림 타겟임을 나타낸다. 도 7a는 qRT-PCR로 평가된 췌장의 발달 과정에서의 HTR의 mRNA 발현을 나타낸 도이다. 도 7b는 대조군 및 Htr2b βKO 마우스의 생후 0일령 (Postnatal day 0, P0)의 췌장을 H&E 염색으로 나타낸 도이다. 도 7c는 대조군 및 Htr2b βKO 마우스의 생후 0일령 (Postnatal day 0, P0)의 췌장의 β 세포 매스를 나타낸 도이다. 도 7d는 대조군 및 Htr2b βKO 마우스의 생후 0일령 (Postnatal day 0, P0)의 췌장 중량을 나타낸 도이다. 도 7e는 대조군 및 Htr2b βKO 마우스의 생후 0일령 (Postnatal day 0, P0)의 췌장의 β 세포 증식 면역형광 이미지와 정량결과를 나타낸 도이다. 인슐린은 녹색, PHH3는 적색으로 나타내었고, 화살표는 인슐린과 PHH3가 모두 양성인 세포를 나타낸다. 정량결과는 모든 β 세포 중 인슐린과 PHH3가 모두 양성인 세포를 백분율로 나타내었다. 도 7f는 9주령의 웅성 대조군 마우스와 9주령의 웅성 Htr2b βKO 마우스의 16시간 금식 후 복강내 글루코스 주사(2 g/kg) 후에 측정된 혈당을 나타낸 도이다. 도 7g는 9주령의 웅성 대조군 마우스와 9주령의 웅성 Htr2b βKO 마우스의 16시간 금식 후 복강내 글루코스 주사(2 g/kg) 후에 측정된 혈장 인슐린 수준을 나타낸 도이다. 도 7h는 9주령의 웅성 대조군 마우스와 9주령의 웅성 Htr2b βKO 마우스의 ex vivo GSIS 분석 결과를 나타낸 도이다. 2.8mM 또는 16.8mM 의 글루코스를 투여한 후의 인슐린 분비를 기초 인슐린 분비량을 기준으로 배수로 나타내었다. 도 7i는 9주령의 웅성 대조군 마우스와 9주령의 웅성 Htr2b βKO 마우스의 전체 췌장 면적에 대한 β 세포 면적의 백분율로 β 세포 매스를 정량화하여 나타낸 도이다. 도 7j는 9주령의 웅성 대조군 마우스와 9주령의 웅성 Htr2b βKO 마우스의 췌장의 중량을 나타낸 도이다. 데이터는 평균 ± 표준편차로 나타내었다. *P<0.05, **P<0.01 및 ***P<0.001.
도 8a는 고지방 식이를 4주간 먹인 12주령의 마우스를 16시간 동안 금식시킨 후 복강 내 글루코스 주사(2 g/kg)를 한 후, 혈당을 나타낸 도이다. 도 8b는 고지방 식이를 8주간 먹인 12주령의 마우스를 16시간 동안 금식시킨 후 복강 내 글루코스 주사(2 g/kg)를 한 후, 혈당을 나타낸 도이다. 도 8c는 이들 마우스에 인슐린 수용체 길항제인 S-961을 7일간 투여한 후 β 세포 증식을 나타낸 도이다. β 세포 증식의 정량 결과는 전체 β 세포에 대한 인슐린 및 Ki-67이 모두 양성인 세포를 백분율로 나타내었다. 도 8d 내지 8e는 대조군, Prlr βKO, Stat5 βKO, 및 Ghr βKO 마우스의 0일령 췌장의 나타낸 도이다. 도 8d는 대조군, Prlr βKO, Stat5 βKO, 및 Ghr βKO 마우스의 0일령 췌장의 5-HT(적색) 및 인슐린(녹색)을 면역형광염색으로 나타낸 도이다. 도 8e는 대조군, Prlr βKO, Stat5 βKO, 및 Ghr βKO 마우스의 0일령 췌장의 H&E 염색 및 β 세포 증식에 대한 면역형광 이미지를 나타낸 도이다. 인슐린은 녹색, 인-히스톤 H3(phosphor-histone H3, PHH3)은 적색으로 나타내었고, 화살표는 인슐린과 PHH3가 모두 양성인 세포를 나타낸다. 도 8f는 생후 0일령의 대조군과 Ghr βKO 마우스의 β 세포 증식에 대한 정량 결과를 모든 β 세포 중 인슐린 및 PHH3가 모두 양성인 세포를 백분율로 나타낸 도이다. 도 8g는 생후 0일령의 대조군과 Ghr βKO 마우스의 β 세포 매스에 대한 정량 결과를 전체 췌장 면적에 대한 β 세포 면적의 백분율로 나타낸 도이다. 도 8h는 주산기 동안의 β 세포 증식에 관한 GHR- STAT5-TPH1-HTR2B 축의 개략도이다. 데이터는 평균 ± 표준편차로 나타내었다. *P<0.05, **P<0.01 및 ***P<0.001.
도 9a 내지 도 9b는 세로토닌이 주산기 기간 동안 사람과 마우스의 β 세포에서 생산된다는 점을 나타낸다. 도 9a는 임신 14주령의 태아 췌장을 면역형광 염색한 결과이다. 인슐린(녹색), 글루카곤 (회색) 및 5-HT (적색). 도 9b는 주산기 기간 동안 C57BL6/J 췌장에서 Tph1 및 Tph2 mRNA 전사체의 발현을 나타낸 도이다.
도 10a 내지 도 10e는 Tph1 βKO의 주산기 특징을 나타낸다. 도 10a는 출생 당일 (P0)에서 대조군과 Tph1 βKO 췌장에서의 Tph1 mRNA 발현을 나타낸 도이다. 도 10b는 P0 및 임신중 (14 일)에서 대조군 및 Tph1 βKO 췌장 소도의 5-HT의 IF 염색 결과를 나타낸 도이다. 도 1c는 대조군과 Tph1 βKO를 β 세포 마커(PDX1 및 NKX6.1)의 출생당일 면역염색한 결과를 나타낸 도이다. 도 10d는 P0에서의 췌장 무게를 나타낸 도이다. 도 10e 는 P0에서 Tφ1 βKO 및 Htr2b βKO의 TUNEL IF 염색을 나타낸 도이다. 아폽토시스는 모든 샘플에서 드물게 나타났고, DNase로 처리된 부분을 양성 대조군으로 사용하였다.
도 11a 내지 11c는 Tph1 βKO의 성체기 특징을 나타낸다. 도 11a는 체중을, 도 11b는 6시간 금식 후 복강내 인슐린 저항성 테스트(0.75 U/kg) 결과를 나타낸다. 도 11c는 β 세포 마커(PDX1 및 NKX6.1)의 면역염색 결과를 나타낸 도이다.
도 12a는 Htr1b KO 마우스의 베타 세포 증식능력을 출생 당일 인슐린 및 pHH3가 모두 양성인 세포의 백분율로 정량하여 나타낸 도이다. 도 12b는 Htr1d KO 마우스의 베타 세포 증식능력을 출생 당일 인슐린 및 pHH3가 모두 양성인 세포의 백분율로 정량하여 나타낸 도이다.
도 13a 내지 도 13c는 Htr2b βKO의 성체기 특징을 나타낸다. 도 13a는 체중을, 도 13b는 6시간 금식 후 복강내 인슐린 저항성 테스트(0.75 U/kg) 결과를 나타낸다. 도 13c는 β 세포 마커(PDX1 및 NKX6.1)의 면역염색 결과를 나타낸 도이다.
도 14는 본 발명의 변형된 STAM 마우스 모델의 제작방법 및 그에 따른 표현형을 나타낸 도이다.
도 15는 인슐린 면역염색을 통한 STZ(streptozotocin)의 투여 전후의 췌장 베타세포의 양의 변화를 나타낸 도이다.
도 16은 STZ 투여가 마우스의 금식 후 혈당에 미치는 영향을 나타낸 도이다.
도 17은 STZ 투여가 마우스의 간에 미치는 영향을 나타낸 도이다. 1a to 1g are Tph1 tm1kry Tph1 KO mice constructed using 1A shows the genetic structure of Tph1 tm1kry . Figure 2b shows wild-type and Tph1 tm1kry The concentration of 5-HT in the jejunum of GKO mice is shown ( n = 3-7 per group). All data are expressed as mean ± standard deviation. (** P < 0.01 vs. wild-type, Student's t -test). Figure 1c shows wild-type and Tph1 tm1kry The results of immunohistochemical staining showing 5-HT in the jejunum of GKO mice are shown. Scale bar, 50 μm.
1d is Tph1 tm1kry The results of immunohistochemical staining of pancreatic islets from βKO mice are shown (n = 3 per group). Pancreatic sections were stained with insulin (green) and 5-HT (red). Control: MIP-Cre-hGH; βKO: Tph1 tm1kry βKO. Scale bar, 50 μm.
1E shows the amino acid sequence of TPH1. Red text indicates overlapping splicing locations; RD, regulatory domain; CD, catalytic domain; TD, tetramerization domain. 1f shows Tph1 transcripts and Tph1 tm1kry from wild-type mice. The results of amplifying the duodenal KO transcript of GKO mice by RT-PCR using Tph1 Exon1 forward and Tph1 Exon11 reverse primers are shown. An empty triangle indicates 1000 bp, and a black triangle indicates 1500 bp. Figure 1g is Tph1 tm1kry The results of detection of TPH1 (50 kD) and cleaved TPH1 (37 kD) by immunoblot analysis from pancreatic islets of βKO mice and hetero βKO mice are shown.
2a to 2e relate to the construction of a novel Tph1 floxed mouse model. 2A is a schematic diagram of a targeting strategy for construction of novel Tph1 floxed mice. 2b shows Tph1 tm1a and Tph1 tm1c It is a diagram showing the genotyping of a mouse. 1c shows Tph1 tm1c A diagram showing the genotyping of pancreatic islets in βKO mice. Empty triangles represent 500 bp and black triangles represent 1000 bp. 2d and 2e show wild-type and Tph1 tm1a A diagram showing the results of X-gal staining in mouse brain (2d) and small intestine (2e) (n = 3 mice per group). The red circle is the pineal grand. Images were taken using a stereomicroscope).
3a to 3c are Tph1 tm1a Expression of Tph1 and 5-HT levels in mice are shown. Figure 3a is Tph1 tm1a The Tph1 mRNA level in the mouse jejunum was measured by quantitative real-time RT-PCR, and the result is expressed relative to the Tph1 mRNA level of the wild-type mouse. Figure 3b shows wild-type mice and Tph1 tm1a. 5-
4a to 4d are diagrams showing Tph1 expression and 5-HT levels in newly prepared Tph1 floxed mice. Figure 4a shows wild-type mice and Tph1 tm1c GKO Tph1 mRNA levels in the duodenum, jejunum, ileum, and colon of mice were measured by quantitative real-time RT-PCT and expressed as relative values compared to wild-type (n = 3-5 per group). Figure 4b shows the results of measuring 5-HT levels in the duodenum, jejunum, ileum, colon, and brain by LC-MS/MS (n = 3-8 per group). All data were expressed as mean ± standard deviation (** P < 0.01, *** P < 0.001 vs. wild type, Student's t -test). Figure 4c shows wild-type mice and Tph1 tm1c Representative immunohistochemical staining for 5-HT in duodenum, jejunum, ileum, and colon of GKO mice. Scale bar, 50 μm. 4D shows representative immunofluorescence staining results in pancreatic islets of MIP-Cre-hGH (Control) and Tph1 tm1c βKO mice (n = 3 per group). Pancreatic sections were stained with insulin (green) and 5-HT (red). Scale bar, 50 μm.
5A to 5F show that serotonin regulates β cell mass and proliferation in the perinatal period. 5A is a diagram showing the histology of human perinatal pancreas by immunohistochemical staining for H&E and 5-HT (24 weeks of pregnancy, 8 days of age, and 3 months of age). FIG. 5b is a diagram showing immunofluorescence images of perinatal islets obtained from C57BL6/J mice. Green represents insulin and red represents 5-HT. 5c to 5f are diagrams evaluating the pancreas of the control group and Tph1 βKO mice at 0 days of age (P0). Figure 5c is a diagram showing the whole pancreas by H&E and immunofluorescence staining. Insulin is shown in green, and amylase is shown in red. FIG. 5D is a diagram illustrating the result of quantifying the β cell mass as a percentage of the β cell area to the total pancreatic area. Figure 5e is an immunofluorescence image of β cell proliferation. Insulin is shown in green, phosphor-histone H3 (phosphor-Histone H3, PHH3) is shown in red, and the arrows indicate cells that are positive for both insulin and PHH3. Its quantification was expressed as the percentage of cells positive for both insulin and PHH3 in all β cells. Figure 5f is a diagram showing the mRNA expression of the cyclin family (cyclin family) in the pancreas of P0 by qRT-PCR. Data are presented as mean ± standard deviation. * P <0.05, ** P <0.01 and *** P <0.001.
6A to 6F show that serotonin determines β cell mass in adults and maintains glucose homeostasis. 6A is a diagram showing blood glucose measured after intraperitoneal glucose injection (2 g/kg) after 16 hours of fasting in 9-week-old male control mice and 9-week-old male Tph1 βKO mice. do 6b is a diagram showing plasma insulin levels measured after intraperitoneal glucose injection (2 g/kg) after fasting for 16 hours in 9-week-old male control mice and 9-week-old male Tph1 βKO mice. 6c is a diagram showing the results of ex vivo GSIS analysis of 9-week-old male control mice and 9-week-old male Tph1 βKO mice. Insulin secretion after administration of 2.8 mM or 16.8 mM glucose was expressed as a multiple of the basal insulin secretion. 6D is a diagram illustrating quantification of β cell mass as a percentage of the β cell area to the total pancreatic area of a 9-week-old male control mouse and a 9-week-old male Tph1 βKO mouse. FIG. 6e is a diagram showing the β cell proliferation of 9-week-old male control mice and 9-week-old male Tph1 βKO mice using immunofluorescence images and quantitative results. Insulin is green, Ki-67 is red, and arrows indicate cells that are positive for both insulin and Ki-67. Figure 6f shows the results of a 9-week-old male control mouse and a 9-week-old male Tph1 βKO mouse. A diagram showing the weight of the pancreas. Data are presented as mean ± standard deviation. * P <0.05, ** P <0.01 and *** P <0.001.
7A to 7J show that serotonin receptor 2b (HTR2B) is a downstream target of 5-HT in perinatal β cells. Figure 7a is a diagram showing the mRNA expression of HTR in the development of the pancreas evaluated by qRT-PCR. 7B is a diagram showing the pancreas of 0 days (
Figure 8a is a diagram showing blood glucose after intraperitoneal glucose injection (2 g/kg) in 12-week-old mice fed a high-fat diet for 4 weeks after fasting for 16 hours. Figure 8b is a diagram showing blood glucose after intraperitoneal glucose injection (2 g/kg) in 12-week-old mice fed a high-fat diet for 8 weeks after fasting for 16 hours. FIG. 8c is a diagram showing β cell proliferation after 7 days of administration of S-961, an insulin receptor antagonist, to these mice. Quantitative results of β cell proliferation were expressed as a percentage of cells positive for both insulin and Ki-67 relative to total β cells. 8D to 8E are diagrams showing the 0-day-old pancreas of control, Prlr βKO, Stat5 βKO, and Ghr βKO mice. 8D is a diagram showing 5-HT (red) and insulin (green) immunofluorescence staining of 0-day-old pancreas of a control group, Prlr βKO, Stat5 βKO, and Ghr βKO mice. 8E is a diagram showing immunofluorescence images for H&E staining and β cell proliferation of 0-day-old pancreas of a control group, Prlr βKO, Stat5 βKO, and Ghr βKO mice. Insulin is shown in green, phosphor-histone H3 (PHH3) is shown in red, and arrows indicate cells positive for both insulin and PHH3. FIG. 8f is a diagram showing the percentage of cells positive for both insulin and PHH3 among all the β cells of the quantitative results of β cell proliferation in the 0-day-old control group and Ghr βKO mice. FIG. 8G is a diagram showing the quantification results of the β cell mass of the 0-day-old control group and the Ghr βKO mouse as a percentage of the β cell area to the total pancreatic area. 8H is a schematic diagram of the GHR-STAT5-TPH1-HTR2B axis of β cell proliferation during perinatal period. Data are presented as mean ± standard deviation. * P <0.05, ** P <0.01 and *** P <0.001.
9A-9B show that serotonin is produced in human and mouse β cells during the perinatal period. 9A is a result of immunofluorescence staining of a fetal pancreas at 14 weeks of gestation. Insulin (green), glucagon (grey) and 5-HT (red). 9B is a diagram showing the expression of Tph1 and Tph2 mRNA transcripts in the C57BL6/J pancreas during the perinatal period.
10A-10E show the perinatal characteristics of Tph1 β KO. Figure 10a is a diagram showing the expression of Tph1 mRNA in the control group and Tph1 βKO pancreas on the day of birth (P0). 10B is a diagram showing the IF staining results of 5-HT of control and Tph1 βKO pancreatic islets at P0 and during pregnancy (14 days). 1c is a diagram showing the results of day-of-birth immunostaining of the control group and Tph1 βKO for β cell markers (PDX1 and NKX6.1). Figure 10d is a diagram showing the pancreas weight at P0. 10E is a diagram showing TUNEL IF staining of Tφ1 βKO and Htr2b βKO at P0. Apoptosis was rare in all samples, and the portion treated with DNase was used as a positive control.
11A-11C show the adult phase characteristics of Tph1 β KO. Fig. 11a shows body weight, and Fig. 11b shows the results of an intraperitoneal insulin resistance test (0.75 U/kg) after 6 hours of fasting. 11C is a diagram showing the results of immunostaining of β cell markers (PDX1 and NKX6.1).
Figure 12a is a diagram showing the quantification of the beta cell proliferation capacity of Htr1b KO mice as a percentage of cells positive for both insulin and pHH3 on the day of birth. 12B is a diagram illustrating the beta cell proliferation ability of Htr1d KO mice by quantification as a percentage of cells positive for both insulin and pHH3 on the day of birth.
13A-13C show the adult phase characteristics of Htr2b β KO. Figure 13a shows the body weight, Figure 13b shows the results of an intraperitoneal insulin resistance test (0.75 U/kg) after 6 hours of fasting. 13C is a diagram showing the results of immunostaining of β cell markers (PDX1 and NKX6.1).
14 is a diagram showing a method for producing a modified STAM mouse model of the present invention and a phenotype thereof.
15 is a diagram showing the change in the amount of pancreatic beta cells before and after administration of STZ (streptozotocin) through insulin immunostaining.
16 is a diagram showing the effect of STZ administration on blood glucose after fasting in mice.
17 is a diagram showing the effect of STZ administration on the liver of mice.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.Hereinafter, the present invention will be described in more detail through examples. These examples are only for illustrating the present invention in more detail, and it will be apparent to those skilled in the art that the scope of the present invention is not limited by these examples according to the gist of the present invention. .
실시예Example
본 명세서 전체에 걸쳐, 특정 물질의 농도를 나타내기 위하여 사용되는 "%"는 별도의 언급이 없는 경우, 고체/고체는 (중량/중량) %, 고체/액체는 (중량/부피) %, 그리고 액체/액체는 (부피/부피) %이다.Throughout this specification, "%" used to indicate the concentration of a specific substance is (weight/weight) % for solid/solid, (weight/volume) % for solid/liquid, and Liquid/liquid is (volume/volume) %.
실시예 1: Tph1 KO 마우스의 제작Example 1: Construction of Tph1 KO mice
1-1. Tph1 KO 마우스의 제작1-1. Construction of Tph1 KO mice
Tph1-표적화 된 배아 줄기 (ES) 세포 클론 EPD0195_1_C03은 trans-NIH Knock-Out Mouse Project (KOMP)에서 얻었다. 돌연변이 Tph1 대립 유전자 (Tph1tm1a (KOMP) Wtsi)는 Tph1 유전자의 엑손 4와 5 사이에 위치한 인트론에 삽입된 En2 SA, FRT 사이트, loxP 사이트, lacZ 및 네오마이신 카세트를 포함한다 (도 2a). Tph1-targeted embryonic stem (ES) cell clone EPD0195_1_C03 was obtained from the trans-NIH Knock-Out Mouse Project (KOMP). The mutant Tph1 allele (Tph1 tm1a (KOMP) Wtsi ) contains an En2 SA, FRT site, loxP site, lacZ and neomycin cassette inserted into an intron located between
표적 ES 세포를 BALB/c 마우스의 배반포에 주입하고, Tph1tm1a (KOMP) Wtsi 대립 유전자를 보유하는 C57BL/6N × BALB/c 키메라 파운더를 C57BL/6J 마우스와 교배시켰다. F1 마우스에서의 생식선 전달(Germline transmission)을 분석하고 확인된 자손을 형질전환 플리페이스 마우스(transgenic flippase mice)와 교배시켜 LacZ 엑손 트랩과 네오 마이신 내성 카세트에 인접한 FRT 부위를 재조합시켰다. FRT-KO 대립 유전자를 보유하는 마우스(Tph1 tm1c (KOMP) Wtsi )를 표시된 조직 특이적 Cre 마우스와 교배시켰다. Tph1 tm1a (KOMP) Wtsi 또는 Tph1 tm1c (KOMP) Wtsi 대립 유전자를 보유한 마우스는 C57BL/6J 유전적 배경에서 역교배 되고, 유지되었다.Target ES cells were injected into blastocysts of BALB/c mice, and C57BL/6N × BALB/c chimeric Founders carrying the Tph1 tm1a (KOMP) Wtsi allele were crossed with C57BL/6J mice. Germline transmission in F1 mice was analyzed and the identified progeny were crossed with transgenic flippase mice to recombine the LacZ exon trap and the FRT site adjacent to the neomycin resistance cassette. Mice carrying the FRT-KO allele ( Tph1 tm1c (KOMP) Wtsi ) were crossed with the indicated tissue-specific Cre mice. Tph1 tm1a Mice carrying the ( KOMP) Wtsi or Tph1 tm1c (KOMP) Wtsi allele were backcrossed and maintained in the C57BL/6J genetic background.
이하에서 돌연변이 대립 유전자는 Tm1a (Tph1 tm1a (KOMP) Wtsi ), tm1c (Tph1 tm1c (KOMP) Wtsi) 및 tm1d (Tph1 tm1d (KOMP) Wtsi )로 약칭되고, 상기 돌연변이 대립 유전자인 Tph1 tm1a (KOMP) Wtsi 또는 Tph1 tm1c (KOMP) Wtsi 를 보유하는 마우스는 각각 Tph1 tm1a 마우스 및 Tph1 tm1c 마우스로 약칭된다. Hereinafter, the mutant allele is Tm1a ( Tph1 tm1a (KOMP) Wtsi ), tm1c ( Tph1 tm1c (KOMP) Wtsi ) and tm1d ( Tph1 tm1d (KOMP) Wtsi ), the mutant allele, Tph1 tm1a (KOMP) Wtsi or Tph1 tm1c (KOMP) Wtsi -bearing mice are abbreviated as Tph1 tm1a mice and Tph1 tm1c mice, respectively.
유전자형의 분석을 위해 사용된 프라이머들은 표 1에 기재되었다.Primers used for genotype analysis are listed in Table 1.
1-2. 동물 관리1-2. animal care
Tph1 tm1kry (MGI: 3837399), Villin-Cre (MGI: 2448639), 및 MIP-Cre-hGH 마우스는 SPF 시설(specific pathogen-free barrier facility)에서 12시간 명암주기로 기후-조절 환경 하에 사육되었고, 일반 사료와 물을 무제한 급이하였다. 모든 마우스 연구는 한국과학기술원의 동물실험윤리위원회(Institutional Animal Care and Use Committee)의 승인을 받았다고, 모든 실험은 관련된 가이드라인과 규정에 의해 수행되었다. Tph1 tm1kry (MGI: 3837399), Villin-Cre (MGI: 2448639), and MIP-Cre-hGH mice were bred in a specific pathogen-free barrier facility (SPF) under a climate-controlled environment with a 12-hour light-dark cycle, general food and water. was fed indefinitely. All mouse studies were approved by the Institutional Animal Care and Use Committee of the Korea Advanced Institute of Science and Technology, and all experiments were performed according to the relevant guidelines and regulations.
1-3. 5-HT의 수준 측정을 위한 혈청 및 조직의 준비1-3. Preparation of Serum and Tissue for Measurement of Levels of 5-HT
마우스의 후안와 출혈로 얻은 혈액 샘플을 혈청-분리 튜브 (BD, 365967)에 수집하였다. 혈액을 실온에서 15 분 동안 응고시킨 다음 4 ℃에서 10 분간 2000 × g으로 원심 분리하였다. 수집된 혈청을 1:9의 비율로 메탄올과 혼합한 후 4 ℃에서 15 분간 12000 × g으로 원심 분리 하였다. 생성된 상층 액을 즉시 동결시키고 추가 분석시까지 -80 ℃에서 보관하였다. 십이지장, 공장, 회장, 및 결장은 절개하여 인산완충용액(phosphate-buffered saline, PBS)으로 세척하였다. 송과체는 뇌로부터 절제하였다. 십이지장, 공장, 회장, 결장, 및 뇌는 RIPA 완충용액 (Thermo Fisher Scientific)에서 FastPrep-24 비드 균질기 (MP Biomedicals)를 이용하여 균질화시키고, 12,000 × g로 4 °C에서 5분간 원심분리하였다. 상층액은 메탄올과 1:1의 비율로 혼합하고, 12000 × g로 4 °C에서 15분간 원심분리하였으며, 그후 즉시 동결하여 추가 분석시까지 80 °C에서 보관하였다. 상층액 분액 (100 μL)은 새로운 샘플 튜브에 옮겨 제조사(Thermo Fischer Scientific)의 프로토콜에 따라 BCA 분석으로 단백질 정량에 사용하였다. 별도의 100-μL 상층액 분액을 깨끗한 샘플 튜브에 옮기고, 300 ml의 HPLC-수준의 순수한 메탄올 (Sigma-Aldrich)과 혼합하였다. 혼합 후, 12000 × g로 4 °C에서 15분간 원심분리하였다. 100 μL의 상층액 샘플은 5-HT를 동위원소-희석 LC-MS(isotope-dilution liquid chromatography-mass spectrometry)로 측정하는데 사용되었다. 이 분석을 위하여, 20 μL의 1 mg/kg 5-HT-α,α,β,β-d4 Creatinine Sulfate 복합체 용액 (CDN isotopes Inc.)을 샘플 용액에 첨가하고, 100 μL의 메탄올을 첨가하였다. 혼합 후, 샘플을 진공에서 증류시켰다. 잔여물은 50 μL의 증류수에 용해시켜, 1회용 주사기 필터로 여과한 다음, 분석을 위해 LC-MS 시스템에 투입하였다. Blood samples obtained from posterior orbital bleeding in mice were collected in serum-separation tubes (BD, 365967). Blood was clotted at room temperature for 15 minutes and then centrifuged at 2000 × g for 10 minutes at 4°C. The collected serum was mixed with methanol in a ratio of 1:9 and centrifuged at 12000 × g for 15 minutes at 4°C. The resulting supernatant was immediately frozen and stored at -80 °C until further analysis. The duodenum, jejunum, ileum, and colon were dissected and washed with phosphate-buffered saline (PBS). The pineal gland was excised from the brain. The duodenum, jejunum, ileum, colon, and brain were homogenized in RIPA buffer (Thermo Fisher Scientific) using a FastPrep-24 bead homogenizer (MP Biomedicals) and centrifuged at 12,000 × g at 4 °C for 5 min. The supernatant was mixed with methanol in a 1:1 ratio, centrifuged at 12000 × g at 4 °C for 15 min, then immediately frozen and stored at 80 °C until further analysis. The supernatant aliquot (100 μL) was transferred to a new sample tube and used for protein quantification by BCA analysis according to the manufacturer's (Thermo Fischer Scientific) protocol. A separate 100-μL aliquot of the supernatant was transferred to a clean sample tube and mixed with 300 ml of HPLC-level pure methanol (Sigma-Aldrich). After mixing, centrifugation was performed at 12000 × g at 4 °C for 15 min. A 100 μL supernatant sample was used to measure 5-HT by isotope-dilution liquid chromatography-mass spectrometry (LC-MS). For this assay, 20 μL of a 1 mg/kg 5-HT-α,α,β,β-d4 Creatinine Sulfate complex solution (CDN isotopes Inc.) was added to the sample solution and 100 μL of methanol was added. After mixing, the sample was distilled in vacuo. The residue was dissolved in 50 μL of distilled water, filtered through a disposable syringe filter, and then put into an LC-MS system for analysis.
LC-MS/MS 분석은 Xevo TQ-S electrospray ionization triple quadrupole-mass spectrometer (Waters, Waltham, MA, USA)에 연결된 ACQUITY 시리즈 UPLC 시스템을 사용하여 한국표준과학연구원(Korea Research Institute of Standards and Science)에서 수행되었다. 샘플을 Capcell core ADME column (2.1 mm I.D. × 100 mm, 2.6 μm; Shiseido, Japan)에 넣고, 75% 이동상 A (30 mM ammonium formate):25% 이동상 B (methanol) 에서 60% 이동상 A:40% 이동상 B 까지의 선형 농도구배로 3분동안 400 μL/min의 속도로 용출시켰고, 20% 이동상 A:80% 이동상 B로 1분간 세척 단계를 거치고, 1분간 재평형시켰다. 투입량은 3 μL이었고, 5-HT와 이의 동위원소의 이온 변화 (m/z)는 각각 159.8 > 104.9, 및 163.8 > 109.1 이었다. LC-MS/MS analysis was performed at the Korea Research Institute of Standards and Science using an ACQUITY series UPLC system connected to a Xevo TQ-S electrospray ionization triple quadrupole-mass spectrometer (Waters, Waltham, MA, USA). carried out The sample was placed in a Capcell core ADME column (2.1 mm ID × 100 mm, 2.6 μm; Shiseido, Japan), and 75% mobile phase A (30 mM ammonium formate): 25% mobile phase B (methanol) to 60% mobile phase A: 40% Elution was carried out at a rate of 400 μL/min for 3 min with a linear gradient to mobile phase B, followed by a wash step with 20% mobile phase A:80% mobile phase B for 1 min, followed by re-equilibration for 1 min. The dose was 3 μL, and the ionic changes ( m/z ) of 5-HT and its isotopes were 159.8 > 104.9 and 163.8 > 109.1, respectively.
샘플의 분석 전, 소스 이온화와 조각화 파라미터는 MS 신호를 모니터링함으로써 최적화하였다. 분석 소프트웨어 MassLynx (Version 4.1; Waters)는 데이터 입수 및 시스템 조작을 위해 사용되었다. 5-HT의 농도는 상응하는 단백질 농도에 정규화되었다.Prior to sample analysis, source ionization and fragmentation parameters were optimized by monitoring the MS signal. Analysis software MassLynx (Version 4.1; Waters) was used for data acquisition and system manipulation. The concentration of 5-HT was normalized to the corresponding protein concentration.
1-4. X-gal 염색 1-4. X-gal staining
X-Gal (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactopyranoside) 염색은 Seymour 등에 의해 기술된 바와 같이 수행되었다. 뇌와 소장은 ice-cold 조직 고정액 (4% paraformaldehyde, 2 mM MgSO4, 5 mM EGTA)에서 1 시간 동안 위치시켜 고정하였다. 고정된 조직은 헹굼 용액 A (2 mM MgCl2, 5 mM EGTA in buffer)로 30분간 실온에서 세척되었고, 헹굼 용액 B (2 mM MgCl2, 0.01% w/v sodium deoxycholate, 0.02% w/v Nonidet P-40 in buffer)로 5분간 실온에서 세척되었다. 그 후, 조직을 염색 시약(2 mM MgCl2, 0.01% sodium deoxycholate, 0.02% Nonidet P-40, 5 mM K3Fe(CN)6, 5 mM K4Fe(CN)6·6H2O, 및 1 mg/mL X-gal in 100 mM Sorensen’s phosphate buffer, pH 7.4)에 넣고 37 °C에서 하룻밤 배양되었다. 염색된 조직은 PBS에서 3회 세척되었다. 이미지는 입체현미경 (SZ61, Olympus)을 이용하여 분석되었다.X-Gal (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactopyranoside) staining was performed as described by Seymour et al. The brain and small intestine were fixed by placing them in ice-cold tissue fixative (4% paraformaldehyde, 2 mM MgSO4, 5 mM EGTA) for 1 hour. The fixed tissue was washed with rinse solution A (2 mM MgCl2, 5 mM EGTA in buffer) for 30 min at room temperature, and rinse solution B (2 mM MgCl2, 0.01% w/v sodium deoxycholate, 0.02% w/v Nonidet P-) 40 in buffer) for 5 minutes at room temperature. Then, the tissue was stained with staining reagent (2 mM MgCl2, 0.01% sodium deoxycholate, 0.02% Nonidet P-40, 5 mM K3Fe(CN)6, 5 mM K4Fe(CN)6·6H2O, and 1 mg/mL X-gal in 100 mM Sorensen's phosphate buffer, pH 7.4) and incubated overnight at 37 °C. The stained tissue was washed 3 times in PBS. Images were analyzed using a stereomicroscope (SZ61, Olympus).
1-5. 면역조직화학 및 면역형광 염색1-5. Immunohistochemistry and immunofluorescence staining
면역 염색을 위해, 먼저 조직을 실온에서 4 시간 동안 10 % 중성 완충 포르말린 용액 (Sigma-Aldrich)에서 고정시키고, 탈이온수로 실온에서 1 시간 동안 세척한 후 파라핀에 포매하고 4 μm 두께의 절편(section)으로 슬라이스 하였다. 파라핀을 제거하고, 재수화시킨 후, 조직 절편을 구연산 나트륨 완충액 (10 mM sodium citrate, pH 6.0)에 넣고 가열함으로써 항원을 회수하였고, 5% 당나귀 혈청에서 30분간 실온에 배양하여 블로킹하였다. 그 다음, 조직 절편을 기니피그의 항-인슐린 항체 또는 토끼의 항-5-HT 항체와 4 °C에서 16시간동안 배양하였다. 면역조직화학 분석은 VECTASTAIN ABC HRP Kit (PK-4001; Vector Labs)를 사용하여 제조자의 지시에 따라 수행하였다. 일차 항체와 배양한 절편을 공급된 완충액으로 세척한 후, 비오틴화 항-토끼 항체와 실온에서 30 분 동안 배양하였다. 조직을 VECTASTAIN ABC 시약으로 30 분 동안 배양한 후 DAB 퍼옥시다아제 기질 용액 (SK-4100; Vector Labs)에서 배양하였다. 그 후 절편을 염색 및 마운팅하였다.For immunostaining, first, tissues were fixed in 10% neutral buffered formalin solution (Sigma-Aldrich) for 4 h at room temperature, washed with deionized water at room temperature for 1 h, then embedded in paraffin and sectioned at 4 μm thickness. ) was sliced. After deparaffinization and rehydration, the tissue sections were placed in sodium citrate buffer (10 mM sodium citrate, pH 6.0) and heated to recover antigens, and blocked by incubating in 5% donkey serum for 30 minutes at room temperature. Then, the tissue sections were incubated with guinea pig anti-insulin antibody or rabbit anti-5-HT antibody at 4 °C for 16 h. Immunohistochemical analysis was performed using the VECTASTAIN ABC HRP Kit (PK-4001; Vector Labs) according to the manufacturer's instructions. The sections incubated with the primary antibody were washed with the supplied buffer, and then incubated with the biotinylated anti-rabbit antibody at room temperature for 30 minutes. Tissues were incubated with VECTASTAIN ABC reagent for 30 minutes and then incubated in DAB peroxidase substrate solution (SK-4100; Vector Labs). The sections were then stained and mounted.
면역 형광 염색을 위해, 1 차 항체로 배양한 조직 절편을 PBS로 세척하고 실온에서 2 시간 동안 다음 중 선택된 하나의 2차 항체로 배양하였다:For immunofluorescence staining, tissue sections incubated with the primary antibody were washed with PBS and incubated with one of the following secondary antibodies at room temperature for 2 hours:
FITC 컨쥬게이션 된 당나귀 항-기니피그 IgG (1:1000; Jackson ImmunoResearch), 로다민 컨쥬게이션 된 당나귀 항-토끼 IgG (1:1000; Jackson ImmunoResearch), 또는 알렉사 프로 647 당나귀 항-마우스 IgG (1:1000; Jackson ImmunoResearch). 이미지는 공 촛점 현미경 (LSM 780, Carl Zeiss)과 명 시야 현미경 (DS-Ri2; Nikon)을 사용하여 분석하였다.FITC-conjugated donkey anti-guinea pig IgG (1:1000; Jackson ImmunoResearch), rhodamine-conjugated donkey anti-rabbit IgG (1:1000; Jackson ImmunoResearch), or Alexa Pro 647 donkey anti-mouse IgG (1:1000) ; Jackson Immuno Research). Images were analyzed using a confocal microscope (LSM 780, Carl Zeiss) and a bright field microscope (DS-Ri2; Nikon).
1-6. RT-qPCR1-6. RT-qPCR
FastPrep-24를 이용하여 십이지장, 공장, 회장 및 결장을 개별적으로 균질화하고, TRIzol (Thermo Fisher Scientific)을 사용하여 총 RNA를 추출하였다. High Capacity cDNA Reverse Transcription Kits (Thermo Fisher Scientific)를 사용하여 전체 RNA로부터 cDNA를 합성하였다. Viia7 시스템 (Thermo Fisher Scientific) 및 Power SYBR Green PCR Master Mix (Thermo Fisher Scientific)를 사용하여 실시간 PCR로 cDNA (반응 당 10 ng / μl)를 분석 하였다. 유전자 발현 수준 분석에 사용된 프라이머는 표 1에 기재되었다.The duodenum, jejunum, ileum and colon were individually homogenized using FastPrep-24, and total RNA was extracted using TRIzol (Thermo Fisher Scientific). cDNA was synthesized from total RNA using High Capacity cDNA Reverse Transcription Kits (Thermo Fisher Scientific). cDNA (10 ng/μl per reaction) was analyzed by real-time PCR using a Viia7 system (Thermo Fisher Scientific) and Power SYBR Green PCR Master Mix (Thermo Fisher Scientific). The primers used for gene expression level analysis are listed in Table 1.
1-7. 면역블랏 분석(Immunoblot analysis)1-7. Immunoblot analysis
췌장 소도는 분리하고 프로테아제 억제 칵테일(Sigma-Aldrich)을 포함하는 RIPA 완충액에 용해(lysis)시켰다. 단백질 농도는 Pierce BCA Protein Assay Kit (Thermo Fisher Scientific)를 사용하여 측정하였다. 전체 세포 용해물의 단백질을 10% 폴리 아크릴 아미드 겔에서 SDS-PAGE로 분리하고, 폴리 비닐리덴 다이플루오라이드 멤브레인(polyvinylidene difluoride membrane)으로 옮겼다. TBST (150mM 염화나트륨, 20mM Tris, 0.1 % Tween-20, pH 7.6) 중 5 % (w/v) 스킴 밀크로 멤브레인을 블로킹하고, 토끼 항-TPH1 항체 (1:1000; Cell Signaling, # 12339)로 4 ℃에서 하룻밤 배양하였다. 실온에서 TBST로 3 회(각각 10 분) 세척한 후, 멤브레인을 HRP-컨쥬게이션 된 항-토끼 IgG 2 차 항체 (1:5000; Cell Signaling, # 7074)로 1 시간 동안 실온에서 배양하였다. 실온에서 TBST로 3회(각각 10 분) 세척한 후, 면역 반응성 단백질을 Pierce ECL Plus Western Blotting Substrate (Thermo Fisher Scientific)를 사용하여 검출하였다. 이미지는 ChemiDoc MP 시스템 (Bio-Rad)을 사용하여 분석하였다.Pancreatic islets were isolated and lysed in RIPA buffer containing protease inhibition cocktail (Sigma-Aldrich). Protein concentration was determined using the Pierce BCA Protein Assay Kit (Thermo Fisher Scientific). Proteins from whole cell lysates were separated by SDS-PAGE on a 10% polyacrylamide gel and transferred to a polyvinylidene difluoride membrane. The membranes were blocked with 5% (w/v) skim milk in TBST (150 mM sodium chloride, 20 mM Tris, 0.1 % Tween-20, pH 7.6), followed by rabbit anti-TPH1 antibody (1:1000; Cell Signaling, # 12339). Incubated overnight at 4 °C. After washing 3 times (10 min each) with TBST at room temperature, the membrane was incubated with HRP-conjugated anti-rabbit IgG secondary antibody (1:5000; Cell Signaling, # 7074) for 1 hour at room temperature. After washing three times (10 min each) with TBST at room temperature, immunoreactive proteins were detected using a Pierce ECL Plus Western Blotting Substrate (Thermo Fisher Scientific). Images were analyzed using a ChemiDoc MP system (Bio-Rad).
1-8. 결과 1-8. result
지금까지, Tph1 tm1kry 는 Cre-loxP 시스템을 사용하여 조직-특이적 Tph1 KO 마우스를 생성하는 데 사용할 수 있는 유일한 조건 대립 유전자였다.To date, Tph1 tm1kry was the only conditional allele that could be used to generate tissue-specific Tph1 KO mice using the Cre-loxP system.
Tph1 tm1kry 를 생성하는 데 사용되는 KO 전략은 Tph1 유전자의 엑손 2와 3을 타겟팅 하는 것이다 (도 1a). Tph1 tm1kry KO 마우스가 장 및 지방 조직에서 5-HT 및 관련 표현형의 기능을 묘사하는데 유용함이 입증되었지만, 본 발명자들은 장-특이적인 Tph1 tm1kry KO (Tph1 tm1kry GKO) 마우스의 장에서 5-HT 생산이 완전히 중단되지 않았음을 입증하였다. 전반적으로, 5-HT 수준은 54.7 % 감소하였고, 5-HT 양성 세포는 Tph1 tm1kry GKO 마우스의 공장에서 용이하게 검출되었다 (도 1b, 도 1c). The KO strategy used to generate Tph1 tm1kry is to target
본 발명자들은 이전에 보고한 바와 같이, 5-HT는 증가된 Tph1 발현으로 인해 면역 형광 염색 (immunofluorescence staining) (도 1d)에 의해 MIP-Cre-hGH 마우스의 췌장 β 세포에서 용이하게 검출됨을 확인하였다. As previously reported, we confirmed that 5-HT was easily detected in pancreatic β cells of MIP-Cre-hGH mice by immunofluorescence staining (Fig. 1d) due to increased Tph1 expression. .
본 발명자들은 췌장 β 세포에서 Tph1 tm1kry 대립 유전자의 KO 효율을 평가하기 위해, Tph1 tm1kry 마우스와 MIP-Cre-hGH 마우스를 교배시킴으로써 β 세포-특이적인 Tph1 tm1kry KO (Tph1 tm1kry βKO) 마우스를 제작하였다. 면역형광염색은 MIP-Cre-hGH 마우스의 β 세포에서 강력한 5-HT 생산을 보였다; 특히, 이 생산은 Tph1 tm1kry βKO 마우스의 β 세포에서 감소하지 않았다 (도 1d). 이 데이터는 Tph1 tm1kry 대립 유전자의 2 번과 3 번의 exon이 삭제된 후에도 5-HT 생산이 크게 변하지 않았음을 나타낸다. To evaluate the KO efficiency of the Tph1 tm1kry allele in pancreatic β cells, the present inventors constructed β cell-specific Tph1 tm1kry KO ( Tph1 tm1kry βKO) mice by crossing Tph1 tm1kry mice with MIP-Cre-hGH mice. Immunofluorescence staining showed robust 5-HT production in β cells of MIP-Cre-hGH mice; Notably, this production was not reduced in β cells of Tph1 tm1kry βKO mice (Fig. 1d). These data indicate that 5-HT production was not significantly changed even after
Tph1 tm1kry βKO 및 Tph1 tm1kry GKO 마우스에서 관찰된 잔여 TPH1 활성에 대한 한 가지 설명은 Tph1 tm1kry 조건적 대립 유전자의 불완전한 결실이다. 그러나 Villin-Cre 및 MIP-Cre-hGH 마우스의 높은 재조합 효율을 고려할 때, Cre 재조합 Tph1 tm1kry 대립 유전자가 잔류 TPH1 촉매 활성을 갖는 단백질을 코딩하는, 이상 Tph1 전사물을 생성하기 때문일 가능성이 더 높다. Tph1 tm1kry βKO and Tph1 tm1kry One explanation for the residual TPH1 activity observed in GKO mice is the incomplete deletion of the Tph1 tm1kry conditional allele. However, given the high recombination efficiency of Villin-Cre and MIP-Cre-hGH mice, it is more likely because the Cre recombinant Tph1 tm1kry allele produces aberrant Tph1 transcripts, encoding proteins with residual TPH1 catalytic activity.
Tph1 유전체 구조의 상세한 검토는 Tph1 tm1kry 대립 유전자 (도 1e)에서 엑손 2 및 엑손 3의 결실 후 절단된 TPH1 단백질을 생성하기 위한 시작 코돈으로서 작용할 수 있는 엑손 4에서의 메티오닌의 존재를 밝혀냈다.A detailed review of the Tph1 genome structure revealed the presence of methionine in
역전사 중합 효소 연쇄 반응 (RT-PCR) 및 후속 서열 분석 결과, 엑손 2 및 3이 없는 Tph1의 3 가지 스플라이스 변이체가 Tph1 tm1kry GKO 마우스의 십이지장에서 발현되었음이 밝혀졌다(도 1f). 이러한 전사체(transcript)는 야생형 Tph1 과 동일한 리딩 프레임을 가진 폴리펩티드를 생산할 것으로 예측되는 엑손 4의 시작 코돈을 포함하고 있다.Reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) and subsequent sequence analysis revealed that three splice variants of
실제로, Tph1 tm1kry βKO 마우스의 췌장 소도로부터 조직 용해물의 면역 블롯 분석은 37kD 절단된 TPH1 단백질의 존재를 밝혀냈다 (도 1g). TPH 단백질은 조절 도메인, 촉매 도메인 및 테트라머화 도메인으로 구성된다. 절단된 TPH1은 촉매 도메인 및 테트라머화 도메인을 포함한다. 따라서 본 발명자들은 Tph1 tm1kry GKO 및 Tph1 tm1kry βKO 마우스에서 지속적인 5-HT 생산은 엑손 2 및 3의 결실의 결과로서 절단된 TPH1 단백질의 발현에 기인할 수 있다고 결론을 내렸다.Actually, Tph1 tm1kry Immunoblot analysis of tissue lysates from pancreatic islets from βKO mice revealed the presence of 37 kD cleaved TPH1 protein ( FIG. 1G ). The TPH protein consists of a regulatory domain, a catalytic domain and a tetramerization domain. The cleaved TPH1 contains a catalytic domain and a tetramerization domain. We therefore concluded that sustained 5-HT production in Tph1 tm1kry GKO and Tph1 tm1kry βKO mice could be attributed to the expression of truncated TPH1 protein as a result of deletion of
실시예 2. 새로운 Tph1 floxed 마우스의 제작 및 KO 효율의 분석 Example 2. Construction of new Tph1 floxed mice and analysis of KO efficiency
2-1. 새로운 Tph1 floxed 마우스의 제작2-1. Construction of new Tph1 floxed mice
TPH1에 의한 5-HT 합성을 완전히 중단시키기 위해, 본 발명자들은 TPH1의 촉매 도메인을 코딩하는 엑손 5와 6이 표적화 된 Tph1tm1a 대립 유전자를 포함하는 새로운 마우스를 제작하였다. Tph1tm1a 대립 유전자의 후속 Flp-매개 재조합은 TGF1tm1c 대립 유전자를 만들었으며, 이 대립 유전자는 엑손 5 및 6의 Cre 매개된 결실을 겪을 수 있다 (도 2a). Tph1tm1a 대립 유전자는, 642bp의 생성물을 생성하는 CSD-neo-F 및 CSD-Tph1-ttR 프라이머 (도 2b)로 게놈 DNA의 PCR 증폭에 의해 검출되었다.To completely halt 5-HT synthesis by TPH1, we constructed new mice containing the Tph1 tm1a allele targeted to
Flp-매개 재조합을 통한 Tph1 tm1c 대립 유전자의 생성은 826 bp 생성물을 생성하는 프라이머인 CSD-Tph1-F 및 CSD-Tph1-ttR로 PCR 증폭에 의해 확인되었다(도 2b). 우리는 Tph1 tm1c 마우스를 MIP-Cre-hGH 마우스와 교배시켜 β 세포-특이적 Tph1 tm1c KO (Tph1 tm1c βKO) 마우스를 생성하고, PCR 프라이머인 CSD-Tph1-F와 CSD-Tph1-R (그림 2c)을 사용하여 793 bp의 게놈 조각을 증폭함으로써 Tph1 tm1c βKO 마우스의 β 세포에서 Tph1의 엑손 5와 6의 결실을 확인했다. Tph1tm1a 대립 유전자는 Tph1 유전자 발현의 내인성 패턴에 따라, β-갈락토시다제를 발현하도록 설계된 스플라이스 수용체 서열(splice acceptor sequence)을 함유한다. 내인성 Tph1 유전자 발현을 위한 β-갈락토시다아제 리포터는 송과체(pineal gland)와 장에서 X-gal 염색을 사용하여 β-갈락토시다아제 활성을 시각화함으로써 확인되었다 (도 2d, 도 2e).Generation of the Tph1 tm1c allele via Flp-mediated recombination was confirmed by PCR amplification with primers CSD-Tph1-F and CSD-Tph1-ttR generating an 826 bp product (Fig. 2b). We crossed Tph1 tm1c mice with MIP-Cre-hGH mice to generate β-cell-specific Tph1 tm1c KO ( Tph1 tm1c βKO) mice, followed by PCR primers CSD-Tph1-F and CSD-Tph1-R (Fig. 2c). ) was used to confirm deletion of
2-2. 새로운 Tph1 KO 마우스에서 Tph1 KO의 효율2-2. Efficiency of Tph1 KO in new Tph1 KO mice
본 발명자들은 새롭게 개발된 Tph1 KO 마우스에서 Tph1 KO의 효율을 평가하였다. We evaluated the efficiency of Tph1 KO in newly developed Tph1 KO mice.
본 발명자들은 처음에는 말초 5-HT 시스템의 완전히 소실했을 것으로 예상했던 Tph1 tm1a 마우스를 검사하였다. Tph1 mRNA의 수치가 유의하게 감소하고 5-HT 양성 세포의 수가 감소되었지만, 5-HT 양성 세포는 여전히 공장에서 관찰되었다 (도 3a, b). 혈청 5-HT 수준은 91.4 % 감소하였고, 반면에 공장의 5-HT 수준은 77.6 % 감소하였다. 예상했지만, 이와 대조적으로, 뇌에서 5-HT 수준은 야생형의 마우스의 수준과 유사하였다 (도 3c). 이 데이터는 5-HT 합성의 제거가 Tph1tm1a 마우스의 장에서는 여전히 불완전하다는 것을 나타낸다; 따라서, Tph1tm1a 마우스의 일부 세포는 KO를 피할 수 있었다. 엑손-포착 접근법(exon-trapping approach)이 null 대립 형질이라기 보다 hypomorphic 대립 형질을 유도했던 유사한 예는 Slc25a21 tm1a (KOMP) Wtsi 대립 유전자를 보유하는 Slc25a21 KO 마우스를 포함한다.We examined Tph1 tm1a mice, which we initially expected to have had a complete loss of the peripheral 5-HT system. Although the level of Tph1 mRNA was significantly decreased and the number of 5-HT-positive cells decreased, 5-HT-positive cells were still observed in the jejunum (Fig. 3a,b). Serum 5-HT levels were reduced by 91.4%, whereas in jejunum 5-HT levels were reduced by 77.6%. In contrast, as expected, 5-HT levels in the brain were similar to those of wild-type mice ( FIG. 3C ). These data indicate that the clearance of 5-HT synthesis is still incomplete in the gut of Tph1 tm1a mice; Thus, some cells from Tph1 tm1a mice were able to avoid KO. A similar example in which the exon-trapping approach led to a hypomorphic rather than a null allele includes Slc25a21 KO mice carrying the Slc25a21 tm1a (KOMP) Wtsi allele.
다음으로, 조직 특이적인 KO 효율을 평가하기 위해, Tph1 tm1c 마우스를 각각 Villin-Cre 및 MIP-Cre-hGH 마우스와 교배시켜 장-특이적인 Tph1 tm1c KO 마우스(Tph1 tm1c GKO) 및 β 세포-특이적인 Tph1 tm1c KO 마우스 (Tph1 tm1c βKO)를 제작하였다. Tph1 mRNA 수준은 Tph1 tm1c GKO 마우스의 소장 및 대장에서 유의하게 감소하였다 (도 4a). 따라서, 조직 5-HT 수준은 Tph1 tm1c GKO 마우스의 소장 및 대장에서 실질적으로 감소되었다 (도 4b). Villin-Cre의 공지된 재조합 효율 및 장내 신경계에서 TPH2의 활성을 고려하면, 5-HT 합성은 장내에서 거의 완전하게 중지되었다. 특히, Tph1 tm1c GKO 마우스의 장내 점막 또는 Tph1 tm1c βKO 마우스의 β 세포에는 5-HT 양성 세포가 관찰되지 않았으며(도 4c, d), 이는 장 및 췌장 β 세포에서 5-HT 생산이 거의 완전히 제거되었음을 나타낸다. 이 데이터는 5-HT 생산이 새로 제작된 Tph1 tm1c 마우스 모델을 사용하여 완전히 중지되었음을 나타낸다.Next, to evaluate tissue-specific KO efficiency, Tph1 tm1c mice were crossed with Villin-Cre and MIP-Cre-hGH mice, respectively, to induce intestinal-specific Tph1 tm1c KO mice ( Tph1 tm1c GKO) and β cell-specific mice. Tph1 tm1c KO mice ( Tph1 tm1c βKO) were produced. Tph1 mRNA levels were significantly decreased in the small and large intestine of Tph1 tm1c GKO mice (Fig. 4a). Thus, tissue 5-HT levels were substantially reduced in the small and large intestine of Tph1 tm1c GKO mice (Fig. 4b). Given the known recombination efficiency of Villin-Cre and the activity of TPH2 in the enteric nervous system, 5-HT synthesis was almost completely stopped in the intestine. In particular, no 5-HT-positive cells were observed in the intestinal mucosa of Tph1 tm1c GKO mice or β cells of Tph1 tm1c βKO mice (Fig. 4c, d), which almost completely abolished 5-HT production in intestinal and pancreatic β cells. indicates that it has been These data indicate that 5-HT production was completely stopped using the newly constructed Tph1 tm1c mouse model.
2-3. 토의2-3. discussion
5-HT는 신경 조직 뿐만 아니라 말초 조직에서도 많은 생리 기능을 담당한다. 지금까지는 장에서 유래한 5-HT는 말초 조직에서 주로 기능한다고 생각되어 왔다. 그러나 최근 연구에 따르면 췌장 베타 세포와 지방 세포를 비롯한 말초 조직의 세포가 국소 조직에서 중요한 역할을 하는 5-HT를 합성 및 분비 할 수 있는 것으로 나타났다. 췌장 β 세포에서, 5-HT는 보상적 β 세포 증식을 유도하고 임신기간 중 포도당 자극에 의한 인슐린 분비를 증가시킨다. 지방 조직에서, 5-HT는 에너지 소비를 줄이고 지질 축적을 증가시키는 비만 호르몬으로서 기능한다. 이와 같이, 5-HT는 말초 조직에서 자가 분비(autocrine) 또는 주변 분비(paracrine) 방식으로 작용할 수 있다.5-HT is responsible for many physiological functions not only in nerve tissue but also in peripheral tissues. So far, it has been thought that gut-derived 5-HT functions primarily in peripheral tissues. However, recent studies have shown that cells in peripheral tissues, including pancreatic beta cells and adipocytes, can synthesize and secrete 5-HT, which plays an important role in local tissues. In pancreatic β cells, 5-HT induces compensatory β cell proliferation and increases glucose-stimulated insulin secretion during pregnancy. In adipose tissue, 5-HT functions as an obesity hormone that reduces energy expenditure and increases lipid accumulation. As such, 5-HT may act in an autocrine or paracrine manner in peripheral tissues.
대부분의 연구가 전통적인 Tph1 KO 마우스 또는 TPH 억제제 또는 5-HT 수용체를 겨냥한 화학 물질을 사용하여 수행되었기 때문에 지난 수십 년 동안 말초 5-HT의 기능을 설명해온 연구결과에는 한계가 있다.Research that has elucidated the function of peripheral 5-HT over the past few decades is limited, as most studies have been conducted using traditional Tph1 KO mice or TPH inhibitors or chemicals targeting the 5-HT receptor.
따라서, 국소 조직(local tissue)에서 5-HT의 생체 내(in vivo) 기능을 분석하기 위한 효율적인 도구를 개발하는 것은 조직-특이적 KO 전략은 5-HT의 조직-자율 기능을 부여하기위한 실험적 접근으로서 큰 가치를 제공한다.Therefore, developing an efficient tool to analyze the in vivo function of 5-HT in local tissue is a tissue-specific KO strategy for conferring the tissue-autonomous function of 5-HT. It provides great value as an approach.
지금까지 Tph1 tm1kry 는 조직-특이적 Tph1 KO 모델을 만드는데 사용되었던 유일한 Tph1 floxed 대립 유전자이다. Tph1 tm1kry 마우스는 5-HT의 수많은 말초에서의 기능의 초기 동정에 기여했다. 그러나 본 발명자들은 Tph1의 엑손 2와 3의 성공적 삭제에도 불구하고 5-HT가 Tph1 tm1kry KO 마우스의 표적 조직에서 계속 생산된다는 것을 발견했다. 이전 연구에서 Tph1 tm1kry 마우스가 효과적이었음이 입증되었지만 이 조건에서는 특정 표현형이 불분명하게 나타났다. 주어진 생리적 기능을 유지하기 위해 필요한 5-HT의 양은 조직의 유형, 관찰하고자 하는 표현형 또는 실험 조건에 따라 다를 수 있다. 실제로 5-HT의 유의한 감소에도 불구하고, 유선-특이적 파괴가 젖 분비 과정에서 유생산 또는 꽈리 형태(alveolar morphology)를 변화시키지 않은 것으로 나타났다. 이전의 보고들과는 대조적으로, 이러한 결과는 5-HT 생산의 불완전한 중지가 표현형에 영향을 미쳤음을 나타낸다. 따라서 완전한 Tph1 KO 마우스는 특정 조직에서 Tph1 결실의 모든 범위의 효과를 모호하지 않게 해석하기 위해 필수적이다.To date, Tph1 tm1kry is the only Tph1 floxed allele that has been used to construct a tissue-specific Tph1 KO model. Tph1 tm1kry mice contributed to the initial identification of numerous peripheral functions of 5-HT. However, we found that despite the successful deletion of
보다 향상된 Tph1 조건적 대립 유전자를 만들기 위해, 본 발명자들은 새로운 Tph1 floxed 마우스 모델 인 Tph1 tm1c 마우스를 제작하였다. Tph1 tm1c 대립 유전자는 TPH1의 촉매 도메인을 코딩하는 엑손 5 및 6의 Cre-매개된 결실을 유도하도록 고안되었다. Tph1 tm1c 마우스는 장 및 췌장 β 세포와 같은 대표적인 5-HT 양성 조직에서, 보다 높은 KO 효율을 나타냈다. 따라서, 본 발명의 Tph1 tm1c 마우스를 사용하면, 잔류 5-HT로 인한 결과의 오해를 줄이고 이전에 가능했던 것 보다 정확한 분석을 제공하여, 궁극적으로 말초 5-HT 시스템의 새로운 기능을 공개할 수 있다.To create a more improved Tph1 conditional allele, we constructed a new Tph1 floxed mouse model, the Tph1 tm1c mouse. The Tph1 tm1c allele was designed to induce Cre-mediated deletion of
실시예 3. Tph1, Htr2b 조직-특이적 KO 마우스의 제작Example 3. Construction of Tph1, Htr2b tissue-specific KO mice
3-1. KO 마우스의 제작 및 사육 관리3-1. Production and breeding management of KO mice
본 실시예에서 사용된 모든 마우스는 C57BL/6J 백그라운드의 스트레인이었다. 마우스는 KAIST의 특정 병원체 부재 시설에서 12시간 명암주기의 동일 온도 및 동일 습도 조건 하에서 사육되었다. 일반 식이 (SCD, D10001, Research Diets, Inc.)와 물은 무제한으로 급여되었다. All mice used in this example were strains of the C57BL/6J background. Mice were bred under the same temperature and humidity conditions with a 12-hour light-dark cycle in a specific pathogen-free facility at KAIST. A regular diet (SCD, D10001, Research Diets, Inc.) and water were given ad libitum.
Insulin-Cre 마우스는 다른 floxed 마우스 (Tph1 floxed, Htr2b, Prlr floxed, 및 Stat5 floxed), 및 Ghr floxed 된 Ins2-Cre 마우스와 교배하여 β 세포-특이적인 넉아웃 마우스를 제작하였다. Htr1b tm1.1(KOMP)Vlcg 마우스와 Htr1d tm1.1(KOMP)Vlcg 마우스는 KOMP에서 구매하였다. Insulin-Cre mice were crossed with other floxed mice ( Tph1 floxed, Htr2b , Prlr floxed, and Stat5 floxed) and Ghr floxed Ins2-Cre mice to construct β cell-specific knockout mice. Htr1b tm1.1(KOMP)Vlcg mice and Htr1d tm1.1(KOMP)Vlcg mice were purchased from KOMP.
성체 마우스 실험에는, 9주령의 웅성 마우스가 사용되었다. 고지방 식이 실험에는 60% kcal가 지방인 사료(D12492, Research Diets Inc.)를 12주령의 웅성 마우스에 4-8주간 급이하였다. S-961 (인슐린 길항제) 연구에는, 100 nmol/kg의 S-961을 하루에 2번 복강내로 7일간 투여하였다. In the adult mouse experiment, 9-week-old male mice were used. In the high-fat diet experiment, a feed (D12492, Research Diets Inc.) containing 60% kcal of fat was fed to 12-week-old male mice for 4-8 weeks. In the S-961 (insulin antagonist) study, 100 nmol/kg of S-961 was administered intraperitoneally twice a day for 7 days.
3-2. 면역염색 및 β 세포 영역 측정3-2. Immunostaining and β cell area measurement
마우스 췌장 조직은 채취한 즉시 10% 중성-완충 포르말린 용액에 2시간(주산기 마우스의 경우), 또는 4시간(성체 마우스의 경우) 동안 실온에서 고정된 후, 3차 증류수로 30분간 세척하였다. The mouse pancreas tissue was immediately fixed in 10% neutral-buffered formalin solution for 2 hours (for perinatal mice) or 4 hours (for adult mice) at room temperature, and then washed with tertiary distilled water for 30 minutes.
세척 후, 췌장 조직은 조직 처리기(Leica)로 탈수되었고, 파라핀에 포매되었다. FFPE 조직은 4-μm 두께로 슬라이스 되어 글라스 슬라이드에 마운팅되었다. 이 슬라이드들은 자일렌으로 파라핀을 제거하고, 이어질 염색을 위해 에탄올에서 재수화하였다. 항원 회수는 구연산 나트륨 완충액(10 mM sodium citrate, pH 6.0)으로 압력 솥(pressure cooker)에서 15분간 수행되었다. After washing, the pancreatic tissue was dehydrated with a tissue processor (Leica) and embedded in paraffin. The FFPE tissue was sliced to a thickness of 4-μm and mounted on a glass slide. The slides were deparaffinized with xylene and rehydrated in ethanol for subsequent staining. Antigen retrieval was performed in a pressure cooker with sodium citrate buffer (10 mM sodium citrate, pH 6.0) for 15 minutes.
면역형광 염색을 위해, 샘플을 PBS로 희석한 2% 당나귀 혈청으로 실온에서 1시간 동안 블로킹하였다. 1차 항체-처리된 슬라이드를 4℃에서 하룻밤 인큐베이션하였다; 항-5-HT 항체(토끼, ImmunoStar, dilution factor 1:1000), 항-글루카곤 항체 (mouse, Sigma, 1:1000), 항-인슐린 항체 (guinea pig, Dako, 1:1000), 항 -Nkx6.1 항체 (mouse, DSHB, 1:100), 항-Pdx1 항체 (mouse, DSHB, 1:100), 및 항-인-히스톤 H3 항체(anti-phospho-Histone H3 antibody) (rabbit, Millipore, 1:1000).For immunofluorescence staining, samples were blocked with 2% donkey serum diluted in PBS for 1 h at room temperature. Primary antibody-treated slides were incubated overnight at 4°C; Anti-5-HT antibody (rabbit, ImmunoStar, dilution factor 1:1000), anti-glucagon antibody (mouse, Sigma, 1:1000), anti-insulin antibody (guinea pig, Dako, 1:1000), anti-Nkx6 .1 antibody (mouse, DSHB, 1:100), anti-Pdx1 antibody (mouse, DSHB, 1:100), and anti-phospho-Histone H3 antibody (rabbit, Millipore, 1) :1000).
인큐베이션 및 세척 후, 2차 항체를 실온에서 2시간 동안 처리하고 인큐베이션하였다: Alexa594-컨쥬게이션 된 당나귀 항-마우스 IgG (Jackson ImmunoResearch, 1:1000), Alexa647-컨쥬게이션 된 당나귀 항-토끼 IgG (Jackson ImmunoResearch, 1:1000), 및 FITC- 컨쥬게이션 된 당나귀 항-기니피그 IgG (Jackson ImmunoResearch, 1:1000). 샘플들은 DAPI (Invitrogen, 1:2000)로 5분간 처리된 후 형광 마운팅 시약 (Dako)으로 마운팅되었다. 이미지는 공초점 현미경 LSM780 (Cal Zeiss) 또는 DS-Ri2 카메라가 장착된 형광 현미경 (Nikon)을 이용하여 얻었다. 면역조직화학은 5-HT에 대해서 비오틴 부재 폴리머 검출 시스템(MACH3, Biocare Medical LCC)으로 수행되었다. 토끼 IgG에 대한 2차 항체를 적용한 후, 면역 반응 산물을 디아미노벤지딘(diaminobenzidine (Thermo Fisher Scientific))으로 발색하였다. 특이성은 1차 항체 미처리 또는 비-면역 혈청으로 교체한 후 양성 염색이 없는 것을 통해 확인하였다. 절편 이미지는 명시야 현미경으로 관찰하고 캡쳐하였다(Axio imager A1 or Axio imager M1, Carl Zeiss). β 세포 매스(β cell mass)의 측정을 위하여서는, FFPE 췌장 절편을 80 μm 간격으로 (최소 8개 슬라이드) 얻었다. 이 췌장 슬라이드들을 인슐린으로 면역 염색하고, 모든 슬라이드를 JuLI stage (NanoEnTek)로 스캐닝하였다. β 세포 매스(β cell mass )은 인슐린 면역 반응성 면적을 전체 췌장 면적으로 나누어 측정하였다. After incubation and washing, secondary antibodies were treated and incubated for 2 h at room temperature: Alexa594-conjugated donkey anti-mouse IgG (Jackson ImmunoResearch, 1:1000), Alexa647-conjugated donkey anti-rabbit IgG (Jackson) ImmunoResearch, 1:1000), and FITC-conjugated donkey anti-guinea pig IgG (Jackson ImmunoResearch, 1:1000). Samples were treated with DAPI (Invitrogen, 1:2000) for 5 minutes and then mounted with fluorescence mounting reagent (Dako). Images were obtained using a confocal microscope LSM780 (Cal Zeiss) or a fluorescence microscope (Nikon) equipped with a DS-Ri2 camera. Immunohistochemistry was performed for 5-HT with a biotin-free polymer detection system (MACH3, Biocare Medical LCC). After application of a secondary antibody against rabbit IgG, the immune response product was developed with diaminobenzidine (Thermo Fisher Scientific). Specificity was confirmed through the absence of positive staining after replacement with primary antibody untreated or non-immune serum. Section images were observed and captured with a bright field microscope (Axio imager A1 or Axio imager M1, Carl Zeiss). For the measurement of β cell mass, FFPE pancreatic sections were obtained at 80 μm intervals (at least 8 slides). These pancreatic slides were immunostained with insulin, and all slides were scanned with a JuLI stage (NanoEnTek). β cell mass was measured by dividing the area of insulin immunoreactivity by the total pancreatic area.
3-3. 당 역학(Glucose dynamics)3-3. Glucose dynamics
복강내 당 내성 테스트(glucose tolerance test, GTT) 및 in vivo 당-자극 인슐린 분비 테스트(glucose-stimulated insulin secretion test, GSIS)를 위해, 마우스를 16시간 동안 하룻 밤 금식 시키고, D-glucose (2 g/kg body weight)를 복강내 주사하였다. 혈당 수준은 미정맥에서 채혈을 하여 글루코미터 (GlucoDr Plus, Allmedicus)를 사용해 측정하였다. 인슐린 측정을 위해, 혈액을 당 주사 후 0, 15, 및 30분에 헤파린 튜브에 채혈하였고, 1500g 로 10 분간 4°C에서 원심분리 되었다. 혈장 내 인슐린 농도는 초감수성 인슐린 ELISA 키트(80-INSMSU-E01, ALPCO)를 이용해 측정되었다. 인슐린 내성 테스트(insulin tolerance test, ITT)를 위해, 마우스를 6시간동안 금식한 후, 복강 내로 Humulin R (Eli Lilly)를 주사하였다 (0.75 U/kg body weight). For intraperitoneal glucose tolerance test (GTT) and in vivo glucose-stimulated insulin secretion test (GSIS), mice were fasted overnight for 16 hours, and D-glucose (2 g /kg body weight) was injected intraperitoneally. Blood glucose levels were measured using a glucometer (GlucoDr Plus, Allmedicus) by taking blood from a caudal vein. For insulin measurement, blood was drawn into heparin tubes at 0, 15, and 30 minutes after glucose injection, and centrifuged at 1500 g for 10 minutes at 4 °C. Plasma insulin concentrations were measured using an ultrasensitive insulin ELISA kit (80-INSMSU-E01, ALPCO). For insulin tolerance test (ITT), mice were fasted for 6 hours, and then Humulin R (Eli Lilly) was injected intraperitoneally (0.75 U/kg body weight).
ex vivo GSIS를 위해서, 마우스 췌장 소도(pancreas islet)를 콜라게나아제로 분리하였다. 먼저 췌장 소도를 37℃에서 5% CO2 조건 하에서 10% FBS (Thermo Scientific) 및 100 U/ml 페니실린-스트렙토마이신 (Thermo Scientific)을 첨가한 RPMI-1640 배지(Thermo Scientific)에서 배양하였다. 4시간 동안 배양한 후, 췌장 소도를 2.8 mM의 글루코스를 포함하는 Krebs-Ringer-HEPES (KRH) 완충액 (pH 7.4, 115 mM NaCl, 25 mM HEPES, 24 mM NaHCO3, 5 mM KCl, 1 mM MgCl2, 2.5 mM CaCl2, and 1 mg/ml BSA) 으로 옮기고, 30분 간 배양하였다. 배양된 췌장 소도는 샘플당 10개의 취하여 12웰 비코팅 디쉬로 옮겨졌다. 기저 인슐린 분비량을 측정하기 위하여, 샘플들을 2.8mM의 글루코스를 포함하는 KRH 완충액에서 15분간 배양하고, 상층액 50 μL를 취하여 인슐린 측정에 사용하였다. 또한, 고당 자극(high glucose stimulation)을 위하여, 샘플들을 16.8mM 의 글루코스를 포함하는 KRH 완충액에서 15분간 인큐베이션하고, 상층액을 취하였다. 모든 상층액은 즉시 액체질소로 동결되어 ELISA 실험에 사용될 때까지 -80℃에서 동결 보존되었다. For ex vivo GSIS, mouse pancreas islets were isolated with collagenase. First, pancreatic islets were cultured in RPMI-1640 medium (Thermo Scientific) supplemented with 10% FBS (Thermo Scientific) and 100 U/ml penicillin-streptomycin (Thermo Scientific) at 37° C. under 5% CO 2 conditions. After incubation for 4 hours, pancreatic islets were incubated in Krebs-Ringer-HEPES (KRH) buffer (pH 7.4, 115 mM NaCl, 25 mM HEPES, 24 mM NaHCO 3 , 5 mM KCl, 1 mM MgCl) containing 2.8 mM glucose. 2 , 2.5 mM CaCl 2 , and 1 mg/ml BSA) and incubated for 30 minutes. Cultured pancreatic islets were taken 10 per sample and transferred to 12-well uncoated dishes. To measure basal insulin secretion, samples were incubated in KRH buffer containing 2.8 mM glucose for 15 minutes, and 50 μL of the supernatant was taken and used for insulin measurement. In addition, for high glucose stimulation, samples were incubated in KRH buffer containing 16.8 mM glucose for 15 minutes, and the supernatant was taken. All supernatants were immediately frozen in liquid nitrogen and cryopreserved at -80°C until used for ELISA experiments.
3-4. 정량적 역전사 PCT(qRT-PCR)3-4. Quantitative reverse transcription PCT (qRT-PCR)
RNA는 TRIzol (Invitrogen)을 이용해 제조사의 프로토콜에 따라 추출되었다. RNA was extracted using TRIzol (Invitrogen) according to the manufacturer's protocol.
총 RNA 1 μg을 High-Capacity cDNA Reverse Transcription kit (Applied Biosystems)으로 cDNA를 제작하는데 사용하였다. qRT-PCR은 Fast SYBR Green Master Mix (Applied Biosystems)로 Viia 7 Real-time PCR System (Applied Biosystems)를 이용해 수행되었다. 유전자 발현은 delta Ct (threshold cycle) 방법을 이용하여 상대적 유전자 발현 분석에 의해 계산되었고, Actb 유전자를 내부 대조군으로 사용하였다. 1 μg of total RNA was used to prepare cDNA with the High-Capacity cDNA Reverse Transcription kit (Applied Biosystems). qRT-PCR was performed using the
통계적 분석statistical analysis
모든 데이터는 평균 ± 표준편차로 측정되었다. 통계적인 유의성은 Student's t-test (two-tailed)로 얻었다. 통계적 분석은 SPSS version 22 (IBM Co)를 이용하여 수행되었다. 통계적 유의성의 수준은 다음과 같다:*; P < 0.05, **; P < 0.01 and ***; P < 0.001.All data were measured as mean ± standard deviation. Statistical significance was obtained by Student's t -test (two-tailed). Statistical analysis was performed using SPSS version 22 (IBM Co). The levels of statistical significance are as follows:*; P < 0.05, **; P < 0.01 and ***; P < 0.001.
3-5. 결과3-5. result
본 발명자들은 주산기(perinatal period)의 인간 췌장 소도에서 5-HT가 존재함을 임신 14주부터 생후 3개월까지의 면역조직화학을 통해 확인하였다 (도 5a 및 도 9a). 5-HT 염색은 주산기 동안의 내분시 세포에 제한되었으며, 그 강도는 생후 8일에 피크 값을 가졌다. 강한 5-HT 염색이 출생 당일(P0) 마우스의 베타 세포에서도 관찰되었다 (도 5b). 마우스 배아 췌장에서의 Tph1 mRNA 의 발현은 Tph2 보다 높았고, 이의 발현 패턴은 5-HT 면역염색에서의 변화와 상응하였다(도 9b). 인간의 태아 및 성인의 베타세포에서는 모두, TPH1 mRNA 발현이 TPH2 mRNA보다 높았고, TPH1 mRNA발현은 성인의 베타세포보다 태아의 베타세포에서 더 높았다. 이러한 데이터는 5-HT가 주산기 동안 인간과 설치류의 베타세포에서 모두 공통된 기능을 수행하고, 베타 세포에서 5-HT의 생산이 TPH2 보다는 TPH1 에 주로 의존하는 것일 수 있음을 암시한다. The present inventors confirmed the presence of 5-HT in human pancreatic islets in the perinatal period through immunohistochemistry from 14 weeks of gestation to 3 months of age ( FIGS. 5A and 9A ). 5-HT staining was restricted to endocrine cells during the perinatal period, and its intensity peaked at 8 days of age. Strong 5-HT staining was also observed in beta cells of the day of birth (P0) mice (Fig. 5b). The expression of Tph1 mRNA in the mouse embryonic pancreas was higher than that of Tph2 , and its expression pattern corresponded to the change in 5-HT immunostaining ( FIG. 9b ). In both human fetal and adult beta cells, TPH1 mRNA expression was higher than TPH2 mRNA, and TPH1 mRNA expression was higher in fetal beta cells than in adult beta cells. These data suggest that 5-HT performs a common function in both human and rodent beta cells during perinatal period, and that the production of 5-HT in beta cells may be mainly dependent on TPH1 rather than TPH2.
베타 세포에서 5-HT의 생리학적인 역할을 자세히 설명하기 위하여, 본 발명자들은 베타 세포-특이적으로 파괴된 Tph1 유전자를 보유하는 마우스(Tph1 βKO) 를 제작하였다. Tph1 βKO마우스는 출생당일(P0) Tph1 mRNA 발현이 췌장에서 감소되고(도 10a), 주산기 및 임신 중 마우스의 베타 세포에서의 5-HT 생산이 면역형광 염색으로 검출불가한 수준으로 감소(도 10b) 된다는 점이 확인되었다. 5-HT 생산의 손실은, PDX1 및 NKX6.1 이 정상적으로 발현된다는 점에서, 베타 세포의 분화에는 영향을 미치지 않는다는 점이 입증되었다. (도 10c)In order to elucidate the physiological role of 5-HT in beta cells in detail, the present inventors constructed a mouse ( Tph1 βKO) harboring the beta cell-specific disrupted Tph1 gene. Tph1 βKO mice showed decreased Tph1 mRNA expression in the pancreas on the day of birth (P0) (Fig. 10a), and 5-HT production in perinatal and gestational mouse beta cells was reduced to undetectable levels by immunofluorescence staining (Fig. 10b) was confirmed. It was demonstrated that loss of 5-HT production does not affect the differentiation of beta cells in that PDX1 and NKX6.1 are normally expressed. (Fig. 10c)
흥미롭게도, Tph1 βKO 마우스에서 β 세포 매스(β cell mass )는 현저하게 감소한 반면, 췌장의 크기는 변화가 없었다(도 5c, 5d, 및 도 10d Fig). pHH3(phospho-Histone H3 )와 TUNEL에 대한 면역형광 염색은 β 세포 증식이 β 세포의 사멸 증가 없이 Tph1 βKO 마우스에서 75%까지 감소되었음을 밝혀내었다 (도 5e 및 도 10e). 또한, cyclin family members (i.e. D1, D2, D3, A2, and B1)의 mRNA 발현은 출생 당일(P0) Tph1 βKO 마우스의 췌장에서 감소되었다(도 5f). 이러한 데이터는 5-HT가 주산기 β 세포(perinatal β cell)의 증식을 촉진함으로써 β 세포 매스를 증가시킨다는 점을 암시한다. Interestingly, in Tph1 βKO mice, β cell mass was significantly reduced, while the size of the pancreas did not change (Figs. 5c, 5d, and 10d). Immunofluorescence staining for pHH3 (phospho-Histone H3 ) and TUNEL revealed that β cell proliferation was reduced by 75% in Tph1 βKO mice without increased β cell death ( FIGS. 5E and 10E ). In addition, mRNA expression of cyclin family members (ie D1, D2, D3, A2, and B1) was reduced in the pancreas of Tph1 βKO mice on the day of birth (P0) (Fig. 5f). These data suggest that 5-HT increases β cell mass by promoting proliferation of perinatal β cells.
본 발명자들은 나아가 성체기 Tph1 βKO 마우스에서 Tph1 βKO의 장기적 효과를 확인하기 위하여, 9주령의 Tph1 βKO 마우스의 대사적 표현형을 평가하였다. Tph1 βKO 마우스는 정상적으로 성장하였고, 정상적인 인슐린 감수성을 나타내었다(도 11a, 11b). 그러나 당 내성은 손상되었다(도 6a). The present inventors further evaluated the metabolic phenotype of 9-week-old Tph1 βKO mice to confirm the long-term effects of Tph1 βKO in adult Tph1 βKO mice. Tph1 βKO mice grew normally and showed normal insulin sensitivity ( FIGS. 11A and 11B ). However, glucose tolerance was impaired (Fig. 6a).
금식 및 당 투여 15분 후의 혈장 내 인슐린 수준은 낮았고, Tph1 βKO 췌장 소도의 인슐린 분비 능력은 손상되었다(도 6b, 6c). The plasma insulin level was low 15 minutes after fasting and glucose administration, and the insulin secretory ability of Tph1 βKO pancreatic islets was impaired ( FIGS. 6B and 6C ).
성체 Tph1 βKO 마우스에서 β 세포 매스(β cell mass)는 β 세포 증식에도 불구하고 대조군 마우스의 절반 이상(40%까지) 감소되었으나, 췌장의 크기는 대조군 마우스와 유사하였다 (도 6d, 6e, 6f). 따라서, 주산기 β 세포 증식에 대한 5-HT 자극은 완전한 성체 β 세포 매스 발달 및 당뇨의 발병을 예방하는데 필수적임을 알 수 있었다.In adult Tph1 βKO mice, β cell mass was reduced by more than half (up to 40%) of control mice despite β cell proliferation, but the size of the pancreas was similar to that of control mice (Figs. 6d, 6e, 6f). . Therefore, it was found that 5-HT stimulation of perinatal β-cell proliferation is essential for full adult β-cell mass development and prevention of the onset of diabetes.
설치류의 14종의 HTR 중에서, 6개의 HTR이 췌장 소도에서 발현된다. 주산기의 β 증식에 관여하는 다운스트림 HTR을 확인하기 위하여, 본 발명자들은 6종의 HTR (HTR1B, 1D, 2A, 2B, 3A, and 3B)의 발현을 배아 췌장에서 확인하였다. Of the 14 HTRs in rodents, 6 HTRs are expressed in pancreatic islets. To identify the downstream HTRs involved in perinatal β proliferation, the present inventors confirmed the expression of six HTRs (HTR1B, 1D, 2A, 2B, 3A, and 3B) in the embryonic pancreas.
Htr1b, Htr2b 및 Htr3a mRNA의 발현은 배아가 발달하면서 증가되는 추세를 나타내었다 (도 7a). 이러한 HTR 중에서, HTR3 는 인슐린 분비에는 관여하였으나, β 세포의 증식에는 관여하지 않았고, HTR1B 또는 HTR1D의 상실은 P0에서 β 세포 증식을 감소시키지 않았다(도 12). 이와 대조적으로, β 세포 매스 (β cell mass)는 β 세포-특이적으로 Htr2b가 파괴된 마우스(Htr2b βKO)에서 P0에서 55% 까지 감소되었으며, 총 췌장 중량은 변하지 않고 유지되었다 (도 7b, 7c, 7d). β 세포 매스의 감소는 Htr2b βKO 마우스에서 β 세포 증식의 감소와 연관되어 있으며, β 세포 아폽토시스의 증가는 관찰되지 않았다 (도 7e 및 도 10e).The expression of Htr1b , Htr2b and Htr3a mRNA showed a tendency to increase as the embryo developed ( FIG. 7a ). Among these HTRs, HTR3 was involved in insulin secretion but not in β cell proliferation, and loss of HTR1B or HTR1D did not reduce β cell proliferation at P0 ( FIG. 12 ). In contrast, β cell mass was reduced by 55% at P0 in mice with β cell-specific disruption of Htr2b ( Htr2b βKO), and total pancreatic weight remained unchanged (Figs. 7b, 7c). , 7d). A decrease in β cell mass was associated with a decrease in β cell proliferation in Htr2b βKO mice, and no increase in β cell apoptosis was observed ( FIGS. 7E and 10E ).
성체기(adulthood)에서, Htr2b βKO 마우스들은 체중과 인슐린 감수성은 정상이었음에도 당 내성이 있었다(도 7f and 도 13a, 13b). 금식 및 당 급이 15분 후 혈장 내 인슐린 수준은 Htr2b βKO 마우스에서 더 낮았다 (도 7g). 그러나 분리된 Htr2b βKO 췌장 소도로부터의 당-자극 인슐린 분비는 유의적으로 손상되지 않았다 (도 7h). 대신, β 세포 매스(β cell mass)은 성체 Htr2b βKO 마우스에서 대조군 마우스의 40% 수준까지 지속적으로 감소되었다 (도 7i). 췌장의 크기는 대조군과 유사하였고, β 세포 마커들은 Htr2b βKO 마우스에서 적절하게 발현되었다 (도 7j 및 도 13c). 따라서, Htr2b βKO 마우스는 Tph1 βKO 마우스의 표현형과 매우 유사(phenocopied) 하였다. 이러한 데이터는 5-HT가 주산기(perinatal period)에 HTR2B를 통하여 β 세포 증식을 자극하고 성체 β 세포 매스(adult β cell mass)을 결정한다는 결론을 뒷받침한다. In adulthood, Htr2b βKO mice were glucose tolerant, although body weight and insulin sensitivity were normal ( FIGS. 7F and 13A, 13B ). Plasma insulin levels were lower in Htr2b βKO mice after 15 minutes of fasting and glucose feeding ( FIG. 7G ). However, glucose-stimulated insulin secretion from isolated Htr2b βKO pancreatic islets was not significantly impaired ( FIG. 7H ). Instead, β cell mass was continuously reduced in adult Htr2b βKO mice to a level of 40% of that of control mice ( FIG. 7i ). The size of the pancreas was similar to that of the control group, and β cell markers were appropriately expressed in Htr2b βKO mice ( FIGS. 7j and 13c ). Therefore, Htr2b βKO mice were very similar to the phenotype of Tph1 βKO mice (phenocopied). These data support the conclusion that 5-HT stimulates β cell proliferation through HTR2B in the perinatal period and determines adult β cell mass.
고지방 식이(High fat diet, HFD)는 β 세포에서 5-HT 생산을 유도하지는 않지만, 증가된 인슐린 요구를 보상하기 위하여 β 세포 증식을 유도하는 것으로 알려져 있다. 5-HT가 β 세포로 하여금 대사 스트레스를 견디기 위하여 필요한지 여부를 추가적으로 평가하기 위하여, 마우스를 12주령부터 8주간 HFD를 먹였다. Tph1 mRNA 도, 5-HT 생산도 모두 HFD에 의해 β 세포에서 유도되지 않았다. High fat diet (HFD) does not induce 5-HT production in β cells, but is known to induce β cell proliferation to compensate for the increased insulin demand. To further evaluate whether 5-HT is required for β cells to withstand metabolic stress, mice were fed HFD from 12 weeks of age to 8 weeks. Neither Tph1 mRNA nor 5-HT production was induced in β cells by HFD.
Tph1 βKO 마우스는 대조군 마우스와 비교하여 유사한 체중 증가와 인슐린 감수성의 악화를 나타내었다. 당 내성은 대조군 마우스보다 HFD를 먹인 Tph1 βKO 마우스에서 더 급격하게 악화된 반면에, β 세포증식은 비슷하게 나타났다 (도 8a, 8b). 이러한 데이터는 5-HT가 대사 스트레스에 대응하여 β 세포 증식을 유도하는데 관여하지 않는다는 점을 암시한다. 이러한 결론은 인슐린 수용체 길항제인 S961에 의해 유도된 인슐린 저항성을 가진 마우스에서 β 세포 증식을 측정함으로써 추가적으로 뒷받침되었다 (도 8c). 따라서 5-HT는 β 세포 증식을 대사 스트레스에 반응하여서가 아니라, 주산기(perinatal period) 동안의 보다 생리학적인 자극에 반응하여 β 세포의 증식을 자극한다. Tph1 βKO Mice showed similar weight gain and worsening of insulin sensitivity compared to control mice. Glucose tolerance worsened more rapidly in Tph1 βKO mice fed HFD than control mice, whereas β cell proliferation was similar ( FIGS. 8a and 8b ). These data suggest that 5-HT is not involved in inducing β cell proliferation in response to metabolic stress. This conclusion was further supported by measuring β cell proliferation in mice with insulin resistance induced by the insulin receptor antagonist S961 ( FIG. 8c ). Thus, 5-HT stimulates β cell proliferation not in response to metabolic stress, but in response to more physiological stimuli during the perinatal period.
실시예 4. 변형된 STAM (Stelic Animal Model) 마우스의 제작Example 4. Construction of a modified STAM (Stelic Animal Model) mouse
4-1. 변형된 STAM 마우스의 제작 및 사육 관리4-1. Production and breeding management of modified STAM mice
본 발명자들은 췌장의 베타 세포 파괴 또는 감소에 따른 대사질환의 표현형을 추가로 확인하고자, 변형된 STAM(Stelic Animal model)을 제작하였다. 간략히 설명하면, C57BL6/J 수컷 7주령 마우스에 streptozotocin (STZ, Sigma, S0130)을 복강내 투여로 40 mg/kg(체중) 의 용량으로 5일간 매일 투여하였고, STZ (streptozotocin)을 투여한 후 8주령차부터 마우스가 62주령이 될 때까지 고지방 식이를 54주간 급여하였다. 대조군으로는 STZ를 투여하지 않은 7주령의 마우스를 사용하였다. 또한, 고지방 식이를 급여하기 시작하면서 6주마다(즉, 8, 14, 20, 26, 32, 38, 44, 50, 56, 및 62주령) 마우스를 희생하여 이하의 시험을 수행하였다(도 14).The present inventors prepared a modified STAM (Stelic Animal model) to further confirm the phenotype of metabolic diseases according to the destruction or reduction of beta cells of the pancreas. Briefly, streptozotocin (STZ, Sigma, S0130) was intraperitoneally administered to C57BL6/J male 7-week-old mice daily for 5 days at a dose of 40 mg/kg (body weight), and after administration of STZ (streptozotocin) 8 A high-fat diet was fed for 54 weeks from the age difference until the mice reached 62 weeks of age. As a control group, 7-week-old mice not administered with STZ were used. In addition, the following tests were performed by sacrificing mice every 6 weeks (ie, 8, 14, 20, 26, 32, 38, 44, 50, 56, and 62 weeks of age) starting to feed a high-fat diet (Fig. 14). ).
4-2. 췌장 베타 세포의 면역조직화학4-2. Immunohistochemistry of pancreatic beta cells
본 발명자들은 STZ 투여가 췌장 베타 세포에 미치는 영향을 확인하기 위하여, 췌장 베타 세포의 면역염색을 수행하였다. 췌장 베타 세포의 면역 염색을 위해서는, 췌장 조직을 실시예 1-5에 기재된 것과 같이 전처리한 후, 1차 항체로 항-인슐린 항체(A0564, Dako)를 사용하였고, 2차 항체로 항-돼지 IgG(희석 비율; 제조사)를 사용하였다. 면역조직화학 염색 결과는 도 15에 나타내었다.The present inventors performed immunostaining of pancreatic beta cells to confirm the effect of STZ administration on pancreatic beta cells. For immunostaining of pancreatic beta cells, pancreatic tissue was pretreated as described in Examples 1-5, and then anti-insulin antibodies (A0564, Dako) were used as primary antibodies, and anti-porcine IgG as secondary antibodies. (dilution ratio; manufacturer) was used. Immunohistochemical staining results are shown in FIG. 15 .
도 15에 나타낸 바와 같이, STZ (streptozotocin) 투여 후 STZ를 투여하지 않은 마우스보다 염색되는 베타세포 양이 감소되는 것이 확인되었다. 따라서, 상기 변형된 STAM 마우스는 STZ의 투여로 인해 췌장 베타 세포가 파괴됨을 확인할 수 있었다. As shown in FIG. 15 , it was confirmed that the amount of stained beta cells after STZ (streptozotocin) administration was reduced compared to mice not administered with STZ. Therefore, it could be confirmed that the modified STAM mice had pancreatic beta cells destroyed by the administration of STZ.
4-3. 절식 후 혈당 측정 결과4-3. Blood glucose measurement results after fasting
본 발명자들은 STZ의 투여가 변형된 STAM 마우스의 혈당에 미치는 영향을 확인하기 위하여, 상기 4-1에서 제작된 변형된 STAM 마우스를 희생하기 전 6시간 동안 금식시키고, 미정맥에서 채혈을 하여 글루코미터 (GlucoDr Plus, Allmedicus)를 사용해 혈당을 측정하였다. 결과는 도 16에 나타내었다.In order to confirm the effect of STZ administration on the blood glucose of the modified STAM mouse, the present inventors fasted for 6 hours before sacrificing the modified STAM mouse prepared in 4-1, and collected blood from the caudal vein to measure the glucometer. (GlucoDr Plus, Allmedicus) was used to measure blood glucose. The results are shown in FIG. 16 .
도 16에 나타낸 바와 같이, 상기 변형된 STAM 마우스는 14주령부터 대조군 마우스의 혈당과 비교하여 2배 이상 증가하여 당뇨병의 표현형을 나타내었다. 상기 4-2의 결과를 고려하였을 때, 변형된 STAM 마우스는 췌장 베타 세포의 파괴로 인해 혈당이 상승되는 것으로 추정된다. As shown in FIG. 16 , the modified STAM mouse exhibited a diabetic phenotype by increasing more than twice as compared to the blood glucose of the control mouse from 14 weeks of age. Considering the results of 4-2, it is estimated that the modified STAM mice have elevated blood sugar due to the destruction of pancreatic beta cells.
4-4. 간조직의 H&E 염색 결과4-4. Results of H&E staining of liver tissue
본 발명자들은 STZ 투여 및 고지방 식이를 급여한 변형된 STAM 마우스의 간조직의 변화를 확인하기 위하여, 상기 4-1에서 제작된 변형된 STAM 마우스를 각 주령별(7, 8, 14, 20, 26, 32, 38, 및 44주령)로 희생하여 간조직을 채취한 후 H&E 염색을 수행하였다. 결과는 도 17에 나타내었다. The present inventors analyzed the modified STAM mice prepared in 4-1 above for each week of age (7, 8, 14, 20, 26 , 32, 38, and 44 weeks of age) were sacrificed and liver tissue was collected and then H&E staining was performed. The results are shown in FIG. 17 .
도 17에 나타낸 바와 같이, 변형된 STAM 마우스의 간조직은 간세포의 간세포 내 지질 입자의 크기 및 수가 증가하여 지방간이 유도되었을 뿐만 아니라, 간세포의 풍선화(ballooning), 섬유화가 확인되어 간염증 소견이 확인되었으며, 간 경변의 증상이 심하게 나타남을 확인할 수 있었다. 따라서, 본 발명자들은 상기 변형된 STAM 마우스를 이용하여 얻은 4-2 및 4-3의 결과로부터, 췌장 베타 세포가 파괴되면 지방간 및 간경변이 발생함을 확인하였다. As shown in FIG. 17 , in the liver tissue of the modified STAM mouse, the size and number of lipid particles in the hepatocytes increased to induce fatty liver, as well as ballooning and fibrosis of the hepatocytes, resulting in hepatitis findings. It was confirmed that the symptoms of liver cirrhosis were severe. Therefore, the present inventors confirmed that fatty liver and cirrhosis occurred when pancreatic beta cells were destroyed from the results of 4-2 and 4-3 obtained using the modified STAM mice.
<110> Korea Advanced Institute of Science and Technology <120> Knockout mouse <130> PN190056P <150> KR 10-2019-0048126 <151> 2019-04-25 <160> 12 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Tph1 forward primer <400> 1 ttctgacctg gacttctgcg 20 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Tph1 reverse primer <400> 2 ggggtcccca tgtttgtagt 20 <210> 3 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> 36B4 forward primer <400> 3 tccaggcttt gggcatca 18 <210> 4 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> 36B4 reverse primer <400> 4 ctttatcagc tgcacatcac tcaga 25 <210> 5 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CSD-Tph1-F primer <400> 5 tcaacatagc cctgagctcc ttagc 25 <210> 6 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CSD-neo-F primer <400> 6 gggatctcat gctggagttc ttcg 24 <210> 7 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CSD-Tph1-ttR primer <400> 7 atgcaaagct cctacagtga caacg 25 <210> 8 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CSD-Tph1-R primer <400> 8 cacattccct tgcaactctg ctacc 25 <210> 9 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Tph1 exon1 forward primer <400> 9 gactctttaa actccagtgg 20 <210> 10 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Tph1 exon11 reverse primer <400> 10 tcacacactg ggccacctgg 20 <210> 11 <211> 4581 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Mus musculus Tph1 gene <400> 11 gctacttgag agactaaagc agtcttgcct ggtcactcaa ggccagtctg agcaatatag 60 tgaatcccaa attgctctgt gtgtgtttgt gcgtgcgtgc acgagtgcaa gccaaggttt 120 caagagaggc cagaagaggg tgtcagattc tctggtgcat gagttacagc tggctgtgaa 180 ctgcctgatg tcggggctgg aaactaaact caggcccaag aacagcaagt gctcttatct 240 gatgagccat catcccagcc ccatgcccag cagacatggg ggctgttaac tgaaacatta 300 gaagtatgtc cacgggcctc cccttttctg aagagaaagg ggagaggaat gcatggagga 360 gagagaaggc gtggaggaag gactgagagg agaggaagga cgaaaaaccg cagtctggat 420 gtaaaaattc accatgattg aagacaacaa ggagaacaaa gagaacaaag accattcctc 480 cgaaagaggg agagtgactc tcatcttctc cttggagaat gaagtcggag gactcataaa 540 agtgctgaaa atcttccagg agaatcatgt gagcctgtta cacatcgagt cccggaaatc 600 aaagcaaaga aattcagaat ttgagatatt tgttgactgc gacatcagcc gagaacagtt 660 gaatgacatc ttccccctgc tgaagtcgca cgccaccgtc ctctcggtgg actcgcccga 720 tcagctcact gcgaaggaag acgttatgga gactgtccct tggtttccaa agaagatttc 780 tgacctggac ttctgcgcca acagagtgct gttgtatgga tccgaacttg acgccgacca 840 ccctggcttc aaagacaatg tctatcgtag aagacgaaag tattttgcag agttggctat 900 gaactacaaa catggggacc ccattcccaa gattgaattc acggaagaag agattaagac 960 ctgggggacc atcttccgag agctaaacaa actctacccg acccacgcct gcagggagta 1020 cctcagaaac ctccctttgc tctcaaaata ctgtggctat cgggaagaca acatcccgca 1080 actggaggat gtctccaact ttttaaaaga acgcactggg ttttccatcc gtcctgtggc 1140 tggttacctc tcaccgagag attttctgtc ggggttagcc tttcgagtct ttcactgcac 1200 tcagtatgtg agacacagtt cagatcccct ctacactcca gagccagaca cctgccatga 1260 actcctaggc cacgttcctc tcttggctga acccagtttt gctcaattct cccaagaaat 1320 tggcctggct tcccttggag cttcagagga gacagttcaa aaactggcaa cgtgctactt 1380 tttcactgtg gagtttgggc tgtgcaaaca agatggacag ctgagagtct ttggggccgg 1440 cttgctttct tccatcagtg aactcaaaca tgcactttct ggacatgcca aagtcaagcc 1500 ctttgatccc aagattgcct gtaaacagga atgtctcatc acgagcttcc aggatgtcta 1560 ctttgtatct gagagctttg aagatgcaaa ggagaagatg agagaatttg ccaagaccgt 1620 gaagcgcccg tttggactga agtacaaccc gtacacacag agtgttcagg ttctcagaga 1680 caccaagagc ataactagtg ccatgaatga gttgcggtat gaccttgatg tcatcagtga 1740 tgccctcgct agggtcacca ggtggcccag tgtgtgatgg tttccagtgc atatccaaaa 1800 agcctttgag catcagtcta gagccagggc tagttcttgc ttcccctgaa gacctgcttg 1860 gggagggaca gcagctccca gcttagcaat gtctctcgcc tctctccata ttcaatcact 1920 cactctctct gaaaatgcac acctggaact gcttatcttc tacttctgtt ttgtcttctg 1980 gaacctgctg agggaaatat agttcacgtg ccacgtgatg cccaggacac acatttaaaa 2040 tattttattt cattaaaatg taattgaatc attctctccc ttccctttct tccctccaac 2100 ccctccctct caaattcatg gcctttctac caaatgcccg tctttgatgg gtgagttgtc 2160 tgacactggc cagagctgga ctcatggtga tgccattttc cccagcccat cattagtgga 2220 tggcctctct ggatgccacg atgaatgtgt ctgttaccta ttactgactg tgtgacagcc 2280 caggcacagt cacacactag acttcaaggg gactcgctga aacagaagtg tggatgactt 2340 tgcgctagag catggctagt aaagtgcaag ctggcttcaa gtgctgtgtc agacagggac 2400 gtagaagcca ccaagactca gccagtgctt tctggcactt tgtttcaagg tgtaacccta 2460 ggatatagtg agaaggtatg tgtgtgtgtg tggggtggtg cagagggtag gaaatgggga 2520 tgggaatgga gaagggccaa agggagcagt ttgtatctga gactgtactt atgcgaggga 2580 gagctgtgag gattggagca catgtggtgt ccgcataagc agttgtataa gcttttcact 2640 actgtaacaa agtgtcaggg acaatcagct tatacagaga aaaggtttct cttggatgct 2700 ttggtccatt agaagttgtt cccgtggttt aagccactgg tgaagcaagg catgatagga 2760 gaatgtgaca gagcaaactt cataaagcta tacacgtcat aaaggatgga aagagaaaga 2820 gtgaaggatt ttagagaagg aagaagggag agagggaaag agagagggag gaggacacac 2880 acacacacac acacacacaa agggggtgag agagagagtc agagacagag acagagacag 2940 aaagatccta cagttcagtt taagagttca ctaccagggt aagagagagg gctcagcagt 3000 taagagtacc agctgttctt ccagaggacc ctggtttgct tcccagcatc cacactgtgg 3060 cttagaacca tctgtaactc tagttccaga ggatccagtg ttttctggcc tccatagaga 3120 gcaggcaggc atgcaagtgg tacacagata tgcatgcagc aaaaacaccc atacacatac 3180 aataaaaagt agaagaccct acctctgctt ttcccattaa tagtgaaatt atataccatt 3240 ggacaggctt catctcaagc ccactagata tattttcaca ctagattttt aaaaacacct 3300 tttaaggatt cagaggaaac tattgaaagc tgcgcttcac cccatgctct acaaggaagt 3360 gtaatccagc cgtctcagat ctttagaaac atacccactt taacagctgg tgagcacgca 3420 tccgtccgca agtagatacg ttagctctga aatcacctga agtacaaacc agctagttta 3480 cagcctgctt gattaccagg gaaagcacta taaagaaatc ctaccgacag caaacagaga 3540 gtgccgtctg ctgtttctgg ttatttccac tagactctgg tggtgctgaa gaatcactta 3600 ttggcttttt aattggttgt gctctgacta aagcacttta aactgtaaag ccacaacctt 3660 accgtttgta acttcaggat agaaaaaata agcgaagggc ttgactttgt ctctgctctg 3720 cttctgtgat atttggcaag tcagggttcc aagagccttg gagtcttcaa aacacctaag 3780 aatcttttaa tagttattca aacaccaggc cagattcaaa caaaaagcaa ggcttgcaat 3840 tctttcctgg agagccattc ctcgacagca gcagcgtgct tgactttttg aagaaaacac 3900 aaatgctaat cgtcagagtg cctgcgttcc ttaatctcat gctttggcat ttggaattac 3960 ataagtagca agatgcagca aaatgcacag aattattgct catttttaag ttggcttcta 4020 aaccacagaa agaagaaagc caggacttct caaaagcact aaataactga gaccgtatgt 4080 tcatttccag gaagtggata aaaagataac agtggtccat ttcactcttc atgttacagt 4140 gccacataca cttataattt aagaatttgt tccactgggt aataaactta aagttcatga 4200 tctcaagaag tatttttttt aaagcacatt taaaactttt attttatgtg tgtgggcccc 4260 aggaatcaaa ctccagttgt caggcttggc cacaagcccc tttatttgct gagccagttt 4320 ttgccacccc ctcccccaat tcttttaatc aaacacacat taaaaacagt ttcaatttta 4380 tgttcacaat gttataagtt cagagaccct agcagtgatg atggttggta caaagaatca 4440 gccttggggg ttagacaaag tatgaacatg cctcaatgga acccattact ttgtatacca 4500 ctttaaaata tttttacaaa aagaaatcac aaaatataca ataaaaaata tacatcactc 4560 taaaaaaaaa aaaaaaaaaa a 4581 <210> 12 <211> 2082 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Mus musculus Htr2b gene <400> 12 gctaagactc agagcaagtc agtgggggag gatctgccag gagagggagt ccaactgaac 60 agacacagga cggctggctt aggaagccac agaagacaag cgtcttctgg aatctaagcc 120 tctagaaaat ctaaaatgtg gatgtcttac ctgcaaacac ggacagacgt gtacacagtc 180 ccatcttcga gagcctgaat ctttttagaa ggaagaagtc accttggctg tgagtgtctg 240 gtaggtttgc taaatgcttt gctaaagcag atgacttgct tagctactga ccatgctgac 300 cactgtctgg aactggactg agtcaccaaa aggcgaatgg cttcatctta taaaatgtct 360 gaacaaagca caacttctga gcacatttta cagaagacat gtgatcacct gatcctgact 420 aaccgttctg gattagagac agactcagta gcagaggaaa tgaagcagac tgtggaggga 480 caggggcata cagtgcactg ggcagctctc ctgatactcg cggtgataat acccaccatt 540 ggtgggaaca tccttgtgat tctggctgtt gcactggaga aaaggctgca gtacgctacc 600 aactactttt taatgtcctt ggcgatagca gatttgctgg ttggattgtt tgtgatgccg 660 attgccctct tgacaatcat gtttgaggct atatggcccc tcccactggc cctgtgtcct 720 gcctggttat tcctcgatgt tctcttttca actgcctcca tcatgcatct ctgtgccatt 780 tccctggacc gctatatagc catcaaaaag ccaattcagg ccaatcagtg caactcccgg 840 gctactgcat tcatcaagat tacagtggta tggttaattt caataggcat cgccatccca 900 gtccctatta aaggaatcga gactgatgtg attaatccac acaatgtcac ctgtgagctg 960 acaaaggacc gctttggcag ttttatggtc tttgggtcac tggctgcttt cttcgcacct 1020 ctcaccatca tggtagtcac ttactttctc accattcaca ctttacagaa gaaagcttac 1080 ttggtcaaaa ataagccacc tcaacgccta acacggtgga ctgtgcccac agttttccta 1140 agggaagact catccttttc atcaccagaa aaggtggcaa tgctggatgg gtctcacagg 1200 gataaaattc tacctaactc aagtgatgag acacttatgc gaagaatgtc ctcagttgga 1260 aaaagatcag cccaaaccat ttctaatgag cagagagcct cgaaggccct tggagtcgtg 1320 tttttccttt ttctgcttat gtggtgcccc ttttttatta caaatctaac tttagctctg 1380 tgtgattcct gcaatcagac cactctcaaa acactcctgg agatatttgt gtggataggc 1440 tacgtttcct cgggggtgaa tcctctgatc tatacactct tcaataagac atttcgggaa 1500 gcatttggca ggtacatcac ctgcaattac cgagccacaa agtcagtaaa agcacttagg 1560 aagttttcca gtacactttg ttttgggaat tcaatggtag aaaactctaa atttttcaca 1620 aaacatggaa ttcgaaatgg gatcaaccct gccatgtacc agagcccaat gaggctccga 1680 agttcaacca ttcagtcctc atcaatcatc ctcctcgata cccttctcac tgaaaacgat 1740 ggcgacaaag cggaagagca ggtcagctac atatagcaga acgggccgcc ctcatctgag 1800 agaggtgatg agcaggacgc acgcgcaaca tggaaaggta cagagtgaat gaaaacccca 1860 ccctctcctg agtgaagtac caaggctgtc cagcttcctt atctaaacaa actcaagcat 1920 ggctaaagta gatctgatgg cttcaaacaa acgcaatctc tactctggtt ttcaaataca 1980 attaaataag ttgataaatt tcagtctttt aaaaaaaaag aatgtcaaca aatttttaag 2040 tttctaatgt gtgtaaagtt gtgttaagaa agaaataaaa tg 2082 <110> Korea Advanced Institute of Science and Technology <120> Knockout mouse <130> PN190056P <150> KR 10-2019-0048126 <151> 2019-04-25 <160> 12 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Tph1 forward primer <400> 1 ttctgacctg gacttctgcg 20 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Tph1 reverse primer <400> 2 ggggtcccca tgtttgtagt 20 <210> 3 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> 36B4 forward primer <400> 3 tccaggcttt gggcatca 18 <210> 4 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> 36B4 reverse primer <400> 4 ctttatcagc tgcacatcac tcaga 25 <210> 5 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CSD-Tph1-F primer <400> 5 tcaacatagc cctgagctcc ttagc 25 <210> 6 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CSD-neo-F primer <400> 6 gggatctcat gctggagttc ttcg 24 <210> 7 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CSD-Tph1-ttR primer <400> 7 atgcaaagct cctacagtga caacg 25 <210> 8 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CSD-Tph1-R primer <400> 8 cacattccct tgcaactctg ctacc 25 <210> 9 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Tph1 exon1 forward primer <400> 9 gactctttaa actccagtgg 20 <210> 10 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Tph1 exon11 reverse primer <400> 10 tcacacactg ggccacctgg 20 <210> 11 <211> 4581 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Mus musculus Tph1 gene <400> 11 gctacttgag agactaaagc agtcttgcct ggtcactcaa ggccagtctg agcaatatag 60 tgaatcccaa attgctctgt gtgtgtttgt gcgtgcgtgc acgagtgcaa gccaaggttt 120 caagagaggc cagaagaggg tgtcagattc tctggtgcat gagttacagc tggctgtgaa 180 ctgcctgatg tcggggctgg aaactaaact caggcccaag aacagcaagt gctcttatct 240 gatgagccat catcccagcc ccatgcccag cagacatggg ggctgttaac tgaaacatta 300 gaagtatgtc cacgggcctc cccttttctg aagagaaagg ggagaggaat gcatggagga 360 gagagaaggc gtggaggaag gactgagagg agaggaagga cgaaaaaccg cagtctggat 420 gtaaaaattc accatgattg aagacaacaa ggagaacaaa gagaacaaag accattcctc 480 cgaaagaggg agagtgactc tcatcttctc cttggagaat gaagtcggag gactcataaa 540 agtgctgaaa atcttccagg agaatcatgt gagcctgtta cacatcgagt cccggaaatc 600 aaagcaaaga aattcagaat ttgagatatt tgttgactgc gacatcagcc gagaacagtt 660 gaatgacatc ttccccctgc tgaagtcgca cgccaccgtc ctctcggtgg actcgcccga 720 tcagctcact gcgaaggaag acgttatgga gactgtccct tggtttccaa agaagatttc 780 tgacctggac ttctgcgcca acagagtgct gttgtatgga tccgaacttg acgccgacca 840 ccctggcttc aaagacaatg tctatcgtag aagacgaaag tattttgcag agttggctat 900 gaactacaaa catggggacc ccattcccaa gattgaattc acggaagaag agattaagac 960 ctgggggacc atcttccgag agctaaacaa actctacccg acccacgcct gcagggagta 1020 cctcagaaac ctccctttgc tctcaaaata ctgtggctat cgggaagaca acatcccgca 1080 actggaggat gtctccaact ttttaaaaga acgcactggg ttttccatcc gtcctgtggc 1140 tggttacctc tcaccgagag attttctgtc ggggttagcc tttcgagtct ttcactgcac 1200 tcagtatgtg agacacagtt cagatcccct ctacactcca gagccagaca cctgccatga 1260 actcctaggc cacgttcctc tcttggctga acccagtttt gctcaattct cccaagaaat 1320 tggcctggct tcccttggag cttcagagga gacagttcaa aaactggcaa cgtgctactt 1380 tttcactgtg gagtttgggc tgtgcaaaca agatggacag ctgagagtct ttggggccgg 1440 cttgctttct tccatcagtg aactcaaaca tgcactttct ggacatgcca aagtcaagcc 1500 ctttgatccc aagattgcct gtaaacagga atgtctcatc acgagcttcc aggatgtcta 1560 ctttgtatct gagagctttg aagatgcaaa ggagaagatg agagaatttg ccaagaccgt 1620 gaagcgcccg tttggactga agtacaaccc gtacacacag agtgttcagg ttctcagaga 1680 caccaagagc ataactagtg ccatgaatga gttgcggtat gaccttgatg tcatcagtga 1740 tgccctcgct agggtcacca ggtggcccag tgtgtgatgg tttccagtgc atatccaaaa 1800 agcctttgag catcagtcta gagccagggc tagttcttgc ttcccctgaa gacctgcttg 1860 gggagggaca gcagctccca gcttagcaat gtctctcgcc tctctccata ttcaatcact 1920 cactctctct gaaaatgcac acctggaact gcttatcttc tacttctgtt ttgtcttctg 1980 gaacctgctg agggaaatat agttcacgtg ccacgtgatg cccaggacac acatttaaaa 2040 tattttattt cattaaaatg taattgaatc attctctccc ttccctttct tccctccaac 2100 ccctccctct caaattcatg gcctttctac caaatgcccg tctttgatgg gtgagttgtc 2160 tgacactggc cagagctgga ctcatggtga tgccattttc cccagcccat cattagtgga 2220 tggcctctct ggatgccacg atgaatgtgt ctgttaccta ttactgactg tgtgacagcc 2280 caggcacagt cacacactag acttcaaggg gactcgctga aacagaagtg tggatgactt 2340 tgcgctagag catggctagt aaagtgcaag ctggcttcaa gtgctgtgtc agacagggac 2400 gtagaagcca ccaagactca gccagtgctt tctggcactt tgtttcaagg tgtaacccta 2460 ggatatagtg agaaggtatg tgtgtgtgtg tggggtggtg cagagggtag gaaatgggga 2520 tgggaatgga gaagggccaa agggagcagt ttgtatctga gactgtactt atgcgaggga 2580 gagctgtgag gattggagca catgtggtgt ccgcataagc agttgtataa gcttttcact 2640 actgtaacaa agtgtcaggg acaatcagct tatacagaga aaaggtttct cttggatgct 2700 ttggtccatt agaagttgtt cccgtggttt aagccactgg tgaagcaagg catgatagga 2760 gaatgtgaca gagcaaactt cataaagcta tacacgtcat aaaggatgga aagagaaaga 2820 gtgaaggatt ttagagaagg aagaagggag agagggaaag agagagggag gaggacacac 2880 acacacacac acacacacaa agggggtgag agagagagtc agagacagag acagagacag 2940 aaagatccta cagttcagtt taagagttca ctaccagggt aagagagagg gctcagcagt 3000 taagagtacc agctgttctt ccagaggacc ctggtttgct tcccagcatc cacactgtgg 3060 cttagaacca tctgtaactc tagttccaga ggatccagtg ttttctggcc tccatagaga 3120 gcaggcaggc atgcaagtgg tacacagata tgcatgcagc aaaaacaccc atacacatac 3180 aataaaaagt agaagaccct acctctgctt ttcccattaa tagtgaaatt atataccatt 3240 ggacaggctt catctcaagc ccactagata tattttcaca ctagattttt aaaaacacct 3300 tttaaggatt cagaggaaac tattgaaagc tgcgcttcac cccatgctct acaaggaagt 3360 gtaatccagc cgtctcagat ctttagaaac atacccactt taacagctgg tgagcacgca 3420 tccgtccgca agtagatacg ttagctctga aatcacctga agtacaaacc agctagttta 3480 cagcctgctt gattaccagg gaaagcacta taaagaaatc ctaccgacag caaacagaga 3540 gtgccgtctg ctgtttctgg ttatttccac tagactctgg tggtgctgaa gaatcactta 3600 ttggcttttt aattggttgt gctctgacta aagcacttta aactgtaaag ccacaacctt 3660 accgtttgta acttcaggat agaaaaaata agcgaagggc ttgactttgt ctctgctctg 3720 cttctgtgat atttggcaag tcagggttcc aagagccttg gagtcttcaa aacacctaag 3780 aatcttttaa tagttattca aacaccaggc cagatcaaa caaaaagcaa ggcttgcaat 3840 tctttcctgg agagccattc ctcgacagca gcagcgtgct tgactttttg aagaaaacac 3900 aaatgctaat cgtcagagtg cctgcgttcc ttaatctcat gctttggcat ttggaattac 3960 ataagtagca agatgcagca aaatgcacag aattattgct catttttaag ttggcttcta 4020 aaccacagaa agaagaaagc caggacttct caaaagcact aaataactga gaccgtatgt 4080 tcatttccag gaagtggata aaaagataac agtggtccat ttcactcttc atgttacagt 4140 gccacataca cttataattt aagaatttgt tccactgggt aataaactta aagttcatga 4200 tctcaagaag tatttttttt aaagcacatt taaaactttt attttatgtg tgtgggcccc 4260 aggaatcaaa ctccagttgt caggcttggc cacaagcccc tttatttgct gagccagttt 4320 ttgccacccc ctcccccaat tcttttaatc aaacacacat taaaaacagt ttcaatttta 4380 tgttcacaat gttataagtt cagagaccct agcagtgatg atggttggta caaagaatca 4440 gccttggggg ttagacaaag tatgaacatg cctcaatgga acccattact ttgtatacca 4500 ctttaaaata tttttacaaa aagaaatcac aaaatataca ataaaaaata tacatcactc 4560 taaaaaaaaa aaaaaaaaaa a 4581 <210> 12 <211> 2082 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Mus musculus Htr2b gene <400> 12 gctaagactc agagcaagtc agtgggggag gatctgccag gagagggagt ccaactgaac 60 agacacagga cggctggctt aggaagccac agaagacaag cgtcttctgg aatctaagcc 120 tctagaaaat ctaaaatgtg gatgtcttac ctgcaaacac ggacagacgt gtacacagtc 180 ccatcttcga gagcctgaat ctttttagaa ggaagaagtc accttggctg tgagtgtctg 240 gtaggtttgc taaatgcttt gctaaagcag atgacttgct tagctactga ccatgctgac 300 cactgtctgg aactggactg agtcaccaaa aggcgaatgg cttcatctta taaaatgtct 360 gaacaaagca caacttctga gcacatttta cagaagacat gtgatcacct gatcctgact 420 aaccgttctg gattagagac agactcagta gcagaggaaa tgaagcagac tgtggaggga 480 caggggcata cagtgcactg ggcagctctc ctgatactcg cggtgataat acccaccatt 540 ggtgggaaca tccttgtgat tctggctgtt gcactggaga aaaggctgca gtacgctacc 600 aactactttt taatgtcctt ggcgatagca gatttgctgg ttggattgtt tgtgatgccg 660 attgccctct tgacaatcat gtttgaggct atatggcccc tcccactggc cctgtgtcct 720 gcctggttat tcctcgatgt tctcttttca actgcctcca tcatgcatct ctgtgccatt 780 tccctggacc gctatatagc catcaaaaag ccaattcagg ccaatcagtg caactcccgg 840 gctactgcat tcatcaagat tacagtggta tggttaattt caataggcat cgccatccca 900 gtccctatta aaggaatcga gactgatgtg attaatccac acaatgtcac ctgtgagctg 960 acaaaggacc gctttggcag ttttatggtc tttgggtcac tggctgcttt cttcgcacct 1020 ctcaccatca tggtagtcac ttactttctc accattcaca ctttacagaa gaaagcttac 1080 ttggtcaaaa ataagccacc tcaacgccta acacggtgga ctgtgcccac agttttccta 1140 agggaagact catccttttc atcaccagaa aaggtggcaa tgctggatgg gtctcacagg 1200 gataaaattc tacctaactc aagtgatgag acacttatgc gaagaatgtc ctcagttgga 1260 aaaagatcag cccaaaccat ttctaatgag cagagagcct cgaaggccct tggagtcgtg 1320 tttttccttt ttctgcttat gtggtgcccc ttttttatta caaatctaac tttagctctg 1380 tgtgattcct gcaatcagac cactctcaaa acactcctgg agatatttgt gtggataggc 1440 tacgtttcct cgggggtgaa tcctctgatc tatacactct tcaataagac atttcgggaa 1500 gcatttggca ggtacatcac ctgcaattac cgagccacaa agtcagtaaa agcacttagg 1560 aagttttcca gtacactttg ttttgggaat tcaatggtag aaaactctaa atttttcaca 1620 aaacatggaa ttcgaaatgg gatcaaccct gccatgtacc agagcccaat gaggctccga 1680 agttcaacca ttcagtcctc atcaatcatc ctcctcgata cccttctcac tgaaaacgat 1740 ggcgacaaag cggaagagca ggtcagctac atatagcaga acgggccgcc ctcatctgag 1800 agaggtgatg agcaggacgc acgcgcaaca tggaaaggta cagagtgaat gaaaacccca 1860 ccctctcctg agtgaagtac caaggctgtc cagcttcctt atctaaacaa actcaagcat 1920 ggctaaagta gatctgatgg cttcaaacaa acgcaatctc tactctggtt ttcaaataca 1980 attaaataag ttgataaatt tcagtctttt aaaaaaaaag aatgtcaaca aatttttaag 2040 tttctaatgt gtgtaaagtt gtgttaagaa agaaataaaa tg 2082
Claims (21)
Exons 5 and 6 of the Tph1 gene were transferred to pancreatic β cells by crossing a Tph1 floxed mouse with loxp sites inserted on both sides of exon 5 and 6 of Tph1 and a mouse expressing Cre-recombinase specifically for pancreatic β cells. A transgenic mouse specifically knocked out.
The transgenic mouse according to claim 1, wherein exon 5 and exon 6 of the Tph1 gene consist of nucleotide sequences 845-912 and 913-1109 of SEQ ID NO: 11, respectively.
The method of claim 1, wherein the transgenic mouse is Tph1 fl/fl x Insulin-Cre +/- mouse (Tph1 beta cell specific knockout mouse, Tph1 βKO mouse) or Tph1 fl / fl x Pdx1-CreER +/- mouse (Tph1) beta cell specific inducible knockout mouse, Tph1 βiKO mouse), the transgenic mouse.
The transgenic mouse according to claim 1, wherein the transgenic mouse is used as a model for metabolic disease.
(a) Tph1의 엑손 5 및 엑손 6 양 옆에 loxp site를 삽입한 Tph1 floxed 마우스 및 조직-특이적으로 Cre-recombinase를 발현하는 마우스를 교배하는 단계; 및
(b) 상기 교배 결과 얻어진 다음 세대 마우스를 얻는 단계.
A method for preparing a tissue-specific Tph1 gene knockout mouse comprising the following steps:
(a) crossing a Tph1 floxed mouse in which loxp sites are inserted on both sides of exon 5 and exon 6 of Tph1 and a mouse that specifically expresses Cre-recombinase; and
(b) obtaining a next-generation mouse obtained as a result of the crossing.
The method according to claim 8, wherein the tissue-specifically expressing Cre-recombinase mouse is an Insulin-Cre mouse expressing pancreatic-specific Cre-recombinase.
(a) 제1항, 제2항, 제6항, 및 제7항 중 어느 한 항의 형질전환 마우스에 대사질환 치료제 후보물질을 투여하는 단계;
(b) 상기 후보물질을 투여한 형질전환 마우스를 후보물질을 투여하지 않은 대조군 마우스와 비교하여 질환에 대한 지표를 측정하는 단계; 및
(c) 상기 지표가 후보물질을 투여한 형질전환 마우스에서 대조군 마우스에 비해 개선되는 경우, 후보물질을 대사질환의 치료제로 판정하는 단계.A screening method for a therapeutic agent for a metabolic disease comprising the steps of:
(a) administering a metabolic disease therapeutic candidate to the transgenic mouse of any one of claims 1, 2, 6, and 7;
(b) comparing the transgenic mice administered with the candidate substance with the control mice not administered with the candidate substance, measuring an indicator for the disease; and
(c) determining the candidate substance as a therapeutic agent for metabolic diseases when the indicator is improved in the transgenic mice administered with the candidate substance compared to the control mouse.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
KR1020210121315A KR102419224B1 (en) | 2019-04-25 | 2021-09-10 | Htr2b gene knockout mouse |
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
KR1020190048126 | 2019-04-25 | ||
KR20190048126 | 2019-04-25 |
Related Child Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
KR1020210121315A Division KR102419224B1 (en) | 2019-04-25 | 2021-09-10 | Htr2b gene knockout mouse |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
KR20200125395A KR20200125395A (en) | 2020-11-04 |
KR102433456B1 true KR102433456B1 (en) | 2022-08-17 |
Family
ID=72941716
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
KR1020190160100A KR102433456B1 (en) | 2019-04-25 | 2019-12-04 | Tph1 knockout mouse |
KR1020210121315A KR102419224B1 (en) | 2019-04-25 | 2021-09-10 | Htr2b gene knockout mouse |
Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
KR1020210121315A KR102419224B1 (en) | 2019-04-25 | 2021-09-10 | Htr2b gene knockout mouse |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
KR (2) | KR102433456B1 (en) |
WO (1) | WO2020218700A1 (en) |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR101519448B1 (en) | 2014-03-28 | 2015-05-13 | 한국과학기술원 | A method for screening composition for prevention and treatment of obesity or diabetes |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6060642A (en) * | 1997-08-15 | 2000-05-09 | The Regents Of The University Of California | Serotonin 5-HT6 receptor knockout mouse |
KR20140100731A (en) * | 2013-02-07 | 2014-08-18 | 광주과학기술원 | Preparation Method of CRBN Knockout Mice and Uses Thereof |
KR101748575B1 (en) | 2016-12-16 | 2017-06-20 | 주식회사 엠젠플러스 | INSulin gene knockout diabetes mellitus or diabetic complications animal model and a method for producing the same |
KR20180108402A (en) * | 2017-03-24 | 2018-10-04 | 한국과학기술원 | Pharmaceutical Composition For Preventing Or Treating Fatty Liver Comprising HTR2A Antigonist |
-
2019
- 2019-12-04 WO PCT/KR2019/017041 patent/WO2020218700A1/en active Application Filing
- 2019-12-04 KR KR1020190160100A patent/KR102433456B1/en active IP Right Grant
-
2021
- 2021-09-10 KR KR1020210121315A patent/KR102419224B1/en active IP Right Grant
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR101519448B1 (en) | 2014-03-28 | 2015-05-13 | 한국과학기술원 | A method for screening composition for prevention and treatment of obesity or diabetes |
Non-Patent Citations (6)
Title |
---|
Endocrinology, Vol.156 No.2, pp.444-452* |
Nature vol.403 no.6769 pp.560-564(2000.02.03.)* |
PNAS vol.97 no.17 pp.9508-9513(2000) |
PNAS vol.97 no.17 pp.9508-9513(2000.08.15.) |
보건의료기술연구개발사업 최종보고서, 한국과학기술원(2014.12.31.)* |
한국과학기술정보원 SCIENCEON 데이터베이스, 보건의료기술연구개발사업 최종보고서, ‘췌장 베타세포의 분화 및 증식 조절 기전의 규명 및 이를 이용한 베타세포 치료법의 개발’, 보건복지부(DB구축일: 2016.08.20.) |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
KR20210114372A (en) | 2021-09-23 |
KR20200125395A (en) | 2020-11-04 |
KR102419224B1 (en) | 2022-07-08 |
WO2020218700A1 (en) | 2020-10-29 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Lee et al. | XBP‐1 is required for biogenesis of cellular secretory machinery of exocrine glands | |
Giesige et al. | AAV-mediated follistatin gene therapy improves functional outcomes in the TIC-DUX4 mouse model of FSHD | |
Law et al. | Decreased anxiety, altered place learning, and increased CA1 basal excitatory synaptic transmission in mice with conditional ablation of the neural cell adhesion molecule L1 | |
Kasher et al. | Direct evidence for axonal transport defects in a novel mouse model of mutant spastin‐induced hereditary spastic paraplegia (HSP) and human HSP patients | |
JP2009232849A (en) | Transgenic animal for different gene and their use for gene characterization | |
JP4857450B2 (en) | Transgenic non-human mammal that reproduces the pathology of human rheumatoid arthritis | |
EP2050335A1 (en) | Gene disruptions, compositions and methods relating thereto | |
JP5642729B2 (en) | Transgenic animals as models for fibrotic diseases | |
JP2008510488A (en) | Novel gene disruption, compositions and methods relating thereto | |
Fujino et al. | c-MAF deletion in adult C57BL/6J mice induces cataract formation and abnormal differentiation of lens fiber cells | |
ES2432759T3 (en) | New diagnostic methods | |
KR102466092B1 (en) | Human liver chimera non-human animal having defective P450 oxidoreductase and method of using the same | |
US20050204410A1 (en) | SIRT6 transgenic non-human animals and assay methods | |
JP4613824B2 (en) | Transgenic non-human mammal | |
KR102419224B1 (en) | Htr2b gene knockout mouse | |
JP5834297B2 (en) | Collagen production enhancer | |
KR101894670B1 (en) | Method of screening agents for treating disorder related to dysregulation of hepatic lipid metabolism through inhibition of PPARγ-mediated transcription | |
Martinez Hernandez et al. | Low-expressing synucleinopathy mouse models based on oligomer-forming mutations and C-terminal truncation of α-synuclein | |
Sarver et al. | Hypermetabolism in mice carrying a near-complete human chromosome 21 | |
US20040226055A1 (en) | Animal model exhibiting pathological conditions of Alzheimer's disease | |
US8993833B2 (en) | Model of Alzheimer's Disease | |
WO2020013113A1 (en) | Non-human mammalian cancer model | |
WO2022176917A1 (en) | Mesenchymal stem cells and adipocytes for preparing mitokine mixture, and therapeutic or prophylactic drug | |
Abbedissen | Characterization of the CEL-MODY mouse–A new disease model for chronic pancreatitis | |
JP2021158940A (en) | Apoptosis inhibitor and nonhuman mammal expressing hap1 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
E902 | Notification of reason for refusal | ||
E902 | Notification of reason for refusal | ||
E701 | Decision to grant or registration of patent right | ||
GRNT | Written decision to grant |