KR102417664B1 - Wrs와 md2의 결합을 이용한 염증성 질환 치료제, 면역증강제 또는 항암제 스크리닝 방법 - Google Patents

Wrs와 md2의 결합을 이용한 염증성 질환 치료제, 면역증강제 또는 항암제 스크리닝 방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 트립토판 티알엔에이 합성효소(WRS)와 MD2의 결합을 이용한 염증성 질환 치료제, 면역증강제 또는 항암제 스크리닝 방법에 관한 것으로, 보다 상세하게는 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS 또는 이의 단편과 MD2 또는 MD2-TLR4 복합체를 접촉시키고, 결합 수준을 측정하여 WRS 또는 이의 단편과 MD2 또는 MD2-TLR4 복합체의 결합력을 증가시키는 시험 제제를 면역증강제 또는 항암제로 선별하는 스크리닝 방법과, 상기 결합력을 감소시키는 시험 제제를 염증성 질환의 예방 또는 치료제로 선별하는 스크리닝 방법에 대한 것이다.
본 발명자들이 밝힌 WRS와 TLR4-MD2 복합체의 결합의 기작을 이용하여 WRS 또는 이의 단편과 MD2 또는 MD2-TLR4 복합체의 결합력을 증가시키는 시험 제제를 의약 후보 물질로 선별하여 전혀 새로운 기작의 면역증강제 또는 항암제를 개발하는데 유용하게 이용할 수 있다. 또한 상기 결합력을 감소시키는 것으로 선별된 시험 제제는 염증성 질환의 예방 또는 치료제로 개발하는데 유용하게 이용할 수 있다.

Description

WRS와 MD2의 결합을 이용한 염증성 질환 치료제, 면역증강제 또는 항암제 스크리닝 방법{Methods for screening anti-inflammatory agents or immune-stimulating agents or anti-cancer agents using interactions between WRS and MD2}
본 발명은 트립토판 티알엔에이 합성효소(tryptophanyl-tRNA synthetase 또는 WRS)와 MD2의 결합을 이용한 염증성 질환 치료제, 면역증강제 또는 항암제 스크리닝 방법에 관한 것으로, 보다 상세하게는 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS 또는 이의 단편과 MD2 또는 MD2-TLR4 복합체를 접촉시키고, 결합 수준을 측정하여 WRS 또는 이의 단편과 MD2 또는 MD2-TLR4 복합체의 결합력을 증가시키는 시험 제제를 면역증강제 또는 항암제로 선별하는 스크리닝 방법과, 상기 결합력을 감소시키는 시험 제제를 염증성 질환의 예방 또는 치료제로 선별하는 스크리닝 방법에 대한 것이다.
아미노아실 티알엔에이 합성효소(aminoacyl-tRNA synthetase, AARS)는 아미노산 특이적으로 티알엔에이에 연결하는 반응을 촉매하는 효소로 단백질 생성에 중추적인 역할을 담당한다. 최근 이 AARS들이 단백질 합성에서의 본원 기능 외에도 세포사멸(apoptosis), 혈관형성(angiogenesis), 염증반응 등 다양한 생명현상에 관여하고 있음이 알려지고 있다. 트립토판 티알엔에이 중합효소(tryptophanyl-tRNA synthetase, WRS)는 클래스 I에 속하는 AARS로, 세포질에 존재한다. WRS에서 아미노기 부가부분(extra N-terminal domain)이 없는 형태의 mini-WRS는 IFN-γ에 의해 활성화되는 혈관형성저해인자(angiostatic factor)임이 알려졌다. 전체 길이(full length)의 WRS는 혈관세포에서 분비되는 것이 관찰되었지만, 체내에서 어떤 역할을 하는지에 대해서는 아직 알려진 바 없다(Guo M et al.(2013), Nat Chem Biol, 9(3):145-153).
Toll-like receptor(TLR)는 선천면역 반응(innate immune response)에서 중심적인 역할을 하는 막단백질로, 대식세포나 수지상세포와 같은 혈관 내 면역감시세포(sentinel cells)에서 많이 발현된다. TLR들은 패턴인식수용체(pattern recognition receptor, PRR) 중 하나로, 병원균에서 특이적으로 나타나는 분자양상(pathogen-associated molecular patterns, PAMS)을 감지하면, 사이토카인을 분비하여 염증반응을 일으키고, 대식작용으로 병원균을 제거하거나 감염된 세포의 세포사멸을 유도하는 작용을 한다.
현재까지 TLR1 내지 TLR13의 총 13종류의 TLR이 알려져 있으며, 인간은 TLR1 내지 TLR10을 발현하는 것으로 확인되었다. 대부분의 TLR은 호모다이머(homodimer)로 작용하지만, TLR2의 경우 TLR1 또는 TLR6와 헤테로다이머(heterodimer)를 형성하기도 한다. TLR에 리간드가 결합하면 두 분자의 TLR의 세포 외부 부분(extracellular domain)에서 이합체화(dimerization)가 일어나고, 세포 내부에서는 어댑터 단백질이 모여 TLR의 후속 신호전달체계를 활성화시킨다. Myeloid differentiation factor 88(MyD88), MyD88-adaptor like(Mal), TIR-domain containing adaptor-inducing interferon-b(TRIF) 그리고 TRIF-related adaptor molecule(TRAM) 등의 어댑터 단백질이 세포 내부에서 어떻게 TLR과 상호작용하는 지에 따라 nuclear factor kappa B(NF-kB), mitogen-activated protein kinase(MAPK), interferon regulatory factor(IRF) 등 각기 다른 신호전달체계를 활성화시키게 된다(Connolly D et al.(2012), Curr Opin Pharmacol, 7(6):613-616).
또한 TLR에 결합하는 공수용체(coreceptor)의 유무와 종류에 따라 TLR의 리간드 민감도(ligand sensitivity)가 달라진다. TLR4는 그람음성 박테리아의 외부 세포막에 존재하는 LPS를 감지하기 위해 myeloid differentiation factor 2(MD2)가 공수용체로 반드시 필요하다. LPS는 CD14와 LPS 결합단백질(LPS binding protein)에 의해 TLR4와 MD2 단백질 복합체에 전달되어 TLR에 의한 신호전달계를 활성시키고 면역반응을 일으킨다. 한편 최근에는 체내에서 생성되는 글로보테트라오실세라마이드(globotetraosylceramide, Gb4)가 TLR4-MD2 단백질 복합체에 리간드로 결합하고 TLR4-MD2의 활성을 억제함으로써 LPS 독성을 줄여주는 효과가 있음이 보고되었다(Park B et al.(2009), Nature, 458(7242):1191-5; Kondo Y et al.(2013), PNAS, 110(12):4714-4719).
이에 따라 TLR과 TLR의 공수용체의 활성화 기작에 대한 이해를 넓히고, TLR의 리간드와 TLR 단백질 복합체의 결합 수준을 조절하여 보다 효과적으로 체내 면역 반응을 조절할 수 있는 기술 개발이 필요하다.
본 발명자들은 WRS가 면역세포에서 TLR4를 통해 NF-kB 신호전달계를 활성화하며, 특히 MD2에 직접 결합하여 TLR4 활성화를 조절하는 것을 발견하여 본 발명을 완성하였다.
따라서 본 발명의 목적은
(a) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS(tryptophanyl-tRNA synthetase) 또는 이의 단편과 MD2(myeloid differentiation factor 2)를 접촉시키는 단계;
(b) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2의 결합 수준을 측정하는 단계;
(c) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2간 결합 수준을 비교하는 단계; 및
(d) WRS 또는 이의 단편과 MD2간 결합 수준을 증가시키는 시험 제제를 선별하는 단계를 포함하는 면역증강제 또는 항암제 스크리닝 방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은
(a) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4(toll-like receptor 4) 복합체를 접촉시키는 단계;
(b) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체의 결합 수준을 측정하는 단계;
(c) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체간 결합 수준을 비교하는 단계; 및
(d) WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체간 결합 수준을 증가시키는 시험 제제를 선별하는 단계를 포함하는 면역증강제 또는 항암제 스크리닝 방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은
(a) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS 또는 이의 단편과 MD2를 접촉시키는 단계;
(b) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2의 결합 수준을 측정하는 단계;
(c) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2간 결합 수준을 비교하는 단계; 및
(d) WRS 또는 이의 단편과 MD2간 결합 수준을 감소시키는 시험 제제를 선별하는 단계를 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료제 스크리닝 방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은
(a) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4(toll-like receptor 4) 복합체를 접촉시키는 단계;
(b) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체의 결합 수준을 측정하는 단계;
(c) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체간 결합 수준을 비교하는 단계; 및
(d) WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체간 결합 수준을 감소시키는 시험 제제를 선별하는 단계를 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료제 스크리닝 방법을 제공하는 것이다.
상기와 같은 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은
(a) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS(tryptophanyl-tRNA synthetase) 또는 이의 단편과 MD2(myeloid differentiation factor 2)를 접촉시키는 단계;
(b) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2의 결합 수준을 측정하는 단계;
(c) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2간 결합 수준을 비교하는 단계; 및
(d) WRS 또는 이의 단편과 MD2간 결합 수준을 증가시키는 시험 제제를 선별하는 단계를 포함하는 면역증강제 또는 항암제 스크리닝 방법을 제공한다.
본 발명의 다른 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은
(a) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4(toll-like receptor 4) 복합체를 접촉시키는 단계;
(b) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체의 결합 수준을 측정하는 단계;
(c) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체간 결합 수준을 비교하는 단계; 및
(d) WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체간 결합 수준을 증가시키는 시험 제제를 선별하는 단계를 포함하는 면역증강제 또는 항암제 스크리닝 방법을 제공한다.
본 발명의 또 다른 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은
(a) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS 또는 이의 단편과 MD2를 접촉시키는 단계;
(b) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2의 결합 수준을 측정하는 단계;
(c) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2간 결합 수준을 비교하는 단계; 및
(d) WRS 또는 이의 단편과 MD2간 결합 수준을 감소시키는 시험 제제를 선별하는 단계를 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료제 스크리닝 방법을 제공한다.
본 발명의 또 다른 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은
(a) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4(toll-like receptor 4) 복합체를 접촉시키는 단계;
(b) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체의 결합 수준을 측정하는 단계;
(c) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체간 결합 수준을 비교하는 단계; 및
(d) WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체간 결합 수준을 감소시키는 시험 제제를 선별하는 단계를 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료제 스크리닝 방법을 제공한다.
이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
본 발명자들은 트립토파닐 티알엔에이 중합효소(WRS)가 단백질 합성에서의 본연의 기능 외에 면역세포에서 TLR4-MD2 복합체와 직접 결합하고, 결과적으로 NF-kB 신호전달계를 활성화시켜 선천면역 반응을 유도하는 것을 발견하였다. WRS가 TLR4-MD2과 결합하고 활성화하는 데에는 VSE domain이라고 불리는 N-말단의 1부터 47번째 아미노산 서열을 포함하는 부분이 중요하며, WRS는 MD2와 먼저 직접 결합한 후, TLR4와 결합하여 복합체를 형성하고 TLR4 신호전달계를 활성화시킨다.
WRS가 MD2와 TLR4와 결합하는 기작에 대하여 본 발명의 구체적인 실시예를 통해 밝힌 바는 다음과 같다.
full-length WRS로 대식세포(J774A.1)를 자극하면 NF-kB p65와 IkB의 인산화 수준이 증가하는 등 NF-kB 신호전달계가 활성화된다. WRS는 면역세포에서 MIP-1α, TNF-α 등 사이토카인의 분비를 유도하며, 체내(마우스)에서도 사이토카인 분비 및 복강 내 호중구 침윤 등 선천면역 반응을 유도하는 효과가 있다. WRS의 면역 활성화 작용에는 N-terminal eukaryotic extension domain이라고 불리는 WRS N-말단의 1 부터 154번째 아미노산 서열이 중요하다.
다양한 패턴인식수용체(PRR)를 발현하는 세포를 WRS로 자극하고 NF-kb의 전사 활성을 측정하는 스크리닝 실험을 통하여 TLR4가 WRS의 면역 활성을 매개하는 수용체인 것으로 확인된다. TLR4 또는 TLR4의 공수용체인 MD2의 발현이 억제된 대식세포나 마우스에서는 WRS의 자극에 의한 면역 반응이 나타나지 않아, TLR4가 WRS에 의해 활성화되는 수용체임을 보여준다.
WRS는 TLR4 복합체에 직접 결합하여 활성화시킨다. WRS는 TLR4와 MD2가 같이 존재하는 상황에서는 이들 모두와 결합하여 WRS-MD2-TLR4의 복합체를 형성하지만, TLR4 또는 MD2와 개별적으로 반응시키면, WRS와 MD2는 직접 결합하지만, WRS와 TLR4는 결합하지 않는다. GST pull-down, 표면 플라즈몬 공명(SPR), 질량 분석 등 다양한 방법과 WRS의 N-말단의 단편들을 이용하여 확인한 바에 따르면, WRS가 MD2와 결합하는 데에는 vertebrate specific extension(VSE) domain이라고 불리는 WRS의 N-말단의 1 내지 47번째 아미노산을 포함하는 부분이 중요하다. 또한 WRS N-말단의 1부터 65번째 아미노산까지의 단편도 MD2와 강하게 결합하여, VSE 도메인과 더불어 WRS N-말단의 48 내지 65번째 아미노산도 WRS와 MD2의 결합에 중요할 것으로 판단된다. 또한 full-length WRS는 TLR4와 단독으로 직접 결합하지는 않지만, MD2와 먼저 결합하여 구조적인 변화를 거친 후, WRS의 136부터 154번째 아미노산을 통해 TLR4와 결합하는 것으로 판단된다. WRS가 MD2, TLR4와 결합하여 복합체를 형성하는 기작은 본 명세서의 도 9에 도시되어 있다.
본 발명에서 밝힌 WRS가 MD2와 직접 결합하여 WRS-MD2-TLR4 복합체를 형성하고 TLR4의 신호전달을 개시하는 기작을 이용하여, TLR4의 활성이 중요한 면역증강제, 항암제 또는 염증성 질환의 예방 또는 치료제를 스크리닝할 수 있다. WRS-MD2-TLR4 복합체의 형성을 촉진하여 TLR4에 의한 신호전달을 강화하는 제제를 면역증강제 또는 항암제 후보물질로 선별하는 데 이용할 수 있다. 역으로, WRS-MD2-TLR4 복합체의 형성을 저해하여 TLR4의 활성화를 억제하는 제제를 염증성 질환의 예방 또는 치료제의 후보물질로 선별할 수 있다. WRS-MD2-TLR4 복합체를 형성할 때 WRS가 MD2와 먼저 직접 결합하므로, WRS-MD2-TLR4의 복합체의 형성을 조절하는 제제는 WRS와 MD2의 결합 수준을 변화시키는지 확인하여 스크리닝할 수 있다. 또한 TLR4과 MD2는 면역세포에서 서로 결합하여 복합체를 형성하고 있으므로, 시험 제제가 WRS와 TLR4-MD2 복합체 간의 결합 수준을 변화시키는지 확인하여 스크리닝할 수도 있다. 나아가 WRS가 MD2에 결합하는데 VSE domain이 중요하므로, full-length WRS 대신 VSE domain을 포함하는 WRS의 단편을 이용하여 시험제제의 스크리닝을 실시할 수도 있다.
따라서 본 발명은 WRS와 MD2의 결합 수준을 증가시키는 제제를 면역증강제 또는 항암제로 선별하는 방법으로서,
(a) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS ( tryptophanyl - tRNA synthetase ) 또는 이의 단편과 MD2( myeloid differentiation factor 2)를 접촉시키는 단계;
(b) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2 의 결합 수준을 측정하는 단계;
(c) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2 간 결합 수준을 비교하는 단계; 및
(d) WRS 또는 이의 단편과 MD2 간 결합 수준을 증가시키는 시험 제제를 선별하는 단계
를 포함하는 스크리닝 방법을 제공한다.
상기 (a) 단계는 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS(tryptophanyl-tRNA synthetase) 단백질 또는 이의 단편과 MD2(myeloid differentiation factor 2) 단백질을 접촉시키는 단계이다.
본 발명에서 ‘단백질’은 ‘폴리펩타이드(polypeptide)’ 또는 ‘펩타이드(peptide)’와 호환성있게 사용되며, 예컨대, 자연 상태의 단백질에서 일반적으로 발견되는 바와 같은 아미노산 잔기의 중합체를 말한다.
본 발명에서 ‘WRS’는 트립토파닐 티알엔에이 합성효소(tryptophanyl-tRNA synthetase, TrpRS)를 의미하며, 트립토판 티알엔에이 연결효소(tryptophan-tRNA ligase), WARS 등으로도 알려져 있다. WRS는 트립토판과 tRNA의 아미노아실레이션(aminoacylation) 반응을 매개하는 효소이다. 인간의 WRS는 WARS 유전자에 의해 암호화되며, 단백질의 아미노산 서열과 mRNA 염기 서열은 NP_004175.2(단백질)와 NM_004184.3(mRNA) 등의 Genbank accession number로 공지되어 있다. WRS는 cytoplasmic form(WARS 또는 tryptophanyl-tRNA synthetase, cytoplasmic)과 mitochondrial form(WARS2 또는 tryptophanyl-tRNA synthetase, mitochondrial)의 두 가지 아형(isoform)이 있다.
본 발명에서의 WRS는 cytoplasmic form으로, 바람직하게는 포유류에서 유래한 것일 수 있으며, 가장 바람직하게는 서열번호 5로 표시되는 인간의 WRS 아미노산 서열을 포함하는 것일 수 있다.
또한 본 발명의 방법을 실시하기 위하여 WRS의 단편을 이용할 수도 있다. 상기 ‘단편’은 단백질의 일부를 의미한다. 본 발명의 목적상 WRS의 단편이란 MD2와의 결합력을 유지하고 있는 단편으로서, 서열번호 5로 표시되는 인간의 WRS 아미노산 서열에서 1 내지 47번째 아미노산의 서열을 포함하는 단편 또는 48 내지 65번째 아미노산 서열로 이루어진 단편일 수 있다. 상기 WRS의 1 내지 47번째 아미노산의 서열을 포함하는 단편이란 바람직하게는 WRS의 1 내지 47번째 아미노산의 서열로 이루어진 단편(N47), 1 내지 65번째 아미노산의 서열로 이루어진 단편(N65), 1 내지 145번째 아미노산의 서열로 이루어진 단편(N145) 또는 1 내지 154번째 아미노산의 서열로 이루어진 단편(N154)일 수 있다.
본 발명에서 ‘MD2'는 MD-2, lymphocyte antigen 96(LY-96), ES-OP9 coculture clone-1(ESOP-1)등으로도 불리는 단백질로, TLR4와 직접 결합하여 리간드 반응성과 리간드 활성화를 조절하는 역할을 하며, 특히 TLR4가 LPS에 결합하기 위한 co-receptor로 작용하는 것으로 알려져 있다(Miyake K, Semin in Immunol, 16(1):11-16, 2004). 인간의 MD2는 LY96 유전자에 의해 암호화되며, 아미노산 서열과 염기서열은 NP_056179.3(단백질), NP_001182726.1(단백질), NM_001195797.1(mRNA), NM_015364.4(mRNA) 등의 Genbank accession number로 공지되어 있다. MD2에는 다양한 스플라이싱 변이체와 이들에서 유래하는 아형(isoform)이 존재한다.
본 발명에서의 MD2는 포유류에서 유래한 것일 수 있으며, 바람직하게는 서열번호 1로 표시되는 인간의 MD2 아미노산 서열을 포함하는 것일 수 있다.
본 발명의 스크리닝 방법을 실시하기 위한 WRS 또는 그 단편, 그리고 MD2 단백질은 전체 길이 또는 정의된 단편 단백질 뿐 아니라, 상기 단백질들과 실질적으로 동등한 생리 활성을 갖는 기능적 동등물(functional equivalent), 기능적 유도체(functional derivative) 및 단편을 모두 포함한다. 상기 ‘실질적으로 동등한 생리 활성’이란 WRS와 MD2가 직접 결합하는 능력을 의미한다. WRS는 MD2와 결합하고 차례로 TLR4와 결합하여 MD2와 TLR4의 복합체를 형성하고, TLR4의 이합체화(dimerization)와 활성화를 유도한다.
상기 WRS 또는 그 단편, 그리고 MD2 단백질의 기능적 동등물은 바람직하게는 각각의 바람직한 아미노산 서열과 적어도 70% 이상, 바람직하게는 80% 이상, 보다 바람직하게는 90% 이상의 서열 상동성(homology)을 갖는 폴리펩티드일 수 있다. 또한 상기 기능적 동등물은 아미노산 서열 중 일부가 부가, 치환 또는 결실의 결과 생성될 것일 수 있다. 상기에서 아미노산의 치환은 바람직하게는 보존적 치환이다. 천연에 존재하는 아미노산의 보존적 치환의 예는 다음과 같다: 지방족 아미노산(Gly, Ala, Pro), 소수성 아미노산(Ile, Leu, Val), 방향족 아미노산(Phe, Tyr, Trp), 산성 아미노산(Asp, Glu), 염기성 아미노산(His, Lys, Arg, Gln, Asn) 및 황 함유 아미노산(Cys, Met). 또한 상기 기능적 동등물에는 단백질을 구성하는 아미노산의 일부가 결실된 변형체도 포함된다. 상기 아미노산의 결실 또는 치환은 바람직하게는 각 단백질의 생리활성에 직접적으로 관련되지 않은 영역에 위치해 있다. 아울러 상기 단백질의 아미노산 서열의 양 말단 또는 서열 내에 몇몇의 아미노산이 부가된 변형체도 포함된다.
본 발명의 기능적 동등물의 범위에는 WRS 또는 그 단편, 그리고 MD2 단백질의 기본 골격 및 이의 생리 활성을 유지하면서 단백질의 일부 화학 구조가 변형된 폴리펩티드 유도체도 포함된다. 예를 들어, 여기 한정되는 것은 아니지만, 본 발명의 단백질의 안정성, 세포내 투과성, 저장성, 휘발성 또는 용해도 등을 변경시키기 위한 구조 변경이 이에 포함된다. 또한 단백질의 감지나 분리를 위하여 사용되는 공지의 표지 단백질(예를 들어, 형광 단백질, GST, HA 또는 His 등의 tag)이나 표지 물질과 융합(fusion) 또는 접합(conjugation)된 것일 수 있다.
본 발명에서 ‘시험 제제(test agent)’ 또는 '제제(agent)'라 함은 임의의 물질(substance), 분자(molecule), 원소(element), 화합물(compound), 실재물(entity) 또는 이들의 조합을 포함한다. 예컨대, 이에 제한되지는 않으나, 단백질, 폴리펩티드, 소분자 유기 물질(small organic molecule), 다당류(polysaccharide), 폴리뉴클레오티드 등을 포함한다. 또한 자연 산물(natural product), 합성 화합물 또는 화학 화합물 또는 2개 이상의 물질의 조합일 수도 있다. 다르게 지정되지 않는 한, 제제, 물질 및 화합물은 호환성있게 사용할 수 있다.
보다 구체적으로 본 발명의 방법으로 스크리닝할 수 있는 시험 제제는, 폴리펩티드, 베타-턴 유도체(beta-turn mimetics), 다당류, 인지질, 호르몬, 프로스타글란딘, 스테로이드, 방향족 화합물, 헤테로사이클릭 화합물, 벤조디아제핀(benzodiazepines), 올리고머릭 N-치환 글리신(oligomeric N-substituted glycines), 올리고카르바메이트(oligocarbamates), 당류(saccharides), 지방산, 퓨린, 피리미딘 또는 이들의 유도체, 구조적 아날로그 또는 이들의 조합을 포함한다. 시험 제제는 합성 물질 또는 천연물질일 수 있다. 상기 시험 제제는 합성 또는 자연 화합물의 라이브러리를 포함하는 광범위하고 다양한 출처로부터 얻어질 수 있다. 조합(combinatorial) 라이브러리는 스텝-바이-스텝 방식으로 합성될 수 있는 여러 종류의 화합물로 생산될 수 있다. 다수의 조합 라이브러리의 화합물들은 ESL(encoded synthetic libraries) 방법(WO95/12608, WO93/06121, WO94/08051, WO95/395503 및 WO95/30642)에 의해 제조될 수 있다. 펩티드 라이브러리는 파지 디스플레이 방법(WO91/18980)에 의해 제조될 수 있다. 박테리아, 곰팡이, 식물 및 동물 추출물 형태의 자연 화합물의 라이브러리는 상업적인 출처로부터 얻거나 또는 자연 환경 등 필드(field)에서 수집될 수 있다. 공지된 약리학적(pharmacological) 제제가 구조적 아날로그를 제조하기 위하여 아실화, 알킬화, 에스테르화 반응(esterification), 아미드화 반응(amidification)과 같은 지시되거나(direct) 무작위한 화학적 수식에 적용될 수 있다.
상기 시험 제제는 자연적으로 생성되는 단백질 또는 이의 단편일 수 있다. 이런 시험 제제는 자연 출처(natural source), 예컨대, 세포 또는 조직 용해물로부터 수득될 수 있다. 폴리펩티드 제제의 라이브러리는 예컨대, 통상적인 방법에 의해 생성되거나 상업적으로 입수할 수 있는 cDNA 라이브러리로부터 수득될 수 있다. 상기 시험 제제는 펩티드, 예컨대, 약 5-30개, 바람직하게는 약 5-20개, 보다 바람직하게는 약 7-15개의 아미노산을 가지는 펩티드일 수 있다. 상기 펩티드는 자연적으로 생성되는 단백질, 랜덤 펩티드 또는 ‘바이어스(biased)’ 랜덤 펩티드의 절단물일 수 있다.
또한 상기 시험 제제는 ‘핵산’일 수 있다. 핵산 시험 제제는 자연적으로 생성되는 핵산, 랜덤 핵산, 또는 ‘바이어스(biased)’ 랜덤 핵산일 수 있다. 예컨대, 원핵 또는 진핵 게놈의 절단물을 위에서 기재한 바와 유사하게 사용될 수 있다.
또한 상기 시험 제제는 소분자(예를 들어, 약 1,000 이하의 분자량을 갖는 분자)일 수 있다. 소분자의 조절 제제를 스크리닝하기 위한 방법에는 바람직하게는 고속 분석 어세이(high throughput assay)가 적용될 수 있다. 많은 어세이가 상기 스크리닝에 유용하다(Shultz, Bioorg. Med. Chem. Lett., 8:2409-2414, 1998; Weller, Mol. Drivers., 3:61-70, 1997; Fernandes, Curr. Opin. Chem. Biol., 2:597-603, 1998; and Sittampalam, Curr. Opin. Chem. Biol., 1:384-91, 1997).
본 발명의 방법에 따라 스크리닝되는 시험 제제의 라이브러리는 WRS 또는 이의 단편이나 아날로그, 그리고 MD2와 TLR4 각각의 단백질과 복합체에 대한 구조 연구를 근거로 제조될 수 있다. 이런 구조 연구는 WRS와 MD2 그리고 WRS와 TLR4-MD2 복합체 간의 결합 수준을 변경시킬 가능성이 있는 시험 제제의 규명을 가능하게 한다.
상기한 단백질의 3차원적 구조는 여러 가지 방법, 예컨대, 결정학 구조 및 분자적 모델링(crystal structure and molecular modeling)으로 연구될 수 있다. X-선 결정학(X-ray crystallography)을 이용하는 단백질 구조 연구 방법이 문헌에 잘 알려져 있다: Physical Bio-Chemistry, Van Holde, K. E.(Prentice-Hall, New Jersey 1971), pp.221-239, and Physical Chemistry with Applications to the Life Sciences, D. Eisengerg ＆ D. C. Crothers(Benjamin Cummings, Menlo Park 1979). WRS의 구조에 대한 컴퓨터 모델링은 스크리닝하기 위해 시험 제제의 디자인을 위한 다른 수단을 제공한다. 분자적 모델링 방법은 문헌에 개시되어 있다: U.S. Pat. No. 5,612,894 and U.S. Pat. No. 5,583,973. 또한 단백질 구조는 중성자 회절(neutron diffraction) 및 NMR(nuclear magnetic resonance)에 의해 결정될 수 있다: Physical Chemistry, 4th Ed. Moore, W. J.(Prentice-Hall, New Jersey 1972) and NMR of Proteins and Nucleic Acids, K. Wuthrich(Wiley-Interscience, New York 1986).
본 발명에서 ‘접촉(contacting)’은 일반적인 의미로서, 2개 이상의 제제(예를 들어, 2개의 폴리펩티드)를 결합시키거나, 제제와 세포(예를 들어, 단백질과 세포)를 결합시키는 것을 말한다. 접촉은 시험관 내(in vitro)에서 일어날 수 있다. 예컨대, 시험관(test tube) 또는 다른 컨테이너(container)에서 2개 이상의 제제를 결합시키거나 시험 제제와 세포 또는 세포 용해물과 시험 제제를 결합시키는 것이다. 또한 접촉은 본 발명을 실시하기 위한 단백질을 발현하는 세포 내에서, 또는 세포 표면 등의 세포 환경에서 일어날 수 있으며, 단백질 칩(protein chip)이나 어레이(array) 같은 인 시투(in situ)에서 일어날 수도 있다.
예컨대, 본 스크리닝 방법의 (a) 단계를 세포 환경에서 실시할 때에는 WRS 또는 그 단편, 그리고 MD2 단백질 등을 발현하는 세포에 시험 제제를 처리하여 세포 내에서 접촉되도록 할 수 있다. WRS는 세포막에 존재하는 TLR4와 MD2의 수용체 복합체에 세포 외부에서 결합하는 리간드로 작용하므로, WRS 단백질 또는 이의 단편을 별도로 분리 정제하여 준비하고, 시험 제제와 함께 MD2와 TLR4를 발현하는 세포에 접촉시키는 것이 바람직하다. 이때 상기 MD2 및/또는 TLR4는 세포에서 내재적으로 발현되는 것일 수도 있고, 이들을 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 재조합 발현벡터로 형질전환하여 공동발현(co-expression)시킨 것일 수도 있다.
또한 본 발명의 방법을 실시하기 위한 WRS 또는 이의 단편, 그리고 MD2 단백질은 천연에서 추출하거나 유전공학적 방법에 의하여 제작할 수 있다. 예를 들어 통상적인 방법에 따라 상기 폴리펩타이드 또는 이의 기능적 동등물을 암호화하는 핵산과 재조합 발현 벡터를 제작하고 적절한 숙주세포에서 발현시켜 수득할 수 있다. 또한 본 발명의 방법을 실시하는데 필요한 상기 폴리펩티드는 당업계에 공지된 화학적 합성 방법으로도 제작될 수 있다. 수득된 단백질들은 반응 용액 상에서 접촉시키거나, 공지의 방법에 따라 어느 한 단백질을 고정상에 부착시키고, 다른 단백질을 고정상에 첨가하는 방식으로 접촉시킬 수 있다.
상기 (b) 단계는 (a) 단계에서 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 접촉시킨 WRS 또는 이의 단편과 MD2의 결합 수준을 측정하는 단계이다.
WRS 또는 이의 단편과 MD2의 결합 수준은 당업계에서 단백질 간 결합을 측정하기 위하여 통상적으로 사용되는 것이라면 제한 없이 선택하여 사용할 수 있다. 예를 들어, 투 하이브리드(two hybrid) 방법, 공동면역침강 방법(co-immunoprecipitation assay, co-IP), 조직면역염색과 공동국소화 분석(co-localization assay), 섬광 근접 측정법(scintillation proximity assay), UV 또는 화학적 가교 결합 방법, 이분자 상호작용 분석(bimolecular interaction analysis, BIA), 질량 분석법(mass spectrometry), NMR(nuclear magnetic resonance), 형광 편광 분석법(fluorescence polarization assays) 및 시험관내 풀-다운 에세이(in vitro pull-down assay), ELISA(enzyme-linked immunosorbent assay), 단백질 칩 또는 어레이(protein chip 또는 array), Venus BiFC(biomolecular fluorescence complementation, BiFC), 표면 플라즈몬 공명(surface plasmon resonance, SPR) 등에서 적절히 선택하여 실시할 수 있다.
상기 (c) 단계는 (b) 단계에서 측정한 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2 간 결합 수준을 비교하는 단계이다.
시험 제제의 존재 하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2의 결합과 시험 제제 부존재 하에서의 결합을 비교하여 결합 수준의 차이를 파악하고, 시험 제제가 WRS 또는 이의 단편과 MD2 결합 수준에 미치는 영향, 시험 제제에 의한 WRS 또는 이의 단편과 MD2 결합 수준의 변화를 판단하는 단계이다.
상기 (d) 단계는 WRS 또는 이의 단편과 MD2 간 결합 수준을 증가시키는 시험 제제를 선별하는 단계이다.
본 발명에 따르면 WRS 또는 그 단편은 MD2와 직접 결합하며, TLR4의 이합체화(dimerization)과 활성화를 유도한다. 면역세포에서 활성화된 TLR4는 순차적으로 NF-kB 신호전달계를 활성화시키고, NF-kB의 전사 작용으로 사이토카인 등 면역 관련 유전자들이 발현된다. 따라서 WRS와 MD2의 결합 수준을 증가시키는 시험 제제는 WRS와 MD2의 결합을 안정화하거나 지속시켜서 WRS에 의한 TLR4의 활성화와 TLR4 신호 전달 시간이 지속되도록 하거나, 증폭되도록 할 수 있음을 알 수 있다. 즉, WRS 또는 이의 단편과 MD2간 결합 수준을 증가시키는 것으로 선별된 제제는 TLR4 활성을 강화하는 면역증강제를 개발하는데 유용한 후보 물질이 된다. 또한 면역 활성이 높아지면 체내에서 발생하는 암세포를 조기에 감지하여 제거할 수 있으므로, 면역증강제는 항암제로서의 역할도 할 수 있다.
WRS는 MD2와 단독으로 결합할 수도 있고, MD2와 TLR4가 모두 존재하는 상황에서는 WRS-MD2-TLR4의 복합체를 형성할 수 있으므로, 앞서 서술한 방법에서와 같이 WRS와 MD2 간의 결합 수준을 측정하는 방법 뿐 아니라 WRS와 MD2-TLR4 복합체 간의 결합 수준을 측정하여 이를 증가시키는 시험 제제를 선별할 수도 있다. 본 발명의 방법이 WRS와 MD2-TLR4 복합체 간의 결합을 측정하는 것일 때에는 다음과 같은 단계를 거쳐 실시하게 된다.
(a) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS 또는 이의 단편과 MD2 -TLR4(toll-like receptor 4) 복합체를 접촉시키는 단계;
(b) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2 - TLR4 복합체의 결합 수준을 측정하는 단계;
(c) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2 - TLR4 복합체간 결합 수준을 비교하는 단계; 및
(d) WRS 또는 이의 단편과 MD2 - TLR4 복합체간 결합 수준을 증가시키는 시험 제제를 선별하는 단계.
상기 (a) 단계는 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체를 접촉시키는 단계이다.
상기 ‘TLR4’는 Toll, CD284, TLR-4, Armd10 등으로도 알려져 있는 톨-유사 수용체 4(toll-like receptor 4)를 의미한다. TLR4는 그람음성 박테리아의 외부 세포막에 존재하는 LPS를 감지하는데 중요하며, TLR4가 LPS를 감지하고 하위 신호전달계를 활성화하기 위해서는 MD2와 CD14가 필요하다. 인간의 TLR4는 TLR4 유전자에 암호화되어 있으며, 단백질의 아미노산 서열과 mRNA 염기 서열은 각각 O00206.2(단백질), NP_003257.1(단백질), NM_138554.4(mRNA), NM_003266.3(mRNA) 등의 Genbank accession number로 공지되어 있다.
본 발명에서의 TLR4는 포유류에서 유래한 것일 수 있으며, 바람직하게는 서열번호 3으로 표시되는 인간의 TLR4 아미노산 서열을 포함하는 것일 수 있다. 본 발명의 방법을 실시하기 위하여 TLR4와 실질적으로 동등한 생리 활성을 갖는 기능적 동등물을 사용할 수도 있다. 상기 TLR4와 실질적으로 동등한 생리 활성이란, MD2와 WRS와의 결합력을 유지하고, TLR4에 의해 활성화되는 하위 신호 전달계, 예를 들어 NF-kB 신호전달계를 활성화할 수 있는 능력을 의미한다. 기능적 동등물의 정의와 범위에 대해서는 앞서 서술한 바와 같다.
상기 방법을 실시하기 위한 WRS 또는 그 단편과 MD2에 대하여서는 앞서 서술한 바와 같다.
상기 (a) 단계의 ‘접촉(contacting)’의 의미는 앞서 서술한 바와 같으며, 시험관이나 적절한 반응용기를 이용하여 시험관 내(in vitro)에서 진행할 수도 있고, 단백질 칩이나 어레이같은 인 시투(in situ)로 실시할 수도 있으며, 또는 세포 내, 세포 표면과 같은 세포 환경에서 이루어질 수도 있다. 세포 내 환경이 아닌 in vitro 또는 in situ로 본 단계를 실시할 때, MD2-TLR4의 복합체는 공지의 방법에 따라 MD2와 TLR4 단백질을 제작하고 상호작용/결합시켜 복합체가 형성되도록 하고 분리하여 사용할 수 있다. 세포 내에서 본 단계를 실시하기 위해서는 동일한 세포에서 MD2와 TLR4를 공동발현하여 세포 내부에서 복합체가 형성되도록 할 수 있다.
상기 (b) 단계는 (a) 단계에서 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 접촉시킨 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체의 결합 수준을 측정하는 단계이다. 단백질 복합체의 결합 수준을 측정하는 구체적인 방법은 앞서 서술한 바와 동일하다.
상기 (c) 단계는 (b) 단계에서 측정한 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체간 결합 수준을 비교하여, 시험 제제가 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체의 결합에 미치는 영향을 확인하는 단계이다.
상기 (d) 단계는 (c) 단계에서 비교한 결과에 기초하여 WRS 또는 이의 단편과 MD2-TLR4 복합체간 결합 수준을 증가시키는 시험 제제를 면역증강제 또는 항암제의 후보물질로 선별하는 단계이다.
본 발명의 방법에 따라 WRS 또는 그 단편과 MD2 또는 TLR4-MD2 복합체 간의 결합을 증가시키는 것으로 선별된 시험 제제는 실질적으로 TLR4의 활성을 증가시키는지 여부를 아래와 같은 단계를 거쳐 확인할 수 있다.
(1) 상기 (d) 단계에서 선별된 시험 제제를 MD2 와 TLR4 를 발현하는 세포와 접촉시키는 단계;
(2) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 TLR4 의 활성을 측정하는 단계; 및
(3) TLR4 의 활성을 증가시키는 시험 제제를 선별하는 단계.
상기 (1) 단계는 본 발명에 따라 WRS 또는 그 단편과 MD2 또는 TLR4-MD2 복합체 간의 결합을 증가시키는 것으로 선별된 시험 제제를 MD2와 TLR4를 발현하는 세포와 접촉시키는 단계이다.
상기 MD2와 TLR4를 발현하는 세포란 세포 내재적으로 MD2와 TLR4를 모두 발현하는 세포(예를 들어 대식세포, 대식세포 유래 세포주, 골수유래 대식세포 등)일 수 있으며, 또는 MD2 및/또는 TLR4를 발현하지 않는 세포를 MD2 및/또는 TLR4를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 재조합 발현 벡터로 공동 형질발현(co-transfection)하여 MD2와 TLR4를 함께 발현하도록 한 세포일 수도 있다.
본 발명에서 ‘폴리뉴클레오티드(polynucleotide)’ 또는 ‘핵산’은 단일- 또는 이중-가닥의 형태로 된 데옥시리보뉴클레오티드(DNA) 또는 리보뉴클레오티드(RNA)를 말한다. 다른 제한이 없는 한, 자연적으로 생성되는 뉴클레오티드와 비슷한 방법으로 핵산에 혼성화되는 자연적 뉴클레오티드의 공지된 아날로그도 포함된다. 'mRNA'는 단백질 합성 과정에서 특정 유전자의 염기서열의 유전 정보를 폴리펩티드를 형성하는 리보솜으로 전달하는 RNA이다.
또한 본 발명에서 ‘발현(expression)'은 세포에서 단백질 또는 핵산이 생성되는 것을 의미한다. 본 발명에서 ‘재조합 발현 벡터’란 적합한 숙주세포(host cell)에서 목적하는 단백질 또는 핵산(RNA)을 발현할 수 있는 벡터로서, 폴리뉴클레오티드(유전자) 삽입물이 발현될 수 있도록 작동가능하게 연결된 필수적인 조절 요소를 포함하는 유전자 작제물을 말한다. ‘작동가능하게 연결된(operably linked)’이란 일반적 기능을 수행하도록 핵산 발현조절서열과 목적하는 단백질 또는 RNA를 코딩하는 핵산 서열이 기능적으로 연결(functional linkage)되어 있는 것으로, 발현조절서열에 의해 유전자가 발현될 수 있도록 연결된 것을 의미한다. 상기 ‘발현조절서열(expression control sequence)’이란 특정한 숙주세포에서 작동가능하게 연결된 폴리뉴클레오티드 서열의 발현을 조절하는 DNA 서열을 의미한다. 그러한 조절 서열은 전사를 실시하기 위한 프로모터, 전사를 조절하기 위한 임의의 오퍼레이터 서열, 적합한 mRNA 리보좀 결합 부위를 코딩하는 서열, 전사 및 해독의 종결을 조절하는 서열, 개시 코돈, 종결 코돈, 폴리아데닐화 시그널 및 인핸서 등을 포함한다.
상기 (1) 단계를 실시하기 위한 MD2와 TLR4를 발현하는 세포는 TLR4와 관련된 하위 신호전달계 단백질들을 발현하여 TLR4의 활성화를 확인할 수 있는 세포인 것이 바람직하다. TLR4와 관련된 하위 신호전달계로는 예를 들어, NF-kB 신호전달계, MAPK 신호전달계, IRF(interferon regulatory factor) 신호전달계 등이 있으며, 바람직하게는 NF-kB 신호전달계일 수 있다. 세포 내재적으로 NF-kB 신호전달계를 발현하지 않더라도, NF-kB 전사 인자를 활성화하는 자극에 의해 발현이 증가하도록 디자인된, NF-kB의 프로모터에 작동가능하게 연결된 리포터 단백질을 포함하는 세포를 이용하여 본 발명의 방법을 실시할 수도 있다. 리포터 단백질로는 루시퍼라제, SEAP(secreted alkaline phosphatase) 등이 주로 사용된다.
또한 상기 MD2와 TLR4를 발현하는 세포는 대식세포주나 골수유래 대식세포, 또는 생체에서 분리되어 배양 중인 세포일 수 있으며, 실험 동물의 체내에 존재하는 세포일 수도 있다. 예컨대, 혈액 속에서 순환 중이거나 조직에서 분리되지 않은 상태의 세포로서, TLR4의 활성을 실험 동물 등을 통해 체내에서 확인할 때 대상이 되는 세포들이다.
상기 (2) 단계는 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 TLR4의 활성을 측정하는 단계로, WRS 또는 그 단편과 MD2 또는 MD2-TLR4 복합체 간의 결합을 증가시키는 것으로 선별된 시험 제제가 실제로 TLR4의 활성을 증가시키는지 확인하는 단계이다.
TLR4의 활성화 수준을 판단하기 위하여 공지의 방법을 제한없이 사용할 수 있다. 예를 들어, TLR4가 활성화되면, NF-kB 신호전달계의 NF-kB 단백질의 핵 내 이동이 촉진되며, 세포질에서는 인산화된 IkB-α 단백질(p-IkB-α)과 인산화된 ERK 단백질(p-ERK)이 증가한다. 시험 제제를 MD2와 TLR4를 발현하는 세포를 접촉시키고, 세포핵에 존재하는 NF-kB p65 단백질의 수준을 측정하거나, p-IkB-α, p-ERK 등의 단백질 수준을 측정하여 TLR4 활성화 정도를 확인할 수 있다. 또한 대식세포 등의 면역세포에서 TLR4가 활성화되면 MIP-1α 또는 TNF-α와 같은 사이토카인의 분비가 증가하므로, 시험 제제를 접촉한 세포에서 분비되는 사이토카인의 발현 수준이나 분비량을 측정하여 TLR4 활성의 지표로 판단할 수도 있다. NF-kB의 프로모터에 작동가능하게 연결된 리포터 단백질을 포함하는 세포를 이용하는 경우에는 시험 제제의 자극으로 생성되는 리포터 단백질의 수준이나 활성을 측정할 수 있다. 또한 TLR4의 활성은 실험 동물/동물 모델을 이용하여 체내에서 그 효과를 측정할 수도 있다. 다양한 체내 면역세포는 TLR4와 MD2를 공동발현하며, 본 발명의 TLR4의 활성을 측정하기 위한 목적에 적합하다. 예를 들어, 본 발명에 따라 선별된 시험 제제를 마우스에 복강 주사하고, TLR4 활성화의 결과로 복강내 호중구 침윤 정도를 확인하거나, 복강 삼출액에 분비된 사이토카인 분비 수준을 측정할 수도 있다.
시험 제제의 존재하에서 TLR4의 활성을 측정할 때에는 시험 제제를 단독으로 MD2와 TLR4를 발현하는 세포에 접촉시킬 수도 있고, TLR4을 활성화시킬 수 있는 공지의 리간드나 작용제를 함께 접촉시킬 수도 있다. 예를 들어, 시험 제제와 WRS를 함께 처리한 세포에서 관찰되는 TLR4의 활성과 WRS 단독으로 처리한 세포에서 관찰되는 TLR4의 활성을 비교함으로써 시험 제제에 의한 TLR4 활성의 증강 또는 증폭 효과를 알아볼 수 있다. TLR4의 리간드로서 LPS를 사용할 수도 있다.
상기 (3) 단계에서는 (2) 단계에서 측정한 시험 제제의 존재하에서의 TLR4의 활성과 시험 제제 부존재하에서의 TLR4의 활성을 비교하고, TLR4의 활성을 증가하는 것으로 확인된 시험 제제를 선별하는 단계이다.
본 발명의 방법에 따라 WRS 또는 그 단편과 MD2 또는 TLR4-MD2 복합체 간의 결합을 증가시키는 것으로 선별된 시험 제제는 TLR4에 의해 매개되는 면역 반응을 증폭하는 면역증강제로 작용하게 된다. TLR4를 비롯한 TLR은 피부, 소화관, 기도 폐 등에 존재하는 단구세포, 중성구, 비만세포 및 대식세포에서 발현되어 외부에서 침입한 병원체(pathogen) 표면에 존재하는 당, 당백질, 핵산 등의 조합으로 이루어진 패턴(pathogen associated molecular patterns, PAMPs)을 인식하는 패턴인식수용체(PRR)로서 중요한 역할을 한다. 따라서 본 발명에 따른 면역증강제는 바람직하게는 선천면역 반응을 증강시키는 면역증강제일 수 있다.
또한 면역 시스템은 외부에서 침입한 병원체 뿐 아니라, 체내에서 발생하는 비정상적으로 형질전환된 종양 세포를 감지하고 제거하는 데에도 중요하기 때문에, 체내 면역 반응을 증강시킴으로써 암의 발생과 진행을 방지할 수 있다. 또한 화학적 항암제나 방사선 치료와 같은 항암 요법은 암 세포 뿐 아니라 면역 체계에도 현저한 타격을 입히므로, 항암 치료 중 면역력 약화와 감염을 수반되는 경우가 많다. 성공적인 항암 치료를 위해서도 면역 반응을 증강시키는 것이 필수적이다.
따라서 본 발명에 따라 WRS 또는 그 단편과 MD2 또는 TLR4-MD2 복합체 간의 결합을 증가시키는 것으로 선별된 시험 제제는 암 질환을 치료하기 위한 항암제 또는 항암 요법에 병행할 수 있는 보조제로 사용될 수 있다. 본 발명에서 상기 암 질환은 구체적으로는 두경부암, 담도암, 직장암, 폐암, 위암, 간암, 췌장암, 피부암, 유방암, 난소암, 자궁경부암 및 전립선암 중에서 선택된 하나 이상의 암 질환일 수 있다.
또한 앞서 서술한 면역증강제 또는 항암제를 선별하는 방법과는 반대로, WRS-MD2-TLR4 복합체의 형성을 억제함으로써 TLR4에 의한 신호 전달을 약화시키는 제제를 선별하여 과도한 염증을 조절하기 위한 염증성 질환의 예방 또는 치료제의 후보물질로 발굴할 수 있다.
WRS-MD2-TLR4 복합체를 형성할 때 WRS가 MD2와 먼저 직접 결합하므로, 상기 WRS-MD2-TLR4의 복합체의 형성을 억제하는 제제는 WRS와 MD2의 결합 수준을 감소시키는 확인하여 선별할 수 있다. 또는 WRS와 TLR4-MD2 복합체 간의 결합 수준을 감소시키는지 확인하여 스크리닝할 수도 있다. WRS와 MD2의 결합 수준을 감소시키는 제제를 선별하는 염증성 질환의 예방 또는 치료제 스크리닝 방법은 아래의 단계들을 거쳐 실시할 수 있다.
(a) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS 또는 이의 단편과 MD2 를 접촉시키는 단계;
(b) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2 의 결합 수준을 측정하는 단계;
(c) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2 간 결합 수준을 비교하는 단계; 및
(d) WRS 또는 이의 단편과 MD2 간 결합 수준을 감소시키는 시험 제제를 선별하는 단계.
한편 WRS와 MD2-TLR4 복합체 간의 결합 수준을 감소시키는 제제를 선별하는 염증성 질환의 예방 또는 치료제 스크리닝 방법은 아래의 단계들을 거쳐 실시할 수 있다.
(a) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 WRS 또는 이의 단편과 MD2 -TLR4(toll-like receptor 4) 복합체를 접촉시키는 단계;
(b) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2 - TLR4 복합체의 결합 수준을 측정하는 단계;
(c) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서의 WRS 또는 이의 단편과 MD2 - TLR4 복합체간 결합 수준을 비교하는 단계; 및
(d) WRS 또는 이의 단편과 MD2 - TLR4 복합체간 결합 수준을 감소시키는 시험 제제를 선별하는 단계.
상기 염증성 질환의 예방 또는 치료제 스크리닝 방법을 실시하기 위한 WRS 또는 이의 단편, MD2, TLR4의 정의 및 적용의 범위, 그리고 단백질의 결합 수준을 측정하기 위한 구체적인 방법에 대해서는 앞서 면역증강제 또는 항암제 스크리닝 방법에서 설명한 바와 같다.
상기 방법에 따라 WRS 또는 그 단편과 MD2 또는 TLR4-MD2 복합체 간의 결합을 감소시키는 것으로 선별된 시험 제제는 실질적으로 TLR4의 활성을 억제하는지 여부를 아래와 같은 단계를 거쳐 확인할 수 있다. TLR4의 활성을 측정하기 위한 구체적인 방법은 앞서 서술한 바와 같다.
(1) 상기 (d) 단계에서 선별된 시험 제제를 MD2 와 TLR4 를 발현하는 세포와 접촉시키는 단계;
(2) 시험 제제의 존재 또는 부존재하에서 TLR4 의 활성을 측정하는 단계; 및
(3) TLR4 의 활성을 감소시키는 시험 제제를 선별하는 단계.
본 발명의 방법에 따라 WRS 또는 그 단편과 MD2 또는 TLR4-MD2 복합체 간의 결합을 감소시키는 것으로 선별된 시험 제제는 WRS가 MD2 또는 TLR4-MD2 복합체에 결합하는 것을 억제하거나, 결합력을 약화시켜 TLR4 신호전달계가 활성화되어 있는 시간을 단축시키는 등의 방식으로 TLR4에 의해 매개되는 면역 반응을 억제하는 작용을 할 수 있다. 즉 상기 시험 제제는 TLR4 등 TLR의 활성화를 억제함으로써 정상적으로 조절되지 않는 과도한 염증이 일어나 조직과 세포를 파괴하는 염증성 질환의 예방 또는 치료제로 개발될 수 있는 것이다.
상기 염증성 질환은 구체적으로는 천식, 습진, 건선, 알러지, 류마티스 관절염, 건선 관절염(psoriatic arthritis), 접촉성 피부염(contact dermatitis), 아토피성 피부염, 여드름, 아토피성 비염, 알레르기성 피부염, 만성 부비동염, 지루성 피부염(seborrheic dermatitis), 위염, 통풍, 통풍 관절염, 궤양, 만성 기관지염, 폐염증, 크론병, 궤양성 대장염, 강직성 척추염(ankylosing spondylitis), 패혈증, 맥관염, 활액낭염, 루프스, 류마티스 다발성 근육통, 측두 동맥염, 다발성 경화증, 신경퇴화, 호중성 폐포염(neutrophilic alveolitis), 알쯔하이머병, 동맥경화증, 비만, 염증성 장질환(inflammatory bowel disease), 우상표피이형성(Epidermodysplasia verruciformis), 포진상뇌염 (Herpes simplex encephalitis), 만성 점막피부 칸디다증 (Chronic mucocutaneous candidiasis), 트리파소노마증(Trypanosomiasis), 바이러스 감염 및 무사마귀로 이루어진 군에서 선택된 것일 수 있다.
따라서 본 발명은 WRS 또는 이의 단편과 MD2 또는 MD2-TLR4 복합체의 결합력을 증가시키는 시험 제제를 면역증강제 또는 항암제로 선별하는 스크리닝 방법과, 상기 결합력을 감소시키는 시험 제제를 염증성 질환의 예방 또는 치료제로 선별하는 스크리닝 방법을 제공한다. 본 발명자들은 WRS가 TLR4-MD2 복합체에 직접 결합하여 TLR 신호전달계를 활성화하고 면역 반응을 유도하는 것을 발견하였으며, WRS VSE domain을 포함하는 N-말단 부분과 MD2의 상호작용이 WRS와 MD2-TLR4 복합체 형성과 활성화에 중요함을 밝혔다. WRS와 MD2-TLR4 결합 수준을 변경시켜 결과적으로 TLR4에 의한 면역 반응을 조절할 수 있는 시험 제제를 선별하여, 면역증강제, 항암제, 염증성 질환 치료제 등으로 개발할 수 있다.
도 1은 전체 길이의 WRS(FL-WRS) 또는 mini-WRS에 의한 NF-kB 신호전달계 활성화를 보여주는 J774A.1 대식세포를 이용한 면역 블롯 실험 결과를 나타낸다.

도 2는 WRS의 선천면역 활성화에서 TLR4와 MD2의 역할을 확인하기 위한 사이토카인 분비와 호중구 침윤 분석 결과를 나타낸다.
도 2A와 도 2B는 FL-WRS(마우스당 20μg)를 각각 TLR4 KO 마우스와 MD2 KO 마우스의 복강에 주입하고 4시간 뒤 수득한 복강삼출액에서 측정한 MIP-1α 수준(왼쪽 패널)과 복강 내 침윤한 호중구(Ly6G+ Neutrophil)의 수를 나타낸다. 도 2C와 도 2D는 각각 TLR4 KO 마우스와 MD2 KO 마우스에서 유래한 BMDM이 FL-WRS(100nM, 18시간) 자극에 반응하여 분비하는 MIP-1α(왼쪽 패널)와 TNF-α(오른쪽 패널)의 수준을 나타내는 ELISA 결과를 나타낸다. 데이터는 평균±표준편차(mean±SD)으로 표시하였고, 일원성 분산 분석(one way ANOVA) 결과의 통계적 유의성은 p<0.001를 ***으로 표시하였다.

도 3은 WRS의 선천면역 활성 부위를 확인하기 위한 도메인 맵핑(domain mapping) 실험 결과를 나타낸다.
도 3A는 FL-WRS, mini-WRS, N154 단편을 나타내는 모식도이다. 도 3B는 FL-WRS, WRS의 N-말단 단편(N47, N65, N115, N125, N135, N145, N154) 또는 mini-WRS(각 100nM)로 자극한 BMDM에서 분비되는 TNF-α와 MIP-1α의 수준을 측정한 ELISA 결과를 나타낸다. 데이터는 평균±표준편차(mean±SD)으로 표시하였고, 일원성 분산 분석(one way ANOVA) 결과의 통계적 유의성은 p<0.001를 ***으로 표시하였다.

도 4는 WRS의 N154 단편의 선천면역 활성화 효과를 확인하는 실험 결과를 나탄낸다.
도 4A는 N154 단편으로 자극한 BMDM에서 NF-kB 신호전달계가 활성화되는 경향을 나타내는 면역 블롯 실험 결과를 나타낸다. 도 4B는 TLR4 또는 MD2에 대한 siRNA로 형질전환된 BMDM이 N154 단편의 자극에 반응하여 분비하는 TNF-α와 MIP-1α의 수준을 측정한 ELISA 결과를 나타낸다. 데이터는 평균±표준편차(mean±SD)으로 표시하였고, 일원성 분산 분석(one way ANOVA) 결과의 통계적 유의성을 p<0.05는 *로, p<0.01는 **로, p<0.001는 ***으로 표시하였다.

도 5는 WRS가 TLR4와 MD2와 결합하여 복합체를 형성하는 기작을 확인하기 위한 GST pull-down 실험 결과를 나타낸다.
도 5A는 GST/FL-WRS 또는 GST/mini-WRS와 TLR4와 MD2의 공동면역침전을 확인하는 실험 결과를 나타낸다. 도 5B는 GST/FL-WRS 또는 GST/mini-WRS와 MD2의 공동면역침전을 확인하는 실험 결과를 나타낸다. 도 5C는 GST/FL-WRS 또는 GST/mini-WRS와 TLR4의 공동면역침전을 확인하는 실험 결과를 나타낸다.

도 6은 WRS가 TLR4와 MD2와 결합하여 복합체를 형성하는 기작을 확인하기 위한 SPR 실험 결과를 나타낸다.
도 6A와 도 6B는 WRS와 MD2의 결합을 확인하기 위한 SPR 센서그램(sensogram)을 나타낸다. FL-WRS(도 6A) 또는 mini-WRS(도 6B)를 부착시킨 고정상(chip) 표면에, MD2를 다른 농도(0.37, 0.75, 1.5, 3μM)로 흘려보내고 SPR 신호를 측정하였다. 도 6C와 도 6D는 TLR4와 WRS의 결합을 확인하기 위한 SPR 센서그램을 나타낸다. TLR4를 부착시킨 고정상 표면에 FL-WRS(도 6C) 또는 mini-WRS(도 6D)를 다른 농도(0.37, 0.75, 1.5, 3μM)로 흘려보내고 SPR 신호를 측정하였다. 도 6E와 도 6F는 각각 WRS VSE domain(N47)과 MD2 또는 TLR4의 결합을 확인하기 위한 SPR 센서그램을 나타낸다. MD2 또는 TLR4를 부착시킨 고정상 표면에 VSE domain을 다른 농도(0.37, 0.75, 1.5, 3μM)로 흘려보내고 SPR 신호를 측정하였다. 센서그램 y축의 RU는 반응 단위(response unit)을 의미한다.

도 7은 WRS의 N-말단 단편과 MD2 또는 TLR4의 결합하는 기작을 확인하기 위한 SPR 실험 결과를 나타낸다.
도 7A 내지 도 7C는 WRS N-말단 단편과 MD2의 결합을 측정하기 위한 SPR 센서그램을 나타낸 것으로, MD2를 부착시킨 고정상(chip) 표면에 WRS N-말단 단편을 흘려보내고 측정한 결과이다. 도 7A는 1.5μM 농도의 N47과 N65 단편, 도 7B는 1.5μM 농도의 N115, N125, N135, N145, N154 단편의 결과이며, 도 7C는 각각의 단편을 다른 농도(0.37, 0.75, 1.5, 3μM)로 하여 MD2와의 결합을 측정한 결과이다. 도 7D 내지 도 7F는 WRS N-말단 단편과 TLR4의 결합을 측정하기 위한 SPR 센서그램을 나타낸 것으로, TLR4를 부착시킨 고정상(chip) 표면에 WRS N-말단 단편을 흘려보내고 측정한 결과이다. 도 7D는 1.5μM 농도의 N47과 N65 단편, 도 7E는 1.5μM 농도의 N115, N125, N135, N145, N154 단편의 결과이며, 도 7F는 각각의 단편을 다른 농도(0.37, 0.75, 1.5, 3μM)로 하여 MD2와의 결합을 측정한 결과이다.

도 8은 WRS가 TLR4와 MD2와 결합하여 복합체를 형성하는 기작을 확인하기 위한 1H-15N HSQC NMR 실험 결과를 나타낸다.
도 8A는 15N으로 표지된 WRS VSE domain이 MD2 단백질에 의하여 화학적 이동하는 양상을 나타낸 HSQC NMR 결과를 나타낸다. 도 8B와 도 8C는 도 8A의 NMR 신호를 확대한 도면이다. CSP는 화학적 이동의 교란(chemical shift perturbation)의 정도를 표시한 것이다. 검정색 신호는 MD2 부존재, 적색 신호는 MD2 존재 하에서의 신호를 표시한다.

도 9는 WRS가 TLR4/MD2 헤테로다이머와 결합하여 TLR4/MD2의 이합체화(dimerization)와 활성화를 유도하는 기작에 대한 모델을 나타내는 모식도이다.
이하 본 발명을 상세히 설명한다.
단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.
< 실험방법 >
재조합 단백질 제작과 분리
인간의 full-length WRS와 다양한 WRS의 단편들은 단백질의 N-말단에 His×6 tag이 융합되도록 하는 pET28a 벡터를 이용하여 E. coli rosetta2(DE3)를 이용하여 과발현하였다. 배양 상층액에 존재하는 재조합 단백질을 HiTrap Chelating HP column(GE Healthcare)과 HiLoad 16/600 Superdex 200 prep grade column(GE Healthcare) size-exclusion chromatography를 이용하여 분리하였다. 분리된 재조합 단백질은 Acrodisc unit with Mustang E membrane(Pall Gelman Laboratory)를 이용하여 여과하였다.
NF - kB 신호체계의 활성화 확인
대식세포 세포주인 J774A.1세포는 2×104cells/well의 밀도로 12웰 플레이트에서 하룻밤 동안 배양하였다. 무혈청 배지(serum free medium) 또는 FL-WRS 또는 mini-WRS로 30분 동안 자극하고, NF-kB 신호전달계 단백질인 NF-kB p65, YY-1, IκB-α, 인산화된 IkB-α(p-IkB-α), ERK, 인산화된 ERK(p-ERK), 그리고 β-actin단백질을 면역 블랏으로 감지하였다. 실험에 사용한 항체는 Cell Signaling Technology, Inc에서 구입하였다.
siRNA 를 이용한 골수유래 대식세포 형질전환
실험에 사용한 siRNA는 Thermo scientific에서 구입하였다(마우스 si-TLR4, MSS211922; 마우스 si-MD2, MSS275499). Stealth universal RNAi(Invitrogen)를 음성대조군(si-Con)으로 이용하였다. 골수유래 대식세포(bone marrow-derived macrophage, BMDM)는 마우스에서 분리한 골수(marrow)에 M-CSF(20ng/mL)를 첨가하여 6-7일간 배양하여 유도하였다. 골수유래 대식세포는 2×104cells/well의 밀도로 하룻밤 동안 48웰 플레이트에서 배양하고, siRNA는 X-tremeGENE siRNA transfection Reagent(Roche Diagnostics)를 이용하여 48시간 동안 BMDM에 형질전환하였다. siRNA에 의하여 해당 유전자의 발현이 억제되었는지 확인하고, FL-WRS(100nM)로 18시간 동안 처리하였다.
넉아웃 마우스 모델
C57BL/6 배경의 MD2-/- 마우스(Nagai et al., 2002)는 RIKEN BioResource Center(Japan)에서 구입하였다. 오사카 대학의 S. Akira의 TLR4-/- 마우스(Hoshino et al., 1999; Takeuchi et al.,2000)는 한국생명공학연구원 이철호 박사로부터 제공되었다.
사이토카인 농도 측정
TNF-α와 MIP-1α의 농도는 BD Sciences와 R&D systems에서 엘라이자 키트(ELISA kit)를 구입하여 생산자 매뉴얼대로 측정하였다.
유세포분석을 이용한 복강 내 호중구 침윤 분석
쥐의 복강에 WRS를 주사하고(마우스당 20μg), 4시간 뒤 쥐를 이산화탄소로 질식사시킨 후 5mM EDTA를 포함하는 PBS를 복강에 주입하고 복강삼출액을 수득하였다. 삼출액에 존재하는 복막분비세포(peritoneal exudate cells)의 수를 측정하고, Ly6C 항체와 Ly6G 항체와 반응시켜 FACS로 분석하였다. 세포를 분리한 복강삼출액은 TNF-α 농도 분석을 위해 -80℃에서 보관하였다.
GST pull - down 실험
GST, GST-MD2, GST-FL-WRS, GST-mini-WRS는 E. coli BL21(DE3)에서 발현시키고 초음파(sonication)로 세포를 용해하여 수득하였다. 세포 추출물(cell extract)은 독소(endotoxin)을 제거한 뒤 glutathione sepharose 4B bead(Amersham)를 첨가하고 4℃에서 4시간 동안 반응시켰다. 재조합 TLR4와 MD2 단백질(R&D systems)은 2-4시간 동안 반응시키고, PBS로 세 번 세척한 뒤 SDS 샘플 버퍼를 첨가하여 5분간 가열하고 SDS-PAGE로 전기영동하고 웨스턴 블랏으로 분석하였다.
표면 플라즈몬 공명( SPR ) 실험
FL-WRS와 MD2의 결합친화력을 표면 플라즈몬 공명(surface plasmon resonance, SPR)을 이용하여 측정하였다(Bioacore 3000 System, GE Healthcare). CM5 칩(chip) 표면에는 50-200RU 범위의 단백질을 부착하였다. 단계 희석(serial dilution)한 분석물질은 흐름-셀(flow-cell)에 30μl/min의 속도로 120~240초 동안 주입하고, 10-20분 동안의 해리 단계(dissociation phage)가 이어졌다. KD는 측정된 결과를 Biacore Evaluation 소프트웨어를 이용하여 1:1 Langmuir binding model에 적합화하여 결정하였다.
핵자기공명( NMR ) 실험
15N WRS VSE domain 단편은 50mM potassium phosphate(pH 7.0), 50mM NaCl, 10mM CHAPS를 포함하는 25℃의 수용액에 용해하였다. WRS VSE 1H-15N HSQC spectrum은 MD2 단백질의 존재 또는 부존재하에서 측정하여 비교하였다. 데이터는 NMRpipe와 NMRViewJ 프로그램으로 분석하였다. NMR 신호는 triple resonce probe가 장착된 Avance 600MHz NMR spetrometer(Bruker)를 이용하여 측정하였다.
< 실시예 1>
WRS 에 의한 선천면역 활성화
<1-1> WRS 에 의한 NF - kB 신호전달계와 패턴인식수용체의 활성화
WRS가 면역세포에서 NF-kB 신호를 활성화시킬 수 있는지 알아보고, WRS의 면역 활성에 관련된 패턴인식수용체(PRR)를 조사하였다.
대식세포(macrophage) 세포주인 J774A.1 세포를 full length WRS(FL-WRS) 또는 WRS의 N-말단의 47개의 아미노산이 제거된 미니 WRS(mini-WRS)로 자극하고, NF-kB 신호전달계의 활성화로 인한 관련 단백질의 인산화 경향을 웨스턴 블랏을 이용하여 확인하였다(도 1). FL-WRS를 처리한 대식세포에서는 세포핵 내 NF-kb p65와 세포질 내 인산화된 IkB-α(p-IkB-α)의 수준이 농도의존적으로 크게 증가하였으며, 더불어 인산화된 ERK(p-ERK)의 수준도 함께 증가하였다. 이와 대조적으로 mini-WRS를 처리한 대식세포에서는 NF-kB 신호 관련 단백질의 인산화가 일어나지 않았다.
FL-WRS가 NF-kB 신호전달계를 활성화시키는 데 중요하게 관여하는 패턴인식수용체(PRR)를 조사하였다. PRR의 활성화에 따른 NF-kB의 전사 활성을 관찰할 수 있는 NF-kB-SEAP 리포터 시스템과 어느 한 종류의 특정 PRR(TLR, NOD2, Dectin-1a 등)을 발현하는 HEK293 세포를 FL-WRS(100nM)로 16~20시간 동안 자극하고, SEAP 활성을 측정하였다(데이터 미도시). TLR4는 MD2 단백질과 함께 발현하였다. 분석 대상인 PRR 중 TLR4를 발현하는 세포에서 FL-WRS 자극에 의해 SEAP 활성이 크게 증가하여 TLR4가 FL-WRS에 의한 NF-kB 신호전달계의 활성화를 매개하는 PRR임을 확인하였다. siRNA를 이용하여 TLR4 또는 MD2의 발현을 억제한 골수유래 대식세포(bone marrow-derived macrophage, BMDM)에서는 FL-WRS(30nM, 18시간) 자극으로 분비되는 MIP-1α 및 TNF-α의 수준이 현저하게 감소하여, TLR4가 WRS의 면역 활성에 중요하게 관여함을 확인하였다(데이터 미도시). .
<1-2> WRS 의 선천면역 활성화를 매개하는 TLR4
WRS의 면역 활성화에서의 TLR4의 역할을 마우스 모델을 이용하여 더욱 확인하였다.
TLR4 또는 MD2를 발현하지 않는 낙아웃(KO) 마우스 또는 각각의 마우스에서 유래한 BMDM이 FL-WRS에 반응하는 양상을 알아보았다(도 2). TLR4 KO(도 2C) 또는 MD2 KO(도 2D) 마우스에서 유래한 BMDM은 모두 FL-WRS(100nM, 18시간 동안 자극)에 반응하여 분비하는 MIP-1α, TNF-α의 양이 야생형(WT) 마우스에서 유래한 BMDM과 비교하여 현저하게 감소하였다. 또한 각각의 낙아웃 마우스에 FL-WRS(마우스 당 20ug)를 복강내 주입하고 4시간 뒤에 수득한 복강삼출액에서도 MIP-1α의 수준이 현저하게 감소하였으며, 복강으로 침윤한 호중구(Ly6G+ Neutrophil)의 수도 크게 낮아진 것을 확인하였다(도 2A와 도 2B).
이상의 실험 결과는 WRS가 대식세포 등의 면역세포에서 NF-kB 신호전달계에 작용하여 사이토카인 분비, 호중구 침윤 등 선천면역 반응을 활성화시키며, WRS에 의한 선천면역 활성화는 TLR4과 MD2에 의한 신호 전달을 통해 일어나는 것을 보여준다.
< 실시예 2>
WRS 에 의한 TLR4 활성화 기작
<2-1> WRS 의 면역 활성 도메인의 확인
선천면역 반응 조절에 중요한 WRS의 활성 도메인을 알아보기 위하여 WRS의 단편을 제작하고, WRS의 단편이 대식세포의 NF-kB 신호전달계와 사이토카인 분비에 미치는 영향을 알아보았다.
다양한 길이의 WRS의 N-말단 단편(도 3A, N47, N65, N115, N125, N135, N145, N154; 각 단편은 WRS의 첫 번째 아미노산부터 단편의 숫자가 나타내는 아미노산까지의 서열을 갖는 단편을 나타냄. 예를 들어 N47은 WRS의 1부터 47번째 아미노산의 단편을 의미함)을 제작하고, 각각의 단편(100nM)이 BMDM에서 MIP-1α과 TNF-α의 분비를 유도할 수 있는지 확인하였다(도 3B). FL-WRS로 자극한 BMDM에서는 MIP-1α과 TNF-α가 높은 수준으로 분비되었으나, mini-WRS는 아무런 효과가 없었다. WRS의 N-말단 단편 중에서는 N145 단편과 N154 단편에 의하여 BMDM에서 사이토카인이 분비되었으며, 특히 N154 단편이 FL-WRS와 거의 같은 수준의 효과를 갖는 것으로 관찰되었다.
WRS의 N154 단편이 BMDM의 활성화에 미치는 영향을 더욱 확인하였다(도 4). N154 단편은 농도의존적으로 세포핵 내 NF-kb p65와 세포질 내 p-IkB-α와 p-ERK의 수준을 증가시켰으며(도 4A), siRNA를 이용하여 TLR4 또는 MD2의 발현을 억제하면 N154 단편의 효과가 크게 감소하였다(도 4B). 즉, N154 단편은 FL-WRS와 마찬가지로 TLR4를 통하여 대식세포에서 NF-kB 신호전달계를 활성화시키고, 사이토카인 분비를 유발하는 WRS의 면역 활성 도메인이라는 것을 알 수 있었다.
<2-2> WRS 와 TLR4 결합의 특징
WRS가 TLR4를 활성화하는 기작을 이해하기 위하여 WRS가 TLR4와 직접 결합하는 리간드 또는 작용제(agonist)로 작용하는지 알아보고, WRS가 TLR4, MD2와 결합하는 양상을 조사하였다.
WRS와 TLR4 그리고 MD2의 직접 결합 여부는 먼저 GST pull-down 실험을 통하여 확인하였다(도 5). GST와 융합된 FL-WRS(GST/FL-WRS) 또는 mini-WRS(GST/mini-WRS)를 TLR4, MD2 단백질과 함께 pull-down한 결과, FL-WRS는 MD2, TLR4와 모두 결합하였다. mini-WRS도 MD2, TLR4와 결합하였으나, FL-WRS와 비교하여 공동 면역침강 수준은 낮은 것으로 나타났다(도 5A). 한편, FL-WRS가 MD2(도 5B) 또는 TLR4(도 5C)와 각각 직접 결합할 수 있는지 확인한 결과, FL-WRS는 MD2와 공동 면역침강하였으나, TLR4와는 공동 면역침강하지 않았다. 이는 FL-WRS와 MD2는 직접 결합하지만, FL-WRS와 TLR4는 MD2 없이는 직접 결합하지 않으며, 따라서 FL-WRS가 TLR4과 결합하여 복합체를 형성하기 위해서는 FL-WRS와 MD2의 결합이 선행되어야 함을 보여주는 것이다. mini-WRS는 FL-WRS와 비교하여 그 수준은 감소하였으나, MD2와는 직접 결합하고, TLR4와는 결합하지 않는 결과를 보여주었다.
WRS와 TLR4, MD2 간의 결합의 특징을 표면 플라스몬 공명(surface plasmon resonance, SPR)을 이용하여 자세히 알아보았다(도 6). SPR 분석 결과, FL-WRS는 MD2와 결합하며(도 6A; KD=72nM), TLR4와는 전혀 결합하지 않았으며(도 6C), mini-WRS도 MD2와 결합하고(도 6B), TLR4와는 결합하지 않는 것으로 관찰되었다(도 6D).
FL-WRS보다 TLR4, MD2와의 결합력이 떨어지며, 면역 활성 효과도 없는 mini-WRS는 FL-WRS에서 vertebrate specific extension(VSE)라고 불리는 N-말단의 1 내지 47번째 아미노산을 포함하고 있지 않다. 이에 WRS의 VSE domain이 TLR4과 MD2와의 결합에 중요한지 확인하기 위하여 VSE domain의 단편(N47)이 TLR4 또는 MD2와 결합하는지 알아보았다. VSE domain(N47)은 MD2와 결합하였으며(도 6E), FL-WRS와는 달리 TLR4와도 결합하는 것으로 나타났다(도 6F).
WRS가 TLR4와 MD2와 결합하는 구조적인 특징을 자세히 분석하기 위하여, 다양한 N-말단 단편을 제작하고, MD2 또는 TLR4와의 상호작용 여부를 SPR로 확인하였다(도 7). WRS N-말단 단편들의 TLR4 또는 MD2와의 상호작용/결합 여부를 앞선 실시예에서 확인한 면역 활성과 함께 표 1에 요약하였다. WRS의 VSE domain(N47) 뿐 아니라, VSE domain을 포함하는 N-말단의 1 내지 65번째 아미노산의 단편(N65) 또한 MD2와 TLR4 두 단백질과 모두 강하게 결합하여, WRS의 VSE domain 외에, WRS의 48 내지 65번째 아미노산에도 MD2에 결합하는 부위가 있음을 시사하였다. 이는 mini-WRS이 VSE domain 없이도 MD2와 여전히 결합하는 것을 설명하는 것이기도 하다. mini-WRS는 MD2와 결합하더라도 면역 활성은 없으므로, VSE domain은 MD2-TLR4를 활성화하는데 중요한 부분일 것으로 판단된다. N65 보다 길이가 긴 N-말단 단편들은 MD2나 TLR4와의 결합이 감소하는 경향을 보여, WRS의 65번째 아미노산 이후의 잔기들은 MD2와 TLR4와의 결합에 중요한 부분을 가리고 있을 가능성을 시사하였다. 또한 WRS의 1 내지 135번째 아미노산의 단편(N135)은 TLR4와 결합하지 않았으나 1 내지 145번째 아미노산의 단편(N145)과 1 내지 154번째 아미노산의 단편(N154)은 TLR4과 결합하여, WRS가 136 내지 154번째 아미노산을 통해 TLR4와 결합할 가능성이 있음을 제시하였다. 앞선 실시예에서 확인한 바와 같이, N154 단편이 WRS의 면역 활성에 중요함을 고려할 때, 상기 WRS의 136 내지 154번째 아미노산은 VSE domain과 더불어 WRS의 면역 활성화 작용에 중요할 것으로 판단된다.
Figure 112015117647534-pat00001
WRS가 TLR4과 MD2와 결합하여 복합체를 형성하는데 있어 VSE domain의 역할을 자세히 알아보기 위하여 VSE domain의 단편을 15N 동위원소로 표지하고, MD2 단백질의 존재 또는 부존재하에서 1H-15N HSQC NMR을 실시하였다(도 8). MD2 단백질 첨가에 의해 WRS VSE domain의 다수의 NMR 신호에서 화학적 이동(chemical shift)이 일어났으며(도 8의 적색 신호), 최소한 10개 이상의 VSE domain의 아미노산이 MD2와의 결합에 참여하는 것으로 분석되었다.
<2-3> WRS 와 TLR4 의 결합 모델링
앞선 실시예에서 확인한 WRS와 TLR4, MD2의 결합의 특징을 바탕으로 WRS가 이들 단백질과 결합하고 TLR를 활성화하는 기작을 모델링하였다.
VSE domain의 2차 구조는 VSE domain이 MD2에 결합한 상태에서 circular dichroism을 이용하여 분석하였다(데이터 미도시). 단백질-단백질 결합 실험 결과를 모두 고려하여 WRS의 호모다이머(homodimer)가 두 분자의 TLR4-MD2 헤테로다이머(heterodimer)를 연결하여 편자 모양의 구조(horseshoe-like structure)를 형성하고, TLR4-MD2의 이합체화(dimerization)를 유도하는 모델을 도출하였다(도 9). 본 모델에 따르면, full length WRS는 VSE domain을 포함하는 N-말단 부분에서 TLR4/MD2 헤테로다이머의 MD2와 결합하며, WRS의 136 내지 154번째 아미노산을 통해 다른 TLR4/MD2 헤테로다이머의 TLR4와 결합하여 두 개의 TLR4/MD2 헤테로다이머를 연결한다. WRS는 MD2 부존재하에서는 TLR4와 결합하지 않으므로(실시예 <2-2> 참고), FL-WRS가 먼저 MD2와 결합하여 WRS에 구조적인 변화(conformational change)가 일어난 후, VSE domain을 포함하는 WRS의 N-말단 부분(예컨대 WRS의 1 내지 65번째 아미노산)과 136 내지 154번째 아미노산 등 TLR4의 결합 부위가 노출되어 WRS가 TLR4와 결합하고, TLR4/MD2의 이합체화와 신호 활성하게 될 것으로 판단된다. WRS의 N47 단편의 경우에는 MD2와 결합할 수는 있지만, TLR4와 결합할 수 있는 136 내지 154 번째 아미노산이 없기 때문에 MD2-TLR4의 이합체화를 유도하지 못하고 면역 활성도 갖지 못하는 것으로 설명된다. 이와 반대로 mini-WRS의 경우에는 N-말단의 48 내지 65번째 아미노산과 136 내지 154번째 아미노산을 통해 각각 MD2와 TLR4와 결합할 수 있지만, VSE domain이 없기 때문에 MD2-TLR4의 이합체화와 면역 활성을 유도할 정도로 MD2와의 결합력이 강하지 않을 것으로 예상된다.
이상 살펴본 바와 같이, 본 발명의 방법에 따라 WRS 또는 이의 단편과 MD2 또는 MD2-TLR4 복합체의 결합력을 증가시키는 시험 제제를 의약 후보 물질로 선별하여 전혀 새로운 기작의 면역증강제 또는 항암제를 개발하는데 유용하게 이용할 수 있다. 또한 상기 결합력을 감소시키는 것으로 선별된 시험 제제는 염증성 질환의 예방 또는 치료제로 개발하는데 유용하게 이용할 수 있다.
<110> Medicinal Bioconvergence Research Center <120> Methods for screening anti-inflammatory agents or immune-stimulating agents or anti-cancer agents using interactions between WRS and MD2 <130> NP14-0072 <160> 6 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 130 <212> PRT <213> Homo sapiens MD2 protein (NP_001182726.1) <400> 1 Met Leu Pro Phe Leu Phe Phe Ser Thr Leu Phe Ser Ser Ile Phe Thr 1 5 10 15 Glu Ala Gln Lys Gln Tyr Trp Val Cys Asn Ser Ser Asp Ala Ser Ile 20 25 30 Ser Tyr Thr Tyr Cys Gly Arg Asp Leu Lys Gln Leu Tyr Phe Asn Leu 35 40 45 Tyr Ile Thr Val Asn Thr Met Asn Leu Pro Lys Arg Lys Glu Val Ile 50 55 60 Cys Arg Gly Ser Asp Asp Asp Tyr Ser Phe Cys Arg Ala Leu Lys Gly 65 70 75 80 Glu Thr Val Asn Thr Thr Ile Ser Phe Ser Phe Lys Gly Ile Lys Phe 85 90 95 Ser Lys Gly Lys Tyr Lys Cys Val Val Glu Ala Ile Ser Gly Ser Pro 100 105 110 Glu Glu Met Leu Phe Cys Leu Glu Phe Val Ile Leu His Gln Pro Asn 115 120 125 Ser Asn 130 <210> 2 <211> 390 <212> DNA <213> Homo sapiens MD2 mRNA (NM_001195797.1) <400> 2 atgttaccat ttctgttttt ttccaccctg ttttcttcca tatttactga agctcagaag 60 cagtattggg tctgcaactc atccgatgca agtatttcat acacctactg tgggagagat 120 ttaaagcaat tatatttcaa tctctatata actgtcaaca ccatgaatct tccaaagcgc 180 aaagaagtta tttgccgagg atctgatgac gattactctt tttgcagagc tctgaaggga 240 gagactgtga atacaacaat atcattctcc ttcaagggaa taaaattttc taagggaaaa 300 tacaaatgtg ttgttgaagc tatttctggg agcccagaag aaatgctctt ttgcttggag 360 tttgtcatcc tacaccaacc taattcaaat 390 <210> 3 <211> 839 <212> PRT <213> Homo sapiens TLR4 protein (O00206.2) <400> 3 Met Met Ser Ala Ser Arg Leu Ala Gly Thr Leu Ile Pro Ala Met Ala 1 5 10 15 Phe Leu Ser Cys Val Arg Pro Glu Ser Trp Glu Pro Cys Val Glu Val 20 25 30 Val Pro Asn Ile Thr Tyr Gln Cys Met Glu Leu Asn Phe Tyr Lys Ile 35 40 45 Pro Asp Asn Leu Pro Phe Ser Thr Lys Asn Leu Asp Leu Ser Phe Asn 50 55 60 Pro Leu Arg His Leu Gly Ser Tyr Ser Phe Phe Ser Phe Pro Glu Leu 65 70 75 80 Gln Val Leu Asp Leu Ser Arg Cys Glu Ile Gln Thr Ile Glu Asp Gly 85 90 95 Ala Tyr Gln Ser 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Ser Leu Ser Ser Leu Gln Val Leu Asn Met Ser 515 520 525 His Asn Asn Phe Phe Ser Leu Asp Thr Phe Pro Tyr Lys Cys Leu Asn 530 535 540 Ser Leu Gln Val Leu Asp Tyr Ser Leu Asn His Ile Met Thr Ser Lys 545 550 555 560 Lys Gln Glu Leu Gln His Phe Pro Ser Ser Leu Ala Phe Leu Asn Leu 565 570 575 Thr Gln Asn Asp Phe Ala Cys Thr Cys Glu His Gln Ser Phe Leu Gln 580 585 590 Trp Ile Lys Asp Gln Arg Gln Leu Leu Val Glu Val Glu Arg Met Glu 595 600 605 Cys Ala Thr Pro Ser Asp Lys Gln Gly Met Pro Val Leu Ser Leu Asn 610 615 620 Ile Thr Cys Gln Met Asn Lys Thr Ile Ile Gly Val Ser Val Leu Ser 625 630 635 640 Val Leu Val Val Ser Val Val Ala Val Leu Val Tyr Lys Phe Tyr Phe 645 650 655 His Leu Met Leu Leu Ala Gly Cys Ile Lys Tyr Gly Arg Gly Glu Asn 660 665 670 Ile Tyr Asp Ala Phe Val Ile Tyr Ser Ser Gln Asp Glu Asp Trp Val 675 680 685 Arg Asn Glu Leu Val Lys Asn Leu Glu Glu Gly Val Pro Pro Phe Gln 690 695 700 Leu Cys Leu His Tyr Arg Asp Phe Ile Pro Gly Val Ala Ile Ala Ala 705 710 715 720 Asn Ile Ile His Glu 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aatattgaca ggaaacccca tccagagttt agccctggga 360 gccttttctg gactatcaag tttacagaag ctggtggctg tggagacaaa tctagcatct 420 ctagagaact tccccattgg acatctcaaa actttgaaag aacttaatgt ggctcacaat 480 cttatccaat ctttcaaatt acctgagtat ttttctaatc tgaccaatct agagcacttg 540 gacctttcca gcaacaagat tcaaagtatt tattgcacag acttgcgggt tctacatcaa 600 atgcccctac tcaatctctc tttagacctg tccctgaacc ctatgaactt tatccaacca 660 ggtgcattta aagaaattag gcttcataag ctgactttaa gaaataattt tgatagttta 720 aatgtaatga aaacttgtat tcaaggtctg gctggtttag aagtccatcg tttggttctg 780 ggagaattta gaaatgaagg aaacttggaa aagtttgaca aatctgctct agagggcctg 840 tgcaatttga ccattgaaga attccgatta gcatacttag actactacct cgatgatatt 900 attgacttat ttaattgttt gacaaatgtt tcttcatttt ccctggtgag tgtgactatt 960 gaaagggtaa aagacttttc ttataatttc ggatggcaac atttagaatt agttaactgt 1020 aaatttggac agtttcccac attgaaactc aaatctctca aaaggcttac tttcacttcc 1080 aacaaaggtg ggaatgcttt ttcagaagtt gatctaccaa gccttgagtt tctagatctc 1140 agtagaaatg gcttgagttt caaaggttgc tgttctcaaa gtgattttgg gacaaccagc 1200 ctaaagtatt tagatctgag cttcaatggt gttattacca tgagttcaaa cttcttgggc 1260 ttagaacaac tagaacatct ggatttccag cattccaatt tgaaacaaat gagtgagttt 1320 tcagtattcc tatcactcag aaacctcatt taccttgaca tttctcatac tcacaccaga 1380 gttgctttca atggcatctt caatggcttg tccagtctcg aagtcttgaa aatggctggc 1440 aattctttcc aggaaaactt ccttccagat atcttcacag agctgagaaa cttgaccttc 1500 ctggacctct ctcagtgtca actggagcag ttgtctccaa cagcatttaa ctcactctcc 1560 agtcttcagg tactaaatat gagccacaac aacttctttt cattggatac gtttccttat 1620 aagtgtctga actccctcca ggttcttgat tacagtctca atcacataat gacttccaaa 1680 aaacaggaac tacagcattt tccaagtagt ctagctttct taaatcttac tcagaatgac 1740 tttgcttgta cttgtgaaca ccagagtttc ctgcaatgga tcaaggacca gaggcagctc 1800 ttggtggaag ttgaacgaat ggaatgtgca acaccttcag ataagcaggg catgcctgtg 1860 ctgagtttga atatcacctg tcagatgaat aagaccatca ttggtgtgtc ggtcctcagt 1920 gtgcttgtag tatctgttgt agcagttctg gtctataagt tctattttca cctgatgctt 1980 cttgctggct gcataaagta tggtagaggt 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Ile Gln Ala Ala Pro Ser 275 280 285 Phe Ser Asn Ser Phe Pro Gln Ile Phe Arg Asp Arg Thr Asp Ile Gln 290 295 300 Cys Leu Ile Pro Cys Ala Ile Asp Gln Asp Pro Tyr Phe Arg Met Thr 305 310 315 320 Arg Asp Val Ala Pro Arg Ile Gly Tyr Pro Lys Pro Ala Leu Leu His 325 330 335 Ser Thr Phe Phe Pro Ala Leu Gln Gly Ala Gln Thr Lys Met Ser Ala 340 345 350 Ser Asp Pro Asn Ser Ser Ile Phe Leu Thr Asp Thr Ala Lys Gln Ile 355 360 365 Lys Thr Lys Val Asn Lys His Ala Phe Ser Gly Gly Arg Asp Thr Ile 370 375 380 Glu Glu His Arg Gln Phe Gly Gly Asn Cys Asp Val Asp Val Ser Phe 385 390 395 400 Met Tyr Leu Thr Phe Phe Leu Glu Asp Asp Asp Lys Leu Glu Gln Ile 405 410 415 Arg Lys Asp Tyr Thr Ser Gly Ala Met Leu Thr Gly Glu Leu Lys Lys 420 425 430 Ala Leu Ile Glu Val Leu Gln Pro Leu Ile Ala Glu His Gln Ala Arg 435 440 445 Arg Lys Glu Val Thr Asp Glu Ile Val Lys Glu Phe Met Thr Pro Arg 450 455 460 Lys Leu Ser Phe Asp Phe Gln 465 470 <210> 6 <211> 1413 <212> DNA <213> Homo sapiens WRS mRNA (NM_004184.3) <400> 6 atgcccaaca gtgagcccgc atctctgctg gagctgttca acagcatcgc cacacaaggg 60 gagctcgtaa ggtccctcaa agcgggaaat gcgtcaaagg atgaaattga ttctgcagta 120 aagatgttgg tgtcattaaa aatgagctac aaagctgccg cgggggagga ttacaaggct 180 gactgtcctc cagggaaccc agcacctacc agtaatcatg gcccagatgc cacagaagct 240 gaagaggatt ttgtggaccc atggacagta cagacaagca gtgcaaaagg catagactac 300 gataagctca ttgttcggtt tggaagtagt aaaattgaca aagagctaat aaaccgaata 360 gagagagcca ccggccaaag accacaccac ttcctgcgca gaggcatctt cttctcacac 420 agagatatga atcaggttct tgatgcctat gaaaataaga agccatttta tctgtacacg 480 ggccggggcc cctcttctga agcaatgcat gtaggtcacc tcattccatt tattttcaca 540 aagtggctcc aggatgtatt taacgtgccc ttggtcatcc agatgacgga tgacgagaag 600 tatctgtgga aggacctgac cctggaccag gcctatagct atgctgtgga gaatgccaag 660 gacatcatcg cctgtggctt tgacatcaac aagactttca tattctctga cctggactac 720 atggggatga gctcaggttt ctacaaaaat gtggtgaaga ttcaaaagca tgttaccttc 780 aaccaagtga aaggcatttt cggcttcact gacagcgact gcattgggaa gatcagtttt 840 cctgccatcc aggctgctcc ctccttcagc aactcattcc cacagatctt ccgagacagg 900 acggatatcc agtgccttat cccatgtgcc attgaccagg atccttactt tagaatgaca 960 agggacgtcg cccccaggat cggctatcct aaaccagccc tgctgcactc caccttcttc 1020 ccagccctgc agggcgccca gaccaaaatg agtgccagcg accccaactc ctccatcttc 1080 ctcaccgaca cggccaagca gatcaaaacc aaggtcaata agcatgcgtt ttctggaggg 1140 agagacacca tcgaggagca caggcagttt gggggcaact gtgatgtgga cgtgtctttc 1200 atgtacctga ccttcttcct cgaggacgac gacaagctcg agcagatcag gaaggattac 1260 accagcggag ccatgctcac cggtgagctc aagaaggcac tcatagaggt tctgcagccc 1320 ttgatcgcag agcaccaggc ccggcgcaag gaggtcacgg atgagatagt gaaagagttc 1380 atgactcccc ggaagctgtc cttcgacttt cag 1413

Claims (13)

  1. WRS(tryptophanyl-tRNA synthetase) 또는 이의 단편을 포함하는 면역증강제로서, 상기 면역증강제는 선천면역 반응을 강화시키는 것을 특징으로 하는 면역증강제.
  2. WRS 또는 이의 단편을 포함하는 항암제로서, 상기 항암제는 선천면역 반응을 강화시키는 것을 특징으로 하는 항암제.
  3. 삭제
  4. 삭제
  5. 제2항에 있어서, 상기 암은 두경부암, 담도암, 직장암, 폐암, 위암, 간암, 췌장암, 피부암, 유방암, 난소암, 자궁경부암 및 전립선암으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상의 암인 것을 특징으로 하는 항암제.
  6. 삭제
  7. 삭제
  8. 삭제
  9. 삭제
  10. 제1항에 있어서, 상기 WRS는 서열번호 5로 표시되는 아미노산 서열을 포함하는 것을 특징으로 하는 면역증강제.
  11. 제1항에 있어서, 상기 WRS의 단편은 서열번호 5로 표시되는 아미노산 서열에서 1 내지 47번째 아미노산 서열을 포함하는 단편 또는 48 내지 65번째 아미노산 서열로 이루어진 단편인 것을 특징으로 하는 면역증강제.
  12. 제2항에 있어서, 상기 WRS는 서열번호 5로 표시되는 아미노산 서열을 포함하는 것을 특징으로 하는 항암제.
  13. 제2항에 있어서, 상기 WRS의 단편은 서열번호 5로 표시되는 아미노산 서열에서 1 내지 47번째 아미노산 서열을 포함하는 단편 또는 48 내지 65번째 아미노산 서열로 이루어진 단편인 것을 특징으로 하는 항암제.
KR1020150170202A 2015-12-01 2015-12-01 Wrs와 md2의 결합을 이용한 염증성 질환 치료제, 면역증강제 또는 항암제 스크리닝 방법 KR102417664B1 (ko)

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