KR102279779B1 - Specific primer set for detecting Alstroemeria mosaic virus and uses thereof - Google Patents

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이정화
이다솜
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Abstract

The present invention relates to a primer set for specific detection of Alstroemeria mosaic virus (AlMV) and uses thereof, and since five primer sets of the present invention can specifically detect the AlMV, it is considered that the introduction of the AlMV into Korea can be effectively prevented.

Description

알스트로에메리아 모자이크 바이러스를 특이적으로 검출하기 위한 프라이머 세트 및 이의 용도{Specific primer set for detecting Alstroemeria mosaic virus and uses thereof}A primer set for specifically detecting Alstroemeria mosaic virus and its use {Specific primer set for detecting Alstroemeria mosaic virus and uses thereof}

본 발명은 알스트로에메리아 모자이크 바이러스 (Alstroemeria mosaic virus)를 특이적으로 검출하기 위한 프라이머 세트 및 이의 용도에 관한 것이다.The present invention relates to a primer set for specifically detecting Alstroemeria mosaic virus and to a use thereof.

기후 변화에 따른 생태계 변화, 식물과 바이러스의 진화와 변이, 그리고 바이러스 매개곤충이 증가함에 따라 바이러스 피해가 확산되고 있다. 또한, 최근 국제교역과 다양한 식물들의 수출입 증가는 새로운 식물 바이러스의 국내 유입 가능성을 높이고 있다.Virus damage is spreading as the ecosystem changes due to climate change, the evolution and mutation of plants and viruses, and the number of virus vectors increase. In addition, the recent increase in international trade and imports and exports of various plants is increasing the possibility of introducing new plant viruses into the country.

2000년 이후 미국, 호주, 중국 등 여러나라에서 식물검역을 강화하고 있다. 이것은 새로운 병해충의 침입을 막기 위한 비용이 새로운 병해충이 침입하여 발생하는 피해액과 방제비를 합한 비용과 비교할 때 훨씬 경제적이기 때문이다.Since 2000, several countries, including the United States, Australia, and China, have strengthened plant quarantine. This is because the cost to prevent the invasion of new pests is much more economical compared to the total cost of damage and control costs caused by the invasion of new pests.

현재, RNA 바이러스의 검출에서는 높은 검출감도와 편리성을 가지고 있는 RT-PCR 방법이 가장 일반적으로 사용되고 있고, 병원체의 PCR 검출을 위해서는 종 특이적인 프라이머 개발이 가장 중요하다.Currently, in the detection of RNA viruses, the RT-PCR method with high detection sensitivity and convenience is most commonly used, and the development of species-specific primers is the most important for PCR detection of pathogens.

알스트로에메리아 모자이크 바이러스 (Alstroemeria mosaic virus, AlMV)는 포티바이러스 속의 (+) 센스 ssRNA 바이러스이다. AlMV의 감염 증상은 바이러스 균주, 감염된 알스트로에메리아 품종 및 환경 요인들에 따라 매우 다양하며, 전형적인 AlMV 감염 증상은 엽맥을 따라 연두색 또는 어두운 점들이 길게 발생하는 잎 및 꽃의 부스러짐이다.Alstroemeria mosaic virus (AlMV) is a (+) sense ssRNA virus of the genus Photivirus. The symptoms of AlMV infection vary greatly depending on the virus strain, infected Alstroemeria cultivar, and environmental factors. A typical AlMV infection symptom is leaf and flower crumbling with long yellow-green or dark spots along the veins.

한편, 한국등록특허 제1322323호에는 '백미속 식물에서 발견된 신규한 큰조롱모자이크바이러스, 그의 검출용 프라이머 및 이를 이용한 큰조롱모자이크바이러스의 검출 방법'이 개시되어 있고, 한국등록특허 제2096633호에는 '검역 식물바이러스인 바나나 포엽 모자이크 바이러스를 특이적으로 검출하기 위한 프라이머 세트 및 이의 용도'가 개시되어 있으나, 본 발명의 알스트로에메리아 모자이크 바이러스를 특이적으로 검출하기 위한 프라이머 세트 및 이의 용도에 대해서는 기재된 바가 없다. 또한, 해당 바이러스에 대한 PCR 검사법이 개발되어 있더라도 바이러스의 특성상 지속적으로 염기서열 변이가 발생하기 때문에, 이러한 변이 시퀀스를 아우를 수 있는 PCR 검사법으로 고도화될 필요성이 있다.On the other hand, Korea Patent No. 1322323 discloses 'a novel Mosquito mosaic virus found in plants of the genus White rice, a primer for its detection, and a method for detecting the Mosquito mosaic virus using the same', and in Korea Patent No. 2096633, Although 'a primer set for specifically detecting the quarantine plant virus, banana bract mosaic virus and its use' is disclosed, the primer set and its use for specifically detecting the Alstroemeria mosaic virus of the present invention are described. nothing has been described In addition, even if a PCR test method for the virus has been developed, since nucleotide sequence mutations occur continuously due to the characteristics of the virus, there is a need to upgrade to a PCR test method that can encompass such mutated sequences.

본 발명은 상기와 같은 요구에 의해 도출된 것으로서, 본 발명자들은 알스트로에메리아 모자이크 바이러스 (Alstroemeria mosaic virus, AlMV)를 특이적으로 검출할 수 있는 프라이머 세트를 개발하기 위해 공지된 데이터베이스에서 AlMV의 핵산 정보를 수집하여 후보 프라이머 세트를 설계한 후, 대상 바이러스 유전자와의 특이적 반응을 보이는 후보 프라이머 세트 18개를 1차 선발하였고, 1차 선발된 프라이머 세트 중 근연종 바이러스 유전자에 비특이적 반응을 보이지 않는 6개의 후보 프라이머 세트를 2차 선발하였으며, 2차 선발된 프라이머 세트들의 식물체 유전자에 대한 비특이적 반응 여부를 통해 5개의 후보 프라이머를 최종 선발하였다. 또한, 최종 선발된 프라이머 세트에 대한 민감도를 분석한 결과, 본 발명에 따른 프라이머 세트들은 10-2 ~ 10-3 ng 수준의 RNA 농도까지 검출할 수 있음을 확인함으로써, 본 발명을 완성하였다.The present invention has been derived from the above needs, and the present inventors have developed a nucleic acid of AlMV from a known database to develop a primer set capable of specifically detecting Alstroemeria mosaic virus (AlMV). After collecting information and designing a candidate primer set, 18 candidate primer sets showing a specific reaction with the target virus gene were first selected. Six candidate primer sets were secondarily selected, and five candidate primers were finally selected through the non-specific reaction of the second-selected primer sets to plant genes. In addition, as a result of analyzing the sensitivity to the finally selected primer set, the present invention was completed by confirming that the primer sets according to the present invention can detect up to an RNA concentration of 10 -2 to 10 -3 ng.

상기 과제를 해결하기 위해, 본 발명은 서열번호 1 및 11의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 서열번호 3 및 13의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 서열번호 3 및 14의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 서열번호 4 및 14의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 및 서열번호 7 및 18의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트를 포함하는 알스트로에메리아 모자이크 바이러스 (Alstroemeria mosaic virus)를 특이적으로 검출하기 위한 프라이머 세트 조성물을 제공한다.In order to solve the above problems, the present invention provides an oligonucleotide primer set of SEQ ID NOs: 1 and 11; oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 3 and 13; oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 3 and 14; oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 4 and 14; And it provides a primer set composition for specifically detecting Alstroemeria mosaic virus comprising one or more oligonucleotide primer sets selected from the group consisting of oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 7 and 18. .

또한, 본 발명은 상기 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 및 증폭 반응을 수행하기 위한 시약을 포함하는, 알스트로에메리아 모자이크 바이러스를 특이적으로 검출하기 위한 키트를 제공한다.In addition, the present invention is the oligonucleotide primer set; And it provides a kit for specifically detecting Alstroemeria mosaic virus, comprising a reagent for performing an amplification reaction.

또한, 본 발명은 식물 시료에서 총 RNA를 분리하는 단계; 상기 분리된 총 RNA를 주형으로 하고, 본 발명에 따른 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트를 이용하여 RT-PCR을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및 상기 증폭 산물을 검출하는 단계를 포함하는, 알스트로에메리아 모자이크 바이러스를 특이적으로 검출하는 방법을 제공한다.In addition, the present invention isolates total RNA from a plant sample; amplifying a target sequence by using the isolated total RNA as a template and performing RT-PCR using the oligonucleotide primer set according to the present invention; And it provides a method for specifically detecting Alstroemeria mosaic virus, comprising the step of detecting the amplification product.

본 발명에 따른 알스트로에메리아 모자이크 바이러스 (Alstroemeria mosaic virus, AlMV)를 특이적으로 검출할 수 있는 5개의 프라이머 세트는 AlMV를 쉽고 빠르게 검출할 수 있으므로, AlMV의 국내로의 도입을 효과적으로 방지할 수 있을 것으로 사료된다.The five primer sets capable of specifically detecting Alstroemeria mosaic virus (AlMV) according to the present invention can detect AlMV easily and quickly, and thus can effectively prevent the introduction of AlMV into the country. It is presumed that there will be

도 1은 AlMV 시퀀스 정렬 결과 및 AlMV 검출용 후보 프라이머의 위치를 보여준다.
도 2 및 도 3은 AlMV 양성 및 음성 시료를 이용한 후보 프라이머 세트의 검증 결과이다.
도 4 내지 도 6은 근연종 바이러스 4종을 이용한 후보 프라이머 세트의 검증 결과이다.
도 7은 AlMV 검사대상 시료를 이용한 후보 프라이머 세트의 검증 결과이다.
도 8은 End-point 테스트를 통한 후보 프라이머 세트의 검출 한계 분석 결과이다.
도 9는 PCR 검사를 위해 제작된 양성대조구 클론의 염기서열에서, 최종 선택된 프라이머 세트들의 위치를 보여준다.
도 10은 PCR 검사를 위해 제작된 양성대조구 염기서열을 포함하는 클론의 PCR 반응 결과이다.
1 shows the AlMV sequence alignment results and the positions of candidate primers for AlMV detection.
2 and 3 are results of verification of candidate primer sets using AlMV positive and negative samples.
4 to 6 are results of verification of candidate primer sets using four types of related viruses.
7 is a verification result of a candidate primer set using an AlMV test target sample.
8 is a result of analysis of the detection limit of a candidate primer set through an endpoint test.
9 shows the positions of the finally selected primer sets in the nucleotide sequence of the positive control clone prepared for the PCR test.
10 is a PCR reaction result of a clone containing a nucleotide sequence of a positive control prepared for PCR test.

본 발명의 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 서열번호 1 및 11의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 서열번호 3 및 13의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 서열번호 3 및 14의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 서열번호 4 및 14의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 및 서열번호 7 및 18의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트를 포함하는 알스트로에메리아 모자이크 바이러스 (Alstroemeria mosaic virus)를 특이적으로 검출하기 위한 프라이머 세트 조성물을 제공한다.In order to achieve the object of the present invention, the present invention provides an oligonucleotide primer set of SEQ ID NOs: 1 and 11; oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 3 and 13; oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 3 and 14; oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 4 and 14; And it provides a primer set composition for specifically detecting Alstroemeria mosaic virus comprising one or more oligonucleotide primer sets selected from the group consisting of oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 7 and 18. .

본 발명의 프라이머 세트는 바람직하게는 상기 5개의 프라이머 세트로 이루어진 군으로부터 선택되는 1개 이상, 2개 이상, 3개 이상, 4개 이상의 프라이머 세트를 포함하며, 바람직하게는 5개의 프라이머 세트를 모두 포함할 수 있다.The primer set of the present invention preferably includes one or more, two or more, three or more, four or more primer sets selected from the group consisting of the five primer sets, and preferably all five primer sets. may include

상기 프라이머는 각 프라이머의 서열 길이에 따라, 서열번호 1, 3, 4, 7, 11, 13, 14, 및 18의 서열 내의 16개 이상, 17개이상, 18개 이상, 19개 이상, 20개 이상의 연속 뉴클레오티드의 절편으로 이루어진 올리고뉴클레오티드를 포함할 수 있다. 예를 들면, 서열번호 1의 프라이머(22개 올리고뉴클레오티드)는 서열번호 1의 서열 내의 16개 이상, 17개 이상, 18개 이상, 19개 이상, 20개 이상, 21개 이상의 연속 뉴클레오티드의 절편으로 이루어진 올리고뉴클레오티드를 포함할 수 있다. 또한, 상기 프라이머는 서열번호 1, 3, 4, 7, 11, 13, 14, 및 18의 염기서열의 부가, 결실 또는 치환된 서열도 포함할 수 있다.The primers are 16 or more, 17 or more, 18 or more, 19 or more, 20 or more in the sequence of SEQ ID NOs: 1, 3, 4, 7, 11, 13, 14, and 18, depending on the sequence length of each primer. It may include an oligonucleotide consisting of fragments of more than one contiguous nucleotide. For example, the primer of SEQ ID NO: 1 (22 oligonucleotides) is a fragment of 16 or more, 17 or more, 18 or more, 19 or more, 20 or more, 21 or more consecutive nucleotides in the sequence of SEQ ID NO: 1 It may comprise an oligonucleotide consisting of In addition, the primer may also include an addition, deletion or substitution of the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 1, 3, 4, 7, 11, 13, 14, and 18.

본 발명의 서열번호 1, 3, 4 및 7의 올리고뉴클레오티드 프라이머는 정방향(forward) 프라이머이며, 서열번호 11, 13, 14 및 18의 올리고뉴클레오티드 프라이머는 역방향(reverse) 프라이머이다.The oligonucleotide primers of SEQ ID NOs: 1, 3, 4 and 7 of the present invention are forward primers, and the oligonucleotide primers of SEQ ID NOs: 11, 13, 14 and 18 are reverse primers.

본 발명에 있어서, "프라이머"는 카피하려는 핵산 가닥에 상보적인 단일 가닥 올리고뉴클레오티드 서열을 말하며, 프라이머 연장 산물의 합성을 위한 개시점으로서 작용할 수 있다. 상기 프라이머의 길이 및 서열은 연장 산물의 합성을 시작하도록 허용해야 한다. 프라이머의 구체적인 길이 및 서열은 요구되는 DNA 또는 RNA 표적의 복합도(complexity)뿐만 아니라 온도 및 이온 강도와 같은 프라이머 이용 조건에 의존할 것이다.In the present invention, "primer" refers to a single-stranded oligonucleotide sequence complementary to a nucleic acid strand to be copied, and can serve as a starting point for synthesis of a primer extension product. The length and sequence of the primers should allow synthesis of the extension product to begin. The specific length and sequence of the primer will depend on the conditions of use of the primer, such as temperature and ionic strength, as well as the complexity of the DNA or RNA target required.

본 명세서에 있어서, 프라이머로서 이용된 올리고뉴클레오티드는 또한 뉴클레오티드 유사체(analogue), 예를 들면, 포스포로티오에이트(phosphorothioate), 알킬포스포로티오에이트 또는 펩티드 핵산(peptide nucleic acid)를 포함할 수 있거나 또는 삽입 물질(intercalating agent)를 포함할 수 있다.As used herein, the oligonucleotide used as a primer may also contain a nucleotide analogue, for example, a phosphorothioate, an alkylphosphorothioate or a peptide nucleic acid or An intercalating agent may be included.

본 발명은 또한, 상기 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 및 증폭 반응을 수행하기 위한 시약을 포함하는, 알스트로에메리아 모자이크 바이러스 (Alstroemeria mosaic virus)를 특이적으로 검출하기 위한 키트를 제공한다.The present invention also provides the oligonucleotide primer set; And it provides a kit for specifically detecting Alstroemeria mosaic virus, comprising a reagent for performing an amplification reaction.

본 발명의 일 구현 예에 있어서, 상기 증폭 반응을 수행하기 위한 시약은 DNA 폴리머라제, dNTPs 및 버퍼를 포함할 수 있으며, 리보뉴클레아제(ribonuclease) 저해제, 내열성 중합 효소 등을 추가로 포함할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 상기 DNA 폴리머라제는 RNA 의존성 DNA 폴리머라제(RNA dependent DNA polymerase)와 같은 역전사 효소일 수 있으며, 다양한 소스로부터 기원한 역전사 효소, 예를 들면, 조류 골수 아세포증 바이러스-유래 역전사 효소(avian myeloblastosis virus-derived virus reverse transcriptase; AMV RTase), 마우스 백혈병 바이러스-유래 역전사 효소(murine leukemia virus-derived virus reverse transcriptase; MuLV RTase) 및 라우스-관련 바이러스 2 역전사 효소(Rous-associated virus 2 reverse transcriptase; RAV-2 RTase)를 포함할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 또한, 상기 버퍼는 역전사 버퍼 및 PCR 버퍼를 모두 포함할 수 있으며, 상기 내열성 중합 효소는 EF Taq 중합 효소일 수 있다.In one embodiment of the present invention, the reagent for performing the amplification reaction may include DNA polymerase, dNTPs, and a buffer, and may further include a ribonuclease inhibitor, a thermostable polymerase, and the like. However, it is not limited thereto. The DNA polymerase may be a reverse transcriptase such as an RNA dependent DNA polymerase, a reverse transcriptase from a variety of sources, for example, avian myeloblastosis virus-derived reverse transcriptase. derived virus reverse transcriptase (AMV RTase), murine leukemia virus-derived virus reverse transcriptase (MuLV RTase) and Rous-associated virus 2 reverse transcriptase (RAV-2 RTase) ), but is not limited thereto. In addition, the buffer may include both a reverse transcription buffer and a PCR buffer, and the heat-resistant polymerase may be EF Taq polymerase.

또한, 본 발명의 상기 키트는 서열번호 20의 염기서열로 이루어진 양성대조구 서열을 추가로 포함할 수 있다. 상기 서열번호 20의 염기서열은 본 발명에서 선택된 5개의 프라이머 세트(총 8개의 올리고뉴클레오 프라이머)가 각각 비특이적 반응 없이 각 프라이머 세트의 예측되는 증폭 산물 크기와 동일한 크기의 증폭산물을 생산할 수 있도록 프라이머 염기서열과 인위적인 염기서열을 추가하여 인공적으로 합성한 염기서열로(도 9), DNA 단편 또는 상기 염기서열을 포함하는 벡터의 형태 등으로 키트에 포함될 수 있다.In addition, the kit of the present invention may further include a positive control sequence consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 20. The nucleotide sequence of SEQ ID NO: 20 is a primer so that the five primer sets (total of eight oligonucleo primers) selected in the present invention can produce an amplification product having the same size as the expected amplification product size of each primer set without a non-specific reaction. As a nucleotide sequence artificially synthesized by adding a nucleotide sequence and an artificial nucleotide sequence (FIG. 9), it may be included in the kit in the form of a DNA fragment or a vector including the nucleotide sequence.

본 발명의 일 구현 예에 있어서, 상기 키트는 또한 최적의 반응 수행 조건을 기재한 사용자 안내서를 추가로 포함할 수 있다. 안내서는 키트 사용법, 예를 들면, 역전사 완충액 및 PCR 완충액 제조 방법, 제시되는 반응 조건 등을 설명하는 인쇄물이다. 안내서는 팜플렛 또는 전단지 형태의 안내 책자, 키트에 부착된 라벨, 및 키트를 포함하는 패키지의 표면상에 설명을 포함한다. 또한, 안내서는 인터넷과 같이 전기 매체를 통해 공개되거나 제공되는 정보를 포함한다.In one embodiment of the present invention, the kit may further include a user guide describing optimal conditions for performing the reaction. The handbook is a printout explaining how to use the kit, eg, how to prepare reverse transcription buffer and PCR buffer, and suggested reaction conditions. Instructions include a brochure in the form of a pamphlet or leaflet, a label affixed to the kit, and instructions on the surface of the package containing the kit. In addition, the guide includes information published or provided through electronic media such as the Internet.

본 발명은 또한, 식물 시료에서 총 RNA를 분리하는 단계; 상기 분리된 총 RNA를 주형으로 하고, 본 발명에 따른 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트를 이용하여 RT-PCR을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및 상기 증폭 산물을 검출하는 단계를 포함하는, 알스트로에메리아 모자이크 바이러스 (Alstroemeria mosaic virus)를 특이적으로 검출하는 방법을 제공한다.The present invention also comprises the steps of isolating total RNA from plant samples; amplifying a target sequence by using the isolated total RNA as a template and performing RT-PCR using the oligonucleotide primer set according to the present invention; And it provides a method for specifically detecting Alstroemeria mosaic virus, comprising the step of detecting the amplification product.

본 발명의 방법은 식물 시료에서 총 RNA를 분리하는 단계를 포함한다. 상기 시료에서 총 RNA를 분리하는 방법은 당업계에 공지된 임의의 방법을 이용할 수 있으며, 예를 들면, 페놀 추출 방법을 이용할 수 있다. 상기 분리된 전체 RNA를 주형으로 하고, 본 발명의 일 실시예에 따른 하나 이상의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트를 프라이머로 이용하여 RT-PCR (reverse transcription polymerase chain reaction)을 수행하여 표적 서열을 증폭할 수 있다. 이러한 PCR 방법은 당업계에 잘 알려져 있으며, 상업적으로 이용가능한 키트를 이용할 수도 있다.The method of the present invention comprises the step of isolating total RNA from a plant sample. A method for isolating total RNA from the sample may use any method known in the art, for example, a phenol extraction method may be used. Using the isolated total RNA as a template and using one or more oligonucleotide primer sets according to an embodiment of the present invention as primers, RT-PCR (reverse transcription polymerase chain reaction) may be performed to amplify the target sequence. Such PCR methods are well known in the art, and commercially available kits may be used.

본 발명의 일 구현 예에 따른 방법에서, 상기 식물은 알스트로에메리아에 제한되지 않고, 알스트로에메리아 모자이크 바이러스에 감염될 수 있는 식물이면 본 발명의 범위 내에 포함될 수 있다.In the method according to an embodiment of the present invention, the plant is not limited to Alstroemeria, and any plant that can be infected with Alstroemeria mosaic virus may be included within the scope of the present invention.

본 발명의 방법에 있어서, 상기 증폭된 표적 서열은 검출가능한 표지 물질로 표지될 수 있다. 상기 표지 물질은 형광, 인광 또는 방사성을 발하는 물질일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 바람직하게는, 상기 표지 물질은 Cy-5 또는 Cy-3이다. 표적 서열의 증폭시 프라이머의 5'-말단에 Cy-5 또는 Cy-3를 표지하여 PCR을 수행하면 표적 서열이 검출가능한 형광 표지 물질로 표지될 수 있다. 또한, 방사성 물질을 이용한 표지는 PCR 수행시 32P 또는 35S 등과 같은 방사성 동위원소를 PCR 반응액에 첨가하면 증폭 산물이 합성되면서 방사성이 증폭 산물에 혼입되어 증폭 산물이 방사성으로 표지될 수 있다. 표적 서열을 증폭하기 위해 이용된 하나 이상의 올리고뉴클레오티드 프라이머 조합은 상기에 기재된 바와 같다.In the method of the present invention, the amplified target sequence may be labeled with a detectable labeling substance. The labeling material may be a material emitting fluorescence, phosphorescence, or radioactivity, but is not limited thereto. Preferably, the labeling substance is Cy-5 or Cy-3. When PCR is performed by labeling Cy-5 or Cy-3 at the 5'-end of the primer during amplification of the target sequence, the target sequence may be labeled with a detectable fluorescent labeling material. In addition, when a radioactive isotope such as 32 P or 35 S is added to a PCR reaction solution for labeling using a radioactive material, the amplification product is synthesized and radioactivity is incorporated into the amplification product, so that the amplification product can be radioactively labeled. The one or more oligonucleotide primer combinations used to amplify the target sequence are as described above.

본 발명의 일 구현 예에 있어서, 상기 알스트로에메리아 모자이크 바이러스를 검출하는 방법은 상기 증폭 산물을 검출하는 단계를 포함하며, 상기 증폭 산물의 검출은 DNA 칩, 겔 전기영동, 모세관 전기영동, 방사성 측정, 형광 측정 또는 인광 측정을 통해 수행될 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 증폭 산물을 검출하는 방법 중의 하나로서, 모세관 전기영동을 수행할 수 있다. 모세관 전기영동은 예를 들면, ABi Sequencer를 이용할 수 있다. 또한, 겔 전기영동을 수행할 수 있으며, 겔 전기영동은 증폭 산물의 크기에 따라 아가로스 겔 전기영동 또는 아크릴아미드 겔 전기영동을 이용할 수 있다. 또한, 형광 측정 방법은 프라이머의 5'-말단에 Cy-5 또는 Cy-3를 표지하여 PCR을 수행하면 표적 서열이 검출가능한 형광 표지 물질로 표지되며, 이렇게 표지된 형광은 형광 측정기를 이용하여 측정할 수 있다. 또한, 방사성 측정 방법은 PCR 수행시 32P 또는 35S 등과 같은 방사성 동위원소를 PCR 반응액에 첨가하여 증폭 산물을 표지한 후, 방사성 측정기구, 예를 들면, 가이거 계수기(Geiger counter) 또는 액체섬광계수기(liquid scintillation counter)를 이용하여 방사성을 측정할 수 있다.In one embodiment of the present invention, the method for detecting Alstroemeria mosaic virus includes detecting the amplification product, and the detection of the amplification product is a DNA chip, gel electrophoresis, capillary electrophoresis, radioactive Measurement, fluorescence measurement, or phosphorescence measurement may be performed, but is not limited thereto. As one of the methods for detecting the amplification product, capillary electrophoresis may be performed. Capillary electrophoresis may use, for example, an ABi Sequencer. In addition, gel electrophoresis can be performed, and agarose gel electrophoresis or acrylamide gel electrophoresis can be used for gel electrophoresis depending on the size of the amplification product. In addition, in the fluorescence measurement method, when PCR is performed by labeling the 5'-end of the primer with Cy-5 or Cy-3, the target sequence is labeled with a detectable fluorescent labeling material, and the labeled fluorescence is measured using a fluorometer. can do. In addition, the radioactive measurement method is a radioactive isotope such as 32 P or 35 S added to the PCR reaction solution during PCR to label the amplification product, and then a radioactive measuring instrument, for example, a Geiger counter or liquid scintillation. The radioactivity can be measured using a liquid scintillation counter.

이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다. 단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, the present invention will be described in detail by way of Examples. However, the following examples are merely illustrative of the present invention, and the content of the present invention is not limited to the following examples.

실시예 1. Alstroemeria mosaic virus (AlMV)를 검출하기 위한 프라이머 세트 설계Example 1. Primer set design for detecting Alstroemeria mosaic virus (AlMV)

NCBI GenBank에서 활용가능한 4개의 AlMV 시퀀스(2020년 5월 기준)를 서열 정렬하고(도 1), 이 결과를 통해 AlMV 특이적 검출을 위한 후보 프라이머를 설계하였다(표 1 및 표 2).Four AlMV sequences available in NCBI GenBank (as of May 2020) were sequence-aligned (FIG. 1), and candidate primers for AlMV-specific detection were designed based on the results (Table 1 and Table 2).

Figure 112021024734715-pat00001
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Figure 112021024734715-pat00002
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설계된 후보 프라이머 세트를 검증하기 위해서는 균주(타겟 바이러스 및 근연종)에 대한 특이성 테스트 및 검사품목에 대한 비특이적 산물 생성 여부 확인이 필요하였다. 본 발명에 사용될 근연종 바이러스는 BBrMV (Banana bract mosaic virus), BCMV (Bean common mosaic virus), ChiVMV (Chilli veinal mottle virus) 및 TEV (Tobacco etch virus)이다. 상기 타겟 바이러스 및 근연종 바이러스는 모두 Agdia Inc.(USA)에서 구입하여 사용하였다. 검사품목 식물체는 (종자 및 식물체; 식물체가 종자로 확보될 경우 온실에서 재배) 알스트로에메리아 (Alstroemeria 'Appelbloesem')이다. 상기 식물체는 바이러스 무감염으로 판단되는 종자나 묘를 구입하여 사용하였다.In order to verify the designed candidate primer set, it was necessary to test the specificity for the strain (target virus and related species) and to check whether non-specific products were generated for the test item. Related viruses to be used in the present invention are BBrMV (Banana bract mosaic virus), BCMV (Bean common mosaic virus), ChiVMV (Chilli veinal mottle virus) and TEV (Tobacco etch virus). All of the target virus and related viruses were purchased from Agdia Inc. (USA) and used. The plant to be inspected (seeds and plants; cultivated in greenhouses when plants are secured as seeds ) is Alstroemeria 'Appelbloesem'. The plants were used by purchasing seeds or seedlings judged to be virus-free.

실시예 2. AlMV를 검출하기 위한 프라이머 세트의 검증Example 2. Verification of a primer set for detecting AlMV

상기 실시예 1을 통해 설계한 후보 프라이머 세트의 검증 및 선발을 위해 PCR을 수행하였다. 총 RNA 시료는 RNeasy plant mini kit (QIAgen, Germany)를 사용하여 추출하였다. PCR은 RT-PCR Premix (PLUTOS, Korea; P사), AccuPower RT-PCR PreMix & Master Mix (Bioneer, Korea; B사), SuPrimeScript RT-PCR Premix (GeNet Bio, Korea; G사)를 이용하여 수행되었으며, 혼합물의 조성 및 반응 조건은 하기 표와 같다.PCR was performed to verify and select the candidate primer set designed in Example 1. Total RNA samples were extracted using the RNeasy plant mini kit (QIAgen, Germany). PCR was performed using RT-PCR Premix (PLUTOS, Korea; Company P), AccuPower RT-PCR PreMix & Master Mix (Bioneer, Korea; Company B), SuPrimeScript RT-PCR Premix (GeNet Bio, Korea; Company G) and the composition and reaction conditions of the mixture are shown in the table below.

Figure 112021024734715-pat00003
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2-1. AlMV 종 특이성 확인2-1. Confirmation of AlMV species specificity

먼저, AlMV 양성 및 음성 시료를 이용한 후보 프라이머의 검증을 실시하였다.First, verification of candidate primers using AlMV positive and negative samples was performed.

AlMV 감염 시료를 이용하여 26개 후보 프라이머 세트를 검증한 결과, 예상되는 산물 크기외에 비특이적 반응이 나타난 프라이머 세트 no. 1, 7, 15, 18, 19, 22, 24, 26를 제외한 18개 (no. 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 16, 17, 20, 21, 23, 25)의 프라이머 세트가 1차로 선발되었다(도 2 및 도 3).As a result of verifying 26 candidate primer sets using AlMV-infected samples, primer set no. 18 except 1, 7, 15, 18, 19, 22, 24, 26 (no. 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 16, 17, 20, 21, 23, 25) was first selected ( FIGS. 2 and 3 ).

2-2. 근연종 바이러스를 이용한 후보 프라이머 세트의 검증2-2. Validation of candidate primer sets using closely related viruses

1차로 선발된 18개의 프라이머 세트를 이용하여 4종 근연 바이러스를 대상으로 비특이 반응 여부를 확인한 결과, 비특이 반응이 나타난 프라이머 세트 no. 2, 4, 5, 8, 9, 10, 13, 16, 17, 20, 21, 25을 제외한 6개 (no. 3, 6, 11, 12, 14, 23)의 프라이머 세트가 선발되었다(도 4 내지 도 6).As a result of confirming whether a non-specific reaction was performed against 4 types of closely related viruses using 18 primer sets selected primarily, the primer set no. Except for 2, 4, 5, 8, 9, 10, 13, 16, 17, 20, 21, 25, 6 (no. 3, 6, 11, 12, 14, 23) primer sets were selected (Fig. 4 to 6).

2-3. 검사대상 식물체를 이용한 후보 프라이머 세트의 검증2-3. Validation of candidate primer sets using test target plants

2차로 선발된 6개의 프라이머 세트를 이용하여 2종의 검사대상 식물체를 대상으로 6개 프라이머 세트의 비특이 반응 여부를 확인한 결과, 비특이 반응이 나타난 프라이머 세트 no. 6을 제외한 5개 (no. 3, 11, 12, 14, 23)의 프라이머 세트가 선발되었다(도 7).As a result of confirming the non-specific reaction of the six primer sets on two types of test target plants using the secondly selected six primer sets, the primer set no. Except for 6, 5 (no. 3, 11, 12, 14, 23) primer sets were selected (FIG. 7).

2-4. End-point 테스트를 통한 후보 프라이머 세트의 검출 한계 분석2-4. Detection limit analysis of candidate primer sets through endpoint testing

최종 선발된 5개의 프라이머 세트의 검출 한계를 확인하기 위해, 총 RNA 주형을 10, 1, 10-1, 10-2, 10-3, 10-4, 10-5 ng의 농도로 달리하여 민감도 분석을 수행하였다. 그 결과, 최종 선발된 모든 프라이머 세트는 10-2 ng의 RNA 농도까지 검출할 수 있었으며, PCR premix 제품에 따라 주형 농도 10-3 ng에서도 타겟 밴드가 확인되는 것이 관찰되었다(도 8). 상기 결과를 통해 본 발명의 프라이머 세트가 우수한 민감도를 가진 마커임을 확인할 수 있었다.In order to confirm the detection limit of the final selected five primer sets, sensitivity analysis was performed by varying the total RNA template at concentrations of 10, 1, 10 -1 , 10 -2 , 10 -3 , 10 -4 , and 10 -5 ng. was performed. As a result, all the finally selected primer sets were able to detect up to an RNA concentration of 10 -2 ng, and it was observed that the target band was confirmed even at a template concentration of 10 -3 ng according to the PCR premix product (FIG. 8). From the above results, it was confirmed that the primer set of the present invention was a marker with excellent sensitivity.

실시예 3. 양성대조구 클론을 제작하기 위한 염기서열 설계 및 검증Example 3. Base sequence design and verification for producing positive control clones

본 발명자는 최종 선택된 프라이머 세트들의 PCR 검사 시 양성대조구로 사용될 수 있는 양성대조구 클론을 제작하였다. 상기 양성대조구 클론은, 본 발명에서 최종적으로 선택된 5개의 프라이머 세트(총 8개의 올리고뉴클레오 프라이머)가 각각 비특이적 반응 없이 각 프라이머 세트의 예측되는 증폭 산물 크기와 동일한 크기의 증폭산물을 생산할 수 있도록 프라이머 염기서열과 인위적인 염기서열을 추가하여 설계한 염기서열(서열번호 20, 도 9)이다. 본 발명자는 양성대조구 염기서열을 설계한 후, pUCIDT-AMP 벡터(IDT, 미국)에 클로닝된 형태로 준비하였다.The present inventors prepared a positive control clone that can be used as a positive control in the PCR test of the finally selected primer sets. The positive control clone is a primer so that the 5 primer sets (total of 8 oligonucleo primers) finally selected in the present invention can produce an amplification product having the same size as the expected amplification product size of each primer set without a non-specific reaction, respectively. It is a nucleotide sequence designed by adding a nucleotide sequence and an artificial nucleotide sequence (SEQ ID NO: 20, FIG. 9). The present inventors designed the base sequence of a positive control, and then prepared it in a cloned form into the pUCIDT-AMP vector (IDT, USA).

제작된 양성대조구 클론의 효율성을 확인하기 위해서, 1 ng 및 10-1 ng의 양성대조구 클론을 주형으로 이용하여 PCR을 수행하였다. PCR 혼합물의 조성은 표 3에서 N25 프라이머를 제외한 구성과 동일하고, 반응 조건은 표 4에서 RT 반응을 제외한 구성과 동일하게 수행하였다. 그 결과, 도 10에 개시된 바와 같이, 본 발명에서 최종적으로 선택된 5개의 프라이머 세트는 모두 예상되는 크기의 PCR 산물을 증폭하는 것을 알 수 있었고, 이를 통해 제작된 양성대조구 클론이 PCR 검사 시 본 발명의 프라이머 세트에 대한 양성대조구로 효과적으로 기능할 수 있음을 알 수 있었다.In order to confirm the efficiency of the prepared positive control clone, PCR was performed using 1 ng and 10 -1 ng of the positive control clone as a template. The composition of the PCR mixture was the same as in Table 3 except for the N25 primer, and the reaction conditions were the same as in Table 4 except for the RT reaction. As a result, as shown in FIG. 10, it was found that all of the five primer sets finally selected in the present invention amplify the PCR product of the expected size, and the positive control clone prepared through this amplifies the PCR test of the present invention. It was found that it can effectively function as a positive control for the primer set.

<110> REPUBLIC OF KOREA(Animal and Plant Quarantine Agency) <120> Specific primer set for detecting Alstroemeria mosaic virus and uses thereof <130> PN20425 <160> 20 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 1 ggatgttgac aggatttgca ag 22 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 2 ggacatcctt gacagactgg 20 <210> 3 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 3 gatttctcct cacgaaccag 20 <210> 4 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 4 caatcttaca gtgggatcgc 20 <210> 5 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 5 accgtcttga ggcaatctgt 20 <210> 6 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 6 gtgtgaagat ttcgaggtgc 20 <210> 7 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 7 agcaaggaca aacaggtagc 20 <210> 8 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 8 gatgtcaatg caggcacttc 20 <210> 9 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 9 gctacctgtt tgtccttgct 20 <210> 10 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 10 gaagtgcctg cattgacatc 20 <210> 11 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 11 tcctgtgatg gctttgatgc 20 <210> 12 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 12 gtggtagatt cagtgcatcc 20 <210> 13 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 13 cgtgccatgc attgaattgc 20 <210> 14 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 14 tcgatgcacc acaccattag 20 <210> 15 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 15 cttgttgttc gccatccatc 20 <210> 16 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 16 tacgcctctg caacatccga 20 <210> 17 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 17 aggctcgcat ctcgtaagtt 20 <210> 18 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 18 tcggagtacg agatgtgacc 20 <210> 19 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 19 ccgaacattc gagtttgcac 20 <210> 20 <211> 1169 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> positive control sequence <400> 20 gagaagcatg accgggaaat ccacgaacca cccgttgata tcacggccca tccgagcagg 60 cgattccaca agaatcgtgt tgagcgacca ctcgcagaaa atgtacactc aacgtagagc 120 tgcagcacat tccttaagga agcactcgtc tcgagcataa tgcgactatc tggaatttcc 180 cttggagctg agaccagatg gaacccttaa tagcctcgcc tatgaagtct ccaaaattgc 240 gtgcgcacct gtcaaacacg caatggccct gacggttatg tcggatggga tgttggtaga 300 tcagctcacg agagcttcac attgactcct gaggcaaatc aaacgggaat aagcaaggac 360 aaacaggtag cgcccggtaa cattgccgaa gatttctcct cacgaaccag atcccttaac 420 ggatgttgac aggatttgca agacctagtt gatgcgcagg gtacaggtgc caaatcgtct 480 gacagtctac acttccaagc aatcttacag tgggatcgcg aattgcagtt cccgattgta 540 gcgaaacctt aagatggacc gaagaatctt agttaccatt cctgcattcg 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DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 2 ggacatcctt gacagactgg 20 <210> 3 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 3 gatttctcct cacgaaccag 20 <210> 4 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 4 caatcttaca gtgggatcgc 20 <210> 5 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 5 accgtcttga ggcaatctgt 20 <210> 6 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 6 gtgtgaagat ttcgaggtgc 20 <210> 7 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 7 agcaaggaca aacaggtagc 20 <210> 8 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 8 gatgtcaatg caggcacttc 20 <210> 9 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 9 gctacctgtt tgtccttgct 20 <210> 10 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 10 gaagtgcctg cattgacatc 20 <210> 11 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 11 tcctgtgatg gctttgatgc 20 <210> 12 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 12 gtggtagatt cagtgcatcc 20 <210> 13 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 13 cgtgccatgc attgaattgc 20 <210> 14 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 14 tcgatgcacc acaccattag 20 <210> 15 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 15 cttgttgttc gccatccatc 20 <210> 16 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 16 tacgcctctg caacatccga 20 <210> 17 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 17 aggctcgcat ctcgtaagtt 20 <210> 18 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 18 tcggagtacg agatgtgacc 20 <210> 19 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 19 ccgaacattc gagtttgcac 20 <210> 20 <211> 1169 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> positive control sequence <400> 20 gagaagcatg accgggaaat ccacgaacca cccgttgata tcacggccca tccgagcagg 60 cgattccaca agaatcgtgt tgagcgacca ctcgcagaaa atgtacactc aacgtagagc 120 tgcagcacat tccttaagga agcactcgtc tcgagcataa tgcgactatc tggaatttcc 180 cttggagctg agaccagatg gaacccttaa tagcctcgcc tatgaagtct ccaaaattgc 240 gtgcgcacct gtcaaacacg caatggccct gacggttatg tcggatggga tgttggtaga 300 tcagctcacg agagcttcac attgactcct gaggcaaatc aaacgggaat aagcaaggac 360 aaacaggtag cgcccggtaa cattgccgaa gatttctcct cacgaaccag atcccttaac 420 ggatgttgac aggatttgca agacctagtt gatgcgcagg gtacaggtgc caaatcgtct 480 gacagtctac acttccaagc aatcttacag tgggatcgcg aattgcagtt cccgattgta 540 gcgaaacctt aagatggacc gaagaatctt agttaccatt cctgcattcg aagcaaatgc 600 tcctgggacg tgcctattgg ctaaactacg cgaggatata gcttggcact ccaactggac 660 acccagggag ctgtgaatgg atccaatggg actgttatcc gaggacagtg gccaacgatg 720 acaatcattg ccactggagg cgaatgacca tactggtcag aagtcccgca gagcataatg 780 cgactatctg gtttaacgcc atgatctcga ggaggcaagc actttagtcg gatttgaaag 840 gaccactgaa ctcctcgacg ctaatcacta tggtactcgt catctactga cttctcagtc 900 aactgatttc cagacgctaa ggtcacatct cgtactccga ttcgaaccta gcaataccgc 960 atttggcaat ccgcttatac ttaactggga gttgtggtca gacaatgcca gatgacaggc 1020 attagccgtt gatcatggcc attcaaatct cggatcgtaa gcgcctatgg gcaattcaat 1080 gcatggcacg aatacatgca tcaaagccat cacaggataa tgcctcgata aatcggatca 1140 cgttaaagtc taatggtgtg gtgcatcga 1169

Claims (6)

서열번호 1 및 11의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 서열번호 3 및 13의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 서열번호 3 및 14의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 서열번호 4 및 14의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 및 서열번호 7 및 18의 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트를 포함하는 알스트로에메리아 모자이크 바이러스 (Alstroemeria mosaic virus)를 특이적으로 검출하기 위한 프라이머 세트 조성물.oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 1 and 11; oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 3 and 13; oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 3 and 14; oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 4 and 14; And a primer set composition for specifically detecting Alstroemeria mosaic virus comprising the oligonucleotide primer sets of SEQ ID NOs: 7 and 18. 제1항에 따른 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트; 및 증폭 반응을 수행하기 위한 시약을 포함하는, 알스트로에메리아 모자이크 바이러스 (Alstroemeria mosaic virus)를 특이적으로 검출하기 위한 키트.The oligonucleotide primer set according to claim 1; And a kit for specifically detecting Alstroemeria mosaic virus, comprising a reagent for performing an amplification reaction. 제2항에 있어서, 상기 증폭 반응을 수행하기 위한 시약은 DNA 폴리머라제, dNTPs 및 버퍼를 포함하는 것인 키트.The kit according to claim 2, wherein the reagents for performing the amplification reaction include DNA polymerase, dNTPs and a buffer. 제2항에 있어서, 상기 키트는 서열번호 20의 염기서열로 이루어진 양성대조구 서열을 추가로 포함하는 것을 특징으로 하는 키트.The kit according to claim 2, wherein the kit further comprises a positive control sequence consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 20. 식물 시료에서 총 RNA를 분리하는 단계;
상기 분리된 총 RNA를 주형으로 하고, 제1항에 따른 올리고뉴클레오티드 프라이머 세트를 이용하여 RT-PCR을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및
상기 증폭 산물을 검출하는 단계를 포함하는, 알스트로에메리아 모자이크 바이러스 (Alstroemeria mosaic virus)를 특이적으로 검출하는 방법.
isolating total RNA from a plant sample;
using the isolated total RNA as a template and amplifying a target sequence by performing RT-PCR using the oligonucleotide primer set according to claim 1; and
A method for specifically detecting Alstroemeria mosaic virus, comprising the step of detecting the amplification product.
제5항에 있어서, 상기 증폭 산물의 검출은 DNA 칩, 겔 전기영동, 방사성 측정, 형광 측정 또는 인광 측정을 통해 수행되는 것인 방법.The method according to claim 5, wherein the detection of the amplification product is performed through a DNA chip, gel electrophoresis, radiometric measurement, fluorescence measurement, or phosphorescence measurement.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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Jong Bo Kim, J Plant Biotechnol., Vol. 47, No. 2, 페이지 164-171 (2020.12.31.)* *

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