KR102080719B1 - Composition for preventing, treating sarcopenia or improving muscle strength or increasing muscle mass containing a fermented soybean - Google Patents
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Abstract
일 양상에 따른 조성물은 한국인 영유아 유산균으로 발효한 약콩 발효물을 포함하고 있는 것으로, 근육분화를 촉진하고 근육 단백질을 분해를 억제함으로써 근육 질환을 예방 또는 치료할 수 있다. The composition according to one aspect includes a fermented medicinal soybean fermented with Korean infants and young lactic acid bacteria, and can prevent or treat muscle diseases by promoting muscle differentiation and inhibiting degradation of muscle proteins.
Description
약콩 발효물을 함유하는 근육 질환의 예방, 치료용 또는 근육 증강용 조성물에 관한 것이다. The present invention relates to a composition for preventing, treating or enhancing muscle diseases containing medicinal soybean fermented products.
최근 고령인구가 전세계적으로 급증하는 추세에 있는 가운데, UN에 따르면 2050년에는 60세 이상 인구가 20억 명이 넘을 것으로 예측되고 있다. 근육 감소와 근력 약화는 노화로 인해 일어나는 주요 신체 변화증상 중 하나로서, 40세 이상부터 단계적으로 진행되는 것으로 알려져 있다. 골격근은 전체 몸무게의 50%에 달하는 가장 큰 기관이며, 근감소증(sarcopenia)은 신체능력을 저하시키고 낙상과 골절의 위험을 높이는 등 삶의 질에 큰 영향을 미치기 때문에 근감소증에 대한 연구는 앞으로 더 활발해 질 것으로 예상된다. The elderly population is on the rise in recent years, and the UN estimates that by 2050 there will be over two billion people over 60 years old. Muscle loss and muscle weakness are one of the major body changes caused by aging, and it is known to progress gradually from 40 years old. Skeletal muscles are the largest organs, reaching 50% of the total body weight, and sarcopenia has a major impact on quality of life, including degrading physical capacity and increasing the risk of falls and fractures. It is expected to be active.
그러나, 근 감소에 효과적인 대안이 아직까지 나오지 않은 실정이다. 근 감소 치료에 호르몬 치료가 대표적으로 행해지고 있으나 그다지 효과적이지 않고 부작용들이 속속들이 보고되고 있는 시점에서 새로운 대안이 필요한 때이다. 한편 많은 연구들이 단백질 섭취와 근육 생성은 떼놓을 수 없는 관계임을 입증해 왔음에도 불구하고 우리나라 65세 이상의 인구 중 50%가 한국인 영양섭취 기준 미만으로 단백질을 섭취하고 있다(2015 국민영양통계). 콩은 양질의 단백질을 함유하고 있으며, 다른 식재료보다 경제적이라는 이점도 갖고 있다. 또한 소비자들 사이에서 선호도가 높은 식품이며 많은 건강 기능성을 포함하고 있는데, 대두 단백질뿐만 아니라 이소플라본(isoflavone)과 같은 파이토케미컬(Phytochemical)은 항산화, 항염증, 그리고 다른 생리 활성능에 의해 만성질환의 위험을 낮춘다는 사실이 보고된 바 있다. 그 중에서도 검정콩은 예로부터 약초로서 사용되어 왔고, 몇몇 연구는 검정콩이 노란콩보다 항산화 효과가 높다는 것을 밝히기도 하였다. 또한 검정콩은 일반 대두와 달리 이소플라본 외에도 껍질에 안토시아닌(Anthocyanins)과 프로안토시아니딘(Proanthocyanidins)를 포함하고 있어, 다양한 기능성이 존재한다However, there is no effective alternative to muscle reduction. Hormonal therapy is typically used to treat muscle loss, but when it is not very effective and side effects are being reported, new alternatives are needed. Meanwhile, although many studies have demonstrated that protein intake and muscle production are inseparable, 50% of the population over 65 years of age consume protein below the Korean nutrition standard (2015 National Nutrition Statistics). Soybeans contain high-quality protein and are also more economical than other foods. It is also a favorite food among consumers and contains many health functionalities.Phytochemicals such as isoflavones as well as soy protein are used to treat chronic diseases due to antioxidant, anti-inflammatory and other physiological activities. It has been reported that the risk is lowered. Among them, black beans have been used as a herb since ancient times, and some studies have shown that black beans have higher antioxidant effects than yellow beans. Unlike soybeans, black soybeans also contain anthocyanins and proanthocyanidins in their shells in addition to isoflavones.
근육의 재료가 되는 단백질을 섭취할 때에는 일일 권장량을 충족하여 섭취했는지 여부뿐만 아니라, 단백질의 체내 흡수 정도를 따져야 하는데 최근 미국 식품의약국(FDA)은 발효해서 나온 콩 단백질이 소화흡수율이 최고에 이른다고 발표한바 있다. 발효는 소화 흡수를 용이하게 할 뿐만 아니라 많은 대사체(metabolites)들이 생성되어 건강 기능성이 배로 증가한다. 따라서 발효를 거친 콩 단백질 혹은 콩 안토시아닌, 프로시아니딘, 이소플라본 등은 근육 생성과 근육 분화에 더 효과적인 도움을 줄 수 있을 것으로 예상된다.When consuming protein as a muscle ingredient, not only whether or not it meets the daily recommended amount, but also the degree of absorption of the protein in the body, the US Food and Drug Administration (FDA) recently said that the soy protein produced by fermentation has the highest digestive absorption rate. It was announced. Fermentation not only facilitates digestive absorption, but also produces many metabolites, doubling the health functionality. Thus, fermented soy protein or soy anthocyanin, procyanidins, isoflavones, etc. are expected to be more effective for muscle production and muscle differentiation.
일 양상은 약콩에 비피도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis.) LDTM 8102 (KCTC13392BP) 균주를 접종하여 발효시킨, 약콩 발효물을 유효성분으로 함유하는 근육 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공하는 것이다. One aspect is the prevention of muscle disease containing a fermented medicinal bean as an active ingredient, inoculated and fermented by Bifidobacterium animalis subsp. Lactis. LDTM 8102 (KCTC13392BP) strain to the medicinal beans or It provides a therapeutic pharmaceutical composition.
다른 양상은 약콩에 비티도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis.) LDTM 8102 (KCTC13392BP) 균주를 접종하여 발효시킨, 약콩 발효물을 유효성분으로 함유하는 근육 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물을 제공하는 것이다. Another aspect is the prevention of muscle diseases containing a fermented medicinal soybean as an active ingredient, inoculated and fermented with a strain of Bifidobacterium animalis subsp. Lactis. LDTM 8102 (KCTC13392BP) in the soybean. It is to provide a food composition for improvement.
다른 양상은 약콩에 비피도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis) LDTM 8102 (KCTC13392BP) 균주를 접종하여 발효시킨, 약콩 발효물을 유효성분으로 함유하는 근육 분화 촉진, 근육 재생 또는 근육 강화용 조성물을 제공하는 것이다. Another aspect is to promote muscle differentiation, muscle regeneration, containing the fermented medicinal bean as an active ingredient, inoculated and fermented with Bifidobacterium animalis subsp.Lactis LDTM 8102 (KCTC13392BP) strains in the medicinal beans Or to provide a composition for muscle strengthening.
다른 양상은 약콩에 비피도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis) LDTM 8102 (KCTC13392BP) 균주를 접종하여 발효시키는 단계를 포함하는 약콩 발효물을 제조하는 방법을 제공하는 것이다. Another aspect is to provide a method for preparing a medicinal soybean fermentation comprising inoculating and fermenting a Bifidobacterium animalis subsp . Lactis LDTM 8102 (KCTC13392BP) strain to the medicinal beans.
일 양상은 약콩에 비티도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis.) LDTM 8102 (KCTC13392BP) 균주를 접종하여 발효시킨, 약콩 발효물을 유효성분으로 함유하는 근육 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다. 다른 양상은 약콩에 비티도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis.) LDTM 8102 (KCTC13392BP) 균주를 접종하여 발효시킨, 약콩 발효물을 개체에 투여하는 단계를 포함하는 근육 질환을 치료하는 방법을 제공한다. One aspect is the prevention of muscle disease containing a fermented medicinal bean as an active ingredient, inoculated and fermented with a strain of Bifidobacterium animalis subsp. Lactis. LDTM 8102 (KCTC13392BP) to the soybean Provided is a therapeutic pharmaceutical composition. Another aspect is a muscle disease comprising administering to a subject a medicinal bean fermentation product, inoculated and fermented with a strain of Bifidobacterium animalis subsp. Lactis. LDTM 8102 (KCTC13392BP) to the subject. Provides a way to treat it.
본 명세서 내 용어, “약콩”은 껍질이 까맣고 크기는 보통 검은콩보다 작은 소립 검정콩을 말하며, 쥐눈이콩, 소청자, 약선콩, 다원콩, 소청 2호 등이 있으며 보통 검은콩보다 훨씬 작지만, 이소플라본 계열 유용성분인 제니스테인(genistein)과 다이드제인(daidzein)이 다른 검은 콩 보다 월등히 많이 포함되어 있다.In the present specification, the term “yak bean” refers to small black beans whose shell is black and smaller in size than normal black beans. There are rats, small blue beans, medicinal beans, dawon beans, socheong No. 2, and much smaller than ordinary black beans, but The flavone family of useful ingredients, genistein and daidzein, are much higher than other black beans.
본 명세서 내 용어, "비피도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis.) LDTM 8102 (KCTC13392BP) 균주"는 한국인 영유아의 분변으로부터 분리된 것으로서, 베타-글루코시다아제(β-glucosidase)의 생산 능력이 우수한 바, 쌀, 보리, 우유, 콩, 인삼 등과 해조류, 목질계 등을 포함하는 바이오매스 천연물에 대해 미생물 대사를 통해 유용물질로 생물 전환하는데 효과적으로 이용될 수 있다. As used herein, the term “ Bifidobacterium animalis subsp. Lactis. LDTM 8102 (KCTC13392BP) strain” is isolated from feces of Korean infants and is a beta-glucosidase (β- It can be effectively used for bioconversion of biomass natural products including rice, barley, milk, soybeans, ginseng, algae, woody system, etc. through microbial metabolism.
본 명세서 내 용어, "발효물"은 유산균을 이용하여 원재료를 물리적, 화학적인 방법으로 변성 또는 변형시키는 것을 의미하며, 자연 하에서는 몇 만년이 걸려야 바뀔 수 있는 것을 단 며칠 또는 몇 개월 만에 원하는 결과물을 얻을 수 있는 분해 과정을 의미한다. 구체적으로, 상기 발효물은 약콩을 유산균 배양배지에 혼합하고 유산균을 접종 및 발효시켜 생산된 발효산물로서, 상기 유산균은 비피도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis.) LDTM 8102 (KCTC13392BP) 균주인 것일 수 있다. 또한, 상기 발효물은 상기 유산균에 의해 발효된 산물을 의미할 뿐만 아니라 약콩을 유산균으로 발효시킨 후 여과한 발효 여과물 또는 발효물을 용매로 추출한 발효 추출물을 포함하는 것일 수 있다. As used herein, the term "fermented product" refers to the modification or transformation of raw materials by physical and chemical methods using lactic acid bacteria, and in nature, the desired result can be changed in a matter of days or months that can be changed after tens of thousands of years. It means the decomposition process that can be obtained. Specifically, the fermentation product is a fermentation product produced by mixing the medicinal beans into the lactic acid bacteria culture medium and inoculating and fermenting the lactic acid bacteria, wherein the lactic acid bacteria is Bifidobacterium animalis subsp. Lactis. LDTM 8102 (KCTC13392BP) strain. In addition, the fermented product may not only mean a product fermented by the lactic acid bacteria, but may also include a fermentation extract obtained by filtering the fermentation filtrate or fermented product after fermenting the medicinal beans with the lactic acid bacteria.
상기 약콩은 발효 전, 전처리된 것일 수 있다. 구체적으로, 상기 약콩은 로스팅(roasting), 또는 분쇄를 수행하여 전처리된 것일 수 있다. 일 구체예에서, 상기 전처리가 로스팅인 경우, 상기 로스팅은 100 내지 300℃의 온도 조건에서, 5 내지 30 분 동안 수행된 것일 수 있다. 구체적으로, 상기 로스팅은 100 내지 300℃, 100 내지 250℃, 100 내지 200℃, 100 내지 150℃, 150 내지 300℃, 150 내지 250℃, 150 내지 200℃, 200 내지 300℃, 160 내지 300℃ 또는 160 내지 250℃의 조건에서 수행된 것일 수 있다. 또한, 상기 로스팅은 5 내지 30 분, 5 내지 25 분, 5 내지 20 분, 5 내지 15 분, 5 내지 10 분, 7 내지 30 분, 7 내지 20 분, 또는 10 내지 30 분 동안 수행된 것일 수 있다. 이때, 로스팅 온도가 상기 범위 미만인 경우, 약콩의 향미가 유지되지 못하고, 근육 질환의 예방 또는 치료 효능이 저하되는 문제점이 있으며, 상기 범위를 초과하는 경우, 약콩의 쓴맛이 강해지는바, 소비자 선호도가 감소하는 문제점이 있다. 또한, 로스팅 시간이 상기 범위 미만인 경우, 식품조성물로 적용할 경우 맛의 안정성이 유지되지 못하는 문제점이 있으며, 상기 범위를 초과하는 경우, 약콩이 탄화되는 문제점이 있다. The medicinal beans may be pretreated before fermentation. Specifically, the weak beans may be pretreated by performing roasting or grinding. In one embodiment, when the pretreatment is roasting, the roasting may be performed for 5 to 30 minutes at a temperature condition of 100 to 300 ℃. Specifically, the roasting is 100 to 300 ℃, 100 to 250 ℃, 100 to 200 ℃, 100 to 150 ℃, 150 to 300 ℃, 150 to 250 ℃, 150 to 200 ℃, 200 to 300 ℃, 160 to 300 ℃ Or it may be carried out under the conditions of 160 to 250 ℃. In addition, the roasting may be performed for 5 to 30 minutes, 5 to 25 minutes, 5 to 20 minutes, 5 to 15 minutes, 5 to 10 minutes, 7 to 30 minutes, 7 to 20 minutes, or 10 to 30 minutes. have. At this time, when the roasting temperature is less than the above range, the flavor of the medicinal beans is not maintained, there is a problem that the efficacy of preventing or treating muscle diseases is lowered, and when the roasting temperature is exceeded, the bitter taste of the medicinal beans becomes stronger, consumer preference There is a decreasing problem. In addition, when the roasting time is less than the above range, there is a problem that the stability of the taste is not maintained when applied as a food composition, if the above range, there is a problem that the weak soybeans are carbonized.
상기 추출은 상기 균주로 발효된 약콩을 물, C1 내지 C4 저급알코올 또는 이들의 혼합물로 추출한 것일 수 있다. 예를 들어, 상기 약콩의 추출에 사용되는 저급 알코올은 에탄올 또는 메탄올인 것일 수 있다. 추출시 약콩을 세절한 후 물, 알코올 또는 이의 혼합물을 약콩 무게의 2배 내지 20배를 첨가하여 추출하는 것일 수 있다. 예를 들어, 3배 내지 10배를 첨가하여 추출하는 것일 수 있다. 추출온도는 30℃ 내지 100℃, 60℃ 내지 100℃. 30℃ 내지 90℃, 30℃ 내지 80℃, 60℃ 내지 90℃, 또는 60℃ 내지 80℃인 것일 수 있다. 추출시간은 1시간 내지 10시간, 2시간 내지 8시간, 2 내지 5시간, 3 내지 7시간 또는 4 내지 6시간인 것일 수 있다. 추출방법은 냉침, 초음파 추출 또는 환류 냉각 추출방법이 모두 이용 가능하다. 추출 횟수는 1회 내지 5회, 2회 내지 4회, 3 내지 5회 반복 추출하는 것일 수 있다.The extraction may be extracted from the fermented medicinal beans with water, C1 to C4 lower alcohol or a mixture thereof. For example, the lower alcohol used to extract the weak soybean may be ethanol or methanol. After extracting the weak soybeans during extraction may be to extract water, alcohol or a mixture thereof by adding 2 to 20 times the weight of the weak beans. For example, the extract may be added by adding 3 to 10 times. Extraction temperature is 30 ℃ to 100 ℃, 60 ℃ to 100 ℃. It may be 30 ℃ to 90 ℃, 30 ℃ to 80 ℃, 60 ℃ to 90 ℃, or 60 ℃ to 80 ℃. Extraction time may be 1 hour to 10 hours, 2 hours to 8 hours, 2 to 5 hours, 3 to 7 hours or 4 to 6 hours. As the extraction method, both cold needle, ultrasonic extraction or reflux cooling extraction method can be used. Extraction times may be one to five times, two to four times, three to five times repeated extraction.
일 구체예에서, 상기 발효물의 용량은 총 조성물에 대하여 1 내지 30㎍/mL의 농도로 포함되는 것일 수 있다. 상기 발효물의 용량은 예를 들어, 1 내지 30 ㎍/mL, 1 내지 25 ㎍/mL, 1 내지 20 ㎍/mL, 3 내지 30 ㎍/mL, 5 내지 25 ㎍/mL, 5 내지 20 ㎍/mL, 또는 10 내지 20 ㎍/mL의 농도로 포함된 것일 수 있다. 이때, 약콩 발효물이 상기 중량부 미만인 경우, 근육 분화가 저하되고 근육 단백질의 분해가 촉진되어, 근육 질환의 예방 또는 치료 효과를 발휘하기 어려운 문제점이 있고, 약콩 발효물이 상기 중량부를 초과하는 경우, 신체 내 독성 등의 문제점이 있을 수 있다.In one embodiment, the dose of the fermentation may be included at a concentration of 1 to 30 μg / mL relative to the total composition. The dose of the fermentation product is, for example, 1 to 30 µg / mL, 1 to 25 µg / mL, 1 to 20 µg / mL, 3 to 30 µg / mL, 5 to 25 µg / mL, 5 to 20 µg / mL Or, it may be included in a concentration of 10 to 20 μg / mL. At this time, if the fermented soybean is less than the weight part, the muscle differentiation is lowered and the decomposition of muscle protein is promoted, there is a problem that difficult to exert the prevention or treatment effect of muscle disease, if the soybean fermentation exceeds the weight part There may be problems such as toxicity in the body.
상기 조성물은 근육 질환의 예방 또는 치료에 이용될 수 있다. 상기 근육 질환을 예를 들어, 긴장감퇴증(atony), 근위축증(muscular atrophy), 근이영양증(muscular dystrophy), 근무력증, 악액질(cachexia), 경직성 척추 증후군(rigid spinesyndrome), 근위축성 측삭경화증(루게릭병, amyotrophic lateral sclerosis), 경직성 척추 증후군(rigid spinsesyndrome), 샤르코-마리-투스병(Charcot-Marie-Tooth disease) 또는 근감소증(sarcopenia)인 것일 수 있다. 일 구체예에서 상기 근감소증은 노인성 근감소증인 것일 수 있다. 구체적으로, 상기 발효물은 근육 분화 초기 및 후기 인자의 발현을 증가시킴으로써 노인성 근감소증의 예방 또는 치료에 이용될 수 있다. 또한, 상기 발효물은 근육 단백질 분화 인자의 발현을 감소시킴으로써 근육 질환의 예방 또는 치료에 이용될 수 있다. The composition can be used for the prevention or treatment of muscle diseases. The muscle diseases include, for example, atony, muscular atrophy, muscular dystrophy, myasthenia, cachexia, rigid spinesyndrome, amyotrophic lateral sclerosis (Lou Gehrig's disease, amyotrophic lateral sclerosis, rigid spinse syndrome, Charcot-Marie-Tooth disease, or sarcopenia. In one embodiment, the sarcopenia may be senile sarcopenia. Specifically, the fermented product may be used for the prevention or treatment of senile muscular dystrophy by increasing the expression of early and late muscle differentiation factors. In addition, the fermentation may be used for the prevention or treatment of muscle diseases by reducing the expression of muscle protein differentiation factor.
일 구체예에 따른 근육 질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물은 각각 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 현탁액, 에멀젼, 시럽, 에어로졸 등의 경구제 제형, 외용제, 좌제 및 멸균 주사용액의 형태로 제형화되어 사용할 수 있고, 제형화를 위하여 약학 조성물의 제조에 통상적으로 사용되는 적절한 담체, 부형제 또는 희석제를 포함할 수 있다.Pharmaceutical compositions for the prevention or treatment of muscle diseases according to one embodiment are oral formulations, such as powders, granules, tablets, capsules, suspensions, emulsions, syrups, aerosols, external preparations, suppositories, and sterile injectable solutions, respectively, according to conventional methods. It can be formulated and used in the form of and may include suitable carriers, excipients or diluents commonly used in the manufacture of pharmaceutical compositions for formulation.
상기 담체 또는, 부형제 또는 희석제로는 락토즈, 덱스트로즈, 수크로오스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리게이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로즈, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 및 광물유 등을 포함한 다양한 화합물 혹은 혼합물을 들 수 있다.The carrier or excipient or diluent may be lactose, dextrose, sucrose, sorbitol, mannitol, xylitol, erythritol, maltitol, starch, acacia rubber, alginate, gelatin, calcium phosphate, calcium silicide, cellulose, methyl cellulose, undetermined. And various compounds or mixtures including vaginal cellulose, polyvinyl pyrrolidone, water, methylhydroxybenzoate, propylhydroxybenzoate, talc, magnesium stearate, mineral oil and the like.
제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 중량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 제조할 수 있다.In the case of formulation, it may be prepared by using diluents or excipients such as fillers, weights, binders, wetting agents, disintegrating agents, and surfactants which are commonly used.
경구 투여를 위한 고형제제는 상기 약콩 발효물에 적어도 하나 이상의 부형제 예를 들면, 전분, 칼슘보네이트, 수크로스 또는 락토오스, 젤라틴 등을 섞어 제조할 수 있다. 또한 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스테아레이트, 탈크 같은 윤활제들도 사용할 수 있다.Solid preparations for oral administration may be prepared by mixing at least one excipient such as starch, calcium carbonate, sucrose or lactose, gelatin, and the like with fermented medicinal beans. In addition to simple excipients, lubricants such as magnesium stearate and talc may also be used.
경구를 위한 액상 제제로는 현탁액, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 해당되는데 흔히 사용하는 단순 희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등을 포함할 수 있다.Oral liquid preparations include suspensions, solvents, emulsions, and syrups, and may include various excipients, such as wetting agents, sweeteners, fragrances, and preservatives, in addition to commonly used simple diluents such as water and liquid paraffin. .
비경구 투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수용성제, 현탁제, 유제, 동결건조 제제, 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁제로는 프로필렌글리콜, 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등을 사용할 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈(tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세롤젤라틴 등을 사용할 수 있다.Formulations for parenteral administration include sterile aqueous solutions, non-aqueous solutions, suspensions, emulsions, lyophilized preparations, suppositories. As the non-aqueous solvent and suspending agent, propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oil such as olive oil, injectable ester such as ethyl oleate and the like can be used. As a base of suppositories, witepsol, macrogol, tween 61, cacao butter, laurin butter, glycerol gelatin and the like can be used.
일 구체예에 따른 근육 질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물의 바람직한 투여량은 환자의 상태, 체중, 질병의 정도, 약물형태, 투여경로 및 기간에 따라 다르지만, 당업자에 의해 적절하게 선택될 수 있다. 그러나, 바람직한 효과를 위해서는 1일 0.0001 내지 2,000 mg/kg으로, 바람직하게는 0.001 내지 2,000 mg/kg으로 투여할 수 있다. 투여는 하루에 한 번 투여할 수도 있고, 수회 나누어서 투여할 수도 있다. 다만, 상기 투여량에 의해서 본 발명의 범위를 한정하는 것은 아니다.The preferred dosage of the pharmaceutical composition for preventing or treating muscle diseases according to one embodiment depends on the condition, body weight, extent of disease, drug form, route of administration and duration of the patient, but may be appropriately selected by those skilled in the art. However, for the desired effect, it may be administered at 0.0001 to 2,000 mg / kg, preferably at 0.001 to 2,000 mg / kg. Administration may be administered once a day or may be divided several times. However, the scope of the present invention is not limited by the above dosage.
일 구체예에 따른 근육 질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물은 쥐, 생쥐, 가축, 인간 등의 포유 동물에 다양한 경로로 투여할 수 있다. 투여의 모든 방식은 예를 들면, 경구, 직장 또는 정맥, 근육, 피하, 자궁 내 경막 또는 뇌혈관내(intracerebroventricular) 주사에 의해서 투여할 수 있다.The pharmaceutical composition for preventing or treating muscle diseases according to one embodiment may be administered to mammals such as mice, mice, livestock, humans, etc. by various routes. All modes of administration can be administered, for example, by oral, rectal or intravenous, intramuscular, subcutaneous, intrauterine dural or intracerebroventricular injection.
다른 양상은 약콩에 비피도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis) LDTM 8102 (KCTC13392BP) 균주를 접종하여 발효시킨, 약콩 발효물을 유효성분으로 함유하는 근육 분화 촉진, 근육 재생 또는 근육 강화용 조성물을 제공한다. 상기 조성물의 구체적인 내용은 전술한 바와 같다. 일 구체예에서, 상기 조성물은 근육 양 증가 또는 근육 생성을 촉진하는 것일 수 있다. 상기 근육 분화 촉진, 근육 재생 또는 근육 강화 용도에 있어서, 근육의 성장은 섬유크기(fiber size)의 증가에 의해 및/또는 섬유수의 증가에 의해 일어날 수 있다. 또한, 근육 양의 증가는 신체 성분 중에서도 특히 근육의 성장을 향상시키는 것으로 육체적 운동 및 지구력 향상을 통해 근육량을 증가시킬 수 있고 근육 증가 효과를 가지는 물질을 체내에 투여하는 방식으로 근육량을 증가시킬 수 있다. 또한, 근육 재생은 근육 모세포로부터 새로운 근섬유가 형성되는 것일 수 있다. Another aspect is to promote muscle differentiation, muscle regeneration, containing the fermented medicinal bean as an active ingredient, inoculated and fermented with Bifidobacterium animalis subsp.Lactis LDTM 8102 (KCTC13392BP) strains in the medicinal beans Or it provides a composition for muscle strengthening. Specific contents of the composition are as described above. In one embodiment, the composition may be to increase muscle mass or promote muscle production. In such muscle differentiation promoting, muscle regeneration or muscle strengthening applications, muscle growth may occur by increasing fiber size and / or by increasing fiber count. In addition, the increase in muscle mass improves the growth of muscles, especially among the body components, which can increase muscle mass through physical exercise and endurance, and increase muscle mass by administering a substance having an effect of increasing muscles in the body. . Muscle regeneration may also be the formation of new muscle fibers from myoblasts.
다른 양상은 약콩에 비피도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis.) LDTM 8102 (KCTC13392BP) 균주를 접종하여 발효시킨, 약콩 발효물을 유효성분으로 함유하는 근 육 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물을 제공한다. 상기 조성물의 구체적인 내용은 전술한 바와 같다. Another aspect is the prevention of muscle disease containing the fermented medicinal bean as an active ingredient, inoculated and fermented with Bifidobacterium animalis subsp.Lactis. LDTM 8102 (KCTC13392BP) strains. Or it provides a food composition for improvement. Specific contents of the composition are as described above.
일 구체예에 따른 근육 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물에 있어서, 상기 약콩 발효물을 식품 조성물의 첨가물로 사용하는 경우 이를 그대로 첨가하거나 다른 식품 또는 식품성분과 함께 사용할 수 있고, 통상적인 방법에 따라 적절하게 사용할 수 있다. 유효 성분의 혼합양은 예방, 건강 또는 치료 등의 각 사용 목적에 따라 적합하게 결정할 수 있다.In the food composition for preventing or improving muscle diseases according to one embodiment, when using the fermented medicinal beans as an additive of the food composition, it may be added as it is or used with other foods or food ingredients, according to a conventional method It can be used properly. The mixed amount of the active ingredient can be appropriately determined depending on the purpose of use, such as prevention, health or treatment.
식품 조성물의 제형은 산제, 과립제, 환, 정제, 캡슐제의 형태뿐만 아니라 일반 식품 또는 음료의 형태 어느 것이나 가능하다.Formulations of food compositions may be in the form of powders, granules, pills, tablets, capsules, as well as in the form of general foods or beverages.
상기 식품의 종류에는 특별히 제한은 없고, 상기 물질을 첨가할 수 있는 식품의 예로는 육류, 소세지, 빵, 쵸콜렛, 캔디류, 스넥류, 과자류, 피자, 라면, 기타 면류, 껌류, 아이스크림류를 포함한 낙농제품, 각종 스프, 음료수, 차, 드링크제, 알콜 음료 및 비타민 복합제 등이 있으며, 통상적인 의미에서의 식품을 모두 포함할 수 있다.There is no restriction | limiting in particular in the kind of said food, The foodstuff which can add the said substance is a dairy product containing meat, sausage, bread, chocolate, candy, snacks, confectionery, pizza, ramen, other noodles, gum, ice cream, etc. , Various soups, beverages, tea, drinks, alcoholic beverages and vitamin complexes, etc., may include all of the food in the usual sense.
일반적으로, 식품 또는 음료의 제조시에 상기 약콩 발효물은 원료 100 중량부에 대하여 15 중량부 이하, 바람직하게는 10 중량부 이하의 양으로 첨가할 수 있다. 그러나, 건강 및 위생을 목적으로 하거나 또는 건강 조절을 목적으로 하는 장기간의 섭취의 경우에는 상기 양은 상기 범위 이하일 수 있으며, 또한 본 발명은 천연물로부터의 분획물을 이용하는 점에서 안전성 면에서 문제가 없으므로 상기 범위 이상의 양으로도 사용할 수 있다.In general, the fermented medicinal soybeans may be added in an amount of 15 parts by weight or less, preferably 10 parts by weight or less, based on 100 parts by weight of the raw material. However, in the case of long-term intake for health and hygiene or for health control, the amount may be below the above range, and the present invention has no problem in terms of safety in terms of using fractions from natural products. The above amount can also be used.
일 구체예에 따른 식품 조성물 중 음료는 통상의 음료와 같이 여러 가지 향미제 또는 천연 탄수화물 등을 추가 성분으로 함유할 수 있다. 상술한 천연 탄수화물은 포도당, 과당과 같은 모노사카라이드, 말토스, 슈크로스와 같은 디사카라이드 및 덱스트린, 사이클로덱스트린과 같은 폴리사카라이드, 자일리톨, 소르비톨, 에리트리톨 등의 당알콜일 수 있다. 감미제로서는 타우마틴, 스테비아 추출물과 같은 천연 감미제나, 사카린, 아스파르탐과 같은 합성 감미제 등을 사용할 수 있다. 상기 천연 탄수화물의 비율은 본 발명에 따른 음료 100 mL당 약 0.01 ~ 0.04 g, 바람직하게는 약 0.02 ~ 0.03 g일 수 있다.The beverage in the food composition according to one embodiment may contain various flavors or natural carbohydrates, etc. as additional ingredients, as in a conventional beverage. The natural carbohydrates described above may be monosaccharides such as glucose, fructose, disaccharides such as maltose, sucrose and polysaccharides such as dextrin, cyclodextrin, sugar alcohols such as xylitol, sorbitol, erythritol and the like. As the sweetener, natural sweeteners such as tautin and stevia extract, synthetic sweeteners such as saccharin and aspartame, and the like can be used. The ratio of the natural carbohydrate may be about 0.01 to 0.04 g, preferably about 0.02 to 0.03 g per 100 mL of the beverage according to the present invention.
상기 외에 일 구체예에 따른 근육 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물은 여러 가지 영양제, 비타민, 전해질, 풍미제, 착색제, 펙트산 및 그의 염, 알긴산 및 그의 염, 유기산, 보호성 콜로이드 증점제, pH 조절제, 안정화제, 방부제, 글리세린, 알콜, 탄산음료에 사용되는 탄산화제를 함유할 수 있다. 그 밖에 본 발명의 수면 개선용 조성물은 천연 과일쥬스, 과일쥬스 음료 및 야채 음료의 제조를 위한 과육을 함유할 수 있다. 이러한 성분은 독립적으로 또는 혼합하여 사용할 수 있다. 이러한 첨가제의 비율은 제한되지 않으나 상기 식품 조성물 100 중량부 대비 0.01 ~ 0.1 중량부의 범위에서 선택되는 것이 일반적이다.In addition to the above, a food composition for preventing or improving muscle diseases according to one embodiment includes various nutrients, vitamins, electrolytes, flavors, coloring agents, pectic acid and salts thereof, alginic acid and salts thereof, organic acids, protective colloidal thickeners, and pH adjusting agents. And stabilizers, preservatives, glycerin, alcohols, carbonation agents used in carbonated drinks. In addition, the composition for improving sleep of the present invention may contain fruit flesh for the production of natural fruit juice, fruit juice beverage and vegetable beverage. These components can be used independently or in combination. The ratio of such additives is not limited, but is generally selected from the range of 0.01 to 0.1 parts by weight relative to 100 parts by weight of the food composition.
다른 양상은 약콩에 비피도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis) LDTM 8102 (KCTC13392BP) 균주를 접종하여 발효시키는 단계를 포함하는 약콩 발효물을 제조하는 방법을 제공한다. 일 구체예에서, 상기 방법은 발효시키는 단계 전, 약콩을 100 내지 300℃에서 5 내지 30분 동안 로스팅하는 단계를 포함할 수 있다. 상기 로스팅 온도 및 시간에 대한 구체적인 내용은 전술한 바와 같다. 상기 제조된 약콩 발효물은 물, C1 내지 C4 저급알코올 또는 이들의 혼합물로 추출하여 추출물을 제조하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 상기 추출물을 제조하는 단계에 대한 구체적인 내용은 전술한 바와 같다. Another aspect provides a method for preparing a medicinal soybean fermentation comprising inoculating and fermenting a Bifidobacterium animalis subsp . Lactis LDTM 8102 (KCTC13392BP) strain to the medicinal beans. In one embodiment, the method may include roasting the soybeans at 100 to 300 ° C. for 5 to 30 minutes before the step of fermentation. Details of the roasting temperature and time are as described above. The prepared soybean fermented product may further include extracting with water, C1 to C4 lower alcohol, or a mixture thereof to prepare an extract. Details of the step of preparing the extract is as described above.
상기한 바와 같이, 본 발명에 따른 조성물은 영유아, 구체적으로 한국인의 영유아로부터 유래된 비피도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis) LDTM 8102 (KCTC13392BP) 균주로 발효시킨, 약콩의 발효물을 포함하는 바 발효 단계를 거치지 않은 약콩 발효물과 비교하여 근육세포에서의 근육분화를 촉진시키고 근육 단백질의 분해를 억제하는 것을 확인하였다. 따라서, 상기 발효물을 포함하는 조성물은 인체의 근육 분화를 촉진하고 근 감소를 억제함으로써 근육 질환의 예방 또는 치료에 이용될 수 있다.As described above, the composition according to the present invention, fermented with infants, specifically Bifidobacterium animalis subsp.Lactis LDTM 8102 (KCTC13392BP) strain derived from infants of Koreans Compared to the fermented soybeans, which did not undergo the fermentation step, it was confirmed that it promotes muscle differentiation in muscle cells and inhibits degradation of muscle proteins. Therefore, the composition containing the fermentation may be used for the prevention or treatment of muscle diseases by promoting muscle differentiation of the human body and inhibiting muscle reduction.
일 양상에 따른 조성물은 근육세포에서 근육분화를 촉진하고 근육 단백질의 분해를 억제함으로써 근육 질환의 예방 또는 치료에 이용될 수 있다. 또한, 근육 분화, 근육 재생, 근육량 증가를 통해 근력 강화 효과를 나타낼 수 있는바 근육 생성 촉진 또는 근 기능 개선에 이용될 수 있다. 또한, 상기 조성물은 약콩을 포함하고 있어 인체에 무해하며 정상세포에 부작용을 유발하지 않아 장기간 사용하는데 인체에 무리가 없다는 이점이 있다. The composition according to one aspect may be used for the prevention or treatment of muscle diseases by promoting muscle differentiation in muscle cells and inhibiting the degradation of muscle proteins. In addition, muscle differentiation, muscle regeneration, muscle mass gain through the muscle strengthening effect can be used to promote muscle production or improve muscle function. In addition, the composition contains a weak soybean is harmless to the human body does not cause adverse effects on normal cells has the advantage that there is no harm to the human body for long-term use.
도 1a는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서 근육분화 초기 인자의 발현여부를 확인한 사진이다.
도 1b는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서 발현되는 근육분화 초기인자의 발현량을 정량화한 그래프이다.
도 2a는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서 근육분화 후기 인자의 발현여부를 확인한 사진이다.
도 2b는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서 발현되는 근육분화 후기인자의 발현량을 정량화한 그래프이다.
도 3a는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서의 근육분화 촉진 효능을 IF 염색을 통해 확인한 사진이다.
도 3b는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서의 전체 핵 수 대비 근관세포 내 핵의 수를 정량화(fusion index)한 그래프이다.
도 4a는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서의 근육 단백질 분해 인자의 발현을 확인한 사진이다.
도 4b는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서의 MuRF-1의 발현을 정량화한 그래프이다.
도 4c는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서의 Atrogin-1 발현을 정량화한 그래프이다.
도 5a는 실시예 1을 처리한 마우스 근육세포에서의 myhc 발현을 웨스턴 블랏으로 확인한 사진이다.
도 5b는 실시예 1을 처리한 마우스 근육세포에서의 myhc 발현을 정량화한 그래프이다.
도 6a는 실시예 2를 처리한 마우스 근육세포에서의 myhc 발현을 웨스턴 블랏으로 확인한 사진이다.
도 6b는 실시예 2를 처리한 마우스 근육세포에서의 myhc 발현을 정량화한 그래프이다.
도 7a는 노화를 유도하지 않은 마우스의 근육 세포에 실시예 1을 처리한 후 myhc 발현을 웨스턴 블랏으로 확인한 사진이다.
도 7b는 노화를 유도하지 않은 마우스의 근육 세포에 실시예 1을 처리한 후 myhc 발현을 정량화한 그래프이다.Figure 1a is a photograph confirming the expression of the early muscle differentiation factor in the mouse muscle cells treated in Example 1 and Comparative Examples 1 and 2.
1B is a graph quantifying the expression level of muscle differentiation initial factors expressed in mouse muscle cells treated with Example 1 and Comparative Examples 1-2.
Figure 2a is a photograph confirming the expression of late muscle differentiation factor in the mouse muscle cells treated in Example 1 and Comparative Examples 1-2.
Figure 2b is a graph quantifying the expression level of late muscle differentiation factor expressed in mouse muscle cells treated in Example 1 and Comparative Examples 1-2.
Figure 3a is a photograph confirming the muscle differentiation promoting efficacy in the mouse muscle cells treated in Example 1 and Comparative Examples 1 to 2 through IF staining.
Figure 3b is a graph quantifying the number of nuclei in the root canal cells compared to the total number of nuclei in the mouse muscle cells treated in Example 1 and Comparative Examples 1 and 2 (fusion index).
Figure 4a is a photograph confirming the expression of muscle protein degradation factors in the mouse muscle cells treated in Example 1 and Comparative Examples 1-2.
Figure 4b is a graph quantifying the expression of MuRF-1 in mouse muscle cells treated with Example 1 and Comparative Examples 1 and 2.
Figure 4c is a graph quantifying the expression of Atrogin-1 in mouse muscle cells treated with Example 1 and Comparative Examples 1-2.
5A is a photograph confirming myhc expression in mouse muscle cells treated with Example 1 by Western blot.
5B is a graph quantifying myhc expression in mouse muscle cells treated with Example 1. FIG.
Figure 6a is a photograph confirming myhc expression in mouse muscle cells treated in Example 2 by Western blot.
6B is a graph quantifying myhc expression in mouse muscle cells treated with Example 2. FIG.
Figure 7a is a photograph confirming myhc expression by Western blot after the treatment of Example 1 to the muscle cells of the mice that did not induce aging.
Figure 7b is a graph quantifying myhc expression after treatment of Example 1 to the muscle cells of mice not induced aging.
이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예를 제시한다. 그러나 하기의 실시예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐, 하기 실시예에 의해 본 발명의 내용이 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, preferred examples are provided to aid in understanding the present invention. However, the following examples are merely provided to more easily understand the present invention, and the contents of the present invention are not limited by the following examples.
[실시예]EXAMPLE
실시예 1. 약콩 발효물의 제조Example 1 Preparation of Medicinal Bean Fermentation
한국인 유아의 분변에서 분리한 비티도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis.) LDTM 8102(수탁번호: KCTC13392BP)를 이용하여 약콩 발효물을 제조하였다. 구체적으로, 글리세롤과 혼합하여 -80℃에서 냉동 보관 중인 비티도박테리움 애니멀리스 서브스페시스 락티스(Bifidobacterium animalis subsp. Lactis.) LDTM 8102(수탁번호: KCTC13392BP) 보존액을 MRSC 배지에 접종하여 37℃, 혐기 조건에서 20 내지 24시간 동안 정치하는 전 배양 과정을 수행하였다. 이후, 50 g/L의 약콩 분말에 전 배양 과정을 수행하여 활성을 높인 상기 균주 배양액을 접종한 후, 37℃로 유지된 혐기 조건에서 진탕배양 하였다. 발효 과정에서 수집된 시료들을 열처리 공정을 거쳐 동결건조 하였고, 상기 시료를 0.5 g 당 10㎖의 비율로 0, 5, 10, 30, 50, 및 70% 발효주정(식물성 알코올)을 각각 첨가하여 75℃에서 2시간 동안 중탕한 후, 각각 추출하였다. 이후, 상온에서 1시간 정도 방치하여 식힌 뒤, 5000 rpm으로 10분 간 원심분리하여 상층액을 분리하였다. 분리된 상층액을 0.2 ㎛ syrine filter를 이용하여 여과하고, 40℃ 감압농축기에서 주정을 모두 제거한 후 동결건조하여 분말화 하였다. 이후, 상기 동결건조된 분말을 50% DMSO에 용해하여 약콩 발효 물로 사용하였다. A medicinal soybean fermented product was prepared using Bifidobacterium animalis subsp. Lactis. LDTM 8102 (Accession No .: KCTC13392BP) isolated from feces of Korean infants. Specifically, Bifidobacterium animalis subsp. Lactis. LDTM 8102 (Accession No .: KCTC13392BP), which is mixed with glycerol and frozen at −80 ° C., is inoculated onto MRSC medium at 37 ° C. , The pre-culture process was performed for 20 to 24 hours in anaerobic conditions. Thereafter, 50 g / L of weak soybean powder was inoculated with the above strain culture medium, which was subjected to a pre-culture process to increase activity, and then cultured under anaerobic conditions maintained at 37 ° C. The samples collected during the fermentation were lyophilized by heat treatment, and the samples were added with 0, 5, 10, 30, 50, and 70% fermented alcohol (vegetable alcohol) at a rate of 10 ml per 0.5 g, respectively. After bathing for 2 hours at < RTI ID = 0.0 > Then, the mixture was allowed to stand at room temperature for 1 hour, cooled, and centrifuged at 5000 rpm for 10 minutes to separate the supernatant. The separated supernatant was filtered using a 0.2 μm syrine filter, and all the spirits were removed in a 40 ° C. vacuum condenser, and then lyophilized to powder. Thereafter, the lyophilized powder was dissolved in 50% DMSO and used as a fermented soybean.
실시예 2. 전처리를 거친 약콩 발효물의 제조Example 2. Preparation of Fermented Medicinal Beans
160 내지 230℃에서 15 내지 25분 로스팅한 50 내지 100 g/L의 약콩 분말에 전 배양 과정을 수행하여 활성을 높인 상기 균주 배양액을 접종한 후, 37℃로 유지된 혐기 조건에서 진탕배양 하였다는 점을 제외하고는, 상기 실시예 1과 동일한 방법으로 약콩 발효물을 제조하였다. After inoculation of the strain culture medium with increased activity by performing a pre-culture process to 50-100 g / L medicinal soybean powder roasted at 160 to 230 ° C. for 15 to 25 minutes, shaking culture was performed under anaerobic conditions maintained at 37 ° C. Except that, the fermented medicinal beans were prepared in the same manner as in Example 1.
[비교예][Comparative Example]
비교예 1. 약콩 발효물의 제조 Comparative Example 1. Preparation of Fermented Medicinal Soybeans
락토바실러스 람노서스 GG(Lactobacillus rhamnosus GG, LGG) 유산균을 이용하여 약콩을 발효하였다는 점을 제외하고는, 상기 실시예 1과 동일한 방법으로 약콩 발효물을 제조하였다.A medicinal soybean fermented product was prepared in the same manner as in Example 1, except that fermented medicinal soybeans using Lactobacillus rhamnosus GG (LGG) lactic acid bacteria.
비교예 2. 약콩 발효물의 제조Comparative Example 2. Preparation of Fermented Medicinal Soybeans
비피도박테리움 애니멀리스 락티스 (Bifidobacterium animalis subsp. Lactis) KCTC 5854 유산균을 이용하여 약콩을 발효하였다는 점을 제외하고는, 상기 실시예 1과 동일한 방법으로 약콩 발효물을 제조하였다. Bifidobacterium animalis subsp . Lactis ( Bifidobacterium animalis subsp . Lactis) A fermented medicinal soybean was prepared in the same manner as in Example 1, except that fermented medicinal soybean using KCTC 5854 lactic acid bacteria.
[실험예]Experimental Example
약콩 발효물의 근 감소 완화 효능 확인Confirmation of Root Reduction Efficacy of Medicinal Soybean Fermentation
상기 실시예 1 및 비교예 1~2의 노인성 근 감소 완화 효능을 확인하기 위하여, 근육분화와 관련된 바이오마커인 myoD 및 myhc의 발현량을 웨스턴 블랏 분석을 수행하였다. 구체적으로, 마우스 근육세포 C2C12를 6㎝ dish에 분주(seeding)한 후, 10% 소태아혈청(Fetal Bovine Serum)과 1% 안티바이오틱-안티마이코틱(Antibiotic-antimycotic)이 첨가된 DMEM(Dulbecco-modified Eagle medium)을 사용하여 37℃, 10% CO2 배양기(Forma Scientific Co., Marjetta, OH, USA)에서 72시간 동안 배양하였다. 이후, 2% 말혈청(Horse Serum)과 1% 안티바이오틱-안티마이코틱(Antibiotic-antimycotic)이 첨가된 DMEM(Dulbecco-modified Eagle medium)로 배지를 갈아주면서 TGF-beta로 노화를 유도함과 동시에 상기 실시예 1 및 비교예 1~2의 발효물을 각각 처리해 주어 약콩 발효물이 TGF-beta로 인해 노화된 근육세포를 회복시키는지 여부를 확인하였다. 바이오마커마다 발현 시기가 다르기 때문에 초기 분화 인자인 myoD 발현량 확인 시에는 세포에 약콩 발효물을 처리 한 후 24시간 후, 후기 분화 인자인 myhc 발현량 확인 시에는 96시간 이후 RIPA 버퍼를 이용해 단백질을 긁어내었다. 이후, 13000g 조건으로 10분 동안 원심분리 하여 순수 단백질을 추출한 후 protein assay reagent kits (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA)를 사용하여 단백질을 정량 하였다. 추출한 단백질을 SDS 폴리 아크릴아마이드 겔을 이용하여 전기영동 한 후 니트로셀룰로오스 블롯팅 멤브레인(GE Healthcare Life Science, Amersham, UK)에 트랜스퍼 하였다. 이후, 멤브레인을 5% 스킴밀크로 1시간 블락킹 한 뒤 4℃ 냉장고에서 16시간 동안 1:1000으로 희석한 myoD 및 myhc의 1차 항체를 처리하였다. 1차 항체를 TBS-T 버퍼로 10분 동안 3번 반복하여 세척한 후, 5% 스킴밀크에 1:5000 농도로 희석시킨 2차 항체를 1시간 동안 처리하였다. 이후, 2차 항체를 TBS-T 버퍼로 8분 동안 5번 반복하여 세척하였다. 이후, ECL detection kit를 사용하여 근육분화 바이오마커 단백질의 발광 정도를 암실에서 확인하고 디벨로핑 버퍼를 이용하여 단백질 밴드를 필름에 현상하였다. Image J software (National Institutes of Health, Bethesda, MD, USA)을 이용하여 단백질의 발현 정도를 정량하였다. In order to confirm the sensitizing effect of reducing senile muscles of Example 1 and Comparative Examples 1 and 2, Western blot analysis was performed on the expression levels of myoD and myhc, which are biomarkers related to muscle differentiation. Specifically, after seeding mouse muscle cells C2C12 in a 6 cm dish, DMEM (Dulbecco) added with 10% Fetal Bovine Serum and 1% Antibiotic-antimycotic -modified Eagle medium) was incubated for 72 hours in a 37 ℃, 10% CO 2 incubator (Forma Scientific Co., Marjetta, OH, USA). Subsequently, while incubating the medium with DMEM (Dulbecco-modified Eagle medium) containing 2% Horse Serum and 1% Antibiotic-antimycotic, inducing aging with TGF-beta, The fermented products of Example 1 and Comparative Examples 1 and 2 were treated, respectively, to determine whether the medicinal soybean fermented product recovered the aged muscle cells due to TGF-beta. Since different biomarkers have different expression timings, the initial differentiation factor myoD expression level was identified 24 hours after the fermentation of the soybean fermented cells, and the late differentiation factor myhc expression level was 96 hours later using RIPA buffer. Scraped off Then, the protein was quantified using protein assay reagent kits (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA) after centrifugation at 13000g for 10 minutes to extract pure protein. The extracted protein was electrophoresed using SDS polyacrylamide gel and then transferred to nitrocellulose blotting membrane (GE Healthcare Life Science, Amersham, UK). Thereafter, the membrane was blocked with 5% skim milk for 1 hour and then treated with primary antibodies of myoD and myhc diluted 1: 1000 for 16 hours in a 4 ° C. refrigerator. After washing the primary antibody three times for 10 minutes with TBS-T buffer, the secondary antibody diluted 1: 5000 concentration in 5% skim milk was treated for 1 hour. The secondary antibody was then washed 5 times for 8 min with TBS-T buffer. Thereafter, the degree of luminescence of the myogenic biomarker protein was confirmed in the dark room using an ECL detection kit, and a protein band was developed on the film using a develping buffer. The expression level of the protein was quantified using Image J software (National Institutes of Health, Bethesda, MD, USA).
도 1a는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서 근육분화 초기 인자의 발현여부를 확인한 사진이다. Figure 1a is a photograph confirming the expression of the early muscle differentiation factor in the mouse muscle cells treated in Example 1 and Comparative Examples 1 and 2.
도 1b는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서 발현되는 근육분화 초기인자의 발현량을 정량화한 그래프이다. 1B is a graph quantifying the expression level of muscle differentiation initial factors expressed in mouse muscle cells treated with Example 1 and Comparative Examples 1-2.
도 2a는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서 근육분화 후기 인자의 발현여부를 확인한 사진이다.Figure 2a is a photograph confirming the expression of late muscle differentiation factor in the mouse muscle cells treated in Example 1 and Comparative Examples 1-2.
도 2b는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서 발현되는 근육분화 후기인자의 발현량을 정량화한 그래프이다.Figure 2b is a graph quantifying the expression level of late muscle differentiation factor expressed in mouse muscle cells treated in Example 1 and Comparative Examples 1-2.
도 1a 및 도 1b에 나타난 바와 같이, 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서와 비교하여 실시예 1을 처리한 마우스 근육세포에서 근육분화 초기인자인 myoD의 발현량이 높은 것을 확인할 수 있었다. 또한, 도 2a 및 2b에 나타난 바와 같이, 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서와 비교하여 실시예 1을 처리한 마우스 근육세포에서 근육분화 후기인자인 myhc의 발현량이 높은 것을 확인할 수 있었다. 즉, 일 양상에 따른 약콩 발효물은 근육분화의 초기뿐만 아니라 후기에서도 근육분화를 촉진하는바, 노인성 근감소증의 예방 또는 치료에 이용될 수 있다. As shown in FIGS. 1A and 1B, it was confirmed that the expression level of myoD, which is an early differentiation factor, was higher in the mouse muscle cells treated with Example 1 than in the mouse muscle cells treated with Comparative Examples 1-2. 2A and 2B, it was confirmed that the expression level of myhc, which is a late muscle differentiation factor, was higher in the mouse muscle cells treated with Example 1 than in the mouse muscle cells treated with Comparative Examples 1-2. . That is, the weak soybean fermentation product according to one aspect promotes muscle differentiation not only in the early stages of muscle differentiation but also in the late stage, and may be used for the prevention or treatment of senile myotropia.
약콩 발효물의 근육분화 촉진 효능 확인Confirmation of the effect of promoting the differentiation of medicinal soybeans
상기 실시예 1 및 비교예 1~2의 근육분화 촉진 효능을 확인하기 위하여, 면역형광염색법을 수행하였다. 구체적으로, 마우스 근육세포 C2C12를 8 well chamber slide(Thermo Scientific)에 분주(seeding)한 후, 10% 소태아혈청(Fetal Bovine Serum)과 1% 안티바이오틱-안티마이코틱(Antibiotic-antimycotic)이 첨가된 DMEM(Dulbecco-modified Eagle medium)을 사용하여 37℃, 10% CO2 배양기(Forma Scientific Co., Marjetta, OH, USA)에서 72 시간 동안 배양하였다. 이후, 2% 말 혈청(Horse Serum)과 1 % 안티바이오틱-안티마이코틱(Antibiotic-antimycotic)이 첨가된 DMEM(Dulbecco-modified Eagle medium)로 배지를 갈아주면서 TGF-beta로 노화를 유도함과 동시에 상기 실시예 1 및 비교예 1~2의 발효물을 각각 처리하여 약콩 발효물이 TGF-beta로 인해 노화된 근육세포를 회복시키는지 여부를 확인하였다. 96시간 동안 TGF-beta와 약콩 발효물이 포함된 2% 말 혈청(Horse Serum)과 1% 안티바이오틱-안티마이코틱(Antibiotic-antimycotic)이 첨가된 DMEM(Dulbecco-modified Eagle medium)로 배지에서 배양한 후, 배지를 석션(suction) 하고 PBS로 세척한 뒤 4% 포름알데히드로 20분간 고정하였다. 이후, 세포 내에 염색약이 잘 들어가게 하기 위해서 0.2 % Triton X 100으로 10분간 세포 투과 작업을 하였다. PBS로 세척한 후, 20 % 염소 혈청(normal goat serum)으로 1시간 동안 블락킹 하였다. 이후, myhc 1차 항체를 처리하고 16시간 동안 4℃ 냉장고에서 보관하였다. 이후, 2차 항체를 처리하고 DAPI로 핵을 염색한 뒤 confocal microscope로 근관세포 내의 myhc 단백질과 핵을 확인하였다. 하기 수학식 1에 따라 마우스 근아세포의 근관세포로의 분화를 확인하였다. In order to confirm the effect of promoting muscle differentiation of Example 1 and Comparative Examples 1 and 2, immunofluorescence staining was performed. Specifically, after seeding mouse muscle cells C2C12 on 8 well chamber slides (Thermo Scientific), 10% Fetal Bovine Serum and 1% Antibiotic-antimycotic Incubated for 72 hours in a 37 ° C., 10% CO 2 incubator (Forma Scientific Co., Marjetta, OH, USA) using the added Dulbecco-modified Eagle medium (DMEM). Subsequently, while incubating the medium with DMEM (Dulbecco-modified Eagle medium) containing 2% Horse Serum and 1% Antibiotic-antimycotic, inducing aging with TGF-beta, The fermented products of Example 1 and Comparative Examples 1 and 2, respectively, were treated to determine whether the medicinal soybean fermented product recovered the aged muscle cells due to TGF-beta. For 96 hours in medium with DMEM (Dulbecco-modified Eagle medium) with 2% Horse Serum and 1% Antibiotic-antimycotic containing TGF-beta and medicinal soybean ferment. After incubation, the medium was suctioned, washed with PBS, and fixed for 4 minutes with 4% formaldehyde. Afterwards, the cells were penetrated with 0.2
[수학식 1][Equation 1]
Fusion Index= 근관세포 내의 핵 수/근육세포 전체 핵의 수 Fusion Index = number of nuclei in myotubes / total nucleus of muscle cells
도 3a는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서의 근육분화 촉진 효능을 IF 염색을 통해 확인한 사진이다. Figure 3a is a photograph confirming the muscle differentiation promoting efficacy in the mouse muscle cells treated in Example 1 and Comparative Examples 1 to 2 through IF staining.
도 3b는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서의 전체 핵 수 대비 근관세포 내 핵의 수를 정량화(fusion index)한 그래프이다. Figure 3b is a graph quantifying the number of nuclei in the root canal cells compared to the total number of nuclei in the mouse muscle cells treated in Example 1 and Comparative Examples 1 and 2 (fusion index).
도 3a에 나타난 바와 같이, TGF-beta로 노화를 유도하지 않은 대조군에 비해 TGF-beta로 노화를 유도한 비교예 1~2에서 myhc의 발현이 줄어들었다. 반면, 실시예 1을 처리할 경우 myhc의 발현이 증가함을 확인하였다. 또한, 근관세포 내 핵의 수가 증가한 것으로 보아 근육세포 분화가 증가되었음을 알 수 있었다. . 또한, 도 3b에 나타난 바와 같이, 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서와 비교하여 실시예 1을 처리한 마우스 근육세포에서 전체 핵 수 대비 근관세포 내 핵의 수가 높은 것을 확인할 수 있었다. 즉, 일 양상에 따른 조성물은 근관세포 형성을 촉진함으로써 근육세포의 분화를 촉진시킬 수 있다. As shown in Figure 3a, the expression of myhc was reduced in Comparative Examples 1 to 2 induced aging with TGF-beta compared to the control group did not induce aging with TGF-beta. On the other hand, when Example 1 was treated it was confirmed that the expression of myhc increased. In addition, the increase in the number of nuclei in the root canal cells was found to increase muscle cell differentiation. . In addition, as shown in Figure 3b, it was confirmed that the number of nuclei in the root canal cells compared to the total number of nuclei in the mouse muscle cells treated with Example 1 compared to the mouse muscle cells treated with Comparative Examples 1-2. That is, the composition according to one aspect may promote differentiation of muscle cells by promoting muscle canal cell formation.
약콩 발효물의 근육 단백질 분해 관련 인자의 발현 확인Expression of Muscle Protein Degradation Related Factors in Medicinal Soybean Fermentation
근육 단백질 분해 효소 복합체 및 유비퀴틴 효소의 증가는 근감소증과 밀접한 연관이 있는바, 상기 실시예 1 및 비교예 1~2의 근육 단백질 분해 관련 인자의 발현 여부를 웨스턴 블랏을 통해 확인하였다. 구체적으로, 마우스 근원 세포를 96 시간 동안 분화시켜 근섬유다발을 형성하게 한 뒤, TGFb-beta로 노화유도 함과 동시에 실시예 1 및 비교예 1~2의 발효물을 처리 하였다. 24 시간 후, RIPA 버퍼를 이용해 단백질을 긁어내어 13000 x g 조건으로 10분 동안 원심분리 하여 순수 단백질을 추출하였다. 이후, protein assay reagent kits (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA)를 사용하여 단백질을 정량하고 추출한 단백질을 SDS 폴리 아크릴아마이드 겔을 이용하여 전기영동한 후 니트로셀룰로오스 블롯팅 멤브레인(GE Healthcare Life Science, Amersham, UK)에 트랜스퍼 하였다. 멤브레인을 5% 스킴밀크로 1시간 블락킹 한 뒤, 1차 항체로써 근육 단백질 분해 효소 복합체 및 유비퀴틴 효소인 Murf-1, Atrogin-1을 1:1000 희석하여 4℃ 냉장고에서 16시간 동안 처리하였다. TBS-T 버퍼로 10분 동안 1차 항체를 3번 반복하여 세척한 뒤, 5% 스킴밀크에 1:5000 농도로 희석시킨 2차 항체를 1시간 동안 처리하였다. 이후, TBS-T 버퍼로 8분 동안 5번 반복하여 2차 항체를 세척 하였다. 이후, ECL detection kit를 사용하여 근육 단백질 분해 효소 복합체 및 유비퀴틴 효소의 발광 정도를 암실에서 확인하고 디벨로핑 버퍼를 이용하여 단백질 밴드를 필름에 현상하였다. Image J software (National Institutes of Health, Bethesda, MD, USA)을 이용하여 단백질의 발현 정도를 정량 하였다. The increase in muscle protease complex and ubiquitin enzyme is closely related to myopathy, and it was confirmed by Western blot whether the expression of muscle protein degradation-related factors of Example 1 and Comparative Examples 1 and 2 was expressed. Specifically, the mouse myocytes were differentiated for 96 hours to form a myofibril bundle, and then treated with fermentations of Example 1 and Comparative Examples 1 and 2 while inducing aging with TGFb-beta. After 24 hours, proteins were scraped off using RIPA buffer and centrifuged at 13000 x g for 10 minutes to extract pure protein. Subsequently, the protein was assayed using protein assay reagent kits (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA), and the extracted protein was electrophoresed using SDS polyacrylamide gel, followed by nitrocellulose blotting membrane (GE Healthcare Life Science). , Amersham, UK). After blocking the membrane with 5% skim milk for 1 hour, muscle proteinase complex and ubiquitin enzymes Murf-1 and Atrogin-1 were diluted 1: 1000 as the primary antibody and treated for 16 hours in a 4 ° C. refrigerator. After washing the primary antibody three times for 10 minutes with TBS-T buffer, the secondary antibody diluted 1: 5000 in 5% skim milk was treated for 1 hour. Then, the secondary antibody was washed by repeating 5 times for 8 minutes with TBS-T buffer. Then, the degree of luminescence of the muscle proteinase complex and ubiquitin enzyme was confirmed in the dark room using the ECL detection kit, and the protein band was developed on the film using the develping buffer. The expression level of the protein was quantified using Image J software (National Institutes of Health, Bethesda, MD, USA).
도 4a는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서의 근육 단백질 분해 인자의 발현을 확인한 사진이다. Figure 4a is a photograph confirming the expression of muscle protein degradation factors in the mouse muscle cells treated in Example 1 and Comparative Examples 1-2.
도 4b는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서의 MuRF-1의 발현을 정량화한 그래프이다. Figure 4b is a graph quantifying the expression of MuRF-1 in mouse muscle cells treated with Example 1 and Comparative Examples 1 and 2.
도 4c는 실시예 1 및 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서의 Atrogin-1 발현을 정량화한 그래프이다. Figure 4c is a graph quantifying the expression of Atrogin-1 in mouse muscle cells treated with Example 1 and Comparative Examples 1-2.
도 4a 내지 4c에 나타난 바와 같이, 비교예 1~2를 처리한 마우스 근육세포에서와 비교하여 실시예 1을 처리한 마우스 근육세포에서 근육 단백질 분해 인자(MURF-1, Atrogin-1)의 발현량이 낮은 것을 확인할 수 있었다. 즉, 일 양상에 따른 약콩 발효물은 근육 단백질의 분해를 억제함으로써 근감소증의 예방 또는 치료에 이용될 수 있다. As shown in Figures 4a to 4c, the expression levels of muscle protein degrading factors (MURF-1, Atrogin-1) in the mouse muscle cells treated with Example 1 compared to the mouse muscle cells treated with Comparative Examples 1 and 2 It was confirmed that the low. That is, the weak soybean fermentation product according to one aspect may be used for preventing or treating myotropia by inhibiting the degradation of muscle protein.
전처리에 따른 근육 단백질 분해 관련 인자의 발현 확인Expression of Muscle Protein Degradation Related Factors after Pretreatment
전처리된 약콩 발효물의 노화된 근육세포에 대한 회복 효과를 확인하기 위하여 전처리를 하지 않은 실시예 1과 전처리를 수행한 실시예 2에서의 myhc 발현양을 웨스턴 블랏으로 분석하였다. 구체적으로, 마우스 근육세포 C2C12를 6㎝ dish에 분주(seeding)한 후, 10% 소태아혈청(Fetal Bovine Serum)과 1% 안티바이오틱-안티마이코틱(Antibiotic-antimycotic)이 첨가된 DMEM(Dulbecco-modified Eagle medium)을 사용하여 37℃, 10% CO2 배양기(Forma Scientific Co., Marjetta, OH, USA)에서 72시간 동안 배양하였다. 이후, 2% 말혈청(Horse Serum)과 1% 안티바이오틱-안티마이코틱(Antibiotic-antimycotic)이 첨가된 DMEM(Dulbecco-modified Eagle medium)로 배지를 갈아주면서 TGF-beta로 노화를 유도함과 동시에 실시예 1과 실시예 2를 각각 (용량) 씩 처리하였다. 96시간 이후 RIPA 버퍼를 이용해 단백질을 긁어내고 13000g 조건으로 10분 동안 원심분리 하여 순수 단백질을 추출한 후 protein assay reagent kits (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA)를 사용하여 단백질을 정량 하였다.In order to confirm the recovery effect on the aged muscle cells of the pretreated medicinal soybean fermentation, the amount of myhc expression in Example 1 without pretreatment and Example 2 with pretreatment was analyzed by Western blot. Specifically, after seeding mouse muscle cells C2C12 in a 6 cm dish, DMEM (Dulbecco) added with 10% Fetal Bovine Serum and 1% Antibiotic-antimycotic -modified Eagle medium) was incubated for 72 hours in a 37 ℃, 10% CO 2 incubator (Forma Scientific Co., Marjetta, OH, USA). Subsequently, while incubating the medium with DMEM (Dulbecco-modified Eagle medium) containing 2% Horse Serum and 1% Antibiotic-antimycotic, inducing aging with TGF-beta, Example 1 and Example 2 were each treated with (capacity). After 96 hours, the protein was scraped off using RIPA buffer, centrifuged at 13000g for 10 minutes to extract pure protein, and the protein was quantified using protein assay reagent kits (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA).
도 5a는 실시예 1을 처리한 마우스 근육세포에서의 myhc 발현을 웨스턴 블랏으로 확인한 사진이고, 도 5b는 상기 myhc의 발현을 정량화한 그래프이다. Figure 5a is a photograph confirming myhc expression in mouse muscle cells treated in Example 1 by Western blot, Figure 5b is a graph quantifying the expression of the myhc.
도 6a는 실시예 2를 처리한 마우스 근육세포에서의 myhc 발현을 웨스턴 블랏으로 확인한 사진이고, 도 6b는 상기 myhc의 발현을 정량화한 그래프이다. Figure 6a is a photograph confirming myhc expression in mouse muscle cells treated with Example 2 by Western blot, Figure 6b is a graph quantifying the expression of the myhc.
도 5 및 도 6에 나타난 바와 같이, 전처리를 수행한 실시예 2에서 myhc의 발현이 증가한 것을 확인할 수 있다. As shown in Figure 5 and Figure 6, it can be seen that the expression of myhc increased in Example 2 subjected to pretreatment.
약콩 발효물의 근육 증강, 근육 분화 효과 확인Muscle Enhancer and Muscle Differentiation Effect of Medicinal Soybean Fermentation
상기 실시예 1의 근육 증강, 근육 분화 촉진 효과를 확인하기 위하여, 근육분화 후기 바이오마커인 myhc(myosin heavy chain)의 발현량을 웨스턴 블랏 분석으로 측정하였다. 구체적으로, 마우스 근육세포 C2C12를 6㎝ 디쉬에 분주(seeding)한 후, 10% 소태아혈청(Fetal Bovine Serum)과 1% 안티바이오틱-안티마이코틱(Antibiotic-antimycotic)이 첨가된 DMEM(Dulbecco-modified Eagle medium)을 사용하여 37℃, 10% CO2 배양기(Forma Scientific Co., Marjetta, OH, USA)에서 72시간 동안 배양하였다. 이후, 2% 말혈청(Horse Serum)과 1% 안티바이오틱-안티마이코틱(Antibiotic-antimycotic)이 첨가된 DMEM(Dulbecco-modified Eagle medium)로 배지를 갈아주는 동시에, 상기 실시예 1의 발효물을 24시간마다 한번씩 총 96 시간 동안 처리해 주어 약콩 발효물이 근육세포의 분화를 촉진시키는지 여부를 확인하였다. 96 시간 이후 RIPA 버퍼를 이용해 단백질을 긁어낸 후, 13000g 조건으로 10분 동안 원심분리 하여 순수 단백질을 추출하고 protein assay reagent kits (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA)를 사용하여 단백질을 정량 하였다. 추출한 단백질을 SDS 폴리 아크릴아마이드 겔을 이용하여 전기영동 한 후 니트로셀룰로오스 블롯팅 멤브레인(GE Healthcare Life Science, Amersham, UK)에 트랜스퍼 하였다. 이후, 멤브레인을 5% 스킴밀크로 1시간 블락킹 한 뒤 4℃냉장고에서 16시간 동안 1:1000으로 희석한 myhc의 1차 항체를 처리하였다. 1차 항체를 TBS-T 버퍼로 10분 동안 3번 반복하여 세척한 후, 5% 스킴밀크에 1:5000 농도로 희석시킨 2차 항체를 1시간 동안 처리하였다. 이후, 2차 항체를 TBS-T 버퍼로 8분 동안 5번 반복하여 세척하였다. 이후, ECL detection kit를 사용하여 근육분화 바이오마커 단백질의 발광 정도를 암실에서 확인하고 디벨로핑 버퍼를 이용하여 단백질 밴드를 필름에 현상하였다. Image J software (National Institutes of Health, Bethesda, MD, USA)을 이용하여 단백질의 발현 정도를 정량하였다. In order to confirm the effect of muscle enhancement and muscle differentiation of Example 1, the expression level of myhc (myosin heavy chain), which is a late muscle differentiation biomarker, was measured by Western blot analysis. Specifically, after seeding mouse muscle cells C2C12 in a 6 cm dish, DMEM (Dulbecco) added with 10% Fetal Bovine Serum and 1% Antibiotic-antimycotic -modified Eagle medium) was incubated for 72 hours in a 37 ℃, 10% CO 2 incubator (Forma Scientific Co., Marjetta, OH, USA). Thereafter, the medium was changed to DMEM (Dulbecco-modified Eagle medium) to which 2% horse serum (Horse Serum) and 1% antibiotic-antimycotic were added, and the fermentation product of Example 1 was used. Was treated once every 24 hours for a total of 96 hours to determine whether the fermented soybeans promote differentiation of muscle cells. After 96 hours, the protein was scraped off using RIPA buffer, centrifuged at 13000g for 10 minutes to extract pure protein, and protein quantitated using protein assay reagent kits (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA). . The extracted protein was electrophoresed using SDS polyacrylamide gel and then transferred to nitrocellulose blotting membrane (GE Healthcare Life Science, Amersham, UK). Thereafter, the membrane was blocked with 5% skim milk for 1 hour and then treated with a primary antibody of myhc diluted 1: 1000 for 16 hours in a 4 ° C. refrigerator. After washing the primary antibody three times for 10 minutes with TBS-T buffer, the secondary antibody diluted 1: 5000 concentration in 5% skim milk was treated for 1 hour. The secondary antibody was then washed 5 times for 8 min with TBS-T buffer. Thereafter, the degree of luminescence of the myogenic biomarker protein was confirmed in the dark room using an ECL detection kit, and a protein band was developed on the film using a develping buffer. The expression level of the protein was quantified using Image J software (National Institutes of Health, Bethesda, MD, USA).
도 7a는 노화를 유도하지 않은 마우스의 근육 세포에 실시예 1을 처리한 후 myhc 발현을 웨스턴 블랏으로 확인한 사진이다. Figure 7a is a photograph confirming myhc expression by Western blot after the treatment of Example 1 to the muscle cells of the mice that did not induce aging.
도 7b는 노화를 유도하지 않은 마우스의 근육 세포에 실시예 1을 처리한 후 myhc 발현을 정량화한 그래프이다.Figure 7b is a graph quantifying myhc expression after treatment of Example 1 to the muscle cells of mice not induced aging.
도 7에 나타난 바와 같이, 마우스 근육 세포에 실시예 1을 처리한 경우, myhc 발현이 대조군 대비 현저하게 증가한 것으로 보아, 근육 분화가 촉진되는 것을 확인할 수 있다. As shown in FIG. 7, when the mouse muscle cells were treated with Example 1, myhc expression was significantly increased compared to the control group, so that muscle differentiation was promoted.
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