KR102010346B1 - 3차원 중간엽 기질세포 구상체에서 상피-간엽이행 구배의 계층화 - Google Patents

Abstract

본 발명은 3차원 중간엽 기질세포 구상체에서 상피-간엽이행 구배의 계층화에 관한 것이다. 본 발명에서는, 중간엽 줄기세포의 니치 활성의 변화는 상피-간엽 이행과 밀접한 관련이 있음을 규명하였다. 구체적으로, 3D 세포간 상호작용 또는 관련 생리학적 자극에 의해 니치 활성이 향상되는 경우, 상피-간엽 이행의 구배는 더욱 중간엽 상태로 변화하였고, 백혈병에 의한 퇴행성 상태에서는 이와 정반대의 경향성을 보여주었다. 따라서, 본 발명은 상피-간엽 이행 관련 인자들을 조절 또는 도입함으로써, 중간엽 줄기세포-기반 세포 치료의 효능을 향상시킬 수 있을 것으로 기대된다.

Description

3차원 중간엽 기질세포 구상체에서 상피-간엽이행 구배의 계층화 {Hierarchy of epithelial-mesenchymal transition gradient in 3D spheroid Mesenchymal stromal cells}

본 발명은 3차원 중간엽 기질세포 구상체에서 상피-간엽이행 구배의 계층화에 관한 것이다.

골수(BM) 미세환경은 자기 복제(self-renewal), 재생(regeneration), 및 조혈 줄기세포(HSCs)의 휴지(quiescence)를 조절하고, 골수말소된(myeloablated) 수용자 내 혈액 세포의 평생 생산 및 BM 재구성(reconstitution)을 조절하는데 중요한 역할을 한다. 이전 연구에서는 BM내 HSC 조절에 연관된 다수의 니치를 확인하였다. 예를 들어, 이식된 HSCs에 관한 초기 연구에서는 N-카데린-발현 조골세포로 구성된 골 내막성 니치를 확인한 반면, 혈관주위 니치는 항상성 조건에서 HSCs가 다수로 존재하는 니치로 확인되었다. 혈관주위 니치의 세포 조성을 확인하기 위한 광범위한 노력으로, 내피 세포, 거핵 세포, 및 비수초성 교감 신경계 세포의 추가적인 참여와 함께 니치의 주요한 구성성분으로서 혈관주위 세포 및 특정 서브세트의 중간엽 세포를 확인하였다.

중간엽 니치 세포는 jagged 1, CXCL12, 및 안지오포이에틴-1과 같은 상호간섭(cross-talk) 분자의 발현에 의해 HSC 구획을 유지하나; 이들 세포의 정체성에 있어 이질성이 관찰되었다. 예를 들어, Nestin을 발현하는 서브세트만이 HSC 유지에 기여하는 BM HSCs와 긴밀한 연관성이 있는 것으로 밝혀졌다. 이와 유사하게, leptin 수용체 또는 Prx1을 발현하는 중간엽 세포 역시 니치 기능을 보여준다. 이들 서브세트는 일부 Nestin-발현 세포와의 오버랩(overlap)을 보여주는 반면, 최근 계통-추적 연구에서는 신경능 유래 서브세트는 HSC 니치로 작용하나, 중배엽 유래 서브세트는 골연골 분화에 기여함을 보여준 바 있다.

한편, HSCs는 BM 손상, 과립구-콜로니 자극인자(G-CSF), 또는 생리학적 자극에 반응하여 역학적 행동 스위치의 발생을 암시하는 인터페론(IFN) 알파-매개 폴리 (I:C) 생산에 의해 유도된 생리학적 자극에 반응하여 휴면 및 자기-복제 사이에서 가역적으로 스위칭된다. 따라서, BM 미세환경은 필수적인 요구를 만족하도록 혈액 세포 생산을 조정하기 위한 교호적인 생리학적 필요에 반응해야 한다. 예를 들어, 니치 활성은 HSCs의 방출을 제어하기 위해 24시간 주기 리듬에 따라 교감 신경계에 의해 주기적으로 조절된다. 이와 유사하게, 중간엽 세포는 정규(canonical) Wnt 신호전달 경로의 미세한 조정에 의해 뚜렷한 니치 활성을 나타내거나 배양 조건의 스위칭에 의해 니치 활성의 가역적 변화를 나타낸다(한국 공개특허 10-2009-0008155).

게다가, 최근 연구에서는, BM 중간엽 니치가 백혈병 또는 골수 증식성 질환에 의한 미세환경의 변화에 반응하여 니치 기능의 퇴행성 변화를 보여준 바 있다. 그러나, 이러한 결과에도 불구하고, 이러한 반응이 일어나는 메커니즘 및 이러한 니치 활성을 제어하는 파라미터에 관해서는 아직 명확하지 않다.

본 발명은 상기와 같은 문제점을 해결하기 위해 안출된 것으로서, 본 발명자들은 중간엽 기질세포-기반 세포 치료의 유효성를 향상시키기 위하여 예의 노력한 결과, 중간엽 줄기세포의 니치 활성은 상피-간엽 이행 구배의 변화와 밀접한 관련이 있으며, 상기 상피-간엽 이행 구배가 조절된 중간엽 줄기세포를 통해 암의 전이를 억제할 수 있음을 실험적으로 확인하고, 이에 기초하여 본 발명을 완성하였다.

본 발명의 목적은 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진용 조성물 및 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진방법을 제공하는데 있다.

본 발명의 다른 목적은 암 전이 억제용 조성물 및 암 전이 억제방법을 제공하는데 있다.

그러나 본 발명이 이루고자 하는 기술적 과제는 이상에서 언급한 과제에 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 과제들은 아래의 기재로부터 당업자에게 명확하게 이해될 수 있을 것이다.

상기와 같은 본 발명의 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 상피-간엽이행 촉진 인자를 포함하는, 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진용 조성물을 제공한다.

본 발명의 일 구현예로서, 상기 상피-간엽이행 촉진 인자는 miR-10b, miR-146a, miR-106b, miR-34a, miR-379, 및 miR-146b로부터 선택되거나 snail, slug, twist1, zeb1, 및 zeb2로 이루어진 군으로 선택되는 어느 하나의 유전자를 포함하는 벡터일 수 있다.

본 발명의 다른 구현예로서, 상기 중간엽 줄기세포는 지방조직, 골수, 말초혈액 또는 제대혈에서 유래한 것일 수 있다.

또한, 본 발명은 중간엽 줄기세포의 상피-간엽이행을 촉진하는 단계를 포함하는, 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진방법을 제공한다.

본 발명의 일 구현예로서, 상기 상피-간엽이행을 촉진하는 단계는 miR-10b, miR-146a, miR-106b, miR-34a, miR-379, 및 miR-146b로부터 선택되는 어느 하나를 중간엽 줄기세포에 처리하거나, snail, slug, twist1, zeb1, 및 zeb2로 이루어진 군으로 선택되는 어느 하나의 유전자를 포함하는 벡터를 중간엽 줄기세포에 도입하는 것일 수 있다.

또한, 본 발명은 상피-간엽이행이 저해된 중간엽 줄기세포를 포함하는, 암 전이 억제용 약학적 조성물; 상피-간엽이행이 저해된 중간엽 줄기세포를 개체에 투여하는 단계를 포함하는 암 전이 억제방법; 및 암 전이 억제를 위한, 상피-간엽이행이 저해된 중간엽 줄기세포의 용도를 제공한다.

본 발명의 일 구현예로서, 상기 중간엽 줄기세포는, miR-503, miR-145, miR- 193b, miR-365a, miR-29b, miR-129, miR-335, 및 miR-675로부터 선택되는 어느 하나가 처리된 것일 수 있다.

본 발명의 다른 구현예로서 상기 중간엽 줄기세포는 Snail1, Snail2, Zeb1, Zeb2, 및 Twist1로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나의 siRNA 유전자를 포함하는 벡터로 형질감염된 것일 수 있다.

본 발명에서는, 중간엽 줄기세포의 니치 활성의 변화는 상피-간엽 이행과 밀접한 관련이 있음을 규명하였다. 구체적으로, 3D 세포간 상호작용 또는 생리학적 자극에 의해 니치 활성이 향상되는 경우, 상피-간엽 이행의 구배는 더욱 중간엽 상태로 변화하였고, 백혈병에 의한 퇴행성 상태에서는 이와 정반대의 경향성을 보여주었다. 따라서, 본 발명은 상피-간엽 이행 관련 인자들을 조절 또는 도입함으로써, 중간엽 줄기세포-기반 세포 치료의 효능을 향상시킬 수있을 것으로 기대된다.

도 1은 3D 메센스피어와 2D MSC의 특성을 비교한 것으로서, (A) PDMS 마이크로칩 내의 응집된 MSC를 광학 현미경으로 관찰한 결과; (B) MSC의 크기를 유세포 분석을 통해 확인한 결과; 및 (C) MSC의 형태적 특성을 광학 현미경으로 관찰한 결과이다.
도 2는 3D 메센스피어와 2D MSC의 특성을 비교한 것으로서, (A) ki-67 염색된 세포 (%)를 유세포 분석을 통해 확인한 결과; (B) 요오드화 프로피디움 (PI) 염색된 세포(%)를 유세포 분석을 통해 확인한 결과; (C) CFU-F의 빈도를 확인한 결과; 및 (D) 골 형성 또는 지방조직 형성 분화를 미네랄화(Alizarin red) 및 지방 드럽렛 침착 (oil red O)을 통해 확인한 결과이다.
도 3은 조혈 줄기세포에 대한 3D 메센스피어와 2D MSC의 니치 활성을 비교한 것으로서, (A) 본 실험 과정의 개략적인 모식도; (B) CD45+ 세포의 배수 변화를 확인한 결과; (C) 100개의 CD34+ 세포로부터 추론된 전체 콜로니-형성 전구체 (CFC)의 수를 확인한 결과; (D) 원시 조혈 전구체(CD34⁺CD90⁺)의 배수 변화를 확인한 결과; (E) 니치 마커 발현의 배수 변화를 확인한 결과; 및 (F) 표면 마커의 발현을 유세포 분석을 통해 확인한 결과이다.
도 4는 암 줄기세포에 대한 3D 메센스피어와 2D MSC의 니치 활성을 비교한 것으로서, (A) 본 실험 과정의 개략적인 모식도; (B) 침투한 암 세포의 대표적인 이미지 및 정량 분석한 결과; (C) 1차 종양의 용적 변화를 확인한 결과; (D) 간 조직 내 전이소(화살표)를 현미경으로 관찰한 결과; 및 (E) 간 조직 내 전이소의 수를 평가하여 전이 정도를 정량 분석한 결과이다.
도 5는 3D 메센스피어의 전사체 변화를 확인한 것으로서, (A) 캐모카인 수용체 결합과 관련된 농축 플롯; 및 (B) 2D MSC에 대한 3D 메센스피어의 간 사이토카인 및 성장인자 유전체의 배수 변화를 확인한 결과이다.
도 6은 3D 메센스피어와 2D MSC에서 EMT 관련된 인자의 변화를 비교한 것으로서, (A) EMT 촉진 유전자 발현의 배수 변화를 확인한 결과; (B) 차등 발현된 최상위 50개의 miRNA 중 EMT 관련 miRNA 프로일; (C) 단백질 수준에서 EMT 구배의 변화를 액체 크로마토그래피-질량 분광분석 및 IPA 분석을 통하여 확인한 결과; 및 (D 차등 발현하는 단백질을 발현량의 상대비(log₂ 3D/2D) 순으로 정렬한 것으로, EMT를 증가시키는 것으로 유추되는 단백질은 붉은색, EMT를 저해하는 것으로 유추되는 단백질은 녹색으로 표시한 결과이다.
도 7은 3D 메센스피어 내 향상된 크로마틴 역학에 대한 것으로서, (A) 2D MSCs에 대한 3D 메센스피어 내 다능성-관련 유전자 발현의 배수 변화; (B) RT-PCR 분석의 대표적인 이미지; (C) 2D MSCs (상부) 및 3D 메센스피어 (하부)에 대한 Oct4 유전자 프로모터로의 크로마틴 접근성을 뉴클레아제 보호 분석으로 비교한 결과; (D) RQ-PCR 분석에 의해 확인된, 2D MSCs에 대한 3D 메센스피어 내 크로마틴 리모델링 유전자의 배수 변화; (E) 총 세포 용해물 내 히스톤 메틸화 표지의 웨스턴 블롯 분석 결과; 및 (F) 각각의 표시된 히스톤 표지에 특이적인 히스톤 메틸트랜스퍼라제 및 디메틸라제 발현량의 정량 분석 결과이다.
도 8은 3D 메센스피어의 전사체 변화를 확인한 것으로서, (A) HDAC과 관련된 농축 플롯; 및 (B) 3D 메센스피어와 2D MSC간 HDACs의 발현 수준을 RQ-PCR로 분석한 결과이다.
도 9는 중간엽 세포의 니치 활성에 대한 EMT 구배의 영향을 확인한 것으로서, (A) 본 실험 과정의 개략적인 모식도; (B) EMT-구동 miRNA로 형질감염된 2D-MSCs 내에서, 표시된 마스터(master) EMT-조절 유전자의 상대적인 발현량을 비교한 결과; (C) EMT-구동 miRNA로 형질감염된 2D-MSCs 내에서 표시된 다능성 유전자의 상대적인 발현량을 비교한 결과; (D) EMT-구동 miRNA로 형질감염된 3000개의 MSCs로부터 얻은 CFU-F의 수를 비교한 결과; 및 EMT-구동 miRNA로 형질감염된 MSCs와 함께 CD34⁺ 세포를 공배양시킨지 3일 후, (E) 각 계통의 CFCs 수 및 (F) 원시 조혈 재생 세포(CD34⁺CD90⁺)의 수를 비교한 결과이다.

이하, 본 발명을 상세히 설명하기로 한다.

본 발명은 상피-간엽이행(epithelial-mesenchymal transition; EMT) 촉진 인자를 포함하는, 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진용 조성물을 제공한다.

본 발명에서 사용되는 용어, 중간엽 줄기세포(mesenchymal stem cell; MSC)는 연골, 뼈, 지방, 골수간질, 근육, 신경 등을 만드는데 원조가 되는 세포로서, 성인에서는 일반적으로 골수에 머물러 있지만 제대혈, 말초혈액, 기타 조직 등에도 존재하며, 이들로부터 수득할 수 있는 세포를 의미한다. 본 명세서에서는, 중간엽 줄기세포는 중간엽 기질세포 또는 기질세포와 같은 의미로 사용된다. 상기 중간엽 줄기세포는 인간(human), 원숭이(monkey), 돼지(pigs), 말(horses), 소(cows), 양(sheep), 개(dogs), 고양이(cats), 생쥐(mice), 토끼(rats) 등의 모든 동물 유래의 세포를 포함하나, 바람직하게는 인간 유래의 세포일 수 있다.

본 발명에서 사용되는 용어, 니치(Niche)는 줄기세포 및 그 외 체세포와 같은 조직세포의 발달 및 증식을 지원하는 조직 또는 기관으로 구성된 구성요소(세포 및/또는 물질)를 의미하며, 세포간 상호작용을 유발하고 전능성을 갖기 위하여 필요한 인자들을 분비하는 것으로 알려져 있다. 니치는 소위 미세환경(microenvironment)이라고도 말하며, 줄기세포의 모든 특징을 표현하는 줄기세포성(stemness)을 유지하는데 있어 핵심적인 역할을 한다. 줄기세포는 점착성 분자 성장 요소(adhesion molecules growth factors)로 이루어진 일종의 미세환경에 자리 잡고 있는바, 학계에서는 이를 니치라고 명명하며, 줄기세포의 이러한 영역은 입지(location), 점착성(adhesiveness), 귀소성(homing), 휴면성(quiescence), 활동성 (activation)을 유지하고 조정하는 역할을 하고 있다. 즉, 니치는 줄기세포의 분화를 조정하며, 다른 곳으로의 이동 혹은 세포 자살을 막고 보호해주는 역할을 하는 줄기세포를 둘러싼 주요한 미세환경이라고 볼 수 있다. 본 발명에 따른 조성물은 이러한 니치 활성을 향상시킴으로써, 체내 또는 체외 존재하는 모든 종류의 줄기세포의 미분화능을 유지하고 자가 재생능을 촉진시키는 것을 목적으로 한다. 따라서, 본 발명의 조성물은 대상 줄기세포에 따라 다양한 타겟 질병에 적용 또는 응용될 수 있다. 특히, 줄기세포 니치 중 활발히 연구가 된 분야는 조혈모세포(조혈줄기세포) 니치로, 조혈모세포 니치는 조혈모세포 (조혈 줄기세포)가 거주하는 곳으로서, 골수세포의 일종인 조혈모세포는 모든 유형의 혈액 세포로 분화할 수 있는 대신, 자신의 니치 즉, 조혈모세포 니치를 벗어나면 이 같은 능력을 제대로 발휘하지 못하는 것으로 알려져 있다. 여타 다른 니치와 마찬가지로 상기 조혈모세포 니치는 단순히 조혈모세포를 위한 안식처일 뿐만 아니라 해당 줄기세포인 조혈모세포의 수까지도 조절하는 것으로 알려져 있다. 일례로서, 상기 니치 활성은 조혈 줄기세포의 미분화능을 유지하고, 자가 재생능을 촉진시키는 것을 의미할 수 있고, 이 경우, 본 발명의 조성물은 조혈 세포가 손상된 생리적 상태에 있는 환자를 대상으로 적용될 수 있으며, 상기 조혈 세포가 손상된 생리적 상태는 급성 백혈병, 만성 골수성 백혈병, 골수이형성 증후군, 림프종, 다발성 골수종, 생식세포 종양, 유방암, 난소암, 소세포폐암, 신경아세포종양, 재생불량성빈혈, 적혈구병증, 고셔씨병, 헌터 증후군, ADA 효소결핍증, Wiskot-Aldrich 증후군, 류마티스 관절염, 전신성 홍반성 낭창, 또는 다발성 경화증을 앓고 있거나, 항암제 투여 또는 방사선 조사로부터 야기되는 것 일 수 있다. 본 발명에서 사용되는 용어, "조혈줄기세포(hematopoietic stem cell: HSC)"는 적혈구, 백혈구, 혈소판 등의 혈액세포를 생산하는 미분화된 골수조혈세포의 조상세포로서, 골수가 파괴된 숙주에 이식하였을 때, 자가재생능(self-renewing capacity)을 가지고 장기간 재증식(repopulation)하는 능력을 보여준다. 상기 조혈 줄기세포는 인간(human), 원숭이(monkey), 돼지(pigs), 말(horses), 소(cows), 양(sheep), 개(dogs), 고양이(cats), 생쥐(mice), 토끼(rats) 등의 모든 동물 유래의 세포를 포함하나,바람직하게는 인간 유래의 세포일 수 있다.

본 발명에서 사용되는 용어, "자가 재생 (self-renewal)"은 동일한 성상 및 특징을 갖는 세포를 생산해내는 능력으로 자가복제, 자기복제, 자가재생이라고도 하며, 줄기세포가 가지는 중요한 특징의 하나이다. 특히, 본원 발명에서 자가 재생이란 분화되지 않은 상태를 유지하면서 증식을 계속하는 능력을 의미한다.

본 발명에서 사용되는 용어, 상피-간엽 이행(epithelial-mesenchymal transition; EMT)은 정상적인 배아 발달 과정에서 발생하는 현상으로, 세포가 상피성(epithelial) 세포 표현형을 상실하고 이동성이 높은 중간엽성(mesenchymal) 세포 표현형으로 전환하는 과정을 말한다. EMT가 일어나면 상피세포가 세포의 위쪽과 기저쪽이 구분되는 극성을 잃고 세포 모양이 정방형에서 섬유아세포형으로 바뀌고 상피 세포 마커는 감소하고 중간엽 세포 마커가 증가한다. 최근에 EMT가 태생기의 조직 형성과 분화 외에도 조직의 섬유화 등 다양한 역할을 한다는 것이 알려져 있다.

한편, 중간엽 니치는 골수 미세환경의 역학 변화에 반응 하는 조혈 줄기세포 내 재생 활성을 조절하는 것으로 알려져 왔으나, 이러한 과정은 매개하는 주요 인자에서 대해서는 알려져 있지 않은 상태이다. 본 발명에서는, 3D 세포간 상호작용 또는 생리학적 자극에 의해 니치 활성이 향상되는 경우, 상피-간엽 이행의 구배는 더욱 중간엽 상태로 변화하였고, 백혈병에 의한 퇴행성 상태에서는 이와 정반대의 경향성을 나타냄을 확인하였다. 따라서, 중간엽 니치 활성은 상피-간엽 이행의 변화를 통해 조절할 수 있으며, 구체적으로, 상피-간엽 이행 촉진 인자를 통해 중간엽 니치 활성을 향상시킬 수 있고, 상피-간엽 이행 억제 인자를 통해 중간엽 니치 활성을 저해시킬 수 있음을 규명하였다는 점에 기술적 특징이 있다.

상기 상피-간엽 이행 촉진 인자는 전술한 상기-간엽 이행의 현상을 증진시키는 인자들을 일컫는 것으로서, 천연물, 화합물, 뉴클레오타이드, 단백질, 재조합 벡터 등일 수 있으며, 바람직하게, miR-10b, miR-146a, miR-106b, miR-34a, miR-379, 및 miR-146b로부터 선택되는 miRNA 또는 snail, slug, twist1, zeb1, 및 zeb2로 이루어진 군으로 선택되는 어느 하나의 유전자를 포함하는 벡터일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.

본 발명의 조성물에 포함되는 벡터는 상기 상피-간엽 이행 촉진 인자를 코딩하는 폴리뉴클레오티드 서열이 삽입된 발현 벡터를 말하며 이에 한정되지 않지만 바람직하게는 당업계에 공지된 플라스미드, 바이러스 또는 기타 매개체를 의미한다. 본 발명에 따른 폴리뉴클레오티드 서열은 발현 조절 서열에 작동 가능하게 연결될 수 있으며, 상기 작동 가능하게 연결된 유전자 서열과 발현 조절 서열은 선택 마커 및 복제 개시점(replication origin)을 같이 포함하고 있는 하나의 발현 벡터 내에 포함될 수 있다. "작동 가능하게 연결(operably linked)"된다는 것은 적절한 분자가 발현 조절 서열에 결합될 때 유전자 발현을 가능하게 하는 방식으로 연결된 유전자 및 발현 조절 서열일 수 있다. 상기 발현 조절 서열(expression control sequence)"이란 특정한 숙주 세포에서 작동 가능하게 연결된 폴리뉴클레오티드 서열의 발현을 조절하는 DNA 서열을 의미한다. 그러한 조절 서열은 전사를 실시하기 위한 프로모터, 전사를 조절하기 위한 임의의 오퍼레이터 서열, 적합한 mRNA 리보좀 결합 부위를 코딩하는 서열 및 전사 및 해독의 종결을 조절하는 서열을 포함한다.

상기 플라스미드의 예로는 대장균 유래 플라스미드(pBR322, pBR325, pUC118 및 pUC119), 바실러스 서브틸러스 유래 플라스미드(pUB110 및 pTP5) 및 효모 유래 플라스미드(YEp13, YEp24 및 YCp50) 등이 있으며, 상기 바이러스는 레트로바이러스, 아데노바이러스, 백시니아 바이러스, 배큘로바이러스, 헤르페스 심플렉스 바이러스 및 렌티바이러스와의 복합체 등으로 구성된 군으로부터 선택된 바이러스가 사용될 수 있다. 당업자라면 본 발명의 유전자 또는 폴리뉴클레오티드를 숙주세포에 도입시키는데 적합한 벡터를 사용할 수 있으며 바람직하게는 단백질 발현 유도 및 발현된 단백질의 분리가 용이하도록 디자인된 벡터를 사용할 수 있다.

본 발명의 다른 양태로서, 중간엽 줄기세포의 상피-간엽이행 (epithelial-mesenchymal transition; EMT)을 촉진하는 단계를 포함하는, 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진방법을 제공한다.

본 발명의 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진방법은 전술한 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진용 조성물에서 기술한 바 있는 상피-간엽 이행 촉진 인자 등을 이용하기 때문에, 이 들 사이에 공통된 내용은 본 명세서의 과도한 복잡성을 피하기 위하여, 그 기재를 생략한다.

상기 상피-간엽이행을 촉진하는 단계는 바람직하게, miR-10b, miR-146a, miR-106b, miR-34a, miR-379, 및 miR-146b로부터 선택되는 어느 하나를 중간엽 줄기세포에 처리하거나, snail, slug, twist1, zeb1, 및 zeb2로 이루어진 군으로 선택되는 어느 하나의 유전자를 포함하는 벡터를 중간엽 줄기세포에 도입하는 것일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.

본 발명에 따른 상기 벡터는 당업계에 공지된 방법을 사용하여 세포에 도입할 수 있는데, 상기 본 발명에 따른 재조합 벡터를 숙주 세포에 도입하는 방법으로는 이에 한정되지는 않으나, 염화칼슘(CaCl₂) 및 열 쇼크(heat shock) 방법, 실리콘 탄화물 위스커(Silicon carbide whiskers), 초음파 처리(sonication), PEG(Polyethylenglycol)에 의한 침전법, 일시적 형질감염(transient transfection), 미세주사, 형질도입(transduction), 세포융합, 칼슘 포스페이트 침전법, 리포좀 매개된 형질감염(liposome-mediated transfection), DEAE 덱스트란-매개된 형질감염(DEAE Dextran-mediated transfection), 폴리브렌-매개된 형질감염(polybrene-mediated transfection), 전기침공법(electropora tion), 유전자 총(gene gun) 방법 등을 사용할 수 있으며, 세포 내로 핵산을 유입시키기 위한 다른 공지의 방법에 의해 세포 내로 도입할 수 있다

본 발명의 또 다른 양태로서, 상피-간엽 이행 촉진 인자의 발현 또는 활성을 향상시키거나, 상피-간엽 이행 저해 인자의 발현 또는 활성을 저해하는 후보물질을 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진용 조성물로 선택하는 단계를 포함하는, 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진용 조성물의 스크리닝 방법을 제공한다.

본 발명의 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진용 조성물의 스크리닝 방법은 전술한 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진용 조성물에서 기술한 바 있는, 상피-간엽 이행 촉진 인자 등을 이용하기 때문에, 이 들 사이에 공통된 내용은 본 명세서의 과도한 복잡성을 피하기 위하여, 그 기재를 생략한다.

본 발명에서 사용되는 용어, 발현은 유전자가 가지고 있는 정보를 프로그램에 따라 RNA나 단백질의 기능을 가진 유전자 산물의 형태로 표현하는 것을 의미한다.

본 발명에서, 후보물질은 천연물, 화합물, 뉴클레오타이드, 단백질, 재조합 벡터 등일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.

본 발명의 스크리닝 방법에 있어서, 후보물질 또는 관련 단백질 (EMT 촉진 또는 억제 관련 단백질)은 검출가능한 표지(detectable label)로 레이블링 될 수 있다. 예를 들어, 상기 검출가능한 표지(detectable label)는, 화학적 표지(예컨대, 바이오틴), 효소 표지(예컨대, 호스래디쉬 퍼옥시다아제, 알칼린 포스파타아제, 퍼옥시다아제, 루시퍼라아제, 纖갈락토시다아제 및 纖글루코시다아제), 방사능 표지(예컨대, C14, , I125, , P32 및 S35), 형광 표지[예컨대, 쿠마린, 플루오레세인, FITC(fluoresein Isothiocyanate), 로다민 6G(rhodamine 6G), 로다민 B(rhodamine B), TAMRA(6-carboxytetramethyl-rhodamine), Cy-3, Cy-5, Texas Red, Alexa Fluor, DAPI(4,6-diamidino-2-phenylindole), HEX,TET, Dabsyl 및 FAM], 발광 표지, 화학발광(chemiluminescent) 표지, FRET(fluorescence resonance energy transfer) 표지 또는 금속 표지(예컨대, 금 및 은)이다.

본 발명에 따른 상피-간엽 이행 촉진 인자 또는 상피-간엽 이행 저해 인자의 발현 또는 활성을 측정하는 단계는 유전자의 발현에 의해 생성된 RNA 또는 단백질의 양을 측정할 수 있는 당업계에 공지된 다양한 방법을 통해 실시될 수 있다. 바람직하게 RNA의 발현량은 실시간 중합효소연쇄반응(Real-time PCR), 마이크로어레이(microarray), 노던 블롯팅(northern blotting) 등을 통해 측정할 수 있고, 단백질의 발현량은 웨스턴 블롯팅 (western blotting), 유체분석(flow cytometry), 효소면역분석법(ELISA), 또는 면역염색법(immunofluorescnce) 등을 통해 측정할 수 있으며, 이 밖에도 당업계에 널리 알려진 단백질의 발현 또는 활성 측정법이 적용될 수 있다.

본 발명의 또 다른 양태로서, 본 발명은 상피-간엽이행(epithelial-mesenchymal transition; EMT)이 저해된 중간엽 줄기세포를 포함하는, 암 전이 억제용 약학적 조성물; 상피-간엽이행이 저해된 중간엽 줄기세포을 개체에 투여하는 단계를 포함하는 암 전이 억제방법; 및 암 전이 억제를 위한, 상피-간엽이행이 저해된 중간엽 줄기세포의 용도를 제공한다.

본 발명에서 사용되는 용어, 암은 세포가 정상적인 성장 한계를 무시하고 분열 및 성장하는 공격적(aggressive) 특성, 주위 조직에 침투하는 침투적(invasive) 특성 및 체내의 다른 부위로 퍼지는 전이적(metastatic) 특성을 갖는 세포에 의한 질병을 총칭하는 의미이다. 본 발명에서 암의 종류로는 췌장암, 위암, 간암, 대장암, 뇌암, 유방암, 갑상선암, 방광암, 식도암, 자궁암, 및 폐암으로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나에 해당할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.

본 발명에서는, 중간엽 줄기세포의 상피-간엽 이행의 구배는 암 줄기세포의 줄기성, 즉 전이에도 직접적인 영향을 미치는 것을 확인하였다. 따라서, 중간엽 줄기세포에 대한 상피-간엽 이행의 저해를 통해 암의 전이를 효과적으로 억제시킬 수 있음을 규명하였다는 점에 기술적 특징이 있다.

상기 상피-간엽 이행 억제 인자는 전술한 상기-간엽 이행의 현상을 억제시키는 인자들을 일컫는 것으로서, 천연물, 화합물, 뉴클레오타이드, 단백질, 재조합 벡터 등일 수 있으며, 바람직하게, miR-503, miR-145, miR- 193b, miR-365a, miR-29b, miR-129, miR-335, 및 miR-675으로 이루어진 군으로 선택되는 어느 하나일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.

상기 중간엽 줄기세포는, miR-503, miR-145, miR- 193b, miR-365a, miR-29b, miR-129, miR-335, 및 miR-675로부터 선택되는 어느 하나가 처리되거나, Snail1, Snail2, Zeb1, Zeb2, 및 Twist1로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나의 siRNA 유전자를 포함하는 벡터로 형질감염된 것일 수 있다.

이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예를 제시한다. 그러나 하기의 실시예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐, 하기 실시예에 의해 본 발명의 내용이 한정되는 것은 아니다.

실시예 1. 실험재료 및 실험준비

1-1. 세포의 분리 및 배양

정상적인 공여자 또는 AML 환자에서 얻은 인간 BM, AML 환자의 백혈병증, 제대혈, 및 지방 조직은 한국 카톨릭대 임상시험심사위원회(institutional review board)의 승인 후 고지에 입각한 공여자의 동의(informed consent)를 얻었다. 정상적인 공여자 또는 AML 환자로부터 얻은 MSCs는 플라스틱 접시에 대한 접착 또는 부유를 통해 분리하였다. 3D 메센스피어를 24 시간 동안 3%(w/v) 소 혈청 알부민으로 코팅된 PDMS-기반 오목 마이크로칩 상에서 생성시킨 후, 저-접착 접시에 현탁하였다(Corning, Lowell, MA, USA). 모든 실험은 헬싱키 선언에 따라 진행하였다.

1-2. 정상적인 공여자 또는 백혈병 환자에서 얻은 CD34 ⁺ 세포의 시험관 내 증식

CD34⁺ 세포를 상술한 바와 같이 제대혈 또는 AML 환자에 대한 백혈구 분리반출술(leukapheresis)로부터 정제하고, 사이토카인 혼합물(100ng/mL 인간 기질 세포 인자 [SCF]; 100ng/mL 인간 Flt3L; 및 20ng/mL 인간 인터루킨 [IL]-3, IL-6, 및 G-CSF; ProSpec-Tany TechnoGene Ltd., Rehovot, Israel)의 존재 하에 장기 배양 배지 (H5100, STEMCELL Technologies, Vancouver, Canada)에서 5일간 조사된(1,500 cGy) 메센스피어 또는 2D MSCs와 공배양시켰다. 선택적으로, miRNA-형질감염된 MSCs과 공배양하기 위해 낮은 사이토카인 믹스(hSCF: 1μg/mL; hFlt3L: 1μg/mL; hTPO: 0.5μg/mL)를 사용하였다.

1-3. 전체-전사체 및 miRNA 서열분석

MSCs를 전체-전사체 서열분석(RNA-seq)하였다. TopHat를 사용해 짝지은 서열분석 리드 (reads)를 참조 인간 게놈 서열(hg19) 상에 정렬하였다. CuffLink 소프트웨어를 사용해 유전자 발현 (매핑된 백만 개 단편 당 엑손(exon) 킬로베이스(kilobase) 당 단편[FPKM])을 평가하였다. 기능적 해석을 위해, 배수 변화의 log₂ (FPKM3D/FPKM2D)를 사용해 GSEA의 우선순위가 있는 데이터세트를 분석하였다. miRNA 서열분석을 위해, TruSeq 스몰 RNA 샘플 프렙 키트 버전 2(Illumina, San Diego, CA, USA)를 사용해 1g의 RNA로 작은 RNA 서열분석 라이브러리를 생성하였다. 베이스-호출 및 FASTQ 포맷에서 원시적인, 역다중화된 서열분석 데이터의 생성을 위해 Illumina HCS (version 1.4.8), RTA (version 1.12.4.2) 및 CASAVA (version 1.8.2) 소프트웨어를 사용하였다.

1-4. 마우스 이종이식편 분석

동물 실험은 카톨릭대 한국 실험동물운영 위원회 (animal care and use committee)에서 승인을 받았다. NOD/SCID-γ_c null 마우스는 Jackson Laboratory (Bar Harbor, ME, USA)에서 구매하였다. 총 5 × 10⁵의 MDA-MB-231 세포를 2D 또는 3D 조건 하에서 배양된 2 × 10⁵ MSCs를 포함 또는 포함하지 않은 유방 지방조직에서 피하 주입하였다. 35일째에 모든 마우스를 희생시켰다. 1차 종양 및 간을 고정하고, 고정된 조직의 절편을 H&E으로 염색하였다.

1-5. miRNA 또는 siRNAs의 형질감염

miRNA 미믹, miRNA 저해제, 또는 siRNAs (AccuTarget 인간 miRNA)를 Bioneer Corp. (Daejeon, Korea)에서 구입하였다. 형질감염을 위해, BM-MSCs를 Opti-MEM 배양 배지 (Life Technology, Carlsbad, CA, USA)로 교체하고 Lipofectamine 2000 (Life Technology)를 사용해 100 nM miRNA 미메틱 (mimetics), miRNA 저해제, 또는 siRNA로 형질감염시켰다. 스크램블 (scrambled) miRNA가 음성 대조군으로 사용되었다. 사용된 올리고뉴클레오티드 서열은 보충 정보에 표시한다.

1-6. 크로마틴 접근성 시험

MSCs에서 크로마틴의 Oct4 유전자 프로모터에 대한 접근성을 제조사 지침에 따라 크로마틴 접근성 분석 키트를 사용해 뉴클리아제 보호 분석에 의해 분석하였다 (Epigentek, Farmingdale, NY, USA). 간략하게, 세포를 뉴클리아제가 함유 또는 비함유된 EpiQuik 크로마틴 버퍼에서 인큐베이션(incubation)하고, 게놈 DNA를 추출하였다. qPCR에 의해 크로마틴 접근성을 분석하고 상기 키트의 분석 툴을 사용해 분석하였다. 헤모글로빈 (HBB) 유전자는 상대 크로마틴 접근성 측정을 위한 접근할 수 없는 참조 (inaccessible reference)로 사용되었다.

1-7. 유전자 발현 분석

MSC 유전자 발현을 Illumina 비드칩 (Illumina, San Diego, CA) 어레이 혼성화 분석에 의해 마이크로어레이 데이터 (LIMMA) 방법을 위한 직선 모델 및 상술한 통계용 R-패키지을 사용해 분석하였다.

1-8. 질량 분광분석

질량 분광분석 후, 펩티드-스펙트럼 매치를 기준으로 확인된 단백질의 상대 존재비를 산정하였다. G-값을 계산해 차등 발현된 단백질 (DEPs) 결정하고, 3.841 이상의 값을 가진 단백질을 2-분포에 따라 P < 0.05하여 유의한 것으로 간주하였다. Ingenuity Pathway 분석 (IPA; http://www.ingenuity.com)을 사용해 DEPs의 Gene ontology 분석을 실시하였다.

1-9. 통계 분석

유전자 세트 농축 분석을 위해, 유의한 GO 카테고리 (즉, 오판률 < 0.1)를 선별하기 위해 유의도 (significance)의 정상 P-값을 각 GO 카테고리에 대한 1,000 개의 유전자 순열을 대상으로 산정하였다. 모든 데이터를 SAS 버전 93 (SAS Institute Inc., Cary, NC, USA)을 사용해 분석하였으며, 유의도 레벨은 P < 0.05로 정하였다.

실시예 2. 3차원 상호작용을 통한 중간엽 세포의 니치 활성 획득

중간엽 니치 활성의 특성을 조사하기 위해, 먼저, 니치 기능을 보유한 Nestin-발현 중간엽 세포 아집단이 종종 비-부착 배양조건 하에 중간엽 구상체 (메센스피어)를 형성하는 능력으로 특징지어진다는 사실을 근거로 3D 메센스피어 모델을 채택하였다. 따라서, 메센스피어 형성 및 니치 활성 사이의 기능적 연관성을 조사하기 위해 니치 기능이 이들의 3D 세포 상호작용에 의해 유도될 수 있는지 여부를 확인하였다. 이에 따라, 세포는 비-부착성 3D 구상체의 형성을 위한 플랫폼인 폴리디메틸실록산 (PDMS) 마이크로칩 상에서 24 시간 이내에 응집시켜 균질한 구상체를 형성하였다. 흥미롭게도, 메센스피어 내 세포가 작을수록, 더 휴지되어, 이차원 (2D) 부착 배양시의 세포와 비교해, 유의하게 더 높은 콜로니-형성성, 골형성성, 및 지방생성성 (adipogenic) 잠재력을 나타내었으며 (도 1 및 도 2), 이는 이 전의 연구 결과와 일치하였다.

니치 기능에 대한 3D 상호작용의 영향을 확인하기 위해, 조혈 전구체 세포의 유지/증식을 유지(support)하는 메센스피어의 능력을 비교하였다 (도 3A). 특히, 2D 중간엽 기질 세포 (MSCs)와 공배양된 세포와 비교해, 메센스피어와 공배양된 CD34⁺ 세포는 콜로니-형성 전구체 및 CD34⁺CD90⁺ 서브세트에 있어 유의한 증가를 나타내었고, 이들 아집단 (subpopulations)은 장기 (long-term) 재생 조혈 세포를 나타내고, 이것으로 HSC 자기-복제/유지를 지지하는 메센스피어의 능력이 향상되었음을 입증하였다 (도 3B 내지 D). 표현형 마커 발현에 대해 검토하면, 2D MSCs와 비교해, 3D 메센스피어에서 각각 혈관주위세포 또는 원시 중간엽 세포에 특이적인 니치 마커인 Nestin 및 Prx1의 발현이 유의하게 증가하였음을 보여주었다 (도 3E). 그러나, 정규 (canonical) MSC 마커 또는 CD49f 또는 PODXL와 같은 초기 계대 (passage) MSCs에 대한 마커에서는 어떠한 유의한 변화도 관찰되지 않았으며 (도 3F), 이는 특정 니치 마커는 니치 활성이 증가되는 과정에서 획득될 수 있음을 나타낸다. 메센스피어가 다른 종류의 줄기성 (stemness)에도 유사한 효과를 발휘할 수 있는지 확인하기 위해, 암 줄기세포 내 줄기성에 대한 MSCs의 영향에 관한 이전의 연구를 기반으로 암 세포 내 줄기성에 대한 효과와 비교하였다 (도 4A). 이를 위해, 메센스피어와 공배양된 MDA-MB-231 유방 암 세포의 침투력 (invasion capacity)을 2D MSCs와 비교하였다. 예상과 같이, 더 높은 생체 내 전이 가능성을 나타내는, 뚜렷한 침투 가능성의 증가가 메센스피어와 공배양된 세포에서 관찰되었다 (도 4B). 이러한 결과를 확인하기 위해, NOD/SCID-γ_c 마우스 세포에 메센스피어 또는 2D MSCs와 함께 이식된 유방 암 세포의 전이를 비교하였다. 중간엽 세포 타입 중 어느 것으로 공-이식하든지 (2D 또는 3D), 1차 종양의 부피를 증가시켰다 (도 4C); 그러나, 메센스피어와 함께 이식된 마우스의 간에서 유의하게 더 많은 전이소가 발견되었으며 (도 4D 및 4E), 이는 메센스피어가 암 줄기세포 내 줄기성도 향상시킬 수 있음을 나타낸다.

전사 수준에서 니치 활성을 특성화하기 위해, 메센스피어 및 2D MSCs 내 RNA-서열분석 프로파일을 검토하여, 가장 높은 배수 변화를 보이는 상위 50개 및 하위 50개의 유전자를 차등 발현 유전자로 분류하였으며, 그 결과는 하기 표 1에 나타내었다(DEGs).

[표 1]

또한, 유전자 세트 농축 분석 (GSEA)으로 다섯 및 아홉 유전자 세트 (유전자 온톨로지 (ontology) [GO] 용어)가, 2D MSCs와 비교해, 메센스피어에서 유의하게 농축되어 (오판율 (false discovery rate) [FDR] < 0.2) DEGs가 되었음이 확인되었다(표 2).

[표 2]

유의하게, 메센스피어에서 상향조절된 상기 유전자 세트는 주로 세포외 공간에서 케모카인 수용체 결합, 케모카인 활성, G-단백질 결합된 성장인자 신호전달, 및 분비 인자를 포함하는 사이토카인 반응과 관련이 있으며 (도 5A 및 5B), 이는 전사 수준에서의 향상된 니치 활성이라는 결과를 뒷받침한다. 이와 함께, 이러한 결과는 중간엽 세포의 3D 세포 상호작용이 이들의 니치 활성을 향상시켜, 니치 기능의 유도성향을 제시함을 보여주며, 이때 니치의 표현형 및 활성은 외인성 조절 신호 (cues)에 반응하여 획득할 수 있다.

실시예 3. 니치 활성과 상피간엽이행 구배간 관련성 확인

다음으로, 분자 수준에서의 메센스피어 내 향상된 니치 활성을 특성화하고자 하였다. 혈관주위 니치 세포가 분화 중 신경능에서 유래하였다는 결과에 기인하여, EMT 이질성이 출생 후 기간 (postnatal period) 중 니치 세포의 기능 성숙에 영향을 미칠 수 있는지 여부를 검토하였다. 따라서, EMT-조절 인자의 발현에 대해 메센스피어와 2D MSCs를 비교하여 메센스피어에서 Snai1, Twist, Zeb1, and Zeb2와 같은 EMT 조절인자(regulators)가 유의하게 더 많이 발현됨을 확인하였다 (도 6A).

다음으로, EMT 조절에서 microRNAs (miRNAs)의 결정적 역할에 관한 연구를 기반으로, 메센스피어 및 2D MSCs의 miRNA 발현 프로파일을 비교하여 메센스피어 내의 상위 50개의 상향조절 및 상위 50개의 하향조절된 miRNAs (log₂ 배수 변화 ≥ 2 or ≤ -2)를 요약하였다(표 3).

[표 3]

흥미롭게도, 현저한 발현 변화를 보여주는 많은 miRNAs는 EMT를 조절하는 것으로 알려져 있다. 예를 들어, EMT의 주요 유도물질(inducer)인 miR-146b는 메센스피어 내 매우 크게 유도된 miRNAs중 하나이다(89-배 증가; 도 6B). 이와 유사하게, EMT 유도물질 miR-379, miR-34a, miR-106b, miR-146a, 및 miR-10b 또한 메센스피어 내에서 높이 유도되어 있다. 이와 반대로, 메센스피어 내 miR-503, miR-145, miR- 193b, miR-365a, miR-29b, miR-129, miR-335, 및 miR-675를 포함하는 많은 하향조절된 miRNAs는 EMT를 저해하는 것으로 확인되어 왔다 (도 6B). 따라서, miRNA 발현 프로파일의 차이에 의해 반영된 세포 운명의 변화는, 나아가 2D 부착 MSCs와 비교해 메센스피어에서 더욱 더 EMT 진행이 이루어짐을 나타낸다. 한편, 전술한 miRNA들에 대한 서열 정보는 하기 표 4에 도시한 문헌들로부터 수득하였다.

[표 4]

이러한 결과를 기반으로, 이러한 현상이 단백질 수준에서도 비교 질량 분광분석에 의해 관찰될 수 있는지를 검토하였다. 차등 발현된 단백질(G-value > 3.841)의 경로 분석 (IPA, Ingenuity Systems, www.ingenuity.com)으로 EMT에 관련된 10개의 기능적 어노테이션 (annotations)을 확인하였다. 확인된 바와 같이, EMT-관련 기능을 활성화하기 위한 어노테이션 (pro-중간엽)은 주로 상향조절되는 반면, EMT 기능을 저해하기 위한 어노테이션 (anti-중간엽)은 하향조절되었다 (도 6C). 게다가, EMT-관련 단백질 중에서, 메센스피어에서 상향조절된 모든 단백질 (19개 단백질)은 pro-중간엽 단백질이며, 이에 반해 3D 메센스피어에서 하향조절된 모든 단백질 (10개의 단백질)은 anti-중간엽 단백질이므로, 단백질체 수준에서 EMT 구배를 나타내었다 (도 6D).

전체적으로, 이러한 결과는 중간엽 세포 내 3D 상호작용에 의해 향상된 니치 활성의 획득이, 추가적인 EMT 진행과 연관되어 중간엽 세포의 표현형적 유사 집단간 EMT 구배에 있어 계층 구조를 형성함을 나타낸다.

실시예 4. 상피간엽이행 구배와 후성유전적 가소성 차이간 관련성 확인

다음으로, 중간엽 세포 내 EMT 구배의 이질성에 대한 분자적 근거를 결정하고자 하였다. EMT가 크로마틴 구성 및 줄기세포-유사 특성의 후성유전적 제어에 의해 크게 조절되므로, 후성유전적 제어 시, 유사 가소성이 메센스피어 내 다른 EMT 구배를 형성할 수 있을 것으로 추측하였다. 이러한 가능성을 뒷받침하는 것으로, 2D MSCs와 비교해, 메센스피어에서는 다능성-관련 유전자 Oct4, Nanog, 및 Sox2 (36) 및 Hmga1 와 같은 줄기성-관련 유전자가 더 많이 발현되었다 (도 7A 및 7B). 메센스피어 내 다능성 유전자의 유도 역시 증가된 Oct4 프로모터 영역으로의 뉴클리아제 접근성에 의해 추론된 바와 같이 크로마틴 역학의 증가 (도 7C) 및 SMARCA 및 CHD1와 같은 크로마틴 리모델링 유전자의 유의한 유도 (도 7D)와 연관되어 있었다.

게다가, 크로마틴 표시 및 히스톤-수식 효소에 대해 메센스피어 또는 2D MSCs를 비교할 때, 메센스피어에서 H3K4, H3K36, H3K79, 및 H3K27 트리메틸화를 포함하는 활성화된 크로마틴 표시가 증가되었다 (도 7E). 흥미롭게도, 메센스피어는 또한 증가된 KMT2B, KMT2C, KMT2E, KMT2F, 및 KMT2H을 포함하는 히스톤 메틸트랜스퍼라제 (H3K4 메틸화를 위해); KMT1E 및 KMT1F (H3K9 메틸화를 위해); KMT6B (H3K27 메틸화를 위해); KMT3A (H3K36 메틸화를 위해); 및 KMT4 (H3K79 메틸화를 위해)의 발현을 보여주었으나, KDM5A (H3K4 탈메틸화를 위해), KDM3A 및 KDM3C (H3K9 탈메틸화를 위해), KDM6B (H3K27 탈메틸화를 위해), 및 KDM4B (H3K36 탈메틸화를 위해)와 같은 중화된 히스톤 디메틸라제의 발현의 동시 증가를 나타내었다 (도 7F). 그러므로, 이러한 정보는 후성유전적 히스톤 수식의 역학적 전환전환을 보여주었다. 이러한 후성유전적 가소성과 일치해, 히스톤 디아세틸라제 (HDAC) 패밀리는 전사체 분석 (transcriptomic analysis)시 메센스피어에서 뚜렷하게 하향조절된, HDAC8, HDAC9, HDAC10, 및 HDAC11로 구성된 것을 포함하는 GO 서브세트에 포함되었다 (도 8A 및 8B).

이를 종합하면, 이러한 결과는 3D 중간엽 세포 상호작용이 역학적 크로마틴 리모델링 및 증가된 히스톤 수식 전환에 의해 특성화된 메센스피어 내 줄기세포-유사 특성을 유도하고, 줄기세포 상태의 후성유전적 가소성을 모방하여, EMT 축 내 세포의 추가적 전이가 용이해져, 표현형적으로 유사한 중간엽 세포 중 EMT 구배에 있어 계층 구조를 형성함을 제시하였다.

실시예 5.상피간엽이행 구배에 따른 니치 활성 변화 확인

EMT 구배와 향상된 니치 활성의 연관성을 관찰한 결과, 다음으로 중간엽 세포의 니치 활성에 대한 EMT 구배의 영향에 대해 탐구하였다 (도 9A). 이를 위해, 메센스피어 내에서와 같이, EMT 구배를 향상시킬 수 있는 miRNA 미믹, 즉, EMT-촉진 miRNAs (miR-146b, miR-379)을 모방한 미믹 및 EMT-저해 miRNAs (miR-503, miR-145-5p, miR-193b, miR-365a, miR-29b, 및 miR-129)을 저해하는 미믹으로 2D MSCs를 형질감염시켰다. 예상된 바와 같이, 상기 miRNA-형질감염된 2D MSCs는 Snail1 및 Twist1와 같은 EMT-촉진 유전자의 유의한 유도를 보여주었으며, 이는 세포에서 EMT가 진행됨을 나타낸다 (도 9B). 흥미롭게도, 상기 2D MSCs에서 EMT의 유도는 다능성-관련 유전자 Oct-4, Nanog, 및 Sox2 의 유의한 유도 및 대조군 MSCs보다 더 높은 클론원성 중간엽 전구체 (CFU-F) 빈도의 원인이 되었다 (도 9C, 및 9D). 게다가, EMT-기반 MSCs에서 대조군에서 보다 유의하게 더 높은 전구체 및 CD34⁺CD90⁺ 조혈 재생 세포의 증식이 관찰되어 (도 9E 및 9F), 메센스피어에서 관찰된 바와 같이 MSCs에서 EMT를 구동하는 것은, 활성화된 중간엽 니치의 특성을 재생함을 제시하였다.

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전술한 본 발명의 설명은 예시를 위한 것이며, 본 발명이 속하는 기술분야의 통상의 지식을 가진 자는 본 발명의 기술적 사상이나 필수적인 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 쉽게 변형이 가능하다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적이 아닌 것으로 이해해야만 한다.

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<110> THE CATHOLIC UNIVERSITY OF KOREA INDUSTRY-ACADEMIC COOPERATION FOUNDATION <120> Hierarchy of epithelial-mesenchymal transition gradient in 3D spheroid Mesenchymal stromal cells <130> P17U11C0284 <150> KR 10-2016-0042155 <151> 2016-04-06 <160> 10 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 22 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> miR-146b mimic 1 <400> 1 ugagaacuga auuccauagg cu 22 <210> 2 <211> 22 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> miR-146b mimic 2 <400> 2 ggucuugacu cagguguccc gu 22 <210> 3 <211> 21 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> miR-379 mimic 1 <400> 3 ugguagacua uggaacguag g 21 <210> 4 <211> 22 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> miR-379 mimic 2 <400> 4 ucaaucaccu gguacaaugu au 22 <210> 5 <211> 23 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> miR-365a-5p inhibitor <400> 5 ucccugaaaa cccccgucua cac 23 <210> 6 <211> 24 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> miR-29b-1-5p inhibitor <400> 6 cgaccaaagu auaccaccaa augu 24 <210> 7 <211> 22 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> miR-129-2-3p inhibitor <400> 7 uucgggaaug ggguuuuucg ua 22 <210> 8 <211> 23 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> miR-145-5p inhibitor <400> 8 caggucaaaa ggguccuuag gga 23 <210> 9 <211> 22 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> miR-193b-5p inhibitor <400> 9 gccccaaaac ucccgcucua cu 22 <210> 10 <211> 24 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> miR-503-3p inhibitor <400> 10 ccccauaaca aaggcgaacg gucc 24

Claims (11)

1. 3차원 배양된 중간엽 줄기세포의 특성을 모방하기 위한 물질로 miR-379, miR-146b, miR-503, miR-145-5p, miR-193b, miR-365a, miR-29b 및 miR-129로 구성된 miRNA 조합을 포함하고,
   상기 3차원 배양된 중간엽 줄기세포의 특성은 증진된 니치 활성 및 콜로니-형성성을 포함하며,
   상기 니치 활성은 인접한 다른 종류의 줄기세포의 미분화능을 유지하고, 자가 재생능을 촉진시키는 것인, 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진용 조성물.
   
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4. 제1항에 있어서, 상기 중간엽 줄기세포는 지방조직, 골수, 말초혈액 또는 제대혈에서 유래한 것인, 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진용 조성물.
   
5. 3차원 배양된 중간엽 줄기세포의 특성을 모방하기 위해 중간엽 줄기세포의 인 비트로 2차원 배양 시 miR-379, miR-146b, miR-503, miR-145-5p, miR-193b, miR-365a, miR-29b 및 miR-129로 구성된 miRNA 조합을 중간엽 줄기세포에 처리하는 단계를 포함하고,
   상기 3차원 배양된 중간엽 줄기세포의 특성은 증진된 니치 활성 및 콜로니-형성성을 포함하며,
   상기 니치 활성은 인접한 다른 종류의 줄기세포의 미분화능을 유지하고, 자가 재생능을 촉진시키는 것인, 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진방법.
   
6. 제5항에 있어서,
   상기 처리는 miR-379, miR-146b, miR-503, miR-145-5p, miR-193b, miR-365a, miR-29b 및 miR-129로 구성된 miRNA의 조합을 중간엽 줄기세포에 형질감염시키는 것인, 중간엽 줄기세포의 니치 활성 증진방법.
   
   
   
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