KR101922346B1 - Mesenchymal stem cells spheroid-sheet complex for treating ulcer and preparation method thereof - Google Patents

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Abstract

The present invention relates to a stem cell spheroid-sheet complex and a preparation method thereof. The preparation method of the stem cell spheroid-sheet complex comprises: a step (A) of preparing a temperature-sensitive hydrogel; a step (B) of culturing a stem cell with a single cell form in a three-dimensional culture dish to prepare a stem cell spheroid; a step (C) of dividing the stem cell spheroid in the hydrogel to culture the stem cell spheroid; and a step (D) of cooling the surface of the hydrogel to separate the stem cell spheroid that has been cultured on the surface of the hydrogel in the form of a sheet. More specifically, the stem cell spheroid-sheet complex of the present invention can treat the lesion by expressing the bioactive factors which are not separated but remain to be required in tissue regeneration when bioactive factors are applied to a lesion exposed to the outside. The stem cell spheroid-sheet complex improves tissue regeneration capability of stem cells by having a high expression ratio of the bioactive factors and has an advantage of a significant ulcer treatment effect accordingly. Further, the preparation method of the present invention can minimize loss of the stem cells according to injection of the stem cells by injecting the temperature-sensitive hydrogel under a conventional lesion tissue with a needle. Therefore, the present invention is expected to be used as a new concept cell treatment technology for inducing regeneration of various damaged tissues of Pharyngeal fistula, tracheostenosis, cornea deficit, skin deficit, stomach ulcer, oral ulcer or the like, and treating the lesions exposed to the outside.

Description

궤양 치료용 줄기세포 스페로이드-시트 복합체 및 이의 제조방법{Mesenchymal stem cells spheroid-sheet complex for treating ulcer and preparation method thereof}[0001] The present invention relates to a mesenchymal stem cell spheroid-sheet complex for treating ulcer and a method for preparing the same,

본 발명은 궤양 치료용 줄기세포 스페로이드-시트 복합체 및 이의 제조방법 등에 관한 것으로, 보다 상세하게는 궤양 치료에 적용 시 줄기세포 전달 효율 및 그 생존율이 높으면서 세포 활성 인자의 발현이 뛰어나 치료 효과가 개선된 줄기세포 스페로이드-시트 복합체 및 이의 제조방법에 관한 것이다. The present invention relates to a stem cell sponge-sheet complex for the treatment of ulcers, and more particularly to a stem cell sponge-sheet complex for the treatment of ulcers, and more particularly, And a method for producing the same.

구강은 점막으로 구성되어 있으며, 점막은 인체 항상성 유지, 외부감염으로부터 일차 방어 역할을 수행하며 영양소·약물이 흡수되는 통로 역할을 한다. 점막에 결손이 생기면 세균 감염 및 점막 하부조직의 건조에 의한 장기 기능 상실을 유발한다. 과거 항암치료의 가장 주요한 부작용은 구토 증상과 골수 억제로 인한 면역력의 감소였으나 항구토제와 조혈세포 성장인자의 비약적인 발달로 인하여 많이 해결된 반면, 최근에는 점막염이 암환자 치료 중 가장 심각한 부작용으로 대두 되고 있다. 또한, 구강 점막염과 관련되어 발생하는 감염은 항암 치료로 면역 저하 상태에서는 전신 패혈증을 유발하여 사망의 원인이 되기도 한다.The oral cavity is composed of mucous membranes. The mucosa acts as a primary defense against external homeostasis, external infections, and acts as a channel for nutrients and drugs to be absorbed. If the mucosa is defective, it causes bacterial infection and loss of organ function due to drying of submucosal tissue. In the past, the most important side effects of chemotherapy were vomiting and reduction of immunity due to myelosuppression. However, it has been solved by the rapid development of antiepileptic drugs and hematopoietic growth factors. Recently, however, mucositis has become the most serious side effect have. In addition, infection caused by oral mucositis may cause death due to systemic sepsis in immunocompromised state by chemotherapy.

난치성 구강 궤양은 통증 유발 및 이로 인한 영양섭취 감소, 정맥 영양공급의 필요성 증가 및 환자의 삶을 저하시킨다. 호중구 감소증이 동반된 암환자에서는 패혈증의 고위험 인자이며 이로 인해 중증 점막염 환자의 10%는 사망에까지 이른다. 또한, 계획된 항암치료 및 방사선치료 용량 감소 혹은 치료 중단 유발, 항암제와 방사선의 동시 치료 저해 및 이에 따른 암 재발이 증가하고 있다. 뿐만 아니라, 구강 점막염이 발병하면 통증 조절을 위한 마약성 진통제, 감염 예방을 위한 항생제, 정맥 영양 공급, 위루관술 등의 추가 치료 및 시술이 필요하기 때문에, 항암 치료 도중 구강 궤양 발병 시 총 의료비용이 약 두배 증가한다. 6년간 국내 구강 점막염 환자는 약 30%가 증가하였으며 진료비 지급은 약 70% 상승하였다(2008년~2014년, 헬스조선).Intractable oral ulcers lead to pain and decreased nutritional intake, increased need for parenteral nutrition, and reduced patient life. In cancer patients with neutropenia, 10% of patients with severe mucositis are still at high risk for sepsis. In addition, planned chemotherapy and radiotherapy dose reduction, treatment interruption, inhibition of simultaneous treatment with chemotherapy and radiation, and subsequent cancer recurrence are increasing. In addition, the onset of oral mucositis requires additional treatments and procedures such as narcotic analgesics to control pain, antibiotics to prevent infection, parenteral nutrition, and gastrointestinal cirrhosis. About twice as much. The number of domestic oral mucositis patients increased by about 30% for 6 years, and the payment of medical expenses rose by about 70% (2008 ~ 2014, Health Chosun).

그럼에도 불구하고, 현재 구강 궤양(점막염)을 위한 직접적인 치료법이 없는 문제가 있었다. 성장인자를 활용한 치료법의 경우, 구강 암을 유발하여 FDA 승인을 받지 못하였고, 항염증제를 활용한 치료법 역시 임상 3상에서 효과 없음으로 판정 받아 FDA 승인을 받지 못하였다. Nevertheless, there is currently no direct treatment for oral ulcers (mucositis). In the case of treatment using growth factors, oral cancer was not induced and FDA approval was not obtained. Also, treatment using anti-inflammatory drugs was not approved by the FDA in clinical trials.

한편, 조직 재생을 위하여 줄기세포를 치료제로 사용하려는 다양한 시도가 이루어지고 있으나, 줄기세포는 단일세포(single cell)의 형태로 존재하는 경우, 이를 조직에 적용하였을 때 조직에 부착되지 않기 때문에 피부 등의 외부로 노출되어 있는 조직(오픈된 조직, opened tissue)에는 적용할 수 없는 문제가 있었다. 또한, 세포 부착이 용이한 조직 배양 접시(tissue culture dish)의 경우, 세포부착에 최소 6~12 시간이 필요한 것을 고려할 때, 단일세포 형태의 줄기세포가 오픈된 조직에 도입 시 다량이 손실되거나 사멸되는 문제가 있었다. 이에 따라, 오픈된 조직(예를 들어 구강 내 점막 등)의 치료를 위한 효과적인 줄기세포 치료제 개발에 대한 연구가 필요한 실정이었다.On the other hand, various attempts have been made to use stem cells as therapeutic agents for tissue regeneration. However, when stem cells are present in the form of single cells, they are not attached to tissues when applied to tissues. There is a problem that can not be applied to a tissue (open tissue) exposed to the outside of the tissue. In the case of a tissue culture dish which is easy to adhere to cells, considering that at least 6 to 12 hours are required for cell attachment, when a single cell type stem cell is introduced into an open tissue, There was a problem. Accordingly, there has been a need for research on the development of an effective stem cell therapeutic agent for treating open tissue (for example, oral mucosa, etc.).

대한구강악안면외과학회지 제28권 2호, 2002.4, 147-154, “Genistein을 투여한 햄스터 협낭 구강암 모델에서의 Vascular Endothelial Growth Factor(VEGF) 발현 변화에 대한 면역조직화학적 연구”Journal of Oral and Maxillofacial Surgery, Vol. 28, No. 2, 2002.4, 147-154, "Immunohistochemical Study on the Vascular Endothelial Growth Factor (VEGF) Expression in Genistein-

본 발명자들은, 줄기세포를 이용한 난치성 중증 구강 궤양의 치료법을 예의 연구한 결과 3D 스페로이드 형태로 배양한 줄기세포 스페로이드를 시트 형태로 환부에 적용하는 경우 그 치료 효과가 뛰어남을 확인하여 본 발명을 완성하였다.The inventors of the present invention have conducted intensive studies on the treatment of intractable severe oral ulcers using stem cells. As a result, they have found that the therapeutic effect of the present invention is excellent when the stem cell spoloids cultured in 3D spoloid form are applied to the affected part in the sheet form, Completed.

따라서, 본 발명은 줄기세포 스페로이드-시트 복합체 및 이의 제조방법을 제공함에 목적이 있다. Accordingly, the present invention has an object to provide a stem cell sphere-sheet complex and a method for producing the same.

그러나 본 발명이 이루고자 하는 기술적 과제는 이상에서 언급한 과제에 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 과제들은 아래의 기재로부터 당해 기술분야의 통상의 기술자에게 명확하게 이해될 수 있을 것이다.However, the technical problem to be solved by the present invention is not limited to the above-mentioned problems, and other matters not mentioned can be clearly understood by those skilled in the art from the following description.

상기와 같은 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 (A) 온도감응성 수화젤의 제조 단계; (B) 단일세포 형태의 줄기세포를 3D culture dish에서 배양하여 줄기세포 스페로이드를 제조하는 단계; (C) 상기 줄기세포 스페로이드를 상기 수화젤에 분주하여 배양하는 단계; 및 (D) 상기 수화젤 표면을 냉각하여 상기 수화젤 표면에서 배양한 줄기세포 스페로이드를 시트의 형태로 분리하는 단계;를 포함하는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 제조방법을 제공한다. In order to accomplish the above object, the present invention provides a method for producing a thermosensitive hygroscopic gel, comprising the steps of: (A) (B) culturing a single cell type of stem cells in a 3D culture dish to produce a stem cell spoloid; (C) dividing and culturing the stem cell spleod into the hydrogel; And (D) cooling the surface of the hydrogel to separate the stem cell sprooid cultured on the surface of the hydrogel into a sheet form. The present invention also provides a method for producing a stem cell sprooid-sheet complex.

본 발명의 일구현예로서, 상기 줄기세포 스페로이드-시트 복합체는 오픈된 조직(opened tissue) 결손 치료용일 수 있다. In one embodiment of the present invention, the stem cell spleoid-sheet complex may be for treating a opened tissue defect.

본 발명의 다른 구현예로서, 상기 (A)단계의 온도감응성 수화젤은 세포접착 단백질을 포함할 수 있다.In another embodiment of the present invention, the temperature-sensitive hydrogel of the step (A) may include a cell adhesion protein.

본 발명의 또 다른 구현예로서, 상기 세포접착 단백질은 피브로넥틴(fibronectin)일 수 있다. In another embodiment of the present invention, the cell adhesion protein may be fibronectin.

본 발명의 또 다른 구현예로서, 상기 (C)단계는 상기 줄기세포 스페로이드를 상기 수화젤의 단위면적(㎠)당 4 내지 400 개를 상기 수화젤에 분주하여 배양하는 것일 수 있다.In another embodiment of the present invention, the step (C) may be performed by dividing the stem cell spleod into 4 to 400 per unit area (cm 2) of the hydrated gel in the hydrated gel.

본 발명의 또 다른 구현예로서, 상기 (D)단계는 상기 수화젤 표면을 0 ℃ 내지 25 ℃까지 냉각하여 상기 수화젤 표면에서 배양한 줄기세포 스페로이드를 시트의 형태로 분리하는 것일 수 있다.In another embodiment of the present invention, the step (D) may be performed by cooling the surface of the hydrated gel to 0 ° C to 25 ° C to separate the stem cell sprooid cultured on the hydrogel surface into a sheet form.

또한, 본 발명은 상기 제조방법에 의해 제조된 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 제공하며, 상기 복합체는 오픈된 조직 결손 치료용일 수 있다. The present invention also provides a stem cell spleen-sheet complex produced by the above-described method, wherein the complex may be for treating an open tissue defect.

또한, 본 발명은 상기 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 개체의 결손이 있는 오픈된 조직에 이동시키는 단계를 포함하는 오픈된 조직 결손 치료 방법을 제공한다. The present invention also provides a method for treating an open tissue defect comprising the step of transferring the stem cell spleen-sheet complex to an open tissue of an individual's defect.

또한, 본 발명은 (a) 온도감응성 수화젤의 제조 단계; (b) 단일세포 형태의 줄기세포를 3D culture dish에서 배양하여 줄기세포 스페로이드를 제조하는 단계; (c) 상기 줄기세포 스페로이드를 상기 수화젤에 분주하여 시트 형태로 배양하는 단계; (d) 상기 줄기세포 배양 면이 환부와 접촉하도록 수화젤을 환부에 이동시키는 단계; 및 (e) 상기 수화젤 표면을 냉각하여 상기 수화젤 표면에서 배양한 줄기세포 스페로이드를 시트의 형태로 분리하고 수화젤을 제거하는 단계;를 포함하는 오픈된 조직 결손 치료 방법을 제공한다. The present invention also provides a process for preparing a thermosensitive hydrogel comprising: (a) preparing a thermosensitive hydrogel; (b) culturing single cell type stem cells in a 3D culture dish to prepare stem cell spheroids; (c) dividing the stem cell spleen into the hydrogel and culturing it in the form of a sheet; (d) moving the hydrogel to the affected area so that the stem cell culture surface contacts the affected part; And (e) cooling the surface of the hydrated gel to separate the stem cell sprooid cultured on the surface of the hydrogel into a sheet form and removing the hydrogel.

또한, 본 발명은 (가) 온도감응성 수화젤의 제조 단계; (나) 상기 수화젤 표면에 줄기세포를 분주하여 배양하는 단계; (다) 상기 수화젤 표면을 냉각하여 상기 수화젤 표면에서 배양한 줄기세포를 시트의 형태로 분리하는 단계; 및 (라) 상기 분리된 줄기세포 시트를 개체의 환부에 이동시키는 단계;를 포함하는 오픈된 조직 결손 치료 방법을 제공한다.The present invention also relates to a method for preparing a thermosensitive hydrogel comprising the steps of: (a) preparing a thermosensitive hydrogel; (B) dividing and culturing the stem cells on the surface of the hydrated gel; (C) cooling the surface of the hydrogel to separate the stem cells cultured on the hydrogel surface into a sheet form; And (d) moving the separated stem cell sheet to the affected part of the individual.

본 발명의 일구현예로서, 상기 (가)단계의 온도감응성 수화젤은 세포접착 단백질을 포함할 수 있다. In one embodiment of the present invention, the temperature-sensitive hydrogel of the step (a) may include a cell adhesion protein.

본 발명의 다른 구현예로서, 상기 세포접착 단백질은 피브로넥틴일 수 있다. In another embodiment of the present invention, the cell adhesion protein may be fibronectin.

또한, 본 발명은 상기 줄기세포 시트의 오픈된 조직 결손 치료 용도를 제공한다. In addition, the present invention provides a use for treating an open tissue defect of the stem cell sheet.

또한, 본 발명은 상기 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 오픈된 조직 결손 치료 용도를 제공한다. In addition, the present invention provides the use of said stem cell spleen-sheet complex for the treatment of open tissue defect.

본 발명의 일 구현예로서, 상기 오픈된 조직 결손은 인두 누공, 기관 협착, 각막결손, 피부 결손, 위 궤양, 및 구강 궤양으로 이루어진 군으로부터 선택된 하나 이상일 수 있다.In one embodiment of the present invention, the open tissue defect may be at least one selected from the group consisting of pharyngeal fistula, tracheal stenosis, corneal defect, skin defect, gastric ulcer, and oral ulcer.

본 발명에 따른 줄기세포 스페로이드-시트 복합체는 단일세포 줄기세포와 달리 외부로 노출되어 있는 병변에 적용하는 경우 이탈되지 않고 오랫동안 잔류하여 조직 재생에 필요한 생체 활성 인자들을 발현함으로써 병변을 치료할 수 있으며, 상기 줄기세포 스페로이드-시트 복합체는 줄기세포 시트보다 생체 활성 인자의 발현량이 현저하게 높아 줄기세포의 조직 재생 능력이 향상되고, 이에 따라 궤양 치료 효과가 상당한 장점이 있다. The stem cell spolide-sheet complex according to the present invention can treat a lesion by releasing bioactivity factors required for tissue regeneration without remaining for a long time when applied to a lesion exposed to the outside, unlike a single cell stem cell, The stem cell spoloid-sheet complex has a significantly higher expression level of a bioactive factor than a stem cell sheet, thereby improving the tissue regeneration ability of the stem cell and thus having a significant therapeutic effect on the ulcer.

또한, 본 발명에 따른 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 제조방법에 온도감응성 수화젤을 이용하여 종래 병변 조직 아래에 바늘로 주사하여 줄기세포를 주입함에 따른 줄기세포 손실을 최소화할 수 있고, 이때 온도감응성 수화젤에 세포접착 단백질을 적용함으로써 줄기세포의 생존율을 높게 유지할 수 있다. In addition, in the method for preparing a stem cell spleen-sheet complex according to the present invention, stem cells can be minimized by injecting stem cells with a needle under the conventional lesion tissue using a thermosensitive hydrogel, By applying the cell adhesion protein to the sensitive hydrogel, the survival rate of stem cells can be maintained high.

이에, 본 발명은 인두 누공, 기관 협착, 각막결손, 피부 결손, 위 궤양, 구강 궤양 등 다양한 손상된 조직의 재생 유도 및 외부로 노출되어 있는 병변 치료를 위한 신개념 세포치료 기술로 이용될 수 있을 것으로 기대된다. Accordingly, the present invention can be used as a new concept cell therapy technology for inducing regeneration of various injured tissues such as pharyngeal fistula, tracheal stenosis, corneal defect, skin defect, stomach ulcer, oral ulcer, and lesions exposed to the outside do.

도 1은 본 발명에 따른 줄기세포 시트 또는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 구강 궤양 치료에 적용하는 것을 도식화한 도면이다.
도 2는 중증 구강 궤양 동물 모델의 사진이다.
도 3은 온도에 따른 온도감응성 수화젤의 직경 변화를 확인한 도면이다.
도 4는 스페로이드 형태(3D)로 배양한 지방유래줄기세포, 골수유래줄기세포, 및 만능유도줄기세포유래줄기세포와 시트 형태(2D)로 배양한 지방유래줄기세포의 VEGF와 MMP-1의 단백질 발현량을 비교 확인한 도면이다.
도 5a는 수화젤 표면의 줄기세포 시트가 배양접시로 전달된 모습과 시간별 줄기세포 시트 전달 효율을 확인한 도이며, 도 5b는 배양접시에 전달된 줄기세포의 생존율을 확인한 도면이다.
도 6a는 3D culture dish에서 제조된 줄기세포 스페로이드를 나타낸 도이며, 도 6b는 세포부착 단백질이 도입된 온도감응성 수화젤 위에서 24시간 배양된 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 나타낸 도면이다.
도 7은 줄기세포 시트 또는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 구강 궤양 병변으로 전달하기 전과 후에, 온도감응성 수화젤 표면에 잔존하는 세포의 양을 확인한 도면이다.
도 8은 줄기세포 시트를 이용하여 구강 궤양 병변으로 전달된 줄기세포가 7일 동안 적용된 병변에 잔류함을 확인한 도면이다.
도 9는 AD-MSC 시트 또는 스페로이드-시트 복합체의 중증 구강 궤양 치료 효능을 비교 평가한 도면이다.
1 is a schematic diagram illustrating application of a stem cell sheet or a stem cell spheroid-sheet complex according to the present invention to oral ulcer treatment.
Figure 2 is a photograph of an animal model of severe oral ulcer.
FIG. 3 is a view showing a change in diameter of the temperature-sensitive hydrogel according to temperature.
FIG. 4 is a graph showing the changes in VEGF and MMP-1 levels of adipose derived stem cells, bone marrow-derived stem cells, and pluripotent stem cells derived from adipose-derived stem cells cultured in sheet form (2D) The amount of protein expression is compared and confirmed.
FIG. 5A is a view showing a state in which a stem cell sheet on the surface of a hydrogel is delivered to a culture dish and a stem cell sheet delivery efficiency over time, and FIG. 5B is a view showing a survival rate of a stem cell delivered to a culture dish.
FIG. 6A is a diagram showing stem cell spoloids prepared in a 3D culture dish, and FIG. 6B is a diagram showing a stem cell spoloid-sheet complex cultured on a temperature-sensitive hydrogel containing a cell adhesion protein for 24 hours.
FIG. 7 is a graph showing the amount of cells remaining on the surface of a thermosensitive hydrogel before and after transferring a stem cell sheet or a stem cell spheroid-sheet complex to an oral ulcer lesion.
FIG. 8 is a view showing that stem cells transferred to oral ulcer lesions using a stem cell sheet remain in lesions applied for 7 days.
9 is a comparative evaluation of the effectiveness of AD-MSC sheet or spleed-sheet complex for the treatment of severe oral ulcers.

본 발명은 다양한 변환을 가할 수 있고 여러 가지 실시예를 가질 수 있는 바, 특정 실시예들을 도면에 예시하고 상세하게 설명하고자 한다. 그러나, 이는 본 발명을 특정한 실시 형태에 대해 한정하려는 것이 아니며, 본 발명의 사상 및 기술 범위에 포함되는 모든 변환, 균등물 내지 대체물을 포함하는 것으로 이해되어야 한다. 본 발명을 설명함에 있어서 관련된 공지 기술에 대한 구체적인 설명이 본 발명의 요지를 흐릴 수 있다고 판단되는 경우 그 상세한 설명을 생략한다. The present invention is capable of various modifications and various embodiments, and specific embodiments are illustrated and described in the drawings. It is to be understood, however, that the invention is not to be limited to the specific embodiments, but includes all modifications, equivalents, and alternatives falling within the spirit and scope of the invention. DETAILED DESCRIPTION OF THE PREFERRED EMBODIMENTS Hereinafter, the present invention will be described in detail with reference to the accompanying drawings.

줄기세포를 이용한 피부 등 외부로 노출되어 있는 조직(오픈된 조직, opened tissue)의 치료에는 줄기세포가 가능한 오랫동안 병변에 부착하여 생존할 수 있어야 하는바, 종래 줄기세포를 이용한 오픈된 조직의 치료의 경우 줄기세포를 병변에 처리하는 과정에서 과량의 세포가 손실되며, 줄기세포가 병변에서 쉽게 탈락되고, 병변에 무사히 부착된 줄기세포 또한 쉽게 사멸하는 문제점이 있었다. In the treatment of open tissues (open tissues) exposed to the skin such as skin using stem cells, stem cells must be able to adhere to the lesion for as long as possible to survive, In the case of treating a stem cell with a lesion, excessive cells are lost, the stem cell easily disappeared from the lesion, and the stem cell adhered to the lesion is easily killed.

이에 본 발명자들은 줄기세포 시트의 경우, 줄기세포 단일세포와 달리, 오픈된 조직의 병변에 적용하는 경우 탈락되지 않고 오랜 시간 동안 그 부위에 부착함을 확인하였고(실시예 5 및 8 참조), 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 경우 줄기세포 시트의 적용과 마찬가지로 병변의 부착성이 뛰어나면서도 줄기세포 시트보다 조직 재생에 필요한 생체 활성 인자의 발현량이 약 5 ~ 10 배 증가하여 줄기세포의 조직 재생 능력이 강화됨을 확인하였다(실시예 4 및 7 참조). 또한, 줄기세포 시트 및 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 제조에 세포접착 단백질을 포함하는 온도감응성 수화젤을 이용하여 병변에 적용함에 따라 발생하는 줄기세포의 손실을 줄이고, 병변에 부착된 줄기세포의 생존률을 높게 유지할 수 있음을 실험적으로 확인하여 본 발명을 완성하였다. Thus, the present inventors confirmed that, unlike stem cell single cells, the stem cell sheet adheres to the site of the open tissue for a long time without being disappeared (see Examples 5 and 8) In the case of the cell sphere-sheet complex, the amount of bioactive factor required for tissue regeneration is increased by about 5 to 10 times as much as that of the stem cell sheet, (See Examples 4 and 7). In addition, the use of a thermo-sensitive hydrogel containing a cell adhesion protein in the preparation of a stem cell sheet and a stem cell sphere-sheet complex reduces the loss of stem cells caused by application to lesions, And the survival rate can be maintained at a high level.

이에 본 발명은, (A) 온도감응성 수화젤의 제조 단계; (B) 단일세포 형태의 줄기세포를 3D culture dish에서 배양하여 줄기세포 스페로이드를 제조하는 단계; (C) 상기 줄기세포 스페로이드를 상기 수화젤에 분주하여 배양하는 단계; 및 (D) 상기 수화젤 표면을 냉각하여 상기 수화젤 표면에서 배양한 줄기세포 스페로이드를 시트의 형태로 분리하는 단계;를 포함하는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 제조방법을 제공한다. Accordingly, the present invention provides a method for producing a thermosensitive hygroscopic gel, comprising the steps of: (A) (B) culturing a single cell type of stem cells in a 3D culture dish to produce a stem cell spoloid; (C) dividing and culturing the stem cell spleod into the hydrogel; And (D) cooling the surface of the hydrogel to separate the stem cell sprooid cultured on the surface of the hydrogel into a sheet form. The present invention also provides a method for producing a stem cell sprooid-sheet complex.

본 발명의 일 측면에 따르면, 상기 줄기세포 스페로이드-시트 복합체는 오픈된 조직 결손 치료용일 수 있으며, 바람직하게는 피부 손상 및/또는 궤양 치료용일 수 있으며, 상기 궤양에는 소화성 궤양, 각막 궤양(눈 궤양), 피부 궤양(욕창 궤양), 당뇨병성 궤양, 동맥경화성 궤양, 울혈성 궤양, 매독에 의한 궤양, 연성하감, 허피스성 궤양(비뇨생식기 궤양), 아프타구내염, 베체트병, 구강 궤양 등이 포함될 수 있으며, 상기 소화성 궤양에는 바레트 궤양(Barrett’s ulcer), 컬링 궤양(Curling ulcer), 쿠싱 궤양(Cushing ulcer), 공장 궤양, 대장 궤양 등을 포함할 수 있다. 또한, 상기 오픈된 조직 결손의 비제한적인 예로써 인두 누공, 기관 협착, 각막결손, 피부 결손, 위 궤양, 및 구강 궤양 등이 있다. According to an aspect of the present invention, the stem cell spleen-sheet complex may be used for treating an open tissue defect, preferably for treatment of skin damage and / or ulcer, and the ulcer includes peptic ulcer, corneal ulcer (Ulcer), skin ulcer (ulcer ulcer), diabetic ulcer, arteriosclerotic ulcer, congestive ulcer, syphilis ulcer, ductal ulcer, herpetic ulcer (genitourinary ulcer), aphtha stomatitis, Behcet's disease, oral ulcer The peptic ulcer may include Barrett's ulcer, Curling ulcer, Cushing ulcer, plant ulcer, colonic ulcer, and the like. Also, non-limiting examples of the open defect include pharyngeal fistula, tracheal stenosis, corneal defect, skin defect, gastric ulcer, and oral ulcer.

구강 점막은 상대적으로 각질화가 이루어지지 않은 구조이며, 특히 구강은 자주 움직이는 부위로 줄기세포 치료에 있어 단일세포로 처리하는 경우 그 이탈이 빈번하게 일어나지만, 본 발명에 따라 시트 형태로 제공되는 줄기세포는 점막에 효과적으로 부착하고 오랜 시간 잔류할 수 있다. The oral mucosa is a structure in which keratinization is not relatively performed. In particular, the oral cavity frequently moves. In the treatment of stem cells, the oocyte is often dislodged when treated with a single cell. However, Can effectively adhere to the mucosa and remain for a long time.

또한, 구강 점막에는 혈관이 풍부하기 때문에 구강 병변에 적용된 줄기세포에서 분비되는 생체 활성 인자의 작용이 활발하게 이루어질 수 있다. 한편, 스페로이드 형태의 줄기세포가 시트 형태보다 생체 활성 인자의 발현량이 현저하게 높음을 확인하여, 스페로이드 형태와 시트 형태를 결합하여 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 형성함으로써, 구강 궤양에 적용 시 다량의 생체 활성 인자를 발현하면서도 구강 점막에 부착성을 높여 그 치료 효과를 비약적으로 높일 수 있다. In addition, since the oral mucosa is rich in blood vessels, bioactive factors secreted from stem cells applied to oral lesions can actively act. On the other hand, it has been confirmed that the expression level of bioactive factors is higher than that of the spleen-like stem cells in the sheet form, and the spleen form and the sheet form are combined to form a stem cell spleed-sheet complex, It is possible to dramatically increase the therapeutic effect by increasing the adhesion to the oral mucosa while expressing a large amount of bioactive factors.

본 발명의 다른 측면에 따르면, 상기 (A)단계의 온도감응성 수화젤은 세포접착 단백질(cell adhesion molecule, CAM)을 포함할 수 있으며, 본 발명에서 “세포접착 단백질”이란 세포와 세포, 세포와 matrix, 세포와 기타 물질의 결합을 용이하게 하는 것으로써, 예를 들어, 카드헤린(Cadherin), 피브리노겐(fibrinogen), 피브로넥틴(fibronectin), 비트로넥틴(vitroectin), 라미닌(laminin), 콜라젠(collagen), 셀렉틴(selectin) 등 일 수 있으나, 바람직하게는 피브로넥틴일 수 있다. According to another aspect of the present invention, the temperature-sensitive hydrogel of step (A) may include a cell adhesion molecule (CAM). In the present invention, the term "cell adhesion protein" matrix, which facilitates the binding of cells to other substances, such as, for example, Cadherin, fibrinogen, fibronectin, vitroectin, laminin, collagen, , Selectin, etc., but may be preferably fibronectin.

본 발명의 또 다른 측면에 따르면, 상기 (C)단계에서 상기 수화젤에 분주되는 줄기세포 스페로이드의 갯수는 병변의 크기, 수화젤의 크기 등에 따라 가변적일 수 있다. 수화젤의 크기는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 적용하고자 하는 병변의 크기에 따라 결정되며, 줄기세포 스페로이드-시트 복합체가 병변에서 이탈하지 않고 적절하게 부착되어 그 치료 효과를 극대화 하기 위하여 병변의 크기와 같거나 유사하게 제조할 수 있다. 본 발명에 의해 제공되는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 구강 점막에 적용하는 경우에 있어서, 구강은 움직임이 많고 그 움직임 또한 섬세하기 때문에 상기 줄기세포 스페로이드-시트 복합체는 크기가 작고 유연해야 한다. According to another aspect of the present invention, in step (C), the number of stem cell spleoids dispensed in the hydrogel may vary depending on the size of the lesion, the size of the hydrogel, and the like. The size of the hydrogel is determined by the size of the lesion to which the stem cell spolide-sheet complex is to be applied, and the stem cell spolide-sheet complex is appropriately adhered without detaching from the lesion, Size or similar. In the case of applying the stem cell spoloid-sheet complex provided by the present invention to the oral mucosa, the stem cell spoloid-sheet complex must be small in size and flexible because the mouth is highly motion and its movement is delicate.

병변의 크기에 따라 상기 수화젤에 분주되는 줄기세포 스페로이드의 갯수는 가변적이지만, 성장인자들은 고농도에서 자가억제제로서 역할을 하는 것을 고려할 때, 많은 양의 스페로이드로부터 발현되는 고농도의 생체 활성 인자들은 조직 재생을 억제할 수 있는 가능성이 있는 문제가 있다. 또한, 조직 재생을 위해서는 생체 활성 인자들이 유효한 농도(therapeutic concentration)을 유지해야 하는 것을 고려할 때, 적은 양의 스페로이드에서 발현되는 생체 활성 인자들은 충분한 역할을 하지 못하는 문제가 있다. 따라서, 상기 (C)단계에서 상기 수화젤에 분주되는 줄기세포 스페로이드의 갯수는 가변적일 수 있으나, 바람직하게는 적용하고자 하는 병변 크기에 따라 결정되는 수화젤의 단위면적(㎠)당 4개 내지 400개, 더욱 바람직하게는 40개 내지 110개 일 수 있다.Considering that the number of stem cell spoloids distributed in the hydrated gel varies depending on the size of the lesion, but growth factors act as self-inhibitors at high concentrations, high concentrations of bioactivity factors expressed from a large amount of spoloids There is a possibility that the tissue regeneration can be suppressed. Further, considering that the bioactive factors must maintain a therapeutic concentration for tissue regeneration, there is a problem that the bioactive factors expressed in a small amount of the sphere do not play a sufficient role. Therefore, the number of stem cell spheroids to be dispensed in the hydrated gel in the step (C) may be variable, but it is preferable that the number of the stem cell spheroids distributed in the hydrated gel is 4 or more per unit area (cm 2) 400, and more preferably 40 to 110,

본 발명에서 이용된 온도감응성 수화젤은 저임계 용액 온도 (lower critical solution temperature; LCST)를 보이는 온도감응성 고분자로 구성된 것으로서, 온도가 증가함에 따라 고분자의 자유도가 낮아진다. 즉, LCST보다 높은 온도에서 수축하고, 그보다 낮은 온도에서 팽창하는 특성을 가지고 있다. 상기와 같은 온도감응성 수화젤의 특성을 이용하여 줄기세포 시트 또는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 표면에 두고 있는 수화젤을 구강 점막에 부착하는 경우 체온에 의해 수화젤은 부피팽창 없이 줄기세포를 구강 병변에 전달할 수 있고, 충분한 시간이 지난 후, 수화젤 표면을 냉각하여 수화젤이 팽창하면 수화젤과 줄기세포 시트 또는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체가 분리되어, 줄기세포의 손실 및/또는 손상없이 병변에 전달할 수 있다. The thermosensitive hydrogel used in the present invention is composed of a thermosensitive polymer exhibiting a lower critical solution temperature (LCST), and the degree of freedom of the polymer is lowered as the temperature is increased. That is, it has a property of shrinking at a temperature higher than LCST and expanding at a lower temperature. When a hydrogel having a stem cell sheet or a stem cell sphere-sheet composite on its surface is attached to the oral mucosa using the above-mentioned characteristics of the thermosensitive hydrogel, the hydrogel does not expand the volume of the hydrogel, After a sufficient time has elapsed, the hydrated gel is cooled by cooling the surface of the hydrogel to separate the hydrogel and the stem cell sheet or the stem cell spheroid-sheet complex, and without loss of stem cells and / or damage Can be delivered to the lesion.

따라서, 본 발명의 일 측면에 따르면, 상기 (D)단계는 상기 수화젤 표면을 0℃ 내지 10℃까지 냉각하여 상기 수화젤 표면에서 배양한 줄기세포 스페로이드를 시트의 형태로 분리하는 것일 수 있고, 상기 냉각 온도는 바람직하게는 0 ℃ 내지 25 ℃, 더욱 바람직하게는 4 ℃ 내지 10 ℃일 수 있다. 상기 냉각 온도가 25℃보다 높을 경우 수화젤의 팽창율이 낮아 수화젤과 줄기세포 시트 또는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 분리가 제대로 이루어지지 않고, 0℃보다 낮은 경우 수화젤과 줄기세포 시트 또는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체간의 분리는 원활하게 이루어지지만 줄기세포의 세포사멸 등에 의한 줄기세포 손실을 야기할 수 있다.Thus, according to an aspect of the present invention, the step (D) may be a step of cooling the surface of the hydrogel to 0 ° C to 10 ° C to separate the stem cell sprooid cultured on the surface of the hydrogel into a sheet form , The cooling temperature may preferably be 0 캜 to 25 캜, more preferably 4 캜 to 10 캜. If the cooling temperature is higher than 25 ° C, the hydration gel may not be separated from the stem cell sheet or the stem cell sphere-sheet complex due to a low expansion ratio of the hydrogel, and when the temperature is lower than 0 ° C, Segregation between cell spoloid-sheet complexes is smooth, but it may cause stem cell loss due to cell death of stem cells.

줄기세포 시트 혹은 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 전달 시간은 냉각 온도와 비례한다. The delivery time of the stem cell sheet or stem cell sphere-sheet complex is proportional to the cooling temperature.

또한, 본 발명은 상기 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 개체의 환부에 이동시키는 단계를 포함하는 오픈된 조직 결손의 치료 방법을 제공한다. 본 발명에서 “오픈된 조직(opened tissue)”이란 피부를 포함한 외부 환경에 노출된 조직을 의미하며, 본 발명에서 “오픈된 조직 결손”은 염증, 괴사, 세포사멸 등으로 인하여 상기 오픈된 조직 내의 세포가 소실되는 것을 의미하고, 피부 손상 및 궤양을 포함한다. The present invention also provides a method for treating an open tissue defect comprising the step of transferring the stem cell spleen-sheet complex to the affected part of the individual. In the present invention, " opened tissue " means a tissue exposed to the external environment including skin. In the present invention, " open tissue defect " means a tissue defect in the open tissue Means that the cells are lost, and includes skin damage and ulcers.

본 발명에서 “궤양”이란 염증, 괴사 등으로 인하여 상피가 탈락하여 조직표면이 국소적으로 결손되거나 함몰된 것을 의미하고, 상기 궤양은 소화성 궤양, 각막 궤양(눈 궤양), 피부 궤양(욕창 궤양), 당뇨병성 궤양, 동맥경화성 궤양, 울혈성 궤양, 매독에 의한 궤양, 연성하감, 허피스성 궤양(비뇨생식기 궤양), 아프타구내염, 베체트병, 구강 궤양 등 일 수 있으며, 바람직하게는 구강 궤양일 수 있다. 본 발명에서 오픈된 조직 결손 치료는 궤양 치료를 포함하는 의미로 해석되며, 상기 치료를 요하는 오픈된 조직과 궤양은 혼용될 수 있다. In the present invention, the term " ulcer " means that the epithelium is removed due to inflammation, necrosis, etc., and the surface of the tissue is locally deficient or depressed. The ulcer refers to peptic ulcer, corneal ulcer (eye ulcer), skin ulcer , A diabetic ulcer, an arteriosclerotic ulcer, a congestive ulcer, a ulcer due to syphilis, a soft laxity, a herpetic ulcer (genitourinary ulcer), an aphthae stomatitis, a Behcet's disease, an oral ulcer, have. In the present invention, open tissue defect treatment is interpreted as including the treatment of ulcer, and the open tissue and ulcer requiring the treatment may be mixed.

본 발명에서 "개체"란 질병의 치료를 필요로 하는 대상을 의미하고, 보다 구체적으로는 인간 또는 비-인간인 영장류, 생쥐 (mouse), 쥐 (rat), 개, 고양이, 말, 토끼, 및 소 등의 포유류를 의미한다.The term " individual " as used herein refers to a subject in need of treatment of a disease, and more particularly, a human or non-human primate, mouse, rat, dog, cat, horse, rabbit, And mammals such as cows.

또한, 본 발명은 (가) 온도감응성 수화젤의 제조 단계; (나) 상기 수화젤 표면에 줄기세포를 분주하여 배양하는 단계; (다) 상기 수화젤 표면을 냉각하여 상기 수화젤 표면에서 배양한 줄기세포를 시트의 형태로 분리하는 단계; 및 (라) 상기 분리된 줄기세포 시트를 개체의 환부에 이동시키는 단계;를 포함하는 오픈된 조직 결손의 치료 방법을 제공한다.The present invention also relates to a method for preparing a thermosensitive hydrogel comprising the steps of: (a) preparing a thermosensitive hydrogel; (B) dividing and culturing the stem cells on the surface of the hydrated gel; (C) cooling the surface of the hydrogel to separate the stem cells cultured on the hydrogel surface into a sheet form; And (d) moving the separated stem cell sheet to the affected part of the individual.

이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예를 제시한다. 그러나 하기의 실시예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐, 하기 실시예에 의해 본 발명의 내용이 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, preferred embodiments of the present invention will be described in order to facilitate understanding of the present invention. However, the following examples are provided only for the purpose of easier understanding of the present invention, and the present invention is not limited by the following examples.

[[ 실시예Example ]]

실시예Example 1. 중증 구강 궤양 동물 모델  1. Severe oral ulcer animal model

토끼 중증 구강 궤양 동물 모델을 유도하였다. 상기 구강 궤양 동물 모델은, 도 2에 나타낸 바와 같이, 토끼의 gingival oral mucosa에 70% acetic acid (200㎕)를 적신 직경 약 4㎜의 필터페이퍼를 1분간 접촉시켜 직경 약 6㎜ 궤양을 야기하여 제작되었다. 상기 구강 궤양 동물 모델에 사용된 토끼는 수컷 New Zealand White rabbit이며, 시술 당시 3.0~3.2 kg의 체중을 유지하고 있었다. Rabbit severe oral ulcer animal models were induced. As shown in Fig. 2, the oral ulcer animal model was prepared by causing a filter paper having a diameter of about 4 mm impregnated with 70% acetic acid (200 μl) in a rabbit gingival oral mucosa for 1 minute to produce a ulcer having a diameter of about 6 mm . The rabbits used in the oral ulcer animal model were male New Zealand white rabbits and maintained a body weight of 3.0 to 3.2 kg at the time of the procedure.

이하 실험에서 줄기세포 시트 또는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 적용은 구강 궤양 유도 3일 후 수행되었다. In the following experiments, the application of the stem cell sheet or stem cell sphere-sheet composite was performed 3 days after induction of oral ulcer.

실시예Example 2.  2. 온도감응성Temperature Sensitivity 수화젤의Hydrated gel 제조  Produce

온도감응성 수화젤의 제작을 위해 말단 작용기가 tyramine으로 치환된 Tetronic® 1307 고분자 (Tetronic-tyramine; Tet-TA)를 사용하였다. 분말 형태의 Tet-TA 고분자는 사용을 위해 phosphate buffered saline (PBS)에 12%(w/v)의 농도로 녹인 후 fibronectin (final concentration, 50㎍/㎖)을 첨가하여 교반한 뒤, 두 개의 튜브에 용액을 나누어 준비하였다. 첫번째 튜브에는 H2O2 (0.1%) 용액을, 두번째 튜브에는 horseradish peroxidase (HRP, 0.0025㎎/㎖) 용액을 첨가하여 각각의 용액을 충분히 교반한 후, 준비된 두 종류의 용액을 1:1의 비율로 혼합한 뒤 주사기를 이용하여 Teflon spacer (0.5 ㎜)로 간격이 조절된 유리판 사이에 주입하였다. 혼합된 용액은 유리판 사이에서 반응하여 온도감응성 수화젤을 형성하며, 약 10분간의 반응 이후 유리판에서 분리하였다. 분리된 수화젤은 biopsy punch를 이용하여 지름 8 ㎜의 디스크 형태로 재단하였고, 멸균을 위하여 30분간 UV에 노출 후 사용 직전까지 PBS에 담아 37 ℃ 인큐베이터에서 보관하였다. Thermosensitive hydrogel polymer Tetronic ® 1307 (Tetronic-tyramine; Tet-TA ) a functional terminal group substituted with tyramine for the production of a was used. The powdered Tet-TA polymer was dissolved in phosphate buffered saline (PBS) at a concentration of 12% (w / v), added with fibronectin (final concentration, 50 μg / Was prepared by dividing the solution. The first tube contained H 2 O 2 (HRP, 0.0025 mg / ml) solution was added to the second tube. After mixing each solution thoroughly, the two prepared solutions were mixed at a ratio of 1: 1, Were injected between glass plates spaced with Teflon spacer (0.5 mm). The mixed solution reacted between the glass plates to form a thermosensitive hydrated gel, which was separated from the glass plate after about 10 minutes of reaction. The separated hydrogels were cut into 8 ㎜ diameter disks using biopsy punch. After sterilization, they were exposed to UV for 30 minutes and stored in a 37 ℃ incubator until they were used.

이어서, 온도감응성 수화젤의 팽창율을 평가하기 위해 37 ℃와 4 ℃에서 각각 1일동안 보관된 수화젤의 크기를 측정하여 변화된 수화젤의 직경를 정량 분석하였다. Next, to evaluate the rate of expansion of the thermosensitive hydrogel, the size of the hydrated gel stored at 37 ° C and 4 ° C for 1 day was measured, and the diameter of the hydrogel was quantitatively analyzed.

그 결과, 도 3에 나타낸 바와 같이, 제조된 수화젤은 37 ℃에서 4 ℃로 변화할 때 약 1.4배 그 직경이 증가하는 것을 확인하였다.As a result, as shown in FIG. 3, it was confirmed that the diameter of the hydrogel prepared was about 1.4 times as large as that of the hydrated gel when it was changed from 37 ° C to 4 ° C.

실시예Example 3. 줄기세포  3. Stem cells 스페로이드(Spheroid)의Of Spheroid 제조 Produce

줄기세포 스페로이드의 제조를 위해서 우선 지방유래줄기세포 (adipose-derived mesenchymal stem cells, AD-MSC)를 trypsin/EDTA 처리해서 조직배양접시(tissue culture dish)로부터 분리하여 단일세포로 분리하였다. 획득한 단일세포의 수를 고려하여, 단일세포 용액의 농도가 1x106 cells/㎖ 이 되도록 세포 배양액을 첨가해주었다. 1㎖의 세포 용액을 3D culture dish (StemFit® 3D, Microfit, Korea)에서 3일 동안 배양하였다.For the production of stem cell spleens, adipose-derived mesenchymal stem cells (AD-MSC) were isolated from tissue culture dishes by trypsin / EDTA treatment and separated into single cells. Considering the number of single cells obtained, the cell culture medium was added so that the concentration of the single cell solution was 1 × 10 6 cells / ml. 1 ml of the cell solution was cultured in a 3D culture dish (StemFit ® 3D, Microfit, Korea) for 3 days.

실시예Example 4. 줄기세포  4. Stem cells 스페로이드의Spearoid 조직 재생 유효성분 발현 확인 Confirmation of tissue regeneration effective ingredient expression

줄기세포 스페로이드의 조직 재생에 관여하는 유효 단백질의 발현량을 확인하였다. 구체적으로, 신생혈관에 관여하는 유효 단백질인 vascular epithelial growth factor (VEGF)의 발현량과 세포이동에 관여하는 유효 단백질인 matrix metalloproteinase-1 (MMP-1)의 발현량을 ELISA를 이용하여 정량하였다. 줄기세포는 지방유래줄기세포 (adipose-derived mesenchymal stem cells, AD-MSC), 골수유래줄기세포 (bone marrow-derived mesenchymal stem cells, BM-MSC), 만능유도줄기세포유래줄기세포 (induced pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cells, iPS-MSC)를 상기 실시예 3의 방법으로 각각 스페로이드 형태(3D)로 배양하였다. 대조군으로 AD-MSC를 시트 형태(2D)로 배양하여 VEGF와 MMP-1 발현량을 정량하였다. The expression level of the effective protein involved in regeneration of stem cell spoloid was confirmed. Specifically, the amount of expression of vascular epithelial growth factor (VEGF), an effective protein involved in neovascularization, and the expression level of matrix metalloproteinase-1 (MMP-1), an effective protein involved in cell migration, were quantitated by ELISA. The stem cells are derived from adipose-derived mesenchymal stem cells (AD-MSC), bone marrow-derived mesenchymal stem cells (BM-MSC), induced pluripotent stem cells -derived mesenchymal stem cells (iPS-MSC) were each cultured in the form of spheroids (3D) by the method of Example 3 above. As a control, AD-MSC was cultured in sheet form (2D) to quantitate VEGF and MMP-1 expression.

그 결과, VEGF 발현량의 경우, 도 4의 왼쪽 패널에 나타낸 바와 같이, AD-MSC 스페로이드와 BM-MSC 스페로이드에서 높은 발현량을 확인하였으며, iPS-MSC 스페로이드와 비교시 약 3배 높음을 확인하였다. 또한, AD-MSC 스페로이드는 AD-MSC 시트 대비 약 16배 높은 VEGF 발현량을 보여주었다. As a result, in the case of VEGF expression amount, as shown in the left panel of FIG. 4, a high expression level was confirmed in AD-MSC spoil and BM-MSC speoldo, and about three times as high as in iPS-MSC speold Respectively. In addition, AD-MSC spolide showed approximately 16-fold higher expression of VEGF than AD-MSC sheet.

MMP-1 발현량의 경우, 도 4의 오른쪽 패널에 나타낸 바와 같이, BM-MSC 스페로이드와 iPS-MSC 스페로이드의 발현량 대비 AD-MSC 스페로이드의 발현량이 각각 약 3배와 5배로 높음을 확인하였다. 또한, AD-MSC 시트 대비 AD-MSC 스페로이드는 약 7배의 높은 MMP-1 발현량을 확인하였다.In the case of MMP-1 expression, as shown in the right panel of FIG. 4, the expression levels of AD-MSC sphaeroide were about 3-fold and 5-fold higher than that of BM-MSC and iPS- Respectively. In addition, AD-MSC spleod compared to AD-MSC sheet showed about 7-fold higher expression of MMP-1.

상기로부터, 시트 형태의 줄기세포와 비교하여 스페로이드 형태로 배양된 줄기세포에서 조직 재생 유효 성분들의 발현량이 증가되는 것을 확인하였고, 줄기세포 중에서도 AD-MSC 스페로이드의 조직 재생 유효성분의 발현량이 가장 높음을 확인하였다.From the above, it was confirmed that the expression levels of tissue regeneration effective ingredients were increased in the stem cells cultured in the spoloid form as compared with the sheet-type stem cells, and the expression amount of the regenerating active ingredient of AD-MSC spolod was the most Respectively.

실시예Example 5.  5. 수화젤Hydrating Gel 표면에서 줄기세포 시트의 제조 Production of stem cell sheets from the surface

줄기세포 시트의 제조를 위해 AD-MSC를 사용하였다. AD-MSC를 MesenPro RS kit (Gibco)를 이용하여 배양액을 준비한 뒤 충분한 세포 수 확보를 위해 조직배양접시에 분주하여 37 ℃, 5% CO2의 조건에서 배양하였다. 상기 배양된 세포는 PBS에 2회 세척(washing)한 후 3분 동안 trypsin/EDTA 처리하여 단일 세포의 형태로 얻어낸 후, 상기 실시예 2의 방법으로 제조된 세포부착 단백질이 도입된 온도감응성 수화젤 표면에 1 x 105 cells/cm2의 농도로 분주하였다. 세포 분주 24시간 이후 상기 수화젤 표면에서 단일층의 줄기세포 시트가 형성되는 것을 확인하였다. AD-MSC was used for the production of stem cell sheets. AD-MSC was prepared by using MesenPro RS kit (Gibco), and then cultured in a tissue culture dish at 37 ° C and 5% CO 2 to ensure sufficient cell numbers. The cultured cells were washed twice with PBS and treated with trypsin / EDTA for 3 minutes to obtain single cells. Then, the cells were incubated with a temperature sensitive hydrated gel Lt; 5 > cells / cm < 2 & gt ;. After 24 hours of cell division, a single layer of stem cell sheet was formed on the hydrogel surface.

이어서, 수화젤의 줄기세포 시트 전달 능력을 확인하기 위하여, 줄기세포 시트가 형성된 수화젤을 배양접시에 뒤집어 올려 37 ℃ 에서 15분 동안 세포와 바닥면과의 접착을 유도한 후 수화젤을 4 ℃에 옮겨 각각 5분, 10분, 15분간 팽창시켜 수화젤에서 배양 접시로 줄기세포 시트의 자연적인 탈락을 유도하고 수화젤을 제거하였다. 상기 방법에 의해 배양 접시로 줄기세포 시트를 전달한 후, 세포의 생존율 확인을 위하여 Live/dead assay(LIVE/DEAD® Viability/Cytotoxicity Kit for mammalian cells, ThermoFisher)를 진행하였으며, 그 결과 살아있는 세포는 초록색(calcein-AM)으로 죽은 세포는 빨간색(ethidium homodimer-1)으로 염색된 것을 형광현미경(NIKON epifluorescence microscope)을 통하여 확인할 수 있었다.Next, in order to examine the ability of the hydrogel to transmit the stem cell sheet, the hydrogel formed with the stem cell sheet was turned upside down on the culture dish to induce adhesion between the cells and the bottom surface at 37 ° C for 15 minutes, For 5 minutes, 10 minutes, and 15 minutes, respectively, to induce the natural elimination of the stem cell sheet and remove the hydrogel from the hydrogel in the culture dish. After passing the stem cell sheet in the culture dish by the above method, in order to determine the survival rate of cells was conducted to Live / dead assay (LIVE / DEAD ® Viability / Cytotoxicity Kit for mammalian cells, ThermoFisher), as a result the living cells are green ( Calcein-AM) cells were stained with red (ethidium homodimer-1), which was confirmed by fluorescence microscopy (NIKON epifluorescence microscope).

그 결과, 도 5a에 나타낸 바와 같이, 10분간 팽창시킨 수화젤에서 80% 이상의 높은 세포시트 전달 효율을 보이는 것을 확인하였다. 또한, 도 5b에 나타낸 바와 같이, 상기와 같이 전달된 줄기세포는 약 90%의 높은 생존율을 보임을 확인하였다. As a result, as shown in FIG. 5A, it was confirmed that the cell sheet delivery efficiency was as high as 80% or more in the hydrogel which was expanded for 10 minutes. In addition, as shown in FIG. 5B, it was confirmed that the thus delivered stem cells had a high survival rate of about 90%.

실시예Example 6. 줄기세포  6. Stem cells 스페로이드Speroid -시트 복합체의 제조- Preparation of sheet composite

상기 실시예 3의 방법으로 제조된 줄기세포 스페로이드 17-20개를 상기 실시예 2의 방법으로 제조된 세포부착 단백질이 도입된 온도감응성 수화젤 위에 분주 한 후, 24시간 동안 배양하여 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 제조하였다. 이때, 17~20개의 줄기세포 스페로이드를 구성하는 총 세포의 수는 줄기세포 시트(2D)를 구성하는 총 세포의 수와 동일하게 하였다. 도 6a는 상기 실시예 3의 방법으로 제조된 줄기세포 스페로이드의 형상이고, 도 6b는 본 실시예 6에 의해 제조된 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 형상이며, 상기 복합체를 구강 궤양 병변에 적용하였다.17-20 stem cell spleens prepared by the method of Example 3 were dispensed on the temperature sensitive hydrogel in which the cell adhesion protein prepared in Example 2 was introduced and then cultured for 24 hours. Lid-sheet composite. At this time, the total number of cells constituting 17-20 stem cell spoloids was made equal to the total number of cells constituting the stem cell sheet (2D). FIG. 6A shows the shape of stem cell spoloids prepared by the method of Example 3, FIG. 6B shows the shape of the stem cell spoloid-sheet complex prepared by Example 6, and the complex is applied to oral ulcer lesions Respectively.

실시예Example 7. 구강 궤양 병변으로 줄기세포 시트 또는 줄기세포  7. Oral ulceration lesions are stem cell sheets or stem cells 스페로이드Speroid -시트 복합체의 전달 효율 평가- Evaluation of transfer efficiency of sheet composite

상기 실시예 5 및 6에 따라 제조된 줄기세포 시트 및 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 구강 궤양 병변으로의 전달 효율을 확인하기 위하여, 줄기세포만 형광물질(Vybrant® DiD Cell-labeling Solution, Invitrogen)로 표지된 줄기세포로 달리하여 상기 실시예 5 및 6에 따라 줄기세포 시트 및 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 제조하였다. 이후 수화젤 표면에 줄기세포 시트 또는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체가 구강 궤양 병변에 세포들이 닿을 수 있도록 수화젤을 뒤집어 적용하였다. 15분 후, 수화젤을 팽창시켜 줄기세포를 병변으로 전달하기 위해서 수화젤 위로 4 ℃의 PBS를 10분간 흘려주었다. 수화젤에서 줄기세포가 전달되었는지 확인하기 위하여, 형광현미경을 통해 줄기세포 전달 전 후의 수화젤 위의 잔존 세포를 확인하였다.In order to confirm the delivery efficiency of the stem cell sheet and the stem cell spoloid-sheet complex prepared according to Examples 5 and 6 to oral ulcer lesions, only the stem cells were treated with a fluorescent material (Vybrant ® DiD Cell-labeling Solution, Invitrogen) , A stem cell sheet and a stem cell spleed-sheet complex were prepared according to Examples 5 and 6 above. The hydrogel gel was then applied to the surface of the hydrogel so that the cells could reach the lesion of the oral ulcer by the stem cell sheet or the stem cell sphere - sheet complex. After 15 minutes, the hydrogel was inflated to deliver the stem cells into the lesion, and PBS (4 ° C) was flowed over the hydrogel for 10 minutes. To confirm whether stem cells were transferred from the hydrogel, we observed the remaining cells on the hydrogel before and after stem cell transfection through a fluorescence microscope.

그 결과, 도 7에 나타낸 바와 같이, 수화젤 위의 줄기세포 시트 또는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체가 모두 병변 부위로 전달됨을 확인하였다.As a result, as shown in Fig. 7, it was confirmed that the stem cell sheet or the stem cell sphere-sheet complex on the hydrogel was all transferred to the lesion site.

실시예Example 8. 구강 궤양 병변에 잔류 줄기세포 평가 8. Assessment of residual stem cells in oral ulcer lesions

수화젤에서 전달된 줄기세포의 병변 내 잔류를 확인하기 위하여, 형광물질(Vybrant® DiD Cell-labeling Solution, Invitrogen)로 태킹된 줄기세포 시트를 구강 궤양에 전달한 후, IVIS (in vivo imaging system)를 이용하여 정성적으로 확인하였다. 대조군으로 줄기세포 시트가 없는 수화젤을 구강 궤양 병변에 적용해주었다. 줄기세포 시트 전달 1일, 4일, 그리고 7일 후, 구강 궤양 병변을 harvest하여 IVIS로 관찰하였다. In order to confirm the remnant of the stem cells delivered from the hydrogel, the stem cell sheet tagged with a fluorescent material (Vybrant ® DiD Cell-labeling Solution, Invitrogen) was transferred to the oral ulcer, and the IVIS (in vivo imaging system) The results are shown in Fig. As a control group, a hydrogel without a stem cell sheet was applied to oral ulcer lesions. After 1, 4, and 7 days of stem cell sheet transfer, oral ulcer lesions were harvested and observed with IVIS.

그 결과, 도 8에 나타낸 바와 같이, 시간이 지날수록 전달된 줄기세포의 양은 줄었으나 전달 후 7일이 지나도 줄기세포가 병변 부위에 남아있는 것을 확인하였다. 상기 결과는, 오픈된 병변에도 줄기세포를 효과적인 치료제로써 적용이 가능함을 시사한다.As a result, as shown in FIG. 8, the amount of stem cells delivered decreased with time, but it was confirmed that the stem cells remained in the lesion even 7 days after the delivery. The above results suggest that stem cells can be applied as an effective therapeutic agent even to open lesions.

실시예Example 9. 줄기세포 시트 또는 줄기세포  9. Stem cell sheet or stem cell 스페로이드Speroid -시트 복합체의 구강 궤양 치료 효능 평가- Evaluation of efficacy of oral complex for treating oral ulcers

상기 실시예 4에서 조직 재생 유효 성분 발현량이 가장 우수한 줄기세포로 확인된 AD-MSC를 구강 궤양 치료 효능 평가에 사용하였다. AD-MSC 시트 또는 스페로이드-시트 복합체를 실시예 1에서 모델링한 토끼의 구강 궤양 병변에 적용시킨 후, 4일과 7일 째 상처의 크기를 정량하였다. 구체적으로, AD-MSC 시트 또는 스페로이드-시트 복합체를 궤양 병변에 적용한 후 7일 째, 재생된 점막을 수득(harvest)하여 H&E 염색과 면역염색법을 통해서 keratin5 (K5)와 keratin13 (CK13)을 관찰하였다.AD-MSC, which was identified as the best stem cell in the amount of expression of tissue regeneration effective ingredient in Example 4, was used for the evaluation of oral ulcer treatment efficacy. The AD-MSC sheet or spleoid-sheet complex was applied to the oral ulcer lesions of the rabbits modeled in Example 1, and the size of the wounds at 4 and 7 days was quantitated. Specifically, the AD-MSC sheet or the spleen-sheet complex was applied to the ulcer lesions. On day 7, the regenerated mucosa was harvested, and keratin5 (K5) and keratin13 (CK13) were observed through H & E staining and immunohistochemistry Respectively.

그 결과, 도 9에 나타낸 바와 같이, 줄기세포 시트 또는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 구강 궤양 병변에 적용 시켰을 경우, 육안으로 관찰 시 상처의 크기 변화에는 큰 차이가 없음을 확인할 수 있었다. 하지만, 조직병리학적으로 접근 시, 줄기세포 시트를 적용한 점막은 약 80%의 상처가 닫혔으며 병변 부위에 많은 면역세포가 모여 있는 반면, 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 적용시킨 점막은 상처가 100% 닫히고 염증세포들이 관찰되지 않음을 확인할 수 있었다. 또한, 줄기세포 시트를 적용시킨 점막에서는 K5와 CK13의 발현이 확인되지 않았다. 반면, 줄기세포 스페로이드-시트 복합체를 적용시켜 재생된 점막의 경우, basal layer의 progenitor-like cells이 발현하는 단백질로 알려진 K5 발현이 확인됨과 suprabasal layer에서 발현되는 단백질로 알려진 CK13 발현이 확인됨을 통하여 재생된 점막이 본연의 구조 (basal-suprabasal structure)로 재건된 것을 확인하였다.As a result, as shown in FIG. 9, when the stem cell sheet or the stem cell spoloid-sheet complex was applied to the lesion of the oral ulcer, it was confirmed that there was no significant difference in the size change of the wound upon visual observation. However, when histopathologically examined, about 80% of the mucous membrane applied with stem cell sheet was closed and many immune cells gathered at the lesion site, whereas the mucosa applied with the stem cell spheroid-sheet complex had 100 % Were closed and no inflammatory cells were observed. In addition, the expression of K5 and CK13 was not observed in the mucous membrane to which the stem cell sheet was applied. On the other hand, in the mucous membrane regenerated by applying the stem cell spoloid-sheet complex, K5 expression, which is known as a protein expressing progenitor-like cells of the basal layer, was confirmed and CK13 expression, which is known as a protein expressed in the suprabasal layer, It was confirmed that the regenerated mucosa was rebuilt with basal-suprabasal structure.

전술한 본 발명의 설명은 예시를 위한 것이며, 본 발명이 속하는 기술분야의 통상의 지식을 가지는 자는 본 발명의 기술적 사상이나 필수적인 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 쉽게 변형이 가능하다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적이 아닌 것으로 이해해야만 한다.It will be understood by those skilled in the art that various changes in form and details may be made therein without departing from the spirit and scope of the present invention as defined by the following claims. will be. It is therefore to be understood that the above-described embodiments are illustrative in all aspects and not restrictive.

Claims (9)

(A) 온도감응성 수화젤의 제조 단계;
(B) 단일세포 형태의 줄기세포를 3D culture dish에서 배양하여 줄기세포 스페로이드를 제조하는 단계;
(C) 상기 줄기세포 스페로이드를 상기 수화젤에 분주하여 배양하는 단계; 및
(D) 상기 수화젤 표면을 냉각하여 상기 수화젤 표면에서 배양한 줄기세포 스페로이드를 시트의 형태로 분리하는 단계;를 포함하는 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 제조방법.
(A) a step of preparing a temperature-sensitive hydrogel;
(B) culturing a single cell type of stem cells in a 3D culture dish to produce a stem cell spoloid;
(C) dividing and culturing the stem cell spleod into the hydrogel; And
(D) cooling the surface of the hydrated gel to separate the stem cell sprooid cultured on the hydrogel surface into a sheet form.
제1항에 있어서,
상기 줄기세포 스페로이드-시트 복합체는 오픈된 조직(opened tissue) 결손 치료용인 것을 특징으로 하는, 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 제조방법.
The method according to claim 1,
Wherein said stem cell spoloid-sheet complex is for the treatment of opened tissue defects.
제2항에 있어서,
상기 오픈된 조직 결손은 인두 누공, 기관 협착, 각막결손, 피부 결손, 위 궤양, 및 구강 궤양으로 이루어진 군으로부터 선택된 하나 이상인 것을 특징으로 하는, 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 제조방법.
3. The method of claim 2,
Wherein the opened tissue defect is at least one selected from the group consisting of pharyngeal fistula, tracheal stenosis, corneal defect, skin defect, stomach ulcer, and oral ulcer.
제1항에 있어서,
상기 (A)단계의 온도감응성 수화젤은 세포접착 단백질을 포함하는 것을 특징으로 하는, 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 제조방법.
The method according to claim 1,
Wherein the temperature-sensitive hydrogel of the step (A) comprises a cell adhesion protein.
제4항에 있어서,
상기 세포접착 단백질은 피브로넥틴(fibronectin)인 것을 특징으로 하는, 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 제조방법.
5. The method of claim 4,
Wherein the cell adhesion protein is fibronectin. ≪ RTI ID = 0.0 > 21. < / RTI >
제1항에 있어서,
상기 (C)단계는 상기 줄기세포 스페로이드를 상기 수화젤의 단위면적(㎠)당 4 내지 400 개를 상기 수화젤에 분주하여 배양하는 것을 특징으로 하는, 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 제조방법.
The method according to claim 1,
Wherein the step (C) comprises culturing the stem cell sprooid in an amount of 4 to 400 per unit area (cm 2) of the hydrogel in the hydrogel, and culturing the stem cell sprooid .
제1항에 있어서,
상기 (D)단계는 상기 수화젤 표면을 0 ℃ 내지 25 ℃까지 냉각하여 상기 수화젤 표면에서 배양한 줄기세포 스페로이드를 시트의 형태로 분리하는 것을 특징으로 하는, 줄기세포 스페로이드-시트 복합체의 제조방법.
The method according to claim 1,
Wherein the step (D) comprises cooling the surface of the hydrated gel to 0 ° C to 25 ° C to separate the stem cell sprooid cultured on the hydrogel surface into a sheet form. Gt;
제1항 내지 제7항 중 어느 한 항의 방법으로 제조된, 줄기세포 스페로이드-시트 복합체로서, 상기 복합체는 오픈된 조직(opened tissue) 결손 치료용인 것을 특징으로 하는, 줄기세포 스페로이드-시트 복합체.
8. A stem cell spleod-sheet complex, produced by the method of any one of claims 1 to 7, wherein said complex is for the treatment of a opened tissue defect, said stem cell sprooid- .
제8항에 있어서,
상기 오픈된 조직 결손은 인두 누공, 기관 협착, 각막결손, 피부 결손, 위 궤양, 및 구강 궤양으로 이루어진 군으로부터 선택된 하나 이상인 것을 특징으로 하는, 줄기세포 스페로이드-시트 복합체.
9. The method of claim 8,
Wherein the open tissue defect is at least one selected from the group consisting of pharyngeal fistula, tracheal stenosis, corneal defect, skin defect, gastric ulcer, and oral ulcer.
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