KR101613367B1 - 단자엽 식물의 전신 발현 유도용 프로모터 및 이의 용도 - Google Patents

Abstract

본 발명은 벼의 전신에서 발현하는 프로모터 및 이의 용도에 관한 것이다.
본 발명의 프로모터는 벼의 전신에서 발현하는 프로모터로써, 현재 널리 활용되고 있는 ubiquitin1, actin1, 35S등의 프로모터와 같이 중요형질을 결정하는 유전자를 벼나 다른 작물 내지 단자엽 식물체에 도입하려고 할 때 유용하게 사용될 수 있다.

Description

단자엽 식물의 전신 발현 유도용 프로모터 및 이의 용도 {A promoter for ubiquitous gene expression in monocotyledones and use thereof}

본 발명은 단자엽 식물의 전신 발현 유도용 프로모터 및 이의 용도에 관한 것이다.

벼(Oryza sativa)는 세계에서 가장 중요한 식량작물의 하나로 과거 20여년 동안 꾸준히 수량 증대에 힘써왔으나 현재 인구증가 추세로 볼 때 2020년이면 현재의 70% 이상에 달하는 수량을 더 생산해야만 될 형편에 놓여있다. 그러나 벼가 재배되는 농지는 세계 각국의 공업화 현상으로 갈수록 줄어들고 육종의 소재가 되는 새로운 유전자원은 고갈되어 외래 유용유전자의 도입이 요구되고 있다. 다행히 분자생물학의 발달로 외래 유용유전자의 분리 및 조작이 가능하게 되어 유용 유전자를 벼를 비롯한 많은 식물세포에 형질전환하여 새로운 유전자가 조합된 형질전환체를 얻음으로서 여러 가지 생명현상을 규명하는 유전자발현 연구는 물론 육종의 좋은 소재가 되고 있다. 이러한 형질전환을 이용한 신품종 생산은 앞으로 다가오는 21세기에는 고부가가치 산업으로 대두함은 물론이며 인류의 가장 큰 문제점으로 부각되는 식량문제를 어느 정도는 해결할 수 있으리라 생각된다.

현재까지 알려진 형질전환 방법으로, 80년대 원형질체에 폴리에틸렌글리콜(Polyethylene glycol(PEG))과 전기충격법(electroporation)으로 많은 형질전환체를 획득하였으며, 90년대 후반 유전자총 이용법이 보편화되었으며 최근에는 쌍자엽식물에서 널리 이용되어 왔던 아그로박테리움(Agrobacterium) 이용법도 많이 이용되고 있다. 그밖에 화분법(pollen pathway), 미세주사(microinjection) 방법 등이 있다.

프로모터는 외래 유전자의 발현을 식물체의 전신 또는 특별한 조직에만 국한시켜 형질전환 목적을 달성할 수 있으며, 그 기능에 따라서 다음과 같이 분류할 수 있다.

첫째로 뿌리 특이 발현 프로모터이다. 애기장대 퍼옥시다제(peroxidase, prxEa)가 분리되어 전신 발현 발현을 확인하였고, 최근 고구마 유래의 매즈 유전자(ibMADS)와 당 유도성 에이디피 글루코즈 파이로포스파타제(ADP-glucose pyrophosphatase, AGPase) 유전자가 분리되어 해당 프로모터가 뿌리에서 특이 발현을 유도하며 당근, 무에서 전신 발현 일시적 발현을 유도함을 확인하여 특허 등록(대한민국 등록번호 제10-0604186호, 제10-0604191호)된 바 있다.

둘째로, 종자 특이적 프로모터를 들 수 있다. 대표적인 예로서 벼의 주요 저장 단백질 유전자의 프로모터들로서 황금쌀(golden rice) 개발에 사용된 벼 글루테린(glutelin) 프로모터가 현재까지 외떡잎 식물의 종자 특이적 발현을 유도하는 경우에 많이 사용되고 있고, 쌍떡잎 식물의 종자 특이적 발현을 유도하는데 주로 사용되는 프로모터로는 콩 유래 렉틴(lectin) 프로모터, 배추 유래 나핀(napin) 프로모터 및 애기장대의 종자에서 감마 토코페롤 메틸기 전이효소(γ-tocopherol methyl transferase:γ-TMT) 유전자 발현을 유도함으로써 비타민 E 생성을 증진시킨 연구에 사용된 당근 유래 DC-3 프로모터, 들깨 유래 올레오신(oleosin) 프로모터의 종자 특이발현 유도 특허출원(참조: 특허출원번호 10-2006-0000783) 사례가 있다. 상기 종자 특이적 프로모터들은 주로 종자 자체가 식량이나 식품 또는 식품의 원료로 사용되는 주요 작물에서 유용 단백질 축적 및 유용 물질 생성 등을 목적으로 주로 사용되고 있다.

셋째로, 잎 등의 기타 조직 특이 프로모터를 들 수 있다. 잎 등의 광합성 조직에서만 강력한 유전자의 발현을 유도하는 벼와 옥수수 유래의 알비씨에스 (rbcS: ribulose bisphosphate carboxylase/oxygenase small subunit) 프로모터, 아그로박테리움 유래의 식물 뿌리 발현을 유도하는 RolD 프로모터, 감자 유래 괴경 특이 발현 유도 파타틴 (patatin) 프로모터, 토마토 유래의 과실 성숙 특이 발현 유도 피디에스 (PDS: phytoene synthase) 프로모터 등이 있다.

넷째로 전신발현 유도 프로모터를 들 수 있다. 식물 전신발현 유도 프로모터로는 꽃양배추 모자이크 바이러스(CaMV: cauliflower mosaic virus)의 35S RNA 유전자의 프로모터가 대표적인 쌍떡잎식물용 프로모터로 사용되고 있다. 벼 등의 외떡잎식물용 전신발현 유도 프로모터로는 벼 액틴(actin) 및 옥수수 유비퀴틴(ubiquithin) 유전자 프로모터들이 주로 이용되어 왔으며, 최근 벼 시토크롬 C 유전자(OsOc1)의 프로모터가 국내 연구진에 의해 개발되어 사용 중에 있다(참조: 등록번호 10-0429335). 이들은 식물형질전환 기본 운반체 내에 선발마커로 이용되는 항생제나 제초제 저항성 유전자 및 리포터 유전자의 발현을 유도하기 위해 이미 내재되어 있으며, 연구적인 측면에서 목적하는 유전자의 식물체 내 기능을 밝히고자 시도할 때 우선적으로 고려되는 프로모터들이다.

그 외에도 프로모터 관련 개발이 계속 진행 중이지만, 개발자의 의도에 따라 한 가지 프로모터로 중요 유전형질을 결정하는 유전자를 전신 발현시킴으로써 도입형질의 우수성을 한 번에 검증할 수 있는 프로모터의 발굴이 필요한 실정이다.

대한민국 등록특허 제10-1080291호 대한민국 등록특허 제10-0803391호

본 발명은 단자엽 식물체의 전신에서 외래 유전자를 발현시킬 수 있는 프로모터, 이 프로모터를 포함하는 발현 벡터, 이 발현 벡터로 형질전환된 형질전환 세포, 이 발현 벡터 또는 형질전환 세포를 포함하는 외래 유전자의 전신 발현 유도용 조성물, 이로 형질전환된 단자엽 식물체 및 이의 제조방법을 제공하고자 한다.

상기와 같은 목적을 달성하기 위하여, 본 발명자들은 식물의 전신에서 외래 유전자 발현을 유도할 수 있는 프로모터들을 발굴함으로써, 중요형질을 결정하는 유전자를 벼나 다른 작물에 도입할 수 있는 시스템을 확립하고자 하였다. 이 과정에서 벼의 LOC_Os03g01910의 프로모터가 잎, 뿌리, 자방, 수술, 암술, 종자 등에서 전반적으로 발현이 이루어짐을 확인하였고, 이에 따라 상기 프로모터를 확보하여 이를 포함하는 발현벡터를 제조한 후 이를 식물에 도입하여 형질 전환시킨 형질전환체의 거의 모든 조직에서 리포터 유전자가 발현됨을 확인함으로써 본 발명을 완성하게 되었다.

보다 구체적으로 본 연구진은 퍼블릭 데이터베이스에 공개된 983개의 벼 microarray data에 기반을 둔 17개 기관별 메타발현 분석용 데이터베이스를 구축하였고, 이 자료의 분석을 통해서 모든 조직에서 전반적인 발현을 보이는 4000 여개의 유전자를 분리하였다.

이러한 유전자에 의해서 조절되는 유전자 발현양상은 이들 프로모터 3' 방향에서 GUS reporter 유전자를 발현시켜 그 활성을 식물체 내에서 측정함으로써 정밀하게 분석되었다.

염기서열 해독 정보를 참고로 하여 LOC_Os03g01910의 ATG 앞 프로모터영역을 게놈 DNA PCR를 통해서 분리하고 pGEM T-이지 벡터에 클로닝하여 염기서열 해독을 하였다.

이렇게 분리된 프로모터를 pGA3383 벡터에 넣어, 형질전환된 식물체를 제작하였다. 형질전환 식물체에서 GUS 반응을 검증함으로써, 해당 프로모터를 이용하여 식물에서 전신발현 유전자의 발현을 유도할 수 있음을 확인하였다.

본 발명은 서열번호 1로 표시되는 염기서열인 벼의 LOC_Os03g01910의 프로모터를 포함하는 전신 발현 프로모터를 제공한다.

프로모터는 유전자의 환경적, 시기적 및 조직적 발현을 조절하는 필수적인 요소로서, 본 발명에 따른 전신 발현 프로모터를 사용하여 식물체 내에서 외래 유용 유전자의 전신 발현을 유도할 수 있다. 본 발명은 벼의 LOC_Os03g01910의 프로모터로서, 외래 유전자의 발현이 전신에서 이루어지도록 유도하는 전신 발현 프로모터(이하 '본 발명의 프로모터'라 함)를 제공한다.

LOC_Os03g01910은 transcription factor BTF3를 암호화 하는 것으로 알려져있으며, 5개의 exon으로 구성되어 있다. 176개의 아미노산으로 구성된 본 유전자의 프로모터는 서열번호 1의 염기서열을 갖는다.

또한 본 발명은 상기 프로모터 및 이와 작동가능하게 연결된(Operatively linked) 외래 유전자를 포함하는 식물 전신 발현용 벡터를 제공한다.

용어 "벡터"는 세포 내로 전달하는 DNA 단편(들), 핵산 분자를 의미하며, DNA를 복제하고, 숙주세포에서 독립적으로 재생산될 수 있다. "발현 벡터"는 목적한 코딩 서열과, 특정 숙주 생물에서 작동가능하게 연결된 코딩 서열을 발현하는데 필수적인 적정 핵산 서열을 포함하는 재조합 DNA 분자를 의미한다. 발현 벡터는 일반적으로 플라스미드 또는 바이러스 DNA로부터 유래하거나, 둘 다의 요소를 포함할 수 있다. 따라서 발현 벡터는 재조합 DNA 또는 RNA 구축물, 예컨대, 플라스미드, 파지, 재조합 바이러스 또는 적절한 숙주 세포 내 도입 시, 클로닝 된 DNA의 발현을 초래하는 다른 벡터를 의미한다. 적절한 발현 벡터는 당업자에게 잘 알려져 있으며, 진핵세포 및/또는 원핵세포 내에서 복제 가능한 것들 및 에피솜으로 남는 것들 또는 숙주 세포 게놈 내에 통합되는 것들을 포함한다.

상기 통상의 벡터는 본 발명의 프로모터를 도입할 수 있는 것이면 어떠한 것이든 무방하나, 바람직하게는 pCAMBIA계열, pGA계열, pGWB계열, 예컨대, pGA3383, pCAMBIA3301, pCAMBIA3300, pGA3426, pGA3780, pGWB12, pGWB14와 같은 Ti-plasmid 및 이에 파생된 벡터로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있다. 이들 벡터는 본 발명의 프로모터 및 외래 유전자를 포함하며 식물 전신에서 외래 유전자 발현에 현저한 효과를 가진다.

본 발명의 발현 벡터는 서열번호 1로 표시되는 염기서열로 이루어진 핵산, 그와 기능적으로 동등한 절편을 포함한다.

"본 발명의 프로모터"와 "기능적으로 동등한 절편"은 본 발명의 프로모터와 실질적으로 동등한 효과를 나타내는, 서열번호 1로 표시되는 염기서열로 이루어진 핵산의 조각 또는 일부분을 의미한다. 이러한 핵산 절편은 서열번호 1에 기재된 염기서열과 비교하여 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 또는 그 이상의 서열 상동성을 가지며, 이러한 핵산 절편은 당업계에 널리 알려진 분자생물학적 방법에 의하여 용이하게 제작될 수 있다. 또한, 본 발명의 서열번호 1로 표시되는 프로모터는 공개된 벼 게놈 서열 상, LOC_Os03g01910의 앞쪽에 위치하는 서열로, 서열번호 1로 표시되는 염기 서열 중 일부가 변경, 추가 또는 삭제되더라도 공개된 벼 게놈 서열 상 LOC_Os03g01910의 앞에 위치한 서열과 상동성이 유지되어 실질적으로 동등한 효과를 나타낸다면 본 발명의 범주에 포함될 수 있다.

본 발명의 발현 벡터는 3' 방향에 목적 단백질에 대한 외래유전자가 발현되도록 한다. 바람직하게는 상기 발현벡터는 식물체 전신에서 발현시키고자 하는 유용한 외래 유전자를 포함할 수 있다. 상기 외래 유전자는 생산성 증대, 스트레스 내성 증대 등 식물체 전신 발현을 목적으로 하는 다양한 특성과 관련된 것이면 무엇이든 무방하다. 예컨대 벼의 생산성 및 생장과 관련하여 Low silicon rice 1 (Lsi1) 등이 있으며, 또한 OsNAC10과 같은 비생물학적 스트레스에 반응하는 유전자 등의 목적 유전자를 전신 발현시키는데 본 프로모터를 이용할 수 있다.

상기 발현벡터는 통상의 벡터에 본 발명의 프로모터를 도입한 것일 수 있으며, 이처럼 본 발명의 프로모터를 도입하여 발현벡터를 제조하는 것은 본 발명이 속하는 기술분야의 당업자라면 공지의 방법에 따라 용이하게 실시 가능하다.

또한 본 발명은 상기 벡터에 의해 형질 전환된 형질 전환 세포를 제공한다.

상기한 재조합 벡터는 감염, 형질도입, 트랜스펙션, 전기천공 및 형질전환과 같은 주지된 기술을 이용하여 배양된 숙주 세포 내로 도입될 수 있다. 숙주의 대표적인 예는 박테리아 세포, 예를 들면, 대장균, 스트렙토마이세스 및 살모넬라 티피무리움 세포; 및 식물 세포를 포함하나, 이에 제한되지 않는다.

식물의 형질전환에 이용되는 "식물 세포"는 임의의 식물 세포가 이용가능하다. 식물 세포는 배양 세포, 배양 조직, 배양기관 또는 전체 식물, 바람직하게는 배양 세포, 배양 조직 또는 배양 기관 및 더욱 바람직하게는 배양 세포의 어떤 형태도 가능하다. "식물 조직"은 분화된 또는 미분화된 식물의 조직, 예를 들면 이에 한정되진 않으나, 줄기, 잎, 암 조직 및 배양에 이용되는 다양한 형태의 세포들, 즉 단일 세포, 원형질체(protoplast), 싹 및 캘러스 조직을 포함한다.

또한 본 발명은 상기 발현 벡터 또는 상기 형질 전환 세포를 포함하는 외래 유전자의 단자엽 식물체 전신 발현 유도용 조성물을 제공한다. 단자엽 식물체 전신 발현 유도용 조성물은 단자엽 식물체에 외래 유전자를 도입하여 단자엽 식물체의 전신에서 외래 유전자의 발현을 유도할 수 있다. 본 발명에 있어서, 단자엽 식물체는 본 발명의 일실시양태에 따른 벼(Oryza sativa)를 포함하여 단자엽 식물로 구분되는 식물체 모두를 제한없이 포함한다. 본 발명에 있어서, 전신 발현 유도는 단자엽 식물체의 잎, 줄기, 뿌리, 자방, 수술, 암술, 종자 등을 포함하는 식물체 전체 부위에서의 발현을 말한다.

또한 본 발명은 상기 벡터, 상기 형질전환 세포 또는 이를 포함하는 외래 유전자의 단자엽 식물체 전신 발현 유도용 조성물로 형질 전환된 단자엽 식물체를 제공하며, 바람직하게 단자엽 식물체는 벼이다. 이러한 형질 전환 단자엽 식물체는 도입된 외래 유전자가 단자엽 식물체 전신에 발현되는 특성을 나타낸다.

"본 발명의 형질전환 단자엽 식물체"와 "기능적으로 동등한 형질전환 단자엽 식물체"는 서열번호 1로 표시되는 염기서열로 이루어진 핵산의 변이체와 비교하여 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% 또는 그 이상의 서열 상동성을 가지는 염기서열을 이용하여 제조된 형질 전환 단자엽 식물체로써, 단자엽 식물체 전신에서 프로모터 효과가 실질적으로 동등한 특징을 가지는 형질전환 단자엽 식물체이다.

본 발명의 단자엽 식물체의 형질전환은 DNA를 단자엽 식물체에 전이시키기 위한 당업계에 알려진 임의의 방법에 의해 수행될 수 있다. 그러한 형질전환 방법은 반드시 재생 및 (또는) 조직 배양 기간을 가질 필요는 없다. 식물 종의 형질전환은 이제는 쌍자엽 식물뿐만 아니라 단자엽 식물 양자를 포함한 식물 종에 대해 일반적이다. 예를 들어, 원형질체에 대한 칼슘/폴리에틸렌 글리콜 방법(Krens, F.A. et al., 1982, Nature 296, 72-74; Negrutiu I. et al., June 1987, Plant Mol. Biol. 8, 363-373), 원형질체의 전기천공법(Shillito R.D.et al., 1985 Bio/Technol. 3, 1099-1102), 식물 요소로의 현미주사법(Crossway A. et al., 1986, Mol. Gen.Genet. 202, 179-185), 각종 식물 요소의(DNA 또는 RNA-코팅된) 입자 충격법(Klein T.M. et al., 1987, Nature327, 70), 식물의 침윤 또는 성숙 화분 또는 소포자의 형질전환에 의한 아그로박테리움 투메파시엔스(Agrobacterium tumefaciens) 매개된 유전자 전이에서(비완전성) 바이러스에 의한 감염(EP 0301316 호) 등으로부터 적당하게 선택될 수 있다.

이러한 형질전환체는 당업계에 널리 알려진 분자생물학적 방법에 의하여 용이하게 제작될 수 있다.

또한 본 발명은 서열번호 1로 표시되는 염기서열을 포함하는 프로모터 및 이와 작동가능하게 연결된(Operatively linked) 외래 유전자를 포함하는 벡터로 단자엽 식물체를 형질 전환시켜 외래 유전자를 단자엽 식물체에서 발현시키는 단계를 포함하는, 외래 유전자를 전신에서 발현하는 형질 전환 단자엽 식물체의 제조 방법을 제공한다.

바람직하게, 상기 발현 벡터 또는 상기 형질 전환 세포를 포함하는 외래 유전자의 단자엽 식물체 전신 발현 유도용 조성물을 제조하는 단계; 단자엽 식물체에 상기 조성물을 도입하는 단계; 및 상기 조성물이 도입되어 단자엽 식물체 전신에 외래유전자가 발현되는 형질전환 단자엽 식물체를 선별하는 단계를 포함하는 형질 전환 단자엽 식물체의 제조 방법을 제공한다.

본 발명의 프로모터는 단자엽 식물체의 전신에서 발현하는 프로모터로써, 현재 널리 활용되고 있는 ubiquitin1, actin1, 35S 등의 프로모터와 같이 중요 형질을 결정하는 유전자를 벼를 포함하는 작물 내지 단자엽 식물체에 도입하려고 할 때 유용하게 사용될 수 있다.

도 1은 히트맵(heatmap)으로 전신에서 발현을 보이는 것으로 분리된 유전자와 그 발현 양상을 나타내는 도이다.
도 2는 LOC_Os03g01910 유전자의 상세한 마이크로어레이 결과를 나타내는 도이다.
도 3은 LOC_Os03g01910 프로모터를 포함하는 GUS 식물체 제조를 위해 사용한 벡터의 다이어그램을 나타낸 도이다.
도 4는 LOC_Os03g01910의 프로모터를 도입한 형질전환 벼의 여러 기관에서 GUS의 전반적 발현을 나타내는 도이다.

이하에서는, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하기로 한다. 그러나, 아래의 실시예는 발명의 이해를 돕기 위한 예시일 뿐, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것은 아니다.

< 실시예 1> 벼의 전신에서 발현되는 유전자 대량 선별

식물체 전신에서 발현하는 유전자를 선별하기 위하여, 공개된 마이크로어레이 데이터베이스인 NCBI GEO(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/)에서 수집된 983종의 벼 에피메트릭스 마이크로어레이(affymetrix microarray) 자료를 17개 기관별/조직별로 재구성하여 유전자 발현 분석용 데이터베이스를 구축하였다.

이를 표 1에 나타내었다.

표 1. 기관별/조직별로 재구성된 유전자 발현 분석용 데이터베이스

K-means clustering 분석 방법을 이용하여, 상기 표 1에 제시된 유전자 발현 분석용 데이터베이스 중 식물 전신에서 발현이 높은 유전자 그룹을 분리하였다.

이는 마이크로어레이 자료 분석용 소프트웨어인 MeV의 K-means clustering 분석 방법을 사용하여 수행하였으며, 기관별/조직별 발현 분석용 데이터베이스 중 식물 전신에서 발현이 높은 4,034 종의 유전자가 분리되었다.

그 결과를 도 1에 나타내었다.

도 1에 나타낸 바와 같이, 노란색에 가까울수록 강한 발현을 보이는 유전자에 해당하며 파란색에 가까울수록 발현이 낮아지게 된다. 즉, 17개의 재구성된 유전자 데이터베이스 중 식물 전신에서 발현이 높은 4,034종의 유전자를 확인할 수 있었다.

< 실시예 2> 마이크로 어레이 데이터 분석을 통한 조직별 발현 분석

마이크로어레이 데이터베이스 분석을 통한 LOC_Os03g01910 유전자의 조직별 발현 양상을 분석하였으며 그 결과를 도 2에 나타내었다.

도 2에 나타낸 바와 같이, 전반적인 조직에서 노란색을 띄는 것을 확인할 수 있으며, 이는 LOC_Os03g01910 프로모터에 의한 유전자의 조직별 발현이 전신에서 일어남을 보여준다.

< 실시예 3> 전신 유도 발현을 위한 프로모터의 클로닝

LOC_Os03g01910의 프로모터를 클로닝하기 위하여 작성된 프라이머 서열번호 2와 3(표 2)을 동진 벼 (Oryza sativa L. japonica cultivar-group) 게놈 DNA를 주형으로 PCR을 실시하였다. 주형 DNA는 100 ng로 사용하였고, 각 프라이머는 5 pmol로 사용하였다. PCR 조건은 95℃에서 5분 후; 95℃에서 30초, 55℃에서 30초, 68℃에서 300초를 4회 반복한 후; 95℃에서 30초, 62℃에서 30초, 68℃에서 300초를 35회 반복하고 마지막으로 68℃, 10분으로 하였다. PCR 산물은 전기영동하여 크기를 확인하고, pGEM T-이지 벡터에 클로닝하여 염기서열 해독을 하였다. 클로닝한 DNA를 BamH1과 XhoI으로 절단한 후, 동일한 제한효소로 절단된 pGA3383 벡터(promoter-GUS cloning용 벡터)와 라이게이션을 14℃에서 12시간 진행하였다. 라이게이션 산물을 Top10 E.coli 컴피턴트 셀 50㎕과 혼합하여 1.5 ml 튜브에 옮긴 다음 얼음에 15분 방치하였다. 이어서, 37℃ 오븐에 1분을 다시 방치한 후 1 ml의 LB 액체 배지를 추가로 튜브에 넣은 다음 3시간 동안 37℃ 셰이킹 인큐베이터에서 방치하였다. 이어서, 테트라사이클린 저항성 LB 고체 배지에 도말하고 12시간을 기다려 생성되는 콜로니를 1mL의 LB 액체 배지에서 세포 배양 후 미니 프렙하였다. 미니 프렙으로 얻은 DNA를 제한 효소 BamHI과 XhoI을 사용하여 효소 절단 후 전기영동에서 아가로즈 젤을 분리하고 밴드를 확인하였다. 이렇게 해서 얻어진 클로닝 DNA를 다시 염기 서열 분석을 하여 에러가 발생하지 않은 DNA를 선택하였다. 염기서열 분석은 capillary sequencing 법으로 하였으며(마크로젠 의뢰), 염기서열분석은 NGUS1, RB(right border)를 사용하였으며 그 서열을 표 3에 나타내었다.

표 2. LOC_Os03g01910의 프로모터 클로닝용 프라이머

표 3. 염기 서열 분석을 위한 프라이머

상기 서열을 서열번호 1에 나타내었으며, LOC_Os03g01910 유전자의 ATG 앞에 약 1200bp 프로모터 서열에 해당한다.

< 실시예 4> 형질전환 세포의 제작

상기 실시예 3에서 제작한 식물 발현용 벡터를 추출하였다.

아그로박테리움 컴피턴트 셀(Agrobacterium tumefaciens LB4404) 50㎕와 2㎍의 식물발현용 벡터를 혼합하여 얼음에 15분 방치하였다. 이어서, 액체질소에 75초 넣은 후, 37℃ 오븐에 5분을 다시 방치한 후 1 ml의 LB 액체 배지를 넣은 다음 3시간 동안 28℃ 셰이킹 인큐베이터에서 방치하였다. 이어서, 테트라사이클린 저항성 LB 고체 배지에 도말하고 36시간을 기다려 생성되는 콜로니를 1mL의 LB 액체 배지에서 세포 배양 후 미니 프렙한 후, BamHI과 XhoI을 사용하여 효소 절단 후 사이즈를 확인하였다.

상기 생성된 형질전환된 아그로박테리움을 이용하여 벼의 형질 전환 실험에서 사용하였다.

< 실시예 5> 형질전환 식물체의 제작

N6D 고체 배지에서 동진벼 종자를 7일 정도 28℃ 생장실에서 키워서 벼의 캘러스를 생성하였다. 생성된 캘러스를 상기 실시예 3에서 얻은 식물 발현용 벡터로 형질 전환된 아그로박테리움을 72시간 키운 세포와 혼합하여 N6D-Acetosyringone 을 포함한 배지에서 22℃ 암처리 생장실에 방치하였다.

아그로박테리움에 오염된 캘러스를 3차 증류수로 깨끗이 5번 정도 헹구어 낸 다음 N6D 고체 배지에서 hygromycin 선발을 1차(hygromycin 30 mg/L), 2차 (hygromycin 40 mg/L)에 걸쳐서 계대 배양을 통해 진행하였다. 선발은 28℃ 생장실에서 각각 2주 씩 합해서 4 주 동안 이루어졌다. 분열된 캘러스를 재분화 배지인 MSR (hygromycin 40 mg/L) 고체배지에 옮겨 4주 28℃ 광조건 생장실에서 재분화를 유도한 후, 식물체를 MS 고체 배지로 옮기고 7일 28℃ 광조건 생장실에서 키우고 온실로 옮겨서 재분화 식물체를 키웠다.

< 실시예 6> 형질전환 식물체를 이용한 전신 발현 검증

재분화된 식물체의 전신 GUS 발현을 확인하기 위하여, 여러 시기 및 조직별로 샘플을 채취한 후, GUS 염색 처리를 하여 식물 전신에서 GUS 발현을 확인하였다.

GUS 용액은 0.5M sodium phosphate buffer 200ml, 12.5mM potassium ferricyanide 100ml, 12.5mM potassium ferrocyanide 100ml, 0.5M EDTA 20ml, 10% Triton X-100 50ml, 10ml 의 DMSO (dimethyl sulfoxide)에 녹인 X-gluc 1g과 Methanol 200ml을 넣고 증류수로 1L의 부피를 맞추어 제조되었다. 각 계통의 식물체를 모두 15ml의 GUS 염색액에 24시간 처리한 후 70% 에탄올과 100% 에탄올을 순차적으로 이용하여 상온에서 탈색하였다.

그 결과를 도 4에 나타내었다. 도 4의 (a)는 발아 후 7일째 유묘를, 도 4의 (b)는 개화기 전의 꽃을, 도 4의 (c)는 성숙한 지엽을, 도 4의 (d)는 성숙한 종자의 단면을 나타낸다. 도 4에 나타낸 바와 같이, 형질전환 식물체들은 잎, 뿌리, 자방, 수술, 종자 등 전신에서 GUS발현은 보이고 있는 것을 확인할 수 있었다.

상기 도 2 및 도 4의 결과를 토대로 LOC_Os03g01910의 프로모터는 전신 발현을 나타내는 것을 확인할 수 있었다.

즉, 상기 분석 결과를 통해 LOC_Os03g01910 유전자의 ATG 앞 쪽 약 1.2kb에 해당하는 서열이 전신 발현 유도용 프로모터로 작용할 수 있음을 확인하였다.

<110> University-Industry Cooperation Group of Kyung Hee University <120> A promoter for ubiquitous gene expression in monocotyledones and use thereof <130> P14-086-KHU <160> 5 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 1148 <212> DNA <213> Oryza sativa <220> <221> promoter <222> (1)..(1148) <223> LOC Os03g07910 promoter <400> 1 tctcctctct agcaaggaca tttctaattg gttcatcact tgtgttctag gatgtgaaaa 60 ttctaattga agcaatactt gaatgatgct cacctgcatg tgttgtaggt tgtgaaaaat 120 ttctaattga atcattgctt catgttggca attcattgca taatcgtggt cattcattga 180 ttgcataacg atgtactccc tccgttcctc cgttctataa tataaaggat tttacttgca 240 ctatttgact actcgtctta tttaaaaatt ttagaataat tatttatttt ttaacttact 300 ttattatcca aagtacttta agcacaactt ttcatttttt atatttgcac aaatttttta 360 aacaagacga gtggtcaaac agtacgagca aaaactcaaa atctcttata ttatgggatg 420 gagagaggaa gtattttttc ctctgaattt atcatttttt ccaaagcatt cattcagtta 480 cacaagcggg tgtgaaagag gtgagcccga gaacccgaac ccggtatcgc gggcgcgtgc 540 atccggtggc ggccgtgcgc ccacaagaat cggacggcca ggatcgatcc cgcggttgtt 600 aaaaccctaa caccgagtaa agaaaagcaa gtcgcagtgg ttggcctcgc gagccctatc 660 tcctccttcc taatcccctt tcccctcccc ctctccattc ccctcgccgc cgccgccgcc 720 accgccgccg ccgcggcgcg ccgccctcct cctcctccca tccaaggtga gacggcgaca 780 tctccggcgt ctccttctcc cctgcagcac ttacttgtga tagatagtag gcgctatgct 840 tttactcgca ctgcatcagt actggttccc gcttgcagca gcttttgttt ggattgaggg 900 tttttatccc ctctttttta ttatcaattg attacgtagt ggttcaatag atagtgggca 960 gggatagtgt ttgtgatttc cccctttttt tttctgaact ttctgattgc acgattgggg 1020 ttttagcacg cgcggttagg ttccatggct agatttgctc cgtatgaaag cagcgagggt 1080 gtttgcgagg tttgattcaa gtgttctatt actgggtcgt gttgtttaga tggattgagg 1140 gtgttagt 1148 <210> 2 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Os03g01910 pro BamHI <400> 2 ggatcctctc ctctctagca aggaca 26 <210> 3 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Os03g01910 pro Xho1 <400> 3 ctcgagacta acaccctcaa tccatc 26 <210> 4 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> NGUS1 <400> 4 aacgctgatc aattccacag 20 <210> 5 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> RB backbone F2 <400> 5 tcgcacggaa tgccaagca 19

Claims (8)

1. 서열번호 1로 표시되는 염기서열로 이루어진 프로모터 및 이와 작동가능하게 연결된(Operatively linked) 외래 유전자를 포함하는 벡터를 포함하는, 외래 유전자의 단자엽 식물체 전신 발현 유도용 조성물.
2. 서열번호 1로 표시되는 염기서열로 이루어진 프로모터 및 이와 작동가능하게 연결된(Operatively linked) 외래 유전자를 포함하는 벡터로 형질전환된 형질 전환 세포를 포함하는, 외래 유전자의 단자엽 식물체 전신 발현 유도용 조성물.
3. 제1항 또는 제2항에 있어서, 상기 단자엽 식물체는 벼(Oryza sativa)인 외래 유전자의 단자엽 식물체 전신 발현 유도용 조성물.
4. 제1항 또는 제2항의 외래 유전자의 단자엽 식물체 전신 발현 유도용 조성물로 형질전환되어 외래 유전자를 단자엽 식물체 전신에서 발현하는, 형질전환 단자엽 식물체.
5. 제4항에 있어서, 상기 단자엽 식물체는 벼(Oryza sativa)인 형질전환 단자엽 식물체.
6. 서열번호 1로 표시되는 염기서열로 이루어진 프로모터 및 이와 작동가능하게 연결된(Operatively linked) 외래 유전자를 포함하는 벡터로 단자엽 식물체를 형질 전환시켜 외래 유전자를 단자엽 식물체에서 발현시키는 단계를 포함하는, 외래 유전자를 전신에서 발현하는 형질 전환 단자엽 식물체의 제조 방법.
7. 하기의 단계들을 포함하는 단자엽 식물체의 전신에서 외래 유전자가 발현되는, 형질 전환 단자엽 식물체의 제조방법:
   서열번호 1로 표시되는 염기서열로 이루어진 프로모터 및 이와 작동가능하게 연결된(Operatively linked) 외래 유전자를 포함하는 벡터를 포함하는, 외래 유전자의 단자엽 식물체 전신 발현 유도용 조성물을 제조하는 단계;
   단자엽 식물체에 상기 조성물을 도입하는 단계; 및 상기 조성물이 도입되어 단자엽 식물체 전신에 외래유전자가 발현되는 형질전환 단자엽식물체를 선별하는 단계.
8. 제7항에 있어서, 상기 단자엽 식물체는 벼(Oryza sativa)인 형질 전환 단자엽 식물체의 제조방법.

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