KR101100248B1 - 암에 대한 방사선 치료 증진용 약학 조성물 및 암에 대한 방사선 치료 증진용 활성물질을 스크리닝하는 방법 - Google Patents

Abstract

본 발명은 전사조절인자 Snail 1 단백질의 DNA-PKcs와의 결합에 대한 기능 저해제를 포함하는 암에 대한 방사선 치료 증진용 약학 조성물을 제공한다.

또한, 본 발명은 암세포주 내의 Snail 1 유전자의 발현을 저해하는 시료를 선택하는 단계, 또는 Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합을 저해하는 시료를 선택하는 단계를 포함하는 암에 대한 방사선 치료 증진용 활성물질을 스크리닝하는 방법을 제공한다.

Description

암에 대한 방사선 치료 증진용 약학 조성물 및 암에 대한 방사선 치료 증진용 활성물질을 스크리닝하는 방법{A pharmaceutical composition for enhancing the radiotherapy of cancer and a method of screening an active material for enhancing the radiotherapy of cancer}

본 발명은 암에 대한 방사선 치료 증진용 약학 조성물에 관한 것으로, 보다 구체적으로는 전사인자 Snail 1 단백질의 DNA-PKcs와의 결합에 대한 기능 저해제를 포함하는 암에 대한 방사선 치료 증진용 약학 조성물에 관한 것이다.

본 발명은 교육과학기술부의 원자력기술개발사업의 일환으로 수행한 연구로부터 도출된 것이다[과제고유번호: 20090062511, 과제명: 방사선손상인자발굴 및 제어기술개발].

항암치료에는 외과적인 수술, 화학요법, 및 방사선 치료 등이 함께 이용되고 있다. 항암치료 시 문제가 되는 것은 정상세포 사멸 및 암세포의 내성이다. 정상세포 사멸을 방지하기 위해서는 보호제가 개발되고 있으며, 암세포의 내성을 줄이기 위해 민감제가 개발되고 있다.

항암치료 민감제의 개발은 주로 세포사멸단계에 관여하는 생체물질들 (p53 암 억제 인자, Bcl-2 족, IAP 족, Sphingolipid 족, 세포신호전달체계 등)을 그 대상으로 하고 있다. 또한, 방사선 치료의 효율을 증대시키기 위한 증진제의 개발에 대한 연구는 다양하게 시도되고 있으나 현재는 항암제로 알려진 탁솔과 시스플라틴이 유방암, 자궁암, 폐암, 위암, 대장암 등 여러 고형암에서 방사선 민감제로서 연구되어 왔으며, 현재에는 임상적으로 이것들을 고형암 환자들을 대상으로 방사선과 함께 투여해본 결과, 방사선치료 효율을 증진시킨는 것으로 입증되었다. 그러나 이들 항암제들은 높은 부작용으로 인해 사용이 제한적이므로, 보다 효과적이면서 안전한 방사선 민감제의 개발이 필요하다.

외부자극에 의해 DNA의 손상이 일어나는 경우, 손상된 DNA가 회복되지 않거나, 부정확한 회복이 일어나는 경우, 세포는 악성 형질전환 (malignant transformation)을 유발하는 돌연변이(mutation)나 염색체 손상을 야기하게 된다. 암은 DNA의 손상이 일어나는 경우, 유전자의 결손, 역위 등의 유전자 변형과 아주 관련성이 높다. DNA 이중나선의 손상(DSB, Double strand break)을 회복하는 기전은 크게 HR(Homologouse recombination)과 NHEJ(Nonhomologouse end-joining)로 나누어진다(Hefferin ML, Tomkinson AE. Mechanism of DNA double-strand break repair by non-homologous end joining DNA Repair (Amst) 2005 Jun 8; 4(6):639-48. Epub 2005 Jan 23; Pastwa E, Blasiak J. Non-homologous DNA end joining Acta Biochim Pol. 2003;50(4):891-908). NHEJ의 핵심 요소는 DNA-PKcs, Ku86, Ku70으로 구성된 DNA-PK라는 거대 분자이다. DNA-PK 결합체(DNA-PK complex)는 NHEJ 과정 중에 많은 단백질들과의 결합을 통하여 그 기능이 증가 또는 감소된다.

DNA 손상복구 단백질인 DNA-PKcs는 Ku 단백질과 함께 결합하여 활성화된 DNA-PK 결합체를 형성하여 손상된 DNA의 말단의 회복을 돕게 된다. 따라서, 암세포의 효과적인 치료를 위해 DNA 손상 복구 인자에 대한 많은 연구가 진행되고 있다.

본 발명의 발명자들을 포함한 여러 연구진들의 연구 결과에 따르면, 정상세포의 사멸과 암세포의 항암제 및 방사선 내성의 주된 원인 중의 하나가 DNA-손상회복 단백질이 특정 단백질과의 결합을 통해서 정상적인 기능을 원활하게 수행하지 못할 경우 발생빈도가 상당히 증가하는 것으로 나타났다(Wang Q, Gao F, May WS, Zhang Y, Flagg T, Deng X. Bcl2 negatively regulates DNA double-strand-break repair through a nonhomologous end-joining pathway. Mol Cell. 2008 Feb 29;29(4):488-98; Song H, Hollstein M, Xu Y p53 gain-of-function cancer mutants induce genetic instability by inactivating ATM Nat Cell Biol. 2007 May;9(5):573-80. Epub 2007 Apr 8).

그러나, 구체적으로 항암제 치료나 방사선 치료 시 나타나는 암세포의 내성에 대한 정확한 분자적 기작은 명확하게 알려져 있지 않다.

이에 본 발명자들은 방사선 치료에 대한 내성을 낮출 수 있는 방사선 민감제 개발을 위해 연구한 결과, 특정 단백질이 DNA 손상 복구 단백질 DNA-PKcs와 결합하여 DNA-PKcs의 DNA 손상복구 활성을 저해하는 것을 차단함으로써 방사선에 대한 암세포의 민감성을 증진시킬 수 있다는 것을 발견하게 되었다.

따라서, 본 발명의 목적은 상기 발견을 기초로 하여, DNA 손상 복구 단백질 DNA-PKcs의 활성을 저해하는 단백질의 DNA-PKcs와의 결합에 대한 기능 저해제를 포함하는 암에 대한 방사선 치료 증진용 조성물을 제공하는 것이다.

또한, 본 발명의 다른 목적은 상기 발견을 기초로 하여, DNA 손상 복구단백질 DNA-PKcs의 활성을 저해하는 단백질의 기능을 저해하는 시료를 선택하는 것을 포함하는 암에 대한 방사선 치료 증진에 효과가 있는 활성물질을 스크리닝하는 방법을 제공하는 것이다.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은

전사인자 Snail 1 단백질의 DNA-PKcs와의 결합에 대한 기능 저해제를 포함하는 암에 대한 방사선 치료 증진용 약학 조성물을 제공한다.

또한, 본 발명은

암세포주를 시료들 각각으로 처리하는 단계;

암세포주 내의 Snail 1 유전자의 발현을 측정하는 단계; 및

암세포주 내의 Snail 1 유전자의 발현을 저해하는 시료를 선택하는 단계를 포함하는 암에 대한 방사선 치료 증진용 활성물질을 스크리닝하는 방법을 제공한다.

또한, 본 발명은

암세포주를 시료들 각각으로 처리하는 단계;

Snail 1이 DNA-PKcs와 결합된 함량을 측정하는 단계; 및

Snail 1이 DNA-PKcs와 결합을 저해하는 시료를 선택하는 단계를 포함하는 암에 대한 방사선 치료 증진용 활성물질을 스크리닝하는 방법을 제공한다.

이하, 본 발명을 보다 상세하게 설명한다.

본 발명에서 사용되는 모든 기술용어는, 달리 정의되지 않는 이상, 본 발명의 관련 분야에서 통상의 당업자가 일반적으로 이해하는 바와 같은 의미로 사용된다. 또한 본 명세서에는 바람직한 방법이나 시료가 기재되나, 이와 유사하거나 동등한 것들도 본 발명의 범주에 포함된다. 본 명세서에 참고문헌으로 기재되는 모든 간행물의 내용은 본 발명에 통합된다.

본 발명이 제공하는 방사선 치료 증진용 약학 조성물은 전사조절인자 Snail 1 단백질(Genbank number NM_005985)의 DNA 복구 단백질 DNA-PKcs와의 결합을 저해하는 기능 저해제를 포함하는 것을 특징으로 하며, 이는 본 발명자가 전사조절인자 Snail 1이 DNA 손상 복구단백질 DNA-PKcs와 결합하는 것을 저해할 경우 방사선에 대한 암세포의 민감성을 증진시킬 수 있다는 것을 최초로 발견한 것에 기초한 것이다. 여기에서, Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합을 저해하는 "기능 저해제"는 Snail 1 의 발현을 억제하거나 Snail 1이 DNA-PKcs와 결합하는 것을 저해하는 물질을 포함한다.

본 발명자는 구체적으로, 인간의 암세포에서 Snail 1을 과발현 시 DNA-PKcs의 DNA 복구에 필요한 인산화 활성이 감소되고(실시예 3), Snail 1이 과발현된 암세포에 방사선을 조사 시 암세포 사멸 정도가 낮아지는 것을 확인하였다(실시예 5). 또한, 인체 암세포에 Snail 1에 대한 siRNA를 가할 경우 DNA-PKcs의 인산화 활성이 증가할 뿐만 아니라, 인체 암세포에 Snail 1의 DNA-PKcs의 결합에 대한 안티펩티드를 가할 경우에도 DNA-PKcs의 인산화 활성이 증가하는 것으로 나타났다(실시예 3). 더욱이, Snail 1이 과발현된 암세포에 안티펩티드를 가할 경우 방사선 암세포의 방사선에 대한 민감도가 회복되는 것을 확인하였다(실시예 5). 더불어, Snail 1과 DNA-PKcs간의 결합이 손상된 DNA와 DNA-PKcs, Ku80 간의 결합을 방해하고, Snail 1과 DNA-PKcs간의 결합을 안티펩티드의 부가에 의해 저해 시 DNA 손상이 회복되는 것을 확인하였다(실시예 4). 따라서, 이러한 실험 결과로부터 Snail 1이 DNA-PKcs와 결합함으로써 DNA-PKcs의 손상복구능력이 감소하고 암세포의 방사선에 대한 민감도가 떨어지게 되므로, Snail 1의 발현을 저해하거나 Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합을 저해할 경우, DNA-PKcs의 DNA 손상 복구 능력이 증가하고, 암세포의 방사선에 대한 민감도가 증가하게 된다는 것을 알 수 있다. 따라서, Snail 1의 발현을 저해하거나 Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합을 저해하는 Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합에 대한 기능 저해제는 암에 대한 방사선 작용 증진 활성을 갖는다고 할 수 있다.

따라서, 본 발명은 상기 실험결과를 기초로 하여 Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합에 대한 기능 저해제를 포함하는 것을 특징으로 하는 암에 대한 방사선 작용 증진용 약학 조성물을 제공한다. 상기 Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합에 대한 기능 저해제는 Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합을 저해하거나 Snail 1 단백질의 발현을 억제하는 물질을 포함한다. 이러한 기능 저해제로는 예를 들어, Snail 1 유전자에 대한 안티센스올리고뉴클레오티드, Snail 1에 대한 표적 siRNA, Snail 1에 대한 안티펩티드, Snail 1에 대한 안티펩티드를 암호화하는 미니 유전자(minigene) 및 Snail 1의 DNA-PKcs에 대한 결합 저해제 등을 들 수 있다.

따라서, 본 발명은 Snail 1의 발현을 저해하는 Snail 1 유전자에 대한 안티센스올리고뉴클레오티드를 포함한 약학조성물을 제공한다. 상기 약학 조성물은 Snail 1 유전자의 개시코돈 영역, 코딩영역, 5' 또는 3' 인트론-액손 접합부의 2 내지 10 뉴클레오티드 내 영역들에 대한 안티센스, 또는 유전자에 상보적인 mRNA에 대한 안티센스인 올리고뉴클레오티드를 포함한다.

유전자 발현을 저해하여 질병치료에 활용하는 것으로 siRNA가 널리 연구되고 있다. 따라서, 본 발명은 Snail 1 표적 siRNA를 포함하는 암에 대한 방사선 치료 증진용 조성물을 제공한다. Snail 1 표적 siRNA는 이 분야에 공지된 방법을 참조하여 유전자 내의 표적부위를 찾아 적절히 디자인할 수 있다. 본 발명의 약학 조성물에 포함되는 siRNA는 표적 mRNA를 표적화하는 약 15개 내지 약 30 개의 뉴클레오티드, 바람직하게는 약 19개 내지 약 25개의 뉴클레오티드로 이루어진 짧은 이중쇄 RNA를 포함하는 분리된 siRNA를 포함한다. siRNA는 센스 RNA가닥과 상보적인 안티센스 RNA 가닥을 포함한다. 본 발명의 siRNA의 센스 및 안티센스 가닥은 두 개의 상보적이고 단일쇄인 RNA 분자를 포함하거나, 두 개의 상보적 부분이 염기쌍을 형성하고 단일쇄의 헤어핀(hairpin) 영역에 의해서 공유결합된 단일 분자를 포함할 수 있다.

본 발명에 포함되는 siRNA는 본 발명이 속하는 분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 알려진 많은 기술을 이용하여 획득될 수 있다. 예를 들면, siRNA는 본 발명이 속하는 분야에서 알려진 방법을 이용하여 화학적으로 합성되거나 재조합 방법에 의해서 생산될 수 있다.

당업자는 투여 대상자에게 투여될 본 발명의 안티센스올리고뉴클레오티드 및 siRNA의 유효량을 대상자의 크기 및 체중, 질병의 진행 정도, 나이, 건강상태, 성별, 투여경로 및 국소 또는 전신 투여와 같은 인자를 고려하여 용이하게 결정할 수 있다. 일반적으로, 본 발명의 안티센스올리고뉴클레오티드 및 siRNA의 유효량은 질병부위 또는 이와 인접한 부위에서 약 1 nM 내지 약 100 nM의 세포간 농도를 포함한다. 필요에 따라서 상기 농도보다 더 높게 또는 더 낮게 투여될 수 있다. 본 발명의 안티센스올리고뉴클레오티드 및 siRNA는 전달시약과 조합하여 그 자체로써 또는 이들을 발현하는 재조합 플라스미드 또는 바이러스 벡터로써 대상자에게 투여될 수 있다. 적절한 전달시약으로는 리포펙틴, 리포펙타민, 셀펙틴, 고분자양이온(예, 폴리리신) 또는 리포솜을 포함한다. 본 발명의 안티센스올리고뉴클레오티드 및 siRNA을 포함하는 약학 조성물은 gene gun, 초음파 또는 전기충격 등을 이용하여 세포 내로 전달할 수 있다.

Snail 1 단백질은 DNA-PKcs와 결합함으로써 DNA-PKcs의 손상복구능력을 감소시키고 암세포의 방사선에 대한 민감도를 떨어뜨리므로, Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합을 저해할 경우 암세포의 방사선에 대한 민감도가 증가하게 된다. 따라서, Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합을 경쟁적으로 저해하는 Snail 1의 안티펩티드는 암에 대한 방사선 작용 증진 활성을 갖는다고 할 수 있다. 따라서 본 발명은 Snail 1에 대한 안티펩티드를 포함하는 암에 대한 방사선 치료 증진용 약학 조성물을 제공한다. DNA-PKcs의 Snail 1 결합부위에서 경쟁적 저해제로서 작용할 수 있는 Snail 1에 대한 안티펩티드는 공지된 방법에 따라 디자인되고 만들어 질 수 있다. Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합부위는 Snail 1의 15-21 아미노산 서열(SEQ ID NO. 2: KPSDPNRKPNYSELQ DSNPEFTFQQPY)에 해당하는 것으로 나타났고(실시예 1), 15-21 아미노산 서열 중 특허 KPNYSEL(SEQ ID NO. 1)이 안티펩티드로서 작용할 수 있는 것으로 확인되었다(실시예 2). 따라서, 상기 방사선 치료 증진용 약학 조성물에서 Snail 1에 대한 안티펩티드는 KPNYSEL을 포함하거나 KPSDPNRKPNYSELQ DSNPEFTFQQPY을 포함할 수 있다. 또한, 상기 안티펩티드는 DNA-PKcs의 수용체 결합에 지장이 없는 한 상기 안티펩티드의 아미노산의 치환, 부가, 결실 및/또는 삽입이 가능하다. 바람직하게는, 치환되는 아미노산은 아래 분류된 바와 같이 치환될 아미노산과 유사한 성질을 갖는 것으로 치환될 수 있다. 예를 들어, 알라닌, 발린, 류신, 이소류신, 프롤린, 메티오닌, 페닐알라닌 및 트립토판은 모두 비극성 아미노산으로 분류되며, 이들은 서로 비슷한 성질을 갖는다. 전하를 띄지 않는 아미노산으로는 글리신, 세린, 트레오닌, 시스테인, 티로신, 아스파라진, 글루타민을 들 수 있으며, 산성 아미노산으로는 아스파르산, 글루타민산을, 염기성 아미노산으로는 리신, 아르기닌, 히스티딘을 들 수 있다. 상기 안티펩티드는 본 발명이 속하는 분야에 공지된 합성방법이나 재조합 방법에 의하여 제조가능하다.

상기 Snail 1에 대한 안티펩티드를 암호화하는 미니유전자(minigene)를 사용하여 상기 안티펩티드를 생체 내에서 발현시킬 수 있다. 본 발명의 Snail 1에 대한 안티펩티드를 암호화하는 미니유전자는 KPNYSEL 또는 KPSDPNRKPNYSELQ DSNPEFTFQQPY을 암호화하는 유전자 서열을 포함할 수 있다. 또한, 상기 안티펩티드의 DNA-PKcs 수용체 결합에 지장이 없는 한, 상기 미니유전자는 상기 안티펩티드에서 아미노산이 치환, 부가, 결실 및/또는 삽입된 안티펩티드의 아미노산 서열을 암호화하는 유전자 서열을 포함한다. 상기 미니유전자는 프로모터, 리보솜결합부위, 전사개시코돈, 및/또는 전사중지코돈을 더 포함할 수 있다. 상기 미니 유전자는 플라스미드 벡터에 함유시켜 포유동물 세포에 감염시킴으로써 상대적으로 짧은 폴리펩티드 서열을 발현시킬 수 있다. 상기 미니 유전자를 함유하는 플라스미드 벡터는 J. Biol. Chem. 276(28), 25672-25679에 기재된 방법을 따라 제조가능하다.

Snail 1 단백질은 DNA-PKcs와 결합함으로써 DNA-PKcs의 유전자 손상 복구능력을 감소시켜 암세포에 대한 방사선 민감도를 떨어뜨린다. 따라서, 본 발명은 Snail 1 단백질의 DNA-PKcs와의 결합을 저해하는 임의의 결합 저해제를 포함하는 약학조성물을 포함한다.

암에 대한 방사선 치료 시 상기 방사선 치료 증진용 조성물을 이용할 수 있는 암은 특별히 한정되는 것은 아니나, 예를 들면 폐암, 유방암, 난소암, 대장암, 췌장암, 전립선암 등의 고형암에 대한 방사선 치료 증진을 위해 사용할 수 있다.

본 발명의 조성물은 약제학적 분야에서 통상적인 방법에 따라 경구투여에 적합한 단위투여형의 제제 또는 주사제로 제형화시켜 투여할 수 있다. 이러한 목적에 적합한 경구투여용 제형에는 경질 또는 연질캅셀제, 정제, 산제, 현탁제, 시럽제 등이 포함된다. 이러한 경구투여용 제제에는 두 가지 또는 그 이상의 약물학적 활성 성분 이외에 하나 또는 그 이상의 약제학적으로 불활성인 통상적인 담체, 예를 들면 전분, 락토오스, 카복시메틸셀룰로오즈, 카올린 등의 부형제, 물, 젤라틴, 알코올, 글루코즈, 아라비아 고무, 트라가칸타 고무 등의 결합제, 전분, 덱스트린, 나트륨 알기네이트 등의 붕해제, 탈크, 스테아르산, 마그네슘 스테아레이트, 유동 파라핀 등의 활탁제와 같은 추가의 첨가제 성분들이 포함될 수 있다. 본 발명에서는 또한 용해를 위한 용해보조제 등을 첨가할 수도 있다.

본 발명의 약학 조성물은 또한 약물의 투여 형태와 치료학적 유효량에 적합한 방법으로, 예를 들어 경구, 비강 내, 정맥 내, 복강 내, 피하 또는 국소 투여한다. 상기 조성물은 또한 당해 기술 분야에 공지되어 있는 다른 방법 (예를 들어 Remington's Pharmaceutical Science 최신판에 기재된 방법들)을 사용할 수도 있다. 예를 들어 주사제의 경우는 이에 한정되는 것은 아니나, 한크액 (Hank's solution), 링거액(Ringer's solution), 생리식염완충액과 같은 생리학적으로 적합한 완충액을 사용하여 제조할 수 있다. 상기 용액은 현탁제, 안정제 및/또는 분산제를 포함할 수 있다. 또는 본 발명의 조성물은 분말형태로 제조되어, 사용 전에 멸균수와 같은 적당한 담체와 함께 사용될 수 있다. 또는 리포좀이나 현탁액, 서 방성 제제 형태로 제조될 수 있다. 본 발명의 약학 조성물은 종양의 치료를 위하여 단독으로, 또는 수술, 호르몬 치료, 약물 치료 및 생물학적 반응 조절제를 사용하는 방법들과 병용하여 사용할 수 있다.

본 발명의 약학 조성물의 투여량 및 투여시기는 투여대상의 나이, 성별, 상태, 체중, 투여경로, 투여 횟수, 약의 형태에 따라서 달라진다. 일일 투여량은 약 0.01 ug/kg 내지 10g/kg이고, 바람직하게는 0.01 mg/kg 내지 100mg/kg 이다.

본 발명의 약학조성물이 유전자 치료제로 사용될 경우는 핵산을 직접 주사하거나 또는 핵산이 포함된 수송체(벡터)를 투여할 수 있다. 핵산분자의 경우 투여량은 발현벡터, 투여대상 등에 좌우된다. 바이러스 벡터의 경우, 바이러스 벡터를 함유하는 재조합 바이러스의 양은 10³ 내지 10¹² pfu/kg 범위이다. 또한 본 발명의 Snail 1 단백질의 DNA-PKcs와의 결합에 대한 기능 저해제는 리포솜, 바이러스, gene gun, 폴리머, 초음파, 전기충격을 이용해 전달될 수 있다.

본 발명에 따르면, Snail 1 단백질은 DNA-PKcs와 결합함으로써 DNA-PKcs의 유전자 손상복구능력이 감소하고 암세포의 방사선에 대한 민감도가 떨어지게 되므로, 미지의 물질들 중에서 Snail 1 단백질의 발현을 차단하거나 Snail 1 단백질이 DNA-PKcs와 결합하는 것을 차단하는 물질을 선택함으로써 방사선 치료 증진용 활성물질을 선별할 수 있다.

따라서, 본 발명은 다른 측면에 있어서, 상기 Snail 1 단백질이 DNA-PKcs와의 결합에 의해 암세포의 방사선에 대한 내성을 유도하는 것을 발견한 것에 기초하 여 방사선 치료 증진용 활성물질을 스크리닝하는 방법을 제공한다.

상기 방사선 치료 증진용 활성물질을 스크리닝하는 방법은

암세포주를 시료들 각각으로 처리하는 단계;

암세포주 내의 Snail 1 유전자의 발현을 측정하는 단계; 및

암세포주 내의 Snail 1 유전자의 발현을 저해하는 시료를 선택하는 단계를 포함할 수 있다.

상기 Snail 1 유전자의 발현의 저해정도는 예를 들어 노던블롯방법으로 Snail 1의 mRNA의 양을 측정하거나 또는 Snail 1 단백질에 대한 항체를 사용하여 Snail 1 단백질의 발현량을 측정하여 결정할 수 있다.

상기 방사선 치료 증진용 활성물질을 스크리닝하는 또 다른 방법은

암세포주를 시료들 각각으로 처리하는 단계;

Snail 1이 DNA-PKcs와 결합된 함량을 측정하는 단계; 및

Snail 1이 DNA-PKcs와 결합을 저해하는 시료를 선택하는 단계를 포함할 수 있다.

상기 Snail 1이 DNA-PKcs와 결합된 함량을 측정하기 위해서는 단백질의 ??량을 측정하는 방법으로서 당업자에게 공지된 임의의 방법에 의해 측정할 수 있으며, 바람직하게는 Snail 1 및 DNA-PKcs의 결합체를 면역침강시킨 다음 웨스턴블랏에 의해 측정함으로써 보다 정확하게 측정할 수 있다.

본 발명에 따른 전사조절인자 Snail 1 단백질의 DNA-PKcs와의 결합에 대한 기능 저해제를 포함하는 조성물은 암세포에 대해 방사선에 대한 민감성을 부여하여 암에 대한 방사선 치료활성을 증진시키는 효과가 있다. 본 발명에 따르는 기술은 세포내 단백질 간의 신호 전달 및 신호 맵핑의 체계적 연구에 의한 신의약 타겟을 발굴하는 진보된 기술이다. 또한, 종래 방사선 민감제로서 방사선치료 효율을 증진시킨는 것으로 입증된 탁솔과 시스플라틴 같은 화학요법제 에 비해 Snail 1 단백질의 발현 저해 또는 Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합저해만으로 방사선 치료 시 암 치료 효율을 증진시킬 수 있으므로, Snail 1 및 DNA-PKcs는 암 치료를 위한 방사선 민감제로서 효율성 및 안전성이 매우 높은 치료 타겟으로 활용될 수 있다.

이하, 본 발명을 하기 실시예에 의해 더욱 구체적으로 설명한다. 그러나, 이들 실시예는 본 발명에 대한 이해를 돕기 위한 것일 뿐, 어떤 의미로든 본 발명의 범위가 이들에 의해 제한되는 것은 아니다.

실험방법

1) 사용세포주의 배양: 인체 암세포인 NCI-H460, A549는 RPMI에 열처리한 10% 우태아혈청(FBS, GIBCO)과 항생제를 첨가하여 섭씨 37℃, 5% CO₂ 조건의 배양기에서 배양하였다. MCF7 세포와 DLD1 세포는 DMEM(Dulbeccos Minimal Esential Mdium)(GIBCO, Gaithersburg, MD)에 10% FBS, 글루타민, HEPES, 및 항생제를 첨가하여 섭씨 37℃, 5% CO₂ 조건의 배양기에서 배양하였다.

2) 유전자 재조합: 전사조절인자 Snail 1 유전자(Genbank number NM_005985)를 아미노 말단에 Flag-tag를 달고 있는 pCR 3.1 (Invitrogen)에 클로닝하였다. 두 번의 연속된 중합효소연쇄반응(Polymerase Chain Reaction, 이하 PCR)을 이용하여 Snail 1의 부분 삭제 단백질을 세포 내에서 발현할 수 있도록 재조합벡터를 제조하여 세포에 넣어 주었다.

3) 방사선 조사: 세포를 3.5, 6, 그리고 10 cm 배양접시에 깔아서 37℃ CO₂ 배양기에서 70-80% 정도 자랄 때까지 배양한 뒤 감마선(137Cs) (Atomic Energy of Canada, Ltd., Canada)을 3.81 Gy/분의 선량률로 조사하였다. 총 5 Gy를 조사하였다.

4) 세포분석: 세포를 키운 뒤, 주어진 시간에 채취하여 프로피듐 요오다이드(propidium iodide, PI)로 염색한 뒤, 판매자의 지시대로 FACScan flow cytometer를 이용하여 분석하였다.

5) 전기영동과 면역반응을 이용한 단백질 분석: 시료 속의 단백질을 분석하기 위하여 우선 PAGE(polyacrylamide gel electrophoresis)를 수행한 후, 웨스턴블랏을 수행하였다. 실험하고자 하는 세포들을 우선 용해용액 [120 mM NaCl, 40 mM Tris (pH 8.0), 0.1% NP40]에 현탁하여 세포들을 터뜨린 다음, 일정량의 단백질을 10% SDS-PAGE를 통해 분자량별로 분리한 다음, 단백질들을 니트로셀룰로오스 멤브레인에 옮긴 다음 면역블롯팅(immunoblotting)을 이용하여 분석하였다.

6) 면역침강반응: 세포를 용해용액 [50 mM Hepes, pH 7.6, 150 mM NaCl, 5 mM EDTA, 0.1% NP-40]에 현탁한 후 원심분리(15000 x g에서 10분)를 이용하여 단백질을 분리한 후, 면역침강 시키고자 하는 특정 단백질(500ug)에 해당되는 항체를 1:100의 비율로 4℃에서 12시간이상 반응시킨 후 50μl 단백질 G-세파로오스 비드를 이용하여 4℃에서 1시간 동안 면역침전시켰다. 면역침전된 단백질을 용해용액으로 3 회 이상 세척 후 SDS 샘플 완충액을 넣고 5 분 간 끊인 후, 전기영동과 면역 반응을 이용해 면역 침강된 특정 단백질과 결합하는 단백질을 확인하였다.

7) 세포내 유전자, siRNA, 펩티드 주입: 대조군 siRNA와 Snail 1 siRNA는 Santacruz로부터 구입하였으며, 유전자 도입시약인 Lipofectamin^TM 2000(Invitrogen) 20 ㎕를 Opti-MEM 배지 250 ㎕와 5 분간 반응시키고, 250 ㎕에 희석시킨 100 nM siRNA와 20 분동안 반응시켜 전체 2.5 mL의 부피가 되도록 60-mm 접시에 있는 세포에 처리하여, 48 시간 후 유전자 발현 억제현상을 웨스턴 블랏팅으로 확인하였다. 다른 재조합 벡터들은 60-mm 디쉬 기준으로 2 ㎍ 벡터를 이용하여 plus Lipofectamin^TM 시약과 15분 먼저 반응시키고, Lipofectamin^TM 시약을 이용하여 위와 같은 방법으로 세포내 주입시켰다. 펩티드는 5 ㎍/ml 농도로 Lipofectamin^TM 2000을 이용하여 위와 같이 세포내 처리하였다.

8) DNA-PKcs 활성 측정: DNA-PKcs 반응 완충액[250mM HEPES (pH7.5), 500 mM KCl, 50mM MgCl₂, 1mM EGTA, 0.5mM EDTA, 5mM DTT]에 5 μCi 의 [γ-³²P] ATP와 DNA-PK 비오티닐화 펩티드 기질(biotinylated-p53 peptide) (EPPLSQEAFADLWKK, Promega)를 현탁하여 반응 혼합물를 만들었다. 세포의 핵 내 단백질을 반응 혼합물과 섞어 30℃에서 5 분간 반응을 시킨 후, SAM 비오틴 포착 멤브레인(biotin capture membrane)에 반응물을 10 μl씩 스팟팅하였다. 멤브레인을 2 M NaCl과 1% H₃PO₄를 포함한 2 M NaCl을 이용하여 20 분 내에 간단히 세척한 후, 형광영상 시스템(phosphorimaging system)을 이용하여 경과를 분석하였다.

9) dsDNA-pull down assay: 세포의 핵내 단백질을 비오틴이 결합된 dsDNA와 스트렙타비딘 상자성 비드를 이용하여 4℃에서 3시간 동안 면역침전시켰다. 비드를 완충용액 D( 10mM Tris pH7.6, 100mM NaCl)로 2회 세척 후, SDS 샘플 완충액을 첨가하여 5분간 끓여 웨스턴 블랏을 수행하였다.

10) 코멧 어세이(Comet assay): 세포를 아가(agar)와 섞어준 후 슬라이드에 올려서 pH 14 정도의 알칼리 조건으로 DNA 가닥을 풀어준 후 전기영동을 하였다. 그 후 슬라이드를 사이버 그린(cyber green)으로 염색해서 형광현미경으로 DNA 파편의 tail 길이를 측정하여 DNA의 손상 정도를 확인하였다.

11) 세포에서 핵단백질의 분리: 세포를 용해용액 [10 mM Hepes-KOH, pH 7.9, 1.5 mM MgCl₂, 10 mM KCl, 0.5mM DTT, 0.2mM PMSF, 10% NP-40]에 현탁한 후 원심분리(13000 rpm에서 1 분)를 이용하여 사이토졸 단백질을 분리한 후, 남아있는 세포분획을 용해용액[10 mM Hepes-KOH, pH 7.9, 1.5 mM MgCl₂, 10 mM KCl, 0.5 mM DTT, 0.2 mM PMSF, 25% 글리세린, 420 mM NaCl, 0.2 mM EDTA]에 현탁한 후 원심분리(13000 rpm에서 5분)를 이용하여 핵단백질을 분리하였다.

실시예 1

a. Snail 1의 과발현 및 DNA-PKcs와의 결합 확인

Flag으로 태그된 Snail 1을 Lipofectamine^TM 시약과 반응시켜 MCF 유방암 세포 내 주입 시킨 후, flag 항체로 웨스턴 블랏팅을 해본 결과 Snail 1이 과발현 되었음을 확인할 수 있었다(도 1a의 제3행). 단백질의 동량 정량 확인을 위해 β-actin항체로 웨스턴 블랏팅을 실시하였으며(도1a의 4), flag(도 1a의 제1행)와 DNA-PKcs(도 1a의 제2행)항체를 이용해 면역침강반응을 실시하고 각각 DNA-PKcs(도 1a의 제1행)와 flag(도 1a의 제2행)로 웨스턴 블랏팅을 실시하였다. 그 결과를 도 1a 에 나타내었다.

도 1a는 세포 중에서 Snail 1을 과발현시킨 뒤 Snail 1의 발현량 및 Snail 1이 DNA-PKcs와 결합한 양을 웨스턴 블랏팅을 이용하여 측정한 결과를 나타낸 것이다. 도 1a에 따르면 MCF 유방암 세포에서 Snail 1이 과발현되면 Snail 1과 DNA-PKcs간의 결합이 견고하게 일어난다는 것을 확인할 수 있다.

또한, 동일한 방법으로 flag으로 태그된 Snail 2(Genbank number NM_003068)을 세포 내에서 과발현시킨 다음 동일한 실험을 수행한 결과를 도 1b에 나타내었다.

도 1b는 세포 중에서 Snail 2를 과발현시킨 뒤 Snail 2의 발현양 및 Snail 2가 DNA-PKcs와 결합한 양을 측정하여 웨스턴 블랏팅을 이용하여 측정한 결과를 나 타낸 것이다. 도 1b에 따르면 Snail 2를 과발현 시켰을 때 DNA-PKcs와 결합하는 것으로 나타났다.

b. Snail 1과 DNA-PKcs간의 결합부위 확인

Snail 1의 어느 부위가 DNA-PKcs와 결합하는지를 알아보기 위해 여러 가지 종류의 Snail 1의 부분 삭제 단백질을 중합효소연쇄반응(Polymerase Chain Reaction)을 이용하여 세포 내에서 발현할 수 있도록 flag으로 태그된 재조합벡터에 삽입하여 세포내에 주입시켰다. 그런 다음, flag 항체로 웨스턴블랏팅한 결과 및 DNA-PKcs항체로 면역침강반응을 실시한 후 flag 항체로 웨스턴블랏팅을 한 결과를 도 1c에 나타내었다.

도 1c는 다양한 부위가 삭제된 Snail 1의 부분 삭제 단백질들을 flag으로 태그된 재조합벡터에 삽입하여 세포내에 주입 시킨 다음, flag 항체로 웨스턴블랏팅한 결과 및 DNA-PKcs항체로 면역침강반응을 실시한 후 flag 항체로 웨스턴블랏팅을 한 결과를 나타낸 것이다.

도 1c의 결과에 따르면 Snail 1과 DNA-PKcs와의 결합은 Snail 1의 아미노산 8에서 35번을 삭제한 구조물(construct)에서는 결합이 이루어지지 않으며, 따라서 Snail 1의 아미노산 8에서 35번 서열이 DNA-PKcs와의 결합 부위임을 확인할 수 있었다.

실시예 2: 펩티드 1의 제작 및 Snail 1과 DNA-PKcs간의 결합 저해 확인

상기 실시예 1의 도 1c의 결과를 바탕으로 Snail 1 및 Snail 2의 8에서 35번까지의 아미노산 서열을 분석하였으며(Peinado H, Olmeda D, Cano ASnail, Zeb and bHLH factors in tumour progression: an alliance against the epithelial phenotype? Nat Rev Cancer. 2007 Jun;7(6):415-28. Epub 2007 May 17; Nieto MA. The snail superfamily of zinc-finger transcription factors. Nat Rev Mol Cell Biol. 2002 Mar;3(3):155-66), 그 결과를 도 2a에 나타내었다.

상기 서열은 Snail 1과 Snail 2(slug)에서 보이는 동일한 서열을 포함하고 있음을 확인할 수 있었으므로, Snail 1과 Snail 2의 동일 서열인 펩티드 1과 대조군으로 펩티드 2를 제작하였으며, 이를 도 2a에 나타내었다. 비오틴으로 태그된 펩티드는 펩트론(주)에 제작 의뢰하였다. 비오틴으로 태그된 펩티드 1, 2를 MCF7 세포에 세포내 주입시키고, 스트렙타비딘 연결 아가로스겔 비드(Streptavidin linked agarose bead)로 Biotin 항체에 의한 면역침강을 수행한 후, DNA-PKcs로 웨스턴블랏팅을 수행을 한 결과를 도 2b에 나타내었다. 또한, Snail 1이 과발현된 MCF7 세포에서 펩티드 1의 농도를 증가시켜 가면서 Snail 1이 DNA-PKcs과 결합한 양을 DNA-PKcs로 면역침강을 수행한 후,Flag으로 웨스턴블랏팅을 수행한 결과를 도 2b에 나타내었다.

도 2b에 따르면 DNA-PKcs는 펩티드 1에 특이적으로 결합하는 반면에, 대조군인 펩티드 2에 대해서는 DNA-PKcs가 결합하지 않는 것으로 나타났다. 또한, 세포내의 Snail 1을 과발현시켰을 때 대조군에 비해서 증가 되었던 DNA-PKcs와의 결합은 펩티드 1의 처리 농도에 의존적으로 저해되는 것으로 확인되었다.

실시예 3

a. Snail1 과발현 시 DNA-PKcs의 활성 측정

여러 종류(MCF7, H460, DLD1)의 암세포에 Snail 1을 과발현시킨 세포에서 분리한 단백질로 p53 펩티드를 기질로 사용하여 DNA-PKcs의 활성을 측정하였다. 그 결과를 도 3a에 나타내었다.

도 3a에 따르면, Snail 1이 과발현되었을 때, 대조군에 비해 DNA-PKcs 인산화 효소 활성도 현저히 떨어지는 것으로 관찰되었다.

b. Snail 1에 대한 siRNA 부가 시 DNA-PKcs 활성 측정

A549 세포와 H460세포에 Snail 1에 대한 siRNA를 도입한 다음 48시간 경과 후, 세포로부터 분리한 단백질로 DNA-PKcs의 활성을 측정하였다. 그 결과를 도 3b에 나타내었다.

도 3b에 따르면, Snail 1의 siRNA를 부가 시 Snail 1의 발현량이 줄어 DNA-PKcs와의 결합량이 줄어들므로써 대조군에 비해 DNA-PKcs 인산화 효소 활성이 현저히 증가하는 것으로 관찰되었다.

c. 펩티드 1 및 펩티드 2 부가 시 DNA-PKcs 활성 측정

Snail 1을 과발현시킨 H460세포에 펩티드 1 및 펩티드 2를 농도별로 처리한 다음 48시간 경과 후 단백질을 분리하여 DNA-PKcs의 활성을 측정하였다. 그 결과 를 도 3c에 나타내었다.

도 3c의 결과에 따르면, Snail 1과 DNA-PKcs의 결합억제 능력을 소유하고 있는 펩티드1의 경우, Snail 1의 과발현에 의해 억제 되었던 DNA-PKcs 활성도가 펩티드 1을 첨가함으로써 다시 회복이 되고, 반면 대조군인 펩티드 2의 첨가는 DNA-PKcs의 활성도에 영향을 주지 못하는 것으로 관찰되었다.

d. Snail 1 과발현 후 방사선 조사한 후 DNA-PKcs의 활성 측정

Snail 1을 DLD-1세포와 H460세포에서 과발현시킨 후 방사선(5Gy)을 각각 10분, 30분, 60분간 조사한 후 세포를 분획하여 Snail 1의 발현량을 검출하고, DNA-PKcs의 자가 인산화 위치인 Ser2056 아미노산 잔기의 인산화를 그것을 인지하는 항체를 이용하여 웨스턴블랏에 의해 검출하였다. 또한, DNA-PKcs효소에 대한 기질인 p53과 H2AX의 인산화를 각각의 항체를 이용하여 웨스턴 블랏을 통해 검출하였다. 그 결과를 도 3d에 나타내었다.

도 3의 결과에 따르면, 두 가지 세포에서 대조군에서는 방사선에 의해 DNA-PKcs의 자가 인산화가 일어나는 것을 확인하였고, Snail 1이 과발현된 세포에서는 방사선에 의한 DNA-PKcs의 자가 인산화가 저해되는 것으로 확인되었다(제1행). DNA-PKcs의 자가인산화 능력은 결국 기질의 인산화능력을 가져오므로 DNA-PKcs 효소에 대한 기질인 p53과 H2AX의 인산화를 각각의 항체를 이용하여 면역반응을 통해 검출한 결과, p53의 전체적인 양의 변화에 비해(제3행), 방사선 조사에 의해 생긴 인산화된 p53(제2행)과 H2AX(제4행)는 감소함을 알 수 있었다.

실시예 4: Snail 1 및 DNA-PKcs 간 결합의 DNA 손상 회복에 대한 기전

Snail 1과 DNA 손상 복구 단백질간의 결합이 DNA손상 회복 기전에 미치는 영향을 dsDNA-pull down assay로 확인하였다. H460 세포주에서 핵내 단백질을 분리한 후, Snail1 단백질을 첨가한 후, 펩티드 1을 5ug/ml로 부가한 다음, 비오틴이 결합된 dsDNA와 스트렙타비딘 상자성 비드를 이용하여 4℃에서 3시간 동안 면역침전시킨 후, 손상된 dsDNA에 결합된 DNA-PKcs, Ku86에 대한 웨스턴 블랏팅을 수행하였다. 또한, DNA 손상 복구 정도를 펩티드 1 부가 후 2 시간 및 24 시간 경과 후 코멧 어세이로 확인하였다.

그 결과를 도 4a 및 4b에 나타내었다.

도 4a는 H460세포에서 핵 분획을 분리하여 Snail1단백질과 펩티드 1을 5ug/ml로 부가하여 반응시킨 후, dsDNA-pull down assay에 의해 손상된 DNA와 DNA-PKcs, Ku86의 결합을 검출한 결과를 나타낸 것이다.

도 4b는 H460에서 Snail 1을 과발현시킨 후, 펩티드 1을 부가한 다음, 방사선을 조사하여 DNA 손상 복구 정도를 코멧 어세이로 확인한 결과를 나타낸 것이다.

도 4a의 결과에 따르면, Snail 1과 DNA 손상 복구 단백질의 결합은 손상된 DNA와 DNA-PKcs, Ku80의 결합을 방해하는 것으로 관찰되었다. Snail 1과 DNA-PKcs의 결합을 방해하는 펩티드 1을 첨가하였을 때에는, 농도 의존적으로 DNA-PKcs, Ku80이 손상된 DNA에 결합함을 관찰 할 수 있었다. 또한, 도 4b에 따르면 방사선조사에 의한 DNA 손상이 펩티드 1을 첨가 시 회복한다는 것을 알 수 있다.

실시예 5: Snail 1 과발현 시 펩티드 1 부가가 미치는 영향 측정

NCI-H460 폐암 세포를 대상으로 Snail 1을 과발현 시키고, 펩티드 1을 5ug/ml로 처리한 다음, 방사선 조사 시 세포사멸의 정도를 프로피듐 요오다이드(propidium iodide)를 이용하여 분석하였다. 그 결과를 도 5에 나타내었다.

도 5의 결과에 따르면, Snail 1이 과발현된 세포의 세포 사멸 정도가 대조군에 비해 더 적은 것으로 관찰되었고, 펩티드 1으로 처리한 경우는 세포사멸정도가 대조군에 비해 더 높은 것으로 관찰되었다. 따라서, Snail 1 과발현은 방사선 내성을 유도하며, 펩티드 1은 Snail 1의 과발현에 의한 방사선 내성을 억제시키는 능력을 가짐으로써 방사선 민감제로서의 역할을 수행한다는 것을 알 수 있다.

도 1a는 세포 중에서 Snail 1을 과발현시킨 뒤 Snail 1의 발현양 및 Snail 1이 DNA-PKcs와 결합한 양을 측정하여 면역침강법 및 웨스턴블랏팅을 이용하여 측정한 결과를 나타낸 것이다.

도 1b는 세포 중에서 Snail 2을 과발현시킨 뒤 Snail 2의 발현양 및 Snail 2가 DNA-PKcs와 결합한 양을 측정하여 면역침강법 및 웨스턴블랏팅을 이용하여 측정한 결과를 나타낸 것이다.

도 2a는 Snail 1 및 Snail 2의 8에서 35번까지의 아미노산 서열을 분석한 결과를 나타낸 것이며, 이를 기초로 제작한 펩티드 1 및 펩티드 2의 서열을 나타낸 것이다.

도 2b는 펩티드 1과 펩티드 2를 MCF7 세포에 세포내 주입시키고, DNA-PKcs와의 결합 정도를 면역침강 및 웨스턴블랏팅을 이용하여 확인한 결과(A) 및 Snail 1이 과발현된 MCF7 세포에서 펩티드 1의 농도를 증가시켜 가면서 Snail 1이 DNA-PKcs과 결합한 양을 면역침강법 및 웨스턴블랏팅에 의해 확인할 결과를 나타낸 것(B)이다.

도 3a는 MCF7, H460, DLD1 암세포에서 Snail 1을 과발현시킨 세포의 분획으로 p53 펩티드를 기질로 사용하여 DNA-PKcs의 활성을 측정한 결과를 나타낸 것이다.

도 3b는 A549 및 H460 암세포에서 siRNA를 도입하여 Snail 1의 발현을 억제한 세포의 분획으로 p53 펩티드를 기질로 사용하여 DNA-PKcs의 활성을 측정한 결과 를 나타낸 것이다.

도 3c는 H460 암세포에 펩티드 1 및 펩티드 2를 농도별로 처리한 다음 세포의 분획으로 p53 펩티드를 기질로 사용하여 DNA-PKcs의 활성을 측정한 결과를 나타낸 것이다.

도 3d는 Snail 1을 DLD-1세포와 H460세포에서 과발현시킨 후 방사선(5Gy)을 각각 10분, 30분, 60분간 조사한 후 세포 분획에서의 Snail의 발현양, DNA-PKcs의 자가 인산화 위치의 인산화, 및 p53과 H2AX의 인산화를 검출한 결과를 나타낸 것이다.

도 4a는 H460에서 세포 핵 단백질을 분획하여 Snail1단백질과 펩티드 1을 부가한 다음, dsDNA-pull down assay에 의해 손상된 DNA와 DNA-PKcs, Ku86의 결합을 검출한 결과를 나타낸 것이다.

도 4b는 H460에서 Snail 1을 과발현시키고 펩티드(5ug/ml)을 부가한 다음 24 시간 후 방사선을 조사하여 DNA 손상 복구 정도를 코멧 어세이로 확인한 결과를 나타낸 것이다.

도 5는 NCI-H460 폐암 세포를 대상으로 Snail 1을 과발현 시키고, 펩티드 1을 5ug/ml로 처리한 다음, 방사선 조사 시 세포사멸의 정도를 프로피듐 요오다이드(propidium iodide)를 이용하여 분석한 결과를 나타낸 그래프이다.

<110> Korea Institute of Radiological and Medical Sciences <120> A pharmaceutical composition for enhancing the radiotherapy of cancer and a method of screening an active material for enhancing the radiotherapy of cancer <130> pn083987 <160> 2 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 7 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> antipeptide <400> 1 Lys Pro Asn Tyr Ser Glu Leu 1 5 <210> 2 <211> 27 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> antipeptide <400> 2 Lys Pro Ser Asp Pro Asn Arg Lys Pro Asn Tyr Ser Glu Leu Gln Asp 1 5 10 15 Ser Asn Pro Glu Phe Thr Phe Gln Gln Pro Tyr 20 25

Claims (9)

1. KPNYSEL(SEQ ID NO. 1), KPSDPNRKPNYSELQDSNPEFTFQQPY(SEQ ID NO. 2), 및 이들의 조합으로 구성된 군에서 선택된 Snail 1의 DNA-PKcs와의 결합에 대한 안티펩티드를 포함하는 암에 대한 방사선 치료 증진용 약학 조성물.
2. 삭제
3. 삭제
4. 삭제
5. 삭제
6. 삭제
7. 제1항에 있어서, 상기 안티펩티드가 리포솜, 바이러스, gene gun, 폴리머, 초음파, 또는 전기충격을 이용해 전달되는 것인 약학 조성물.
8. 삭제
9. 암세포주를 시료들 각각으로 처리하는 단계;

   Snail 1이 DNA-PKcs와 결합된 함량을 측정하는 단계; 및

   Snail 1이 DNA-PKcs와 결합을 저해하는 시료를 선택하는 단계를 포함하는 암에 대한 방사선 치료 증진용 활성물질을 스크리닝하는 방법.

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