KR101091810B1 - 신규 활성제를 이용한 trpv1 활성화 방법 - Google Patents

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Abstract

본 발명은 제라닐제라닐피로인산(geranyl geranyl pyrophosphate; GGPP) 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함하는 TRPV1(transient receptor potential vanilloid 1) 활성제에 관한 것으로, 구체적으로는 GGPP를 이용한 피검화합물 확인방법에 관한 것이다. 본 발명의 GGPP는 TRPV1에만 특이적으로 작용하여, TRPV1을 발현하는 감각 신경세포만을 분리할 수 있게 할 수 있게 함으로 TRPV1 작용 기작 연구 및 TRPV1 작용 진통제 개발에 유용하게 이용될 수 있다.
제라닐제라닐피로인산(geranyl geranyl pyrophosphate; GGPP), TRPV1(transient receptor potential vanilloid 1) 활성제

Description

신규 활성제를 이용한 TRPV1 활성화 방법{Method for activation of Transient receptor potential cation channel, subfamily V, member 1 using a novel activator}
본 발명은 TRPV1(transient receptor potential vanilloid 1) 활성제 및 이의 용도에 관한 것이다.
인체 생리학 및 약리학 분야의 연구를 통해 1997년에 말초감각 신경섬유에 존재하는 TRPV1(transient receptor potential vanilloid 1)이 발견되었다. 상기 TRPV1은 온도 및 통증유발 유해자극을 감지하는 통각수용체 군인 thermoTRP 군(temperature-sensitive transient receptor potential ion channels)에 속해 있다. TRPV1은 고온 자극, 염증성 자극, 산성자극 및 매운맛의 성분인 캡사이신 (capsaicin) 등 다양한 자극을 감지하여 활성화되며, 상기 활성화에 의해 인체가 통증을 느끼게 된다. 염증매개물질인 프로스타글란딘, 브래디키닌(bradykinin) 등도 간접적으로 TRPV1 활성도를 높여 통증을 높이는 것으로 알려졌으며 역시 염증매 개물질인 신경성장인자(nerve growth factor; NGF)는 TRPV1 발현을 촉진시켜 통증에 대해 더 민감하게 한다고 알려졌다. 연구자들은 통각수용체 TRPV1의 기능을 명확히 규명함으로써 인체의 통각 기전을 밝히고, 아울러 TRPV1의 조절약물의 개발을 통해 통증 경감의 목표를 달성할 수 있으리라 예측하고 있다.
TRPV1과 통증에 대한 다양한 연구가 활발히 진행되고 있으며, 현재까지는 생체에서 분비되는 내인성 물질로서 HPETE라는 분자가 신경세포 안에서 만들어져 TRPV1에 달라붙어 채널을 연다는 것이 알려졌지만, 상기 화학물질은 화학적으로 불안정하여 실온에서 쉽게 분해되는 단점이 있다.
상기 TRPV1의 활성화 억제를 기전으로 하는 통증억제제 개발에 쓰이는 기반 기술을 이해하기 위한 TRPV1의 특성은 다음과 같다. TRPV1은 이온채널이며, 이의 활성화를 통하여 양이온이 감각 신경세포 내부로 이동하고, 이에 의해 세포막 전류가 변화한다. 상기 세포막 전류의 변화에 의해 활동전압이 발생하고 이 전압신호가 궁극적으로 뇌로 전달되어 통증을 감지하는 것이다. 상기 TRPV1 활성화를 측정하는 기술로는 첫 번째, 세포막 전류를 증폭하여 그 변화를 측정할 수 있는 팻취클램프 전기생리학 기술과 두 번째, TRPV1이 칼슘 이온 등의 양이온을 이동시키는 데에서 착안한 세포내 칼슘 농도 변화 측정 기술이 있다. 첫 번째 기술의 경우 측정의 정밀도에 있어 두 번째 기술보다 우위에 있으며, 두 번째 기술의 경우, 첫 번째 기술보다 고속 측정이 가능하다는 장점이 있어 서로 보완적이다. 또한 상기 TRPV1 활성화 측정 기술들은 동물의 감각신경 세포 배양기술, 세포주 배양기술, TRPV1 DNA 관리 및 형질감염 기술이 뒷받침되어야 구현할 수 있다. 즉, 각종 TRPV1 특이 적 억제제 피검화합물들 및 표준 활성제를 TRPV1 과발현 세포에 각각 투여하고 TRPV1 활성화 억제 효과를 측정 및 비교함으로써, 억제제 여부 및 그 강력성을 측정할 수 있다.
이에, 본 발명자들은 여러 TRP를 발현하는 세포주를 제작하여 제라닐제라닐피로인산(geranyl geranyl pyrophosphate; GGPP) 및 TRPV1 활성제로 알려진 캡사이신 처리에 대한 반응을 비교한 결과, 상기 GGPP도 캡사이신과 유사하게 TRPV1을 활성화하며 TRPV1 매개성 통증을 유발하고, 이에 TRPV1을 타깃으로 하는 약물개발에 유용하게 사용할 수 있음을 확인함으로써 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 목적은 TRPV1(transient receptor potential vanilloid 1)에 특이적으로 활성을 나타내는 활성제 또는 활성 억제제 스크리닝용 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 TRPV1에 특이적으로 활성을 나타내는 활성제를 이용하여 TRPV1 활성 억제제를 스크리닝하는 방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 TRPV1에 특이적으로 활성을 나타내는 활성제를 이용하여 TRPV1 활성제를 스크리닝하는 방법을 제공하는 것이다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 제라닐제라닐피로인산(geranyl geranyl pyrophosphate; GGPP) 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함하는 TRPV1(transient receptor potential vanilloid 1) 활성제 또는 활성 억제제 스크리닝용 조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은
1) 피검체로부터 분리된 감각 신경세포를 배양한 후 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 처리하는 단계;
2) 단계 1)의 처리된 감각 신경세포의 TRPV1 활성을 측정하는 단계; 및,
3) 단계 2)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염이 비처리 된 감각 신경세포의 TRPV1 활성 측정치와 비교하여 TRPV1 양성 반응을 나타낸 감각 신경세포를 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 양성 감각 신경세포의 분리 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은
1) 피검체로부터 분리된 감각 신경세포를 배양한 후 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRP 비특이적 활성제를 순차적으로 또는 역순으로 처리하는 단계;
2) 단계 1)의 처리된 세포의 TRPV1 활성을 측정하는 단계; 및,
3) 단계 2)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRP 비특이적 활성제가 비처리된 세포의 활성 측정치와 비교하여 TRP 비특이적 활성제에는 양성 반응을 나타내지만 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염에는 음성 반응하는 신경을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 음성 세포의 분리 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은
1) TRPV1 양성 세포에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRPV1 활성 억제제 후보 피검화합물을 처리하는 단계;
2) TRPV1 음성 세포에 상기 TRPV1 활성 억제제 후보 피검화합물 및 TRP 비특이적 활성제를 처리하는 단계;
3) 단계 1) 및 단계 2)의 처리된 TRPV1 양성 세포 및 TRPV1 음성 세포의 TRPV1 활성을 측정하는 단계; 및,
4) 단계 3)의 각각의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 TRPV1 양성 세포의 활성 측정치와 비교하여 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRPV1 활성 억제제 후보 피검화합물을 처리한 TRPV1 양성 세포의 활성을 억제하고 상기 TRPV1 활성 억제제 후보 피검화합물 및 TRP 비특이적 활성제를 처리한 TRPV1 음성 세포의 활성에 영향을 주지 않는 후보 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은
1) TRPV1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 플라스미드가 숙주세포에 형질도입된 형질전환체를 제조하는 단계;
2) 상기 형질전환체에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRPV1 활성 억제제 후보 피검화합물을 처리하는 단계;
3) TRPV1 음성 세포에 상기 TRPV1 활성 억제제 후보 피검화합물 및 TRP 비특이적 활성제를 처리하는 단계;
4) 단계 2) 및 단계 3)의 처리된 형질전환체 및 TRPV1 음성 세포의 TRPV1 활성을 각각 측정하는 단계; 및,
5) 단계 4)의 각각의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 형질전환체의 TRPV1 활성 측정치와 비교하여 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRPV1 활성 억제제 후보 피검화합물을 처리한 형질전환체의 활성을 억제하고 상기 TRPV1 활성 억제제 후보 피검화합물 및 TRP 비특이적 활성제를 처리한 TRPV1 음성 세포의 활성에 영향을 주지 않는 피검화합물을 선별하는 단계를 포 함하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은
1) 피검체에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염과 피검화합물을 투여하는 단계;
2) 단계 1)의 처리된 피검체의 침해성 행동 유발을 측정하는 단계; 및,
3) 단계 2)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 피검체의 침해성 행동 유발 측정치와 비교하여 피검화합물의 침해성 행동을 유발하는 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성 조절제 스크리닝 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은
1) TRPV1 양성 세포에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRPV1 활성제 후보 피검화합물을 처리하는 단계;
2) 단계 1)의 처리된 TRPV1 양성 세포의 TRPV1 활성을 각각 측정하는 단계; 및,
3) 단계 2)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 TRPV1 양성 세포(대조군)의 TRPV1 활성 측정치와 비교하여 대조군보다 활성값이 높은 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성제 스크리닝 방법을 제공한다.
아울러, 본 발명은
1) TRPV1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 플라스미드가 숙주세포 에 형질도입된 형질전환체를 제조하는 단계;
2) 상기 형질전환체에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRPV1 활성제 후보 피검화합물을 처리하는 단계;
3) 단계 2)의 처리된 형질전환체의 TRPV1 활성을 각각 측정하는 단계; 및,
4) 단계 3)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 TRPV1 형질전환체(대조군)의 TRPV1 활성 측정치와 비교하여 대조군보다 활성값이 높은 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성제 스크리닝 방법을 제공한다.
본 발명의 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 TRPV1에만 특이적으로 작용하여, TRPV1을 발현하는 감각 신경세포만을 분리할 수 있게 한다. 또한 GGPP를 TRPV1의 내재적 활성제로서 제공하여 상기 채널의 억제제 스크리닝 방법을 제공하는 것이다.
이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 제라닐제라닐피로인산(geranyl geranyl pyrophosphate; GGPP) 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함하는 TRPV1(transient receptor potential vanilloid 1) 활성제 또는 활성 억제제 스크리닝용 조성물을 제공한다.
상기 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 TRPV1의 활성을 촉진하는 역할을 수행한다. 본 발명의 구체적인 실시예에서는 상기 GGPP 및 TRPV1 특이적 활성제인 캡사이신이 TRPV1에 미치는 영향을 팻취클램프 기법의 일종인 전세포 전압 클램프 실험 및 세포내 칼슘 농도 변화 측정 기술의 일종인 칼슘 이미지화로 확인한 결과 상기 두 물질이 TRPV1의 활성을 촉진하는 것으로 나타났고(도 1a 참조), 상기 활성은 일반적인 TRPV1 활성 억제제(pore blocker)인 캡사제핀에 의해 억제되었다(도 1b 참조). 즉, 캡사이신에 반응한 모든 세포들은 GGPP에 대해서도 반응하였다.
또한 상기 GGPP는 TRPV1을 특이적으로 활성화하는 역할을 수행한다. 본 발명의 구체적인 실시예에서 감각 신경세포에서 발현되는 것으로 알려진 TRP 중에서 TRPA1(Transient receptor potential cation channel, subfamily A, member 1), TRPV1, TRPV3, TRPV4 및 TRPM8(Transient receptor potential cation channel, subfamily M, member 8)를 발현하는 형질전환 세포주에서 GGPP에 의한 활성을 측정한 결과, 활성이 나타나지 않았다(도 2a 참조). 즉, GGPP는 TRPV1에 대해서만 활성을 나타낸다. 또한, GGPP 유사물질인 제라닐 피로인산(Geranyl pyrophosphate: GPP), 이소펜테닐 피로인산isopentenyl pyrophosphate: IPP), 파네솔은 rTRPV1 세포주에서 세포내 칼슘 수준을 향상시키지 못하였다.
상기 GGPP는 약학적으로 허용되는 염의 형태로 사용될 수 있으며, 통상의 방 법에 의해 제조되는 모든 염, 수화물 및 용매화물이 포함된다. 상기 약학적으로 허용가능한 염은 유리산(free acid)에 의해 형성된 부가염이 유용하다. 적합한 유리산으로는 유기산과 무기산을 사용할 수 있으며, 무기산으로는 염산, 브롬산, 황산 및 인산 등을 사용할 수 있고 유기산으로는 구연산(citric acid), 초산, 젖산, 주석산(tartariac acid), 말레인산, 푸마르산(fumaric acid), 포름산, 프로피온산(propionic acid), 옥살산, 트리플루오로아세트산, 벤조산, 글루콘산, 메탄술폰산, 글리콜산, 숙신산, 4-톨루엔술폰산, 갈룩투론산, 엠본산, 글루탐산 또는 아스파르트산 등을 사용할 수 있다. 나아가, 본 발명에 따른 GGPP는 약학적으로 허용가능한 염뿐만 아니라, 통상의 방법에 의해 조제될 수 있는 모든 염, 수화물 및 용매화물을 모두 포함할 수 있다.
GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 TRPV1에만 특이적인 활성을 나타내므로, 감각 신경세포 중에 TRPV1 양성 세포만을 분리하는 데에 유용하게 사용될 수 있어서, 상기 감각 신경세포의 통각 감지 성격(예: 열, 화학적 및 기계적 자극에 대한 감수성)의 파악 및 특히 취약한 질환(예: 염증성, 신경병증성 및 약물부작용의 통증)의 판별이 가능할 수 있다. 또한, 상기 GGPP를 동물에 투여하여 통증행동반응 강도를 측정함으로써 상기 TRPV1 활성이 실제 행동반응으로 외삽되는 지를 확인할 수 있고, 또한 이를 통해 여러 통증 중 TRPV1의 관련 통증을 판별할 수 있을 것이다. 아울러, TRPV1 활성 억제제 개발에도 유용하게 사용될 것이다. 즉, TRPV1 활성제 개발의 경우, TRPV1 활성 피검화합물의 표준 물질로 사용될 수 있을 것이다. 또한, TRPV1 활성 억제제 개발의 경우, 피검화합물이 GGPP에 의한 TRPV1 활성화를 차단하는지 여부를 확인하는 데에 이용될 수 있을 것이다. 아울러, 상기 GGPP는 화학적 가공을 통해 더욱 높은 강도의 활성제 또는 활성 억제제로 변화시킬 수 있도록 활용할 수 있을 것이다.
또한, 본 발명은
1) 피검체로부터 분리된 감각 신경세포를 배양한 후 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 처리하는 단계;
2) 단계 1)의 처리된 감각 신경세포의 TRPV1 활성을 측정하는 단계; 및,
3) 단계 2)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염이 비처리된 감각 신경세포의 TRPV1 활성 측정치와 비교하여 TRPV1 양성 반응을 나타낸 감각 신경세포를 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 양성 감각 신경세포의 분리 방법을 제공한다.
상기 피검체는 척추동물이고 바람직하게는 포유동물이며, 더욱 바람직하게는 쥐, 토끼, 기니아피크, 햄스터, 개, 고양이와 같은 실험동물이고, 가장 바람직하게는 침팬지, 고릴라와 같은 유인원류 동물이다. 상기 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 1 내지 1000 μM의 농도로 처리하는 것이 바람직하며, 더욱 바람직하게는 10 내지 1000 μM의 농도이다. 본 발명의 구체적인 실시예에서 GGPP의 TRPV1에 대한 EC50(effective concentration 50%: 50% 효과 농도)은 76.4 μM이었고, 최대 유효량은 대략 1 mM이었다. 이것은 GGPP가 마이크로몰라 농도의 범위에 서 TRPV1에 활성 효과를 나타내는 것을 시사한다(도 2b 참조).
또한, 단계 2)의 TRPV1 활성의 측정은 이에 제한되는 것은 아니나, 세포막 전류를 증폭하여 그 변화를 측정할 수 있는 전세포 전압 클램프 기술 및 TRPV1이 칼슘 이온 등의 양이온을 이동시키는 데에서 착안한 세포내 칼슘 농도 변화 측정 기술인 칼슘 이미지화에 의해 수행될 수 있다.
본 발명의 구체적인 실시예에서 약리학적 결과 및 전류-전압 프로파일링 방법을 이용하여 감각 신경세포에서 GGPP에 의해 반응성이 특이적으로 나타난 것을 확인하였다(도 3 참조). 그러므로, 상기 감각 신경세포의 약리학적 결과 및 전류-전압 프로파일링을 결과를 통합적으로 분석함으로써, TRPV1 활성 억제제 및 활성제의 선별이 가능할 뿐만 아니라, 신규 TRPV1 활성제인 GGPP를 사용하여 TRPV1-양성 감각 신경세포를 약리학적으로 분리될 수 있음을 시사하였다.
또한, 본 발명은
1) 피검체로부터 분리된 감각 신경세포를 배양한 후 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRP 비특이적 활성제를 순차적으로 또는 역순으로 처리하는 단계;
2) 단계 1)의 처리된 감각 신경세포의 TRPV1 활성을 측정하는 단계; 및,
3) 단계 2)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRP 비특이적 활성제가 비처리된 세포의 활성 측정치와 비교하여 TRP 비특이적 활성제에는 양성 반응을 나타내지만 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염에는 음성 반 응하는 신경을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 음성 세포의 분리 방법을 제공한다.
또한, 단계 2)의 TRPV1 활성의 측정은 이에 제한되는 것은 아니나, 세포막 전류를 증폭하여 그 변화를 측정할 수 있는 전세포 전압 클램프 기술 및 TRPV1이 칼슘 이온 등의 양이온을 이동시키는 데에서 착안한 세포내 칼슘 농도 변화 측정 기술인 칼슘 이미지화에 의해 수행될 수 있다.
또한, 단계 1)의 TRP 비특이적 활성제는 계피알데히드(cinnamaldehyde) 및 멘톨(menthol) 등의 TRPV1을 포함하는 thermoTRP 군(temperature-sensitive transient receptor potential ion channels)의 활성제로 알려진 것이 바람직하나 이에 한정되는 것은 아니다.
또한, 본 발명은
1) TRPV1 양성 세포에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 피검화합물을 처리하는 단계;
2) TRPV1 음성 세포에 상기 피검화합물 및 TRP 비특이적 활성제를 처리하는 단계;
3) 단계 1) 및 단계 2)의 처리된 TRPV1 양성 세포 및 TRPV1 음성 세포의 TRPV1 활성을 측정하는 단계; 및,
4) 단계 3)의 각각의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 TRPV1 양성 세포의 활성 측정치와 비교하여 GGPP 또는 이의 약학적으로 허 용가능한 염 및 피검화합물을 처리한 TRPV1 양성 세포의 활성을 억제하고 상기 피검화합물 및 TRP 비특이적 활성제를 처리한 TRPV1 음성 세포의 활성에 영향을 주지 않는 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법을 제공한다.
상기 TRPV1 양성 감각신경세포 및 TRPV1 음성 감각 신경세포는 본 발명의 방법에 의해 분리되는 것을 특징으로 한다. 단계 1)의 피검화합물은 천연화합물, 합성화합물, RNA, DNA, 폴리펩티드, 효소, 단백질, 리간드, 앱타머(aptamer), 항체, 항원, 박테리아 또는 진균의 대사산물 및 생활성 분자인 것이 바람직하나 이에 한정되는 것은 아니다.
또한, 본 발명은
1) TRPV1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 플라스미드가 숙주세포에 형질도입된 형질전환체를 제조하는 단계;
2) 상기 형질전환체에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 피검화합물을 처리하는 단계;
3) TRPV1 음성 세포에 상기 피검화합물 및 TRP 비특이적 활성제를 처리하는 단계;
4) 단계 2) 및 단계 3)의 처리된 형질전환체 및 TRPV1 음성 세포의 TRPV1 활성을 각각 측정하는 단계; 및,
5) 단계 4)의 각각의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 형질전환체의 TRPV1 활성 측정치와 비교하여 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 피검화합물을 처리한 형질전환체의 활성을 억제하고 상기 피검화합물 및 TRP 비특이적 활성제를 처리한 TRPV1 음성 세포의 활성에 영향을 주지 않는 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법을 제공한다.
상기 숙주세포는 이에 제한되는 것은 아니나, HEK 세포주, CHO 세포주, HeLa 세포주, RBL-2H3 세포주 등의 칼슘 채널 활성 연구 및 고효율 억제제 검색에 이용할 수 있는 세포주가 바람직하다. 단계 2)의 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 TRPV1만을 특이적으로 활성화하는 작용을 수행한다.
본 발명의 구체적인 실시예에서 감각 감각신경세포에서 발현되는 것으로 알려진 TRP 중에서 TRPV1을 발현하는 형질전환 세포주에서만 GGPP에 의한 활성을 나타냈다(도 2a 참조). 상기 GGPP는 1 내지 1000 μM의 농도로 처리하는 것이 바람직하며, 더욱 바람직하게는 10 내지 1000 μM의 농도이다.
아울러, 본 발명은
1) 피검체에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염과 피검화합물을 투여하는 단계;
2) 단계 1)의 처리된 피검체의 침해성 행동 유발을 측정하는 단계; 및,
3) 단계 2)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 피검체의 침해성 행동 유발 측정치와 비교하여 피검화합물의 침해성 행동을 유발하 는 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성 조절제 스크리닝 방법을 제공한다.
상기 피검체는 척추동물이고 바람직하게는 포유동물이며, 더욱 바람직하게는 인간을 제외한 포유동물이며, 그보다 바람직하게는 쥐, 토끼, 기니아피크, 햄스터, 개, 고양이와 같은 실험동물이고, 가장 바람직하게는 침팬지, 고릴라와 같은 유인원류 동물이다. 또한 단계 2)의 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 1 내지 100 mM의 농도로 투여하는 것이 바람직하다. 단계 2)의 투여방법은 특별히 이에 제한되는 것은 아니나, 비경구투여 방법이 바람직하고, 피내 투여가 가장 바람직하다. 단계 3)의 침해성 행동 유발의 측정은 이에 제한되는 것은 아니나, 바람직하게는 염증성 감작 유발에 의한 뒷발 핥기/튀기기 행동 분석에 의해 수행될 수 있다. 상기 염증성 감작은 상기 GGPP 주사 전에 카라기난(carrageenan) 또는 CFA(complete Freund's adjuvant)를 주사하여 유발할 수 있다.
본 발명의 구체적인 실시예에서는 상기 GGPP 처리에 의해 침해성(nocifensive) 행동을 실제로 유발할 수 있는지를 시험하였다. 뒷발에 카라기난 또는 CFA에 의해 염증을 일으킨 쥐에 GGPP를 투여한 결과, GGPP를 포함하지 않는 부형액만 투여한 군에서는 행동성 반응이 유발되지 않았으나, GGPP는 캡사이신과 유사하게 반응행동 시간을 증가시켰고 이는 TRPV1 특이적인 억제제로 알려진 캡사제핀에 의해 억제되었다(도 4 참조).
또한, 본 발명은
1) TRPV1 양성 세포에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRPV1 활성제 후보 피검화합물을 처리하는 단계;
2) 단계 1)의 처리된 TRPV1 양성 세포의 TRPV1 활성을 각각 측정하는 단계; 및,
3) 단계 2)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 TRPV1 양성 세포(대조군)의 TRPV1 활성 측정치와 비교하여 대조군보다 활성값이 높은 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성제 스크리닝 방법을 제공한다.
아울러, 본 발명은
1) TRPV1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 플라스미드가 숙주세포에 형질도입된 형질전환체를 제조하는 단계;
2) 상기 형질전환체에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRPV1 활성제 후보 피검화합물을 처리하는 단계;
3) 단계 2)의 처리된 형질전환체의 TRPV1 활성을 각각 측정하는 단계; 및,
4) 단계 3)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 TRPV1 형질전환체(대조군)의 TRPV1 활성 측정치와 비교하여 대조군보다 활성값이 높은 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성제 스크리닝 방법을 제공한다.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다.
단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.
<실시예 1> TRP 형질전환 세포주 제조
HEK293T 세포주(ATCC CRL-11268)를 rTRPV1(서열번호 1), rTRPV2(서열번호 2), mTRPV3(서열번호 3), rTRPV4(서열번호 4), mTRPM8(서열번호 5) 및 mTRPA1(서열번호 6) 플라스미드 DNA를 이용하여 일시적(transiently) 형질전환하였다.
구체적으로, HEK293T 세포주를 각각 24 well plate 당 0.8 ㎍의 rTRPV2, rTRPV1의 폴리뉴클레오티드를 각각 포함하는 pcDNA3.1 벡터, mTRPA1, hTRPV3, rTRPV4 및 mTRPM8의 각각 폴리뉴클레오티드를 포함하는 pcDNA5/FRT 벡터 및 0.2 ㎍/웰의 pCDNA3(Invitrogen Corp., USA; 녹색 형광 단백질 cDNA 포함)로 Fugene HD(Roche Diagnostics, 미국)를 이용하여 제조업체의 프로토콜에 따라 형질전환하였다. 상기 형질전환된 세포를 24 시간 동안 CO2 인큐베이터에서 10% FBS, 1% 페니실린/스트렙토마이신을 포함하는 DMEM 배지에서 배양하였고, 폴리-L-오르트린 코팅된 유리 커버 슬립에 도말한 후, 10 내지 24 시간 동안 추가 배양하였다.
< 실시예 2> 척수후근신경절 ( dorsal root ganglia : DRG ) 감각 신경세포 준비
차가운 PBS에서 성체 ICR계 생쥐(한림실험동물연구소, 한국)의 DRG를 분리하여 세절한 후, 3 ㎎/㎖ 콜라게나아제 타입 2(collagenase type 2; Invirogen, USA)를 37℃에서 45분 동안 처리한 후 기계적인 방법으로 완전히 소화시켰다. 상기 방법으로 제조한 DRG 감각 신경세포를 10% FBS, 1% 페니실린/스트렙토마이신 및 10 ng/㎖ 2.5S NGF(calbiochemn, USA)를 포함하는 DMEM/F12 배지에서 폴리-L-오르트린 코팅된 유리 커버 슬립에 도말한 후, 48 내지 72시간 동안 CO2 인큐베이터에서 배양하였다.
< 실시예 3> 통계적 처리
이하, 모든 실시예의 실험 결과는 양측 꼬리(two-tailed), 쌍을 이루지 않은(unpaired) 스튜던트 검정(Student's t-test)을 이용하여 통계적으로 분석하였고, 평균±S.E.M.의 형태로 나타내었다. 또한, **P < 0.01 및 *P < 0.05이었다.
< 실시예 4> GGPP 에 의한 TRPV1 의 활성화 변화 조사 방법
<4-1> 전기 생리학적인 방법으로 세포내 채널의 활성 측정
실시예 1의 방법으로 제조한 TRPV1 형질전환 세포주에 TRPV1에 대한 특이적 활성제인 100 nM 캡사이신(CAP; sigma, USA), 30 μM GGPP(echelon, USA) 및 대조군으로 완충용액을 각각 처리하였다. 상기 화학물질들의 저장 용액은 물 또는 DMSO를 이용하여 제조하였고, 사용하기 직전에 검사용액으로 희석하여 사용하였다. 상기 방법으로 처리된 형질전환 세포에 전기 생리학적인 측정을 수행하였다.
구체적으로, 배스 용액(bath solution, 140 mM NaCl, 5 mM KCl, 2 mM CaCl2, 2 mM MgCl2, 10 mM HEPES를 포함하고 NaOH를 이용하여 pH 7.4로 적정)과 피펫 용액(pipet solution, 140 mM CsCl 10 mM EGTA,10 mM HEPES를 포함하여 pH 7.4로 적정)을 사용하였다. 이후, 팻취 클랩프 셋트를 이용하여 전체 세포 팻취 클램프를 실시하였고 이중 전압 전류 상관 곡선을 이용하여 이온 채널 특이적인 반응임을 확인함과 동시에 GGPP에 의해 효과적으로 활성화함을 확인하였다. 팻취 클랩프 셋트는 multiclamp 700B(molecular device, 미국)을 이용하여 미세한 신호를 증폭하고, digidata1332a(Molecular device, 미국)를 이용하여 아날로그 신호를 디지털화하였다. pClamp 10(Molecular device, 미국)을 이용하여 데이터를 수집 및 기계를 조작했고, clemp X-10(Molecular device, 미국)을 이용하여 데이터를 편집했다.
그 결과, 도 1a에서 나타난 바와 같이 GGPP는 CAP와 마찬가지로 TRPV1을 활성화함을 나타내었다.
<4-2> 형광 현미경을 이용한 칼슘 이미지 기법
실시예 1의 방법으로 제조한 TRPV1 형질전환 세포주에 검사 개시 200초 후부터 30 μM GGPP를 200초간 처리하면서, 상기 GGPP 처리 개시 잠시 후 TRPV1 특이적인 억제제인 20 μM 캡사제핀(capsazepine; CAZ)을 처리하였다. 상기 화학물질들의 저장 용액은 물 또는 DMSO를 이용하여 제조하였고, 사용하기 직전에 검사용액으 로 희석하여 사용하였다. 상기 방법으로 처리된 형질전환 세포에 칼슘 이미지화를 수행하였다.
구체적으로, 0.02% 풀루로닉산(pluronic acid; Invitrogen, USA)을 포함하는 배스 용액(bath solution, 140 mM NaCl, 5 mM KCl, 2 mM CaCl2, 2 mM MgCl2, 10 mM HEPES를 포함하고 NaOH를 이용하여 pH 7.4로 적정)에서 상기 방법으로 처리된 형질전환 세포에 Fura2-AM(5 μM; invitorgen, USA)을 37℃에서 1시간 동안 주입하였다. 이후, fura2 calcium image system olympus 형광 현미경(Olympus, 일본)을 이용하여 칼슘 이미지화(Calcium imaging)를 수행하였고, Meta flow(Morecular device, 미국)를 이용하여 촬영이미지(time-lapse image; 340 ㎚ /380 ㎚)를 매 3초마다 측정하여 그 비율로 나타내었다.
그 결과, 도 1b에서 나타난 바와 같이 GGPP에 의한 TRPV1 활성이 TRPV1 특이적인 억제제인 CAZ에 의해 억제됨이 확인되었다.
< 실시예 5> TRP 형질전환 세포주별 GGPP 에 대한 반응 조사
GGPP는 인체 내에서 콜레스테롤 생합성 경로인 메발로네이트경로(mevalonate pathway) 상의 중간산물이다. 이에 본 발명자들은 상기 대사경로의 여타 중간물질도 TRPV1의 활성화 효과가 있는지 확인하였다. 제라닐 피로인산(Geranyl pyrophosphate: GPP)은 GGPP의 제라닐(geranyl)기가 빠진 형태이며, 이소펜테닐 피로인산isopentenyl pyrophosphate: IPP)은 GGPP의 전구물질이다. 파네 솔(farnesol)은 GGPP의 전구물질로부터 생성되는 물질이다.
또한, 상기 GGPP가 TRP 채널 중 TRPV1만을 특이적으로 활성화하는지 여부를 확인하고자, 실시예 1의 방법으로 제조한 TRPA1, TRPV1, TRPV2, TRPV3, TRPV4 및 TRPM8 형질전환 세포주 및 형질전환되지 않은 HEK 세포주(대조군)를 대상으로, 상기 세포주에 10 μM GPP, 10 μM IPP, 10 μM GGPP 및 10 μM 파네솔을 각각 처리하였다. 이후 실시예 4-2의 방법으로 칼슘 이미지화를 수행하였다.
그 결과, 도 2a에서 나타낸 바와 같이 통증 감지에 중요한 것으로 알려진 상기 6개의 TRP 중에서 TRPV1에 대해서만 GGPP에 의한 활성을 확인하였다.
즉, GGPP 유사물질인 GPP, IPP, 파네솔은 rTRPV1 세포주에서 세포내 칼슘 수준을 향상시키지 못하였다. 그러나 상기 세포주는 GGPP에 대해서는 통계적으로 유의하게 반응하였다.
< 실시예 6> TRPV1 GGPP 농도 의존적 반응 조사
실시예 1의 방법으로 제조한 TRPV1 형질전환 세포주에 1 내지 1,000 μM GGPP를 각각 처리한 후, 실시예 4-2의 방법으로 칼슘 이미지화를 수행하였다. 이후, 측정값을 Hill-plot을 이용하여 농도-반응 곡선으로 작성하였다.
그 결과, 도 2b에서 나타난 바와 같이 GGPP의 TRPV1에 대한 EC50(effective concentration 50%; 50% 효과 농도)은 대략 76.4 μM이었고, 최대 유효량은 대략 1 mM이었다. 이것은 GGPP가 마이크로몰라 농도의 범위에서 TRPV1에 활성 효과를 나 타내는 것을 지시한다.
< 실시예 7> 감각 신경세포 GGPP 특이적 반응 조사
실시예 2에서와 같이 분리된 감각 신경세포에 300 nM CAP를 처리한 후, 잠시 후 10 μM GGPP를 처리하였다. 이를 실시예 4의 방법으로 전기 생리학적인 기법을 수행하였다.
그 결과, 도 3에 나타난 바와 같이 GGPP가 감각 신경세포의 TRPV1을 활성화하여 내향전류를 발생시키고, 기존 TRPV1 특이적인 활성제인 캡사이신에 반응하는 감각 신경세포와 GPPP에 반응하는 감각 신경세포가 서로 일치하는 것을 확인하였다. 즉, CAP에 특이적인 반응을 보이는 감각 신경세포가 GGPP에도 특이적으로 반응함을 확인하였다.
< 실시예 8> 동물 통증행동실험을 통한 GGPP 통증 반응 조사
<8-1> 염증성 감작 유발
GGPP에 의한 염증성 감작(inflammatory sensitization) 반응을 관찰하기 위하여, 오른쪽 뒷발의 발바닥에 상기 GGPP 주사 3 시간 전에 50 ㎕의 1% 카라기난(carrageenan; Sigma aldrich, USA)을 주사하거나, 또는 상기 GGPP 주사 24 시간 전에 50 ㎕의 CFA(complete Freund's adjuvant; Sigma aldrich, USA)를 주사하였다. 또한, 실험에 앞서 쥐를 1 시간 동안 실험환경에 적응하도록 순화시켰으며, 하기 실험군 각각 25 ㎖를 쥐의 오른쪽 뒷발에 피내 주사하였다.
대조군: 무처리;
실험군 1: 10 mM의 GGPP;
실험군 2: 1 mM CAP; 및,
실험군 3: 3 mM CAZ +10 mM의 GGPP.
<8-2> 급성 침해성 행동(핥기/튀기기 행동) 분석
뒷발 핥기/튀기기 행동(hindpaw licking/flicking behavior)에 걸린 시간을 Bandell M 외(Neuron 41:849-857, 2004) 및 Moqrich A 외(Science 307:1468-1472, 2005)의 방법에 따라 10분 동안 측정하였다.
그 결과, 도 4에서 나타낸 바와 같이 GGPP는 CAP와 유사하게 동물들의 통증행동 소요시간을 증가시켰고, 이는 GGPP와 CAZ을 동시에 사용함으로써 통증행동 소요시간이 억제되었다.
도 1은 rTRPV1 세포주에서 GGPP에 의해 활성화됨을 확인한 도이다(CAP: 캡사이신, CAZ: 캡사제핀):
a: 전기 생리학적인 방법으로, 130 μM GGPP가 100 nM CAP과 유사하게 TRPV1을 활성화함을 나타낸 것을 확인함; 및,
b: 칼슘 이미지화 방법으로, 30 μM GGPP에 의한 TRPV1의 활성을 TRPV1 특이적인 억제제인 20 μM CAZ에 의해 억제되는 것을 확인함.
도 2는 GGPP가 TRPV1을 특이적이며 농도 의존적으로 활성화하는 것을 확인한 도이다:
a: GGPP가 6종의 thermoTRP 중 TRPV1만을 활성화하는 것을 확인함; 및,
b: GGPP의 TRPV1에 대한 EC50은 대략 76.4 μM임.
도 3은 CAP에 특이적인 반응을 보이는 감각 신경세포가 GGPP에도 특이적으로 반응하는 것을 확인한 도이다.
도 4는 급성 핥기 튀기 반응 검사법을 수행한 결과, GGPP는 CAP와 유사하게 반응행동 시간을 증가시켰고, 이는 TRPV1 특이적 억제제인 CAZ에 의해 억제됨을 확인한 도이다.
<110> KOREA UNIVERSITY Industry & Academy Collaboration Foundation <120> Method for activation of Transient receptor potential cation channel, subfamily V, member 1 using a novel activator <130> 9P-08-48 <160> 6 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 2847 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> rTRPV1 <400> 1 cagctccaag gcacttgctc catttggggt gtgcctgcac ctagctggtt gcaaattggg 60 ccacagagga tctggaaagg atggaacaac gggctagctt agactcagag gagtctgagt 120 ccccacccca agagaactcc tgcctggacc ctccagacag agaccctaac tgcaagccac 180 ctccagtcaa gccccacatc ttcactacca ggagtcgtac ccggcttttt gggaagggtg 240 actcggagga ggcctctccc ctggactgcc cttatgagga aggcgggctg gcttcctgcc 300 ctatcatcac tgtcagctct gttctaacta tccagaggcc tggggatgga cctgccagtg 360 tcaggccgtc atcccaggac tccgtctccg ctggtgagaa gcccccgagg ctctatgatc 420 gcaggagcat cttcgatgct gtggctcaga gtaactgcca ggagctggag agcctgctgc 480 ccttcctgca gaggagcaag aagcgcctga ctgacagcga gttcaaagac ccagagacag 540 gaaagacctg tctgctaaaa gccatgctca atctgcacaa tgggcagaat 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taagaattaa tgtaactatt aaggcagaac acaactacat aatacaagat 3720 gcatataatt ccaagtatta tatttaatct cctaccatgt taaaccttcc tgtgttataa 3780 cctgtctggg acactataat ctctgttcct actatgatta gatcatagtc tcaccctcct 3840 cgtcccatca cacatgacat cattttgagc cacatgacag aagtcctagt tagtagactg 3900 tgataagtat gaatgttaca atagaaatgt gttcccttag tgttcatcag ttgtgatggt 3960 ttaaatgaga aacgttgccc acagactcat acatttaaac ccttagtccc agttgttgct 4020 gctgcttagg ggggccacac agccttgctt gctctctcct ttctgagtgt ggagagaaat 4080 gtgatcagta agactcctgc tcctgctgcc atgctcttta ttccattatg gacttcttct 4140 gaaactgcaa gcagaaattc actgttcctt cctcaaattt cttttggtca tggtattata 4200 tcatagcaac agaaactaac ttatgtacca atggtcttaa taaagaataa agcctgtaca 4260 gtc 4263

Claims (26)

  1. 제라닐제라닐피로인산(geranyl geranyl pyrophosphate; GGPP) 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함하는 TRPV1(transient receptor potential vanilloid 1) 활성제 또는 활성 억제제 스크리닝용 조성물.
  2. 제 1항에 있어서, 상기 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 TRPV1의 활성을 특이적으로 촉진하는 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성제 또는 활성 억제제 스크리닝용 조성물.
  3. 1) 피검체로부터 분리된 감각 신경세포를 배양한 후 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 처리하는 단계;
    2) 단계 1)의 처리된 감각 신경세포의 TRPV1 활성을 측정하는 단계; 및,
    3) 단계 2)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염이 비처리된 감각 신경세포의 TRPV1 활성 측정치와 비교하여 TRPV1 양성 반응을 나타낸 감각 신경세포를 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 양성 감각 신경세포의 분리 방법.
  4. 제 3항에 있어서, GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 10 내지 1000 μM의 농도로 처리하는 것을 특징으로 하는 TRPV1 양성 감각 신경세포의 분리 방법.
  5. 제 3항에 있어서, 단계 2)의 TRPV1 활성의 측정은 전세포 전압 클램프 기술 및 칼슘 이미지화에 의해 수행되는 것을 특징으로 하는 TRPV1 양성 감각 신경세포의 분리 방법.
  6. 1) 피검체로부터 분리된 감각 신경세포를 배양한 후 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRP 비특이적 활성제를 순차적으로 또는 역순으로 처리하는 단계;
    2) 단계 1)의 처리된 감각 신경세포의 활성을 각각 측정하는 단계; 및,
    3) 단계 2)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRP 비특이적 활성제가 비처리된 감각 신경세포의 활성 측정치와 비교하여 TRP 비특이적 활성제에는 양성 반응을 나타내지만 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염에는 음성 반응을 나타내는 감각 신경세포를 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 음성 감각 신경세포의 분리 방법.
  7. 제 6항에 있어서, GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 10 내지 1000 μM의 농도로 처리하는 것을 특징으로 하는 TRPV1 음성 감각 신경세포의 분리 방법.
  8. 제 6항에 있어서, TRP 비특이적 활성제는 계피알데히드(cinnamaldehyde) 또는 멘톨(menthol)인 것을 특징으로 하는 TRPV1 음성 감각 신경세포의 분리 방법.
  9. 제 6항에 있어서, 단계 2)의 TRPV1 활성의 측정은 전세포 전압 클램프 기술 및 칼슘 이미지화에 의해 수행되는 것을 특징으로 하는 TRPV1 음성 감각 신경세포의 분리 방법.
  10. 1) TRPV1 양성 감각 신경세포에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 피검화합물을 처리하는 단계;
    2) TRPV1 음성 감각 신경세포에 상기 피검화합물 및 TRP 비특이적 활성제를 처리하는 단계;
    3) 단계 1) 및 단계 2)의 처리된 TRPV1 양성 감각신경세포 및 TRPV1 음성 감각 신경세포의 활성을 각각 측정하는 단계; 및,
    4) 단계 3)의 각각의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 TRPV1 양성 감각 신경세포의 활성 측정치와 비교하여 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 피검화합물을 처리한 TRPV1 양성 감각 신경세포의 활성을 억제하고 상기 피검화합물 및 TRP 비특이적 활성제를 처리한 TRPV1 음성 감각 신경 세포의 활성에 영향을 주지 않는 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법.
  11. 제 10항에 있어서, TRPV1 양성 감각 신경세포는 제 3항의 방법으로 분리되는 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법.
  12. 제 10항에 있어서, TRPV1 음성 감각 신경세포는 제 6항의 방법으로 분리되는 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법.
  13. 제 10항에 있어서, GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 10 내지 1000 μM의 농도로 처리하는 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법.
  14. 제 10항에 있어서, TRP 비특이적 활성제는 계피알데히드(cinnamaldehyde) 또는 멘톨(menthol)인 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법.
  15. 제 10항에 있어서, 단계 3)의 TRPV1 활성의 측정은 전세포 전압 클램프 기술 및 칼슘 이미지화에 의해 수행되는 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법.
  16. 1) TRPV1를 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 플라스미드가 숙주세포에 형질도입된 형질전환체를 제조하는 단계;
    2) 상기 형질전환체에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 피검화합물을 처리하는 단계;
    3) TRPV1 음성 감각 신경세포에 상기 피검화합물 및 TRP 비특이적 활성제를 처리하는 단계;
    4) 단계 2) 및 단계 3)의 처리된 형질전환체 및 TRPV1 음성 감각 신경세포의 TRPV1 활성을 각각 측정하는 단계; 및,
    5) 단계 4)의 각각의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 형질전환체의 TRPV1 활성 측정치와 비교하여 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 피검화합물을 처리한 형질전환체의 활성을 억제하고 상기 피검화합물 및 TRP 비특이적 활성제를 처리한 TRPV1 음성 감각 신경세포의 활성에 영향을 주지 않는 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법.
  17. 제 16항에 있어서, TRPV1 음성 감각 신경세포는 제 6항의 방법으로 분리되는 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법.
  18. 제 16항에 있어서, GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 10 내지 1000 μM의 농도로 처리하는 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법.
  19. 제 16항에 있어서, TRP 비특이적 활성제는 계피알데히드(cinnamaldehyde) 또는 멘톨(menthol)인 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법.
  20. 제 16항에 있어서, 단계 4)의 TRPV1 활성의 측정은 전세포 전압 클램프 기술 및 칼슘 이미지화에 의해 수행되는 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성 억제제 스크리닝 방법.
  21. 1) 피검체에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염과 피검화합물을 투여하는 단계;
    2) 단계 1)의 처리된 피검체의 침해성 행동 유발을 측정하는 단계; 및,
    3) 단계 2)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 피검체의 침해성 행동 유발 측정치와 비교하여 피검화합물의 침해성 행동을 유발하는 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성 조절제 스크리닝 방법.
  22. 제 21항에 있어서, 단계 1)의 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염은 10 내지 100 mM의 농도로 투여하는 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성 조절제 스크리닝 방법.
  23. 제 21항에 있어서, 단계 2)의 침해성 행동 유발의 측정은 염증성 감작 유발에 의한 뒷발을 핥는 행동(hindpaw licking behavior) 또는 뒷발을 튀기는 행동(hindpaw flicking behavior)을 분석함으로써 수행되는 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성 조절제 스크리닝 방법.
  24. 제 23항에 있어서, 상기 염증성 감작은 상기 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 주사 전에 카라기난(carrageenan) 또는 CFA(complete Freund's adjuvant)를 주사하여 유발되는 것을 특징으로 하는 TRPV1 활성 조절제 스크리닝 방법.
  25. 1) TRPV1 양성 세포에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRPV1 활성제 후보 피검화합물을 처리하는 단계;
    2) 단계 1)의 처리된 TRPV1 양성 세포의 TRPV1 활성을 각각 측정하는 단계; 및,
    3) 단계 2)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 TRPV1 양성 세포(대조군)의 TRPV1 활성 측정치와 비교하여 대조군보다 활성값이 높은 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성제 스크리닝 방법.
  26. 1) TRPV1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 플라스미드가 숙주세포에 형질도입된 형질전환체를 제조하는 단계;
    2) 상기 형질전환체에 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염 및 TRPV1 활성제 후보 피검화합물을 처리하는 단계;
    3) 단계 2)의 처리된 형질전환체의 TRPV1 활성을 각각 측정하는 단계; 및,
    4) 단계 3)의 측정치를 GGPP 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염만 처리된 TRPV1 형질전환체(대조군)의 TRPV1 활성 측정치와 비교하여 대조군보다 활성값이 높은 피검화합물을 선별하는 단계를 포함하는 TRPV1 활성제 스크리닝 방법.
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