KR100706175B1 - New bacterium Flavococcus chejuensis producing zeaxanthin and production method of zeaxanthin using thereof - Google Patents

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Abstract

본 발명은 제주 연안 해수로부터 분리된 신규한 지아잔틴 (zeaxanthin) 생성 세균 플라보코커스 제주엔시스(Flavococcus chejuensis) 균주 및 이를 사용한 지아잔틴 생산 방법에 관한 것이다.
The present invention is a novel zeaxanthin-producing bacterium Flavococcus chejuensis isolated from seawater in Jeju. It relates to a strain and a method for producing zeaxanthin using the same.

플라보코커스 제주엔시스, 지아잔틴, 카로테노이드, 항산화제, 노인성 안 질환, 착색제Flavococcus Jejuensis, Zeaxanthin, Carotenoids, Antioxidants, Geriatric eye disease, Colorants

Description

신규한 지아잔틴 생성 세균 플라보코커스 제주엔시스 및 이를 사용한 지아잔틴 생산 방법 {New bacterium Flavococcus chejuensis producing zeaxanthin and production method of zeaxanthin using thereof} New bacterium Flavococcus chejuensis producing zeaxanthin and production method of zeaxanthin using lamb}             

도 1은 본 발명에 따른 신규한 분리 균주(이하, D2로 약칭됨)의 고체 배지 상의 사진이다. 배지 상에서 노란색은 지아잔틴이 생합성을 나타낸다.1 is a photograph on a solid medium of a novel isolated strain according to the present invention (hereinafter abbreviated as D2). Yellow on the medium indicates zeaxanthin biosynthesis.

도 2는 본 발명에 따른 신규한 분리 균주 D2의 현미경 사진이다.2 is a micrograph of a novel isolated strain D2 according to the present invention.

도 3은 본 발명에 따른 신규한 분리 균주 D2의 온도에 따른 생장 곡선을 나타낸 그래프이다. Figure 3 is a graph showing the growth curve according to the temperature of the novel isolated strain D2 according to the present invention.

도 4는 본 발명에 따른 신규한 분리 균주 D2의 16S rRNA 염기 서열에 따른 분류학적 계통도이다.4 is a taxonomic diagram according to the 16S rRNA nucleotide sequence of the novel isolated strain D2 according to the present invention.

도 5는 본 발명에 따른 신규한 분리 균주 D2 및 대조 균주로 사용된 파라코커스 지아잔티니파시안스 (Paracoccus zeaxantinifaciens) ATCC 21588의 TLC 결과를 나타낸 사진이다. 이때, 레인 1은 파라코커스 지아잔티니파시안스의 TLC 결과이고 레인 2는 본 발명에 따른 신규한 분리 균주 D2의 TLC 결과를 나타낸다.5 is a photograph showing the TLC results of the paracoccus zeaxantinifaciens ATCC 21588 used as a novel isolated strain D2 and a control strain according to the present invention. At this time, lane 1 shows the TLC results of Paracaucus Giacanthinipansias and lane 2 shows the TLC results of the novel isolated strain D2 according to the present invention.

도 6은 본 발명에 따른 신규한 분리 균주 D2 및 파라코커스 지아잔티니파시안스 (Paracoccus zeaxantinifaciens) ATCC 21588의 HPLC 결과를 나타낸 사진이다.Figure 6 is a photograph showing the HPLC results of the novel isolated strain D2 and Paracoccus zeaxantinifaciens ATCC 21588 according to the present invention.

본 발명은 제주 연안 해수로부터 분리된 신규한 지아잔틴 (zeaxanthin) 생합성 세균 플라보코커스 제주엔시스(Flavococcus chejuensis) 균주 및 이를 사용한 지아잔틴 생산 방법에 관한 것이다.
The present invention relates to a novel zeaxanthin biosynthetic bacterium Flavococcus chejuensis strain isolated from Jeju seawater and a method for producing zeaxanthin using the same.

지아잔틴은 8개의 C5 이소프렌 단위체(isoprene unit)가 연속적인 축합을 통하여 만들어진 C40 메틸-측쇄화(methyl-branched) 탄화수소 구조이고 분자량 568.88을 갖는 하기 화학식 1의 화합물이다. 지아잔틴은 자연계에 다양하게 분포하며 금잔화 꽃잎, 시금치, 옥수수 및 케일 등의 다양한 식물뿐만 아니라 광합성 세균, 시아노박테리아(cyanobacteria), 비광합성 세균 등의 박테리아와 조류 등에서도 생성되고 있다.Zeaxanthin is a C 40 methyl-branched hydrocarbon structure with eight C 5 isoprene units formed through continuous condensation and has a molecular weight of 568.88. Zeaxanthin is widely distributed in nature and is produced in various plants such as marigold petals, spinach, corn and kale, as well as bacteria and algae such as photosynthetic bacteria, cyanobacteria and non-photosynthetic bacteria.

Figure 112003042945012-pat00001
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지아잔틴은 노란색을 띄는 잔토필 카로테노이드(xanthophyll carotenoid) 계열의 화합물로서, 베타 카로틴 외에 가장 많이 알려진 카로테노이드 화합물 중의 하나이다. 식물에서 생합성되는 카로테노이드는 엽록체 및 색소체 막에 내재되어 있는 주황색 및 붉은색 지용성 색소이다. 지아잔틴의 생합성에 대해서 아직 많이 알려져 있지는 않으나, 최근에는 식물내 카로테노이드 생합성 경로에 관여하는 효소들이 밝혀져 지아잔틴의 생합성에 대한 정보를 제공하고 있다.Zeaxanthin is a yellowish xanthophyll carotenoid family and is one of the most known carotenoid compounds in addition to beta carotene. The carotenoids biosynthesized in plants are orange and red fat soluble pigments inherent in the chloroplast and pigment membranes. Although much is not known about the biosynthesis of zeaxanthin, enzymes involved in the carotenoid biosynthesis pathway in plants have recently been identified to provide information on the biosynthesis of zeaxanthin.

식물의 경우 지아잔틴의 생합성은 다음과 같은 경로를 통해서 이루어진다[미국 특허 제6,627,795호 참조]. 식물에서 카로테노이드 생합성의 첫 번째 과정은 피토엔 신타제(phytoene synthase)에 의해 수행된다. 피토엔 신타제는 제라닐제라닐 디포스페이트(geranylgeranyl diphosphate)를 피토엔으로 전환시킨다. 이렇게 합성된 피토엔은 피토엔의 불포화 과정에 관여하는 카로테노이드 생합성의 두 번째 효소(phytoene desaturase)에 의해서 피토풀루엔으로 전환되고 추가의 불포화 과정을 거친 후, 제타-카로틴(zeta-carotene)이 생성된다. 이후, 제타-카로틴은 제타-카로틴을 불포화시키는 효소(zeta-carotene desaturase)에 의해 뉴로스포렌(neurosporene)으로 전환되고 이는 다시 추가로 불포화되어 리코펜(lycopene)을 형성하게 된다. 이러한 리코펜은 알파-카로틴이나 베타-카로틴으로 전환될 수 있으며, 이중 베타-카로틴은 베타-카로틴 데하이드록실라제(beta-carotene dehydroxylase)에 의해 지아잔틴(zeaxanthin)으로 생합성되게 된다.For plants, biosynthesis of zeaxanthin occurs through the following route (see US Pat. No. 6,627,795). The first process of carotenoid biosynthesis in plants is carried out by phytoene synthase. Phytoene synthase converts geranylgeranyl diphosphate to phytoene. The phytoene thus synthesized is converted to phytopoluene by the second enzyme (phytoene desaturase) of the carotenoid biosynthesis involved in the phytoene desaturation process, followed by an additional desaturation process, and then zeta-carotene is produced. do. Thereafter, zeta-carotene is converted into neurosporene by an enzyme that desaturates zeta-carotene (zeta-carotene desaturase), which is further unsaturated to form lycopene. Such lycopene can be converted to alpha-carotene or beta-carotene, of which beta-carotene is biosynthesized to zeaxanthin by beta-carotene dehydroxylase.

지아잔틴은 항산화제 및 착색제로서 알려져 있으며, 항산화 기능과 관련하여 일부 항암 효능도 갖는 것으로 알려지고 있다. 지아잔틴은 프리라디칼(free-radical) 제거제, 즉 생체내 항산화 기능과 관련하여 저산소압 조건하에서 생체 조직내에서 자유단 산소 제거 능력이 상당히 강하다는 것이 확인되었다.Zeaxanthin is known as an antioxidant and a colorant and is known to have some anticancer efficacy with respect to antioxidant function. Zeaxanthin has been found to be significantly more free-radical scavengers, i.e., free-stage oxygen scavenging ability in living tissues under hypoxic conditions with respect to in vivo antioxidant function.

인체는 생명 현상을 유지하기 위해서 지속적인 산소공급을 필요로 하는데 정상적인 대사과정 중에 유해하면서 반응력이 큰 활성산소 화합물(ROS: Reactive Oxygen Species)이 생성된다. 이들 산소 화합물은 크게 자유기(free radical)와 비자유기(non-radical)로 나뉘는데 모두 불안정한 분자 구조로 인해서 세포의 손상을 초래할 수 있다. 이러한 산소화합물의 생성은 흡연, 자외선, 오존 등이 원인이 되어 가속화되기도 한다. 따라서, 생체 내에는 산소화합물에 의한 산화적 스트레스로부터 조직을 보호하기 위한 항산화 비타민, 무기질, 효소 등의 항산화 체계가 조직적으로 구성되어 있다. 이때 지아잔틴은 여러 상호작용을 통해서 항산화 기능을 상승시키며 산화로 인해 항산화 물질들이 파괴되는 것을 억제해 준다. 그리고 이 자유기(free-radical)에 의한 생체 손상에 대한 생체 방어로서 생체내 항산화 기능과 관련성이 있는 악성 종양의 위험을 경감시킨다는 보고도 있으며, 배양 암세포에 대한 변이원(mutagen) 억제 효과, 동물을 이용한 암 이식, 암 유발 시험에서 암 억제 효과가 있다는 유용한 결과가 보고되고 있다.The human body needs a constant supply of oxygen to maintain life phenomena. During normal metabolism, harmful and reactive reactive oxygen compounds (ROS) are produced. These oxygen compounds are largely divided into free radicals and non-radicals, both of which may cause cell damage due to unstable molecular structure. The production of such oxygen compounds may be accelerated due to smoking, ultraviolet rays, ozone, and the like. Therefore, in vivo, an antioxidant system such as antioxidant vitamins, minerals, enzymes, etc., for protecting tissues from oxidative stress caused by oxygen compounds is organized systematically. At this time, zeaxanthin increases antioxidant function through various interactions and suppresses the destruction of antioxidants by oxidation. In addition, it has been reported to reduce the risk of malignant tumors associated with antioxidant function in vivo as a bio-defense against free-radical damage to the body, and mutagenic inhibitory effect on cultured cancer cells, animals Useful results have been reported to be effective in inhibiting cancer in cancer transplantation and cancer-induced trials.

또한, 지아잔틴은 사람의 신체 중에는 망막에 주로 분포하며 시력저하의 원인이 될 수 있는 백내장, 황반변성 등 노화로 의한 퇴행성 안 질환에 대해서도 예방 및 지연 효과가 있으며 심장이나 피부 등에도 분포하는 것으로 알려져 있다[Moeller et al., J. Am. coll. Natr. 5: 522, (2000)]. In addition, zeaxanthin is mainly distributed in the retina of the human body and has a prophylactic and delaying effect on degenerative eye diseases caused by aging such as cataracts and macular degeneration, which may cause decreased visual acuity. Moeller et al., J. Am. coll. Natr. 5: 522, (2000).                         

또한, 지아잔틴은 사료첨가제로 사용되고 있고 화장품 및 식품 산업에서 착색제로도 쓰이는 등 다양한 용도를 가지고 있다. 지아잔틴은 육지방, 피부 및 난황을 암황색으로 착색시키기 위한 동물 사료용 착색제로 각광받고 있는 밝은 주황색 내지 노란색의 생성물이다. 가축 사료내 지아잔틴 및 이의 이성체인 잔토필이 부족해지는 겨울철에는, 가축 난황, 유지방 및 가금류 지방의 색상은 탈색 현상(bleaching)이 일어나는데, 이는 지아잔틴 및 잔토필 색소가 가축 사료내에 부족하기 때문이다. 이러한 색소 부족분은 가축 사료에 지아잔틴 및 잔토필 색소를 첨가해 줌으로써 해소될 수 있다.In addition, zeaxanthin is used as a feed additive and has a variety of uses, such as a colorant in the cosmetic and food industries. Zeaxanthin is a bright orange to yellow product that is in the spotlight as a colorant for animal feed for coloring land, skin and egg yolk in dark yellow. In winter, when there is a shortage of zeaxanthin and its isomer xanthophyll in livestock feed, the color of livestock yolks, milk fat and poultry fats is bleached because of the lack of zeaxanthin and xanthophyll pigments in livestock feed. . These pigment deficiencies can be resolved by adding zeaxanthin and xanthophyll pigments to livestock feed.

지아잔틴은 착색 능력 및 침착 능력이 우수하고, 합성 색소들이 갖는 독성 보다 덜 유해한 천연 색소이다. 또한, 지아잔틴은 다른 카로테노이드 색소에 비해서도 착색 능력 및 침착 능력이 더 우수한 것으로 알려져 있다. 예를 들면, 칸타잔틴(canthaxanthin), 알팔파(alfalfa) 및 카옌 고추(cayenne pepper) 같은 카로테노이드 또는 카로테노이드 함유 화합물들은 고농도로 사용시 육류 등에 비정상적인 붉은색이나 자주색을 착색시키거나 난황 등에 줄무늬를 야기하는 단점을 갖고 있는 반면, 루테인은 고농도로 사용시 육류 및 난황에 녹색을 띄게 하는 단점을 갖고 있는 것으로 알려져 있다.Zeaxanthin is a natural pigment that has excellent coloring and deposition ability and is less harmful than the toxicity of synthetic pigments. Zeaxanthin is also known to have better coloring and deposition capabilities than other carotenoid pigments. For example, carotenoids or carotenoid-containing compounds such as canthaxanthin, alfalfa, and cayenne pepper may cause abnormal red or purple pigmentation in meat, etc. or streaks in egg yolk when used at high concentrations. On the other hand, lutein is known to have the disadvantage of making the meat and egg yolk green when used in high concentrations.

이와는 다르게, 지아잔틴은 고농도에서도 육류 등에 고르게 황적색을 착색시키고 잘 침작되는 것으로 알려져 있어, 가축 사료, 식품 및 음료, 및 화장품 착색제로서 유용한 천연 색소이다.In contrast, zeaxanthin is known to color yellow-red evenly in meats and the like even at high concentrations, and is a natural pigment useful as a livestock feed, food and beverage, and cosmetic colorant.

지아잔틴을 산업상 이용하기 위해서 식물로부터 이를 추출하는 방법은 그 수 율이 낮고, 생산 단가가 높으며, 계절의 영향을 받는 식물 생육을 고려하는 경우 지속적인 공급이 어렵다는 단점을 갖고 있다. 따라서, 지아잔틴을 생합하는 미생물을 분리해 내는 것은 지아잔틴을 대량으로 계속해서 공급하는데 매우 유용할 것이다.Extracting it from plants for industrial use of zeaxanthin has the disadvantages of low yield, high production cost, and difficulty in continuous supply in consideration of seasonal growth of plants. Thus, isolating microorganisms that biosynthesize zeaxanthin would be very useful for continued supply of zeaxanthin in large quantities.

지아잔틴을 생합성하는 미생물은 1960년대 중반, 호프만 라 로시사(Hoffmann-La Roche)가 해양에서 분리하였다(미국특허 제 3,891,504호). 이중 R-1512라고 명명되어진 하나의 미생물은 ATCC 기관에 기탁(수탁번호 ATCC 21588)되었으며, 지아잔틴을 생성하는 미생물로 플라보박테리움(Flavobacterium) 속 아래로 분류되었다. 그 후 추가적인 스크리닝 결과로 보다 높은 농도로 지아잔틴을 생산하는 균종으로 R1534와 R114 를 포함한 몇몇 종류의 균종이 확인되었다(Britton et al., Arch Microbiol. 113: 33 (1977); Goodwin, T. W. Biochem Soc Symp. 35: 233 (1972); McDermott et al., Biochem J. 144: 231 (1974); Mohanty et al., Helv Chim Acta. 83: 2036 (2000)). 그러나, 베타-카로틴(β-carotene)이나 아스타잔틴(astaxanthin) 등의 카로테노이드와는 달리 지아잔틴(zeaxanthin)을 주된 카로테노이드로 생산하는 균주는 현재에도 매우 드문 것으로 알려지고 있다(Johnson and Schroeder, Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. 53: 119 (1996)).Microorganisms that biosynthesize zeaxanthin were isolated from the ocean by Hoffmann-La Roche in the mid-1960s (US Pat. No. 3,891,504). One microorganism, named R-1512, was deposited with the ATCC organ (accession number ATCC 21588) and classified under Flavobacterium as a microorganism that produces zeaxanthin. Subsequently, further screenings identified several species, including R1534 and R114, that produced higher levels of zeaxanthin (Britton et al., Arch Microbiol. 113: 33 (1977); Goodwin, TW Biochem Soc Symp. 35: 233 (1972); McDermott et al., Biochem J. 144: 231 (1974); Mohanty et al., Helv Chim Acta. 83: 2036 (2000). However, unlike carotenoids such as beta-carotene or asaxanthin, strains that produce zeaxanthin as the main carotenoid are still very rare (Johnson and Schroeder, Adv.). Biochem.Eng. Biotechnol. 53: 119 (1996)).

따라서, 주요 카테로노이드로서 지아잔틴을 생산하는 균주의 개발은 항산화제, 노인성 안 질환 치료제, 착색제 및 사료첨가제 등으로 유용한 용도를 갖는 천연 색소를 안정적으로 대량 공급할 수 있다는 측면에서 산업상 매우 유용할 것이 다. 이에, 본 발명자들은 지아잔틴을 생합성하는 균주를 스크리닝하고자 노력하였다.
Therefore, the development of zeaxanthin-producing strains as major cateroids would be very useful in the industry in that it can stably supply large amounts of natural pigments having useful uses as antioxidants, senile eye diseases, coloring agents and feed additives. will be. Thus, the inventors have tried to screen strains that biosynthesize zeaxanthin.

본 발명자들은 지아잔틴을 생합성하는 균주를 분리해 내기 위해서 지속적으로 노력한 결과, 제주 연안 해수로부터 지아잔틴을 생산하는 신규한 균주를 동정할 수 있었으며, 이로써 본 발명을 완성하였다.As a result of continuous efforts to isolate strains that biosynthesize zeaxanthin, the present inventors have been able to identify novel strains that produce zeaxanthin from Jeju seawater, thereby completing the present invention.

따라서, 한 가지 양태에 있어서, 본 발명의 목적은 지아잔틴(zeaxanthin)을 생합성하는 신규 세균 플라보코커스 제주엔시스(Flavococcus chejuensis) 균주를 제공하는 것이다.Accordingly, in one aspect, an object of the present invention is to provide a novel bacterial Flavococcus chejuensis strain that biosynthesizes zeaxanthin.

또 다른 양태에 있어서, 본 발명의 목적은 지아잔틴을 생합성하는 신규 세균 플라보코커스 제주엔시스 균주를 사용하여 지아잔틴을 생산하는 방법을 제공한다.
In another aspect, an object of the present invention is to provide a method for producing zeaxanthin using a novel bacterial Flavococcus Jejuensis strain that biosynthesizes zeaxanthin.

본 발명은 주요 카로테노이드로서 지아잔틴(zeaxanthin)을 생합성하는 신규 균주 플라보코커스 제주엔시스(Flavococcus chejuensis), 및 이를 사용한 지아잔틴의 생산 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a novel strain Flavococcus chejuensis that biosynthesizes zeaxanthin as a major carotenoid, and a method for producing zeaxanthin using the same.

해수에 존재하는 세균들은 약 3% 정도의 염 농도를 갖는 해수에서 서식하기 때문에 호염성 또한 내염성 세균이 많고 서식 장소 및 환경 조건에 따라 형성된 세균상이나 세균수가 다양한 것으로 알려져 있다. 해수 세균으로는 비브리오(Vibrio), 슈도모나스(Pseudomonas), 아크로모박터(Achromobacter), 에어로모나스(Aeromonas), 포토박테리움(Photobacterium) 등이 대표적이나, 토양이나 민물 유래의 바실러스(Bacillus), 마이크로코커스(Micrococcus), 코리네박테리움(Corynebacterium) 등도 일부 검출되는 것으로 알려져 있다. 해수 세균의 세균 수는 육지에서 멀어질수록 감소되어 외양(外洋)에서는 그 수가 급격히 줄어들게 된다. 외양에서는 수심 4 내지 50m 정도에서 세균수가 가장 많으며, 비브리오, 슈도모나스, 플라보박테리움(Flavobacterium) 등이 주로 존재하는 것으로 알려져 있다.Since the bacteria present in seawater live in seawater having a salt concentration of about 3%, there are many basophilic and salt-tolerant bacteria. Examples of seawater bacteria include Vibrio, Pseudomonas, Achromobacter, Aeromonas, and Photobacterium. (Micrococcus), Corynebacterium (Corynebacterium), etc., some are known to be detected. The number of bacteria in seawater germs decreases as they move farther away from the land, and the number of sea germs rapidly decreases in the outer sea. In appearance, the number of bacteria is the highest in the water depth of about 4 to 50m, Vibrio, Pseudomonas, Flavobacterium (Flavobacterium) is known to exist mainly.

그람 음성, 호기성 간균 또는 구균에는 슈도모나스 속, 할로박테리움(Halobacterium) 속, 아세토박터(Acetobacter) 속, 글루코노박터(Gluconobacter) 속, 알칼리게네스(Alcaligenes) 속, 브루셀라(Brucella) 속, 플라보박테리움 속 등이 알려져 있으며, 이중에 플라보박테리움 속은 황색 내지 적색의 색소를 생산하여 육류 표면에 착색되는 것으로 알려져 있다.Gram-negative, aerobic Bacillus or cocci are Pseudomonas genus, Halobacterium genus, Acetobacter genus, Gluconobacter genus, Alcaligenes genus, Brucella genus, Flavo genus Bacterium genus and the like are known, of which the flavobacterium genus is known to produce yellow to red pigment and to be colored on the meat surface.

본 발명자들은 지아잔틴 생합성 세균을 동정하기 위해서 제주도 연한 해수를 채취하여 스크리닝한 결과, 노란색의 콜로니를 형성하는 균주를 발견하여 D2로 명명하였다.In order to identify zeaxanthin biosynthetic bacteria, the present inventors collected and screened soft seawater of Jeju Island and found a strain that forms yellow colonies and named it D2.

이후, 본 발명자들은 이러한 D2 균주에 대해 지아잔틴 생성능이 공지된 균주와의 비교와 함께 TLC, HPLC 실험을 통해, 지아잔틴 생성능을 확인하였으며, 형태적 특성을 조사한 결과 구균이며 그람 음성 세균임을 확인하였다. 또한, 본 발명 에 따른 D2 균주의 생리적 특성 및 탄소원 이용성을 분석하여 표 1에서 나타낸 바와 같은 결과를 얻었으며, 16S rRNA 염기 서열을 PHYDIT 프로그램(molecular sequence editor for phylogeny by Jongsik Chun)을 통해 계통수(phylogenetic tree)를 작성한 결과(Saitou N. and Nei M., Mol Biol Evol. 4: 406 (1987)), 타종과는 94% 이하의 유사도를 갖는 신 균주임을 확인하였다(도 4 참조).Subsequently, the present inventors confirmed the zeaxanthin production ability through TLC and HPLC experiments with the comparison of the known zeaxanthin production ability with respect to the known D2 strain, and the morphological characteristics of the bacterium were Gram-negative bacteria. . In addition, by analyzing the physiological characteristics and carbon source availability of the D2 strain according to the present invention was obtained as shown in Table 1, the 16S rRNA base sequence through the PHYDIT program (molecular sequence editor for phylogeny by Jongsik Chun) Phylogenetic tree) (Saitou N. and Nei M., Mol Biol Evol. 4: 406 (1987)), it was confirmed that it is a renal strain having a similarity of 94% or less with other species (see Fig. 4).

따라서, 본 발명자들은 그람 음성, 호기성 구균인 이러한 신 균주에 대해서 "제주 연안에서 분리된 노란색을 띄는 구균"이라는 의미를 갖는 "플라보코커스 제주엔시스 (Flavococcus chejuensis)"로 명명하였으며, 이를 2003년 11월 3일자로 국제기탁기관인 대전시 유성구 어은동 52번지 소재의 KCTC(Korean Collection for Type Cultures)에 수탁번호 KCTC 10534BP로 기탁하였다.Accordingly, the present inventors named this new strain, Gram-negative, aerobic cocci, as " Flavococcus chejuensis " which means "yellowish cocci isolated from the coast of Jeju." On March 3rd, it was deposited with KCTC 10534BP at KCTC (Korean Collection for Type Cultures), 52 Eun-dong, Yuseong-gu, Daejeon, Korea.

본 발명에 따른 신규 균주 플라보코커스 제주엔시스(Flavococcus chejuensis)의 특성은 다음과 같은 방법으로 검증되었으며 특성화되었다.The characteristics of the novel strain Flavococcus chejuensis according to the present invention were verified and characterized by the following method.

가. 균주의 분리, 배양 end. Isolation and Culture of Strains

1) 균의 분리1) Isolation of bacteria

제주도 대정읍 부근 연안 해수를 채취하여 마린 아가 플레이트 2216 (제조원: Difco Laboratories, MD USA )에 100㎕씩 도말한 후 25℃에서 48시간 동안 배양하였다. 48시간 후 노란색을 띄는 콜로니가 발견되었고 이 균주를 동일한 배지에서 계대 배양하여 단일 균주를 얻었으며, 이를 잠정적으로 D2로 명명하였다(도 1 참조).Coastal seawater near Daejeong-eup, Jeju Island, Korea was harvested and coated with 100 μl of marine agar plate 2216 (manufactured by Difco Laboratories, MD USA) and incubated at 25 ° C. for 48 hours. After 48 hours a yellow colony was found and this strain was passaged in the same medium to obtain a single strain, which was tentatively named D2 (see FIG. 1).

2) D2 균주의 배양 2) Culture of D2 Strain                     

분리된 균주 D2의 배양에는 마린 브로스 배지 2216(제조원: Difco Laboratories, MD USA)을 사용하였다. 액체배지의 경우 37.4g의 가루 배지를 증류수 1ℓ에 넣은 후 2분 동안 끓여 모든 화합물을 완전히 녹인 다음 121℃에서 15분간 살균하며, 고체배지의 경우 55.1g의 가루 배지를 증류수 1ℓ에 넣은 후 2분 동안 끓여 모든 화합물을 녹인 다음 121℃에서 15분간 살균하여 사용하여 사용하였다. 배양체의 준비는 500㎖ 배플드 플라스크 (baffled flask)에 50㎖씩 분주한 액체배지에 분리된 균주의 단일집락을 접종하고 25℃, 150rpm에서 2일간 진탕 배양하였다.Marine broth medium 2216 (manufactured by Difco Laboratories, MD USA) was used to culture the isolated strain D2. In the case of liquid medium, 37.4 g of powder medium is added to 1 L of distilled water, then boiled for 2 minutes to completely dissolve all the compounds, followed by sterilization for 15 minutes at 121 ° C. In the case of solid medium, 55.1 g of powder medium is added to 1 L of distilled water. Boil for a while to dissolve all compounds and then used by sterilizing for 15 minutes at 121 ℃. The preparation of the culture was inoculated in a 500ml baffled flask inoculated with a single colony of the strain separated in a liquid medium dispensed by 50ml each and incubated for 2 days at 25 ℃, 150rpm.

나. 분리 균주 D2의 동정I. Identification of Isolated Strain D2

1) 균의 형태적, 배양적 특성1) Morphological and cultural characteristics of bacteria

상기 언급된 마린 브로스 배지를 사용하여 25℃에서 48시간 배양한 액체 배양체의 일부를 현미경 하에서 형태적 특성을 조사한 결과, 구균으로 판명되었으며 그람 염색 결과, 그람음성 세균으로 조사되었다(도 2 참조). 또한, 본 균주의 최적 생장 온도를 확인하기 위하여 마린 브로스 배지를 사용하여 20℃, 25℃, 30℃, 37℃에서 12시간 간격으로 O.D600nm에서 흡광도를 측정하였다. 그 결과 25℃와 30℃에서 최적의 생장을 보였으며, 30℃에서 적응기간(lag phase)이 짧아 25℃보다 빨리 흡광도가 증가하는 볼 수 있었다. 그러나, 48시간 이후의 흡광도는 30℃와 25℃가 동일 한 것을 확인하였다(도 3 참조). Some of the liquid cultures incubated at 25 ° C. for 48 hours using the above-mentioned marine broth medium were found to be morphogenetic under microscopic examination, and Gram-negative bacteria were examined as Gram-negative bacteria (see FIG. 2). In addition, the absorbance was measured at O.D600nm at 12 hours intervals at 20 ℃, 25 ℃, 30 ℃, 37 ℃ using Marine Broth medium to confirm the optimum growth temperature of the strain. As a result, optimal growth was observed at 25 ° C and 30 ° C, and the absorbance was increased faster than 25 ° C due to a short lag phase at 30 ° C. However, the absorbance after 48 hours was confirmed to be the same 30 ℃ and 25 ℃ (see Figure 3).

2) 균의 생리적 특성과 탄소원 이용성 2) Physiological Characteristics and Carbon Source Availability of Bacteria

본 발명에 따른 균주의 생리적 특성과 탄소원 이용성을 조사하기 위하여 API 20NE 키트(제조원:Bio-Merieux Korea Co., Ltd)를 사용하였다. 본 발명에 따른 분리 균주 D2를 마린 브로스 2261에서 25℃에서 48시간 동안 배양한 후 키트의 기질에 접종하였으며, 그 결과는 표 1에 나타내었다.API 20NE kit (manufactured by Bio-Merieux Korea Co., Ltd) was used to investigate the physiological characteristics and carbon source availability of the strain according to the present invention. The isolated strain D2 according to the present invention was incubated in marine broth 2261 for 48 hours at 25 ° C., and then inoculated onto the substrate of the kit, and the results are shown in Table 1.

조사 항목Survey item 특 성Characteristics 나이트레이트 환원력Nitrate reducing power 음성voice 인돌 생성Indole generation 음성voice 포도당 산성화Glucose acidification 음성voice 에스큘린 가수분해Esculin hydrolysis 양성positivity 젤라틴 가수분해Gelatin hydrolysis 음성voice 베타-락테이즈 활성Beta-lactate activity 양성positivity 아라비노스 이용Use of arabinos 음성voice 말토오즈 이용Maltose use 음성voice 시토크롬 산화Cytochrome oxidation 양성positivity

3) 균의 16S rRNA의 염기 서열 분석3) Sequence analysis of the bacterium 16S rRNA

분리 균주 D2의 동정을 위하여 16S rRNA 의 염기서열을 분석하였다. 16S rRNA는 생물간의 진화 관계를 밝히는데 훌륭한 표지로 사용할 수 있다. rRNA는 옛 분자이고 기능적으로 일정하며, 널리 분포되어 있고, 넓은 범위의 계통학적 거리에 걸쳐 잘 보존되어 있기 때문이다. 또한, rRNA와 같은 커다란 분자에서 서로 상이할 수 있는 서열의 수는 매우 많기 때문에 두 서열간의 유사성은 약간의 계통적 유연 관계를 시사해 주기 때문이다.The nucleotide sequence of 16S rRNA was analyzed for the identification of the isolated strain D2. 16S rRNA can be a good marker for evolving organisms. rRNAs are old molecules, functionally constant, widely distributed, and well conserved over a wide range of phylogenetic distances. In addition, since the number of sequences that can differ from each other in large molecules such as rRNA is very large, the similarity between the two sequences suggests a few systematic relationships.

본 발명에 따른 분리 균주 D2의 16S rRNA를 증폭하기 위하여 박테리아 통용의 16S rRNA 증폭 프라이머(서열 번호 1 및 서열 번호 2)를 제작하여 PCR(polymerase chain reaction)을 수행하였다. 그 결과 1.4kb의 단편을 확보하였으며, 이 단편을 pST-Blue1 벡터(제조원: Novagen, WI, USA)에 클로닝하여 염기서열을 분석하였다(서열 번호 3). In order to amplify the 16S rRNA of the isolated strain D2 according to the present invention, a bacterial commonly used 16S rRNA amplification primer (SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2) was prepared, and PCR (polymerase chain reaction) was performed. As a result, a fragment of 1.4 kb was obtained, and the fragment was cloned into the pST-Blue1 vector (Novagen, WI, USA) to analyze the nucleotide sequence (SEQ ID NO: 3).                     

4) 균의 지방산 분석4) Fatty acid analysis of bacteria

본 발명에 따른 분리 균주 D2의 동정을 위하여 균체 내 지방산 조성을 분석하였으며, 16S rRNA 염기 서열 분석 결과 가장 높은 유사도 (similarity)를 가지는 두개의 종과 지방산 조성을 비교하였다. 분석 기기는 미생물 동정 시스템(Microbial Identification System MIDI, 제조원: Microbial ID. Inc., DE, USA)을 사용하였으며, 분석된 데이터는 TSBA40 (Sherlock Version 4.0; 제조원: MIDI사, USA )에서 검색하였다. 그 결과가 표 2에 나타나 있다.Fatty acid composition in the cell was analyzed for identification of the isolated strain D2 according to the present invention, and 16S rRNA sequencing analysis resulted in comparing the fatty acid composition with two species having the highest similarity (similarity). The analytical instrument used a Microbial Identification System MIDI (Microbial ID. Inc., DE, USA), and the analyzed data was retrieved from TSBA40 (Sherlock Version 4.0; manufactured by MIDI, USA). The results are shown in Table 2.

분리 균주 D2의 지아잔틴(zeaxanthin) 생성능의 검정Assay of Zeaxanthin Formation of Isolated Strain D2

1) TLC(thin layer chromatography)를 통한 지아잔틴 생성능 검정1) Zeaxanthin production capacity assay through thin layer chromatography (TLC)

분리 균주 D2 내에 포함된 색소화합물은 아세톤(acetone)을 통해 추출하였다. 색소 추출물을 건조시킨 후 메탄올:클로로포름(methanol:chloroform) 1:1 혼합용매에 용해시켰다. TLC의 매질은 실리카겔 (Silica gel 60F254, 제조원: Merck, Germany)을 사용하였고, 추출된 색소 추출물을 클로로포름:아세톤(chloroform:aceton) 97:3 용매에서 전개시켰다. 그 결과가 도 5에 나타나 있다.The pigment compound contained in the isolated strain D2 was extracted through acetone. The pigment extract was dried and then dissolved in a methanol: chloroform 1: 1 mixed solvent. The medium of TLC was silica gel (Silica gel 60F 254 , Merck, Germany), and the extracted pigment extract was developed in a chloroform: aceton 97: 3 solvent. The results are shown in FIG.

2) HPLC(high-pressure liquid chromatography)를 통한 지아잔틴 생성능 검정2) Zeaxanthin production ability assay through HPLC (high-pressure liquid chromatography)

분리 균주 D2 내에 포함된 색소 화합물은 아세톤을 통해 추출하였다. 추출된 색소 추출물을 건조시킨 후 메탄올:클로로포름(methanol:chloroform) 1:1 혼합용매에 용해시켰다. HPLC에 사용된 컬럼은 C18 역상 컬럼(Ultrasphere ODS 4.6㎜× 25 ㎝, 제조원: Beckman Coulter, CA, USA)을 사용하였고, 용매는 아세토나이트릴:메탄올:이소프로파놀(acetonitrile:methanol:isoprophanol) 90:6:4로 사용하였다. 유속은 1㎖/min으로 하였고, 흡광도는 UV 475nm에서 감지하였다. 그 결과가 도 6에 나타나 있다.The pigment compound contained in the isolated strain D2 was extracted through acetone. The extracted pigment extract was dried and then dissolved in a methanol: chloroform 1: 1 mixed solvent. The column used for HPLC was a C18 reversed phase column (Ultrasphere ODS 4.6 mm × 25 cm, manufactured by Beckman Coulter, Calif., USA) and the solvent was acetonitrile: methanol: isoprophanol 90 It was used as 6: 6. The flow rate was 1 ml / min, and the absorbance was detected at UV 475 nm. The results are shown in FIG.

따라서, 하나의 양태로서, 본 발명은 지아잔틴(zeaxanthin)의 생산능을 갖는 신규한 플라보코커스 제주엔시스 (Flavococcus chejuensis)(수탁번호 KCTC 10534BP)을 제공한다.Thus, as one aspect, the present invention provides a novel Flavococcus chejuensis (Accession No. KCTC 10534BP) having a production capacity of zeaxanthin.

본 발명의 지아잔틴(zeaxanthin)의 생산능을 갖는 신규한 플라보코커스 제주엔시스는 지아잔틴의 생성을 촉진시킬 수 있는 다양한 배지에서 발효시킬 수 있으며, 이러한 발효 방법으로는 배치, 페드-배치(fed-batch) 및 연속 배양 등을 예시할 수 있다. 배지중에 포함될 수 있는 동화성 탄소원으로는 슈가 및 이들의 중합체, 폴리알콜 등을 사용될 수 있으며, 동화성 질소원으로는 무기 질소 화합물, 동물, 식물 및 미생물 기원의 물질 등이 사용될 수 있고, 기타 비타민, 성장 촉진제, 색소 형성 촉진제 등이 배지중에 포함될 수 있다. The novel Flavococcus Jejuensis having the production capacity of zeaxanthin of the present invention can be fermented in a variety of media that can promote the production of zeaxanthin, such fermentation methods are batch, fed-batch (fed) -batch) and continuous culture, etc. can be illustrated. Sugars and polymers thereof, polyalcohols, and the like may be used as the assimilation carbon source that may be included in the medium, and inorganic nitrogen compounds, materials of animal, plant and microbial origin may be used as the assimilation nitrogen source, other vitamins, Growth promoters, pigment formation promoters, and the like may be included in the medium.

본 발명의 신규한 플라보코커스 제주엔시스는 20 내지 40℃, 바람직하게는 23 내지 35℃, 보다 바람직하게는 25 내지 30℃에서 pH 5.5 내지 8, 바람직하게는 6 내지 7.8, 보다 바람직하게는 7 내지 7.8에서 배양하며, 이의 배양에 따른 지아잔틴의 생산능을 증대시키기 위해 산소, 이산화탄소 등의 배양 조건을 조절할 수 있다. The novel Flavococcus Jejuensis of the present invention has a pH of 5.5 to 8, preferably 6 to 7.8, more preferably 7 at 20 to 40 ° C, preferably 23 to 35 ° C, more preferably 25 to 30 ° C. In the culture to 7.8, in order to increase the production capacity of zeaxanthin according to the culture thereof, it is possible to adjust the culture conditions, such as oxygen, carbon dioxide.

배양된 플라보코커스 제주엔시스로부터 생성된 지아잔틴은 균주내에 존재하 며, 지아잔틴-함유(zeaxanthin-containing) 플라보코커스 제주엔시스는 원심분리, 여과 등 당 분야의 통상의 방법으로 회수할 수 있다. 회수된 지아진틴-함유 플라보코커스 제주엔시스는 이를 배양물로부터 회수하여 동물 사료 첨가제로서 사용할 수 있다. Zeaxanthin produced from the cultured Flavococcus Jejuensis is present in the strain, and zeaxanthin-containing Flavococcus Jejuensis can be recovered by conventional methods such as centrifugation, filtration and the like. . The recovered ziazine tin-containing Flavococcus Jejuensis can be recovered from the culture and used as an animal feed additive.

따라서, 본 발명은 또 다른 양태로서, 플라보코커스 제주엔시스 (Flavococcus chejuensis)(수탁번호 KCTC 10534BP)를 배양하고 배양배지로부터 지아잔틴을 함유하는 플라보코커스 제주엔시스(zeazanthin-containing Favococcus chejuensis)를 회수하는 단계를 포함하여, 지아잔틴-함유 플라보코커스 제주엔시스를 생산하는 방법을 제공한다. Therefore, in another aspect, the present invention is to cultivate Flavococcus chejuensis (Accession No. KCTC 10534BP) and recover zeazanthin-containing Favococcus chejuensis containing zeaxanthin from the culture medium. It provides a method for producing zeaxanthin-containing Flavococcus Jejuensis, including the step of.

배양된 플라보코커스 제주엔시스의 균체내에 존재하는 지아잔틴은 당 분야의 통상의 정제 방법을 이용하여 지아잔틴을 정제할 수 있다. 균체내에 존재하는 지아잔틴은 당 분야의 표준 방법, 예를 들어 유기 용매를 사용하여 정제할 수 있다.Zeaxanthin present in the cultured cells of the Flavococcus Jejuensis can be purified by using a conventional purification method in the art. Zeaxanthin present in the cells can be purified using standard methods in the art, for example using organic solvents.

또 다른 양태로서, 본 발명은 플라보코커스 제주엔시스 (Flavococcus chejuensis)(수탁번호 KCTC 10534BP)를 배양하고 배양배지로부터 지아잔틴을 함유하는 플라보코커스 제주엔시스를 회수하는 단계 및 회수된 균체로부터 축적된 지아잔틴을 추출하는 단계를 포함하여, 지아잔틴을 생산하는 방법을 제공한다.In still another aspect, the present invention provides a method for culturing Flavococcus chejuensis (Accession No. KCTC 10534BP), recovering Flavococcus Jejuensis containing zeaxanthin from a culture medium, and accumulating from recovered cells. It provides a method for producing zeaxanthin, including extracting zeaxanthin.

상기한 바와 같이 정제된 지아잔틴은 당 분야에서 익히 공지된 바와 같이 항산화제, 착색제, 노인성 안 질환제 등으로 사용될 수 있다.
Zeaxanthin purified as described above can be used as an antioxidant, colorant, senile eye disease, etc. as is well known in the art.

실시예Example

실시예 1 : 신 분리 균주 D2의 16S rRNA 염기 서열을 통한 동정 Example 1 Identification Through 16S rRNA Sequences of Renal Isolate Strain D2

분리 균주 D2를 마린 브로스 2216(제조원: Difco Laboratories, MD USA)에서 25℃에서 48시간 동안 배양한 후 이로부터 추출된 염색체를 PCR 반응의 주형으로 사용하였고, 아래의 프라이머를 사용하였다.The isolated strain D2 was incubated in Marine Broth 2216 (manufactured by Difco Laboratories, MD USA) for 48 hours at 25 ° C., and the chromosome extracted therefrom was used as a template for PCR reaction, and the following primers were used.

GF1 : 5'-TAA CAC ATG CAA GTC GAA CG-3' (서열 번호 1)GF1: 5'-TAA CAC ATG CAA GTC GAA CG-3 '(SEQ ID NO: 1)

GR1 : 5'-GGT GTG ACG GGC GGT GTG TAC AAG-3'(서열 번호 2)GR1: 5'-GGT GTG ACG GGC GGT GTG TAC AAG-3 '(SEQ ID NO: 2)

상기 중합효소 연쇄반응은 써멀 사이클러(Thermal Cycler; 제조원: Takara, Japan)를 사용하여 수행하였고, 94℃에서 5분간 반응시키고, 94℃에서 30초간, 60℃에서 30초간, 72℃에서 45초간 반응을 35회 수행한 후, 72℃에서 15분간 반응시키는 조건으로 수행하여 1.4kb의 단편을 획득하였다. 얻어진 단편은 0.8% 아가로스 젤에서 추출한 다음 이를 pST-Blue1 (제조원: Novagen, WI, USA)에 클로닝한 후 염기서열을 분석하였다(서열 번호 3). 분석된 염기서열을 NCBI의 BLAST-N를 통하여 타종간의 유연관계를 확인한 결과, 해양 살조 세균(Marine Algicidal bacterium) 시토파가 종(Cytophaga sp.) I-1858과 93.99%의 유사도(Similarity)를 보였다. 그러나, 시토파가 종(Cytophaga sp.) I-1858은 타입 균주가 아니므로 비교 대상이 될 수 없으므로, 타입 균주 중 가장 높은 유사도를 보이는 겔리디박터 알겐스(Gelidibacter algens) ACAM 536T 균주의 경우와 비교한 결과 92.13%의 유사도를 보였다. 타입 균주와 비교하여 통상 94% 이하의 유사도를 갖는 경우 그 균주는 새로운 속으로 분류되고 있다. 따라서, 본 발명에 따른 분리 균주 D2는 16S rRNA의 염기 서열 분석 결과에 기초할 때 새로운 속임이 밝혀졌으며(도 4 참조), 본 발명자들은 본 발명에 따른 균주 D2에 대해서 속명을 "노란색을 띄는 구균"의 의미를 가지는 "Flavococcus"로 명명하고, 종명은 제주 연안을 의미하는 "chejuensis"로 명명하였으며, 이 균주를 2003년 11월 3일자로 KCTC(Korean Collection for Type Cultures, 한국 대전광역시 유성구, 어은동 52번지 한국생명공학연구원 생물자원센터)에 수탁 번호 KCTC 10534BP로 기탁하였고, 16S rRNA 염기 서열(서열 번호 3)은 등록번호 AY455998로 진뱅크(GenBank)에 등록하였다.
The polymerase chain reaction was performed using a thermal cycler (manufactured by Takara, Japan), reacted at 94 ° C. for 5 minutes, 30 seconds at 94 ° C., 30 seconds at 60 ° C., and 45 seconds at 72 ° C. After the reaction was performed 35 times, a fragment of 1.4 kb was obtained by performing the reaction at 72 ° C. for 15 minutes. The obtained fragment was extracted from 0.8% agarose gel and then cloned into pST-Blue1 (Novagen, WI, USA) and analyzed for sequencing (SEQ ID NO: 3). As a result of confirming the flexible relationship between different species through NCLAST's BLAST-N, it showed 93.99% similarity with Marine algicidal bacterium Cytophaga sp. I-1858. . However, Cytophaga sp. I-1858 is not a type strain and thus cannot be compared, so Gelidibacter algens shows the highest similarity among the type strains. Compared with the ACAM 536T strain showed a similarity of 92.13%. Compared with the type strain, the strain is usually classified as a new genus if it has a similarity of 94% or less. Therefore, the isolated strain D2 according to the present invention was found to be a new trick based on the sequencing results of the 16S rRNA (see FIG. 4), and the inventors of the present invention referred to the strain "2" for the bacterium D2 according to the present invention. It was named "Flavococcus" which means " , and the species name was" c hejuensis " which means the coast of Jeju. This strain was named KCTC (Korean Collection for Type Cultures, Yuseong-gu, Daejeon Metropolitan City, Korea) on November 3, 2003. The deposit was made with accession number KCTC 10534BP to 52, Eun-dong Biotechnology Center, Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology, and 16S rRNA base sequence (SEQ ID NO: 3) was registered in GenBank under the registration number AY455998.

실시예 2 : 신규 분리 균주 플라보코커스 제주엔시스의 지방산 분석을 통한 동정Example 2 Identification through Fatty Acid Analysis of Newly Isolated Strain Flavococcus Jejuensis

본 발명에 따른 분리 균주 플라보코커스 제주엔시스내의 지방산 조성 분석을 위하여 이를 마린 아가 플레이트 2216 (Difco Laboratories, MD, USA )에서 25℃에서 48시간 동안 배양하였다. 배양체 40㎎을 루프로 캡튜브에 취한 후 메탄올:증류수 (methanol:D.W.) 1:1 혼합용액에 15% 수산화나트륨이 포함된 시약 1㎖을 가하여 100℃에서 25분간 반응시켜 세포내 지방산을 추출하였다. 추출된 지방산의 메틸화를 위하여 6N HCl 2㎖을 첨가하고 80℃에서 10분간 반응 시킨 후 재빨리 냉각시켰으며, 수용성의 상태인 지방산을 유기상으로 전환시키기 위하여 헥산:메틸-3급 부틸 에테르 (Hexane:Methyl-tert Buthyl Ether) 1:1 혼합용액 1.25㎖을 첨가 후 10분 동안 회전시켜주어 상층액만을 취했다. 마지막으로 포화된 수산화나트륨 용액 3ml으로 샘플을 씻어준 후 분석기기를 통하여 분석하였다. 분석된 결과를 TSBA40 데이터베이스에서 검색한 결과, 동일한 지방산 조성을 가지는 균종이 나타나지 않 았고, 또한 16S rRNA 염기 서열 분석 결과 가장 높은 유사도(similarity)를 보이는 겔리디박터 알겐스(Gelidibacter algens)와 사이크로세르펜스 부르토넨시스(Psychroserpens burtonensis)의 지방산 조성과도 서로 다른 조성을 보이는 것을 확인할 수 있었다. 이는 다음 표 2에 나타내었다. 따라서, 이러한 지방산 분석을 통하여 플라보코커스 제주엔시스가 새로운 속임을 입증할 수 있었다.
For analysis of fatty acid composition in isolated strain Flabococcus jejunsis according to the present invention it was incubated for 48 hours at 25 ℃ in marine agar plate 2216 (Difco Laboratories, MD, USA). 40 mg of the culture was taken in a cap tube with a loop, and then 1 ml of a reagent containing 15% sodium hydroxide was added to a methanol: distilled water (methanol: DW) 1: 1 solution, followed by reaction at 100 ° C. for 25 minutes to extract intracellular fatty acids. . For methylation of the extracted fatty acid, 2 ml of 6N HCl was added and reacted at 80 ° C. for 10 minutes, followed by rapid cooling. In order to convert an aqueous fatty acid into an organic phase, hexane: methyl-tert-butyl ether (Hexane: Methyl -tert Buthyl Ether) After adding 1.25 ml of a 1: 1 mixed solution, the solution was rotated for 10 minutes to obtain only the supernatant. Finally, the sample was washed with 3 ml of saturated sodium hydroxide solution and analyzed through an analyzer. The results of the analysis in the TSBA40 database showed no species with the same fatty acid composition, and 16S rRNA sequencing showed the highest similarity ( Gelidibacter algens and Cyclocerpens ). It was confirmed that the ethanol composition of Psychroserpens burtonensis was different from the fatty acid composition. This is shown in Table 2 below. Therefore, Flavococcus Jejuensis was able to prove a new trick through this fatty acid analysis.

지방산fatty acid 총 지방산 (%)Total fatty acid (%) 플라보코커스 제주엔시스Flavococcus Jeju Nsis 사이크로세르펜스 부르토넨시스Cyclocerpens Bourtonensis 겔리디박터 알겐스Gelidibacter Argens 14:014: 0 0.50.5 0.20.2 0.30.3 15:015: 0 2.62.6 10.110.1 8.88.8 16:016: 0 2.62.6 0.40.4 1.41.4 18:018: 0 -- -- 0.20.2 i13:0i13: 0 -- <0.1<0.1 -- i14:0i14: 0 -- 0.40.4 0.50.5 i15:0i15: 0 11.611.6 10.010.0 7.97.9 a15:0a15: 0 5.35.3 10.410.4 13.213.2 i15:1i15: 1 14.514.5 -- -- a15:1a15: 1 2.72.7 -- -- i15:1w10ci15: 1w10c -- 14.114.1 11.311.3 a15:1w10ca15: 1w10c -- 8.48.4 8.88.8 i16:0i16: 0 1.01.0 0.60.6 8.08.0 i16:1i16: 1 0.50.5 -- -- i16:1w11ci16: 1w11c -- 9.19.1 -- i16:1w6ci16: 1w6c -- -- 7.77.7 i17:0i17: 0 0.50.5 -- -- a17:0a17: 0 0.50.5 -- 1.51.5 i17:1 w7ci17: 1 w7c -- 1.51.5 4.94.9 i17:1 w9ci17: 1 w9c 0.60.6 -- -- a17:1 w7ca17: 1 w7c -- <0.1<0.1 5.25.2 15:1 w11c15: 1 w11c -- 6.46.4 3.53.5 15:1 w6c15: 1 w6c 0.70.7 3.53.5 -- 15:1 w4c15: 1 w4c -- 7.67.6 1.31.3 16:1 w9c16: 1 w9c -- 0.70.7 -- 16:1 w7c16: 1 w7c -- 0.40.4 5.95.9 16:1 w5c16: 1 w5c -- 6.96.9 1.51.5 17:1 w8c17: 1 w8c 0.40.4 1.21.2 -- 17:1 w6c17: 1 w6c 0.60.6 1.51.5 3.73.7 2-OH 15:02-OH 15: 0 1.71.7 -- -- 2-OH 17:02-OH 17: 0 3.63.6 -- -- 3-OH i14:03-OH i14: 0 0.40.4 -- -- 3-OH i15:03-OH i15: 0 8.48.4 -- 0.50.5 3-OH i16:03-OH i16: 0 4.74.7 -- 0.80.8 3-OH 16:03-OH 16: 0 2.22.2 -- 0.30.3 3-OH i17:03-OH i17: 0 13.313.3 -- 0.40.4 3-OH a17:03-OH a17: 0 -- -- 0.40.4 2-OH i15:0/16:1w7c2-OH i15: 0/16: 1w7c 12.112.1 -- -- 17:1 ISO I /ANTEI B17: 1 ISO I / ANTEI B 2.52.5 -- -- unknown 11.543unknown 11.543 0.90.9 -- -- unknown 13.565unknown 13.565 2.12.1 -- -- unknown 16.582unknown 16.582 1.31.3 -- --

실시예 3 : TLC를 통한 지아잔틴 생성능 조사Example 3 Examination of Zeaxanthin Formation Capacity by TLC

본 발명에 따라 신규 명명된 플라보코커스 제주엔시스(Flavococcus chejuensis)의 지아잔틴 생성능을 조사하기 위하여, TLC(thin layer chromatography)를 수행하였다. 이때, 지아잔틴을 생성하는 것으로 공지된 파라코코스 지아잔티니파시안스(Paracoccus zeaxantinifaciens) ATCC 21588 [Alan, Berry et al., Int. J. Syst. Evol. Micro., 53: 231, (2003)]을 대조 균주로 사용하였다. 대조 균주와 플라보코커스 제주엔시스의 Rf 값( Rf = 전개 용매의 전개 길이 / 균주 샘플의 전개 길이)을 산출한 결과, 두 균주 모두 Rf = 1.25/8.5 = 0.147으로 동일한 값을 가졌다[도 5 참조]. 따라서 본 발명에 따른 신규 균주 플라보코커스 제주엔시스가 지아잔틴을 생성한다는 것을 검증할 수 있었다.
According to the present invention, thin layer chromatography (TLC) was performed in order to investigate the zeaxanthin production ability of the novelly named Flavococcus chejuensis . At this time, Paracoccus zeaxantinifaciens known to produce zeaxanthin ATCC 21588 [Alan, Berry et al., Int. J. Syst. Evol. Micro., 53: 231, (2003)] as a control strain. As a result of calculating the Rf values ( Rf = development length of development solvent / development length of strain sample) of the control strain and Flabococcus jejunsis, both strains had the same value as Rf = 1.25 / 8.5 = 0.147 [see FIG. 5]. ]. Therefore, it could be verified that the novel strain Flavococcus Jejuensis according to the present invention produces zeaxanthin.

실시예 4 : HPLC를 통한 지아잔틴 생성능 조사Example 4 Investigation of Zeaxanthin Production Capacity by HPLC

HPLC를 통하여 플라보코커스 제주엔시스가 지아잔틴을 생성하는지 조사하였다. 이때, 지아잔틴을 생성하는 것으로 공지된 파라코코스 지아잔티니파시안스 ATCC 21588을 대조 균주로 사용하였다. 대조 균주에서 추출된 지아잔틴은 HPLC 분석 결과 7.9분대에 피크로 나타났으며, 본 발명에 따라 분리된 신규 균주 플라보코커스 제주엔시스가 또한 동일한 7.9분대의 피크를 보였다. 두 균주에서 추출된 색소 화합물을 혼합하여 함께 분석한 HPLC에서도 역시 단일의 7.9분대 피크(도 6 참조)를 보였으므로 본 발명에 따른 플라보코커스 제주엔시스가 대조 균주와 마찬가지로 지아잔틴을 생성한다는 것을 확인할 수 있었다.
It was investigated whether Flavococcus Jejuensis produced zeaxanthin through HPLC. At this time, paracocos giazanthinipatians known to produce zeaxanthin ATCC 21588 was used as a control strain. Zeaxanthin extracted from the control strain showed a peak at 7.9 components, and the novel strain Flavococcus Jejuensis isolated according to the present invention also showed the same peak at 7.9 components. As a result, a single 7.9 component peak (see FIG. 6) was also shown in HPLC, which was analyzed by mixing the pigment compounds extracted from the two strains, confirming that Flavococcus Jejuensis according to the present invention produced zeaxanthin like the control strain. Could.

본 발명에 의해 제공되는 지아잔틴 생합성 세균 플라보코커스 제주엔시스(Flavococcus chejuensis) 균주는 항산화제, 착색제, 노인성 안 질환 치료제, 동물 사료 보조제 등으로 사용될 수 있는 유용한 천연 색소 지아잔틴을 안정적으로 공급할 수 있어 매우 유용하다.The zeaxanthin biosynthetic bacterium Flavococcus chejuensis strain provided by the present invention can stably supply useful natural pigments zeaxanthin which can be used as antioxidants, colorants, senile eye diseases, animal feed supplements, etc. Very useful.

<110> Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology <120> New bacterium Flavococcus chejuensis producing zeaxanthin and production method of zeaxanthin using thereof <160> 3 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Synthetic primer GF1 for amplifying 16S rRNA <400> 1 taacacatgc aagtcgaacg 20 <210> 2 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Synthetic primer GR1 for amplifying 16S rRNA <400> 2 ggtgtgacgg gcggtgtgta caag 24 <210> 3 <211> 1307 <212> DNA <213> Flavococcus chejuensis <220> <221> ZN_FING <222> (1)..(1307) <223> 16S rRNA <400> 3 gagcttgctc gaccggcgca cgggtgcgta acgcgtatac aatctgcctt gtactggggt 60 atagccttta gaaatgaaga ttaacacccc ataatataca gagcccgcat gggttctata 120 ttaaaggtta cggtacaaga tgagtatgcg tcctattagt tagttggtgc ggtaacggcg 180 caccaagaca gcgataggta ggggccctga gagggggatc ccccacactg gtactgagac 240 acggaccaga ctcctacggg aggcagcagt gaggaatatt ggacaatgga gggaactctg 300 atccagccat gccgcgtgca ggaagactgc cctatgggtt gtaaactgct tttatacggg 360 aagaaaccgt gctacgtgta gcaccttgac ggtaccgtaa gaataaggat cggctaactc 420 cgtgccagca gccgcggtaa tacggaggat ccaagcgtta tccggaatca ttgggtttaa 480 agggtccgta ggtggactgg tcagtcagag gtgaaatcct gcagcttaac tgtagaactg 540 cctttgatac tgctagtctt gaatcattgt gaagtggtta gaatatgtag tgtagcggtg 600 aaatgcatag atattacata gaataccaat tgcgaaggca gatcactaac aatgtattga 660 cactgatgga cgaaagcgta ggtagcgaac gggattagat accccggtag tctacgccgt 720 aaacgatgga tactagctgt ccggcttcgg ctgggtggct aagcgaaagt gataagtatc 780 ccacctgggg agtacgttcg caagaatgaa actcaaagga attgacgggg gcccgcacaa 840 gcggtggagc atgtggttta attcgatgat acgcgaggaa ccttaccagg gcttaaatgt 900 agattgacag gtttagagat agacttttct tcggacaatt tacaaggtgc tgcatggttg 960 tcgtcagctc gtgccgtgag gtgtcaggtt aagtcctata acgagcgcaa cccctgttgt 1020 tagttgccag catgtaaaga tgggaactct agcaagactg ccggtgcaaa ccgtgaggaa 1080 ggtggggatg acgtcaaatc atcacggccc ttacgtcctg ggctacacac gtgctacaat 1140 ggtagggaca gagagcaacc actgggcgac caggagcgaa tctataaacc ctatcacagt 1200 tcggatcgga gtctgcaact cgactccgtg aagctggaat cgctagtaat cggatatcag 1260 ccatgatccg gtgaatacgt tcccgggcct tgtacacacc gcccgtc 1307 <110> Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology <120> New bacterium Flavococcus chejuensis producing zeaxanthin and          production method of zeaxanthin using <160> 3 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Synthetic primer GF1 for amplifying 16S rRNA <400> 1 taacacatgc aagtcgaacg 20 <210> 2 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Synthetic primer GR1 for amplifying 16S rRNA <400> 2 ggtgtgacgg gcggtgtgta caag 24 <210> 3 <211> 1307 <212> DNA <213> Flavococcus chejuensis <220> <221> ZN_FING (222) (1) .. (1307) <223> 16S rRNA <400> 3 gagcttgctc gaccggcgca cgggtgcgta acgcgtatac aatctgcctt gtactggggt 60 atagccttta gaaatgaaga ttaacacccc ataatataca gagcccgcat gggttctata 120 ttaaaggtta cggtacaaga tgagtatgcg tcctattagt tagttggtgc ggtaacggcg 180 caccaagaca gcgataggta ggggccctga gagggggatc ccccacactg gtactgagac 240 acggaccaga ctcctacggg aggcagcagt gaggaatatt ggacaatgga gggaactctg 300 atccagccat gccgcgtgca ggaagactgc cctatgggtt gtaaactgct tttatacggg 360 aagaaaccgt gctacgtgta gcaccttgac ggtaccgtaa gaataaggat cggctaactc 420 cgtgccagca gccgcggtaa tacggaggat ccaagcgtta tccggaatca ttgggtttaa 480 agggtccgta ggtggactgg tcagtcagag gtgaaatcct gcagcttaac tgtagaactg 540 cctttgatac tgctagtctt gaatcattgt gaagtggtta gaatatgtag tgtagcggtg 600 aaatgcatag atattacata gaataccaat tgcgaaggca gatcactaac aatgtattga 660 cactgatgga cgaaagcgta ggtagcgaac gggattagat accccggtag tctacgccgt 720 aaacgatgga tactagctgt ccggcttcgg ctgggtggct aagcgaaagt gataagtatc 780 ccacctgggg agtacgttcg caagaatgaa actcaaagga attgacgggg gcccgcacaa 840 gcggtggagc atgtggttta attcgatgat acgcgaggaa ccttaccagg gcttaaatgt 900 agattgacag gtttagagat agacttttct tcggacaatt tacaaggtgc tgcatggttg 960 tcgtcagctc gtgccgtgag gtgtcaggtt aagtcctata acgagcgcaa cccctgttgt 1020 tagttgccag catgtaaaga tgggaactct agcaagactg ccggtgcaaa ccgtgaggaa 1080 ggtggggatg acgtcaaatc atcacggccc ttacgtcctg ggctacacac gtgctacaat 1140 ggtagggaca gagagcaacc actgggcgac caggagcgaa tctataaacc ctatcacagt 1200 tcggatcgga gtctgcaact cgactccgtg aagctggaat cgctagtaat cggatatcag 1260 ccatgatccg gtgaatacgt tcccgggcct tgtacacacc gcccgtc 1307

Claims (11)

지아잔틴(zeaxanthin)의 생산능을 갖는 플라보코커스 제주엔시스 (Flavococcus chejuensis)(수탁번호 KCTC 10534BP). Flavococcus chejuensis (Accession No. KCTC 10534BP) having a production capacity of zeaxanthin. 플라보코커스 제주엔시스 (Flavococcus chejuensis)(수탁번호 KCTC 10534BP)를 배양하고 배양배지로부터 지아잔틴을 함유하는 플라보코커스 제주엔시스(zeazanthin-containing Flavococcus chejuensis)를 회수하는 단계를 포함하여, 지아잔틴-함유 플라보코커스 제주엔시스를 생산하는 방법. Zeaxanthin-containing, comprising culturing Flavococcus chejuensis (Accession No. KCTC 10534BP) and recovering zeazanthin-containing Flavococcus chejuensis containing zeaxanthin from the culture medium. How to produce Flavococcus Jeju Nsis. 제2항에 있어서, 플라보코커스 제주엔시스(수탁번호 KCTC 10534BP)를 20 내지 40℃에서 호기성 조건하에서 배양하는 방법.The method according to claim 2, wherein the Flavococcus Jejuensis (Accession No. KCTC 10534BP) is incubated under aerobic conditions at 20 to 40 ° C. 삭제delete 제2항 또는 제3항에 따른 방법으로 생산된 지아잔틴-함유 플라보코커스 제주엔시스를 포함하는, 동물성 사료 첨가제.An animal feed additive comprising zeaxanthin-containing flavococcus Jejuensis produced by the method according to claim 2. 플라보코커스 제주엔시스 (Flavococcus chejuensis)(수탁번호 KCTC 10534BP) 를 배양하고 배양배지로부터 지아잔틴을 함유하는 플라보코커스 제주엔시스를 회수하는 단계 및 회수된 균체로부터 축적된 지아잔틴을 추출하는 단계를 포함하여, 지아잔틴을 생산하는 방법. Culturing Flavococcus chejuensis (Accession No. KCTC 10534BP), recovering Flavococcus Jejuensis containing zeaxanthin from the culture medium and extracting the accumulated zeaxanthin from the recovered cells By, how to produce zeaxanthin. 제6항에 있어서, 플라보코커스 제주엔시스(수탁번호 KCTC 10534BP)를 20 내지 40℃에서 호기성 조건하에서 배양하는 방법.The method according to claim 6, wherein the Flavococcus Jejuensis (Accession No. KCTC 10534BP) is incubated under aerobic conditions at 20 to 40 ° C. 삭제delete 삭제delete 삭제delete 삭제delete
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Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3951742A (en) 1973-07-26 1976-04-20 Societe D'assistance Technique Pour Produits Nestle S.A. Production of zeaxanthin
US5308759A (en) 1989-08-30 1994-05-03 Applied Food Biotechnology, Inc. Production of zeaxanthin and zeaxanthin-containing compositions
US5360730A (en) 1987-06-05 1994-11-01 Universal Foods Corporation Zeaxanthin producing strains of Neospongiococcum Excentricum
KR20040005407A (en) * 2002-07-10 2004-01-16 이명석 Anti-aging composition
KR20040016086A (en) * 2002-08-14 2004-02-21 (주)오비티 Specific feed-additive contained anti-oxidants producing microbes
KR20040043189A (en) * 2001-08-13 2004-05-22 디에스엠 아이피 어셋츠 비.브이. Compositions comprising sugar beet pectin and carotenoids

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3951742A (en) 1973-07-26 1976-04-20 Societe D'assistance Technique Pour Produits Nestle S.A. Production of zeaxanthin
US5360730A (en) 1987-06-05 1994-11-01 Universal Foods Corporation Zeaxanthin producing strains of Neospongiococcum Excentricum
US5308759A (en) 1989-08-30 1994-05-03 Applied Food Biotechnology, Inc. Production of zeaxanthin and zeaxanthin-containing compositions
KR20040043189A (en) * 2001-08-13 2004-05-22 디에스엠 아이피 어셋츠 비.브이. Compositions comprising sugar beet pectin and carotenoids
KR20040005407A (en) * 2002-07-10 2004-01-16 이명석 Anti-aging composition
KR20040016086A (en) * 2002-08-14 2004-02-21 (주)오비티 Specific feed-additive contained anti-oxidants producing microbes

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