KR100282576B1 - 사람 면역 결핍 바이러스 면역치료제 - Google Patents

사람 면역 결핍 바이러스 면역치료제 Download PDF

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안도 고끼
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Abstract

본 발명은 서열 동정 번호 : 1에 기술된 아미노산 서열인 G-P-G-R을 포함하는 HIV-1 gp120 단백질 또는 이의 전구체 gp160 단백질과 특이적으로 면역 반응하고, 역전사효소, p24, MT-2 및 합포체 형성 검정에 의해 측정된 HIV-1 생(live) 균주 MN 및 ⅢB에 의한 H9 세포의 감염을 시험관내에서 중화시킬 수 있음을 특징으로 하는 모노클로날 항체를 제공한다. HIV-1 입자의 보체 의존적 바이러스 분해 및 HIV-1 감염된 세포의 항체 의존적 세포의 세포독성을 조정하는 능력을 추가의 특징으로 하는 마우스/마우스 하이브리도마 ATCC HB 10726으로부터 분리된 항체 NM-01이 현재 바람직하다. 특히, 하이브리도마 세포주 ATCC HB 10726에 의해 생산된 모노클로날 항체의 하나 이상의 상보성 결정 영역의 아미노산 서열을 포함하는 사람 항체 가변성 영역으로 필수적으로 이루어진 항체가 기술되어 있다. 본 발명의 약제학적 조성물은 HIV-1에 감염되기 쉽거나 HIV-1에 감염된 동물, 특히 사람의 수동 면역화 치료에 유용하도록 고안되었다.

Description

[발명의 명칭]
사람 면역 결핍 바이러스(HIV) 면역치료제
[배경]
본 발명은 일반적으로 사람 면역 결핍 바이러스(HIV-1) 감염의 예방 및 치료에 유용한 물질 및 방법에 관한 것이다. 더욱 특히, 본 발명은 HIV-1에 감염되기 쉽거나 감염된 동물. 특히 사람의 수동 면역화에 유용한 모노클로날 항체에 관한 것이다.
HIV-1의 생체내 감염과정은 최근 문헌[참조 McCune , Cell, 64 , pp. 351-363 (199l)]의 주제였다. 요약하면, HIV-1은 다양한 세포계(cell lineage), 예를 들어. CD4 수용체를 발현시키는 T-세포, 단핵세포/대식세포 및 신경 세포를 감염시킨다. 체내에서 대부분의 CD4+세포가 "정지"또는 휴지 상태이며 특정 시그날에 대한 반응에서만 분열되기 때문에 HIV-1에 의한 감염은 전사적으로 불활성인 바이러스를 함유한 CD4+세포를 초래한다. 활성 면역화를 포함하는, 감염된 동물의 면역 체계의 자극은 폴리클로날 활성화 및 휴지 상태의 CD4+세포를 세포 주기중 S상으로 가게하는 시그날을 초래할 수 있다. 그 다음에 복제 세포는 감염의 전파를 촉진하는 바이러스 입자를 능동적으로 생성 한다. HIV-1-감염된 동물의 면역체계를 자극하는 이러한 네가티브 효과를 고려하여, HIV-1 감염을 예방하거나 치료하는 가장 효과적인 방법은 수동 면역화이며, 즉 HIV-1에 감염되기 쉽거나 감염된 동물에게 항-HIV-1 항체를 투여하는 것이 가능하다.
잭슨(,Jackson) 등[참조: Lancet, 2, pp.647-652 (1988)]은 후천성 면역 결핍증(AlDS, HIV-I 감염과 관련된 점진적인 면역체계 파괴증후군)을 앓는 사람 환자에게 혈장 형태로 항-HIV-1 항체를 단일 투여하면 증상의 경감, T 임파구의 일시적 증가, 기회적 감염(opportunistic infection)의 빈도의 감소 및 환자의 혈장 또는 임파구로부터 HIV-1이 배양될 수 있는 속도의 격감이 일시적으로 초래된다고 보고 하였다[참조: Karpas et al., Proc Nat1. Acad. Sci. USA, 85. pp. 9234-9237(1988)]. 더우기, 에미니(Emini) 등[참조: Nature, 355, pp. 728-730 (1992)]은 침팬지가 HIV-1에 노출되기 전에 침팬지에게 HIV-1과 특이적으로 반응하는 항체를 투여하면 바이러스성 감염의 징후없이 잔존하는 침팬지를 초래한다고 보고하였다. 이러한 연구들은 HIV-1을 중화시킬 수 있는 항체가 HIV-1 감염의 예방/처리에서 유용할 수 있음을 나타낸다.
HIV-1 주요 외부 엔벨로프 당단백질인 gp120은, 세포성 CD4 수용체에 결합하며 바이러스의 내부이행(internalization)을 촉진한다. 당단백 질의 수개의 에피토프는 항체를 중화시키는 현상과 관련되어 있다. 호(Ho) 등[참조: Science, 239, pp.1021-1023(1988)]은 gp120의 아미노산 254 내지 274가 HIV-1의 3개의 상이한 분리물을 그룹-특이적 중화시킬 수 있는 폴리클로날 항혈청을 유발한다고 보고하였다. 아미노산의 1차 서열로 구성되지 않은, gp120상의 배위-의존적 에피토프는 또한 바이러스의 다양한 균주를 중화시키는 항체를 유발시키는데에 연류되어 있다[참조: Haigwood et al., Vaccines 90, pp. 313-320 (1990) 및 Ho et al., J. Virol., 65(1). pp. 489-493(1991)]. HIV-1 gp120의 소위 "주요 중화 결정인자(principa1 neutralizing determinant: PND)"는 gp120의 "V3루우프(loope)"에 위치되어 있다[참조: Putney et al., Science, 234, pp. 1392-1395 (1986); Rusche et al., Proc Natl. Acad. Sci. USA, 85, pp. 3198-3202 (1988); Goudsmit et al., Proc Natl. Acad. Sci. USA. 85, pp. 4478-4482 (1988); Palker et al., Proc Natl. Acad. Sci. USA, 85, pp.1932-1936 (1988); 및 Holley et al., Proc Natl. Acad. Sci. USA, 85, pp. 6800-6804 (1991)]. V3루우프는 도메인을 플랭킹(flanking)하는 시스테인 잔기들 사이에 있는 디설파이드 결합에 의해 확립된 고가변성 도메인으로 이루어진다. HIV-1MNV3루우프는, 예를 들어, gp120의 위치 302 및 336의 시스테인 잔기 사이에 있는 디설파이드 결합에 의해 형성된다.
다양한 HIV 분리물로부터의 V3루우프의 일련의 아미노산 잔기를 포함하는 재조합 및 합성 단백질 단편은 설치류 동물에서 분리물 특이적 또는 타입 특이적 중화 항체를 유발하는 것으로 보고되었다[참조: Lasky et a1., Science, 233. pp. 209-212 (1986); Palker et a1., 상기; Matsushita et a1., J. Virol., 62, pp. 2107-2114 (1988); 및 Javaherian et al., Pro. Natl. Acad. Sci. USA, 86, pp. 6768-6772 (1989)]. 보다 최근의 연구[참조: Putney et al., 상기 및 LaRosa et al., Science. 249, pp.932-935 (1990)]는 V3루우프의 β-선회(turn) 구조가 분리물-특이적 항체에 의해 인지되는 부위임을 입증하였다. 스코트(Scott) 등[참조: Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 87, pp. 8597-8601 (1990)]은 PND가 또한 사람에서 타입 특이적 항체를 유도할 수 있다고 보고하였다. PND의 고가변성은 에피트프에 의해 생성되는 타입 특이적 중화 활성을 설명할 수 있다.
수개의 연구는 재조합 gp120, 정제된 gp120 또는 V3도메인으로부터의 합성 펩타이드에 대해 재조된 항체가 다양한 HIV-1 분리물을 중화시킬 수 있다고 제안하였다. 문헌[참조: Javaherian et al., Science, 250, pp. 1590-1593(1990) 및 Weiss et al., Nature, 324, pp. 572-575 (1986)]은 MN 분리물의 PND에 상응하는 펩타이드 및 ⅢB분리물로부터 유래된 재조합 gp120으로 각각 면역화시킨 토끼로부터의 폴리클로날 혈청에 의한 MN 및 ⅢB분리물 둘다의 중화에 대해 기술하고 있다[ 참조: Haynes et a1., U.S. Letters Patent 5,019,387].
아커블롬(Akerblom) 등[참조: AlDS. 4, pp. 953-960 (1990)]은 ⅢB및 11개의 1차 HIV-1 분리물을 중화시키는 모노클로날 항체 제제에 대해 기술하고 있다[참조: 1991년 8월 8일 공개된 와렌(Wahren) 등의 PCT 특허 공개 공보 제W0 91/11198호]. 아커블롬 1차 분리물의 균주 상동성은 측정되지 않지만, 11개 분리물은 또한 ⅢB일 수 있다. 두르다(Durda) 등[참조: AIDS Res. Hum. Retrov.. 6, pp. 1115-1123 (1990)]은 역전사효소 활성과 상호관련될 것이라는 결과를 수득하기 위한 분석인. "LAV 포획(capture) 면역 검정"에 의해 측정된 바와 같이, MN 감염된 세포 및 ⅢB감염된 세포 둘 다에 의한 합포체 형성을 차단하지만 MN 감염성은 중화시키지 않는 모노클로날 항체를 보고하였다. 문헌[참조: PCT 특허원 제WO 90)/15078호(Scott et al.), 1990년 12월 13일 공개]은 MN 또는 "MN-유사" 분리물의 PND를 발현하는 종두 바이러스(Vaccinia virus)로 감염된 세포에 의한 합포체 형성을 억제하는 모노클로날 항체에 대해 기술하고 있다. 표준 역전사 효소, p24 또는 MT-2 검정을 사용하여서는 단정적으로 어떤 "광범위한 중화" 항체도 HIV-1의 다수의 생(live) 균주를 중화하는 것으로 입증되지 않는다[참조: Tanox Biosystems. lnc.에 의해 출원된, 각각 1988년 12월 1일, 1990년 11월 1일 및 1991년 7월 11일 공개된, PCT 특허 공개 공보 제W0 88/09181호, 제W0 90/12868호 및 제W0 91/09625호; 1991년 12월 26일 공개된, New York University의 PCT 특허공개공보 제WO 91/19797호 및 Liou et al., J. lmmunol.. 143(12), pp.3967-3975 (1989)].
선행 문헌들은 현재까지 개발된 HIV-1 PND와 반응성인 모노클로날 항체가 상이한 수준의 그룹 반응성을 나타내지만, 광범위한 중화 활성을 가질 수 없음을 지적해준다. 이러한 연구들에 의해 지적된 상이한 양상의 타입 특이적 및 그룹 특이적 반응성은 gp120의 루우프 영역의 아미노산 서열 및 배위 둘다와 관련될 수 있다.
수개의 연구는 CD4 수용체가 바이러스 감염성에 관련하는 유일한 세포성 수용체가 아닐 수 있다고 제안하였다. 이러한 연구의 결과는 환자에게 CD4+세포의 감염을 차단하는 상기 기술된 항체를 투여하면 HIV-1 감염에 대해 단지 제한적인 보호를 수득할 수 있다는 가능성을 제기한다. 문헌[참조: Cheng-Mayer et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 84, pp.3526-3530 (1987)]은 CD4분자 이외의 수용체를 수반하는 신경교 세포의 HIV-1 감염에 대해 보고하고 있다. 더우기, 다케다(Takeda) 등[참조: Science, 242, pp.580-583(1988)]은, 항체/HIV-1 복합체(complex)가 수용체-조정된 엔도시토시스(endoctosis)에 의해 단핵 세포를 감염시켜 바이러스 복제를 증진시킬 수 있음을 지적하였다. 감염에 대한 유사한 항체-의존적 증강작용이 문헌[참조: Halsted et a1., Nature, 265, pp.659-665 (739-741 (1977); Peiris et al.. Nature, 289, pp. 189-191 (1981); 및 Schlesinger et al., J. Immunol., 127. pp. 659-665 (1981)]에 기술되어 있다.
선행 연구는 특정 동물 바이러스가 항체 의존적 기작을 통해 보체. 특히 Clq에의해 불활성화됨을 보여주었다[참조: Weiss, Molecular Biology of Tumor Viruses. RNA Tumor Viruses. Weiss et al., Eds., Cold Spring Harbor Laboratory. New York, pp. 1219-1220(1982); Welsh et al., Virology, 74. pp. 432-440 (1976): Bartholomew et al.. J. Exp. Med., 147, pp.844-853 (1978): Cooper et al., J. Exp. Med., 144, pp. 970-984 (1976); 및 Sherwin et al., lnt. J. Cancer. 21. pp. 6-11 (1978)]. 바나푸르(Banapour) 등[참조:Virology, 152. pp. 268-271 (1986)]은 HIV-1의 밀도 또는 말초혈 단핵 세포를 감염시키는 HIV-1의 능력에 대해 영향을 미치지 않는 비가열된 혈청 제제에 대해 기술하고 있는 반면, 스페어(Spear) 등[참조: J. Virol., 64 (12), pp. 5869-5873 (1990)]은 보체의 배합물 및 HIV-1 혈청 양성 환자로부터 혼주한 혈청으로 처리된 HIV-1이 저하된 감염성을 보여준다고 보고하였다.
따라서, HIVT-1과 특이적으로 면역반응하는 신규한 모노클로날 항체 물질(예를들어, 쥐-유래된 항체, 사람화(humanized) 항체 및 면역학적으로 활성인 항체 단편)에 대한 당해 분야에서의 요구는 계속되고 있다. 이상적으로, 이러한 항체는 적합하게 배양된 숙주 세포(예를 들어, H9 세포)를 수반하는 표준 역전사효소, p24. MT-2 및 합포체 형성 검정에 의해 측정된 바와 같이 다수의 HIV-1 균주(예를들어, ⅢB및 MN)의 중화를 수행하는 능력으로 특징지워진 것이다. 감염된 환자 및 감염되지 않은 환자의 수동 면역화에서의 계획된 사용의 관점에서, 이러한 모노클로날 항체는 HIV-1 입자의 보체 의존적 바이러스 분해 및 HIV-1 감염된 세포의 항체 의존적 세포분해에 최적으로 참여할 수 있을 것이다(즉, 조정할 것이다).
[요약]
본 발명은 서열 동정 번호: 1에 기술된 아미노산 서열 글리신-프롤린-글리신-아르기닌(G-P-G-R)을 포함하는 HIV-1 gp120 또는 gp160 단백질의 상기 아미노산 서열 부분과 특이적으로 반응하고, 역전사 효소. p24. MT-2 및 합포체 형성 검정에의해 측정된 HIV-1 생균주 MN 및 ⅢB에 의한 배양물증 H9 세포의 감염을 중화시킬 수 있음을 특징으로 하는 모노클로날 항체를 제공하는 것이다. 본 발명의 생성물은 HIV-1 입자의 보체 의존적 바이러스분해 및/또는 HIV-1 감염된 세포의 항체의존적 세포의 세포독성을 조정할 수 있음을 추가의 특징으로 한다.
본 발명의 모노클로날 항체는 유액(예: 혈액)중에서 HIV-1의 존재를 측정하기 위한 진단 방법 및/또는 키트로 사용될 수 있다. 본 발명에 따른 모노클로날항체. 바람직하게는 IgG 항체는 또한 HIV-1에 감염되기 쉽거나 HIV-1에 감염된 동물, 특히 사람의 항-HIV-1 치료에서 사용하기에 특히 적합하다. 면역학적 유효량의 모노클로날 항체는 환자에서 HIV-1 감염에 대한 수동 면역성을 발달시키기 위해, 바람직하게는, HIV-1 입자의 보체 의존적 바이러스 분해 및/또는 HIV-1 감염된 세포의 항체 의존적 세포의 세포 독성을 수행하기 위해 HIV-1 감염된 환자 또는 HIV-1에 감염될 위험이 있는 환자에게 투여된다.
본원에서 청구된 모노클로날 항체에 근거한 키메릭(chimeric) 또는 "사람화"항체(CDR-이식된 항체를 포함), 항체 단편, 및 특히 이중 특이적 항체는 원핵세포 또는 진핵세포에서 생산된 재조합 항체 관련 생성물이기 때문에 본 발명의 영역내에 있다. 예를 들어, 항체 단편, 즉 Fab 및 F(ab')2단편은 본 발명의 항체의 가변성 영역에 대한 구조적(서열) 정보의 측정 동안 숙주 세포, 예를 들어. 이. 콜라이(E. Coli), 효모, 곤충 및 포유동물 세포에 의한 배양에서 생성될 수 있다. 가변성 영역에 대한 서열 정보는 또한 CDR-이식된 항체의 제조를 가능하게 해준다. 더우기, 키메릭 항체(예를 들어, 마우스/사람 항체)는 형질전환된 마우스 골수종 세포 또는 하이브리도마 세포를 이용하여 제조될 수 있으며 이중 특이적 항체는 하이브리드 하이브리도마 세포에 의해 생성될 수 있다. 구체적으로 필수적으로 서열 동정번호: 1에 기술된 서열로 이루어지는 HIV-l gp120 또는 gp160의 아미노산 서열에 특이적으로 결합하는 능력 및 역전사효소, p24. MT-2 및 합포체 형성 검정에서 HIV-1 생 균주 MN 및 ⅢB에 의한 H9 세포의 감염을 시험관내에서 중화시키는 능력에 의해 특징화되는 항체의 하나 이상의 상보성 결정 영역의 아미노산 서열을 포함하는 사람 항체 가변성 영역으로 필수적으로 이루어진 항체가 고려된다. 이와같은 항체를 암호화하는 DNA 서열, 이와 같은 항체를 생성하는 숙주세포 및 이와같은 항체를 제조하기 위한 재조합 방법이 고려된다.
또한, 항-HIV-1 치료에서 본 발명의 생성물 및 기타 면역학적 제제 및/또는 화학적 치료제의 배합물의 사용은 본 발명의 영역내에 있다. 배합된 투여를 위한 효능제에는 보체, HIV-1 단백질의 다양한 중화 도메인 및 비중화 도메인에 결합하는 항체, 및 화학제(예:AZT)가 포함된다.
하기 상세한 설명에 기술되는 바와 같이, 본 발명의 모노클로날 항체는 생 HIV-1을 사용한 적당한 숙주의 면역화에 의해 생성되므로 천연 배위의 gp120을 나타낸다.
구체적으로 본 발명에서는 1991년 4월 9일 아메리칸 타입 컬쳐 컬렉션(American Type Culture Collection, 12301 Parklawn Drive; Rockville, Maryland 20852)에 수탁되어 수탁번호 HB 10726으로 지정된 하이브리도마 세포주 HB 10726에 의해 생산된 쥐 모노클로날 항체(NM-01로 지정), 및 1993년 8월 20일 유러피언 컬렉션 오브 애니멀 셀 컬쳐(European Collection of Animal Cell Cultures. ECACC. PHLS Centre for Applied Microbiology & Research, Porten Down. Salisbury, Great Britain SP4 OJG 소재)에 기탁되어 ECACC 기탁번호 93082022, 93082019. 93082020. 93082023, 93082018 및 93082021로 각각 지정된 세포주에 의해서 생산된 NM-01 HuVH/HuVK, NM-01 HuVH/HuVKF, NM-01 HuVHM/HuVK, NH-01 HuVHS/HuVk, NM-01 HuVHS/HuVKF 및 NM-01 HuVHM/HuVKF로 지정된 항체 NM-01의 사람화 버전(version)을 나열한다.
본 발명의 많은 국면 및 잇점은 하기 본 발명의 상세한 설명에서 본 발명의 실시에 대한 설명적 실시예 및 기술을 고려함으로써 명백해질 것이며, 하기 도면을 참조한다: 제1도는 본 발명의 모노클로날 항체 및 혈청 양성 AIDS 환자로 부터의 면역 혈청으로 면역블롯팅된 감염되지 않은 H9 세포, HIV-lMN및 HIV-1ⅢB단백질의 혼합 자기방사선 사진이다. 제2도는 상이한 HIV-1 균주의 V3루우프 영역에 상응하는 펩다이드를 사용하여 본 발명의 항체를 시험한 면역 반응의 결과를 그래프로 나타낸 것이다. 제3도는 gp120에 대한 본 발명의 항체 및 2개의 다른 항-HIV 항체의 결합시 V3루우프 영역에 상응하는 펩타이드의 효과를 나타내는 막대그래프이다. 제4a도 내지 제4c도, 제5도, 제6a도 및 제6b도, 제7a도 및 제7b도. 제8도, 및 제9a도 및 제9b도는 HIV-1 생균주에 의해 H9 세포의 감염을 중화시길 수 있는 본 발명의 모노클로날 항체에 대한 역전사효소, p24, MT-2 및 합포체 형성 검정 각각에 의한 스크리닝의 결과를 그래프로 나타낸 것이다. 제10도는 본 발명의 항체의 감염성의 중화에 대한 펩타이드 차단을 측정하는 검정의 결과를 그래프로 나타낸 것이다. 제1la도 및 제1lb도, 제12a도 내지 제12f도. 및 제13a도 내지 제13f도는 본 발명의 모노클로날 항체 및 보체의 배합물로 처리된 HIV-1 입자의 전자 현미경 사진이다. 제14도 및 제15도는 본 발명의 모노클로날 항체인 NM-01의 경쇄 및 중쇄 각각의 가변성 영역의 아미노산 서열을 3개의 상이한 항-HIV-1 모노클로날 항체의 경쇄 및 중쇄의 아미노산 서열과 함게 정렬한 것이다. 제16도 내지 제17도는 쥐모노클로날 항체 NM-01의 경쇄 및 중쇄 각각의 가변성 영역의 아미노산 서열을 HuVH/HuVKF로 지정된 본 발명의 사람화 NM-01 항체의 경쇄 및 중쇄의 아미노산 서열과 함께 정렬한 것이다. 제18도, 제19도, 제20도, 제21도 및 제22도는 본 발명의 키메릭 항체 및 사람화 항체의 생물학적 활성의 역전사효소, p24, MT-2 및 합포체 형성 검정 각각에 의한 스크리닝 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
[실시예]
하기 실시예는 하이브리도마 세포주 HB 10726의 생성, 서열 동정 번호: 1에 기술된 아미노산 서열 G-P-G-R을 포함하는 HIV-l gp120(또는 이의 전구체 gp160) 단백질 및 펩타이드와 면역 반응성인 모노클로날 항체의 상기 하이브리도마 세포주 HB l0726으로부터의 분리, 및 상기 모노클로날 항체의 특성화에서 본 발명의 실시를 설명하고 있다.
더욱 특히, 실시예 1은 하이브리도마 세포주 HB 10726의 생성 및 이로부터의 모노클로날 항체 NM-01의 분리에 관한 것이다. 실시예 2는 항체 NM-01에 의해 인지되는 바이러스성 에피토프의 지도화(mapping)에 관한 것이다. 실시예 3은 다양한 HIV-1 분리물과 모노클로날 항체와의 반응성의 특성화에 대해 기술하고 있다. 실시예 4는 역전사효소 및 p24 검정에 의해 입증된 다양한 HIV-1 생균주에 의한 H9 세포의 감염을 중화시키는 능력에 대한 항체 NM-01의 스크리닝에 관한 것이다. 실시예 5는 MT-2 및 합포체 형성 분석에 의해 입증된 HIV-1 생분리물의 감염성을 중화시키는 능력에 대한 항체의 추가의 스크리닝에 관한 것이다. 실시예 6은 모노클로날 항체 NM-01의 HIV-1 감염성 중화 특성의 펩타이드 차단에 관한 것이다. 실시예 7은 HIV-1의 보체 의존적 분해를 조정하는 모노클로날 항체 NM-01의 능력에 대한 검정에 대해 기술하고 있다. 실시예 8은 배양시 감염되기 쉬운 세포의 HIV-1 감염성에 대한 모노클로날 항체 NM-01 및 보체의 배합물의 효과의 측정에 관한 것이다. 실시예 9는 모노클로날 항체 NM-01의 중쇄 및 경쇄 가변성 영역의 DNA 및 연역된 아미노산 서열에 대해 기술하고 있다. 실시예 10은 모노클로날 항체 NM-01의 키메릭 및 사람화 버젼의 제조 및 이의 면역학적 및 생물학적 활성에 대한 검정에 관한 것이다.
[실시예 1]
하이브리도마 세포주 HB l0726은 문헌[참조: 0i 및 Herzenberg. Selected Methods Cell Immunology, pp. 351-372 (1979) 및 Godding, J. lmmunol. Meth.. 39, pp.285-308(1980)]에 기술된 바와 같은 표준 면역학적 기술을 이용하여 제조하며 하기에 구체적으로 기술한다.
A . 생 HIV-1 MN 의 정제
HIV-1MN-감염된 H9 세포 배양물 300ml를 수집하고 4℃. 1500rpm에서 5분동안 원심분리하여 세포를 펠렛화한다. 바이러스-함유 상등액을 제거하여 보관하고, 이동안 침전물은. 2100rpm에서 20분동안 재원심분리한다. 제2 상등액을 수집하여 제1의 상등액과 혼주시키고, 상등액을 SW 27 로터내에서 4℃, 25,000rpm에서 90분동안 한외원심분리하여 바이러스성 입자를 팰렛화한다. 생성된 상등액을 버린다. 바이러스성 펠렛을 약 10ml의 TNE 완층액(100mM NaC1, 10mM 트리스-HCl, pH 7.7, 1mM EDTA)중에 재현탁시킨다. 바닥층에 50% 슈크로오즈 TNE 10ml, 중간층에 25% 슈크로오스 TNE l0m1 및 상층에 바이러스 샘플 10ml을 함유하는 한외원심분리 튜브를 준비하고, 4℃. 25,000rpm에서 90분동안 한외원심분리한다. 슈크로오즈 TNE층 사이에 백색 밴드로서 침전된 바이러스를 파스퇴르 피펫으로 수집한다. 20ml, TNE/15mM EDTA(100mM NaC1, 10mM 트리스-HCl, pH 7.7, 15mM EDTA)를 바이러스에 가하고 바이리스 샘플을 4℃. 25,000rpm에서 90분동안 재회전시킨다. 생성된 펠렛은 정제된 생 HIV-1MN을 포함한다.
B. 면역화 하이브리도마 제조
생 HIV-1MNl00㎍을 사용하여 복강내 주사함으로써 생후 2개월된 Balb/c 마우스 3마리 각각을 면역화시킨다. 3주후에 30㎍의 바이러스를 사용하여 마우스를 부스트(boost) 시키고 또 다시 3주후 100㎍의 바이러스성 제제를 사용하여 마우스를 부스트시킨다. 제2 부스트한지 3일후에 마우스를 참수시키고 비세포를 P3-X63-Ag8-U1 세포(ATCC 기탁번호 CRL 1597)와 융합시킴으로써 하이브리도마 세포주를 제조한다. 또한 하이브리도마 세포주는 만성적으로 감염된 H9 세포(마우스 10마리). 급성적으로 감염된 H9 세포(마우스 9마리) 및 감염된 H9 세포막(마우스 3마리)으로 면역화된 마우스의 비장으로부터 제조한다. 만성적으로 감염된 H9 세포는 역전사효소 검정(RT) 계산치가 100,000cpm 내지 150,000cpm인, 감염후 2 내지 3주된 세포인 반면, 급성적으로 감염된 H9 세포는 RT 계산치가 200,000cpm 내지 250,000cpm인 감염후 10 내지 12일된 세포이다.
하이브리도마 세포주는 하기 방법에 의해 제조한다. 면역시킨 마우스로부터의 비장세포의 혼합물을 800g에서 5분동안 회전시킨다. 상등액을 세포 펠렛으로부터 흡인여과시키고 108개 세포당 따뜻한(37℃) 50% PEG-1500 1ml를 1분에 걸쳐 펠렛에 가한다(15초동안 피펫 팁으로 부드럽게 교반하면서 0.25m1를 가하고 이를 반복한다). 혼합물을 세포 응집물이 파괴되지 않도록 하면서 동일한 피펫 팁으로 추가의 분동안 교반한다. "불완전 배지(incomplete media)"[25mM HEPES (Sigma Co.), 10,000U/m1 페니실란 및 10,000mg/m1 스트렙토마이신이 보충된 RPMl 1640(.JRH Biosciences)] 1ml를 1분에 걸쳐 동일한 방법(15초마다 0.25ml)으로 가하고 또 다시 1ml을 1분에 걸쳐 가한다. 그다음에, 7ml의 불완전 배지를 2 내지 3분에 걸쳐(20초마다 1ml) 교반하면서 가하여 미세한 세포 응집물의 현탁액을 생성시킨다. 최종 현탁액을 임상적 원심분리기상 500g에서 5분동안 원심분리하고 상등액을 제거한다. 침전물을 "완전 배지"[15% 송아지 태아 혈청(FBS)이 보충된 상기" 불완전 배지"]중에서 소용돌이함으로써(용액을 볼텍스하거나 위아래로 피펫팅하지 않는다) 재현탁시켜 배지 1m1당 2x106개 세포의 농도로 만든다. 이 현탁액 0.lm1(총 2×105개 세포)을 96웰 플레이트의 웰당 도말한다. 플레이트를 37℃, 7% CO2에서 배앙한다. 융합 일을 0으로 한다.
C. 하이브리도마의 HAT 선별 및 초기 스크리닝
융합한지 24시간 후(1일째), 0.1ml HAT배지(10-4M 하이포크산틴, 5x10-7M 아미노프테린 및 1.6x10-5M 티미딘)을 각 웰에 가한다. 2, 3, 5, 8, 11, 14, 17 및 21일째에 0.1ml의 배지를 각 웰로부터 제거하고 신선한 HAT 배지 0.1m1로 대체한다. 2일 내지 5일째까지는, 웰은 단지 죽은 세포만을 함유하는 것으로 보인다. 하이브리도마는 5일 내지 10일째 사이에 나타나기 시작한다. 하이브리도마는 세포성 데브리스(debris)에 의해 둘러싸인 매우 굴절성인 세포의 콜로니로서 용이하게 식별할 수 있다.
D. 하이브리도마 스크리닝
수개의 검정을 사용하여 하이브리도마 상등액을 스크리닝한다. HIV-1과 반응성인 하이브리도마 분비 항체는 하이브리도마 배양 상등액을 사용하여 ELISA에의해 감염되지 않은 H9 세포 및 MN 감염된 H9 세포로부터 제조된 막을 스크리닝함으로써 초기에 동정한다. 이어서, 감염된 생세포에 대한 항체 결합 데이터로 ELlSA 데이터를 보층하기 위한 면역형광 및 방사선 면역 검정 스크리닝을 수행한다.
ELlSA용 세포막은 감염된 H9 세포 또는 감염되지 않은 H9 세포로부터 제조한다. 세포는 1mM EDTA를 함유하는 pH 7.4의 250mM 슈크로오즈/10mM 트리스-HCl 완충액중에 현탁시킨다. 현탁액은 빙욕에 위치시킨 다운스(Dounce) 균질화기에서 트리판 블루 배제에 의한 식별가능한 세포가 보이지 않을때까지 균질화시킨다. 혼합물을 50g에서 2분동안 원심분리한다. 생성된 펠렛을 재균질화시키고 재원심분리한다. 2개의 상등액을 합하고 20,000g에서 20분동안 원심분리한다. 팰렛을 동일한 완중액중에서 다시 균질화시키고 20분동안 원심분리하고 팰렛을 최초의 250mM 슈크로오즈-EDTA 완충액 7m1중에 재현탁시킨다. 그 다음에 이 용액을 1mM EDTA를 함유하는 2M 슈크로오즈/10mM 트리스-HC1 완층액상에 놓고 80,000g에서 1시간동안 원심분리한다. 보풀거리는 백색 계면이 수득되면 이것을 수집하여 250mM 슈크로오즈 완충액 중에 재현탁시킨다. 단백질 함량은 BCA 검정(Pierce Chemical Company)에의해 측정한다. 현탁액을 분취한 다음 -70℃에서 저장한다.
ELlSA를 위해, 세포막을 400ng/웰의 농도로 96 웰 플레이트에 가하고 25℃에서 밤새 건조시킨다. 플레이트를 0.5% 트리톤-X/포스페이트 완충된 염수(PBS)로 세척하고, 5% 송아지 태아 혈청(FBS)/PBS로 차단시키며 다시 세척한다. 하이브리도마 상등액(40μ1)를 50μ1 PBS중에 희석시키고 밤새 4℃에서 웰에 가한다. 세척후. 양고추냉이 퍼옥시다제(HRP)에 결합된 토끼 항-마우스 lgG(H+L)(Zymed)를 25℃에서 2시간동안 웰에 가한다. 웰을 0.5% 트리톤-X/PBS로 세척하고 ABTS(Bio-Rad 기질 키트)의 존재하에서 20분동안 배양시킨 후 405 및 650nm에서 0D 값을 모니터링한다.
만성적으로 감염된 세포 및 급성적으로 감염된 세포로 면역화시킨 마우스의 비장 세포로부터 생성된 하이브리도마의 상등액을 ELISA에서 감염되지 않은 세포막과 감염된 세포막 둘다에 대해 수행된 포지티브 스크리닝은, 하이브리도마에 의해 생성된 항체가 HIV-1-특이적이지 않음을 시사한다. 감염된 세포막으로 면역화시킨 마우스의 비장 세포로부터 생성된 1039개 하이브리도마 중에서, 5개의 하이브리도마의 상등액이 감염된 세포막과 강하게 반응하며 감염되지 않은 세포막과는 매우 약하게 반응한다. 웨스턴 블롯은 이들 하이브리도마 세포주로부터의 상등액상에서 수행하며 생성된 모노클로날 항체중에서 3개는 HIV-1 p55와 결합하고, 하나는 HIV-1 p55 및 p24와 결합하고, 나머지는 웨스턴 블롯에서 밴드를 생성하지 않는 것으로 측정되었다(데이터는 도시되지 않음). ELISA의 결과는 감염되지 않은 세포막과 비교하여 감염된 세포막에 대해 수득한 값의 비로서 표 1에 나타낸다.
1187개 하이브리도마가 생 HIV-lMN으로 면역화시킨 마우스의 비장 세포로부터 생성된다. 4개 하이브리도마 세포주를 4개의 상등액중의 항체가 감염된 세포막과 강하게 반응하고 감염되지 않은 세포막과 매우 약하게 반응함을 보여주는 ELlSA의 결과에 근거하여 추가의 스크리닝을 위해 선별한다.
4개 하이브리도마의 상등액은 제한 희석 클로닝을 수행하고 방사선 면역검정(RlA)으로 스크리닝한다.125I(R α M lgG-125I)로 표지된 토끼 항-마우스 IgG를 Sephadex G-50 컬럼(NEN-DuPont)상에서 정제한다. 감염되지 않은 H9 세포 또는 HIV-1MN로 감염된 H9 세포(150μ1중 7.5x105개 세포)를 15m1 튜브에 넣는다. 각 하이브리도마로 부터 50μ1의 상등액을 감염된 세포 및 감염되지 않은 세포를 함유하는 각 튜브에 가하고 혼합물을 4℃에서 밤새 배양한다. 세포를 2ml PBS/50% 트윈-20을 사용하여 2회 세척한다(세척사이에 볼텍스한다). PBS/5% FBS중 R α MlgG-125I (750,000cpm) 50μl를 가하고 혼합물을 다시 4℃에서 밤새 배양한다. 배양한 후, 세포를 PBS/50% 트윈-20로 3회 세척한다. PBS/5% 트리톤-X100μ1를 가하여 세포를 살균하고 1M NaOH l00μ1를 가하여 신틸레이션 바이알로 표지물을 옮긴다. 샘플을 카운트하고 RlA의 결과는 감염되지 않은 세포에 대한 cpm 값에 비교되는 감염된 세포에 대해 수득된 cpm값 사이의 비로서 하기 표 1에 기재되어 있다.
[표 1]
그 다음에, 4개 하이브리도마 세포주를 면역형광검정(IFA)에 의해 스크리닝한다. 감염되지 않은 H9 세포 또는 HIV-1 감염된 H9 세포(약 1×106개 세포/ml) 2ml을 10ml PBS (Ca++또는 Mg++가 없는)가 함유된 10ml 멸균 원심분리 튜브에 넣는다. 세포를 튜브에 충전시키고, 볼텍스하고 100rpm에서 5분동안 회전시키고, "우유빛"세포 현탁액이 잔류하는 약 100μl의 상등액을 제외하고 모두 흡인여과함으로써 PBS 10ml로 1회 세척한다. 라미나 플로우 호드(laminar flow hood)에서 작업하는 동안, 51mm 10-웰 슬라이드(Cell Line Association)는 각 웰을 관주시킨 다음 현탁액을 피펫 팁을 뽑아냄으로써 세포 현탁액으로 피복시킨다. 피복된 슬라이드는 공기 건조시키고 그 다음에 메탄올중 실온에서 10분동안 고정시킨다. 각 4개 하이브리도마로부터의 상등액은 감염되지 않은 세포와 감염된 세포의 슬라이드 제제와의 반응성을 위해 희석하지 않은채 그리고 1:50 역가(0.02% 스킴 밀크중 희석된 상등액)로 희석하여 시험한다. 희석하지 않은 상등액 및 희석한 상등액 15μl를 각 슬라이드 웰에 가한다. 슬라이드를 37℃에서 30분동안 배양하고 PBS중에서 교반하면서 5분동안 침수시킨다. 그다음에 슬라이드를 증류수로 재빨리 세정하고 라미나 플로우 후드에서 공기건조시킨다. 염소-항-마우스 lgG(H+L)F(ab)2단편(Cappel Biomedical) 16μl를 0.02% 스킴 밀크중에서 1:80으로 희석하고 각 웰에 가한다. 슬라이드를 37℃에서 30분동안 다시 배양한 다음 PBS중에 침수시킨다. 슬라이드를 PBS중 0.01% 에반스-블루 용액으로 5초동안 세정하고 증류수로 2회세정한다. 슬라이드를 면역형광검정으로 검사하고 스크리닝의 결과는 표 2에 기재하며, 여기서 마우스 IgG(MIgG), 5C5 항체(항-ⅢB) 및 그룹 5 상등액(감염된 세포막으로 면역화시킨 마우스의 비장으로부터 생성된 하이브리도마로 부터의 상등액)이 대조군 항체이다.
[표 2]
하이브리도마 세포주인, HB l0726은 RIA 및 면역 형광 검정 데이터에 근거하여 가장 유망한 항체로서 선별한다. 이 세포주는 ELlSA에서 최고의 결합 비율을 갖지 않지만 ELlSA가 건조된 세포막에 대한 결합을 나타내는데 반해 RlA 및 면역 형광검정 결과는 감염된 생세포에 대한 결합을 나타내므로 RlA 데이터가 더 중요하다. 세포주를 2회 아클로닝시키고 생성된 모노클로날 항체를 NM-01로 지정한다. 표준방법에 의해 이 세포주를 마우스에게 복강내 주사하고 모노클로날 항체 NM-01을 단백질 A 친화성 컬럼 정제(Pierce)에 의해 복수증 유액으로 부터 농축시킨다. 항체 NM-01의 아이소타입(isotype)은 타입 특이적 항혈청(Bio-Rad)에 의해 IgG2b로 측정된다. 항체(1.8mg/ml)는 15% FBS를 함유한 RPMI 1640 배지중에 희석하고 하기 실시예에서 이용한다.
[실시예 2]
모노클로날 항체 NM-01에 의해 인지되는 바이러스성 에피토프를 특성화하기 위해, 항체를 우선 정제된 MN 및 ⅢB비리온(virion) 단백질과의 반응성에 대한 웨스턴 블릇 검정으로 스크리닝한 다음 HIV-l gp120의 V3 루우프 영역의 아미노산 서열에 상응하는 중첩 펩타이드와의 반응성에 대한 ELISA에 의해 스크리닝한다.
A. 웨스턴 블롯 검정
감염된 H9 세포의 배양 상등액으로부터 정제된 MN 및 ⅢB비리온을 1.3% SDS/3% β-머캅토에탄올중에서 파괴한 다음 0.1% SDS/10% 폴리아크릴아미드 겔에서 전기영동을 수행한다. 단백질을 니트로셀룰로오즈 페이퍼로 전이시킨후, 스트립을 차단 완충액(0.02M 트리스-HC1, pH7.4, 0.1M NaC1, 0.05% 정상 염소 혈청 및 5% 무지방 분말 밀크)중 모노클로날 항체 NM-01로 4℃에서 밤새 배양한 다음 0.02M 트리스-HC1. pH7.4, 0.lM NaC1 및 0.3% 트윈으로 세척한다. 그 다음에 스트립을 바이오티닐화된 염소 항-마우스 IgG(Zymed)로 1시간동안 배양하고, 세척하고125I-스트렙트아비딘(Amersham, Arlington Heights, IL)으로 추가의 1시간동안 4℃ 에서 반응시킨다. 모노클로날 항체 NM-01 반응성은 자기방사선 사진으로 모니터링한다.
자가방사선 사진의 결과는 제1도에 도시되어 있으며, 제1도에서 겔의 레인 1 및 레인 3은 감염되지 않은 H9 세포막을 함유하며; 레인 4는 HIV-1MN감염된 H9 세포막을 함유하며; 레인 2 및 레인 5는 HIV-1MN바이러스를 함유하며; 레인 6 및 레인 7은 HIV-1ⅢB바이러스를 함유한다. 항체 NM-01은 레인 1, 2 및 6의 단백질과 반응하는 반면 HIV-1 혈청 양성 환자 혈청은 레인 3 내지 5 및 레인 7의 단백질과 반응한다.
모노클로날 항체 NM-01은 외견상 분자량이 120kD인 MN 및 ⅢB바이러스성 단백질과의 반응성을 보여주지만, 기타 어떤 바이러스성 항원과는 반응하지 않는데 이러한 사실은 항체가 gp120의 에피토프를 인지한다는 것을 시사해준다.
비교하기 위해, 문헌[참조: Wahren et a1. PCT 특허 공개 공보 제91/11198호]에 기슬된 모노클로날 항체 F58/H3 및 P4/D10을 ECACC(기탁번호 90011607 및 90011608)로부터 입수하여 모노클로날 항체 NM-01과 함께 웨스턴 블롯시 재조합 HIV-1MNgp120(Agmed, Inc., Bedford, MA), 재조합 HIV-1ⅢBgp120(DuPont-NEN. Boston. MA) 천연 HIV-lMNgp120 및 천연 HIV-1ⅢBgp120에 대한 결합을 시험한다. 웨스턴 블릇은 토끼 항-마우스 2차 항체를 비색 검정에서 사용하여 항체 결합을 검측하는 것을 제외하고는 상술한 바와 같이 수행한다. 모노클로날 항체 NM-01은 천연 MN 및 ⅢBgp120 및 MN 및 ⅢB-유래된 재조합 gp120 모두와 반응시킨다. 그리나, 모노클로날 항체 F58/H3 및 P4/D10은, 단지 천연 HIV-1ⅢBgp120 및 HIV-1ⅢB로 부터 유래된 재조합 gp120과 반응한다.
B . ELISA에 대한 에피토프 지도화
항체 NM-01에 의해 인지되는 gp120의 특이적 에피토프를 확인하기 위해, 항체를 gp120의 V3루우프 영역에 상응하는 중첩 펩타이드와의 반응성에 대해 ELISA로 스크리닝한다. 다수의 펩타이드 시스템(San Diego, CA)에 의해 합성된 펩타이드는 HIV-1MNgp120의 아미노산 302 내지 316, 312 내지 326 및 322 내지 336에 상응한다.
3개의 펩타이드(웰당, 250ng/50μ1, 0.1M 붕산염 완층액, pH8.0)를 Immulon 2 플레이트(Dynatech)내 37℃에서 밤새 배양한다. 이 플레이트를 PBS로 세척하고 PBS/0.1% 트윈/0.1% 소혈청 알부민(BSA)로 실온에서 1시간동안 차단시킨다. 차단제를 제거하고 100μl HAT 배지중에 희석된, 상이한 양의 항체 NM-01 또는 마우스 IgG(MIgG)를 플레이트에 가한다. 항체를 2시간 동안 실온에서 반응시킨다. 그 다음에 플레이트를 수돗물로 10회 세척한다. 1:1000으로 희석된, HRP-결합된 토끼 항-마우스 2차 항체를 PBS/0.05% 트윈/0.5% BSA중에 용해시키고, 100μl를 웰당 첨가한다. 플레이트를 실온에서 1시간동안 배양한 다음 수돗물로 10회 세척한다. ABTS 기질(Bio-Rad)을 20분동안 가하고, 플레이트를 650nm에서 카운팅한다. 서열동정 번호: 2 내지 4는 펩타이드의 아미노산 서열을 기재한 것이며 표 3은 중첩 펩타이드를 이용하는 검정의 결과를 기재한 것이며, 여기서 항체 MIgG 및 HAT 배지는 네가티브 대조군이다.
[표 3]
V3루우프의 아미노산 302 내지 316 또는 322 내지 336에 상응하는 펩타이드와 모노클로날 항체 NM-01과의 백그라운드(backround)에 대한 반응성은 탐지되지않은 반면, 아미노산 312 내지 326을 나타내는 펩타이드에 대한 항체의 결합은 명백하다. 대조군 항체인, 마우스 IgG는 펩타이드에 결합하지 않는다.
[실시예 3]
모노클로날 항체 NM-01이 HIV-1MNgp120의 V3루우프 영역에 결합한다는 증거는 기타 HIV-1 분리물과의 이러한 반응성의 정도에 대한 추가의 연구를 시도하게 한다. HIV-1 분리물 ⅢB, RF, CDC4, NY/5, Z6, Z2 및 ELI의 V3루우프 영역에 상응하는 펩타이드와의 반응성에 대해 ELISA에 의해 항체를 스크리닝한다. 펩타이드의 아미노산 서열은 하기 표 4와 서열 동종 번호: 5 내지 12로서 서열 목록에 각각 기재되어 있다.
[표 4]
펩타이드[American Biotechnologies(Cambridge, MA)에 의해 합성된 250ng/0.1M 붕산염 완충액, pH8.0]를 lmmu1on 2 플레이트(Dynatech)중 4℃에서 밤새 배양한다. 플레이트를 PBS로 세척하고, 0.1% 트윈/0.1% BSA/PBS로 2시간동안 25℃에서 차단시킨 다음 모노클로날 항체 NM-01로 1시간동안 37℃에서 배양한다. 수돗물로 세척한 후, 플레이트를 HRP-결합된 토끼 항-마우스 2차 항체로 25℃에서 1시간동안 배양한 다음 ABTS 기질(Bio-Rad)로 20분동안 배양한다. 반응성은 650 내지 405nm에서 0D값을 모니터링함으로써 측정한다. 검정의 결과는 제2도에 나타나 있다.
모노클로날 항체 NM-01은 MN(폐쇄된 원), ⅢB(개방된 원). RF(개방된 삼각형) 및 CDC4(폐쇄된 삼각형) 분리물로부터의 루우프 펩타이드와 반응한다. ⅢB, RF 및 CDC4 펩타이드로에 대한 항체의 결합은 MN 펩타이드를 사용하여 수득된 것과 비교될 수 있다. 또한 항체는 NY/5 펩타이드(별표)에 대해 더 적은 친화성을 나타낸다. 모노클로날 항체 NM-01은 또한 서열 동종 번호: 13에 기재된 RF-유사 펩타이드와 추정적으로 반응성이다. 이와는 대조적으로, Z6(폐쇄된 네모). Z2(개방된 역삼각형) 및 ELI (개방된 네모) 분리물로부터의 루우프 펩타이드와의 반응성은 (있다하더라모) 거의 없다. 이러한 결과는 모노클로날 항체 NM-01이 특히, 서열 동정 번호: 1에 기재된 아미노산 서열, G-P-G-R을 갖는 HIV-1 분리물의 gp120의 V3루우프의 에피토프를 인지한다는 것을 시사해준다.
모노클로날 항체 F58/H3 및 P4/D10 또한 MN, ⅢB, RF-유사, CDC4, NY/5, Z2, Z6 및 ELI V3루우프 펩타이드에 대한 반응성을 시험한다. 모노클로날 항체 NM-01과는 대조적으로, 모노클로날 항체 F58/H3 및 P4/D10 모두는 ⅢB펩타이드와만 반응하며 서열 동정 번호 : 14에 기술된 RF-형 펩타이드와는 더욱 적은 정도로 반응한다.
또다른 항-HIV-l gp120 모노클로날 항체인, 모노클로날 항체 BAT 123은 MN-유사 및 ⅢB-유사 V3루우프 펩타이드와는 반응성이고 RF-유사 펩타이드(서열 동정 번호 : 13)와는 비반응성인 것으로 문헌에 기술되어 있다[참조: Liou et al.. Figure 5A on page 3972 of the Liou et al.]. 이러한 보고된 반응성은 상기 문헌에 기술된 모노클로날 항체 NM-01의 반응성과는 다르다. 항체 NM-01과 BAT 123은 둘다 ⅢB펩타이드에 비교적 잘 결합하는 반면, BAT 123 농도를 약 50배 증가시켜야 NM-01의 결합과 유사한 MN 펩타이드에 대한 결합을 수득할 수 있다. 더욱이, NM-01은 표 4 및 서열 동정 번호: 7에 기재된 RF 펩타이드 및 서열 동정 번호 : 14에 기재된 RF-유사 펩타이드와 반응성인 반면, BAT 123은 10,000㎍/m1의 항체 농도에서 조차 서열 동정 번호: 13의 RF-유사 펩타이드에 결합하지 않는다.
경쟁적 검정에 있어서, 모노클로날 항체 NM-01, F58/H3 및 P4/D10의 결합은 각각의 중첨된 ⅢB루우프 펩타이드(서열 동정 번호 : 7의 부위) IRlQRGPG (펩타이드 1), RIQRGPGR (펩타이드 2), IQRGPGRA (펩다이드 3), QRGPGRAF (펩타이드 4), RGPGRAFV (펩타이드 5) 및 GPGRAFVT (펩타이드 6)의 존재하에 측정한다. 이 검정은 하기와 같이 수행한다. 재조합 ⅢBgp120 (PBS중 0.5㎍/ml) 100μ1를 Immuno 4 플레이트(Dynatech)상에서 피복하고 실온에서 밤새 배양한다. 다음 플레이트는 차단 완충액(PBS중 5% 정상 토끼 혈청) 250μ1으로 37℃에서 1시간 동안 차단시킨다. 모노클로날 항체 NM-01, F58/H3 및 P4/D10을 차단완충액으로 10㎍/m1까지 희석하고 6개의 ⅢB루우프 펩타이드 각각은 차단 완층액으로 100㎍/m1까지 희석한다. 다음 각각의 항체를 각각의 펩타이드와 1:1의 용적으로서 독립적으로 혼합시켜 최종 항체 농도가 5㎍/ml 및 펩타이드 농도가 50㎍/ml가 되게 한다. 항체 및 펩타이드의 혼합물을 실온에서 40분동안 배양한 후 검정용의 차단된, gp120-피복된 플레이트 상에서 웰(100μ1/웰)내로 이전시킨다. 대조군 웰은 펩타이드를 제외한 항체 5㎍/m1를 함유한다. 이 플레이트를 37℃에서 40분동안 배양한 후 세척 완충액(PBS중 0.005% 트윈-20)으로 4회 세척한다. 토끼 항-마우스/HRP 결합된 항체(100μl/웰)을 차단완층액 중에서 1:1000 희석하여 제2 항체로서 사용하여 37℃에서 1시간동안 배양한다. 다음 이 플레이트를 다시 세척하고 100μ1/웰의 TMB(테트라메틸 벤지딘)를 사용하여 발색시킨다. 100μ1/웰 H2SO4(0.36N)를 사용하여 발색을 정지시기고 이 플레이트를 450nm 내지 650nm에서 판독한다.
경쟁 검정의 결과는 제3도에 나타낸다. 이 검정에서, 펩타이드 4는 재조합 ⅢBgp120에 결합하는 모노클로날 항체 NM-01의 강력한 억제제인 반면, 펩타이드 3 및 4는 모노클로날 항체 F58/H3 결합의 강력한 억제제이고 펩타이드 2는 모노클로날 항체 P4/D10 결합의 강력한 억제제이다.
[실시예 4]
모노클로날 항체 NM-01은 역전사 효소 검정에 의해 측정된 HIV-1 생균주 MN. ⅢB및 RF, 및 p24 검정에 의해 측정된 HIV-1 균주 MN 및 ⅢB에 의한 H9 세포의 감염을 중화시키는 능력에 대해 평가한다.
역전사효소 및 p24 검정
모노클로날 항체 NM-01의 희석액을 96-웰 플레이트중의 40 TCID50의 MN 또는 100 TCID50의 ⅢB생 바이러스로 1.5시간동안 37℃에서 배양한다. 모노클로날 항체 0.5β(AIDS Research and Reference Reagent Program Catalog, National Institute of Allergy and Infectious Diseases)를 RT 연구에서 포지티브 및 네가티브 대조군으로서 사용하는데. 이것은 HIV-1ⅢB의 gp120에 결합한다. 그 다음에 H9 세포(2.5×104개)를 각 웰에 가하고 플레이트를 1시간동안 37℃에서 배양한다. H9 세포 현탁액을 RPMI 1640/15% FBS로 희석한 다음 24-웰 플레이트내 37℃에서 배양한다. 바이러스 생성은 문헌[참조: Poiesz et al.. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 77. pp. 7415-7419(1980)]에 따라 7일째에 수행한 역전사효소(RT) 검정에 의해, 그리고 5일째에 수행한 p24 검정(Dupont HIV-1 p24 Core Profile ELlSA)에 의해 측정한다. 2개 검정의 결과는 제4a도, 제4b도 및 제5도에 각각 나타나 있다.
모노클로날 항체 NM-01(제4a도에서 폐쇄된 원)은 10 내지 100㎍/m1의 농도에서, RT 검정에 의해 측정된 바와 같이 MN 생바이러스의 감염성을 완전히 중화시킨다. 더우기, 1㎍/ml 미만의 농도의 항체의 사용은 바이러스 감염성의 50% 억제(ID50)를 초래한다. 이러한 발견은 모노클로날 항체 0.5β를 사용한 경우의 검측가능한 중화의 부재와는 대조적이다(제4a도의 개방된 원). 모노클로날 항체 NM-01은 또한 약 0.1㎍/ml의 ID50에서 ⅢB생 바이러스를 중화시킨다(제4b도). 모노클로날 항체 0.5β는 모노클로날 항체 NM-01보다 약간 더 효과적으로 ⅢB를 중화시킨다(제4b도). 유사한 결과가 p24 검정에서 HIV-1 MN 및 ⅢB에 대해 수득된다(제5도 참조). 역전사효소 검정에서, 모노클로날 항체 NM-01은 또한 약 0.05㎍/ml의 ID50에서 RF 생 바이러스를 억제한다(제4c도).
이러한 데이터는 모노클로날 항체 NM-01이 HIV-1의 3개 이상의 상이한 균주의 감염성을 중화시킴을 시사해준다.
HIV-1 생균주 MN 및 ⅢB에 의한 H9 세포의 감염을 중화시키는 모노클로날 항체 F58/H3 및 P4/D10의 능력은 또한 모노클로날 항체 NM-01에 대해 상술한 바와같이 역전사효소 검정 및 p24 검정에 의해 측정한다. 이 검정의 결과는 제6a 및 제6b도 및 제7a 및 제7b도에 나타낸다. RT 검정에서 모노클로날 항체 NM-01은 10 내지 100㎍/m1의 농도에서 MN 생 바이러스의 감염성을 완전히 중화시킴이 다시 밝혀졌으며 1㎍/ml 미만의 농도에서 항체의 사용은 바이러스 감염성을 50% 억제한다(lD50)(제6a도에서 개방된 원 참조). 이 발견은 모노클로날 항체 F58/H3 및 P4/D10을 사용할때 검측가능한 중화의 부재와는 대조적이다(제6a도에서 폐쇄된 삼각형 및 개방된 삼각형 참조). ⅢB생 바이러스를 사용하는 RT 검정에서, 모노클로날 항체 NM-01은 대략 0.1㎍/ml의 ID50에서 바이러스를 중화시킨다(제6b도에서 개방된 원). 모노클로날 항체 F58/H3 및 P4/Dl0은 각각 약 1.1 및 1.2㎍/m1의 lC50으로서 모노클로날 항체 NM-01 보다 덜 효과적으로 ⅢB를 중화시킨다(참조: 제6b도). p24 검정에서 HIV-l MN 및 ⅢB를 사용하여 3개의 모노클로날 항체에 대해 유사한 결과를 수득한다(참조: 제7a도 및 제7b도).
[실시예 5]
역전사효소 및 p24 검정에서 입증된 생 HIV-1 감염성의 중화는 생 MN 및 ⅢB바이러스를 이용하는 MT-2 검정에서, 및 생 MN, ⅢB및 RF 바이러스를 이용하는 합포체 형성 검정에서 모노클로날 항체 NM-01의 효과를 연구함으로써 확장된다.
A. MT-2 검정
MT-2 검정은 특정 변형을 포함하여 문헌[참조: Richman, AIDS Research and Reference Reagent Program, Courier No. 90-01, pp. 6-9 (1990)]에 기술된 바와 같이 수행한다. 생 MN 및 ⅢB바이러스를 모노클로날 항체 NM-01의 희석액과 함께 96-웰 플레이트내에서 1.5시간동안 4℃에서 배양한다. MT-2 세포(8×105개)를 웰에 가하고 플레이트를 37℃에서 3일동안 배양한다. 그 다음에 문헌[참조: Mosmann. J. Immunol. Meth.. 65, pp. 55-63(1983) 및 Pauwels et al.. J. Virol. Meth.. 20, pp. 55-63 (1983)]에 따른 MTT 염료 환원을 수행하여 세포 생육성을 측정한다. MT-2 검정의 결과는 RT 및 p24 검정의 결과를 확인해주며 제8도에 기재되어 있고, 여기서 개방된 원은 ⅢB(100 TCID50)에 대한 값을 추적한 것이고 폐쇄된 원은 MN(40 TCID50)에 대한 값을 추적한 것이다.
모노클로날 항체 NM-01은 각각 2.0㎍/ml 및 0.1㎍/ml의 생 MN 및 ⅢB분리물의 감염성을 중화시킨다.
B. 합포제 형성 검정
결합 억제 검정은 문헌[참조: Johnson and Walker. Eds., Techniques in HIV-1 Research, Stockton Press, New York, NY, pp. 92-97 (1990)]에 이미 기술된 방법의 변형이다. 요약하면, MN 또는 ⅢB바이러스에 의해 만성적으로 감염된 H9세포를 모노클로날 항체 NM-01의 희석액으로 37℃에서 1시간동안 배양한다. 그다음에 C8166 세포를 각 웰에 가하고 37℃에서 2시간 동안 배양한다. 3개의 임파구 세포 직경을 초과하는 합포체 세포를 카운팅하고 항체 부재하에서 처리된 대조군 감염된 H9 세포용으로 수득된 것과 비교한다. 합포체 형성 검정의 결과는 또한 RT 및 p24 검정의 결과를 확인해주며 제9a도에 기재되어 있고, 여기서 개방된 원은 ⅢB(100 TCID50)에 대한 값을 추적한 것이고 폐쇄된 원은 MN(40 TCID50)에 대한 값을 추적한 것이다. 모노클로날 항체 NM-01은 2㎍/ml의 ID50에서 MN-감염된 H9 세포에 의한, 그리고 3㎍/m1의 ID50B-감염된 H9 세포에 의한 합포제 형성을 억제한다.
상응하는 합포체 형성 억제 결과는 WO 88/09181의 표 Ⅲ에 모노클로날 항체 BAT123에 대해 기재되어 있다. 25㎍의 모노클로날 항체 NM-01이 MN-감염된 세포에 의한 합포체 형성을 약 85% 억제하는 반면, 25㎍의 BAT123은 51%를 억제하는 것으로 보고되었으며, 25㎍의 NM-01은 ⅢB-감염된 세포에 의한 합포체 형성을 약 85% 억제하는 반면, BAT123은 77.8% 억제하는 것으로 보고되었다. 25㎍의 BAT123은 또한 RF-감염된 세포에 의한 합포체 형성을 51% 억제하는 것으로 보고되었다. 모노클로날 항체 NM-01은 또한 RF-감염된 세포에 의한 합포체 형성을 억제한다(제 9b도 참조). 상기 문단에 기술된 검정에서, 25㎍ 농도의 NM-01은 RF-감염된 세포에 의한 합포체 형성을 약 59% 억제한다. 모노클로날 항체 NM-01은 4㎍/ml의 ID50에서 RF-감염된 세포에 의한 합포체 형성을 억제한다.
이와 함께, 실시예 4 및 5의 역전사효소, p24, MT-2 및 합포체 형성 검정의 졀과는 모노클로날 항체 NM-01이 10㎍/ml 미만의 농도에서 다양한 HIV-1 균주의 결합 및 감염성을 중화시킨다는 것을 시사해준다.
[실시예 6]
모노클로날 항체 NM-01이 gp120 V3루우프의 부위에 결합함으로써 HIV-l MN 및 ⅢB의 감염성을 차단한다는 것을 확인하기 위해, 항체를 사용하여 중화를 차단시키는 V3루우프 펩타이드 능력에 대해 시험한다.
모노클로날 항체 NM-01은 MN, ⅢB및 Z6 균주의 V3루우프에 상응하는 펩타이드(펩타이드의 서열은 상기 표 4에 주어진 바와 같다)의 다앙한 농도로 37℃에서 30분동안 배양한 다음 100 TCID50의 ⅢB생 바이러스를 가한다. 그 다음에 H9 세포를 1시간동안 가하고 실시예 4에서 기술된 바와 같이 7일 동안 완전배지에서 세포를 성장시킨 후 RT 활성을 측정한다. 검정의 결과는 제10도에 나타나 있다.
모노클로날 항체 NM-01이 최저농도의 펩타이드에서 ⅢB감염성을 완전히 중화시키는 반면, 이러한 효과는 증가된 농도의 MN(폐쇄된 원) 및 ⅢB(개방된 원) 루우프 펩타이드를 사용한 예비 배양에 의해 진보적으로 차단된다. 모노클로날 항체 NM-01에 의해 인지되는 아미노산 서열을 갖지 않는 유사한 농도의 Z6 균주의 V3루우프에 상응하는 펩타이드(폐쇄된 다이아몬드)를 사용한 경우 효과는 검측되지 않는 다. 이러한 결과는 모노클로날 항체 NM-01이 gp120 V3도메인의 특정 부위와 반응함으로써 HIV-1의 감염성을 차단함을 시사해준다.
[실시예 7]
모노클로날 항체 NM-01이 보체 경로를 활성화시킬 수 있는지 그리고 HIV-1 비리온을 잠재적으로 파괴시킬 수 있는지에 대한 연구가 또한 수행된다. 토끼 혈청을 보체 공급원으로서 사용한다.
모노클로날 항체 NM-01 및 보체를 사용한 HIV-1의 분해
HIV-1 ⅢB균주로 감염된 H9 세포는 세포독성 배지(Cederlane Lab. Ltd.)에서 세척한다. 이 세포를 40㎍/ml의 모노클로날 항체 NM-01의 존재하에서 또는 부재하에서 세포독성 배지중에 재현탁시킨다. 4℃에서 2시간동안 배양한후, 토끼보체(저-독성-MA ; Cedarlane Lab. Ltd.)를 1:6의 희석액으로 가한다. 세포 현탁액을 4℃에서 20분동안 배양한 다음 37℃에서 45분동안 배양한다. 세포를 2% 글루타르 알데하이드/0.1M 포스페이트 완충액 및 1%/ 오스뮴 테트록사이드/0.1M 인산염 완충액으로 2중 고정시킨다. 에폭시 수지중에 끼워 넣은 후, 얇은 절편을 절단하고 우라닐 아세테이트 및 납 시트레이트로 이중 염색한다. 제11a도 및 제11b도, 제12a도 내지 제12f도 및 제13a도 내지 제13f도는 얇은 절편의 대표적인 전자 현미경 사진이다.
토끼 혈청 단독(제1lb도) 및 모노클로날 항체 NM-01 단독은 HIV-1의 형태에 대해 검측가능한 효과를 나타내지 않는다. 보체를 포함한 모노클로날 항체 NM-01로의 HIV-1의 노출은 파괴된 엔벨로프 및 상실된 전자 밀집 코어를 가진 많은 바이러스성 입자의 출현과 연관되어 있다(제1la도). 대표적 제제는 약 90% 파괴된 비리온을 나타내며, 이들중 대부분은 내부 코어가 상실되어 있다. 잔류하는 10% 비리온은 온전하거나 부분적으로 파괴된 외부 엔벨로프를 갖는다. 고배율 확대는 제12a도 내지 제12f도 및 제13a도 내지 제13f도 각각에서 성숙한 및 불완전한 바이러스 입자의 분해에 대한 일련의 현미경 사진에서 설명되는 바와같이 직접 분해에 의해 HIV-1의 파괴가 일어남을 시사해준다.
[실시예 8]
HIV-1 감염성에 대한 모노클로날 항체 NM-01 및 보체의 배합물의 효과를 측정하기 위해 다음 분석을 수행한다.
조직 배양물 감염성 용량의 측정
HIV-1ⅢB-감염된 H9 세포를 세포독성 배지(Cedarlane Lab. Ltd.)에서 2회 세척한 다음 2㎍/ml 모노클로날 항체 NM-01 또는 대조군 IgG2b를 함유하는 세포독성 배지중에 재현탁시킨다. 4℃에서 2시간동안 배양한 후, 샘플을 분할하고 토끼 보체 또는 열-불활성화된 토끼 혈청(Cedarlane Lab. Ltd.)을 1:6의 희석비로 가한다. 이 세포를 4℃에서 20분동안 배양한 다음 37℃에서 45분동안 배양하고, 배지로 세척하고 50% FBS/RPMI 1640 배지중에 재현탁시키고 진탕시킨다. 상등액 또는 바이러스성 분리물을 10배로 희석한 다음 연속적으로 2회 희석한 후 25μ1를 H9 세포에 가한다(1x105개 세포/ 25μ1). 37℃에서 3시간 배양한 후, 노출된 세포를 10% FBS/RPMI 164 배지로 희석하고 37℃에서 유지시킨다. 바이러스성 감염을 역전사효소 검정에 의해 6일후에 측정한다. 50%의 H9 세포 분취량(TCID50)에 대한 조직 배양물 감염성 용량은 50% 감염을 억제하는 희석액으로 측정한다. 표 5는 실험의 결과를 기재한 것이다.
[표 5]
모노클로날 항체 NM-01 단독은 HIV-1ⅢB의 감염성을 중화할 수 있는 반면, 모노클로날 항체 NM-01 및 보체 둘다를 처리하면 HIV-1ⅢB의 감염성을 10배 이상 감소시킨다. 사람 보체(사람 혈청의 형태)를 모노클로날 항체 NM-01과 함께 투여할 경우 유사한 효과가 또한 관측된다. 이러한 발견은 모노클로날 항체 NM-01 및 보체 둘다에 대한 HIV-1의 노출이 바이러스 감염성에서의 두드러진 감소와 관련이 있다는 것을 시사하며, 또한 HIV-1 치료법에서 모노클로날 항체 NM-01-조정된 보체-의존적 바이러스 분해에 대해 작용함을 지지해준다[참조 : Nakamura et al., AIDS Research and Human Retroviruses, 9(7), pp. 619-626(1993)].
[실시예 9]
모노클로날 항체 NM-01의 중쇄 및 경쇄의 가변성 영역의 DNA 서열을 주형으로서 하이브리도마 HB 10726 세포질성 RNA로부터 생성된 cDNA를 사용하여 PCR로 클로닝 한다. 그후 가면성 영역 DNA를 각각 M13mp18/mp19(Pharmacia, Milton, Keynes. UK)내로 삽입하고 서열 분석한다. NM-01 중쇄 및 경쇄 가변성 영역의 DNA 및 연역된 아미노산 서열은 서열동정번호: 15 및 16과 서열동정번호:17 및 18에 각각 주어져 있다. 서열동정번호: 15의 뉴클레오타이드 1-21 및 334-363은 NM-01 경쇄서열을 증폭시키는데 사용한 PCT 프라이머에 상응하며 서열동정번호: 17의 뉴클레오타이드 1-27 및 385-402는 NM-01의 중쇄 서열을 증폭하는데 사용한 PCR 프라이머에 상응한다. 모노클로날 항체 NM-01의 가변성 영역의 재서열분석으로 서열동정번호: 19 및 20과 서열동정번호: 21 및 22에 기술한 서열을 얻으며, 이는 각각 중쇄 가변성 영역의 DNA 및 연역된 아미노산 서열 및 경쇄 가변성 영역의 DNA 및 연역된 아미노산 서열이다. NM-01 경쇄 가변성 영역(VK) 아미노산 서열은 카벳(Kabat) 쥐의 카파 아그룹 Ⅲ과 가장 상동인것으로 측정되며; NM-01 중쇄 가변성 영역(VH) 아미노산 서열은 카벳 쥐의 중쇄 아그룹 IA의 구성원인 것으로 밝혀졌다.
NM-01 중쇄(서열동정번호: 20) 및 경쇄(서열동정번호: 22)의 아미노산 서열의 최소 120개 잔기는 또한 각각 제14도 및 제15도에 나타냈으며, 여기에서, 박스로 나타낸 아미노산은 항체의 결합특이성을 결정하는 항체의 상보적 결정 영역(CDR)이다. 제14도 및 제 15도에 나타낸 CDR은 카벳 등[참조: Kabat et al., Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5 th Edition, U. S. Department of Health and human Services, U. S. Government Printing Office (1991)]의 CDR 정의에 따라 선행 국제특허원 PCT/W092/07111에 나타낸 CDR과 관련지어 시프트시켰다. 제14도 및 제15도에서, 각각의 중쇄 또는 경쇄 아미노산 서열을 상기 리우(참조: Liou) 등이 보고한 바와 같이 모노클로날 항체 BAT123의 중쇄 및 경쇄 가변성 영역의 상응하는 아미노산 서열(서열동정번호: 23 및 24)과 비교하고, ECACC로부터 수득한 모노클로날 항체 F58/H3 및 P4/D10의 중쇄 및 경쇄 가변성 영역의 상응하는 아미노산 서열(서열동정번호: 25 및 26)과도 비교한다. 모노클로날 항체 F58/H3 및 P4/D10의 가변성 영역 아미노산 서열은 동일한 것으로 나타났다.
NM-01의 중쇄 가변성 영역은 전체 120개의 아미노산중 46개의 아미노산이 BAT-123과 다르다. 이들 두 항체의 경쇄 가변성 영역은 23개 아미노산이 상이하다. 중요하게도, NM-01 분자의 중쇄(V-H)중 3개의 CDR이 서열상 BAT-123과는 약 41 내지 90%가 상이하나, 경쇄(V-L)의 3개 CDR의 서열은 NM-01과 비교하여 약 29 내지 47%가 상이하다.
NM-01의 중쇄 가변성 영역은 F58/H3 및 P4/D10의 가변성 영역과는 전체 120개의 아미노산중에서 103개의 아미노산이 상이하다. NM-01 분자의 중쇄(V-H)중 3개의 CDR은 F58/H3 및 P4/D10의 CDR과 서열상 약 86 내지 100% 상이하나, 경쇄(V-L)중 3개 CDR 서열은 약 13 내지 19%가 상이하다.
따라서, BAT123, F58/H3 및 P4/D10의 1차 구조와 비교하여 NM-01의 1차 구조분석은 NM-01이 신규한 항체임을 확인시켜준다.
[실시예 10]
서열동정번호: 19 및 21에 나타낸 DNA 서열 정보에 근거하여, NM-01 항체의 키메릭 및 사람화/재조합 버전을 제조한다. NM-01의 키메릭 버전을 생성시키기 위해 문헌[참조: Orlandi et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 86, pp. 3833-3837(1989)]의 방법을 사용한다. 사람화 버전은 문헌[참조: Tempest et al., BIO/TECHNOLOGY, 9, pp. 266-271, (1991) 및 Riechmann et al., Nature, 322, pp. 323-327(1988)]의 CDR-그라프트법과 유사한 방법으로 제조한다.
A. 키메릭 항체 생산
NM-01 가변성 영역을 두 단계로서 포유동물 발현 벡터 내에서 클로닝시켜 쥐 가변성 영역과 사람불변 영역을 갖는 키메릭 항체를 생산케한다. 먼저, 가변성 영역 유전자의 5' 및 3' 말단에 대해 특이적인 프라이머를 사용하고 제한 부위를 혼입시켜 완전하게 서열 분석된 VH 또는 VK를 실시예 9에 기술한 NM-01 M13mp18/mp19 클론으로부터 증폭시켜 생성되는 증폭된 단편이 벡터 M13VHPCR1 또는 M13VKPCR1[참조: Orlandi et al., 상기 참조]로 전달되도록 한다. 이것은 불변 영역 유전자상에 끼워넣기 위해 가변성 영역을 정확한 내용으로 프로모터 및 시그날 펩타이드 유전자 뒤쪽에 위치하도록 한다. 제2 단계에서, 프로모터, 시그날 펩타이드 및 가변성 영역(VH 또는 VK)을 암호화하는 서열을 포함하는 M13 삽입체를 RF DNA로부터 절단해내고 각각 적절하게 사람 IgG1(벡터 pSV-gpt) 또는 카파(벡터 pSV-hyg) 불변 영역 유전자를 함유하는 포유동물 발현 벡터내로 클로닝시킨다.
키메릭 NM-01 경쇄 및 중쇄를 암호화하는 플라스미드를 YB2/0 랫트 골수종세포(ATCC CRL 1662)내로 공감염시킨 후 이를 중쇄 발현 벡터상에서 발견되는 크산틴 구아닌 포스포리보실 전이효소(gpt) 유전자의 존재에 대해 선별한다. 상등액을 사람 IgG 존재에 대해 스크리닝하고 항체를 분비하는 세포를 증식시킨다. 키메릭 항체를 NM-01 MuVH/MuVK로 명명한다.
B. 사람화 항체의 생산
사람 가변성 영역 주형의 부위-지시된 돌연변이유발로써 CDR-조직이식을 수행한다. NM-01 CDR의 CDR-조직이식용으로 선별된 사람 가변성 영역 유전자는 NEWHVH[참조: Saul et al., J. Biol. Chem., 253, pp. 585-597(1978)] 및 REI VK[참조: Epp et al., Eur. J. Biochem., 45, pp. 513-524(1974)]이다.
쥐 CDR외에, 첫 번째 CDR 전에, 제16도의 위치 27-30에서의 4개의 쥐의 아미노산 잔기 및 제16도에서 위치 73에서의 쥐 아르기닌(카벳 위치 71)은 사람화 NM-01 VH(HuVH로 나타냄)중에 포함된다. 과가변성은 아니지만, 첫 번째 CDR 전에 4개의 잔기는 과가변성 루우프 배위에 영향을 나타내는 것으로 밝혀졌다[참조: Chothia et al., J. Mol. Biol., 196, pp. 901-917(1987)]. 카벳 위치 71에서 잔기는 CDR1 및 2의 루우프 사이에 패킹되는 것으로 밝혀졌으며 CDR 2의 배위 결정에 중요한 것으로 밝혀졌다[참조: Tramontano et al., J. Mol. Biol. 215, pp. 175-182(1990)].
NM-01 HuVK의 두 버전은, 제17도에서 위치 75에 쥐 페닐알라닌을 갖는 CDR-조직이식된 버전(HuVK) 및 변이체 CDR-조직 이식된(HuVKF) 버전을 포함하도록 제조된다. 이 위치에서 아미노산의 측쇄는 CDR1의 배위에 영향을 주는 것으로 나타났으며[참조: Chothia et al., 상기 참조] 쥐 잔기의 포함은 다른 사람화 항체의 결합능에 양성적인 영향을 끼치는 것으로 나타났다[참조 : Foote et al., J. Mol. Biol., 224. pp. 487-499(1992)].
NM-01 HuVH, HuVK 및 HuVKF의 DNA 및 연역된 아미노산 서열은 각각 서열동정번호 : 27 및 28 ; 29 및 30 및 31 및 32에 나타낸다. NM-01 사람화 가변성 영역은 다음과 같은 사람 경쇄 또는 중쇄 가변성 영역 유전자를 함유하는 M13 파아지로부터 생선된 것이다.
사람 중쇄 또는 경쇄 가변성 영역 유전자를 함유하는 M13 파아지를 이. 콜라이 RZ1032(dut_ung_)에서 생육시켜 티민 대신에 우라실을 함유하는 단쇄 주형 DNA를 제조한다. ½㎍의 주형 DNA를 1pmol의 올리고뉴클레오타이드와 혼합하고 이를 삽입체 DNA의 M13주형 하류에 어닐링시킨다. 쥐 잔기를 암호화하는 돌연변이시킨 올리고뉴클레오타이드를 20μl의 40mM 트리스-HCl pH 7.5, 20mM MgCl2, 50mM NaCl중에서 80℃로 5분간 가열한 후 실온까지 서서히 냉각시켜 주형에 어닐링시킨다.
초기 중쇄 가변성 영역 PCR 반응에서 사용된 돌연변이시킨 올리고뉴클레오타이드는 아래와 같으며;
VH 올리고 CDR 1 (서열동정번호 : 33)
여기서, 올리고뉴클레오타이드는 아미노산(서열동정번호 : 28 및 제16 도중의 서열 HuVH의 아미노산 24-41)를 암호화하는 DNA의 역 보체이며, 밑줄친 아미노산은 다음의 주형 가변성 영역 서열중에 도입시킨 쥐 잔기이고;
VH 올리고 CDR 2 (서열동정 : 34)
여기서, 올리고뉴클레오타이드는 아미노산(서열동정번호 : 28 및 제16도중의 서열 HuVH의 아미노산 47-71)을 암호화하는 DNA의 역보체이며, 밑줄친 아미노산은 다음의 주형 가변성 영역 서열중에 도입시킨 쥐 잔기이다.
VH 올리고 CDR 3 (서열동정번호 : 35)
여기서, 올리고뉴클레오타이드는 아미노산(서열동정번호 : 28 및 제16도중의 서열 HuVH의 아미노산 94-111)를 암호화하는 DNA의 역 보체이고 밑줄친 아미노산은 주형 가변성 영역 서열중에 도입된 쥐 잔기이다.
경쇄 가변성 영역 돌연변이 유발에 사용된 사람 주형은 실제로 REI와 관련은 있으나 동일하지는 않은 골격 영역을 암호화하며 돌연변이 유발 반응은 이같은 모순점을 제거할 뿐만 아니라(올리고뉴클레오타이드 활용은 기술하지 않음) NM-01 CDR을 도입한다. 본원에서 상세하게 논의될 유일한 모순점은 REI 서열에는 존재하지 않는 페닐알라닌 잔기를 암호화하는, 주형의 위치 71에 있다. 이 잔기는 NM-01 HuVKF중에 보유되고 있으나(제17도의 HuVKF의 아미노산 75를 참조) NM-01 HuVK(제17도중 HuVK의 아미노산 75 참조)에 있어서는 다음에 주어지는 서열의 올리고뉴클레오타이드 REI Y71을 사용하여 REI 잔기로 바꾼다:
VK 올리고 REI Y71 (서열동정번호 : 36)
여기서, 올리고뉴클레오타이드는 아미노산 GTDYTFT(서열동정번호 : 32 및 제17도중의 서열 HuVK의 아미노산 72-78)을 암호화하는 DNA의 역 보체이다. 이 프라이머는 NM-01 HuVKF를 생성시키는 돌연변이유발 반응에는 포함되지 않는다.
두 HuVK 및 HuVKF 경쇄 가변성 영역 모두에 대해, 쥐 NM-01 CDR1 및 주형 CDR1은 동일하며, 이에 따라 CDR1의 변경은 필요치않게 된다. 마우스와 주형 CDR2 및 3사이에서의 한정된 차이는 주형 CDR 2 및 3의 변경을 필요로하며 이용된 돌연변이시킨 올리고뉴클레오타이드는 다음과 같다.
VK 올리고 CDR 2 (서열동정번호 : 37)
여기서, 올리고뉴클레오타이드는 아미노산(서열동정번호 : 30 및 제17도중의 서열 HuVK의 아미노산 50-57)을 암호화하는 DNA의 역 보체이며 밑줄친 아미노산은 다음의 주형 가변성 영역 서열에 도입시킨 쥐 잔기이다.
VK 올리고 CDR 3 (서열동정번호 : 38)
여기서 올리고뉴클로에타이드는 아미노산(서열동정번호 : 30 및 제17도중의 서열 HuVK의 아미노산 91-102)를 암호화하는 DNA의 역 보체이며 밑줄친 아미노산은 주형 가변성 영역 서열내에 도입된 쥐 잔기이다.
NM-01 HuVH를 생성시키기 위해, VH 올리고 CDR1, CDR2 및 CDR3를 사람 NEWH 주형에 어닐링시킨다. NM-01 HuVK를 생성시키기 위해, VK 올리고 REI Y71, VK 올리고 CDR2 및 VK 올리고 CDR3를 사람 주형 DNA에 어닐링시킨다. NM-01 HuVKF를 생성시키기 위해, VK 올리고 CDR2 및 VK 올리고 CDR3를 어닐링시킨다. 그후, 동일 완충액내에서, dATP, dCTP, dGTP, 및 dTTP를 최종 농도 250μM까지 가하고, DTT를 7mM로 가하며, ATP를 1mM로 가하고, 0.5 단위의 T7 DNA 폴리머라제(United States Biochemical. Cleveland, OH) 및 0.5 단위의 T4 DNA 리가제(Life Technologies. Paisley. UK)를 가한다. 30μl 반응물을 실온에서 1시간 배양하고 DNA를 에탄올 침전시킨다. 모 주형 쇄를 닉크(nick)하기 위해 DNA를 50μl 60mM 트리스 HCl pH 8.0, 1mM DETA. 1mM DTT, 1단위의 우라실 DNA 글리코실라제를 함유하는 0.1mg/ml BSA(Boethringer Mannheim, Lewis, Sussex, UK)중에 용해시킨 다음 NaOH를 0.2M 까지 가하기전에 37℃에서 1시간 배양하고 실온에서 5분간 계속 배양한다. DNA를 에탄올로 다시 침전시켜 단편화된 모 DNA를 제거한다. 돌연변이 DNA를 20μl TE중에 용해시키고 가변성 영역 삽입체를 M13 전향 및 프라이머를 사용하여 PCR로 증폭시킨다. 이 PCR 반응혼합물은 50μl중 2μl 돌연변이 DNA, 0.5μM의 각 프라이머, 250μM의 각각의 dATP, dCTP, dGTP 및 dTTP, 10mM 트리스 HCl pH 8.3, 50mM KCl, 1.5mM MgCl2, 0.01% 트윈-20, 0.01% 젤라틴, 0.01% NP4O 및 2단위의 터말라제(IBI, Cambridge, UK)를 함유한다. 증폭은 94℃에 30초: 50℃에 30초; 72℃에서 1분, 끝으로 72℃에서 5분간 15회 주기로 처리하여 완료한다. 생성물 DNA를 HindⅢ-BamHI 단편으로서 M13mp19내로 클로닝시키고 대표적인 클론을 서열분석한다. 최초에는, 중쇄에 대해, 쥐의 CDR1 및 3을 갖는 부분적 돌연변이체만이 수득된다. 쥐 CDR2를 지닌 돌연변이체를 수득하기 위해 주형으로서 부분적으로 돌연변이된 DNA 및 VH 올리고 CDR2를 써서 상기 반응을 반복한다. 생성된 생성물 DNA를 HindⅢ-BamHI(단편으로서 M13mp19내로 클로닝시키고 대표적 클론을 서열분석한다.
그후 정확한 NM-01 HuVH, HuVK 및 HuVKF를 암호화하는 HnidⅢ-BamHI 단편을 각각, 절절하게 사람 IgG1(벡터 pSV-gpt) 또는 카파(벡터 pSV-hyg) 불변 영역 유전자를 암호화하는 서열의 발현 벡터 상류내로 클로닝시킨다. 생성된 벡터를 완전하게 사람화 NM-01 항체(HuVH/HuVK, ECACC 93082022로 기탁된 YB2/0 세포주에 의해 생산; HuVH/HuVKF, ECACC 93082019로 기탁된 YB2/0 세포주에 의해 생산)를 생성하는 세포주를 생성하기 위해 YB2/0 또는 NSO 세포(ECACC 85110503)에 공-전기영동시키거나 또는 상술한 적절한 키메릭 NM-01 중쇄 또는 경쇄를 암호화하는 벡터와 함께 개별적으로 전기영동시켜 믹스-앤드-매치 항체를 생성하는 세포주를 생성시키며 여기에서 쇄중의 하나는 키메릭이다(즉, MuVH/HuVKF). 항체는 단백질 A 아가로스 친화성 크로마토그래피로 정제한다.
사람화 NM-01 항체의 4가지 다른 버전을 상술한 방법으로 제조한다. 제1 HuVHM/HuVK(ECACC 93082020의 YB2/0 세포주에 의해 생산) 및 제2 HuVHM/HuVKF(ECACC 93082021의 YB2/0 세포주에 의해 생산) 는 HuVH의 위치 48에 메티오닌을 포함한다. 제3 버전 HuVHS/HuVK(ECACC 93082023의 YB2/0 세포주에 의해 생산) 및 제4 버젼HuVHS/HuVKF(ECACC 93082018의 YB2/0 세포주에 의해 생산) 는 HuVH의 위치 93에 세린을 포함한다. 이들 사람화 항체는 포함된 경쇄에 따라, NM-01 HuVH/HuVK 항체 또는 NM-01 HuVH/HuVKF 항체와 유사한 항원 결합특성을 갖는다. NM-01 HuVH/HuVK 및 NM-01 HuVH/HuVKF의 항원 결합 특성은 후술한 바와 같다.
C. 키메릭 및 사람화 항체 활성
gp120에 대한 사람화 NM-01 항체의 결합은 경쟁 검정에서 쥐 NM-01의 결합과 비교하여 평가한다. 플레이트를 재조합 gp120(American Biotechnologies Inc., Cambridge MA(5ng/웰))으로 피복하고 5%의 정상 염소 혈청(Life Technologies)으로 차단한다. 사람화 NM-01 항체, 키메릭 NM-01 항체, 쥐 NM-01 항체 또는 네가티브 대조용 사람화 항체의 희석액(10-1000ng/100μl)를 웰당 가하고, 플레이트를 37℃에서 30분간 배양한다. 바이오티닐화한 쥐 NM-01 항체(웰당 500ng/50μl PBS)를 가하고 1시간 동안 계속 배양한다. 플레이트를 PBS-0.05% 트윈 20으로 세척한다. HRPO-스트렙트아비딘(Sera-Lab Limited, Crawley Down, Sussex, uk; 웰당 40ng/100μl PBS)을 가하고 플레이트를 30분간 배양한다. 그후 플레이트를 세척하고 o-페닐디아민 존재하에 5분간 또는 색 변화가 나타날때까지 배양한다. 492nm에서 흡광도를 측정한다.
사람화 NM-01 항체 HuVH/HuVK는 표지한 쥐 NM-01 항체가 gp120에 결합하는 것을 차단하는데 있어서 쥐 NM-01 항체 만큼 효과적이고/활성적이다. 사람화 NM-01 항체 HuVH/HuVKF는 쥐 항체보다 대략 4배 이상 강력하다. 키메릭 NM-01 항체는 쥐 NM-01 항체에 비해 덜 강력하다.
키메릭 및 사람화 NM-01 항체는 또한 RT, p24 및 합포체 억제 감정으로 HIV-1 중화 활성에 대해 평가한바 있다. 필수적으로 전술한 실시예에 기술한 바와 같이 수행한, 이 분석은 다음과 같다.
RT 검정에서, 항체를 15% 송아지 태아 혈청으로 RPMI 1640 배지중에서 연속 희석시킨다. 항체 희석액을 100 조직 배양물 50% 감염성 용량(TCID50)의 MN 또는 ⅢB바이러스와 함께 96-웰 플레이트내 4℃에서 2시간 배양한다. 그후 H9 세포(2.5x105세포)를 각 웰에 가하고 플레이트를 37℃에서 추가로 1시간 배양한다. 그후 H9 세포 현탁액을 2ml RPMI 1640 배지/15% 송아지 태아 혈청중에 희석시키고 37℃의 24-웰 플레이트 중에서 배양한다. 7일째에 RT 검정으로 바이러스 생성을 측정한다. 검정 결과는 제18도(MN) 및 제19도(ⅢB)에 나타낸다.
p24 검정에서, H9 세포를 MN 또는 ⅢB바이러스(100xTCID50) 및 모노클로날 항체와 6 내지 8일간 배양한다. 조직배양 상등액중 p24 항원의 존재는 제조자(Du Pont-NEN)의 지시된 방법에 따라, HIV-1 p24 코어 프로필 효소-결합된 면역 흡착검정(ELISA)으로 정량한다. 간단하게, 항원-항체 복합체를 양고추냉이 퍼옥시다제(HRP) 접합물로 프로브시킨다. 최종 생성물을 황색의 밀도로 정량하는데, 이는 포획된 HIV-1 p24 코어 항원의 양에 직접 비례한다. 마이크로플레이트 ELISA 판독기를 써서 450nm에서의 색 변화를 판독하고 검정 결과는 제20도(MN) 및 제21도(ⅢB)에 나타냈으며 여기에서 모노클로날 항체 2990.7은 네가티브 대조군이다.
끝으로, 합포체 검정에서, MN 바이러스에 의해 만성적으로 감염된 H9 세포를 37℃에서 1시간동안 모노클로날 항체 NM-01 희석액과 함께 배양한다. 그후 지시세포주 C8166으로 부터의 세포를 가하고(3x104세포/웰) 이 플레이트는 37℃에서 추가로 2 내지 12시간 배양한다. 3개의 임파구 세포 직경 보다 큰 합포체를 카운팅하고 항체 부재하에 대조감염된 H9 세포에서 수득한것과 비교한다. 제22도는 검정결과를 나타내며 여기에서 항체 2990.7은 네가티브 대조군이다.
이들 세가지 검정 결과는 사람화 NM-01 항체 HuVH/HuVKF가 HIV-1의 MN 및 ⅢB분리물을 중화시키는데 있어 쥐 NM-01 모노클로날 항체보다 동등하거나 더 효과적임을 나타내주고 있다.
본 발명은 바람직한 양태의 견지에서 기술되었지만, 변경 및 개선이 당해 분야의 숙련가에게 자명할 것이다. 그러므로, 첨부된 특허청구범위는 청구된 본 발명의 영역내에 있는 모든 이러한 동등한 변형을 포함하는 것으로 의도된다.
서열목록
(1) 일반정보
(ⅰ) 출원인 : 오노 쓰네야
(ⅱ) 발명의 명칭 : HIV 면역치료제
(ⅲ) 서열수 : 38
(ⅳ) 서신 주소 :
(A) 수신인 : 마샬, 오툴, 저스틴, 머레이 앤드 보룬
(B) 거리 : 사우스 워커 드라이브 233 시어스 타워 6300
(C) 시 : 시카고
(D) 주 : 일리노이
(E) 국가 : 미합중국
(F) 우편번호 : 60606
(ⅴ) 컴퓨터 판독형
(A) 매체 타입 : 플로피 디스크
(B) 컴퓨터 : IBM PC 호환성
(C) 운용 시스템 : PC-DOS/MS-DOS
(D) 소프트웨어 : 페이턴트인 릴리즈 #1.0, 버전 #1.25
(ⅵ) 현재 출원 데이터:
(A) 출원번호 :
(B) 출원일 :
(C) 분류 :
(ⅶ) 선행 출원 데이터 :
(A) 출원번호 : PCT/US92/07111
(B) 출원일 : 1992년 8월 24일
(ⅶ) 선행 출원 데이터 :
(A) 출원번호 : US 08/039.457
(B) 출원일 : 1993년 4월 22일
(ⅷ) 변호사/대리인 정보 :
(A) 성명 : 마이클 에프. 보룬
(B) 등록번호 : 25,447
(C) 참조/소송 번호 : 31629
(ⅸ) 전자통신정보
(A) 전화 : (312) 474-6300
(B) 팩시밀리 : (312) 474-0448
(C) 텔렉스 : 25-3856
(2) 서열 동정 번호 : 1에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 4개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 1:
(2) 서열 동정 번호 : 2에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 15개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 2:
(2) 서열 동정 번호 : 3에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 15개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 3:
(2) 서열 동정 번호 : 4에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 15개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 4:
(2) 서열 동정 번호 : 5에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 15개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 5:
(2) 서열 동정 번호 : 6에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 14개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 6:
(2) 서열 동정 번호 : 7에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 19개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 7:
(2) 서열 동정 번호 : 8에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 20개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 8:
(2) 서열 동정 번호 : 9에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 20개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 9:
(2) 서열 동정 번호 : 10에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 23개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 10:
(2) 서열 동정 번호 : 11에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 22개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 11:
(2) 서열 동정 번호 : 12에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 22개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 12:
(2) 서열 동정 번호 : 13에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 15개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 13:
(2) 서열 동정 번호 : 14에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 20개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 펩타이드
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 14:
(2) 서열 동정 번호 : 15에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 402개 염기쌍
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA
(ⅹⅰ) 특징 :
(A) 명칭/키이 : CDS
(B) 위치 : 1..402
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 15:
(2) 서열 동정 번호 : 16에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 134개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 단백질
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 16
(2) 서열 동정 번호 : 17에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 363개 염기쌍
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA
(ⅸ) 특징 :
(A) 이름/키이 : CDS
(B) 위치 : 1..363
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 17:
(2) 서열 동정 번호 : 18에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 121개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 단백질
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 18:
(2) 서열 동정 번호 : 19에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 363개 염기쌍
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA
(ⅹⅰ) 특징 :
(A) 이름/키이 : CDS
(B) 위치 : 1..363
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 19
(2) 서열 동정 번호 : 20에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 121개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 단백질
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 20:
(2) 서열 동정 번호 : 21에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 363개 염기쌍
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA
(ⅹⅰ) 특징 :
(A) 이름/키이 : CDS
(B) 위치 : 1..363
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 21:
(2) 서열 동정 번호 : 22에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 121개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 단백질
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 22:
(2) 서열 동정 번호 : 23에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 144개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 단백질
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 23:
(2) 서열 동정 번호 : 24에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 120개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 단백질
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 24:
(2) 서열 동정 번호 : 25에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 120개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 단백질
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 25:
(2) 서열 동정 번호 : 26에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 120개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 단백질
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 26:
(2) 서열 동정 번호 : 27에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 826개 염기쌍
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA(게놈성)
(ⅹⅰ) 특징 :
(A) 이름/키이 : CDS
(B) 위치 : 261..620
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 27:
(2) 서열 동정 번호 : 28에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 120개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 단백질
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 28:
(2) 서열 동정 번호 : 29에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 632개 염기쌍
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA(게놈성)
(ⅹⅰ) 특징 :
(A) 이름/키이 : CDS
(B) 위치 : 261..593
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 29:
(2) 서열 동정 번호 : 30에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 111개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 단백질
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 30:
(2) 서열 동정 번호 : 31에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 632개 아미노산
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA(게놈성)
(ⅹⅰ) 특징 :
(A) 이름/키이 : CDS
(B) 위치 : 261..593
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 31:
(2) 서열 동정 번호 : 32에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 111개 아미노산
(B) 유형 : 아미노산
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : 단백질
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 32:
(2) 서열 동정 번호 : 33에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 54개 염기쌍
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 33:
(2) 서열 동정 번호 : 34에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 76개 염기쌍
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 34:
(2) 서열 동정 번호 : 35에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 54개 염기쌍
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 35:
(2) 서열 동정 번호 : 36에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 25개 염기쌍
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 36:
(2) 서열 동정 번호 : 37에 대한 정보
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 26개 염기쌍
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 37:
(2) 서열 동정 번호 : 38에 대한 정보 :
(ⅰ) 서열 특성 :
(A) 길이 : 38개 염기쌍
(B) 유형 : 핵산
(C) 본쇄형 : 일본쇄
(D) 위상 : 선형
(ⅱ) 분자형 : DNA
(ⅹⅰ) 서열 기술 : 서열 동정 번호 : 38:

Claims (4)

  1. 서열 동정 번호 : 1에 기술된 서열로 필수적으로 구성된 HIV-1 gp120 또는 gp160의 아미노산 서열에 특이적으로 결합하는 능력과 역전사효소, p24, MT-2 및 합포체(syncytium) 형성 검정에서 HIV-1 생(live) 균주 MN 및 ⅢB에 의한 H9 세포의 감염을 시험관내에서 중화시키는 능력에 의해 특징화되며, A.T.C.C. 수탁번호가 HB 10726인 하이브리도마 세포주에 의해 생산된 모노클로날 항체 NM-01의 하나 이상의 상보성 결정 영역의 아미노산 서열을 포함하는 사람 항체 가변성 영역으로 필수적으로 이루어진 항체.
  2. 제1항에 따른 항체를 암호화하는 폴리뉴클레오타이드.
  3. 항체를 발현시키는 방식으로 제2항에 따른 폴리뉴클레오타이드로 안정하게 형질전환된 숙주 세포.
  4. 적합한 영양 배지중에서 제3항에 따른 숙주 세포를 성장시키고 이 숙주세포 또는 이 숙주세포의 성장 배지로부터 항체를 분리시킴을 포함하는, 제1항에 따른 항체의 제조방법.
KR1019940701350A 1992-08-24 1993-08-24 사람 면역 결핍 바이러스 면역치료제 KR100282576B1 (ko)

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US8/039,457 1993-04-22
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