JPWO2020162485A1 - 抗ウイルス剤及びウイルスの除去方法 - Google Patents
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Abstract
Description
項1
金属粒子を含有する抗ウイルス剤であって、
前記金属粒子が白金粒子を含有する、抗ウイルス剤。
項2
前記金属粒子は、さらに銀粒子を含有する、項1に記載の抗ウイルス剤。
項3
前記白金粒子100質量部あたり、前記銀粒子が0.01〜1000質量部含まれる、項2に記載の抗ウイルス剤。
項4
前記金属粒子が水系溶媒に分散している、項1〜3のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤。
項5
前記金属粒子の総量は、前記水系溶媒の全質量に対して0.01〜1000質量ppmである、項4に記載の抗ウイルス剤。
項6
対象ウイルスがノンエンベロープウイルスである、項1〜5のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤。
項7
対象ウイルスが単純ヘルペスウイルス、アデノウイルス及びインフルエンザウイルスからなる群より選ばれる1種以上を含む、項1〜5のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤。
項8
医療器具に使用される、項1〜7のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤。
項8−1
項1〜7のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤の医療器具への使用。
項9
前記医療器具が眼科用である、項1〜8のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤。
項9−1
項1〜8のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤の眼科用医療器具への使用。
項10
項1〜9のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤を使用する、ウイルスの不活性化方法。
硝酸銀0.104gと、クエン酸三ナトリウム二水和物0.130gとを980mLのイオン交換水(25℃)に溶解させ、30分間撹拌し、銀錯体を含む水溶液を調製した。このように得られた銀錯体を銀粒子の前駆体とした。
合成例1−1で得られた分散液中の粒子のTEMを測定したところ、白金粒子と銀粒子が複合化した粒子の存在が確認された。また、当該複合粒子は、コアシェル構造を有する粒子であることがわかった。TEM画像に示されている各粒子の成分分析をエネルギー分散形X線分光法(EDS)によって行ったところ、コアシェル構造において、コアが銀粒子、シェルが白金粒子で形成されていることもわかった。なお、この成分分析では、TEM/EDS(HITACHI H−7100、加速電圧100kV)を使用した。
白金粒子と銀粒子を含む分散液中の金属粒子の含有量が120質量ppmであって、そのうち白金が100質量ppm、銀が20質量ppmとなるようにしたこと以外は、実施例1と同様の方法で水分散液を調製した。
0.354gの塩化白金酸カリウム(K2PtCl4)を50mLの純水に溶解して、塩化白金酸カリウム水溶液を調製した。別途、0.215gのクエン酸ナトリウムを50mLの純水に溶解し、クエン酸ナトリウム水溶液を調製した。上記の塩化白金酸カリウム水溶液50mLを900mLの純水に加えた後、上記のクエン酸ナトリウム水溶液50mLを加え、約5分間100rpmで撹拌して反応させた。その後、50%クエン酸水溶液約1.0mL滴下することで液のpHを4に調整し、さらに60分間撹拌することで、白金粒子を含む水分散液を得た。ゼータ電位測定装置で測定した白金粒子の粒子径は100nmであった。また、TEM/EDS(HITACHI H−7100、加速電圧100kV)にて測定した白金粒子中の白金の純度は100%であった。上記方法で得られた分散液の白金濃度をICP−MSで確認したところ、白金粒子濃度は166質量ppmであった。
0.262gの硝酸銀(AgNO3)を50mLの純水に溶解して硝酸銀水溶液を調製した。別途、0.215gのクエン酸ナトリウムを50mLの純水に溶解し、クエン酸ナトリウム水溶液を調製した。上記の硝酸銀水溶液50mLを900mLの純水に加えた後、上記のクエン酸ナトリウム水溶液を50mL加え、約5分間100rpmで撹拌して反応させた。その後、50%クエン酸水溶液約1.0mL滴下することで液のpHを4に調整し、さらに60分間撹拌することで、銀粒子を含む水分散液を得た。ゼータ電位測定装置で測定した粒子径は100nmであった。また、TEM/EDSにて測定した銀粒子中の銀の純度は100%であった。上記方法で得られた分散液の銀粒子濃度をICP−MSで確認したところ、銀粒子濃度は166質量ppmであった。
100mLの純水に0.026gのクエン酸ナトリウム・2水和物を溶解させ、50%クエン酸水溶液約0.6mL滴下することで液のpHを4に調整し、クエン酸ナトリウムの濃度が260質量ppmである水溶液を調製した。
合成例1−1で得た白金粒子と銀粒子を含む水分散液を準備した。なお、後記する抗ウイルス性試験では、必要に応じ、合成例3−1で調製したクエン酸ナトリウム水溶液を加えて4倍、16倍、64倍及び256倍に希釈した各希釈倍率のサンプル液を調製した。
合成例1−2で得た白金粒子と銀粒子を含む水分散液を準備した。なお、後記する抗ウイルス性試験では、必要に応じ、合成例3−1で調製したクエン酸ナトリウム水溶液を加えて4倍、16倍、64倍及び256倍に希釈した各希釈倍率のサンプル液を調製した。
合成例2−1で得た白金粒子を含む水分散液を準備した。なお、後記する抗ウイルス性試験では、必要に応じ、合成例3−1で調製したクエン酸ナトリウム水溶液を加えて4倍、16倍、64倍及び256倍に希釈した各希釈倍率のサンプル液を調製した。
純水を用いて、後記する抗ウイルス性試験を行った。
合成例3−1で調製したクエン酸ナトリウム水溶液を「ブランク」として用いて、後記する抗ウイルス性試験を行った。
合成例2−2で調製した銀粒子を含む水分散液をサンプル液として用いて、後記する抗ウイルス性試験を行った。
(単純ヘルペスウイルスに対する抗ウイルス性試験)
各実施例及び比較例で得たサンプル液を用いて、単純ヘルペスウイルスに対する抗ウイルス性試験を以下のように行った。この試験では、単純ヘルペスウイルス1型・VR−3株を使用した。ウイルス液(4.4×107pfu/mL)は−80℃で保存し、アッセイの際に溶かして使用した。
この反応液中のウイルス力価は、24穴培養プレートにて前培養したVero細胞(アフリカミドリザル腎細胞、理研セルバンク)を用いたプラークアッセイにて測定した。具体的には、前記細胞に前記反応液の希釈液を0.2mLずつ添加し、1時間、37℃のCO2インキュベータ内でウイルスを前記細胞に吸着させた。吸着後ウイルス液を除き、0.5%メチルセルロースを加えたMEM−CS2を重層した。このプレートを5%CO2、湿度100%、37℃のインキュベータで5日間培養した。培養後、10%ホルマリン液で固定し、0.25%クリスタルバイオレット染色液で染色、プラーク数を肉眼で計測した。
各実施例及び比較例で得たサンプル液を用いて、アデノウイルスに対する抗ウイルス性試験を以下のように行った。この試験では、血清型5型のアデノウイルスを使用した。ウイルス液(2.6×108TCID50/mL)は−80℃で保存し、アッセイの際に溶かして使用した。
この反応液中のウイルス力価は、96穴培養プレートにて前培養したA549細胞(ヒト気管上皮細胞、理研セルバンク)の感染後の細胞変性効果をTCID50値(50%組織培養感染価)として求めた。具体的には、前記細胞に前記反応液の希釈液を20μL添加し、5%CO2、湿度100%、37℃のインキュベータで7日間培養した。培養後、10%ホルマリン液で固定、0.25%クリスタルバイオレット染色液で染色した。各ウェルにウイルス感染による細胞変性効果が出現しているか否かを観察し、Behrens−Karber法により、50%のウェルでウイルス感染が起こったウイルス濃度(TCID50値)を計算した。
各実施例及び比較例で得たサンプル液を用いて、A型インフルエンザウイルスに対する抗ウイルス性試験を以下のように行った。この試験では、A型インフルエンザウイルス A/Aichi/2/68 (H3N2)株を使用した。ウイルス液(2.8×104pfu/mL)は−80℃で保存し、アッセイの際に溶かして使用した。
実施例1(白金粒子と銀粒子)、実施例3(白金粒子)、比較例1(純水)、比較例2(ブランク;クエン酸ナトリウム水溶液)及び比較例3(銀粒子)について、反応時間を変化させてウイルス不活化効果を確認した。
表1及び表2にはそれぞれ、実施例1(白金粒子と銀粒子)、実施例3(白金粒子)、比較例1(純水)、比較例2(ブランク;クエン酸ナトリウム水溶液)及び比較例3(銀粒子)における単純ヘルペスウイルス(表1)、アデノウイルス(表2)及びインフルエンザウイルス(表3)に対する抗ウイルス性試験の結果を示している。
次に、ブランク液では全く不活化されない単純ヘルペスウイルスとアデノウイルスを対象に、実施例3と実施例1について、反応時間を10分とし、実施例3と実施例1で準備した原液(水分散液)をクエン酸ナトリウム水溶液(比較例2)で希釈して、より低濃度におけるウイルス不活化効果を検討した。抗ウイルス性試験方法は実験1と同じである。
サンプル液の代わりに比較例1(純水)を用いた場合のウイルス力価をコントロール(100%)とし、コントロールに対するパーセンテージ(3回以上のアッセイの平均値)で示したのが表4及び表5である。表4が単純ヘルペスウイルス、表5がアデノウイルスに対する抗ウイルス性試験の結果を示している。
次に、実施例1(白金を100質量ppm、銀を66質量ppm含む分散液)と実施例2(白金を100質量ppm、銀を20質量ppm含む分散液)について、反応時間10分としてウイルス不活化効果を検討した。希釈倍率は単純ヘルペスウイルスでは16倍、アデノウイルスでは256倍とした。抗ウイルス性試験方法は実験1と同じである。
Claims (10)
- 金属粒子を含有する抗ウイルス剤であって、
前記金属粒子が白金粒子を含有する、抗ウイルス剤。 - 前記金属粒子は、さらに銀粒子を含有する、請求項1に記載の抗ウイルス剤。
- 前記白金粒子100質量部あたり、前記銀粒子が0.01〜1000質量部含まれる、請求項2に記載の抗ウイルス剤。
- 前記金属粒子が水系溶媒に分散している、請求項1〜3のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤。
- 前記金属粒子の総量は、前記水系溶媒の全質量に対して0.01〜1000質量ppmである、請求項4に記載の抗ウイルス剤。
- 対象ウイルスがノンエンベロープウイルスである、請求項1〜5のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤。
- 対象ウイルスが単純ヘルペスウイルス、アデノウイルス及びインフルエンザウイルスからなる群より選ばれる1種以上を含む、請求項1〜5のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤。
- 医療器具に使用される、請求項1〜7のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤。
- 前記医療器具が眼科用である、請求項1〜8のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤。
- 請求項1〜9のいずれか1項に記載の抗ウイルス剤を使用する、ウイルスの不活性化方法。
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