JPWO2018151135A1 - 精神疾患モデル動物およびその製造方法 - Google Patents
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Abstract
本発明は、精神疾患の非ヒトモデル動物を製造する方法であって、（ａ）非ヒト動物のカリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失させる段階を含む、方法に関する。本発明はまた、前記方法によって製造された精神疾患の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物、および前記動物から単離された組織または細胞に関する。本発明はさらに、前記動物を用いる、精神疾患の予防または治療薬のスクリーニング方法、被験物質の精神疾患への効能および／または有害性を評価する方法、ならびに精神疾患のバイオマーカーのスクリーニング方法に関する。
Description
本発明は、精神疾患モデル動物およびその製造方法に関する。本発明はまた、当該精神疾患モデル動物を用いた精神疾患の予防または治療薬のスクリーニング方法、当該予防または治療薬の効能および／または有害性を評価する方法、ならびに精神疾患のバイオマーカーのスクリーニング方法などに関する。
近年、日本国内での精神疾患患者数は大幅に増加しており、平成２６年には約３９６万人と報告されている。統合失調症、認知症、うつ病などの患者が比較的多いとされている。統合失調症は、およそ１００人に１人弱がかかる頻度の高い病気である。その症状は、妄想および幻覚などのいわゆる「陽性症状」と、無表情、無気力、活動低下、注意力欠陥、会話の鈍化、認知障害、ひきこもりなどのいわゆる「陰性症状」とに分類される。統合失調症の原因は未だ解明されていない。認知症は、記憶、思考、理解、計算、学習、言語、判断などの知的能力に障害が見られる状態であり、生活・社会活動全般に支障をきたす。うつ病とは、気分の落ち込みなどの抑うつ状態が続き、生活・社会活動全般に支障をきたす状態を指す。したがって、統合失調症、認知症、うつ病をはじめとする精神疾患の原因の解明、ならびに有効な治療法および予防法の確立が望まれている。これまでに、精神疾患モデル動物がいくつか報告されている（特許文献１および２）。しかしながら、これらの精神疾患は遺伝要因とストレスなどの環境要因の組み合わせにより発症する複合疾患であり、複数の適切なモデル動物が有効な治療法および予防法の確立に必要である。
薬物依存症も精神疾患の１つであり、薬物の効果が切れてくると、薬物が欲しいという強い欲求（渇望）がわいてきて、その渇望をコントロールできずに薬物を使ってしまう状態をいう。現在、薬物依存症の原因として、脳内の神経系の異常が明らかになっている。薬物依存症を引き起こす薬物には、精神依存だけを引き起こす薬物と、精神依存と身体依存の両方を引き起こす薬物の２種類がある。アルコール、モルヒネ、ヘロインは、精神依存のみならず身体依存も引き起こす。これに対し、ニコチン、覚せい剤、コカインは強い精神依存を引き起こすが、身体依存は引き起こさない。薬物依存症は薬物乱用・薬物依存・薬物中毒の３つに分類される。慢性中毒の代表としては、幻覚や妄想を主症状とする覚せい剤精神病、「無動機症候群」を特徴とする有機溶剤精神病などが挙げられる。
カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）は核輸送因子であり、インポーティンαとも呼ばれる。これまでに、統合失調症患者の上側頭回においてＫＰＮＡ４の発現が減少していることが報告されている（非特許文献１）。また、ＫＰＮＡ４の一塩基多型が統合失調症患者で有意に見られ、その変異がＫＰＮＡ４遺伝子の減少と関連していることも報告されている（非特許文献１）。同様に、統合失調症患者においてＫＰＮＡ３の発現が減少している傾向があることが報告されている（非特許文献１）。また、ＫＰＮＡ３の一塩基多型が、統合失調症、アルコール依存症、アヘン依存症と関連があることが示唆されている（非特許文献２〜４）。一方、ＫＰＮＡ１遺伝子を変異させたマウスは、神経系の異常や行動異常を表さないことが報告されている（非特許文献５）。ＫＰＮＡ１遺伝子をノックアウトさせたマウスでは、雌の生殖器の発生異常およびエストロゲン受容体の遺伝子制御異常が報告されている（非特許文献６）。
Ｎｅｕｒｏｐｓｙｃｈｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ． ２０１３ Ｆｅｂ；３８（３）：５３３−９
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本発明の解決課題は、統合失調症などの精神疾患のモデル動物を提供することである。
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を行った結果、動物においてＫＰＮＡ１（インポーティンα１）遺伝子の機能を失わせることにより、精神疾患モデル動物を作成できることを見出し、本発明を完成させた。また、かかる動物にストレスを与えることによっても、精神疾患モデル動物を作成できることを見出し、本発明を完成させた。
すなわち、本発明は、以下のものを提供する：
［１］精神疾患の非ヒトモデル動物を製造する方法であって、（ａ）非ヒト動物のカリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失させる段階を含む、方法；
［２］（ｂ）段階（ａ）で得られた非ヒト動物にストレスを与える段階をさらに含む、［１］に記載の方法；
［３］ストレスが社会孤立ストレスである、［２］に記載の方法；
［４］ストレスが薬物によるストレスである、［２］に記載の方法；
［５］薬物がフェンシクリジン、ジゾシルピン（ＭＫ８０１）、メタンフェタミン、アンフェタミン、コカイン、モルヒネ、カンナビノイド、Δ９−テトラヒドロカンナビノール（Δ９−ＴＨＣ）である、［４］に記載の方法；
［６］精神疾患が、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、およびうつ病から選択される１つ以上の疾患である、［１］〜［５］のいずれか一つに記載の方法；
［７］精神疾患が薬物依存症である、［４］または［５］に記載の方法；
［８］段階（ａ）が、ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログをホモでノックアウトすることによって実施される、［１］〜［７］のいずれか一つに記載の方法；
［９］非ヒト動物が非ヒト哺乳動物である、［１］〜［８］のいずれか一つに記載の方法；
［１０］非ヒト哺乳動物が、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ミニブタ、ブタ、ヒツジ、ウシ、サルおよびチンパンジーからなる群から選択される動物である、［９］に記載の方法；
［１１］［１］〜［１０］のいずれか一つに記載の方法によって製造された、精神疾患の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物；
［１２］［１１］に記載の動物から単離された組織または細胞；
［１３］精神疾患の予防または治療薬のスクリーニング方法であって、
（ａ）［１１］に記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ）段階（ａ）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法；
［１４］被験物質の精神疾患への効能および／または有害性を評価する方法であって、
（ａ）［１１］に記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ）段階（ａ）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法；ならびに
［１５］精神疾患のバイオマーカーのスクリーニング方法であって、
（ａ）［１１］に記載の動物、および当該動物と同種の野生型動物のそれぞれから生体試料を採取する段階、
（ｂ）段階（ａ）で得られた生体試料中の核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を調べ、それぞれの動物における核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質の転写または発現パターンを比較する段階、および
（ｃ）段階（ｂ）における比較の結果に基づいて、精神疾患の指標となる核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を選択する段階
を含む、方法。
［１］精神疾患の非ヒトモデル動物を製造する方法であって、（ａ）非ヒト動物のカリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失させる段階を含む、方法；
［２］（ｂ）段階（ａ）で得られた非ヒト動物にストレスを与える段階をさらに含む、［１］に記載の方法；
［３］ストレスが社会孤立ストレスである、［２］に記載の方法；
［４］ストレスが薬物によるストレスである、［２］に記載の方法；
［５］薬物がフェンシクリジン、ジゾシルピン（ＭＫ８０１）、メタンフェタミン、アンフェタミン、コカイン、モルヒネ、カンナビノイド、Δ９−テトラヒドロカンナビノール（Δ９−ＴＨＣ）である、［４］に記載の方法；
［６］精神疾患が、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、およびうつ病から選択される１つ以上の疾患である、［１］〜［５］のいずれか一つに記載の方法；
［７］精神疾患が薬物依存症である、［４］または［５］に記載の方法；
［８］段階（ａ）が、ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログをホモでノックアウトすることによって実施される、［１］〜［７］のいずれか一つに記載の方法；
［９］非ヒト動物が非ヒト哺乳動物である、［１］〜［８］のいずれか一つに記載の方法；
［１０］非ヒト哺乳動物が、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ミニブタ、ブタ、ヒツジ、ウシ、サルおよびチンパンジーからなる群から選択される動物である、［９］に記載の方法；
［１１］［１］〜［１０］のいずれか一つに記載の方法によって製造された、精神疾患の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物；
［１２］［１１］に記載の動物から単離された組織または細胞；
［１３］精神疾患の予防または治療薬のスクリーニング方法であって、
（ａ）［１１］に記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ）段階（ａ）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法；
［１４］被験物質の精神疾患への効能および／または有害性を評価する方法であって、
（ａ）［１１］に記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ）段階（ａ）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法；ならびに
［１５］精神疾患のバイオマーカーのスクリーニング方法であって、
（ａ）［１１］に記載の動物、および当該動物と同種の野生型動物のそれぞれから生体試料を採取する段階、
（ｂ）段階（ａ）で得られた生体試料中の核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を調べ、それぞれの動物における核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質の転写または発現パターンを比較する段階、および
（ｃ）段階（ｂ）における比較の結果に基づいて、精神疾患の指標となる核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を選択する段階
を含む、方法。
本発明によれば、精神疾患のモデル動物を提供することができる。また、本発明のある特定の実施形態によれば、ストレスによってその発症が誘発される精神疾患のモデル動物を提供することができる。
１つの実施態様では、本発明は、精神疾患の非ヒトモデル動物を製造する方法であって、（ａ１）非ヒト動物のカリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失させる段階を含む方法（以下、「本発明の方法」ともいう）を提供する。
本明細書において、「精神疾患」とは、脳または心の機能的・器質的障害によって引き起こされる疾患を指す。精神疾患として、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、うつ病、薬物依存症などが挙げられる。
カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）は、哺乳類、鳥類、は虫類、両生類、魚類など、様々な生物において広く見られる。また、出芽酵母では１種類、線虫やハエでは３種類、マウスでは６種類、ヒトでは７種類のサブタイプが存在することが知られている。以下の表に示すとおり、マウスとヒトではサブタイプごとに略称表記が異なる。
その他の例示的な哺乳動物におけるＫＰＮＡ１について、以下の表に説明する。
本明細書において、「ホモログ」とは、進化的な起源を同じくする類似性の高い遺伝子の一群を指す。ホモログは「オーソログ」と「パラログ」の２種類に分類される。オーソログは、種分岐の際に同じ遺伝子だったホモログを指す。パラログは、遺伝子重複によって生じたホモログを指す。
段階（ａ１）は、ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログ遺伝子を、ノックアウトさせることによって実施してもよい。遺伝子のノックアウトとは、特定の遺伝子を破壊することによって、その標的遺伝子を欠損させることを指す。ある遺伝子をノックアウトする方法としては、例えば、相同組換えを利用して、薬剤耐性遺伝子を標的遺伝子の全体あるいは一部分と入れ替えることにより機能タンパク質の発現を無くす方法や、Ｃｒｅ／Ｌｏｘ Ｐシステムなどの部位特異的組換え反応を利用する方法、ＴＡＬＥＮやＣＲＩＳＰＲ−Ｃａｓ９を利用するゲノム編集技術などの、当技術分野で公知の方法を用いることができる。例えば、ノックアウトマウスの場合、標的遺伝子破壊を起こしたＥＳ細胞を選抜し、その細胞とマウス胚を用いてキメラ個体を作成し、ＥＳ細胞に由来する生殖細胞を持つキメラ個体から、数代の交配によって、標的遺伝子破壊を持つ個体が作出される。家畜などの場合では、体細胞を用いた遺伝子標的破壊とクローン技術とを組み合わせた方法によって、ノックアウト動物を作出することができる。本発明において、「ノックアウト」はホモノックアウトであってもよく、ヘテロノックアウトであってもよい。
ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログ遺伝子のノックアウトは、当該遺伝子の１または複数のエキソンを脱落させることによって実施してもよい。この場合、あるエキソンの一部分を脱落させてもよく、あるエキソンの全体を脱落させてもよい。複数のエキソンを脱落させる場合、連続するエキソンを脱落させてもよく、あるいは離れたエキソンを脱落させてもよい。１または複数のエキソンと共に、当該遺伝子の１または複数のイントロンを脱落させてもよい。この場合、イントロンの一部分を脱落させてもよく、イントロンの全体を脱落させてもよい。マウスＫＰＮＡ１遺伝子をノックアウトする場合、１番目のエキソン（エキソン１）〜１４番目のエキソン（エキソン１４）から選択される、１または複数のエキソンを脱落させてもよい。例えば、ＫＰＮＡ１タンパク質の開始コドンが存在するエキソン２を脱落させてもよい。あるいは、エキソン２とエキソン３を脱落させてもよい。
あるいは、段階（ａ１）は、ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログ遺伝子を、ノックダウンさせることによって実施してもよい。遺伝子のノックダウンとは、特定の遺伝子の転写量を減少させること、あるいは特定の遺伝子からの翻訳を阻害することを指す。遺伝子そのものを破壊する遺伝子ノックアウトとは異なり、ノックダウンは、遺伝子の機能を大きく減弱させるものの完全には失わせない。ある遺伝子をノックダウンする方法としては、例えば、ｍＲＮＡのアンチセンス鎖に相当するＲＮＡを細胞に導入するアンチセンス法、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、ｍｉｃｒｏＲＮＡなどを用いるＲＮＡｉ法などの、当技術分野で周知の方法を用いることができる。ノックダウン効率は、ｍＲＮＡレベルやタンパク質発現レベルの変化を測定することで確認できる。ｍＲＮＡレベルを測定する方法としては、リアルタイム定量ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）、Ｎｏｒｔｈｅｒｎ Ｂｌｏｔｔｉｎｇが挙げられるが、これらに限定されない。タンパク質発現レベルを測定する方法としては、Ｗｅｓｔｅｒｎ Ｂｌｏｔｔｉｎｇ、ＥＬＩＳＡが挙げられるが、これらに限定されない。本発明において、ノックダウン効率は、得られたノックダウン動物にストレスを与える（段階（ｂ１））ことによって本発明の精神疾患モデル動物として利用できる限り、特に限定されないが、例えば、約３０％、約３５％、約４０％、約４５％、約５０％、約５５％、約６０％、約６５％、約７０％、約７５％、約８０％、約８５％、約９０％、約９５％、約９６％、約９７％、約９８％、または約９９％の効率である。
ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログ遺伝子のノックダウンは、当該遺伝子の１または複数のエキソンを標的とすることによって実施してもよい。この場合、あるエキソンの一部分を標的としてもよく、あるエキソンの全体を標的としてもよい。複数のエキソンを標的とする場合、連続するエキソンを標的としてもよく、あるいは離れたエキソンを標的としてもよい。マウスＫＰＮＡ１遺伝子をノックダウンする場合、エキソン１〜１４から選択される１または複数のエキソンを標的としてもよい。例えば、エキソン２を標的としてもよい。あるいは、エキソン２とエキソン３を標的としてもよい。
ある特定の実施形態では、本発明の方法は、（ｂ１）段階（ａ１）で得られた非ヒト動物にストレスを与える段階をさらに含む。
１つの実施形態では、段階（ｂ１）で与えられるストレスは社会孤立ストレスである。他の実施形態では、段階（ｂ１）で与えられるストレスは薬物によるストレスである。薬物の例としては、フェンシクリジン、ジゾシルピン（ＭＫ８０１）、メタンフェタミン、アンフェタミン、コカイン、モルヒネ、カンナビノイド、Δ９−テトラヒドロカンナビノール（Δ９−ＴＨＣ）が挙げられるが、これらに限定されない。
別の実施形態では、精神疾患は、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、およびうつ病から選択される１つ以上の疾患である。さらに別の実施形態では、段階（ｂ１）で与えられるストレスが薬物によるストレスであり、精神疾患が薬物依存症である。
さらに別の実施形態では、段階（ａ１）が、ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログをホモでノックアウトすることによって実施される。
本明細書において用いられる「非ヒト動物」としては、ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログを有する、ヒト以外の動物を用いることができる。１つの実施形態では、非ヒト動物は非ヒト哺乳動物である。非ヒト哺乳動物の例としては、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、フェレット、イヌ、ネコ、ヤギ、ミニブタ、ブタ、ヒツジ、ウシ、ヤク、ウマ、ロバ、アルパカ、コモンマーモセット、サル、チンパンジー、ボノボ、オランウータン、およびゴリラが挙げられるが、これらに限定されない。特定の実施形態では、非ヒト哺乳動物は、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ミニブタ、ブタ、ヒツジ、ウシ、サルおよびチンパンジーからなる群から選択される動物である。
他の実施態様では、本発明は、本発明の方法によって製造された、精神疾患の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物（以下、「本発明の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物」ともいう）を提供する。「子孫動物」とは、本発明の非ヒトモデル動物をさらに交配して得られる子孫動物を指す。交配は、本発明の非ヒトモデル動物同士の交配であってもよく、本発明の非ヒトモデル動物以外の動物との交配であってもよい。
後述するように（実施例の項を参照のこと）、本発明の方法によって製造された精神疾患モデルマウスでは、血漿中コルチコステロン濃度の増加、大脳皮質前頭前野の５−ＨＴ濃度の減少、および／または側坐核の５−ＨＴ濃度の減少が見られる。したがって、別の実施態様では、本発明は、（ｉ）血漿中コルチコステロン濃度の増加、（ｉｉ）大脳皮質前頭前野の５−ＨＴ濃度の減少、および（ｉｉｉ）側坐核の５−ＨＴ濃度の減少からなる群から選択される状態の１つ以上を示す、非ヒト動物またはそれらの子孫動物を提供する。
別の実施態様では、本発明は、上述した本発明の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物から単離された組織または細胞を提供する。「組織」は、本発明の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物から得られる任意の組織を意味する。例えば、上皮組織（被蓋上皮、腺上皮、吸収上皮、感覚上皮、および呼吸上皮など）、結合組織（真皮、皮下組織、粘膜下組織、骨膜、筋膜、腱、および血管の外膜など）、軟骨組織、骨組織、血液、リンパ液、筋組織（骨格筋組織、平滑筋組織、および心筋組織など）、神経組織、ならびに胚組織が挙げられるが、これらに限定されない。「細胞」は、本発明の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物から得られる任意の細胞を意味する。例えば、上皮細胞、内皮細胞、繊維芽細胞、骨細胞、筋細胞、神経細胞、血液細胞、免疫細胞、脂肪細胞、肥満細胞、色素細胞、生殖細胞、前駆細胞、および幹細胞が挙げられるが、これらに限定されない。
さらに別の実施態様では、本発明は、精神疾患の予防または治療薬のスクリーニング方法であって、（ａ２）本発明の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物に被験物質を投与する段階、（ｂ２）段階（ａ２）で得られた動物に行動課題を課す段階、および（ｃ２）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階を含む方法を提供する。
さらに別の実施態様では、本発明は、被験物質の精神疾患への効能および／または有害性を評価する方法であって、（ａ３）本発明の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物に被験物質を投与する段階、（ｂ３）段階（ａ３）で得られた動物に行動課題を課す段階、および（ｃ３）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階を含む方法を提供する。
段階（ａ２）および（ａ３）における被験物質の投与は特に限定されず、被験物質は経口的または非経口的に投与されうる。非経口的な投与経路としては、例えば、経鼻、眼、耳、静脈内、動脈内、心室、腹腔内、筋肉内、皮内、および皮下経路が挙げられるが、これらに限定されない。被験物質の投与量は、有効成分の種類、分子の大きさ、投与経路、投与対象となる動物の種類、投与対象の薬物受容性、体重、年齢等に応じて、適宜設定されうる。
段階（ｂ２）および（ｂ３）における「行動課題」としては、オープンフィールド試験、高架式十字迷路試験、明暗選択試験、Ｙ字型迷路試験、Ｔ字型迷路試験、新規物体認識試験、プレパルスインヒビション（ＰＰＩ）試験、レイテントインヒビション試験、受動回避試験、強制水泳試験、尾懸垂試験が挙げられるが、これらに限定されない。これらの試験の具体的な条件・手段は当技術分野で公知の条件・手段が用いられる。例えば、Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ Ｕ Ｓ Ａ． ２００７ Ｓｅｐ ４；１０４（３６）：１４５０１−６を参照のこと。例として、実施例の項で説明される条件・手段が挙げられる。
さらに別の実施態様では、本発明は、精神疾患のバイオマーカーのスクリーニング方法であって、（ａ４）本発明の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物、および当該動物と同種の野生型動物のそれぞれから生体試料を採取する段階、（ｂ４）段階（ａ４）で得られた生体試料中の核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を調べ、それぞれの動物における核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質の転写または発現パターンを比較する段階、および（ｃ４）段階（ｂ４）における比較の結果に基づいて、精神疾患の指標となる核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を選択する段階を含む方法を提供する。
「生体試料」としては、例えば、細胞、組織（正常組織および病変組織）、全血、血漿、血清、リンパ液、脳脊髄液、胸水、腹水、胃液、胆汁、膵液、腸液、関節液、涙、眼房水、唾液、喀痰、鼻汁、汗、羊水、乳汁、および尿などの体液、ならびに糞便が挙げられるが、これらに限定されない。生体試料は、例えばバッファーなどを用いて、上記方法において用いるために適した状態へと調製されてもよい。生体試料は、新鮮なまま用いてもよく、あるいは、凍結処理やホルマリン固定処理を行った後に用いてもよい。あるいは、採取後、適当な温度下で保管した生体試料を用いてもよい。核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質の転写または発現パターンの測定方法としては、当技術分野で公知の方法を用いることができる。例えば、リアルタイム定量ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）、Ｎｏｒｔｈｅｒｎ Ｂｌｏｔｔｉｎｇ、Ｗｅｓｔｅｒｎ Ｂｌｏｔｔｉｎｇ、ＥＬＩＳＡが挙げられるが、これらに限定されない。
本発明はさらに、以下のものを提供する：
［１’］非ヒト動物に精神疾患に関連する症状および／または障害を起こさせる方法であって、（ａ’）該非ヒト動物のカリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失させる段階を含む、方法；
［２’］（ｂ’）段階（ａ’）で得られた非ヒト動物にストレスを与える段階をさらに含む、［１’］に記載の方法；
［３’］ストレスが社会孤立ストレスである、［２’］に記載の方法；
［４’］ストレスが薬物によるストレスである、［２’］に記載の方法；
［５’］薬物がフェンシクリジン、ジゾシルピン（ＭＫ８０１）、メタンフェタミン、アンフェタミン、コカイン、モルヒネ、カンナビノイド、Δ９−テトラヒドロカンナビノール（Δ９−ＴＨＣ）である、［４’］に記載の方法；
［６’］精神疾患が、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、およびうつ病から選択される１つ以上の疾患である、［１’］〜［５’］のいずれか一つに記載の方法；
［７’］精神疾患が薬物依存症である、［４’］または［５’］に記載の方法；
［８’］段階（ａ’）が、ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログをホモでノックアウトすることによって実施される、［１’］〜［７’］のいずれか一つに記載の方法；
［９’］非ヒト動物が非ヒト哺乳動物である、［１’］〜［８’］のいずれか一つに記載の方法；
［１０’］非ヒト哺乳動物が、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ミニブタ、ブタ、ヒツジ、ウシ、サルおよびチンパンジーからなる群から選択される動物である、［９’］に記載の方法；
［１１’］［１’］〜［１０’］のいずれか一つに記載の方法によって製造された、精神疾患の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物；
［１２’］［１１’］に記載の動物から単離された組織または細胞；
［１３’］精神疾患の予防または治療薬のスクリーニング方法であって、
（ａ’）［１１’］に記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ’）段階（ａ’）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ’）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法；
［１４’］被験物質の精神疾患への効能および／または有害性を評価する方法であって、
（ａ’）［１１’］に記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ’）段階（ａ’）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ’）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法；ならびに
［１５’］精神疾患のバイオマーカーのスクリーニング方法であって、
（ａ’）［１１’］に記載の動物、および当該動物と同種の野生型動物のそれぞれから生体試料を採取する段階、
（ｂ’）段階（ａ’）で得られた生体試料中の核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を調べ、それぞれの動物における核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質の転写または発現パターンを比較する段階、および
（ｃ’）段階（ｂ’）における比較の結果に基づいて、精神疾患の指標となる核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を選択する段階
を含む、方法。
［１’］非ヒト動物に精神疾患に関連する症状および／または障害を起こさせる方法であって、（ａ’）該非ヒト動物のカリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失させる段階を含む、方法；
［２’］（ｂ’）段階（ａ’）で得られた非ヒト動物にストレスを与える段階をさらに含む、［１’］に記載の方法；
［３’］ストレスが社会孤立ストレスである、［２’］に記載の方法；
［４’］ストレスが薬物によるストレスである、［２’］に記載の方法；
［５’］薬物がフェンシクリジン、ジゾシルピン（ＭＫ８０１）、メタンフェタミン、アンフェタミン、コカイン、モルヒネ、カンナビノイド、Δ９−テトラヒドロカンナビノール（Δ９−ＴＨＣ）である、［４’］に記載の方法；
［６’］精神疾患が、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、およびうつ病から選択される１つ以上の疾患である、［１’］〜［５’］のいずれか一つに記載の方法；
［７’］精神疾患が薬物依存症である、［４’］または［５’］に記載の方法；
［８’］段階（ａ’）が、ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログをホモでノックアウトすることによって実施される、［１’］〜［７’］のいずれか一つに記載の方法；
［９’］非ヒト動物が非ヒト哺乳動物である、［１’］〜［８’］のいずれか一つに記載の方法；
［１０’］非ヒト哺乳動物が、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ミニブタ、ブタ、ヒツジ、ウシ、サルおよびチンパンジーからなる群から選択される動物である、［９’］に記載の方法；
［１１’］［１’］〜［１０’］のいずれか一つに記載の方法によって製造された、精神疾患の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物；
［１２’］［１１’］に記載の動物から単離された組織または細胞；
［１３’］精神疾患の予防または治療薬のスクリーニング方法であって、
（ａ’）［１１’］に記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ’）段階（ａ’）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ’）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法；
［１４’］被験物質の精神疾患への効能および／または有害性を評価する方法であって、
（ａ’）［１１’］に記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ’）段階（ａ’）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ’）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法；ならびに
［１５’］精神疾患のバイオマーカーのスクリーニング方法であって、
（ａ’）［１１’］に記載の動物、および当該動物と同種の野生型動物のそれぞれから生体試料を採取する段階、
（ｂ’）段階（ａ’）で得られた生体試料中の核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を調べ、それぞれの動物における核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質の転写または発現パターンを比較する段階、および
（ｃ’）段階（ｂ’）における比較の結果に基づいて、精神疾患の指標となる核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を選択する段階
を含む、方法。
本明細書において、「精神疾患に関連する症状および／または障害」とは、精神疾患（例えば、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、うつ病、薬物依存症）において見られる異常な行動や状態を指す。非ヒト動物におけるかかる症状および／または障害の例としては、自発行動量の低下、落ち着きのなさ、衝動性の増加、強制水泳試験における不動時間の増加、新規物体の認識の低下、感覚運動統合の障害、忌避学習の障害が挙げられるが、これらに限定されない。
本発明はまたさらに、以下のものを提供する：
［１６’］カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失している、精神疾患の非ヒトモデル動物；
［１７’］ストレスを与えられた、［１６’］に記載の動物；
［１８’］ストレスが社会孤立ストレスである、［１７’］に記載の動物；
［１９’］ストレスが薬物によるストレスである、［１７’］に記載の動物；
［２０’］薬物がフェンシクリジン、ジゾシルピン（ＭＫ８０１）、メタンフェタミン、アンフェタミン、コカイン、モルヒネ、カンナビノイド、Δ９−テトラヒドロカンナビノール（Δ９−ＴＨＣ）である、［１９’］に記載の動物；
［２１’］精神疾患が、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、およびうつ病から選択される１つ以上の疾患である、［１６’］〜［２０’］のいずれか一つに記載の動物；
［２２’］精神疾患が薬物依存症である、［１９’］または［２０’］に記載の動物；
［２３’］ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログがホモでノックアウトされている、［１６’］〜［２２’］のいずれか一つに記載の動物；
［２４’］非ヒト哺乳動物である、［１６’］〜［２３’］のいずれか一つに記載の動物；
［２５’］マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ミニブタ、ブタ、ヒツジ、ウシ、サルおよびチンパンジーからなる群から選択される動物である、［２４’］に記載の動物；
［２６’］［１６’］〜［２５’］のいずれか一つに記載の動物の子孫動物；
［２７’］［１６’］〜［２６’］のいずれか一つに記載の動物から単離された組織または細胞；
［２８’］精神疾患の予防または治療薬のスクリーニング方法であって、
（ａ’）［１６’］〜［２６’］のいずれか一つに記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ’）段階（ａ’）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ’）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法；
［２９’］被験物質の精神疾患への効能および／または有害性を評価する方法であって、
（ａ’）［１６’］〜［２６’］のいずれか一つに記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ’）段階（ａ’）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ’）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法；ならびに
［３０’］精神疾患のバイオマーカーのスクリーニング方法であって、
（ａ’）［１６’］〜［２６’］のいずれか一つに記載の動物、および当該動物と同種の野生型動物のそれぞれから生体試料を採取する段階、
（ｂ’）段階（ａ’）で得られた生体試料中の核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を調べ、それぞれの動物における核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質の転写または発現パターンを比較する段階、および
（ｃ’）段階（ｂ’）における比較の結果に基づいて、精神疾患の指標となる核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を選択する段階
を含む、方法。
［１６’］カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失している、精神疾患の非ヒトモデル動物；
［１７’］ストレスを与えられた、［１６’］に記載の動物；
［１８’］ストレスが社会孤立ストレスである、［１７’］に記載の動物；
［１９’］ストレスが薬物によるストレスである、［１７’］に記載の動物；
［２０’］薬物がフェンシクリジン、ジゾシルピン（ＭＫ８０１）、メタンフェタミン、アンフェタミン、コカイン、モルヒネ、カンナビノイド、Δ９−テトラヒドロカンナビノール（Δ９−ＴＨＣ）である、［１９’］に記載の動物；
［２１’］精神疾患が、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、およびうつ病から選択される１つ以上の疾患である、［１６’］〜［２０’］のいずれか一つに記載の動物；
［２２’］精神疾患が薬物依存症である、［１９’］または［２０’］に記載の動物；
［２３’］ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログがホモでノックアウトされている、［１６’］〜［２２’］のいずれか一つに記載の動物；
［２４’］非ヒト哺乳動物である、［１６’］〜［２３’］のいずれか一つに記載の動物；
［２５’］マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ミニブタ、ブタ、ヒツジ、ウシ、サルおよびチンパンジーからなる群から選択される動物である、［２４’］に記載の動物；
［２６’］［１６’］〜［２５’］のいずれか一つに記載の動物の子孫動物；
［２７’］［１６’］〜［２６’］のいずれか一つに記載の動物から単離された組織または細胞；
［２８’］精神疾患の予防または治療薬のスクリーニング方法であって、
（ａ’）［１６’］〜［２６’］のいずれか一つに記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ’）段階（ａ’）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ’）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法；
［２９’］被験物質の精神疾患への効能および／または有害性を評価する方法であって、
（ａ’）［１６’］〜［２６’］のいずれか一つに記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ’）段階（ａ’）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ’）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法；ならびに
［３０’］精神疾患のバイオマーカーのスクリーニング方法であって、
（ａ’）［１６’］〜［２６’］のいずれか一つに記載の動物、および当該動物と同種の野生型動物のそれぞれから生体試料を採取する段階、
（ｂ’）段階（ａ’）で得られた生体試料中の核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を調べ、それぞれの動物における核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質の転写または発現パターンを比較する段階、および
（ｃ’）段階（ｂ’）における比較の結果に基づいて、精神疾患の指標となる核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を選択する段階
を含む、方法。
本発明はまたさらに、以下のものを提供する：
［３１’］精神疾患の非ヒトモデル動物としての、カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失している非ヒト動物の使用；
［３２’］精神疾患の予防または治療薬の製造のための、カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失している非ヒト動物の使用；
［３３’］精神疾患の予防または治療薬のスクリーニングのための、カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失している非ヒト動物の使用；
［３４’］被験物質の精神疾患への効能および／または有害性の評価のための、カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失している非ヒト動物の使用；
［３５’］精神疾患のバイオマーカーのスクリーニングのための、カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失している非ヒト動物の使用；
［３６’］非ヒト動物がストレスを与えられている、［３１’］〜［３５’］のいずれか一つに記載の使用；
［３７’］ストレスが社会孤立ストレスである、［３６’］に記載の使用；
［３８’］ストレスが薬物によるストレスである、［３６’］に記載の使用；
［３９’］薬物がフェンシクリジン、ジゾシルピン（ＭＫ８０１）、メタンフェタミン、アンフェタミン、コカイン、モルヒネ、カンナビノイド、Δ９−テトラヒドロカンナビノール（Δ９−ＴＨＣ）である、［３８’］に記載の使用；
［４０’］精神疾患が、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、およびうつ病から選択される１つ以上の疾患である、［３１’］〜［３９’］のいずれか一つに記載の使用；
［４１’］精神疾患が薬物依存症である、［３８’］または［３９’］に記載の使用；
［４２’］非ヒト動物においてＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログがホモでノックアウトされている、［３１’］〜［４１’］のいずれか一つに記載の使用；
［４３’］非ヒト動物が非ヒト哺乳動物である、［３１’］〜［４２’］のいずれか一つに記載の使用；ならびに
［４４’］非ヒト哺乳動物が、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ミニブタ、ブタ、ヒツジ、ウシ、サルおよびチンパンジーからなる群から選択される動物である、［４３’］に記載の使用。
［３１’］精神疾患の非ヒトモデル動物としての、カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失している非ヒト動物の使用；
［３２’］精神疾患の予防または治療薬の製造のための、カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失している非ヒト動物の使用；
［３３’］精神疾患の予防または治療薬のスクリーニングのための、カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失している非ヒト動物の使用；
［３４’］被験物質の精神疾患への効能および／または有害性の評価のための、カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失している非ヒト動物の使用；
［３５’］精神疾患のバイオマーカーのスクリーニングのための、カリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失している非ヒト動物の使用；
［３６’］非ヒト動物がストレスを与えられている、［３１’］〜［３５’］のいずれか一つに記載の使用；
［３７’］ストレスが社会孤立ストレスである、［３６’］に記載の使用；
［３８’］ストレスが薬物によるストレスである、［３６’］に記載の使用；
［３９’］薬物がフェンシクリジン、ジゾシルピン（ＭＫ８０１）、メタンフェタミン、アンフェタミン、コカイン、モルヒネ、カンナビノイド、Δ９−テトラヒドロカンナビノール（Δ９−ＴＨＣ）である、［３８’］に記載の使用；
［４０’］精神疾患が、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、およびうつ病から選択される１つ以上の疾患である、［３１’］〜［３９’］のいずれか一つに記載の使用；
［４１’］精神疾患が薬物依存症である、［３８’］または［３９’］に記載の使用；
［４２’］非ヒト動物においてＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログがホモでノックアウトされている、［３１’］〜［４１’］のいずれか一つに記載の使用；
［４３’］非ヒト動物が非ヒト哺乳動物である、［３１’］〜［４２’］のいずれか一つに記載の使用；ならびに
［４４’］非ヒト哺乳動物が、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ミニブタ、ブタ、ヒツジ、ウシ、サルおよびチンパンジーからなる群から選択される動物である、［４３’］に記載の使用。
本明細書において使用される用語は、特に言及しない限り、当該分野で通常用いられる意味で用いられることが理解されるべきである。したがって、他に定義されない限り、本明細書中で使用される全ての専門用語および科学技術用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって一般的に理解されるものと同一の意味を有する。用語「約」は、当業者により理解され、それが使用されている文脈に応じてある程度変化する。「約」は、典型的に、当該用語が付されている数値の±１０％、より典型的には±５％、より典型的には±４％、より典型的には±３％、より典型的には±２％、さらにより典型的には±１％の範囲の数値を意味する。
以下に実施例を示して本発明をより詳細かつ具体的に説明するが、実施例は本発明の範囲を限定するものではない。
１． 研究材料
Ｋｐｎａ１−Ｈｅｔマウスを以下の手法で作成した。
マウスＫＰＮＡ１遺伝子は１６番染色体上にあり、１４個のエキソンから構成される。そして、２番目のエキソンにＫＰＮＡ１タンパク質の開始コドンが存在している。そこで、２番目のエキソンと３番目のエキソンをＣｒｅ／ｌｏｘＰシステムを利用して脱落させることにより、ＫＰＮＡ１タンパク質の発現を欠損したマウスを得た。
Ｋｐｎａ１−Ｈｅｔマウスを以下の手法で作成した。
マウスＫＰＮＡ１遺伝子は１６番染色体上にあり、１４個のエキソンから構成される。そして、２番目のエキソンにＫＰＮＡ１タンパク質の開始コドンが存在している。そこで、２番目のエキソンと３番目のエキソンをＣｒｅ／ｌｏｘＰシステムを利用して脱落させることにより、ＫＰＮＡ１タンパク質の発現を欠損したマウスを得た。
具体的には、まず、ｌｏｘＰ組換え配列で挟まれた、マウスＫＰＮＡ１遺伝子のゲノム領域の２番目のエキソンと３番目のエキソンからなる領域、および選択マーカーカセット（両側にＦＲＴ組換え配列が配置されたネオマイシン耐性遺伝子）を有するターゲティングベクター（配列番号４）を作製した。次に、作製したターゲティングベクターを、エレクトロポレーション法によりＥＳ細胞に導入した。遺伝子導入後のＥＳ細胞をＧ４１８存在下で培養した。その後、ＰＣＲ法とサザンブロット法により、想定した通りのＤＮＡ組み換えが起きたＥＳ細胞のスクリーニングを行った。このようにして得られたＥＳ細胞をマウス受精卵に導入し、マウス体内にもどして着床させることでキメラマウスを得た。さらに、そのキメラマウスとＣ５７ＢＬ／６Ｊマウスとを交配させ、マウスＫＰＮＡ１遺伝子の２番目のエキソンと３番目のエキソンからなる領域がｌｏｘＰ組換え配列で挟まれているトランスジェニックマウスを得た。次に、得られたトランスジェニックマウスをＣＡＧ−ＦＬＰｅ マウス（全身性に組換え酵素ＦＬＰｅを発現するトランスジェニックマウス）と交配させた。これにより、ＦＲＴ組換え配列で挟まれた選択マーカーカセットをマウスゲノム中から取り除いた。続いて、得られたトランスジェニックマウスをＣＡＧ−Ｃｒｅ マウス（全身性に組換え酵素Ｃｒｅを発現するトランスジェニックマウス）と交配させた。得られたトランスジェニックマウスをＫｐｎａ１−Ｈｅｔマウスと命名した。Ｋｐｎａ１−ＨｅｔをＣ５７ＢＬ／６Ｊと１０世代以上の交配を行うことにより、遺伝子背景がＣ５７ＢＬ／６ＪであるＫｐｎａ１−Ｈｅｔ（ＮＥ１０）マウスを得た。Ｋｐｎａ１−Ｈｅｔ（ＮＥ１０）マウス同士を交配させることにより、その子孫から同胞であるノックアウトマウス（ＫＯ）、ヘテロマウス（Ｈｅｔ）、野生型マウス（ＷＴ）を得た。
マウスの尾部組織の一部より精製したゲノムＤＮＡに対して以下の表に記載のプライマーを用いてＰＣＲを行うことにより、遺伝子型を確認した。ＰＣＲは常法に従って実施した。
ＰＣＲ反応後、１％アガロースゲルにて電気泳動を行った。６２２ｂｐのＰＣＲ産物のみが確認されたものを野生型マウス（ＷＴ）と判断した。６２２ｂｐと４２０ｂｐの２本のＰＣＲ産物が確認されたものをＫｐｎａ１−Ｈｅｔマウス（Ｈｅｔ）と判断した。４２０ｂｐのＰＣＲ産物のみが確認されたものをノックアウトマウス（ＫＯ）と判断した。全ての実験は同胞であるオスのＫＯ、Ｈｅｔ、およびＷＴを用いた。遺伝子組換えマウスの使用については京都大学組換えＤＮＡ実験安全委員会の承認を受け、京都大学組換えＤＮＡ実験安全管理規定に従った。
１−１． 社会孤立ストレスの負荷方法
マウスを、生後５週から８週にかけて、通常の飼育ケージ（２１×３２×１３ ｃｍ）にて集団飼育を続ける群と、小ケージ（１２．５×２０×１１ ｃｍ）の周囲に白い紙を巻き、孤立飼育を行う群に分けた。
マウスを、生後５週から８週にかけて、通常の飼育ケージ（２１×３２×１３ ｃｍ）にて集団飼育を続ける群と、小ケージ（１２．５×２０×１１ ｃｍ）の周囲に白い紙を巻き、孤立飼育を行う群に分けた。
１−２． 薬物ストレスの負荷方法
薬物ストレスを与えるマウスに、フェンシクリジン塩酸塩［１−（１−ｐｈｅｎｙｌｃｙｃｌｏｈｅｘｙｌ） ｐｉｐｅｒｉｄｉｎｅ ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ：ＰＣＰ］（１０ｍｇ／ｋｇ、１０ｍＬ／ｋｇ、皮下投与）を生後５週から６週にかけて７日間皮下注射により、１日１回投与した。対照群にはＰＣＰに代えて生理食塩水を同じスケジュールで投与した。７日目にオープンフィールド試験を行った。
薬物ストレスを与えるマウスに、フェンシクリジン塩酸塩［１−（１−ｐｈｅｎｙｌｃｙｃｌｏｈｅｘｙｌ） ｐｉｐｅｒｉｄｉｎｅ ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ：ＰＣＰ］（１０ｍｇ／ｋｇ、１０ｍＬ／ｋｇ、皮下投与）を生後５週から６週にかけて７日間皮下注射により、１日１回投与した。対照群にはＰＣＰに代えて生理食塩水を同じスケジュールで投与した。７日目にオープンフィールド試験を行った。
２． 行動実験
生後８週齢より、京都大学大学院医学研究科メディカルイノベーションセンター動物施設において、新規物体認識試験、オープンフィールド試験、高架式十字迷路試験、Ｙ字型迷路試験、プレパルスインヒビション（ＰＰＩ）試験、受動回避試験、強制水泳試験を行った。すべての行動実験は京都大学動物実験委員会の承認を受け、京都大学における動物実験の実施に関する規程に従った。
生後８週齢より、京都大学大学院医学研究科メディカルイノベーションセンター動物施設において、新規物体認識試験、オープンフィールド試験、高架式十字迷路試験、Ｙ字型迷路試験、プレパルスインヒビション（ＰＰＩ）試験、受動回避試験、強制水泳試験を行った。すべての行動実験は京都大学動物実験委員会の承認を受け、京都大学における動物実験の実施に関する規程に従った。
２−１． 新規物体認識試験
幅４０ｃｍ×奥行き４０ｃｍ×高さ２７ｃｍの箱を用いた。マウスを３日間連続で、５分間、物体のない箱内を探索させ、馴化させた。４日目に、まず、同一の形状、色および大きさの２つの物体を箱内に置き、５分間探索させた（ｔｒａｉｎｉｎｇ）。ｔｒａｉｎｉｎｇの終了後すぐに、ホームケージに戻した。１５分後に、２つの物体の内１つが異なる新規物体に置き換えられた箱内にマウスを入れ、５分間探索させた（ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ）。ｔｒａｉｎｉｎｇとｒｅｔｅｎｔｉｏｎの各５分間の行動をビデオ撮影した。撮影した５分間の行動をＥｔｈｏＶｉｓｉｏｎ ＸＴ ８．５で追跡、解析した。２つの物体を探索する時間の差を求めた。
幅４０ｃｍ×奥行き４０ｃｍ×高さ２７ｃｍの箱を用いた。マウスを３日間連続で、５分間、物体のない箱内を探索させ、馴化させた。４日目に、まず、同一の形状、色および大きさの２つの物体を箱内に置き、５分間探索させた（ｔｒａｉｎｉｎｇ）。ｔｒａｉｎｉｎｇの終了後すぐに、ホームケージに戻した。１５分後に、２つの物体の内１つが異なる新規物体に置き換えられた箱内にマウスを入れ、５分間探索させた（ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ）。ｔｒａｉｎｉｎｇとｒｅｔｅｎｔｉｏｎの各５分間の行動をビデオ撮影した。撮影した５分間の行動をＥｔｈｏＶｉｓｉｏｎ ＸＴ ８．５で追跡、解析した。２つの物体を探索する時間の差を求めた。
２−２． オープンフィールド試験
幅４０ｃｍ×奥行き４０ｃｍ×高さ２７ｃｍの箱の中心にマウスを置いた。直後から６０分間の行動をビデオ撮影した。６０分間の総移動距離（ｃｍ／１時間）をビデオ解析システムＥｔｈｏＶｉｓｉｏｎ ＸＴ ８．５（Ｎｏｌｄｕｓ）で解析し、新規環境における自発行動量を測定した。
幅４０ｃｍ×奥行き４０ｃｍ×高さ２７ｃｍの箱の中心にマウスを置いた。直後から６０分間の行動をビデオ撮影した。６０分間の総移動距離（ｃｍ／１時間）をビデオ解析システムＥｔｈｏＶｉｓｉｏｎ ＸＴ ８．５（Ｎｏｌｄｕｓ）で解析し、新規環境における自発行動量を測定した。
２−３． 高架式十字迷路試験
長さ３０ｃｍ×幅７ｃｍの４本のアームを十字迷路として、床から３０ｃｍの高さに設置した。４本のアームのうち、２本は壁の無いｏｐｅｎ ａｒｍ、２本は高さ２０ｃｍの壁があるｃｌｏｓｅｄ ａｒｍとした。この高架式十字迷路の中心にマウスを置いた。直後から１５分間の行動をビデオ撮影した。十字迷路内の１５分間の行動をＥｔｈｏＶｉｓｉｏｎ ＸＴ ８．５で解析し、総移動距離（ｔｏｔａｌ ｄｉｓｔａｎｃｅ、ｃｍ／１５分）、マウスがｃｌｏｓｅｄ ａｒｍとｏｐｅｎ ａｒｍに滞在した合計の時間の内ｏｐｅｎ ａｒｍに滞在した時間（Tｉｍｅ ｉｎ ｏｐｅｎ ａｒｍ、％）およびｏｐｅｎ ａｒｍに進入した回数（Ｅｎｔｒｉｅｓ ｔｏ ｏｐｅｎ ａｒｍ）を測定した。
長さ３０ｃｍ×幅７ｃｍの４本のアームを十字迷路として、床から３０ｃｍの高さに設置した。４本のアームのうち、２本は壁の無いｏｐｅｎ ａｒｍ、２本は高さ２０ｃｍの壁があるｃｌｏｓｅｄ ａｒｍとした。この高架式十字迷路の中心にマウスを置いた。直後から１５分間の行動をビデオ撮影した。十字迷路内の１５分間の行動をＥｔｈｏＶｉｓｉｏｎ ＸＴ ８．５で解析し、総移動距離（ｔｏｔａｌ ｄｉｓｔａｎｃｅ、ｃｍ／１５分）、マウスがｃｌｏｓｅｄ ａｒｍとｏｐｅｎ ａｒｍに滞在した合計の時間の内ｏｐｅｎ ａｒｍに滞在した時間（Tｉｍｅ ｉｎ ｏｐｅｎ ａｒｍ、％）およびｏｐｅｎ ａｒｍに進入した回数（Ｅｎｔｒｉｅｓ ｔｏ ｏｐｅｎ ａｒｍ）を測定した。
２−４． Ｙ字型迷路試験
３本のアームが長さ４２ｃｍ、深さ１５ｃｍ、アーム間の角度が１２０°のＹ字型迷路を設置した。Ｙ字型迷路の中心にマウスを置いた。直後から１５分間の行動をビデオ撮影した。撮影した１５分間の行動をＥｔｈｏＶｉｓｉｏｎ ＸＴ ８．５で追跡、解析した。総移動距離（ｃｍ／１５分）を測定した。加えて、マウスが全てのアームに侵入した回数と、続けて３回異なるアームに入った回数（交替行動数）を数え、ａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）を算出した。ａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）は以下の式で表される：
［式１］
ａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）＝交替行動数÷（総侵入回数−２）×１００
３本のアームが長さ４２ｃｍ、深さ１５ｃｍ、アーム間の角度が１２０°のＹ字型迷路を設置した。Ｙ字型迷路の中心にマウスを置いた。直後から１５分間の行動をビデオ撮影した。撮影した１５分間の行動をＥｔｈｏＶｉｓｉｏｎ ＸＴ ８．５で追跡、解析した。総移動距離（ｃｍ／１５分）を測定した。加えて、マウスが全てのアームに侵入した回数と、続けて３回異なるアームに入った回数（交替行動数）を数え、ａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）を算出した。ａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）は以下の式で表される：
［式１］
ａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）＝交替行動数÷（総侵入回数−２）×１００
２−５． プレパルスインヒビション試験
Ｔｈｅ ＳＲ−ＬＡＢ（商標） Ｓｔａｒｔｌｅ Ｒｅｓｐｏｎｓｅ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）により音刺激に対する驚愕反応を測定した。アクリル製の筒に対象の動物を入れ、７０ｄＢのホワイトノイズによる３０分間の馴らしを行った。その後、４０ミリ秒のホワイトノイズの後に、６種類のプレパルスのいずれか（ホワイトノイズのみ、７４ｄＢ、７８ｄＢ、８２ｄＢ、８６ｄＢ、９０ｄＢ）を２０ミリ秒与えた。続けて１００ミリ秒の無音時間の後に、４０ミリ秒間、１２０ｄＢの驚愕音刺激を与え、驚愕刺激音時の驚愕反応を測定した。各プレパルスと驚愕音刺激の組み合わせは各７回ランダムに提示した。驚愕音刺激後のインターバル時間は２５ミリ秒から６０ミリ秒の間でランダムに与えた。測定したデータからプレパルスインヒビション（ＰＰＩ，％）を算出した。ＰＰＩ（％）は以下の式で表される：
［式２］
｛１−（プレパルスありでの驚愕反応の大きさ）／（プレパルスなしでの驚愕反応の大きさ）｝×１００
Ｔｈｅ ＳＲ−ＬＡＢ（商標） Ｓｔａｒｔｌｅ Ｒｅｓｐｏｎｓｅ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）により音刺激に対する驚愕反応を測定した。アクリル製の筒に対象の動物を入れ、７０ｄＢのホワイトノイズによる３０分間の馴らしを行った。その後、４０ミリ秒のホワイトノイズの後に、６種類のプレパルスのいずれか（ホワイトノイズのみ、７４ｄＢ、７８ｄＢ、８２ｄＢ、８６ｄＢ、９０ｄＢ）を２０ミリ秒与えた。続けて１００ミリ秒の無音時間の後に、４０ミリ秒間、１２０ｄＢの驚愕音刺激を与え、驚愕刺激音時の驚愕反応を測定した。各プレパルスと驚愕音刺激の組み合わせは各７回ランダムに提示した。驚愕音刺激後のインターバル時間は２５ミリ秒から６０ミリ秒の間でランダムに与えた。測定したデータからプレパルスインヒビション（ＰＰＩ，％）を算出した。ＰＰＩ（％）は以下の式で表される：
［式２］
｛１−（プレパルスありでの驚愕反応の大きさ）／（プレパルスなしでの驚愕反応の大きさ）｝×１００
２−６． 受動回避試験
照明で明るくした明室と、電気ショック発生装置とつなげたグリッドを備える床が設置された暗室とが連結されている装置を用いた。１日目にマウスを明室に入れ、暗室に入室するまでの時間を測定した。暗室に入室後、明室と暗室の間の扉を閉め、０．３ｍＡ、６０Ｈｚの電気ショックを１秒間与えた。その後、ホームケージに戻した。２４時間後に、明室に入れ、暗室に入室するまでの時間を測定した。
照明で明るくした明室と、電気ショック発生装置とつなげたグリッドを備える床が設置された暗室とが連結されている装置を用いた。１日目にマウスを明室に入れ、暗室に入室するまでの時間を測定した。暗室に入室後、明室と暗室の間の扉を閉め、０．３ｍＡ、６０Ｈｚの電気ショックを１秒間与えた。その後、ホームケージに戻した。２４時間後に、明室に入れ、暗室に入室するまでの時間を測定した。
２−７． 強制水泳試験
直径１３．５ｃｍ×高さ２０ｃｍの筒に室温の水を高さ１４ｃｍまで入れ、その中心にマウスを置いた。直後から６分間の行動をビデオ撮影した。６分間の不動時間（秒）をストップウォッチで測定し、水中環境における不動時間を測定した。
直径１３．５ｃｍ×高さ２０ｃｍの筒に室温の水を高さ１４ｃｍまで入れ、その中心にマウスを置いた。直後から６分間の行動をビデオ撮影した。６分間の不動時間（秒）をストップウォッチで測定し、水中環境における不動時間を測定した。
３． 血漿中コルチコステロン濃度測定
イソフルランにより十分に麻酔をかけたマウスより血液を採取し、血漿中のコルチコステロン濃度をＥＩＡキット（Ｃａｙｍａｎ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐａｎｙ）を用いて測定した。
イソフルランにより十分に麻酔をかけたマウスより血液を採取し、血漿中のコルチコステロン濃度をＥＩＡキット（Ｃａｙｍａｎ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐａｎｙ）を用いて測定した。
４． 脳内モノアミン量測定
イソフルランにより十分に麻酔をかけたマウスより脳を素早く取り出し、１ｍｍ厚の冠状断スライスを調製した。スライスより大脳皮質前頭前野と側坐核を分離し、凍結保存した。凍結サンプルを、イソプロテレノールを内部標準として含む０．２Ｍ 過塩素酸溶液に入れ、超音波ホモジェナイザー（ＴＡＩＴＥＣ）を用いて氷中で破砕した。３０分の均質化後、得られた溶液を４℃で１５分間、２０，０００ｇの遠心分離に供した。上澄み液を０．４５μｍ Ｃｏｓｍｏｓｐｉｎ ｆｉｌｔｅｒ Ｈ（ナカライテスク）にて濾過した。高速液体クロマトグラフィー法により、３−メトキシ−４−ヒドロキシフェニルグリコール（ＭＨＰＧ）、ノルエピネフリン（ＮＥ）、ピネフリン（Ｅｐｉ）、３，４−ジヒドロキシフェニル酢酸（ＤＯＰＡＣ）、ノルメタネフリン（ＮＭ）、ドーパミン（ＤＡ）、５−ハイドロキシインドール酢酸（５−ＨＩＡＡ）、ホモバニール酸（ＨＶＡ）、３−メトキシチラミン（３−ＭＴ）、および５−ヒドロキシトリプタミン（５−ＨＴ）の量を測定した。
イソフルランにより十分に麻酔をかけたマウスより脳を素早く取り出し、１ｍｍ厚の冠状断スライスを調製した。スライスより大脳皮質前頭前野と側坐核を分離し、凍結保存した。凍結サンプルを、イソプロテレノールを内部標準として含む０．２Ｍ 過塩素酸溶液に入れ、超音波ホモジェナイザー（ＴＡＩＴＥＣ）を用いて氷中で破砕した。３０分の均質化後、得られた溶液を４℃で１５分間、２０，０００ｇの遠心分離に供した。上澄み液を０．４５μｍ Ｃｏｓｍｏｓｐｉｎ ｆｉｌｔｅｒ Ｈ（ナカライテスク）にて濾過した。高速液体クロマトグラフィー法により、３−メトキシ−４−ヒドロキシフェニルグリコール（ＭＨＰＧ）、ノルエピネフリン（ＮＥ）、ピネフリン（Ｅｐｉ）、３，４−ジヒドロキシフェニル酢酸（ＤＯＰＡＣ）、ノルメタネフリン（ＮＭ）、ドーパミン（ＤＡ）、５−ハイドロキシインドール酢酸（５−ＨＩＡＡ）、ホモバニール酸（ＨＶＡ）、３−メトキシチラミン（３−ＭＴ）、および５−ヒドロキシトリプタミン（５−ＨＴ）の量を測定した。
５． 統計処理
全ての統計処理はＧｒａｐｈ ｐａｄ Ｐｒｉｓｍ ６．０ （Ｇｒａｐｈ ｐａｄ ｓｏｆｔｗａｒｅ）を用いて行った。２群比較としてｔ検定を行った。他はＡＮＯＶＡ解析を行い、Ｂｏｎｆｅｒｒｏｎｉ多重比較により有意差を検定した。
全ての統計処理はＧｒａｐｈ ｐａｄ Ｐｒｉｓｍ ６．０ （Ｇｒａｐｈ ｐａｄ ｓｏｆｔｗａｒｅ）を用いて行った。２群比較としてｔ検定を行った。他はＡＮＯＶＡ解析を行い、Ｂｏｎｆｅｒｒｏｎｉ多重比較により有意差を検定した。
６． 結果
上述した試験の結果を以下に示す。
上述した試験の結果を以下に示す。
６−１． 新規物体認識試験
結果を図１に示す。通常飼育したＷＴでは、ＴｒａｉｎｉｎｇとＲｅｔｅｎｔｉｏｎでの２つの物体の識別率に有意差が見られた。このことは、通常飼育したＷＴは新規物体を認識できることを示している。＊＊， ｐ＜０．０１。これに対して、ＨｅｔとＫＯでは、ＴｒａｉｎｉｎｇとＲｅｔｅｎｔｉｏｎでの２つの物体の識別率に有意差が見られなかった（ｎ．ｓ．：ｎｏｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ）。このことは、通常飼育したＨｅｔとＫＯは新規物体を認識できない、すなわち認知機能が低下していることを示している。ＷＴ， ｎ＝９；Ｈｅｔ， ｎ＝１０；ＫＯ， ｎ＝１１。すなわち、ＨｅｔとＫＯマウスはストレスを与えない状態であっても、学習障害、認知症の行動モデルとして用いることができる。
結果を図１に示す。通常飼育したＷＴでは、ＴｒａｉｎｉｎｇとＲｅｔｅｎｔｉｏｎでの２つの物体の識別率に有意差が見られた。このことは、通常飼育したＷＴは新規物体を認識できることを示している。＊＊， ｐ＜０．０１。これに対して、ＨｅｔとＫＯでは、ＴｒａｉｎｉｎｇとＲｅｔｅｎｔｉｏｎでの２つの物体の識別率に有意差が見られなかった（ｎ．ｓ．：ｎｏｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ）。このことは、通常飼育したＨｅｔとＫＯは新規物体を認識できない、すなわち認知機能が低下していることを示している。ＷＴ， ｎ＝９；Ｈｅｔ， ｎ＝１０；ＫＯ， ｎ＝１１。すなわち、ＨｅｔとＫＯマウスはストレスを与えない状態であっても、学習障害、認知症の行動モデルとして用いることができる。
６−２． オープンフィールド試験
結果を図２に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯは新規環境における自発行動量に差は無かった（Ａ）。Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．８４１９。ＷＴ， ｎ＝９；Ｈｅｔ， ｎ＝１０；ＫＯ， ｎ＝１１。社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）は有意に自発行動量の低下を認めた（Ｂ）。Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．００７４。＊， ｐ＜０．０５。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。
結果を図２に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯは新規環境における自発行動量に差は無かった（Ａ）。Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．８４１９。ＷＴ， ｎ＝９；Ｈｅｔ， ｎ＝１０；ＫＯ， ｎ＝１１。社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）は有意に自発行動量の低下を認めた（Ｂ）。Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．００７４。＊， ｐ＜０．０５。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。
６−３． 高架式十字迷路試験
結果を図３に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯは高架式十字迷路試験における行動量、ｏｐｅｎ ａｒｍの滞在時間、ｏｐｅｎ ａｒｍに入る回数に差は無かった（Ａ）。ＷＴ， ｎ＝９； Ｈｅｔ， ｎ＝１０； ＫＯ， ｎ＝１１。社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）は有意に高架式十字迷路試験における行動量の増加を認めた（Ｂ上段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．０３８３）。＊， ｐ＜０．０５。また、社会孤立ストレスを与えた場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、ｏｐｅｎ ａｒｍの滞在時間（％）が有意に増加した（Ｂ中段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．０００３）。さらに、社会孤立ストレスを与えた場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、ｏｐｅｎ ａｒｍに入る回数が有意に増加した（Ｂ下段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＜０．０００１）。＊， ｐ＜０．０５、＊＊＊， ｐ＜０．００１、＊＊＊， ｐ＜０．０００１。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。このことは、社会孤立ストレスを与えたＨｅｔマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−Ｈｅｔ）およびＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）で、迷路試験での落ち着きのなさと衝動性の増加がある事を示す。すなわち、社会孤立ストレスを与えたＨｅｔマウスおよびＫＯマウスは、統合失調症、双極性障害、多動性障害の行動モデルとして用いることができる。
結果を図３に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯは高架式十字迷路試験における行動量、ｏｐｅｎ ａｒｍの滞在時間、ｏｐｅｎ ａｒｍに入る回数に差は無かった（Ａ）。ＷＴ， ｎ＝９； Ｈｅｔ， ｎ＝１０； ＫＯ， ｎ＝１１。社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）は有意に高架式十字迷路試験における行動量の増加を認めた（Ｂ上段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．０３８３）。＊， ｐ＜０．０５。また、社会孤立ストレスを与えた場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、ｏｐｅｎ ａｒｍの滞在時間（％）が有意に増加した（Ｂ中段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．０００３）。さらに、社会孤立ストレスを与えた場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、ｏｐｅｎ ａｒｍに入る回数が有意に増加した（Ｂ下段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＜０．０００１）。＊， ｐ＜０．０５、＊＊＊， ｐ＜０．００１、＊＊＊， ｐ＜０．０００１。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。このことは、社会孤立ストレスを与えたＨｅｔマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−Ｈｅｔ）およびＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）で、迷路試験での落ち着きのなさと衝動性の増加がある事を示す。すなわち、社会孤立ストレスを与えたＨｅｔマウスおよびＫＯマウスは、統合失調症、双極性障害、多動性障害の行動モデルとして用いることができる。
６−４． Ｙ字型迷路試験
結果を図４に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、Ｙ字型迷路試験における行動量とａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）に差は無かった（Ａ）。ＷＴ， ｎ＝９；Ｈｅｔ， ｎ＝１０；ＫＯ， ｎ＝１１。社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）は有意にＹ字型迷路試験における行動量の増加を認めた（Ｂ上段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．０３４７）。＊， ｐ＜０．０５。ａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）には差が無かった（Ｂ下段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．７１７３）。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。このことは、社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）において、短期記憶に差は無いが、迷路試験で落ち着きがないことを示す。
結果を図４に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、Ｙ字型迷路試験における行動量とａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）に差は無かった（Ａ）。ＷＴ， ｎ＝９；Ｈｅｔ， ｎ＝１０；ＫＯ， ｎ＝１１。社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）は有意にＹ字型迷路試験における行動量の増加を認めた（Ｂ上段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．０３４７）。＊， ｐ＜０．０５。ａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）には差が無かった（Ｂ下段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．７１７３）。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。このことは、社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）において、短期記憶に差は無いが、迷路試験で落ち着きがないことを示す。
６−５． プレパルスインヒビション試験
結果を図５に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、プレパルスインヒビション試験における驚愕反応とＰＰＩ（％）に差は無かった。ＷＴ， ｎ＝９；Ｈｅｔ， ｎ＝１０；ＫＯ， ｎ＝１１。社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）では、プレパルスインヒビション試験における驚愕反応に差は無かった（Ｂ上段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．８２９７）。一方、社会孤立ストレスを与えた場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、ＰＰＩ（％）の低下が見られた（Ｂ下段、Ｔｗｏ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．０００７）。＊， ｐ＜０．０５。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。このことは、社会孤立ストレスを与えたＨｅｔマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−Ｈｅｔ）およびＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）で、感覚運動統合の障害がある事を示す。すなわち、社会孤立ストレスを与えたＨｅｔマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−Ｈｅｔ）およびＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）は統合失調症モデルとして用いることができる。
結果を図５に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、プレパルスインヒビション試験における驚愕反応とＰＰＩ（％）に差は無かった。ＷＴ， ｎ＝９；Ｈｅｔ， ｎ＝１０；ＫＯ， ｎ＝１１。社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）では、プレパルスインヒビション試験における驚愕反応に差は無かった（Ｂ上段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．８２９７）。一方、社会孤立ストレスを与えた場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、ＰＰＩ（％）の低下が見られた（Ｂ下段、Ｔｗｏ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．０００７）。＊， ｐ＜０．０５。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。このことは、社会孤立ストレスを与えたＨｅｔマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−Ｈｅｔ）およびＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）で、感覚運動統合の障害がある事を示す。すなわち、社会孤立ストレスを与えたＨｅｔマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−Ｈｅｔ）およびＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）は統合失調症モデルとして用いることができる。
６−６． 受動回避試験
結果を図６に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯは、電気ショックを受けた翌日（Ｄａｙ２）において、電気ショックを受けた部屋へ入るまでの時間（縦軸）が有意に増加した（Ａ）。＊＊＊＊， ｐ＜０．０００１。これは、忌避学習できていることを示す。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝６；ＫＯ， ｎ＝９。社会孤立ストレスを与えたＷＴ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＷＴ）、Ｈｅｔ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−Ｈｅｔ）は、電気ショックを受けた翌日（Ｄａｙ２）において、電気ショックを受けた部屋へ入るまでの時間（縦軸）が有意に増加した（Ｂ）。＊＊， ｐ＜０．０１、＊＊＊＊， ｐ＜０．０００１。これに対して、社会孤立ストレスを与えたＫＯ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）では有意差がみられず（ｎ．ｓ．： ｎｏｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ）、忌避学習に障害が見られた（Ｂ）。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。すなわち、社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）は統合失調症、学習障害、認知症の行動モデルとして用いることができる。
結果を図６に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯは、電気ショックを受けた翌日（Ｄａｙ２）において、電気ショックを受けた部屋へ入るまでの時間（縦軸）が有意に増加した（Ａ）。＊＊＊＊， ｐ＜０．０００１。これは、忌避学習できていることを示す。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝６；ＫＯ， ｎ＝９。社会孤立ストレスを与えたＷＴ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＷＴ）、Ｈｅｔ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−Ｈｅｔ）は、電気ショックを受けた翌日（Ｄａｙ２）において、電気ショックを受けた部屋へ入るまでの時間（縦軸）が有意に増加した（Ｂ）。＊＊， ｐ＜０．０１、＊＊＊＊， ｐ＜０．０００１。これに対して、社会孤立ストレスを与えたＫＯ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）では有意差がみられず（ｎ．ｓ．： ｎｏｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ）、忌避学習に障害が見られた（Ｂ）。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。すなわち、社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）は統合失調症、学習障害、認知症の行動モデルとして用いることができる。
６−７． 強制水泳試験
結果を図７に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、強制水泳試験における不動時間に差は無かった（Ａ）。ＷＴ， ｎ＝１１；Ｈｅｔ， ｎ＝１０；ＫＯ， ｎ＝９。社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）では、有意に強制水泳試験における不動時間の増加が見られた（Ｂ）。Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．００２３。＊， ｐ＜０．０５、＊＊， ｐ＜０．０１。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。このことは、社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）は、うつ傾向が強いことを示している。すなわち、社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）はうつ病、統合失調症の行動モデルとして用いることができる。
結果を図７に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、強制水泳試験における不動時間に差は無かった（Ａ）。ＷＴ， ｎ＝１１；Ｈｅｔ， ｎ＝１０；ＫＯ， ｎ＝９。社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）では、有意に強制水泳試験における不動時間の増加が見られた（Ｂ）。Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．００２３。＊， ｐ＜０．０５、＊＊， ｐ＜０．０１。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。このことは、社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）は、うつ傾向が強いことを示している。すなわち、社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）はうつ病、統合失調症の行動モデルとして用いることができる。
６−８． 血漿中コルチコステロン濃度
結果を図８に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、血漿中コルチコステロン濃度に差は無かった（Ａ）。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１０；ＫＯ， ｎ＝９。社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）では、有意に血漿中コルチコステロン濃度の増加が見られた（Ｂ）。Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．００８８。＊， ｐ＜０．０５。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。
結果を図８に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、血漿中コルチコステロン濃度に差は無かった（Ａ）。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１０；ＫＯ， ｎ＝９。社会孤立ストレスを与えたＫＯマウス（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）では、有意に血漿中コルチコステロン濃度の増加が見られた（Ｂ）。Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．００８８。＊， ｐ＜０．０５。ＷＴ， ｎ＝１０；Ｈｅｔ， ｎ＝１４；ＫＯ， ｎ＝９。
６−９． 大脳皮質前頭前野のモノアミン濃度
結果を図９−１および図９−２に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、順に、大脳皮質前頭前野のＤＡ濃度が有意に増加した（Ａ）。＊， ｐ＜０．０５。ＷＴ， ｎ＝８；Ｈｅｔ， ｎ＝５；ＫＯ， ｎ＝６。社会孤立ストレスを与えたＷＴ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＷＴ）、Ｈｅｔ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−Ｈｅｔ）、ＫＯ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）では、順に、大脳皮質前頭前野の５−ＨＴ濃度が減少する傾向が見られた（Ｂ）。ＷＴ， ｎ＝６；Ｈｅｔ， ｎ＝７；ＫＯ， ｎ＝５。
結果を図９−１および図９−２に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、順に、大脳皮質前頭前野のＤＡ濃度が有意に増加した（Ａ）。＊， ｐ＜０．０５。ＷＴ， ｎ＝８；Ｈｅｔ， ｎ＝５；ＫＯ， ｎ＝６。社会孤立ストレスを与えたＷＴ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＷＴ）、Ｈｅｔ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−Ｈｅｔ）、ＫＯ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）では、順に、大脳皮質前頭前野の５−ＨＴ濃度が減少する傾向が見られた（Ｂ）。ＷＴ， ｎ＝６；Ｈｅｔ， ｎ＝７；ＫＯ， ｎ＝５。
６−１０． 側坐核のモノアミン濃度
結果を図１０−１および図１０−２に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、側坐核のモノアミン濃度に差は無かった（Ａ）。＊， ｐ＜０．０５。ＷＴ， ｎ＝８；Ｈｅｔ， ｎ＝５；ＫＯ， ｎ＝６。社会孤立ストレスを与えたＷＴ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＷＴ）、Ｈｅｔ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−Ｈｅｔ）、ＫＯ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）では、順に、側坐核の５−ＨＴ濃度が減少する傾向が見られた（Ｂ）。ＷＴ， ｎ＝６；Ｈｅｔ， ｎ＝７；ＫＯ， ｎ＝５。
結果を図１０−１および図１０−２に示す。通常飼育したＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、側坐核のモノアミン濃度に差は無かった（Ａ）。＊， ｐ＜０．０５。ＷＴ， ｎ＝８；Ｈｅｔ， ｎ＝５；ＫＯ， ｎ＝６。社会孤立ストレスを与えたＷＴ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＷＴ）、Ｈｅｔ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−Ｈｅｔ）、ＫＯ（ｉｓｏｌａｔｉｏｎ−ＫＯ）では、順に、側坐核の５−ＨＴ濃度が減少する傾向が見られた（Ｂ）。ＷＴ， ｎ＝６；Ｈｅｔ， ｎ＝７；ＫＯ， ｎ＝５。
６−１１． 生理食塩水あるいはＰＣＰの連日投与７日目の薬物投与後行動量
結果を図１１に示す。生理食塩水を連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯ間で投与後行動量に差は無かった（Ａ）。ＷＴ， ｎ＝７； Ｈｅｔ， ｎ＝６； ＫＯ， ｎ＝５。ＰＣＰを連日投与した場合、７日目の薬物投与後行動量は、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に有意に増加した。Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．００３４。＊， ｐ＜０．０５。ＷＴ， ｎ＝５； Ｈｅｔ， ｎ＝６； ＫＯ， ｎ＝５。このことは、薬物ストレスを与えたＫＯマウス（ＰＣＰ−ＫＯ）はＰＣＰに対する感受性が増加していることを示している。すなわち、薬物ストレスを与えたＫＯマウス（ＰＣＰ−ＫＯ）は薬物依存症、統合失調症の行動モデルとして用いることができる。
結果を図１１に示す。生理食塩水を連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯ間で投与後行動量に差は無かった（Ａ）。ＷＴ， ｎ＝７； Ｈｅｔ， ｎ＝６； ＫＯ， ｎ＝５。ＰＣＰを連日投与した場合、７日目の薬物投与後行動量は、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に有意に増加した。Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．００３４。＊， ｐ＜０．０５。ＷＴ， ｎ＝５； Ｈｅｔ， ｎ＝６； ＫＯ， ｎ＝５。このことは、薬物ストレスを与えたＫＯマウス（ＰＣＰ−ＫＯ）はＰＣＰに対する感受性が増加していることを示している。すなわち、薬物ストレスを与えたＫＯマウス（ＰＣＰ−ＫＯ）は薬物依存症、統合失調症の行動モデルとして用いることができる。
６−１２． 生理食塩水あるいはＰＣＰの連日投与後の高架式十字迷路試験
結果を図１２に示す。生理食塩水を連日投与した場合においてもＰＣＰを連日投与した場合においても、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯ間で高架式十字迷路試験における行動量に差は無かった（Ａ上段、Ｂ上段）。ＷＴ， ｎ＝８； Ｈｅｔ， ｎ＝８； ＫＯ， ｎ＝５； ＰＣＰ−ＷＴ， ｎ＝５； ＰＣＰ−Ｈｅｔ， ｎ＝７； ＰＣＰ−ＫＯ， ｎ＝６。ＰＣＰを連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、ｏｐｅｎ ａｒｍの滞在時間（％）が有意に増加した（Ｂ中段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．００８４）。また、ＰＣＰを連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、ｏｐｅｎ ａｒｍに入る回数が有意に増加した（Ｂ下段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．０１５４）。＊， Ｐ＜０．０５。このことは、薬物ストレスを与えたＫＯマウス（ＰＣＰ−ＫＯ）で衝動性の増加があることを示す。すなわち、薬物ストレスを与えたＫＯマウスは統合失調症、双極性障害、多動性障害の行動モデルとして用いることができる。
結果を図１２に示す。生理食塩水を連日投与した場合においてもＰＣＰを連日投与した場合においても、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯ間で高架式十字迷路試験における行動量に差は無かった（Ａ上段、Ｂ上段）。ＷＴ， ｎ＝８； Ｈｅｔ， ｎ＝８； ＫＯ， ｎ＝５； ＰＣＰ−ＷＴ， ｎ＝５； ＰＣＰ−Ｈｅｔ， ｎ＝７； ＰＣＰ−ＫＯ， ｎ＝６。ＰＣＰを連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、ｏｐｅｎ ａｒｍの滞在時間（％）が有意に増加した（Ｂ中段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．００８４）。また、ＰＣＰを連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、ｏｐｅｎ ａｒｍに入る回数が有意に増加した（Ｂ下段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．０１５４）。＊， Ｐ＜０．０５。このことは、薬物ストレスを与えたＫＯマウス（ＰＣＰ−ＫＯ）で衝動性の増加があることを示す。すなわち、薬物ストレスを与えたＫＯマウスは統合失調症、双極性障害、多動性障害の行動モデルとして用いることができる。
６−１３． 生理食塩水あるいはＰＣＰの連日投与後のＹ字型迷路試験
結果を図１３に示す。生理食塩水を連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、Ｙ字型迷路試験における行動量とａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）に差は無かった（Ａ）。ＷＴ， ｎ＝８； Ｈｅｔ， ｎ＝８； ＫＯ， ｎ＝５。ＰＣＰを連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、Ｙ字型迷路試験における行動量が有意に増加した（Ｂ上段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．００１３）。＊， ｐ＜０．０５、＊＊， ｐ＜０．０１。Ａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）には差が無かった（Ｂ下段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．２３５１）。ＷＴ， ｎ＝５； Ｈｅｔ， ｎ＝７； ＫＯ， ｎ＝６。このことは、薬物ストレスを与えたＫＯマウス（ＰＣＰ−ＫＯ）において、短期記憶に差は無いが、迷路試験で落ち着きがないことを示す。
結果を図１３に示す。生理食塩水を連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯでは、Ｙ字型迷路試験における行動量とａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）に差は無かった（Ａ）。ＷＴ， ｎ＝８； Ｈｅｔ， ｎ＝８； ＫＯ， ｎ＝５。ＰＣＰを連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、Ｙ字型迷路試験における行動量が有意に増加した（Ｂ上段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．００１３）。＊， ｐ＜０．０５、＊＊， ｐ＜０．０１。Ａｌｔｅｒｎａｔｉｏｎ（％）には差が無かった（Ｂ下段、Ｏｎｅ ｗａｙ ＡＮＯＶＡ ｐ＝０．２３５１）。ＷＴ， ｎ＝５； Ｈｅｔ， ｎ＝７； ＫＯ， ｎ＝６。このことは、薬物ストレスを与えたＫＯマウス（ＰＣＰ−ＫＯ）において、短期記憶に差は無いが、迷路試験で落ち着きがないことを示す。
６−１４． 生理食塩水あるいはＰＣＰの連日投与後のプレパルスインヒビション試験
結果を図１４に示す。生理食塩水を連日投与した場合においてもＰＣＰを連日投与した場合においても、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯ間でプレパルスインヒビション試験における驚愕反応に差は無かった（Ａ上段、Ｂ上段）。ＷＴ， ｎ＝９； Ｈｅｔ， ｎ＝８； ＫＯ， ｎ＝６； ＰＣＰ−ＷＴ， ｎ＝５； ＰＣＰ−Ｈｅｔ， ｎ＝７； ＰＣＰ−ＫＯ， ｎ＝８。ＰＣＰを連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、ＰＰＩ（％）の低下が見られた（Ｂ下段）。ＰＣＰ−ＷＴ ｖｓ ＰＣＰ−ＫＯ， ＊， ｐ＜０．０５。このことは、薬物ストレスを与えたＫＯマウス（ＰＣＰ−ＫＯ）で、感覚運動統合の障害があることを示す。すなわち、薬物ストレスを与えたＫＯマウスは統合失調症の行動モデルとして用いることができる。
結果を図１４に示す。生理食塩水を連日投与した場合においてもＰＣＰを連日投与した場合においても、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯ間でプレパルスインヒビション試験における驚愕反応に差は無かった（Ａ上段、Ｂ上段）。ＷＴ， ｎ＝９； Ｈｅｔ， ｎ＝８； ＫＯ， ｎ＝６； ＰＣＰ−ＷＴ， ｎ＝５； ＰＣＰ−Ｈｅｔ， ｎ＝７； ＰＣＰ−ＫＯ， ｎ＝８。ＰＣＰを連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯの順に、ＰＰＩ（％）の低下が見られた（Ｂ下段）。ＰＣＰ−ＷＴ ｖｓ ＰＣＰ−ＫＯ， ＊， ｐ＜０．０５。このことは、薬物ストレスを与えたＫＯマウス（ＰＣＰ−ＫＯ）で、感覚運動統合の障害があることを示す。すなわち、薬物ストレスを与えたＫＯマウスは統合失調症の行動モデルとして用いることができる。
６−１５． 生理食塩水あるいはＰＣＰの連日投与後の受動回避試験
結果を図１５に示す。生理食塩水を連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯは、電気ショックを受けた翌日（Ｄａｙ２）において、電気ショックを受けた部屋へ入るまでの時間（縦軸）が有意に増加した（Ａ）。＊＊＊＊， ｐ＜０．０００１、＊＊， ｐ＜０．０１。ＷＴ， ｎ＝８； Ｈｅｔ， ｎ＝８； ＫＯ， ｎ＝５。ＰＣＰを連日投与した場合、ＷＴ（ＰＣＰ−ＷＴ）、Ｈｅｔ（ＰＣＰ−Ｈｅｔ）は、電気ショックを受けた翌日（Ｄａｙ２）において、電気ショックを受けた部屋へ入るまでの時間（縦軸）が有意に増加した（Ｂ）。＊＊＊＊， ｐ＜０．０００１、＊＊， ｐ＜０．０１。これに対して、ＫＯ（ＰＣＰ−ＫＯ）は有意差がみられず（ｎ．ｓ．： ｎｏｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ）、忌避学習に障害がみられた（Ｂ）。ＷＴ， ｎ＝５； Ｈｅｔ， ｎ＝７； ＫＯ， ｎ＝６。すなわち、薬物ストレスを与えたＫＯマウス（ＰＣＰ−ＫＯ）は統合失調症、学習障害、認知症の行動モデルとして用いることができる。
結果を図１５に示す。生理食塩水を連日投与した場合、ＷＴ、Ｈｅｔ、ＫＯは、電気ショックを受けた翌日（Ｄａｙ２）において、電気ショックを受けた部屋へ入るまでの時間（縦軸）が有意に増加した（Ａ）。＊＊＊＊， ｐ＜０．０００１、＊＊， ｐ＜０．０１。ＷＴ， ｎ＝８； Ｈｅｔ， ｎ＝８； ＫＯ， ｎ＝５。ＰＣＰを連日投与した場合、ＷＴ（ＰＣＰ−ＷＴ）、Ｈｅｔ（ＰＣＰ−Ｈｅｔ）は、電気ショックを受けた翌日（Ｄａｙ２）において、電気ショックを受けた部屋へ入るまでの時間（縦軸）が有意に増加した（Ｂ）。＊＊＊＊， ｐ＜０．０００１、＊＊， ｐ＜０．０１。これに対して、ＫＯ（ＰＣＰ−ＫＯ）は有意差がみられず（ｎ．ｓ．： ｎｏｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ）、忌避学習に障害がみられた（Ｂ）。ＷＴ， ｎ＝５； Ｈｅｔ， ｎ＝７； ＫＯ， ｎ＝６。すなわち、薬物ストレスを与えたＫＯマウス（ＰＣＰ−ＫＯ）は統合失調症、学習障害、認知症の行動モデルとして用いることができる。
本発明の精神疾患モデル動物は、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、うつ病、薬物依存症などの精神疾患に対応する動物モデルとして用いることができる。それゆえ、精神疾患の治療薬を開発するためのモデル動物として有用である。また、本発明の精神疾患モデル動物を用いることで、精神疾患のバイオマーカーをスクリーニングすることができる。したがって、本発明は、医療分野や医薬品開発において有用である。
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SEQ ID NO:4: KPNA1ターゲティングベクター
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Claims (15)
- 精神疾患の非ヒトモデル動物を製造する方法であって、（ａ）非ヒト動物のカリオフェリンα（ＫＰＮＡ）１遺伝子またはそのホモログの全部または一部の機能を喪失させる段階を含む、方法。
- （ｂ）段階（ａ）で得られた非ヒト動物にストレスを与える段階をさらに含む、請求項１に記載の方法。
- ストレスが社会孤立ストレスである、請求項２に記載の方法。
- ストレスが薬物によるストレスである、請求項２に記載の方法。
- 薬物がフェンシクリジン、ジゾシルピン（ＭＫ８０１）、メタンフェタミン、アンフェタミン、コカイン、モルヒネ、カンナビノイド、Δ９−テトラヒドロカンナビノール（Δ９−ＴＨＣ）である、請求項４に記載の方法。
- 精神疾患が、統合失調症、双極性障害、多動性障害、学習障害、認知症、およびうつ病から選択される１つ以上の疾患である、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
- 精神疾患が薬物依存症である、請求項４または５に記載の方法。
- 段階（ａ）が、ＫＰＮＡ１遺伝子またはそのホモログをホモでノックアウトすることによって実施される、請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
- 非ヒト動物が非ヒト哺乳動物である、請求項１〜８のいずれか一項に記載の方法。
- 非ヒト哺乳動物が、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、イヌ、ネコ、ヤギ、ミニブタ、ブタ、ヒツジ、ウシ、サルおよびチンパンジーからなる群から選択される動物である、請求項９に記載の方法。
- 請求項１〜１０のいずれか一項に記載の方法によって製造された、精神疾患の非ヒトモデル動物またはそれらの子孫動物。
- 請求項１１に記載の動物から単離された組織または細胞。
- 精神疾患の予防または治療薬のスクリーニング方法であって、
（ａ）請求項１１に記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ）段階（ａ）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法。 - 被験物質の精神疾患への効能および／または有害性を評価する方法であって、
（ａ）請求項１１に記載の動物に被験物質を投与する段階、
（ｂ）段階（ａ）で得られた動物に行動課題を課す段階、および
（ｃ）該被験物質の投与前後において、行動課題の結果を比較する段階
を含む、方法。 - 精神疾患のバイオマーカーのスクリーニング方法であって、
（ａ）請求項１１に記載の動物、および当該動物と同種の野生型動物のそれぞれから生体試料を採取する段階、
（ｂ）段階（ａ）で得られた生体試料中の核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を調べ、それぞれの動物における核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質の転写または発現パターンを比較する段階、および
（ｃ）段階（ｂ）における比較の結果に基づいて、精神疾患の指標となる核酸、タンパク質、代謝産物、または脂質を選択する段階
を含む、方法。
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| MORIYAMA, T., ET AL.: "Targeted disruption of one of the importion alpha family members leads to female functional incompet", FEBS JOURNAL, vol. 278, JPN6018016903, 2011, pages 1561 - 1572, ISSN: 0004639793 * |
| SHMIDT, T., ET AL.: "Normal brain development in importin-alpha5 deficient mice", NATURE CELL BIOLOGY, vol. 9, no. 12, JPN6018016904, December 2007 (2007-12-01), pages 1337 - 1339, ISSN: 0004639794 * |
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