JPWO2017175736A1 - Method for preparing membrane vesicles suitable for biophysical analysis - Google Patents
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Abstract
（１）膜小胞を含む試料溶液を限外濾過処理する工程と、（２）前記（１）の工程により得られた試料溶液を、コロイド凝集剤を含まない緩衝液により置換する工程と、これにより、膜小胞を含む緩衝溶液が調製され、（３）前記（２）の工程により得られた緩衝溶液に含まれる膜小胞を、密度勾配遠心により分離する工程とを含む、膜小胞集団の調製方法を提供する。また、試料溶液から分離精製された膜小胞集団であって、前記膜小胞集団に含まれる膜小胞が分散されており、かつ、（ｉ）前記膜小胞集団に含まれる膜小胞が、分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの表面電荷を維持している、（ｉｉ）前記膜小胞集団に含まれる膜小胞が、分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの形態を維持している、および／または（ｉｉｉ）前記膜小胞集団が、分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの粒径分布パターンを維持している膜小胞集団を提供する。(1) a step of ultrafiltration treatment of a sample solution containing membrane vesicles; (2) a step of replacing the sample solution obtained by the step (1) with a buffer solution containing no colloidal flocculant; Thus, a buffer solution containing membrane vesicles is prepared, and (3) a membrane solution including the step of separating the membrane vesicles contained in the buffer solution obtained by the step (2) by density gradient centrifugation. Methods for preparing cell populations are provided. A membrane vesicle population separated and purified from the sample solution, wherein the membrane vesicles contained in the membrane vesicle population are dispersed; and (i) the membrane vesicles contained in the membrane vesicle population (Ii) The membrane vesicles contained in the membrane vesicle population were present in the sample solution before separation and purification. Provided is a membrane vesicle population that maintains its shape and / or (iii) a particle size distribution pattern when the membrane vesicle population is present in the sample solution prior to separation and purification To do.
Description
本発明は、生物物理学的解析に適した膜小胞の調製方法に関する。 The present invention relates to a method for preparing membrane vesicles suitable for biophysical analysis.
エキソソームなどの細胞から分泌される膜小胞は、その表面および内部にタンパク質やmiRNAなどの様々な生体分子を含んでおり、血液、尿、唾液などの体液中に安定的に存在する。また、エキソソームが細胞間の情報伝達ツールとして重要な役割を担っていることも明らかにされている。そのため、エキソソームなどの膜小胞はバイオマーカーのリソースとして注目されており、膜小胞に含まれる生体分子情報を解析することにより、がんなどの疾患を診断しようとする研究が盛んに行われている（非特許文献１）。また、膜小胞は、生体物質から構成されているため細胞毒性がなく、かつ、安定な構造を有することから、標的組織や疾患部位へ特異的に薬物を送達するための薬物送達システム（DDS）としての利用も期待されている。 Membrane vesicles secreted from cells such as exosomes contain various biomolecules such as proteins and miRNA on the surface and inside thereof, and are stably present in body fluids such as blood, urine and saliva. It has also been clarified that exosomes play an important role as an intercellular communication tool. For this reason, membrane vesicles such as exosomes are attracting attention as biomarker resources, and active research has been conducted to diagnose diseases such as cancer by analyzing biomolecular information contained in membrane vesicles. (Non-Patent Document 1). In addition, since membrane vesicles are composed of biological materials, they are non-cytotoxic and have a stable structure, so a drug delivery system (DDS) for specifically delivering drugs to target tissues and diseased sites. ) Is also expected.
膜小胞を単離精製する方法としては、超遠心分離法が確立されている。また、近年では、膜表面上の抗原を認識する抗体や、膜を構成する脂質を認識する因子を用いるアフィニティー法により、回収効率や操作性のさらなる改善が試みられている。一方、すでに確立されたプロトコールではいずれも、膜小胞を分離するためのサンプルの調製は、リン酸緩衝液（PBS）を用いて行われている（非特許文献２、３）。細胞質基質にはタンパク質や核酸などの生体分子が混雑過密状態で存在しており（非特許文献４）、こうした細胞内環境を再現するために開発されたPBSが、膜小胞に含まれる生体分子を取り扱う上で適したものとして従来使用されている。
An ultracentrifugation method has been established as a method for isolating and purifying membrane vesicles. In recent years, attempts have been made to further improve recovery efficiency and operability by an affinity method using an antibody that recognizes an antigen on the membrane surface and a factor that recognizes a lipid constituting the membrane. On the other hand, in all established protocols, preparation of a sample for separating membrane vesicles is performed using a phosphate buffer (PBS) (Non-patent
上記いずれの従来方法によって単離精製されたエキソソーム群も、100 nm前後の単一ピークに分布する。しかし、最近の研究により、細胞から分泌される直前または直後のエキソソームが約50 nmの粒径を有していることが電子顕微鏡解析により確認された（非特許文献５、６）。したがって、この報告からは、従来の方法により単離精製された膜小胞は、細胞から分泌された直後の状態を維持しているものではない、すなわち、インタクトではない可能性が示唆された。
The exosome group isolated and purified by any of the above conventional methods is distributed in a single peak around 100 nm. However, recent studies have confirmed by electron microscopic analysis that exosomes immediately before or after being secreted from cells have a particle size of about 50 nm (Non-patent
膜小胞は、単に生体脂質膜としての性質を有するだけでなく、固有の荷電や粒径などの物理化学的特性を有するナノコロイド粒子としての性質も有する。従来の研究は、膜小胞の構成成分を解明することを主要な目的としていたために、膜小胞のナノコロイド粒子としての特性には何ら配慮することなく膜小胞の精製単離が行われてきた。そのため、従来の研究においては、新規高感度疾患マーカーの探索や早期疾患診断方法の開発などに資する、膜小胞が有する有用かつ膨大な物理化学的情報が失われてしまっていたことは想像に難くない。 Membrane vesicles have not only properties as a biological lipid membrane but also properties as nanocolloid particles having physicochemical properties such as intrinsic charge and particle size. Conventional research has been aimed mainly at elucidating the constituents of membrane vesicles, and therefore purification and isolation of membrane vesicles has been carried out without considering the characteristics of membrane vesicles as nanocolloid particles. I have been. For this reason, in previous research, it was imagined that useful and enormous physicochemical information possessed by membrane vesicles, which contributes to the search for new highly sensitive disease markers and the development of early disease diagnosis methods, was lost. Not difficult.
本発明は、物理化学的特性を維持したインタクトな膜小胞を分離・精製するための、膜小胞の調製方法を提供することを目的とする。 An object of the present invention is to provide a method for preparing membrane vesicles for separating and purifying intact membrane vesicles maintaining physicochemical properties.
本発明者らは、膜小胞のナノコロイド粒子としての特性に着目し、鋭意検討の結果、コロイド凝集剤を含まない緩衝液を用いた密度勾配遠心分離法によって、インタクトな膜小胞の分離精製が可能であることを初めて見出した。 The present inventors paid attention to the characteristics of membrane vesicles as nanocolloid particles, and as a result of intensive studies, the separation of intact membrane vesicles by density gradient centrifugation using a buffer solution that does not contain colloidal flocculants. We found for the first time that purification is possible.
すなわち、本発明は、一実施形態によれば、以下の方法を提供するものである：
〔１〕（１）膜小胞を含む試料溶液を限外濾過処理する工程と、
（２）膜小胞を含む緩衝溶液を調製するために、前記（１）の工程により得られた試料溶液を、コロイド凝集剤を含まない緩衝液により置換する工程と、
（３）前記（２）の工程により得られた緩衝溶液に含まれる膜小胞を、密度勾配遠心により分離する工程と
を含む、膜小胞集団の調製方法。
〔２〕前記膜小胞を含む試料溶液が、生体液試料または培養液である、上記〔１〕に記載の方法。
〔３〕前記コロイド凝集剤を含まない緩衝液が、塩を実質的に含まない緩衝液である、上記〔１〕または〔２〕に記載の方法。
〔４〕前記コロイド凝集剤を含まない緩衝液のイオン強度が0〜135 mMである、上記〔１〕〜〔３〕のいずれかに記載の方法。
〔５〕前記コロイド凝集剤を含まない緩衝液がpH 5.5〜11.1の範囲で緩衝作用を有する、上記〔１〕〜〔３〕のいずれかに記載の方法。
〔６〕前記コロイド凝集剤を含まない緩衝液が、Bis-Tris緩衝液、MES緩衝液およびPIPES緩衝液からなる群より選択される、上記〔１〕〜〔５〕のいずれかに記載の方法。
〔７〕前記（１）の限外濾過処理が、分画分子量3〜100 kDaの限外濾過膜を用いて行われる、上記〔１〕〜〔６〕のいずれかに記載の方法。That is, the present invention, according to one embodiment, provides the following method:
[1] (1) a step of ultrafiltration of a sample solution containing membrane vesicles;
(2) replacing the sample solution obtained by the step (1) with a buffer solution containing no colloidal flocculant in order to prepare a buffer solution containing membrane vesicles;
(3) A method for preparing a membrane vesicle population, comprising the step of separating membrane vesicles contained in the buffer solution obtained by the step (2) by density gradient centrifugation.
[2] The method according to [1] above, wherein the sample solution containing the membrane vesicle is a biological fluid sample or a culture solution.
[3] The method according to [1] or [2] above, wherein the buffer solution containing no colloid flocculant is a buffer solution substantially free of salt.
[4] The method according to any one of [1] to [3] above, wherein the buffer solution containing no colloid flocculant has an ionic strength of 0 to 135 mM.
[5] The method according to any one of [1] to [3] above, wherein the buffer solution not containing the colloidal flocculant has a buffering action in a pH range of 5.5 to 11.1.
[6] The method according to any one of [1] to [5] above, wherein the buffer solution not containing the colloidal flocculant is selected from the group consisting of Bis-Tris buffer solution, MES buffer solution and PIPES buffer solution. .
[7] The method according to any one of [1] to [6] above, wherein the ultrafiltration treatment (1) is performed using an ultrafiltration membrane having a fractional molecular weight of 3 to 100 kDa.
また、本発明は、一実施形態によれば、以下の膜小胞集団を提供するものである：
〔８〕膜小胞を含む試料溶液から分離精製された膜小胞集団であって、前記膜小胞集団に含まれる膜小胞が分散されており、かつ、
（ｉ）前記膜小胞集団に含まれる膜小胞が、分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの表面電荷を維持している、
（ｉｉ）前記膜小胞集団に含まれる膜小胞が、分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの形態を維持している、および／または
（ｉｉｉ）前記膜小胞集団が、分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの粒径分布パターンを維持している、
膜小胞集団。
〔９〕前記試料溶液が、生体液試料または培養液である、上記〔８〕に記載の膜小胞集団。
〔１０〕60 nm以下の粒径を有する膜小胞を少なくとも5%含む、上記〔８〕または〔９〕に記載の膜小胞集団。
〔１１〕上記〔１〕〜〔７〕のいずれか１項に記載の方法により調製されたものである、膜小胞集団。The present invention also provides the following membrane vesicle population according to one embodiment:
[8] A membrane vesicle population separated and purified from a sample solution containing membrane vesicles, wherein the membrane vesicles contained in the membrane vesicle population are dispersed, and
(I) The membrane vesicles contained in the membrane vesicle population maintain the surface charge when present in the sample solution before separation and purification.
(Ii) The membrane vesicles contained in the membrane vesicle population maintain the form when they existed in the sample solution before separation and purification, and / or (iii) the membrane vesicle population is separated Maintaining the particle size distribution pattern when present in the sample solution before purification,
Membrane vesicle population.
[9] The membrane vesicle population according to [8], wherein the sample solution is a biological fluid sample or a culture solution.
[10] The membrane vesicle population according to [8] or [9] above, which contains at least 5% of membrane vesicles having a particle size of 60 nm or less.
[11] A membrane vesicle population prepared by the method according to any one of [1] to [7] above.
また、本発明は、一実施形態によれば、以下の組成物を提供するものである：
〔１２〕コロイド凝集剤を含まない緩衝液中に、上記〔８〕〜〔１１〕のいずれかに記載の膜小胞集団を含む組成物。
〔１３〕前記コロイド凝集剤を含まない緩衝液が、塩を実質的に含まない緩衝液である、上記〔１２〕に記載の組成物。
〔１４〕前記コロイド凝集剤を含まない緩衝液のイオン強度が0〜135 mMである、上記〔１２〕または〔１３〕に記載の組成物。
〔１５〕前記コロイド凝集剤を含まない緩衝液がpH 5.5〜11.1の範囲で緩衝作用を有する、上記〔１２〕〜〔１４〕のいずれかに記載の組成物。
〔１６〕前記コロイド凝集剤を含まない緩衝液が、Bis-Tris緩衝液、MES緩衝液およびPIPES緩衝液からなる群より選択される、上記〔１２〕〜〔１５〕のいずれかに記載の組成物。
〔１７〕前記コロイド凝集剤を含まない緩衝液が、アミノ酸をさらに含む、上記〔１２〕〜〔１６〕のいずれかに記載の組成物。The present invention also provides the following composition according to one embodiment:
[12] A composition comprising the membrane vesicle population according to any one of [8] to [11] above in a buffer solution not containing a colloidal flocculant.
[13] The composition according to [12] above, wherein the buffer solution containing no colloidal flocculant is a buffer solution substantially free of salt.
[14] The composition according to [12] or [13] above, wherein the buffer solution not containing the colloidal flocculant has an ionic strength of 0 to 135 mM.
[15] The composition according to any one of [12] to [14] above, wherein the buffer solution not containing the colloidal flocculant has a buffering action in a pH range of 5.5 to 11.1.
[16] The composition according to any one of [12] to [15], wherein the buffer solution not containing the colloidal flocculant is selected from the group consisting of Bis-Tris buffer solution, MES buffer solution, and PIPES buffer solution. object.
[17] The composition according to any one of [12] to [16] above, wherein the buffer solution containing no colloidal flocculant further contains an amino acid.
本発明に係る膜小胞集団の調製方法は、従来の膜小胞精製法と比較して、以下の点で優れており、有用である。
（１）インタクトな膜小胞（例えばエキソソーム）を分離精製できる。
（２）インタクトな膜小胞（例えばエキソソーム）の生物物理学的特性（電荷、形態、粒径分布パターンなど）を解析できる。
（３）インタクトな膜小胞（例えばエキソソーム）の分子生物学的・生化学的特性を解析できる。
（４）簡便、迅速かつ安価に膜小胞（例えばエキソソーム）を分離精製できる。
（５）追加の処理を行うことなく多様な用途にそのまま使用できる膜小胞（例えばエキソソーム）を調製できる。The method for preparing a membrane vesicle population according to the present invention is superior to the conventional membrane vesicle purification method in the following points and useful.
(1) Intact membrane vesicles (for example, exosomes) can be separated and purified.
(2) The biophysical properties (charge, morphology, particle size distribution pattern, etc.) of intact membrane vesicles (eg, exosomes) can be analyzed.
(3) The molecular biological and biochemical characteristics of intact membrane vesicles (for example, exosomes) can be analyzed.
(4) Membrane vesicles (eg, exosomes) can be separated and purified simply, quickly and inexpensively.
(5) Membrane vesicles (for example, exosomes) that can be used as they are for various purposes without additional treatment can be prepared.
また、本発明に係る分離精製された膜小胞集団は、従来方法により調製された膜小胞集団と比較して、以下の点で優れており、有用である。
（１）分子生物学的・生化学的にも生物物理学的にもインタクトである。
（２）分子生物学的・生化学的指標と生物物理化学的指標とを組み合わせた、膜小胞の統合的プロファイリング分析を可能とする。
（３）早期疾患診断方法の開発を可能とする。
（４）高感度な新規疾患分子マーカーの同定・開発を可能とする。
（５）疾患治療方法の開発を可能とする。
（６）改良されたDDSの開発を可能とする。Further, the separated and purified membrane vesicle population according to the present invention is superior and useful in the following respects compared to the membrane vesicle population prepared by the conventional method.
(1) It is intact both in molecular biology, biochemistry and biophysics.
(2) Enables integrated profiling analysis of membrane vesicles by combining molecular biological / biochemical indices and biophysical chemical indices.
(3) Enables the development of early disease diagnosis methods.
(4) It enables identification and development of highly sensitive novel disease molecular markers.
(5) It enables development of disease treatment methods.
(6) Enables the development of improved DDS.
また、本発明に係る膜小胞集団を含む組成物は、膜小胞集団のインタクトな状態を長期間にわたり安定的に維持することができる。 Moreover, the composition containing the membrane vesicle population according to the present invention can stably maintain the intact state of the membrane vesicle population over a long period of time.
以下、本発明を詳細に説明するが、本発明は本明細書中に説明した実施形態に限定されるものではない。 Hereinafter, the present invention will be described in detail, but the present invention is not limited to the embodiments described in the present specification.
本発明は、第一の実施形態によれば、（１）膜小胞を含む試料溶液を限外濾過処理する工程と、（２）膜小胞を含む緩衝溶液を調製するために、前記（１）の工程により得られた試料溶液を、コロイド凝集剤を含まない緩衝液により置換する工程と、（３）前記（２）の工程により得られた緩衝溶液に含まれる膜小胞を、密度勾配遠心により分離する工程とを含む、膜小胞集団の調製方法である。 According to the first embodiment, the present invention provides (1) a step of ultrafiltration of a sample solution containing membrane vesicles, and (2) a preparation of a buffer solution containing membrane vesicles, The step of replacing the sample solution obtained by the step 1) with a buffer solution containing no colloidal flocculant, and (3) the density of the membrane vesicles contained in the buffer solution obtained by the step (2) A method of preparing a membrane vesicle population comprising a step of separating by gradient centrifugation.
ここで、本明細書において「膜小胞」とは、細胞または組織から分泌される脂質二重膜小胞を意味する。本明細書における膜小胞には、以下に限定されないが、例えば、従来エキソソーム／エクソソームと呼ばれている20〜200 nm程度の粒径を有する膜小胞や、10〜1,000 nm程度の粒径を有するマイクロベシクルやアポトーシス小胞などが挙げられる。膜小胞を分泌する細胞または組織は、いかなる生物種由来のものであってよい。膜小胞を分泌する細胞または組織が由来する生物としては、以下に限定されないが、例えば、微生物、原虫、線虫、昆虫、魚類、は虫類、両生類、鳥類、哺乳類、植物などが挙げられる。哺乳動物としては、例えば、ヒト、サル、オランウータン、チンパンジーなどの霊長類、マウス、ラット、ハムスター、モルモットなどのげっ歯類、ブタ、ウシ、ヤギ、ウマ、ヒツジ、ウサギ、イヌ、ネコなどが挙げられる。膜小胞を分泌する細胞としては、例えば、神経細胞、免疫細胞、上皮細胞、心筋細胞、骨格筋細胞、結合組織細胞、幹細胞、iPS細胞、ES細胞、腫瘍細胞などの疾患細胞、初代培養細胞（各種臓器由来）、株化培養細胞（各種臓器由来）などが挙げられる。膜小胞を分泌する組織としては、例えば、脳、心臓、肝臓、腎臓、膵臓、脾臓、胃、小腸、大腸などが挙げられる。 As used herein, “membrane vesicle” means a lipid bilayer vesicle secreted from a cell or tissue. The membrane vesicle in the present specification is not limited to the following, but for example, a membrane vesicle having a particle size of about 20 to 200 nm, which is conventionally called exosome / exosome, or a particle size of about 10 to 1,000 nm And microvesicles having apoptotic and apoptotic vesicles. The cell or tissue that secretes the membrane vesicle may be from any species. Examples of organisms from which cells or tissues that secrete membrane vesicles are derived include, but are not limited to, microorganisms, protozoa, nematodes, insects, fish, reptiles, amphibians, birds, mammals, plants, and the like. Examples of mammals include primates such as humans, monkeys, orangutans, chimpanzees, rodents such as mice, rats, hamsters, guinea pigs, pigs, cows, goats, horses, sheep, rabbits, dogs, cats, etc. It is done. Examples of cells that secrete membrane vesicles include nerve cells, immune cells, epithelial cells, cardiomyocytes, skeletal muscle cells, connective tissue cells, stem cells, iPS cells, ES cells, tumor cells and other disease cells, primary cultured cells (Derived from various organs), established cultured cells (derived from various organs) and the like. Examples of tissues that secrete membrane vesicles include brain, heart, liver, kidney, pancreas, spleen, stomach, small intestine, and large intestine.
本実施形態において「膜小胞を含む試料溶液」とは、膜小胞を含む液体試料であれば特に限定されず、例えば、細胞または組織を培養して得られた培養液であってもよいし、血液、血清、血漿、リンパ液、尿、唾液、母乳、羊水、悪性腹水、髄液、脳室液などの生体液試料であってもよい。 In the present embodiment, the “sample solution containing membrane vesicles” is not particularly limited as long as it is a liquid sample containing membrane vesicles, and may be, for example, a culture solution obtained by culturing cells or tissues. It may also be a biological fluid sample such as blood, serum, plasma, lymph, urine, saliva, breast milk, amniotic fluid, malignant ascites, cerebrospinal fluid, and ventricular fluid.
本実施形態の膜小胞集団の調製方法では、膜小胞を含む試料溶液を限外濾過処理する（工程（１））。これにより、試料溶液から夾雑物を除去し、同時に、試料溶液を濃縮することができる。夾雑物とは、膜小胞の解析に支障を及ぼし得る細胞debris、脂質、タンパク質などを意味する。なお、本工程により夾雑物が完全に除去されることが好ましいが、最終的に得られた膜小胞の解析に支障が出ない程度であれば、夾雑物が多少残存しても構わない。 In the method for preparing a membrane vesicle population of this embodiment, a sample solution containing membrane vesicles is subjected to an ultrafiltration process (step (1)). Thereby, impurities can be removed from the sample solution, and at the same time, the sample solution can be concentrated. Contaminants mean cell debris, lipids, proteins, etc. that can interfere with the analysis of membrane vesicles. Although it is preferable that impurities are completely removed by this step, some impurities may remain as long as they do not hinder the analysis of the finally obtained membrane vesicles.
本実施形態における限外濾過処理は、分離精製したい膜小胞が通過せず、かつ、当該膜小胞よりもサイズの小さい、糖、タンパク質、核酸、タンパク質核酸複合体、タンパク質性凝集体などの低分子が通過するような分画分子量を有する限外濾過膜を用いて行うことができる。試料中に含まれるすべての膜小胞を分離精製する場合には、より小さい分画分子量を有する限外濾過膜を用いることが好ましい。本実施形態において使用できる限外濾過膜の分離性能は、好ましくは分画分子量3〜100 kDaであり、特に好ましくは分画分子量10 kDaである。このような限外濾過膜としては市販品を使用することができ、例えば、Amicon（商標） Ultra Centrifugal Filters (NMWL:10K)（Millipore）などを用いることができる。 The ultrafiltration treatment in the present embodiment does not pass through membrane vesicles to be separated and purified, and is smaller in size than the membrane vesicles, such as sugars, proteins, nucleic acids, protein nucleic acid complexes, proteinaceous aggregates, etc. It can carry out using the ultrafiltration membrane which has a molecular weight cut off so that a low molecule may pass. When all membrane vesicles contained in a sample are separated and purified, it is preferable to use an ultrafiltration membrane having a smaller fractional molecular weight. The separation performance of the ultrafiltration membrane that can be used in this embodiment is preferably a fractional molecular weight of 3 to 100 kDa, particularly preferably a fractional molecular weight of 10 kDa. A commercial item can be used as such an ultrafiltration membrane, for example, Amicon (trademark) Ultra Centrifugal Filters (NMWL: 10K) (Millipore) etc. can be used.
限外濾過処理は、公知の方法により行うことができる。具体的には、例えば、膜小胞を含む試料溶液5 mlを限外濾過フィルターユニットに添加し、6,000 rpm、30分間遠心することにより限外濾過処理を行うことができ、これにより、夾雑物を除去するとともに、膜小胞を含む試料溶液の容量を300 μl程度まで濃縮することができる。 The ultrafiltration treatment can be performed by a known method. Specifically, for example, 5 ml of a sample solution containing membrane vesicles can be added to an ultrafiltration filter unit and centrifuged at 6,000 rpm for 30 minutes to carry out ultrafiltration treatment. And the volume of the sample solution containing membrane vesicles can be concentrated to about 300 μl.
なお、上記限外濾過処理を行う前に、適宜、試料溶液中に含まれる成分に応じた前処理を行うことが好ましい。例えば、試料溶液が培養液である場合には、前処理として遠心分離やフィルター濾過により、試料溶液から細胞または細胞debrisを除去することが好ましい。また、例えば、試料溶液が母乳などの脂質成分を多量に含む生体液試料である場合には、前処理として脂質成分の除去を行うことが好ましい。また、例えば、試料溶液が血液である場合には、前処理として血性アルブミンの除去を行うことが好ましい。その他の試料についても、当業者は試料中に含まれる成分ごとに、好ましい前処理を適宜選択および実施することができる。 In addition, before performing the said ultrafiltration process, it is preferable to perform the pretreatment according to the component contained in a sample solution suitably. For example, when the sample solution is a culture solution, it is preferable to remove cells or cell debris from the sample solution by centrifugation or filter filtration as a pretreatment. For example, when the sample solution is a biological fluid sample containing a large amount of lipid components such as breast milk, it is preferable to remove the lipid components as a pretreatment. For example, when the sample solution is blood, blood albumin is preferably removed as a pretreatment. For other samples, those skilled in the art can appropriately select and implement a preferred pretreatment for each component contained in the sample.
次いで、上記限外濾過処理後の試料溶液を、コロイド凝集剤を含まない緩衝液により置換し、これにより、膜小胞を含む緩衝溶液を調製する（工程（２））。膜小胞は、由来する細胞や組織により、それぞれ特有の表面電荷（プラスまたはマイナスの電荷）を有しており、そのため、コロイド粒子としての性質を有し、試料溶液中に分散して存在する。したがって、コロイド凝集剤を含まない緩衝液を用いることにより、分散状態が維持された膜小胞を含む緩衝溶液を調製することが可能となる。 Next, the sample solution after the ultrafiltration treatment is replaced with a buffer solution containing no colloidal flocculant, thereby preparing a buffer solution containing membrane vesicles (step (2)). Membrane vesicles have a specific surface charge (plus or minus charge) depending on the cell or tissue from which they are derived, and therefore have properties as colloidal particles and are dispersed in the sample solution. . Therefore, by using a buffer solution that does not contain a colloidal flocculant, it is possible to prepare a buffer solution containing membrane vesicles in which a dispersed state is maintained.
本実施形態において「コロイド凝集剤」とは、膜小胞の表面電荷を中和することにより、膜小胞間の反発力を弱め、膜小胞の凝集を促進する化合物を意味する。本実施形態におけるコロイド凝集剤には、無機凝集剤および有機凝集剤のいずれも含まれる。無機凝集剤としては、以下に限定されないが、例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化マグネシウム、塩化カルシウム、硫酸アルミニウムなどの金属塩；リン酸塩；アンモニウム塩、オキソニウム塩、スルホニウム塩などのオニウム塩；トリエタノールアミン塩やヒドロキシルアミン塩などのアミン塩などの塩が挙げられる。有機凝集剤としては、以下に限定されないが、例えば、ポリアミン、ポリアミド、アクリルアミドなどの合成高分子凝集剤や、キチン／キトサン、セルロースなどの天然高分子凝集剤などが挙げられる。 In this embodiment, the “colloidal flocculant” means a compound that weakens the repulsive force between the membrane vesicles and neutralizes the membrane vesicles by neutralizing the surface charge of the membrane vesicles. The colloid flocculant in this embodiment includes both inorganic flocculants and organic flocculants. Examples of the inorganic flocculant include, but are not limited to, metal salts such as sodium chloride, potassium chloride, magnesium chloride, calcium chloride, and aluminum sulfate; phosphates; onium salts such as ammonium salts, oxonium salts, and sulfonium salts; Examples thereof include salts such as amine salts such as triethanolamine salt and hydroxylamine salt. Examples of organic flocculants include, but are not limited to, synthetic polymer flocculants such as polyamines, polyamides, and acrylamides, and natural polymer flocculants such as chitin / chitosan and cellulose.
本実施形態において用いることができる「コロイド凝集剤を含まない緩衝液」は、コロイド凝集剤を全く含まないか、実質的に含まない緩衝液であれば、任意のものであってよい。本実施形態におけるコロイド凝集剤を含まない緩衝液は、好ましくは、塩を実質的に含まない緩衝液である。ここで、コロイド凝集剤を「実質的に含まない」とは、緩衝液に含まれるコロイド凝集剤の濃度が、膜小胞の凝集を引き起こす濃度未満であることを意味する。すなわち、本実施形態におけるコロイド凝集剤を含まない緩衝液は、イオン強度が0〜135 mMであることが好ましく、0〜65 mMであることがより好ましく、0〜30 mMであることが特に好ましい。また、本実施形態において用いることができるコロイド凝集剤を含まない緩衝液は、好ましくはpH 5.5〜11.1の範囲で緩衝作用を有し、より好ましくはpH 6〜8の範囲で緩衝作用を有する。
The “buffer solution containing no colloidal flocculant” that can be used in the present embodiment may be any buffer solution that does not contain or substantially does not contain the colloidal flocculant. The buffer solution containing no colloidal flocculant in the present embodiment is preferably a buffer solution substantially free of salt. Here, “substantially free” of the colloidal flocculant means that the concentration of the colloidal flocculant contained in the buffer solution is less than the concentration causing aggregation of membrane vesicles. That is, the buffer solution containing no colloid flocculant in this embodiment preferably has an ionic strength of 0 to 135 mM, more preferably 0 to 65 mM, and particularly preferably 0 to 30 mM. . In addition, the buffer solution that does not contain a colloidal flocculant that can be used in this embodiment preferably has a buffering action in the range of pH 5.5 to 11.1, and more preferably has a buffering action in the range of
このようなコロイド凝集剤を含まない緩衝液としては、以下に限定されないが、例えば、Bis-Tris緩衝液、MES緩衝液、PIPES緩衝液などのグッド緩衝液を用いることができ、最も好ましくはBis-Tris緩衝液を用いることができる。なお、グッド緩衝液は、（１）水によく溶け、高濃度の緩衝液の作成が可能である、（２）化学的に安定であり、再結晶による高純度精製が可能である、（３）可視、紫外部に吸収を持たないために、目的成分の検出が容易である、（４）生体系に対して塩効果が小さい、（５）生体膜、細胞膜を透過しにくい、（６）酸解離定数が濃度、温度、イオン組成の影響を受けにくい、（７）金属イオンとの錯体形成能が小さいなどの多くの利点を有する（Norman E. Good, G. Douglas Winget, Wilhelmina Winter, Thomas N. Connolly, Seikichi Izawa, and Raizada M. M. Singh, "Hydrogen Ion Buffers for Biological Research", Biochemistry, Vol. 5, pp. 467-477, 1966）。 Such a buffer solution containing no colloidal flocculant is not limited to the following, but, for example, a Good buffer solution such as Bis-Tris buffer solution, MES buffer solution, PIPES buffer solution, etc. can be used, most preferably Bis. -Tris buffer can be used. The Good buffer solution is (1) well dissolved in water and capable of producing a high concentration buffer solution, (2) chemically stable, and highly purified by recrystallization, (3 ) The target component is easy to detect because it has no visible or ultraviolet absorption, (4) has little salt effect on biological systems, (5) hardly penetrates biological membranes and cell membranes, (6) It has many advantages such as acid dissociation constant is less affected by concentration, temperature, and ion composition, and (7) low ability to form complex with metal ions (Norman E. Good, G. Douglas Winget, Wilhelmina Winter, Thomas N. Connolly, Seikichi Izawa, and Raizada MM Singh, “Hydrogen Ion Buffers for Biological Research”, Biochemistry, Vol. 5, pp. 467-477, 1966).
次いで、上記により得られた緩衝溶液に含まれる膜小胞を、密度勾配遠心により分離する（工程（３））。密度勾配遠心は、公知の方法により行うことができる。密度勾配溶液を作成するために用いられる溶質は、非イオン性物質であり、膜小胞を分散状態に保持できるものであれば、任意のものであってよく、以下に限定されないが、例えば、ショ糖、グリセロール、ポリサッカライド、Ficoll（GE Healthcare Bioscience社）、Nycodenz（AXS社）、OptiPrep（AXS社）などを用いることができる。当業者は、用いる溶質に応じて、好ましい密度勾配条件や遠心条件を適宜選択することができる。具体的には、例えば、ショ糖を用いた場合には、密度勾配を10〜60%に設定することができ、遠心条件は、21,000 rpm（75,600×g）で5時間とすることができる。なお、ショ糖を用いた場合、密度勾配遠心により分離されたサンプルを、膜小胞の解析のためのサンプルとして直接使用できるため、好ましい。 Next, the membrane vesicles contained in the buffer solution obtained as described above are separated by density gradient centrifugation (step (3)). The density gradient centrifugation can be performed by a known method. The solute used to prepare the density gradient solution is a nonionic substance and may be any one as long as it can hold the membrane vesicle in a dispersed state, and is not limited to the following. Sucrose, glycerol, polysaccharides, Ficoll (GE Healthcare Bioscience), Nycodenz (AXS), OptiPrep (AXS) and the like can be used. Those skilled in the art can appropriately select preferable density gradient conditions and centrifugal conditions according to the solute used. Specifically, for example, when sucrose is used, the density gradient can be set to 10 to 60%, and the centrifugation condition can be 21,000 rpm (75,600 × g) for 5 hours. When sucrose is used, a sample separated by density gradient centrifugation can be directly used as a sample for analysis of membrane vesicles, which is preferable.
本実施形態の方法の概略を図１に示す。図１に示す非限定的な例では、コロイド凝集剤を含まない緩衝液としてBis-Tris緩衝液を用いて試料溶液を置換し（図１左）、次いで、ショ糖密度勾配超遠心分離法により膜小胞を分離する（図１中央）。分離された膜小胞サンプルは、各種解析のためのサンプルとしてそのまま使用できる（図１右）。本実施形態の方法は、上記工程を２〜３日で完了することができる。 An outline of the method of this embodiment is shown in FIG. In the non-limiting example shown in FIG. 1, the sample solution is replaced with Bis-Tris buffer as a buffer solution containing no colloidal flocculant (FIG. 1 left), and then by sucrose density gradient ultracentrifugation. Membrane vesicles are separated (middle of FIG. 1). The separated membrane vesicle sample can be used as it is as a sample for various analyzes (right in FIG. 1). The method of this embodiment can complete the said process in 2-3 days.
本実施形態の方法によれば、試料溶液中にあったときと同様の、物理化学的特性を維持したインタクトな状態の膜小胞を含む膜小胞集団を調製することができる。ここで、本実施形態における「膜小胞集団」とは、実質的に分離精製された、２個以上の膜小胞を含む集団を意味する。「実質的に分離精製された」とは、膜小胞の解析または使用に影響しない程度にまで夾雑物が除去された状態を意味する。本実施形態における膜小胞集団は、単一種類の膜小胞のみを含んでいてもよいし、複数種類の膜小胞を含んでいてもよい。また、本明細書において「インタクトな状態」とは、タンパク質や脂質などの膜小胞の構成成分およびそれらの比率のような生化学的特性のみならず、表面電荷、大きさや形状などの形態、粒径分布パターン、分散状態のような膜小胞の生物物理学的特性についても、膜小胞が細胞または組織から放出された瞬間の在りのままで維持されており、試料溶液中にあったときの膜小胞の特性がすべて保全されている状態を意味する。 According to the method of this embodiment, it is possible to prepare a membrane vesicle population containing intact membrane vesicles maintaining physicochemical characteristics similar to those in the sample solution. Here, the “membrane vesicle population” in the present embodiment means a population containing two or more membrane vesicles substantially separated and purified. “Substantially separated and purified” means a state in which impurities are removed to such an extent that the analysis or use of membrane vesicles is not affected. The membrane vesicle population in the present embodiment may include only a single type of membrane vesicle or may include a plurality of types of membrane vesicles. Further, in this specification, “intact state” means not only biochemical properties such as constituents and ratios of membrane vesicles such as proteins and lipids, but also forms such as surface charge, size and shape, The biophysical properties of membrane vesicles such as particle size distribution pattern, dispersion state, etc. were also maintained as they were in the sample solution as they were released from the cell or tissue. This means that all the characteristics of the membrane vesicles are preserved.
すなわち、本発明は、第二の実施形態によれば、膜小胞を含む試料溶液から分離精製された膜小胞集団であって、前記膜小胞集団に含まれる膜小胞が分散されており、かつ、（ｉ）前記膜小胞集団に含まれる膜小胞が、分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの表面電荷を維持している、（ｉｉ）前記膜小胞集団に含まれる膜小胞が、分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの形態を維持している、および／または（ｉｉｉ）前記膜小胞集団が、分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの粒径分布パターンを維持している、膜小胞集団である。 That is, the present invention is a membrane vesicle population separated and purified from a sample solution containing membrane vesicles according to the second embodiment, wherein the membrane vesicles contained in the membrane vesicle population are dispersed. And (i) the membrane vesicles contained in the membrane vesicle population maintain the surface charge when present in the sample solution before separation and purification, (ii) the membrane vesicle population The contained membrane vesicles maintain the form as they existed in the sample solution before separation and purification, and / or (iii) the membrane vesicle population is present in the sample solution before separation and purification It is a membrane vesicle population that maintains the particle size distribution pattern.
本実施形態における「膜小胞」、「膜小胞集団」および「試料溶液」は、第一の実施形態において定義したものと同様である。本実施形態の膜小胞集団は、第一の実施形態の方法により調製することができる。 The “membrane vesicle”, “membrane vesicle population”, and “sample solution” in the present embodiment are the same as those defined in the first embodiment. The membrane vesicle population of this embodiment can be prepared by the method of the first embodiment.
「分散されている」とは、膜小胞集団に含まれる複数の膜小胞が、互いに干渉することなく分離している状態を意味する。ここで、「干渉」とは、膜小胞同士が相互作用することにより、膜小胞の生化学的特性および／または生物物理学的特性が不可逆的に変化することを意味する。したがって、「干渉することなく分離している」とは、膜小胞集団に含まれる複数の膜小胞が、互いにまったく接触していないか、瞬間的に接触したとしても、それが継続しない状態を意味する。なお、本実施形態における膜小胞集団は、完全に分散されていることが好ましいが、最終的に得られた膜小胞集団の解析および使用に支障が出ない程度であれば、分散していない膜小胞を含んでいてもよい。すなわち、本実施形態における膜小胞集団に含まれる膜小胞は、少なくとも９０％以上が分散されていればよい。 “Dispersed” means a state in which a plurality of membrane vesicles contained in a membrane vesicle population are separated without interfering with each other. Here, “interference” means that biochemical properties and / or biophysical properties of membrane vesicles are irreversibly changed by the interaction between membrane vesicles. Therefore, “separated without interference” means that a plurality of membrane vesicles contained in the membrane vesicle population are not in contact with each other at all or even if they are in contact with each other instantaneously. Means. The membrane vesicle population in this embodiment is preferably completely dispersed. However, the membrane vesicle population is dispersed as long as it does not interfere with the analysis and use of the finally obtained membrane vesicle population. May contain no membrane vesicles. That is, at least 90% or more of the membrane vesicles included in the membrane vesicle population in this embodiment may be dispersed.
「分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの表面電荷を維持している」とは、培養液中に分泌された時点における膜小胞、または、生体液中に分泌された時点における膜小胞が有するコロイド粒子としての特性を維持できる程度に表面電荷が維持されていることを意味する。表面電荷は、膜小胞の由来する細胞や組織により、プラスまたはマイナスの電荷であり得る。 “Maintaining the surface charge when present in the sample solution before separation and purification” means a membrane vesicle when secreted into the culture solution or a membrane when secreted into the biological fluid It means that the surface charge is maintained to such an extent that the characteristics of the vesicle as colloidal particles can be maintained. The surface charge can be positive or negative depending on the cell or tissue from which the membrane vesicle is derived.
「分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの形態を維持している」とは、培養液中に分泌された時点における膜小胞、または、生体液中に分泌された時点における膜小胞が有する大きさや形状などの形態が維持されていることを意味する。ここで、正常な細胞由来の正常な膜小胞は、基本的に球状であると考えられている一方、疾患細胞などの異常細胞から分離される膜小胞は球状ではない可能性が示唆されている。したがって、本実施形態の膜小胞集団が疾患細胞由来の膜小胞を含む場合には、本実施形態の膜小胞集団は、球状以外の形状の膜小胞を含んでいてもよい。 “Maintaining the form when it was present in the sample solution before separation and purification” means that the membrane vesicle at the time of secretion into the culture medium or the membrane vesicle at the time of secretion into the biological fluid This means that the size and shape of the vesicles are maintained. Here, normal membrane vesicles derived from normal cells are considered to be basically spherical, whereas membrane vesicles isolated from abnormal cells such as disease cells may not be spherical. ing. Therefore, when the membrane vesicle population of the present embodiment includes a disease cell-derived membrane vesicle, the membrane vesicle population of the present embodiment may include a membrane vesicle having a shape other than a spherical shape.
「分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの粒径分布パターンを維持している」とは、試料溶液中にあったときの膜小胞の粒径分布の範囲および比率の両方が維持されていることを意味する。 “Maintaining the particle size distribution pattern when present in the sample solution before separation and purification” means that both the range and the ratio of the particle size distribution of the membrane vesicle when present in the sample solution are maintained. Means that
すなわち、本実施形態の膜小胞集団は、60 nm以下の粒径を有する膜小胞を少なくとも5%含んでいることが好ましく、少なくとも10%含んでいることが特に好ましい。 That is, the membrane vesicle population of the present embodiment preferably contains at least 5%, and particularly preferably contains at least 10% of membrane vesicles having a particle size of 60 nm or less.
本実施形態における膜小胞集団は、生化学的にも物理化学的にもインタクトな状態を維持している。そのため、新規高感度疾患マーカーの探索や早期疾患診断方法の開発に有用であり、また、改善されたDDSの開発のためにも有用である。 The membrane vesicle population in this embodiment maintains an intact state both biochemically and physicochemically. Therefore, it is useful for the search for a novel highly sensitive disease marker and the development of an early disease diagnosis method, and for the development of an improved DDS.
本発明は、第三の実施形態によれば、コロイド凝集剤を含まない緩衝液中に、上記の膜小胞集団を含む組成物である。本実施形態における「コロイド凝集剤」および「コロイド凝集剤を含まない緩衝液」は、第一の実施形態において定義したものと同様である。 According to the third embodiment, the present invention is a composition comprising the membrane vesicle population described above in a buffer solution that does not contain a colloidal flocculant. The “colloid flocculant” and “buffer solution not containing colloid flocculant” in the present embodiment are the same as those defined in the first embodiment.
本実施形態におけるコロイド凝集剤を含まない緩衝液は、アミノ酸をさらに含むことが好ましい。本実施形態におけるアミノ酸には、任意の天然アミノ酸を用いることができるが、好ましくは、フェニルアラニンなどの疎水性アミノ酸、またはスレオニンなどの極性無電荷アミノ酸を用いることができる。また、本実施形態におけるコロイド凝集剤を含まない緩衝液は、１種類のアミノ酸を含んでもよいし、２種類以上のアミノ酸を含んでもよい。 It is preferable that the buffer solution containing no colloidal flocculant in this embodiment further contains an amino acid. Although any natural amino acid can be used as the amino acid in the present embodiment, a hydrophobic amino acid such as phenylalanine or a polar uncharged amino acid such as threonine can be preferably used. Further, the buffer solution containing no colloidal flocculant in the present embodiment may contain one type of amino acid or two or more types of amino acids.
本実施形態における組成物は、試料溶液から分離精製された膜小胞集団をインタクトな状態のまま長時間維持することができるため有用である。 The composition in the present embodiment is useful because the membrane vesicle population separated and purified from the sample solution can be maintained in an intact state for a long time.
本発明は、第四の実施形態によれば、本発明の分離精製方法により得られた膜小胞について物理化学的または生化学的な手法で解析する工程を含む、膜小胞の解析方法である。 According to a fourth embodiment of the present invention, there is provided a membrane vesicle analysis method comprising a step of analyzing a membrane vesicle obtained by the separation and purification method of the present invention by a physicochemical or biochemical technique. is there.
本発明の分離精製方法により得られた膜小胞の解析手法としては、特に制限されず、公知の物理化学的または生化学的な手法を用いることができる。具体的には、以下に限定されないが、ｉ）miRNA、mRNA、遊離循環RNA、Non-coding RNA、Long non-coding RNA、Genomic DNA等の核酸因子などについてのマイクロアレイ解析、次世代シーケンス解析、PCR解析、トランスクリプトーム解析、ｉｉ）タンパク質、表面ペプチド等のタンパク性因子などについてのプロテオーム解析、ペプチドーム解析、抗体アレイ解析、Western Blot解析、Dot Blot解析、質量分析法（MALDI-MS）、ｉｉｉ）動的・静的光散乱解析、ナノ粒子トラッキング（軌跡）解析等の粒径分布解析、光散乱電気泳動解析等の電荷分布解析、単粒子構造解析、クライオ電顕解析、透過型電顕解析等の構造・形態解析、質量分析法（MALDI-MS）、プロテオーム解析等の膜脂質成分解析などを含む膜小胞の生物物理学的特性の解析を挙げることができる。 The method for analyzing membrane vesicles obtained by the separation and purification method of the present invention is not particularly limited, and a known physicochemical or biochemical method can be used. Specifically, although not limited to the following, i) microarray analysis, nucleic acid factors such as miRNA, mRNA, free circulating RNA, non-coding RNA, long non-coding RNA, and genomic DNA, next-generation sequencing analysis, PCR Analysis, transcriptome analysis, ii) proteome analysis, proteinome analysis, peptide array analysis, antibody array analysis, Western Blot analysis, Dot Blot analysis, mass spectrometry (MALDI-MS), iii) Particle size distribution analysis such as dynamic / static light scattering analysis, nanoparticle tracking (trajectory) analysis, charge distribution analysis such as light scattering electrophoresis analysis, single particle structure analysis, cryo electron microscope analysis, transmission electron microscope analysis, etc. Analysis of biophysical properties of membrane vesicles, including analysis of membrane lipid components such as structure / morphological analysis, mass spectrometry (MALDI-MS), and proteome analysis.
本実施形態における方法は、本発明の分離精製方法により得られた膜小胞を用いることにより、インタクトな状態の膜小胞の生物物理学的特性を解析することができるため有用である。 The method in this embodiment is useful because the biophysical characteristics of intact membrane vesicles can be analyzed by using the membrane vesicles obtained by the separation and purification method of the present invention.
本発明は、第五の実施形態によれば、試料溶液中に分散した膜小胞を分離するための分離精製用溶媒であって、コロイド凝集剤を含まない緩衝液からなる分離精製用溶媒である。 According to the fifth embodiment, the present invention provides a separation and purification solvent for separating membrane vesicles dispersed in a sample solution, the separation and purification solvent comprising a buffer solution containing no colloidal flocculant. is there.
本発明は、第六の実施形態によれば、コロイド凝集剤を含まない緩衝液からなる分離精製用溶媒を含む、膜小胞分離精製用キットである。当該キットには、膜小胞を試料溶液中から分離精製するために必要な公知の試薬や器材を含むことができる。このような試薬や器材としては、限外濾過膜や濾過膜、細胞等を培養するための培養液、培養皿、遠心分離用チューブ、密度勾配遠心法のための試薬（例えばショ糖）などを挙げることができる。 According to the sixth embodiment, the present invention is a membrane vesicle separation and purification kit comprising a separation and purification solvent comprising a buffer solution that does not contain a colloidal flocculant. The kit can contain known reagents and equipment necessary for separating and purifying membrane vesicles from the sample solution. Examples of such reagents and equipment include ultrafiltration membranes, filtration membranes, culture solutions for culturing cells, culture dishes, centrifuge tubes, reagents for density gradient centrifugation (eg, sucrose), etc. Can be mentioned.
第五実施形態における分離精製用溶媒および第六実施形態における膜小胞分離精製用キットは、インタクトな状態の膜小胞を分離精製することができるため有用である。 The separation and purification solvent in the fifth embodiment and the membrane vesicle separation and purification kit in the sixth embodiment are useful because they can separate and purify intact membrane vesicles.
以下に実施例を挙げ、本発明についてさらに説明する。なお、これらは本発明を何ら限定するものではない。 The following examples further illustrate the present invention. In addition, these do not limit this invention at all.
＜１．材料および方法＞
（１）細胞培養
膜小胞を分離精製するために、PC12細胞（ラット副腎髄質褐色細胞腫）、NG108-15細胞（神経芽腫雑種細胞）、C6Bu-1細胞（ラットグリオーマ細胞）、N18TG-2細胞（マウス神経芽腫細胞）、SK-N-SH細胞（ヒト神経芽腫細胞）、NIH/3T3細胞（マウス線維芽細胞）、COS7細胞（アフリカミドリザル腎細胞）、HCT116細胞（ヒト大腸癌細胞）、HEK293T細胞（ヒト胎児腎細胞）、Flp-In T-REx293細胞（ヒト胎児腎臓細胞）（本明細書および図面においては単に「HEK293細胞」と表記する）（いずれもInvitrogen）を使用した。上記細胞を、それぞれ、10%牛胎児血清（Gibco）を含むダルベッコ改変イーグル培地（Sigma-Aldrich）（以下、10% FCS-DMEM培地）10mlに懸濁し、直径9cmプラスチックシャーレ（Greiner Bio-One）に播種し、37℃、湿度100%、5% CO2雰囲気下で、細胞密度が90%程度に達するまで細胞を培養した。次いで、FCS由来の膜小胞を除去する目的で、10% FCS-DMEM培地を完全に吸引除去後、PBS(+)溶液5mlを加えて細胞を洗浄した。FCS由来の膜小胞をほぼ完全に除去するために本工程を5回繰り返した。洗浄後、無血清ダルベッコ改変イーグル培地（以下、DMEM培地）5 mlを細胞に添加し、37℃、湿度100%、5% CO2雰囲気下で24時間培養し、DMEM培地中に膜小胞を分泌させた。<1. Materials and Methods>
(1) Cell culture To isolate and purify membrane vesicles, PC12 cells (rat adrenal medullary pheochromocytoma), NG108-15 cells (neuroblastoma hybrid cells), C6Bu-1 cells (rat glioma cells), N18TG- 2 cells (mouse neuroblastoma cells), SK-N-SH cells (human neuroblastoma cells), NIH / 3T3 cells (mouse fibroblasts), COS7 cells (African green monkey kidney cells), HCT116 cells (human colon cancer) Cells), HEK293T cells (human fetal kidney cells), Flp-In T-REx293 cells (human fetal kidney cells) (simply referred to as “HEK293 cells” in the present specification and drawings) (both were Invitrogen) . Each of the above cells is suspended in 10 ml of Dulbecco's modified Eagle medium (Sigma-Aldrich) (hereinafter 10% FCS-DMEM medium) containing 10% fetal bovine serum (Gibco), and a 9 cm diameter plastic petri dish (Greiner Bio-One) The cells were cultured in a 37 ° C., 100% humidity, 5% CO 2 atmosphere until the cell density reached about 90%. Next, for the purpose of removing FCS-derived membrane vesicles, 10% FCS-DMEM medium was completely removed by aspiration, and then 5 ml of PBS (+) solution was added to wash the cells. This process was repeated 5 times to almost completely remove FCS-derived membrane vesicles. After washing, add 5 ml of serum-free Dulbecco's modified Eagle's medium (hereinafter DMEM medium) to the cells and incubate at 37 ° C, 100% humidity, 5% CO 2 for 24 hours. Secreted.
（２）膜小胞含有試料の調製
上記培養後のDMEM培地を15 mlディスポーザブルチューブ（Greiner Bio-One）に回収し、滅菌済Millex-GV Filter Unit, 0.22 μm（Millipore）を用いて濾過した。これにより、DMEM培地中に含まれる細胞debrisを完全に除去した。次に、膜小胞の透過型電子顕微鏡解析や物理学的解析に影響を及ぼす不純物の除去と、試料の濃縮のために、限外濾過処理を行った。DMEM培地5 mlをAmicon（商標） Ultra Centrifugal Filters (NMWL:10K)（Millipore）に供し、6,000 rpm、30分間遠心し、試料の容量を約300 μlまで濃縮した。続いて、25 mM Bis-Tris（pH 6.5）を3 ml加え、再度6,000 rpm、30分間遠心し、試料の容量を約300 μlまで濃縮した。この工程を３回繰り返し、試料溶媒を25 mM Bis-Tris（pH 6.5）に完全に置換した。得られた約300 μlの試料を、ショ糖密度勾配超遠心分離法に供した。(2) Preparation of Membrane Vesicle-Containing Sample The cultured DMEM medium was collected in a 15 ml disposable tube (Greiner Bio-One) and filtered using a sterilized Millex-GV Filter Unit, 0.22 μm (Millipore). This completely removed the cell debris contained in the DMEM medium. Next, ultrafiltration was performed to remove impurities affecting the transmission electron microscope analysis and physical analysis of membrane vesicles and to concentrate the sample. 5 ml of DMEM medium was subjected to Amicon ™ Ultra Centrifugal Filters (NMWL: 10K) (Millipore), centrifuged at 6,000 rpm for 30 minutes, and the sample volume was concentrated to about 300 μl. Subsequently, 3 ml of 25 mM Bis-Tris (pH 6.5) was added and centrifuged again at 6,000 rpm for 30 minutes to concentrate the sample volume to about 300 μl. This process was repeated three times to completely replace the sample solvent with 25 mM Bis-Tris (pH 6.5). About 300 μl of the obtained sample was subjected to sucrose density gradient ultracentrifugation.
（３）ショ糖密度勾配超遠心分離法
10%、20%、30%、40%、50%または60%ショ糖／25 mM Bis-Tris（pH 6.5）の６種類のショ糖溶液を調製し、12.5 ml Open Top超遠心チューブ（Beckman Coulter）中に各2 mlずつ、10〜60%ショ糖密度勾配を形成するように静かに重積し、4℃で1時間以上静置した。その後、上記（２）で調製した試料（約300 μl）を静かに重層し、超遠心分離機Optima L-100 XP（SW41-Tiローター）（Beckman Coulter）を用いて、21,000 rpm（75,600×g）で5時間の超遠心を行った。超遠心後、各濃度のショ糖溶液を濃度の高い順に1 mlずつチューブに分画し、１試料につき１２分画の精製試料を取得した。得られた精製試料は、脱ショ糖操作を行うことなく、そのまま以下の生化学的解析および物理学的解析に供した。(3) Sucrose density gradient ultracentrifugation
Prepare 6 types of sucrose solutions of 10%, 20%, 30%, 40%, 50% or 60% sucrose / 25 mM Bis-Tris (pH 6.5), and prepare 12.5 ml Open Top ultracentrifuge tube (
（４）ショ糖密度測定
ショ糖密度は、携帯用砂糖屈折計（ハイコントラストタイプ）１号（解析糖度0〜32%）および２号（解析糖度28〜62%）（ピカ精工株式会社）を用いて測定した。(4) Sucrose density measurement For sucrose density, portable sugar refractometer (high contrast type) No. 1 (analysis sugar content 0-32%) and No. 2 (analysis sugar content 28-62%) (Pika Seiko Co., Ltd.) And measured.
（５）Dot Blot解析
各精製試料100 μlを、96穴丸形ウェルマイクロフィルトレーション装置であるバイオドット（Bio Rad）を用いてニトロセルロース膜（Bio Rad）にブロットした後、各ウェルを100 μlのPBS(-)で３回洗浄した。バイオドットより取り外したニトロセルロース膜を、ブロッキング溶液（5%スキムミルク／PBS(-)）に浸漬し、室温（25℃）で1時間緩やかに回転攪拌した。ブロッキング後のニトロセルロース膜を、膜小胞分子マーカーに対する１次抗体と4℃で一晩反応させた。翌日、ニトロセルロース膜を50 mlの洗浄液（0.1% Tween20／PBS(-)）で3回洗浄後、Horse Radish Peroxidase（HRP）で標識した２次抗体と室温で2時間反応させた。ニトロセルロース膜を50 mlの洗浄液で3回洗浄後、Clarity（商標）Western ECL Substrate（Bio Rad）を使用して化学発光検出を行った。化学発光シグナルの検出には、LAS3000（Fuji Film）を用いた。(5)
本解析において使用した１次抗体およびHRP標識２次抗体の種類と希釈率は下記の通りである。エキソソーム分子マーカー１次抗体：Mouse anti-CD63 IgG（Santa Cruz）（1:100希釈）、Mouse anti-CD9 IgG（Santa Cruz）（1:100希釈）、Mouse anti-TSG101 IgG（Santa Cruz）（1:100希釈）。HRP標識２次抗体：Rabbit anti-Mouse IgG HRP（Chemicon）（1:1,500希釈）。 The types and dilution rates of the primary antibody and HRP-labeled secondary antibody used in this analysis are as follows. Primary antibodies for exosome molecular markers: Mouse anti-CD63 IgG (Santa Cruz) (1: 100 dilution), Mouse anti-CD9 IgG (Santa Cruz) (1: 100 dilution), Mouse anti-TSG101 IgG (Santa Cruz) (1 : 100 dilution). HRP-labeled secondary antibody: Rabbit anti-Mouse IgG HRP (Chemicon) (1: 1,500 dilution).
（６）粒径および粒径分布パターンの解析
膜小胞の粒径（粒子サイズ）計測ならびに分布様式を、ナノ粒子径計測システムDelsaMax CORE（Beckman Coulter）によって解析した。なお、当該計測システムは、動的光散乱法（DLS）と静的光散乱法（SLS）の２つの異なる分析方法に基づく。DLSは、一般的に、液相に存在するナノ粒子の特性を評価する技術として用いられ、粒子サイズ等の流体力学的特性値（変数）を得ることができる。溶液中に分散した粒子はブラウン運動をしており、その動きは、大きな粒子では遅く、小さな粒子ほど早い。ブラウン運動している粒子にレーザー光を照射すると、粒子によって散乱された光に、個々の粒子のブラウン運動の速度に起因した揺らぎが観察される。また、散乱光強度は粒子のブラウン運動によって常に変動する。散乱光の強度を測定し、時間当たりの変化量に変換して、自己相関関数法を用い、ストークス−アインシュタインの式から、粒径を算出することができる。(6) Analysis of particle size and particle size distribution pattern The particle size (particle size) measurement and distribution mode of membrane vesicles were analyzed by a nano particle size measurement system DelsaMax CORE (Beckman Coulter). The measurement system is based on two different analysis methods: dynamic light scattering (DLS) and static light scattering (SLS). DLS is generally used as a technique for evaluating the characteristics of nanoparticles present in a liquid phase, and can obtain hydrodynamic characteristic values (variables) such as particle size. The particles dispersed in the solution have a Brownian motion, and the movement is slower for larger particles and faster for smaller particles. When laser light is irradiated to particles that are in Brownian motion, fluctuations due to the speed of Brownian motion of individual particles are observed in the light scattered by the particles. In addition, the scattered light intensity always varies depending on the Brownian motion of the particles. The intensity of the scattered light is measured, converted into a change amount per time, and the particle diameter can be calculated from the Stokes-Einstein equation using the autocorrelation function method.
上記（５）の結果に基づき、エキソソーム陽性分画（CD63陽性分画）について、試料4 μlを計測用ディスポーザブルセルに取り、波長660.9 nmのレーザー光により、4℃もしくは20℃で、5秒間の計測を３回行った。%Intensity（散乱強度の相対割合。試料中に存在する異なる粒径をもつ粒子集団からの散乱光強度の揺らぎから、自己相関関数の解析を経て、粒径ヒストグラムにおける各ヒストグラムビン（bin、binning）の散乱強度の総和（度数）が100%となるように、粒径ビン毎に相対的に割り振った値）を計算した。 Based on the result of (5) above, for the exosome positive fraction (CD63 positive fraction), 4 μl of the sample is placed in a disposable cell for measurement, and laser light with a wavelength of 660.9 nm is used at 4 ° C or 20 ° C for 5 seconds. Measurement was performed three times. % Intensity (Relative ratio of scattering intensity. Each histogram bin (bin, binning) in the particle size histogram is analyzed from the fluctuation of scattered light intensity from a group of particles with different particle size present in the sample, and then analyzed by autocorrelation function. The value (relatively allocated for each particle size bin) was calculated so that the total (frequency) of the scattering intensity was 100%.
（７）電子顕微鏡解析
膜小胞の形状および粒径を透過型電子顕微鏡により観察した。透過型電子顕微鏡Tecnai F20(FEI)を加速電圧120 kVで運転し、低電子線量照射モードで、倍率5,000、11,500、25,000、50,000倍で撮影を行った。画像データの取得は、顕微鏡に搭載されているスロースキャンCCDカメラ（Gatan）を使い、DigitalMicrograph（登録商標）（Gatan）によって操作した。(7) Electron microscope analysis The shape and particle size of the membrane vesicles were observed with a transmission electron microscope. A transmission electron microscope Tecnai F20 (FEI) was operated at an acceleration voltage of 120 kV, and images were taken at a magnification of 5,000, 11,500, 25,000, and 50,000 times in a low electron dose irradiation mode. Acquisition of image data was performed by DigitalMicrograph (registered trademark) (Gatan) using a slow scan CCD camera (Gatan) mounted on a microscope.
エキソソーム陽性分画の試料を、酢酸ウラニル（1〜2%）を用いてネガティブ染色し、複数枚の電子顕微鏡画像を取得した。ImageJ 1.48v（NIH）を使用して、主観を排した方法により、画像に写っている膜小胞の粒径ならびに個数を計測し、粒径分布解析を行った。度数分布計算はExcel（Microsoft）に装備されている関数を利用し、グラフは、KaleidaGraph 4.5（HULINKS）で描画した。 A sample of the exosome positive fraction was negatively stained with uranyl acetate (1-2%) to obtain a plurality of electron microscope images. Using ImageJ 1.48v (NIH), the particle size and number of membrane vesicles shown in the image were measured by a method that excluded subjectivity, and the particle size distribution analysis was performed. The frequency distribution calculation used a function provided in Excel (Microsoft), and the graph was drawn with KaleidaGraph 4.5 (HULINKS).
＜２．Bis-Tris緩衝液を用いた膜小胞（エキソソーム）の分離精製＞
種々の細胞を培養して得られたDMEM培地を上記（２）および（３）の手順により精製し、得られた精製サンプルを上記（５）の手順によりDot Blot解析した。<2. Separation and purification of membrane vesicles (exosomes) using Bis-Tris buffer>
The DMEM medium obtained by culturing various cells was purified by the procedures (2) and (3), and the obtained purified sample was analyzed by Dot Blot by the procedure (5).
HEK293細胞由来の精製分画についての、種々のエキソソーム分子マーカー抗体によるDot Blot解析の結果を図２に示す。図２の結果から、培養液中に分泌されたエキソソームが精製されたこと、および、エキソソーム分子マーカーの種類ごとに分画分布パターンや発現量に相違があることが示された。また、種々の細胞由来の精製分画についての抗CD63抗体によるDot Blot解析の結果を図３に示す。図３の結果から、いずれの細胞由来の試料からもエキソソームを精製できたこと、および、細胞の種類によって、ユニークかつ特徴的なエキソソームの分布パターンを示すことが明らかになった。 FIG. 2 shows the results of Dot Blot analysis with various exosome molecular marker antibodies for the purified fraction derived from HEK293 cells. The results of FIG. 2 showed that the exosomes secreted into the culture medium were purified, and that there were differences in the fraction distribution pattern and expression level for each type of exosome molecular marker. Moreover, the result of Dot Blot analysis by the anti-CD63 antibody about the purified fraction derived from various cells is shown in FIG. From the results shown in FIG. 3, it was revealed that exosomes could be purified from any cell-derived sample and that a unique and characteristic exosome distribution pattern was exhibited depending on the cell type.
＜３．緩衝液の塩濃度が膜小胞の形態に与える影響＞
上記Dot Blot解析の結果に基づき、エキソソーム陽性分画（CD63陽性分画）として特定されたFraction#9（ショ糖濃度：22.0〜23.6%）およびFraction#10（ショ糖濃度：18.0〜19.0%）に含まれる膜小胞を、上記（７）の手順により透過型電子顕微鏡により観察した。また、比較対照として、25 mM Bis-Tris（pH 6.5）に代えて、140 mM NaClを含む25 mM Bis-Tris（pH 6.5）を用いた以外は上記（２）および（３）の手順と同様にしてエキソソーム陽性分画を調製した。<3. Influence of buffer salt concentration on membrane vesicle morphology>
Fraction # 9 (sucrose concentration: 22.0-23.6%) and Fraction # 10 (sucrose concentration: 18.0-19.0%) identified as exosome positive fraction (CD63 positive fraction) based on the above Dot Blot analysis results Were observed with a transmission electron microscope according to the procedure (7). Moreover, it replaced with 25 mM Bis-Tris (pH 6.5) as a comparison control, and it was the same as the procedure of said (2) and (3) except having used 25 mM Bis-Tris (pH 6.5) containing 140 mM NaCl. Thus, an exosome positive fraction was prepared.
結果を図４に示す。25 mM Bis-Tris（pH 6.5）を用いて調製したエキソソーム陽性分画は、種々の粒径を有する球状の膜小胞を、各分画に固有の比率で含むことが確認された（図４ＣおよびＤ）。なお、Fraction#9に対して、マウス抗CD63 IgG（１次抗体）と、金ナノ粒子（数nm）で標識されたヤギ抗マウスIgG（２次抗体）を用いた免疫電子顕微鏡解析を行ったところ、膜小胞がCD63陽性であることが確認され、上記Dot Blot解析との整合性が認められた（図６）。
The results are shown in FIG. It was confirmed that the exosome positive fraction prepared using 25 mM Bis-Tris (pH 6.5) contains spherical membrane vesicles having various particle sizes in a ratio specific to each fraction (FIG. 4C). And D).
一方、PBSと同程度の塩を含む140 mM NaCl/25 mM Bis-Tris（pH 6.5）を用いて調製したエキソソーム陽性分画には、100 nm以下の種々の粒径を有する膜小胞はほとんど見られず、膜小胞の形状も大きくくずれていることが確認された（図４ＡおよびＢ）。この結果から、緩衝液に含まれる塩が、膜小胞を凝集させることが示された。 On the other hand, in the exosome positive fraction prepared using 140 mM NaCl / 25 mM Bis-Tris (pH 6.5) containing a salt similar to PBS, almost no membrane vesicles with various particle sizes of 100 nm or less It was not seen, and it was confirmed that the shape of the membrane vesicle was greatly deformed (FIGS. 4A and B). From this result, it was shown that the salt contained in the buffer aggregates membrane vesicles.
＜４．緩衝液の塩濃度が膜小胞の粒径分布に与える影響＞
上記Dot Blot解析の結果に基づき、エキソソーム陽性分画（CD63陽性分画）として特定されたFraction#9およびFraction#10に含まれる膜小胞について、上記（６）の手順により、DelsaMax COREを用いた粒径および粒径分布パターンの解析を行った。<4. Effect of buffer salt concentration on particle size distribution of membrane vesicles>
For membrane vesicles contained in
結果を図５および図８に示す。Fraction#9およびFraction#10のいずれも、%Intensityのグラフにおいて、Fraction#9においては1.1、7.5、129.2、585.6、14342.0 nmに、Fraction#10においては1.1、35.8、207.0 nmにピークをもつ互いに区別可能な複数の正規分布の重ね合わせからなる粒径分布様式が認められた（図５（ａ）および（ｂ）、図８左）。この粒径分布パターンから、膜小胞の粒径（サイズ）が量子化されていることが明らかとなった。この結果は、Fraction#9およびFraction#10に存在する膜小胞の粒径と粒径分布を、上記（７）の手順により電子顕微鏡解析により調べた結果とほぼ完全に一致した（図７）。なお、1.1 nmのピークに対応する物体は電子顕微鏡解析では確認されず、また、緩衝液について上記解析を行った対照実験でも同様に1.1 nmのピークが観測されたことから、当該ピークは膜小胞に由来するものではなく、試薬由来の夾雑物やレーザー光照射によって発生した微小気泡による散乱光ノイズなどに起因するものであると考えられた。
The results are shown in FIG. 5 and FIG. Both
一方、25 mM Bis-Tris（pH 6.5）に代えて、140 mM NaClを含む25 mM Bis-Tris（pH 6.5）またはPBS(-)を用いた以外は上記（２）および（３）の手順と同様にして調製したエキソソーム陽性分画からは、100 nm以下の直径にピークを有する膜小胞の正規分布は消失していた（図８中央および右）。 On the other hand, in place of 25 mM Bis-Tris (pH 6.5), the procedures of (2) and (3) above were used except that 25 mM Bis-Tris (pH 6.5) or PBS (-) containing 140 mM NaCl was used. The normal distribution of membrane vesicles having a peak at a diameter of 100 nm or less disappeared from the exosome-positive fraction prepared in the same manner (FIG. 8 middle and right).
これらの結果から、25 mM Bis-Tris（pH 6.5）を用いて調製した膜小胞集団は、インタクトな状態を維持していることが示され、一方で、塩を含む緩衝液を用いて調製された膜小胞は、インタクトな状態を維持できていないことが示された。さらに、膜小胞を構成するタンパク質のＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析や、調製された膜小胞のレシピエント細胞に対する特異的結合活性解析によっても、上記結論を支持する結果が得られた（データは示さず）。 These results indicate that the membrane vesicle population prepared using 25 mM Bis-Tris (pH 6.5) remains intact, while using a salt-containing buffer. It was shown that the membrane vesicles that were made were not able to maintain an intact state. In addition, SDS-PAGE analysis of the proteins constituting membrane vesicles and specific binding activity analysis of the prepared membrane vesicles to recipient cells also gave results that support the above conclusion (data not shown). ).
＜５．膜小胞の安定性に対するアミノ酸の効果＞
HEK293細胞を培養して得られたDMEM培地を、25 mM Bis-Tris（pH 6.5）に代えて、2 mMのフェニルアラニンまたはスレオニンを加えた25 mM Bis-Tris（pH 6.5）を用いた以外は、上記（２）および（３）と同様の手順により精製し、得られた精製サンプルを上記（５）の手順によりDot Blot解析した。<5. Effect of amino acids on the stability of membrane vesicles>
The DMEM medium obtained by culturing HEK293 cells was replaced with 25 mM Bis-Tris (pH 6.5) supplemented with 2 mM phenylalanine or threonine instead of 25 mM Bis-Tris (pH 6.5). The purified sample was purified by the same procedure as the above (2) and (3), and the obtained purified sample was subjected to Dot Blot analysis by the above procedure (5).
結果を図９に示す。アミノ酸を含まない25 mM Bis-Tris（pH 6.5）により精製したサンプルは、時間の経過とともに、エキソソーム陽性分画（CD63陽性分画）の分布パターンが変化しているのに対し、アミノ酸を加えた25 mM Bis-Tris（pH 6.5）により精製したサンプルは、精製後６週間以上経過しても、エキソソーム陽性分画の分布パターンに変化は見られなかった。この結果から、塩を含まない緩衝液に、さらにアミノ酸を加えることにより、長期間安定な膜小胞サンプルを調製できることが示された。 The results are shown in FIG. The sample purified with 25 mM Bis-Tris (pH 6.5) containing no amino acids added amino acids while the distribution pattern of the exosome positive fraction (CD63 positive fraction) changed over time. The sample purified with 25 mM Bis-Tris (pH 6.5) showed no change in the distribution pattern of the exosome-positive fraction even after 6 weeks or more after purification. From this result, it was shown that a membrane vesicle sample which is stable for a long period of time can be prepared by adding an amino acid to a buffer solution containing no salt.
Claims (17)
（２）膜小胞を含む緩衝溶液を調製するために、前記（１）の工程により得られた試料溶液を、コロイド凝集剤を含まない緩衝液により置換する工程と、
（３）前記（２）の工程により得られた緩衝溶液に含まれる膜小胞を、密度勾配遠心により分離する工程と
を含む、膜小胞集団の調製方法。(1) a step of ultrafiltration of a sample solution containing membrane vesicles;
(2) replacing the sample solution obtained by the step (1) with a buffer solution containing no colloidal flocculant in order to prepare a buffer solution containing membrane vesicles;
(3) A method for preparing a membrane vesicle population, comprising the step of separating membrane vesicles contained in the buffer solution obtained by the step (2) by density gradient centrifugation.
（ｉ）前記膜小胞集団に含まれる膜小胞が、分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの表面電荷を維持している、
（ｉｉ）前記膜小胞集団に含まれる膜小胞が、分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの形態を維持している、および／または
（ｉｉｉ）前記膜小胞集団が、分離精製前の前記試料溶液中に存在したときの粒径分布パターンを維持している、
膜小胞集団。A membrane vesicle population separated and purified from the sample solution, wherein the membrane vesicles contained in the membrane vesicle population are dispersed, and
(I) The membrane vesicles contained in the membrane vesicle population maintain the surface charge when present in the sample solution before separation and purification.
(Ii) The membrane vesicles contained in the membrane vesicle population maintain the form when they existed in the sample solution before separation and purification, and / or (iii) the membrane vesicle population is separated Maintaining the particle size distribution pattern when present in the sample solution before purification,
Membrane vesicle population.
The composition according to any one of claims 12 to 16, wherein the buffer solution containing no colloidal flocculant further comprises an amino acid.
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