JPWO2016104716A1 - 遺伝子のノックアウト方法 - Google Patents
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- C12N2310/20—Type of nucleic acid involving clustered regularly interspaced short palindromic repeats [CRISPRs]
Abstract
Description
(1)1種以上の標的遺伝子を有する細胞中に、前記標的遺伝子1種につき3種以上のガイドRNAとCasタンパク質とを生成できるCRISPR-Casシステムを導入することを含む、標的遺伝子がノックアウトされた細胞の製造方法。
(2)ターゲットが、オフターゲット部位(標的遺伝子中の目的配列以外の部位)に強く結合するリスクを有する低AT率 (45%未満)を有するターゲット、およびgRNAの二次構造を破壊する傾向のあるTTTTを含有するターゲットではないこと。
(3)ターゲットが、pX330を鋳型にしてPCRベースでgRNA templateを合成する際のリバースプライマー(Wang, H.,他、 (2013). One-step generation of mice carrying mutationsin multiple genes by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Cell 153,
910-918)と類似しすぎないこと。
(4)gRNAの二次構造を計算し、フォールディングエネルギーが-18超(「誤った」構造が非常に不安定であったことを示す)であった場合を除いて、Cas9認識のためのステムループ構造が正しくフォールドできない候補を除外すること。
(5)Zhangツール(非特許文献9)のインプリメンテーションを使用してオフターゲットリスクを評価し、75以上のスコアであること。
(1)3種以上のガイドRNAおよびCasタンパク質をコードするDNAの全てを含む単一の発現ベクターを使用する場合;
(2)3種以上のガイドRNAをコードするDNAを全て含む発現ベクターと、Casタンパク質をコードするDNAを含む発現ベクターとを使用する場合;および
(3)3種以上のガイドRNAをコードするDNAをそれぞれ別個に含む3種類以上の発現ベクターと、Casタンパク質をコードするDNAを含む発現ベクターとを使用する場合;
などが可能であるが、特にこれらに限定されない。
以上をまとめると、本発明によれば以下の発明が提供される。
(1)1種以上の標的遺伝子を有する細胞中に、前記標的遺伝子1種につき3種以上のガイドRNAとCasタンパク質とを生成できるCRISPR-Casシステムを導入することを含む、標的遺伝子がノックアウトされた細胞の製造方法。
(2)3種のガイドRNAが標的遺伝子にターゲッティングし、Casタンパク質が標的遺伝子を切断し、これにより標的遺伝子がノックアウトされる、(1)に記載の方法。
(3)CRISPR-Casシステムが、前記標的遺伝子1種につき3種以上のガイドRNAと、Casタンパク質をコードするRNAとを含むシステムである、(1)又は(2)に記載の方法。
(4)標的遺伝子が2種類以上であり、2種類以上の標的遺伝子がノックアウトされる、(1)から(3)の何れか一に記載の方法。
(5)Casタンパク質が、Cas9タンパク質である、(1)から(4)の何れか一に記載の方法。
(6)細胞が、動物細胞である、(1)から(5)の何れか一に記載の方法。
(7)細胞が、受精卵である、(1)から(6)の何れか一に記載の方法。
(8)CRISPR-Casシステムが細胞の細胞質に導入される、(1)から(7)の何れか一に記載の方法。
(9)(1)から(8)の何れか一に記載の方法により標的遺伝子をノックアウトした胚を取得し、前記胚を偽妊娠非ヒト動物に移植し、産仔を取得することを含む、ノックアウト非ヒト生物の製造方法。
(10)ノックアウト非ヒト生物が、ノックアウト非ヒト動物である、(9)に記載の方法。
(11)標的遺伝子が2対立遺伝子であり、取得した産仔の全体数における全身2対立遺伝子ノックアウト個体数の割合が、90%以上である、(9)又は(10)に記載の方法。
(12)標的遺伝子が2種類以上であり、取得した産仔の全体数における全身2対立遺伝子ノックアウト個体数の割合が、前記2種類以上の標的遺伝子のそれぞれについて90%以上である、(11)に記載の方法。
(13)(9)から(12)の何れか一に記載の方法により製造されるノックアウト非ヒト生物。
(図1)
(A)トリプルターゲットおよびシングルターゲットCRISPR法の模式図。トリプルターゲット法では、3種のガイドRNA(gRNA)を一遺伝子について設計した(上)。3種のgRNAおよびCas9 mRNAを、前核期のC57BL/6N受精卵の細胞質内に同時注射した。シングルターゲット法では、1種のgRNAを、トリプルターゲット法におけるより3倍高い濃度で注射した(下のパネル)。各方法は、同量の総gRNAを使用する。
(B)異なる数のgRNAが同じターゲット遺伝子に対して使用される場合、1または複数の対立遺伝子がどの程度、効率的に切り出されるかを予測するコンピューターシミュレーション。トリプルターゲット(赤線:上の線)およびシングルターゲット(青線:下の線)法を比較した。一対立遺伝子(上)、二対立遺伝子(すなわち、単一遺伝子2対立遺伝子ノックアウト、中央)、および四対立遺伝子ノックアウト(すなわち、二重遺伝子2対立遺伝子ノックアウト、下)の確率を、漸増する総gRNA濃度に対して計算した。線および線の周囲の網掛け部分は、それぞれ1,000シミュレーションの平均および標準偏差を示す。トリプルターゲットとシングルターゲットのストラテジー間の効率の差異は、増加したターゲット対立遺伝子の数の増加にともなってより明らかになった。トリプルターゲット法のコンピューターモデルは、最低効率を予測する。
(C)チロシナーゼ(Tyr)遺伝子をノックアウトするためのgRNAのターゲット配列。3種の独立したgRNAのターゲット配列は、Tyr遺伝子のエクソン1および5上にあった。マウスゲノム配列データは、UCSC Genome Browser(http://genome.ucsc.edu/;(Rhead, B., 他、(2010). The UCSC Genome Browser database: update 2010. Nucleic acids research 38, D613-619))を介してGRCm38/mm10から得た。短い色付きのバー(青色(左)、橙色(真ん中)、および緑色(右))は、20塩基ターゲット配列を示す。ターゲット配列は、ゲノムDNAのセンス鎖上にあった(プラス記号は、遺伝子のセンス鎖を指す)。
(D)Tyr遺伝子のgRNAに対するSSAアッセイ。SSAベクター(pSSA-Tyr-1およびpSSA-Tyr-2)からの相対的ルシフェラーゼ活性を測定した。SSAベクターを、空ベクター(-)、いずれのgRNAも含まないpX330 Cas9ベクター(pX330)、またはpX330 Cas9およびTyr gRNA(Tyr-1、Tyr-2、もしくはTyr-3)とともに293T細胞内にトランスフェクトした。各試料の相対的ルシフェラーゼ活性を、空ベクター(-)の活性を1としてスケーリングした。エラーバーは、標準偏差を表す(n=3)。
(E)トリプルターゲット法によって作製したTyrノックアウトマウス。毛色により、2対立遺伝子がノックアウトされたマウスが実証された。
(F)シングルおよびトリプルターゲット法の比較。表は、gRNA注射条件および得られる表現型を示す(図2のGを参照)。Embryos:注射かつ移した胚の数;Pups:生まれた子の数(合計);Albino:アルビノ毛色(2対立遺伝子ノックアウト)を有する子;Pigmented:モザイクまたは野生型の毛色を有する子。
(A)異なる数のgRNAが同じターゲット遺伝子に対して使用される場合、1または複数の対立遺伝子がどの程度、効率的に切り出されるかを予測するコンピューターシミュレーション。ノックアウト効率を、漸増する数のターゲット対立遺伝子:単一遺伝子モノ対立遺伝子(一対立遺伝子)、単一遺伝子2対立遺伝子(二対立遺伝子)、二重遺伝子2対立遺伝子(四対立遺伝子)、および三重遺伝子2対立遺伝子ノックアウト(六対立遺伝子)について計算した。各シミュレーションにおいて、シングル(遺伝子1個当たり一ターゲット)、デュアル(二ターゲット)、トリプル(三ターゲット)、六重(六ターゲット)、および十重(十ターゲット)ターゲット法を比較した。各方法は、同量の総gRNAを使用する。異なる方法(シングルターゲット法を除く)のコンピューターモデルは、最低効率を予測する。
(B)CRISPRベースノックアウトのコンピューターシミュレーションで使用したgRNA解離定数(K)の分布(図2のB)。gRNA解離定数(K)の分布は、対数正規分布に従い、幾何平均および幾何標準偏差はそれぞれ、1.0および2.5である。普遍性を失うことなく、gRNA解離定数の対数正規分布における幾何平均について1.0を使用することができる。Tyr遺伝子の3種のgRNAに対するSSAアッセイから3種のgRNA解離定数を推定した(K1=2.32203、K2=1.16562、およびK3=0.369466、図1のD)。これらの値の幾何標準偏差は、2.53097であったので、gRNA解離定数の対数正規分布における幾何標準偏差について2.5を使用した。
(C)変異の異なる回復率(α=0.05、0.10、および0.15)ならびに総gRNA濃度(S=5、10、および15)を有する単一遺伝子2対立遺伝子ノックアウトの最低効率(平均±標準偏差)を予測するコンピューターシミュレーション。総gRNA濃度(S)は、gRNA解離定数の幾何平均(1.0)に対する相対値である。
(D)Tyr遺伝子のgRNAのSSAアッセイのために挿入された断片の配列。SSAベクターの断片配列が、それぞれ、Tyr-1、Tyr-2、およびTyr-3 gRNAの3種のターゲット配列とともに示されている。マウスゲノム配列データは、UCSC Genome Browser(http://genome.ucsc.edu/; (Rhead, B., 他、(2010). The UCSC Genome Browser database: update 2010. Nucleic acids research 38, D613-619))を介してGRCm38/mm10から得た。
(E)単鎖アニーリング(SSA)アッセイの模式図。SSA-レポーターベクターは、702bpのダイレクトリピートを共有した5'および3'ルシフェラーゼ遺伝子断片を含有する。これらの断片は、終止コドンおよびgRNAターゲット部位によって分離されている。ターゲット部位におけるgRNA/Cas9媒介二本鎖切断により、相同領域間でSSA反応を誘導し、活性ルシフェラーゼ遺伝子を生成する。
(F)単一または三重gRNAを同じターゲット遺伝子に対して使用する場合、遺伝子の2つの対立遺伝子がどの程度、効率的に切り出されるかを予測する、変異の回復率(α=0.136)および総gRNA濃度(S=5.72)の推定値を用いたコンピューターシミュレーション。Tyr-1、Tyr-2、およびTyr-3に対するSSAアッセイ結果から推定された3つの異なる解離定数(K1=2.32203、K2=1.16562、およびK3=0.369466)を用いて、3つのシングルターゲットCRISPRモデルを構築した。解離定数の値(K1、K2、およびK3)は、SSAアッセイにおけるDNA切断効率に反比例し、解離定数の幾何平均は普遍性を失うことなく1.0に設定される。シングルターゲットCRISPR効率は、それぞれ、Tyr-1(36.0%)、Tyr-2(54.2%)、およびTyr-3(64.7%)であった。シングルターゲットCRISPRモデルおよび実験を比較して、最小二乗法によって変異の回復率の値(α=0.136)、総gRNA濃度(S=5.72)を推定した。トリプルターゲットCRISPR効率は、実験(97.5%)およびシミュレーション(82.6%)であった。
(G)3種の異なるシングルターゲットgRNAで作製されたTryノックアウトマウスの毛色。図1のFも参照。
(H)Tyrノックアウトマウスの遺伝子型判定。各ターゲット配列のインタクトなDNAの相対量を、定量的PCR(qPCR、図2のDを参照)によって測定した。ゲノムDNAは、各マウスの脳、頭皮および尾部から精製した。各ターゲット配列のインタクトなDNAの相対量を、一野生型マウスにおける量が100%となるようにスケーリングした。
エクソーム配列読み取りのゲノムアラインメント。3種のgRNAによってターゲットされたゲノム領域を、野生型、Tyrノックアウト#1および#2について示す。各パネルの上部は読み取り範囲を示しており、下部は読み取りのアラインメントを示している(薄い塗りつぶしの矩形)。複数の矩形の間における縦線は、読み取りのペアを表している。ターゲット部位に生じた異なる種類の変異(濃い塗りつぶしの矩形)には、それぞれ図面内に説明が付されている。当該変異は、エキソン間の欠失および逆位、エキソン内の欠失および逆位、短い欠失および短い挿入である。
(A)トリプルターゲットCRISPR法のターゲットを自動的に選択するためのパイプライン。候補を、これらの配列に基づいて遺伝子のエクソンから最初に抽出し、一連の連続的なフィルタリングステップに付した。候補は、マウスゲノム内で複数回出現した場合、AT含量が45%未満であった場合、これらがTTTTを含有した場合、またはgRNA鋳型構築におけるPCR増幅用のリバースプライマーと類似しすぎる場合には、排除した。対応するgRNAが好ましくない二次構造を有している場合、または配列が高いオフターゲットリスクを有している場合も退けた。これらの基準に合致した候補を、適当なターゲットと見なした。これらは、データベース内に記憶されている。
(B)遺伝子1個当たりのターゲットの数の分布。全マウス遺伝子のうちで、81.2%が少なくとも3つのターゲットを有した。さらに、遺伝子の71.9%は、6超の独立したターゲットを有し、それは、ターゲットがトリプルターゲットCRISPR gRNAの2セット超について適切な配列を有することを意味した。
(C)遺伝子1個当たりのターゲットの数のヒストグラム。
(D)Tyr遺伝子について自動的に選択されたターゲットの実験的検証。追加のトリプルgRNAの2セット(Tyr-4,5,6およびTyr-7,8,9)を試験した。写真は、作製されたマウスの毛色を示す。
(E)表は、gRNAの注射条件および得られる表現型を示す。Embryos:注射かつ移した胚の数; Pups:生まれた子の数(合計);Albino:アルビノ毛色(2対立遺伝子ノックアウト)を有する子;Pigmented:モザイクまたは野生型の毛色を有する子。
(A)Tyr遺伝子の代替ターゲット配列。Tyrの代替ターゲット配列の2セットを、トリプルターゲットCRISPR法のデータベースから選択した(図5のA)。各セットは、3つのターゲットを有していた。マウスゲノム配列データは、UCSC Genome Browser(http://genome.ucsc.edu/;( Rhead, B., 他、(2010). The UCSC Genome Browser database: update 2010. Nucleic acids research 38, D613-619))を介してGRCm38/mm10から得た。20塩基ターゲット配列を示す。
(B)トリプルターゲット法のCRISPRターゲット配列のデータベースについてのオンラインウェブページ(http://www.crispr.riken.jp)。遺伝子名称を入力し、送信をクリックすることが、要求される最小の行動である。ユーザーは、プローブのターゲット場所または他の出力選択肢を選択することができる。
(C)データベースの結果のページ。結果は、表として表され、CSV形式でダウンロードすることができる(黒色ボックス)。
(動物)
C57BL/6NJclマウスは、CLEA Japan Inc.から購入し、C57BL/6Jマウスは、Oriental Yeast Co.,Ltdから購入した。すべてのマウスに食物および水を自由に与えた。これらを、50%の相対湿度で、21℃の周囲温度の環境内で保持した。光は、12時間明/12時間暗サイクル下で制御した。動物を伴う手順および動物のケアは、動物実験のRIKEN規定に従って実施した。
C57BL/6N雌(生後4〜6週間)を過排卵させ、C57BL/6N雄と交配させた。顕微解剖によってプラグ形成したC57BL/6N雌の輸卵管の膨大部から受精卵を収集し、37℃で、5%のCO2インキュベーター内で、KSOM培地(Merck Millipore)中に保持した。Cas9 mRNA(100ng/μl)およびgRNA(合計で150ng/μl)を、室温で、M2培地(Merck Millipore)中の受精卵の細胞質内に同時注射した。細胞質注射の詳細は、既報の通りである(Sumiyama, K., 他、A simple and 1 highly efficient transgenesis method in mice with the Tol2 transposon system and cytoplasmic microinjection. Genomics 95, 306-311)。マイクロインジェクション後、注射した胚を、37℃で、5%のCO2インキュベーター内で、KSOM培地(Merck Millipore)中で1時間培養し、次いで15〜30個の胚を、偽妊娠のICR雌マウスの輸卵管に移した。
全身ノックアウトマウスを作製するための様々なCRISPR法の効率を、以下のコンピューターモデルによって推定した。十分なCas9が供給された場合、単一遺伝子モノ対立遺伝子ノックアウトの効率Pは、
Tyrのターゲット配列(図1のC)を、Jack LinのオンラインCRISPR gRNAファインダー(http://spot.colorado.edu/〜slin/cas9.html)を使用して設計した。各ターゲット配列についてのマウスゲノム内の可能なオフターゲット配列を、CRISPR設計ツール(http://tools.genome-engineering.org)( 非特許文献9)を使用して確認した。
(単鎖アニーリング(SSA)アッセイのためのpGL3-SSAプラスミドの構築)
ルシフェラーゼ遺伝子の5'または3'部分配列を含有するpGL3-対照ベクター(Promega)の2つの部分的な断片を、以下のプライマー(ベクター骨格の一部およびルシフェラーゼ遺伝子の5'部分を増幅するプライマーとしての1)および2)、ならびにベクター骨格の一部およびルシフェラーゼ遺伝子の3'部分を増幅するプライマーとしての3)および4))、すなわち、
1)フォワード5'-GTAAAATCGATAAGGATCCGTCGAC-3'(配列番号1)(Hokkaido System Science)
2)リバース: 5'-CAGCTGAAACTGCAGAAAGATATCAAAGAATTCTTAATCCAGATCCACAACCTTCGCTTC-3'(配列番号2)
3)フォワード5'-GATATCTTTCTGCAGTTTCAGCTGCCAATCATCCAAAAAATTATTATCATGG-3'(配列番号3)
4)リバース5'-CATCGGTCGACGGATCCTTATCG-3'(配列番号4)
を用いてPCRを使用して増幅させた。両PCR産物をPstlおよびBamHIによって消化し、相互にライゲーションした。5'と3'部分ルシフェラーゼ配列の間に複数のクローニング配列(5'-TAAGAATTCTTTGATATCTTTCTGCAGTTTCAGCTG-3'(配列番号5):終止-EcoRI-EcoRV-Pstl-Pvull)を含有した得られたベクターをpGL3-SSAと呼ぶ。
チロシナーゼ(それぞれ、Tyr-1、ならびにTyr-2およびTyr-3の両方)のターゲット配列を含有する199塩基および200塩基の断片を、PCRによってC57BL/6マウスゲノムDNAから増幅した。PCR産物を、Mighty Cloningキット(TaKaRa)用いて5'末端をリン酸化し、pGL3-SSAプラスミドのEcoRV部位内に挿入した(上記を参照)。得られたベクターをそれぞれ、pSSA-Tyr-1およびpSSA-Tyr-2/3と呼ぶ。
ターゲット配列のオリゴヌクレオチド配列(Hokkaido System Science)
pSSA-Tyr-1:
フォワードオリゴヌクレオチド:5'-GGCACCTATGGCCAAATGAACAATGGG-3'(配列番号6)
リバースオリゴヌクレオチド: 5'-GTTCCCACAATAACAAGAAAAGTCTGTGCC-3'(配列番号7)
pSSA-Tyr-2/3:
フォワードオリゴヌクレオチド:5'-TGGAACAAGCCAGTCGTATCTGGCC-3'(配列番号8)
リバースオリゴヌクレオチド:5'-TCACAGATGGCTCTGATACAGCAAGCTG-3'(配列番号9)
(pX330-Tyr-1、pX330-Tyr-2、pX330-Tyr-3プラスミドの構築)
チロシナーゼのターゲット配列(Tyr-1、Tyr-2、Tyr-3)を含有するオリゴヌクレオチド(Hokkaido System Science)をアニールし、pX330プラスミドのU6プロモーターの下流のBbsI部位内に挿入した[Addgene、#42230、(Cong, L., 他、 (2013). Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems. Science 339, 819-823;非特許文献9]。得られたベクターを、それぞれpX330-Tyr-1、pX330-Tyr-2、pX330-Tyr-3と呼ぶ。
Tyr-1:
フォワードオリゴヌクレオチド:5'-CACCGTGTCAAGGGACACACTGCT-3'(配列番号10)
リバースオリゴヌクレオチド:5'-AAACAGCAGTGTGTCCCTTGACAC-3'(配列番号11)
Tyr-2:
フォワードオリゴヌクレオチド:5'-CACCGTTATTGCTGCAGCTCTCTC-3'(配列番号12)
リバースオリゴヌクレオチド:5'-AAACGAGAGAGCTGCAGCAATAAC-3'(配列番号13)
Tyr-3:
フォワードオリゴヌクレオチド:5'-CACCGAAGAAGAAGCAACCCCAGG-3'(配列番号14)
リバースオリゴヌクレオチド:5'-AAACCCTGGGGTTGCTTCTTCTTC-3'(配列番号15)
(SSAアッセイ)
10%のFBS(JRH Biosciences)ならびに抗生物質(100U/mlのペニシリンおよび100μg/mlのストレプトマイシン;Life Technologies)を補充したDMEM(Life Technologies)中で293T細胞を維持した。トランスフェクションの1日前に、1ウェル当たり4×105細胞の密度で6ウェルプレート上に細胞を蒔いた。翌日、製造者の指示に従って、図1のDに示した以下のコンストラクト、すなわち、0または2μgのpX330、pX330-Tyr-1、pX330-Tyr-2、またはpX330-Tyr-3プラスミドの存在下で、pSSA-Tyr-1またはpSSA-Tyr-2/3レポータープラスミド1μgとともに、FuGene6(Roche)を使用して細胞をコトランスフェクトした。空ベクターを使用して、DNAの総量を1ウェル当たり3μgにした。さらに、phRL-CMVプラスミド[ウミシイタケルシフェラーゼ(Renilla luciferase、RLuc)レポーターベクター、Promega]50ngを、トランスフェクション効率の内部対照として、各トランスフェクションに含めた。トランスフェクトして48時間後に、細胞を回収し、Dual-Luciferase Reporter Assay System(Promega)を使用してアッセイした。ルシフェラーゼ活性をRluc活性に対して正規化した。
T7プロモーター融合Cas9コード領域を含むp3s-Cas9HC[Addgene、#43945、(Cho, S.W.,他、(2013). Targeted genome engineering in human cells with the Cas9 RNA-guided endonuclease. Nature biotechnology 31,230-232]をXbal(TaKaRa)で消化し、mMESSAGE mMACHINE T7キット(Life Technologies)を使用するin vitro転写の鋳型として使用した。Cas9 mRNAを、MEGAclearキット(Life Technologies)を使用して精製した。
Tyr(図1のD)のgRNA鋳型を、以下に列挙したプライマー(Hokkaido System Science)(非特許文献4)を用いたPCRによって、T7プロモーターに融合させ、かつpX330-Tyrから増幅させた。
Tyr(セット-2)
gRNANo.4
1 CACTATAGGGACCTCAGTTCCCCTTCAAGTTTTAGAGCTAGAAATAGC(配列番号16)
2 GGGCCTAATACGACTCACTATAGGGACCTCAGTTCCCCTTCAAG(配列番号17)
gRNANo.5
1 CACTATAGGGTTTGACCCAGTATGAATCGTTTTAGAGCTAGAAATAGC(配列番号18)
2 GGGCCTAATACGACTCACTATAGGGTTTGACCCAGTATGAATCG(配列番号19)
gRNANo.6
1 CACTATAGGAGTCTCTGTTATGGCCGATGTTTTAGAGCTAGAAATAGC(配列番号20)
2 GGGCCTAATACGACTCACTATAGGAGTCTCTGTTATGGCCGATG(配列番号21)。
gRNANo.7
1 CACTATAGGGTCATCCACCCCTTTGAAGGTTTTAGAGCTAGAAATAGC(配列番号22)
2 GGGCCTAATACGACTCACTATAGGGTCATCCACCCCTTTGAAGG(配列番号23)
gRNANo.8
1 CACTATAGGTGTTGACCCATTGTTCATTGTTTTAGAGCTAGAAATAGC(配列番号24)
2 GGGCCTAATACGACTCACTATAGGTGTTGACCCATTGTTCATTG(配列番号25)
gRNANo.9
1 CACTATAGGAGCCATGGCCAGATACGACGTTTTAGAGCTAGAAATAGC(配列番号26)
2 GGGCCTAATACGACTCACTATAGGAGCCATGGCCAGATACGACG(配列番号27)
T7プロモーター融合gRNA PCR断片を、MEGAshortscript T7キット(Life Technologies)を使用するin vitro転写の鋳型として使用した。gRNAを、MEGAclearキット(Life Technologies)を使用して精製した。
T7-gRNAの一般的なリバースオリゴヌクレオチド:
5'-AAAAGCACCGACTCGGTGCC-3'(配列番号28)(非特許文献4)
Tyr(セット1)のT7-gRNAのオリゴヌクレオチド配列
Tyr-1フォワードオリゴヌクレオチド:
5'-GGGCCTAATACGACTCACTATAGGTGTCAAGGGACACACTGCT-3'(配列番号29)
Tyr-2フォワードオリゴヌクレオチド:
5'-GGGCCTAATACGACTCACTATAGGTTATTGCTGCAGCTCTCTC-3'(配列番号30)
Tyr-3フォワードオリゴヌクレオチド:
5'-GGGCCTAATACGACTCACTATAGGAAGAAGAAGCAACCCCAGG-3'(配列番号31)
Tyr(セット2および3)遺伝子のトリプルターゲットgRNA(T7-gRNA)のオリゴヌクレオチド配列は、上記の通りである。
野生型およびTyrノックアウトマウスのゲノムDNAは、製造者の指示に従って、Wizard Genomic DNA Purification Kit(Promega)を使用して、これらのマウスの脳、頭皮および尾部から調製した。これらのマウスの遺伝子型判定のためのqPCRは、ABI PRISM7900(Applied Biosystems)/QuantStudio7 Real-Time PCR System (Life Technologies)、SYBR Premix Ex Taq GC(TaKaRa)および以下のqPCR用のプライマー(Hokkaido System Science)を使用して実施し、それから定量的qPCRの結果が脳、頭皮および尾部から抽出されたゲノムDNAの間において互いに適合していることを確認した。絶対的なターゲット部位の存在量は、野生型ゲノムDNAから得た検量線を使用して計算した。Tbp(Tsujino, K., 他、(2013). Establishment of TSH beta real-time monitoring system in mammalian photoperiodism. Genes to cells : devoted to molecular & cellular mechanisms 18, 575-588)の量を定量化し、内部対照として使用した。
定量的PCRで使用されるプライマー配列(Hokkaido System Science)
Tyr-1:
フォワードプライマー:5'-GTGTCAAGGGACACACTGCTTGG-3'(配列番号32)
リバースプライマー:5'-CTGTGCCAAGGCAGAAACCCTGG-3'(配列番号33)
Tyr-2:
フォワードプライマー:5'-GTTATTGCTGCAGCTCTCTCTGG-3'(配列番号34)
リバースプライマー:5'-GTCTTTGTCCATGAGGAGTGGCTG-3'(配列番号35)
Tyr-3:
フォワードプライマー:5'-GTTATTGCTGCAGCTCTCTCTGG-3'(配列番号36)
リバースプライマー:5'-TCACAGATGGCTCTGATACAGCAAG-3'(配列番号37)
Tbp:
フォォワードプライマー:5'-CCCCCTCTGCACTGAAATCA-3'(配列番号38)
リバースプライマー:5'-GTAGCAGCACAGAGCAAGCAA-3'(配列番号39)。
TYRタンパク質の絶対量を、selected reaction monitoring (SRM) MSで定量した。MS分析のためのサンプルの処理は、幾つかの改変を加えたphase-transfer surfactant (PTS) プロトコール (Masuda, T., Tomita, M., and Ishihama, Y. (2008). Phase transfer surfactant-aided trypsin digestion for membrane proteome analysis. J Proteome Res 7, 731-740.) に従って行った。TYR存在量を分析するために、変異マウスTyr #3およびTyr #4から得た耳を用いた。簡潔には、ホスファターゼインヒビターカクテル(phosphatase inhibitor cocktail (Nacalai Tesque))およびプロテアーゼインヒビターカクテル(protease inhibitor cocktail (Nacalai Tesque))を含んでいるPTSバッファ(12 mMのsodium deoxycholate, 12 mMのsodium N-lauroylsarcosinate, および50 mMのNH4HCO3)中での超音波処理によって、この組織をホモジナイズし、10,000×gで10分の遠心分離によって不純物を除去した。得られたホモジネートは、液体窒素中で凍結し、使用するまで−80℃で貯蔵した。タンパク質の濃度は、Quick Start Bradford Dye Reagent(Bio-Rad)を用いて決定した。
SureSelectQXT Reagent Kit (Cat. No.G9681A, Agilent Technologies) および SureSelectXT Mouse All Exon Kit V1 (Cat. No.5190-4641, Agilent Technologies)を用いて、キットの指示書に従って、エクソームライブラリを作成した。精製したゲノムDNAサンプルのフラグメンテーション、およびアダプターのタグ付けを、トランスポゼースベースの反応によって行った。アダプターのタグ付けがされたDNAライブラリを増幅した後、AMPure XP beads (Beckman Coulter)を用いて精製を行った。精製を行ったこのライブラリを、SureSelectキャプチャライブラリに対するハイブリダイズに供し、ハイブリダイズしたDNAを、ストレプトアビジン被覆したビーズを用いて回収した。この濃縮したDNAライブラリを、Illumina TruSeq system用のインデックスタグを付加するために、適切なdual indexingプライマのペアを用いて、PCR法によって増幅した。各精製の段階において、2100 Bioanalyzer (Agilent Technologies)を用いて、ライブラリ中のDNA分子の長さの分布と濃度とを分析した。
ライブラリを、TruSeq Rapid PE Cluster Kit (Cat. No. PE-402-4001)を用いたon-board cluster generationおよびIllumina HiSeq 1500 (Illumina)のRapid Run Modeにおけるシーケンシングに供し、3つの50-cycleSBS kits (Cat. No. FC-402-4002)を用いて126サイクルのペアエンド読み取りを得た。ここで、以前に示されたように、余剰な試薬を利用した(Tatsumi K, N.O., Itomi K, Tanegashima C, Kuraku S (2015, in press.). Optimization and cost-saving in tagmentation-based mate-pair library preparation and sequencing. Biotechniques.))。コントロールとして、5% PhiX spike-in を各レーンに添加した。イメージ分析およびベースコーリングは、HiSeq Control Software (HCS) ver. 2.0.12.0およびReal-Time Analysis (RTA) ver. 1.17.21.3から構成されるstandard Illumina softwareを用いて実行した。シーケンス生データのクオリティは、FastQC ver. 0.11.1(http://www.bioinformatics.bbsrc.ac.uk/projects/fastqc/)でコントロールした。アダプター配列の除去、および低クオリティの読み取りの除去は、Trim Galore ver. 0.3.3 を用いて、パラメータ‘-e 0.1 -q 30’で行った(http://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/trim_galore/)。さらに、average per-base quality scoreが30以下の読み取りは、オリジナルのスクリプトから除去した。上記のようにフィルタリングした読み取りを、BWA-MEMアルゴリズムを用いたBWA ver. 0.7.10-r789 (Li and Durbin, 2010)によって、ゲノム配列GRCm38/mm10にアラインメントした。マップされたペア読み取り間の潜在的なPCR重複(PCR duplicate)は、Picard Tools ver. 1.122 (http://picard.sourceforge.net/)のMarkDuplicates機能を用いて除去した。読み取りの数、マッピングレート、エクソームオンベイトカバーレージ(exome on-bait coverages)を含むシーケンシングの統計は、Picard ToolsのCalculateHsMetrics機能によってサマライズした。
gRNA部位の自動検出における最初のステップは、候補ターゲットの抽出である。プロセスは、単一遺伝子について記載されており、方法を実施する場合にはすべての遺伝子について繰り返される。ゲノムアノテーションファイルおよびゲノム配列を使用して、遺伝子の全ての公知のアイソフォームによって共有される全エクソン配列を抽出した。これは、ある遺伝子(そのアイソフォームのみではない)を標的化したことを保証するために必要である。次いで、[G、C、またはA]N20GGパターンにマッチした全配列、および相補体がこのパターンにマッチした配列を抽出した。このリストは、遺伝子のすべての可能な候補を表す。次のステップにより、このリストを選別し、適当なターゲットのみを保持した。各ターゲットは、全ステップに合格する必要があり、よって、その順序は、選択に何ら影響しない。これらのステップは、計算的に最も効率のよい順序において実施された。
統計的有意性は、ダネット検定またはウェルチの二標本t-検定によって評価し、以下のように表した:*p<0.05、**p<0.01、***p<0.001、および有意でない評価について、n.s.。分析は、Microsoft ExcelまたはRバージョン3.1.0を使用して実施した。
(トリプルターゲットCRISPRは、ほぼ完全なノックアウト効率を実現する)
2対立遺伝子ノックアウトマウスを作製するための高効率的な方法を確立するために、様々なCRISPR法の最小効率を推定する単純なコンピューターモデルを構築した(詳細については上記を参照)。このコンピューターモデルによれば、複数のgRNAが同じ遺伝子をターゲットにするマルチプルターゲットCRISPRストラテジーが、数倍高い濃度の単一gRNAが対象とする遺伝子をターゲットにする高濃度CRISPRストラテジーより効率的である(図1のA、1のB、図2のA、および図2のB)。
上記の通り、トリプルターゲットCRISPRによれば、2対立遺伝子ノックアウトマウスを効率的に作製することができる。しかし、この方法を用いて種々のノックアウトマウスを作製したが、同一の遺伝についてトリプルターゲットを手動で設計することは、所定のゲノム配列にとっての候補ターゲット配列の抽出(http://cas9.cbi.pku.edu.cn/index.jsp)(Ma, M., Ye, A.Y., Zheng, W., and Kong, L. (2013). A guide RNA sequence design platform for the CRISPR/Cas9 system for model organism genomes. BioMed research international 2013, 270805.)、および各候補物にとってのオフターゲットリスクの評価(http://tools.genome-engineering.org)(Ran, F.A., Hsu, P.D., Wright, J., Agarwala, V., Scott, D.A., and Zhang, F. (2013). Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system. Nature protocols 8, 2281-2308.)のための既存のツールを用いてさえ、依然として時間がかかった。この手動の設計手順は、単一遺伝子のために数時間を要し、これによって大規模なスクリーニングを実施する可能性を制限する。したがって、さらに、gRNA選択ステップの全てを実施する自動化された方法を開発することを試みた。全マウスゲノムをスキャンし、適当なターゲットは全てオンラインデータベース上にある(図4、詳細については実験プロトコールを参照)。このgRNAデータベースから、マウス遺伝子の81.2%について少なくとも3つのターゲット配列(トリプルターゲットCRISPRのための1セット)を取得することができる。さらに、全マウス遺伝子の71.9%は、6を超えるターゲット配列を有し(トリプルターゲットCRISPRのための複数のセット)、これらも含まれている(図4のBおよび図4のC)。
(トリプルターゲットCRISPRによれば、一世代において2対立遺伝子ノックアウトマウスを効率的に作製できる)
本発明は、一世代で全身2対立遺伝子ノックアウトマウスを高効率で(90%超)作製することを目的とした。様々なCRISPR法の最小効率を推定するのに単純なコンピューターモデルを使用することによって、マルチプルターゲットCRISPR法によれば、シングルターゲットCRISPRより高い効率で変異マウスを作製できるはずであることを見出した。本発明では、Tyr遺伝子に対する3種の異なるgRNAを設計し、3種のgRNA(Tyr-1、Tyr-2、Tyr-3)の混合物を使用するトリプルターゲット法により、ほぼ完全な効率(97.5%)を達成した。一方、3倍高い濃度のgRNAのいずれかを用いたシングルターゲット法の効率は、中等度であることを確認した。ゲノム検証の結果として、少なくともエクソンにオフターゲット変異はなかった(図3)。エクソーム配列決定(Tyrノックアウト(セット1)を含んでいる)における塩基対(bp)読み取りの総数は、65.6Gbpであった。これは、マウスゲノムにおける全塩基対(2.7Gbp)の24倍を超えている。これは、したがって、トリプルターゲットCRISPRストラテジーのオフターゲット効果が実際に問題にならないことを確信させるに十分なカバーをもたらしている。重要なことに、Tyr-3のDNA切断効率は、Tyr-2のものより3倍超高く(図1のD)、一方、Tyr-3の全身2対立遺伝子ノックアウト効率(64.7%)は、Tyr-2のものと同様であり(54.2%)、in vivoでの制限要因は、CRISPR/Cas9システムによるDNA切断ではなく、DNA修復などの他の要因であることを示し、コンピューターモデルによる予測と一致した。トリプルターゲット法の再現性およびロバスト性を、Tyr遺伝子に対する3種のgRNAの2つの独立したセットを用いた追加の実験によってさらに確認した(図4のDおよびE)。この試験において分析のために用いたすべてのマウスを遺伝型判定することによって、ノックアウト効率を確認した。トリプルターゲットCRISPR法によって生成した102匹のマウス(11匹のシングルノックアウト系統および2匹のダブルノックアウト系統を含んでいる)を、遺伝子型決定した。動物の少なくとも92.2%(n=94)は、qPCRまたは配列決定によってノックアウトマウスと確認された。この効率は、上述のモデルによって予測された最小効率を超えていると確認された。さらに、マウスゲノム中の遺伝子の81.2%以上についてのトリプルターゲット候補gRNAを取得できる公的に利用可能なCRISPRデータベースも提供される(図4)。
Claims (13)
- 1種以上の標的遺伝子を有する細胞中に、前記標的遺伝子1種につき3種以上のガイドRNAとCasタンパク質とを生成できるCRISPR-Casシステムを導入することを含む、標的遺伝子がノックアウトされた細胞の製造方法。
- 3種のガイドRNAが標的遺伝子にターゲッティングし、Casタンパク質が標的遺伝子を切断し、これにより標的遺伝子がノックアウトされる、請求項1に記載の方法。
- CRISPR-Casシステムが、前記標的遺伝子1種につき3種以上のガイドRNAと、Casタンパク質をコードするRNAとを含むシステムである、請求項1又は2に記載の方法。
- 標的遺伝子が2種類以上であり、2種類以上の標的遺伝子がノックアウトされる、請求項1から3の何れか一項に記載の方法。
- Casタンパク質が、Cas9タンパク質である、請求項1から4の何れか一項に記載の方法。
- 細胞が、動物細胞である、請求項1から5の何れか一項に記載の方法。
- 細胞が、受精卵である、請求項1から6の何れか一項に記載の方法。
- CRISPR-Casシステムが細胞の細胞質に導入される、請求項1から7の何れか一項に記載の方法。
- 請求項1から8の何れか一項に記載の方法により標的遺伝子をノックアウトした胚を取得し、前記胚を偽妊娠非ヒト動物に移植し、産仔を取得することを含む、ノックアウト非ヒト生物の製造方法。
- ノックアウト非ヒト生物が、ノックアウト非ヒト動物である、請求項9に記載の方法。
- 標的遺伝子が2対立遺伝子であり、取得した産仔の全体数における全身2対立遺伝子ノックアウト個体数の割合が、90%以上である、請求項9又は10に記載の方法。
- 標的遺伝子が2種類以上であり、取得した産仔の全体数における全身2対立遺伝子ノックアウト個体数の割合が、前記2種類以上の標的遺伝子のそれぞれについて90%以上である、請求項11に記載の方法。
- 請求項9から12の何れか一項に記載の方法により製造されるノックアウト非ヒト生物。
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